FACULTAD DE CIENCIAS DEPARTAMENTO DE FÍSICA DE MATERIALES Sistemas híbridos basados en grafeno y MoS2-2D para detección óptica Memoria para acceder al grado de Doctor realizada por Sandra Cortijo Campos Tesis codirigida por Prof. Alicia de Andrés Miguel Prof. Carlos A. Prieto de Castro Instituto de Ciencia de Materiales de Madrid (CSIC) Tutora: Prof. Luisa E. Bausá López (UAM) Madrid, septiembre 2021
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FACULTAD DE CIENCIAS
DEPARTAMENTO DE FÍSICA DE MATERIALES
Sistemas híbridos basados en
grafeno y MoS2-2D para detección
óptica
Memoria para acceder al grado de Doctor realizada por
Sandra Cortijo Campos
Tesis codirigida por
Prof. Alicia de Andrés Miguel
Prof. Carlos A. Prieto de Castro
Instituto de Ciencia de Materiales de Madrid (CSIC)
Tutora: Prof. Luisa E. Bausá López (UAM)
Madrid, septiembre 2021
RESUMEN
Tras la aparición del grafeno, un gran número de materiales bidimensionales
han atraído el interés de la comunidad científica debido a sus potenciales
aplicaciones, que en muchos casos se espera que sean superiores a las del
grafeno. De entre estos materiales bidimensionales destacan los
dicalcogenuros de metales de transición (TMCDs), en particular el disulfuro de
molibdeno.
En este trabajo de Tesis doctoral se ha tenido por objetivo, por una parte, el
diseño y montaje de un sistema apto para el crecimiento y dopado por
distintas técnicas de crecimiento en fase de vapor (CVD, del inglés chemical
vapour deposition y PVT, del inglés physical vapour transport) de
dicalcogenuros de metales de transición, el crecimiento de MoS2
bidimensional por dichas técnicas y el estudio de sus propiedades en función
del método de crecimiento, del número de capas, del tamaño de los copos y
de distintos defectos intrínsecos. También se ha estudiado el efecto que tiene
en la eficiencia de fotoluminiscencia la presencia de nanopartículas de MoO2
en muestras de MoS2 bidimensional crecidas por CVD.
Por otra parte, se ha llevado a cabo el diseño, estudio y desarrollo de
diferentes plataformas basadas en estos dos materiales bidimensionales
(grafeno y MoS2) para su uso en aplicaciones de detección óptica.
El grafeno se ha combinado con nanopartículas de plata para aplicaciones de
detección óptica mediante la amplificación de la señal Raman. La
espectroscopía Raman cumple el requisito de especificidad para la detección
molecular, ya que el espectro de vibración de cada compuesto es único,
pudiéndose utilizar para su identificación. Por esto, durante los últimos años,
la comunidad científica ha hecho un gran esfuerzo para aumentar la señal
Raman, normalmente de intensidad débil, principalmente a través del acoplo
con plasmones localizados resonantes de nanopartículas metálicas, llamado
efecto SERS (del inglés surface enhanced Raman spectroscopy). Sin embargo,
las plataformas SERS presentan serios problemas tales como la estabilidad de
las nanopartículas, su interacción con el analito o la adsorción, distribución y
orientación de las moléculas sobre el sustrato. En este campo, la introducción
de grafeno proporciona varias ventajas como son la estabilización de la
superficie sobre la que se depositan las nanopartículas metálicas, un sustrato
altamente bio-compatible, la modulación de la interacción analito-metal y la
dotación de una vía de desexcitación no-radiativa que elimina la fluorescencia
no deseada de moléculas orgánicas. En concreto, en este trabajo se evalúa la
capacidad para amplificar las señales Raman por parte de NPs de Ag esféricas,
monodispersas, ultra pequeñas (R ~ 2 nm) y libres de impurezas, y se compara
con otras NPs de Ag de mayor tamaño y forma diferente. También se estudia
la relevancia de la distancia entre NPs en el plasmón y en la eficiencia de la
amplificación SERS. Para ello se emplean las señales del grafeno y de una
molécula de referencia como la Rodamina 6G (R6G). Por último, se estudia el
efecto que tiene la combinación los dos tipos de NPs en una misma
plataforma.
