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IF2010_TD01 Partie II : Techniques d’étude des réponses immunitaires Techniques d’étude des réponses immunitaires
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Techniques d’étude des réponses immunitaires

Jun 24, 2022

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Page 1: Techniques d’étude des réponses immunitaires

IF2010_TD01 Partie II : Techniques d’étude des réponses immunitaires

Techniques d’étude des réponsesimmunitaires

Page 2: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Caractérisation /Caractérisation /IdentificationIdentification

Activation / FonctionActivation / Fonction

ContexteContextephysiopathologiquephysiopathologique

Techniques de phénotypage

Détection de marqueurs

Isolation de populationscellulaires

Analyse des répertoires

Analyse des voies designalisation

Analyse prolifération / cyclecellulaire / Apoptose

Production cytokines /facteurs solubles

Analyse des fonctionseffectrices

Utilisation de modèles desouris

Page 3: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Caractérisation / IdentificationCaractérisation / Identificationcellules et populations cellulairescellules et populations cellulaires

Cytométrie en flux: marquages extracellulaires /intracellulaires

Tri magnétique ou par cytométrie en flux depopulations cellulaires

Immunohistochimie

Microscopie à fluorescence

Analyse des répertoires: immunoscope

Page 4: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Cytométrie en flux : marquages extracellulaires etintracellulaires

Page 5: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Cytométrie en flux : marquages extracellulaires etintracellulaires

Page 6: Techniques d’étude des réponses immunitaires

o T e c h nique des Tétramères

Principe Cette méthode permet de détecter directement les cellules T spécifiques de l'Ag par marquage direct de leur TCR avec un complexe de deux (dimère), quatre (tétramère) ou cinq unités (pentamère) de molécules CMH de classe-I préalablement chargées de l'épitope d'intérêt. Les tétramères sont soit directement couplés à un fluorochrome , soit révélés par un anticorps secondaire. La fréquence de cellules T spécifiques de l'Ag est déterminée par cytométrie de flux. Ainsi, par analyse multiparamétrique, le phénotype des cellules T CD8+ ayant fixé le tétramère est également être analysé. La sensibilité de ce test est telle qu’une cellule positive sur 5 000 cellules T CD8 totales peut être détectée. Tétramères :

Pentamères :

Pro5® Pentamers comprise five MHC-peptide complexes assembled through a coiled-coil domain. Each Pro5® Pentamer also comprises up to five fluorescent or biotin tags for bright and efficient labeling. (ProImmune Website)

o T e c h nique des Tétramères

Principe Cette méthode permet de détecter directement les cellules T spécifiques de l'Ag par marquage direct de leur TCR avec un complexe de deux (dimère), quatre (tétramère) ou cinq unités (pentamère) de molécules CMH de classe-I préalablement chargées de l'épitope d'intérêt. Les tétramères sont soit directement couplés à un fluorochrome , soit révélés par un anticorps secondaire. La fréquence de cellules T spécifiques de l'Ag est déterminée par cytométrie de flux. Ainsi, par analyse multiparamétrique, le phénotype des cellules T CD8+ ayant fixé le tétramère est également être analysé. La sensibilité de ce test est telle qu’une cellule positive sur 5 000 cellules T CD8 totales peut être détectée. Tétramères :

Pentamères :

Pro5® Pentamers comprise five MHC-peptide complexes assembled through a coiled-coil domain. Each Pro5® Pentamer also comprises up to five fluorescent or biotin tags for bright and efficient labeling. (ProImmune Website)

o T e c h nique des Tétramères

Principe Cette méthode permet de détecter directement les cellules T spécifiques de l'Ag par marquage direct de leur TCR avec un complexe de deux (dimère), quatre (tétramère) ou cinq unités (pentamère) de molécules CMH de classe-I préalablement chargées de l'épitope d'intérêt. Les tétramères sont soit directement couplés à un fluorochrome , soit révélés par un anticorps secondaire. La fréquence de cellules T spécifiques de l'Ag est déterminée par cytométrie de flux. Ainsi, par analyse multiparamétrique, le phénotype des cellules T CD8+ ayant fixé le tétramère est également être analysé. La sensibilité de ce test est telle qu’une cellule positive sur 5 000 cellules T CD8 totales peut être détectée. Tétramères :

Pentamères :

Pro5® Pentamers comprise five MHC-peptide complexes assembled through a coiled-coil domain. Each Pro5® Pentamer also comprises up to five fluorescent or biotin tags for bright and efficient labeling. (ProImmune Website)