La detección de bio-marcadores es de gran importancia para la medicina
preventiva del cáncer y sin embargo es todavía particularmente difícil debido
a su extremadamente baja concentración en sangre y a la complejidad del
medio en el que se encuentran. Por ello, se ha llevado a cabo la
funcionalización tanto del grafeno como del MoS2 para su uso como
componentes clave en aplicaciones de detección de biomarcadores de
proteínas. En el caso del grafeno, se ha se ha diseñado y optimizado una nueva
ruta de síntesis para funcionalizar in-situ grafeno-CVD con grupos carboxílicos
(-COOH) por enlace covalente de una forma controlada. Estos grupos
carboxílicos son necesarios para facilitar la posterior unión con otros grupos
específicos, como las aminas primarias (-NH2), presentes en diferentes
moléculas biológicamente activas (como anticuerpos) y disponer así de
plataformas aptas para sensores ópticos o electrónicos de biomoléculas. Por
otra parte, se ha desarrollado un biosensor en el que se aprovecha la
fotoluminiscencia del MoS2 monocapa para la detección óptica de
biomarcadores a través de los cambios producidos en la fotoluminiscencia tras
la hibridación con el biomarcador correspondiente. En particular, se ha
probado la especificidad para la detección del biomarcador miARN21 del
componente de 450 cm-1 a medida que se reduce la temperatura de 300 K a
70 K (=5.2 cm-1, /=1,15%) es más del doble que los observados para
los picos E12g (1.7 cm-1, 0.44%) y A1g (2.3 cm-1, 0.57%) en la muestra 1L-MoS2-
Zaf (Figura 3.29).
Figura 3.29. Esepectro Raman de las regiones II-IV de la muestra 1L-PVT-Zaf a
temperatura ambiente (RT, 300 K) y a 70 K.
Debido a la extrema sensibilidad de la banda a 450 cm-1 a las pequeñas
modificaciones de las deformaciones en la red de MoS2, ya sea a través de su
interacción con el sustrato o inducidas por la temperatura, se espera que la
frecuencia del pico de 450 cm-1 sea un mejor indicador de la deformación en -
MoS2-2D que la frecuencia del modo E12g.
Por otra parte, en la Figura 3.28a se observa una componente alrededor de
470 cm-1 cuya intensidad relativa aumenta con N y, en la muestra 10L-ME, la
banda global es idéntica a la de la muestra bulk-MoS2. A medida que aumenta
N, la estructura electrónica se asemeja a la del MoS2 en volumen, haciendo
posible detectar esta componente débilmente resonante (470 cm-1). Al
contrario de lo que se observa para el pico de 450 cm-1, el límite de alta
frecuencia de la banda permanece casi inalterado con el cambio en el número
de capas, el sustrato o la temperatura.
380 400 420
5
10
15
440 460 480 500 520
2
3 70K RT
Inte
nsid
ad (u
.a.)
1L-PVT-Zaf
Desplazamiento Raman (cm-1)
MoS2 bidimensional
123
3.2.4 Región IV: 500-650 cm-1
En la Región IV tienen lugar procesos de segundo orden que implican una
rama óptica de los modos activos Raman y un modo acústico, ambos con
vectores de onda opuestos pero idénticos (para cumplir la conservación del
momento), a excepción del pico en 570 cm-1 que corresponde al fonón óptico
doble 2E1g.
Figura 3.30. Espectros Raman de la región IV de MoS2 normalizados a la intensidad
de A1g de las muestras b) 1, 2, 3 y 10L-ME-Plat “bulk” (línea gris) y b) 1, 2 y 3L-PVT-
Plat.
El pico en 530 cm-1 en el MoS2 en volumen se ha asignado a E1g(M)+LA(M).36
Las frecuencias de las muestras 1L-MoS2 son más bajas (523-524.3 cm-1) y
aumentan con N con una variación relativa / +1% que tiene el mismo
signo que E1g (/ +0.3%) pero es significativamente mayor.
Los picos en torno a 498 y 550 cm-1 sólo se observan en las muestras PVT y
CVD (Figura 3.18) independientemente del sustrato, pero no están presentes
en las muestras ME y bulk-MoS2, por lo que pueden estar relacionados con
defectos específicos de las técnicas de depósito de vapor. También se han
480 500 520 540 560 480 500 520 540 560 580
Inte
nsid
ad R
aman
(u.a
.)