Cytométrie en flux : technique des tétramères

Ann

exin

V-F

ITC

0 102 103 104 105

<APC-A>: CD8

0

102

103

104

105

<PE

-A>:

TT

CM

V

0.14

0 102 103 104 105

<PerCP-A>: 7AAD

0

102

103

104

105

<FIT

C-A

>: A

V

21.5 5.22

0.9372.4TT C

MV

-PE

7AADCD8-APC

Page 7: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Cytométrie en flux : Tri cellulaire

Page 8: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Tri cellulaire par tri magnétique

Page 9: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Immunohistochimie

http://medidacte.timone.univ-mrs.fr/webcours/umvf/anapath/disciplines/niveaudiscipline/niveaumodule/chapitre1/esp1.04.htm

Page 10: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Méthodes de conservation: avantages et inconvénients

à -20oC(cryostat)

aucunedestruction desantigènes

à -80oC doncdemande unéquipementspécial

moins bienconservée

nécessite untissu fraisRésine

OCT

à températureambiante

certains sontdétruits et lamajoritédemande undémasquage

à températurepièce donc aucunéquipementspécial

très bienconservée

fixation dutissu dans unagent fixateur

paraffine

traitement duspécimen

antigènessystème destockage

morphologieétat du tissu

Immunohistochimie

Page 11: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Adenocarcinomerénal

Carcinome sein(anti-Her2/ErbB2)

Immunohistochimie

Page 12: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Immunohistochimie à « haut débit » : les Tissue Micro Array

Fragments de tissus d’environ 0,6 mm de diamètre obtenus de régionsd’intérêt de tissus inclus en paraffine (biopsies, échantillons de

tumeurs)

• Ces fragments sont insérés et espacés de façon précise dans un blocde paraffine selon un pattern de spots particulier

• Des sections de ce bloc sont coupées grâce à un microtome puismontées sur lame pour analyse

Immunohistochimie

Page 13: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Immunohistochimie et immunofluorescence

Page 14: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Analyse des répertoires: Immunoscope

Page 15: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Activation / FonctionActivation / Fonction

Analyse des voies de signalisation

Cytométrie / Imagerie

Electrophorèse/ Western blot (immunoprécipitations)

Génomique / Protéomique

Production de cytokines

Détection de cytokines grâce à l’analyse de la prolifération cellulaire

ELISA / RIA

ELISPOT

Facs intracellulaire

Prolifération/Division cellulaire/Apoptose

Cytométrie de flux : BrdU, EdU, CFSE, Annexin V

Imagerie : DAPI

Thymidine tritiée

Fonctions effectrices

Cytotoxicité: 51Cr, FACS, LDH

Réponse anticorps: ELISPOT B, ELISA immunoglobulines sériques, tests hémaglutination

Page 16: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Le Western Blot

Page 17: Techniques d’étude des réponses immunitaires

pH

Mol

ecul

ar w

eigh

t kD

a

Electrophorèse à 2D

Page 18: Techniques d’étude des réponses immunitaires

http://www.piercenet.com/Products/Browse.cfm?fldID=9C471132-0F72-4F39-8DF0-455FB515718F

L’immunoprécipitation

Page 19: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Les Puces à ADN

Page 20: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Activation / FonctionActivation / Fonction

Analyse des voies de signalisation

Cytométrie / Imagerie

Electrophorèse/ Western blot (immunoprécipitations)

Protéomique

Génomique

Production de cytokines

ELISA / RIA

ELISPOT

Facs intracellulaire

Prolifération/Division cellulaire/Apoptose

Cytométrie de flux : BrdU, EdU, CFSE, Annexin V

Imagerie : DAPI

Thymidine tritiée

Fonctions effectrices

Cytotoxicité: 51Cr, FACS, LDH

Réponse anticorps: ELISPOT B, ELISA immunoglobulines sériques, tests hémaglutination

Page 21: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Elisa: Enzyme-linked immunosorbent assay

Page 22: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Elisa Sandwich

Page 23: Techniques d’étude des réponses immunitaires

ELISPOT

http://www.rndsystems.com/product_detail_objectname_ELISpotAssayPrinciple.aspx

Page 24: Techniques d’étude des réponses immunitaires

RIA (Radio Immunoassay)

Page 25: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Cytométrie en flux pour la détection de cytokinesintracellulaires

Page 26: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Cytométrie en flux pour la détection de cytokinesdans le surnageant (Cytometric Beads Array)

Each capture bead in the array has a unique fluorescence intensity and is coated with a capture antibody specificfor a single analyte. A combination of different beads is mixed with a sample or standard and a mixture of detectionantibodies that are conjugated to a reporter molecule (PE). Following incubation and subsequent washing, thesamples are acquired on a flow cytometer.The FCAP Array analysis software gates on each individual beadpopulation and determines the median fluorescence intensity (MFI) for each analyte in the array. It generates astandard curve and performs interpolation of sample concentrations compared to the standard curve and generatesan analysis report in tabular format.

Page 27: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Cytométrie en flux pour la détection de cytokinesdans le surnageant (Cytometric Beads Array)

Page 28: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Activation / FonctionActivation / Fonction

Analyse des voies de signalisation

Cytométrie / Imagerie

Electrophorèse/ Western blot (immunoprécipitations)

Protéomique

Génomique

Production de cytokines

ELISA / RIA

ELISPOT

Facs intracellulaire

Prolifération/Division cellulaire/Apoptose

Cytométrie en flux : BrdU, EdU, CFSE, Annexin V

Thymidine tritiée

Fonctions effectrices

Cytotoxicité: 51Cr

Réponse anticorps: ELISPOT B, ELISA immunoglobulines sériques

Page 29: Techniques d’étude des réponses immunitaires

– Iodure de propidium : agent intercalent fluorescent de l'ADN (ex:305 nm ou 538 nm/ em: 617 nm)

– DAPI (4',6' Di Amidino-2-Phényl Indole) : liaison a l’ADN– BrdU analogue du la thymidine, s’incorpore dans les cellules en

division

G0/G1

G2/M

S

Détection des acides nucléiques et analyse du cyclecellulaire

Page 30: Techniques d’étude des réponses immunitaires

– Iodure de propidium : agentintercalent fluorescent de l'ADN,marque le noyau des cellules ayantperdu leur intégrité membranaire(nécrose)

– Annevin V : protéine cellulaireconjuguée à un fluorochrome,marque les phosphatidyl serine(PS) transloquées à la mb lors desévénement précoce de l’apoptose

– 7-AAD (7-Amino-actinomycin D)agent intercalent fluorescent del'ADN, pénètre la membrane decellules mortes ou mourantes.

– Hoechst, agent intercalantfluorescent de l’ADN pénètre lamembrane de cellules mortes oumourantes

– Tunel (Terminal deoxynucleotidylTransferase Biotin-dUTP Nick EndLabeling) : ADN fragmenté, détectépar réaction de la TdT (terminaldeoxynucleotidyl transferase) pourtransférer des biotin-dUTP à l’ADNclivé

Analyse de la viabilité / apoptose/ nécrose

100

101

102

103

104

FL3-H: 7AAD

100

101

102

103

104

FL1-H

: A

V F

ITC

8.54 10.6

0.5980.3

Ann

exin

V

7AAD

Apoptose Apoptose précoceprécoce

Apoptose Apoptose tardivetardiveet/ou nécroseet/ou nécrose

Page 31: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Analyse de la prolifération cellulaire par lacytométrie en flux

• CFSE or CFDA-SE: carboxyfluorescein diacetate, succinimidyl ester.• Succinimidyl ester binds to free amines, resulting in long lived fluorescent

adducts.

Page 32: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Analyse de la prolifération cellulaire : thymidine tritiée

Incorporation de thymidine radiomarquée

Nbre

de

cellu

les

s’é

tant

div

isé

Radioactivité incorporée

Quan

tité

d’AD

N ré

pliq

Quantité d’ADN répliqué Nbre de cellules s’étant divisé

Nbre

de

cellu

les

en

mes

ure

de s

e di

vise

r au

débu

t du

tes

t

Tritium

Page 33: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Activation / FonctionActivation / Fonction

Analyse des voies de signalisation

Cytométrie / Imagerie

Electrophorèse/ Western blot (immunoprécipitations)

Protéomique

Génomique

Production de cytokines

ELISA / RIA

ELISPOT

Facs intracellulaire

Prolifération/Division cellulaire/Apoptose

Cytométrie en flux : BrdU, EdU, CFSE, Annexin V

Thymidine tritiée

Fonctions effectrices

Cytotoxicité

Réponse anticorps: ELISPOT B, ELISA immunoglobulines sériques

Page 34: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Analyse de la cytotoxicité

Cellules ciblesmarquées avec duNa2

51CrO4

Addition des cellulescytotoxiques (NK,NKT, CTL…)

Les cibles tuéesrelarguent le chromeradioactif

Plusieurs ratioeffecteurs/cibles

Autres techniques de l’analyse de la cytotoxicité:

• Cytométrie en flux: CD107 / Granzyme / Perforine / marquage cellules cibleau CFSE + AV + 7AAD

• ELISPOT: Perforine / Granzyme

Page 35: Techniques d’étude des réponses immunitaires

ContexteContextephysiopathologiquephysiopathologique

Modèles de souris

Les lignées de souris consanguines

Les souris immunodéficientes

Les transferts adoptifs

Les souris humanisées

Les souris transgéniques

Les souris « knock-out »

Page 36: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Les lignées de souris consanguines

Obtenues par > 20 croisements frère-sœur (croisementsconsanguins)

Le génome devient peu à peu entièrement homozygote

Populations génétiquement homogènes et (assez) stablesdans le temps

Tous les individus sont identiques (un couple suffit à définir lalignée)

Pas de variance phénotypique entre individus d’originegénétique (important pour la mise en évidence de l’effet d’untraitement)

Plusieurs centaines de lignées consanguines disponibles

Certaines lignées de souris consanguines ont des propriétésparticulières (exemple les souris NOD)

Page 37: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Souche protoype Autres souches avec le même haplotype Haplotype K IA IE D

CBA AKR, C3H, B10.BR, C57BR k k k k k

DBA/2 BALB/c, NZB, SEA, YBR d d d d d

C57BL/10 (B10) C57BL/6, C57L, C3H.SW, LP, 129 b b b b b

A A/He, A/Sn, A/Wy, B10.A a k k k d

A.SW B10.S, SJL s s s s s

A.TL tl s k k d

DBA/1 STOLI, B10.Q, BDP q q q q q

Allèles H-2

Les lignées de souris consanguines

Page 38: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Les lignées de souris consanguines

Page 39: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Les lignées de souris immunodéficientes

• Souris Nude: absence de thymus, absence de LT thymo-dépendants

• Souris SCID (« Severe Combined Immunodeficiency »): absencede LT et LB matures

• Souris NOD: diabète, anomalie IFN, anomalie activité NK

• Souris Beige (bg) : anomalie des macrophages et neutrophiles,anomalie NK et CTL

• Souris RAG-/-: absence de LT et LB matures

• Souris NOD-SCID-IL2Rγ-/-: absence LB, LT, NK

Page 40: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Les transferts adoptifs

Cellules spléniques ou moelle osseusesouris donneuse (souris transgénique,souris knock out, souris traitée…)

Irradiation

Souris receveuse

Analyse de la réponse immunitaire,des fonctions des cellulestransférées…

Page 41: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Les souris humanisées

Page 42: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Les souris transgéniques

• Animaux chez lesquels une partie de l’ADN a été modifiéphysiquement (pas par élevage)

• Le génome de toutes les cellules de l’organisme est modifié

• L’ADN germinal est également modifié: il est transmis à laprogénie selon les lois de Mendel

Page 43: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Pre-implantation

1 cell 2 cells 4 cells 8 cells 16 cells 32 cells

MITOTIC DIVISIONS

Pronuclear Injection

Recombinant DNA constructs Genetically modified embryonic stemcells (ES cells)

Les souris transgéniques

Blastocyst injection

Page 44: Techniques d’étude des réponses immunitaires

Injection Injection dans dans le le pronucleuspronucleus

Suffisament efficace Suffisament efficace pour pour être utilisée sur être utilisée sur les les embryonsembryons

Utilisée Utilisée pour pour ajouter ajouter un un nouvel nouvel ADNADN

Peut être réalisée dans nPeut être réalisée dans n’’importe quelle espèce mammifèreimporte quelle espèce mammifère

Pas de Pas de contrôle du contrôle du site site dd’’insertioninsertion ni ni du du nb de copies nb de copies inséréesinsérées

Page 45: Techniques d’étude des réponses immunitaires

X

1-cell pronuclear stagemouse embryo.

Hormone cocktailto superovulate

Y Pregnant Foster Mother

Oviduct Transfer

++

2-cell stage embryo

Holding PipetteInjection Pipette

Page 46: Techniques d’étude des réponses immunitaires

ES(Embryonic Stem)cell Cultures

Targeted ES Cells Pure Population ofTargeted ES Cells

Targeted ES cells injected into blastocyst

Ψ Pregnant Foster Mother

X

Chimera

Blastocyst derived frommouse with white coat

Breed to WT white mouseGermline transmission

of ES cell-derivedgenome

Uterine Transfer

heterozygous

wt

x wt

heterozygous

homozygous

Homologous Recombination in ES Cells

Page 47: Techniques d’étude des réponses immunitaires

G H IA B

A B C D E F G H I

B C F GX X

C F

Gene knockout by homologous recombinationusing an “W” or “Replacement” type construct

neo

TK

neo

Les souris « Knock out »