1L 2L 3L 10L bulk
ME-Plat
Desplazamiento Raman (cm-1)
PVT-Zaf
CÁPITULO 3
124
reportado picos con frecuencias similares en nanopartículas de MoS2 tipo
fullereno y plaquetas.36
Observando la relación de dispersión de los fonones obtenida por dispersión
inelástica de rayos X41 (Figura 3.21) es posible relacionar el pico de 498 cm-1
con combinaciones de modos acústicos y Raman con vectores de onda Q,
como LA(Q) + E1g (LOQ) o TA(Q) + E12g(LOQ). Alternativamente, estos dos picos
podrían deberse a modos locales relacionados con defectos resultantes de la
síntesis de MoS2 que no están presentes en el MoS2 obtenido por exfoliación.
3.2.5 Región V: 650-850 cm-1
En la Región V, se encuentran los modos de segundo orden originados por
combinaciones de los modos activos Raman. La banda más interesante es la
etiquetada como 2A1g, cuya frecuencia, sin embargo, no corresponde al doble
de la frecuencia de A1g() en ninguno de los casos. En el caso de la muestra
bulk-MoS2 aparece en 819 cm-1, una frecuencia mayor que el doble de A1g()
(2 x 407.5 = 815 cm-1). Probablemente su frecuencia esté relacionada con el
máximo del fonón en DOS, que coincide con el valor de A1g(M) a 410 cm-1
reportado por dispersión inelástica de rayos X para el MoS2 en volumen.41 En
el caso de 1L-MoS2, este pico se detecta a una frecuencia casi idéntica
(ligeramente superior) a la de la muestra bulk-MoS2, 820 cm-1 en ME y 822 cm-
1 en PVT, mientras que la frecuencia de A1g es significativamente inferior (402.8
y 404.3 cm-1, para ME y PVT respectivamente). Esto indica que la frecuencia
de la rama A1g se ve afectada de forma diferente por las capas adyacentes
cuando el vector de onda está en o en un borde de zona.
En resumen, las muestras estudiadas encajan dentro de los estándares de
muestras sin defectos, pero presentan picos prohibidos de primer orden que
corresponden a ramas acústicas activados por la presencia de defectos
intrínsecos. Dependiendo del proceso Raman que da lugar a cada uno de los
MoS2 bidimensional
125
fonones, éstos son sensibles a diferentes variables como el número de capas,
el método de crecimiento o el sustrato. En el caso de los picos de 150 y 190
cm-1, los cambios de frecuencia observados con el número de capas pueden
relacionarse con las modificaciones en la estructura de la banda electrónica, a
través de un proceso de doble resonancia mediado por defectos intrínsecos,
que activa los fonones alrededor del punto Q de la zona de Brillouin. Se
observa un comportamiento opuesto para la banda compleja en el rango 420-
470 cm-1 (procesos de dos fonones), que es resonante para energías de
excitación cercanas al excitón B (2 eV), y que, fuera de esta resonancia, para
una excitación en 2.54 eV, es especialmente sensible a la interacción MoS2-2D
con el sustrato y a los cambios en la temperatura. Algunos picos son
específicos de las técnicas de depósito de vapor y también se han detectado
en nanopartículas, lo que indica que estas muestras pueden contener defectos
que no están presentes en las muestras exfoliadas mecánicamente o en el
MoS2 en volumen. Otros picos sólo se detectan en 1L-MoS2,
independientemente de su origen. En este trabajo se proponen nuevas
asignaciones para varios picos (Tabla 3.1) basándonos en los resultados aquí
expuestos y respaldados por la relación de dispersión de fonones obtenida
experimentalmente publicadas recientemente para el MoS2 en volumen.
CÁPITULO 3
126
3.3 EFECTOS DEL TAMAÑO EN NANOCOPOS DE MOS2 DE UNA Y
POCAS CAPAS
El diseño y la fabricación de nanodots, o nanocopos de materiales 2D,
inicialmente de grafeno y más recientemente de TMDCs, es un tema de
creciente interés debido a las nuevas posibilidades que ofrecen estos
materiales. Los nanodots presentan una emisión en el visible cuya longitud de
onda depende del tamaño, aunque su relación no está del todo clara. Por
ejemplo, se ha reportado que la emisión varía de 480 a 500 nm para diámetros
de 2 a 26 nm,45 pero también se ha publicado una variación mucho mayor (430
- 610 nm) para un rango de tamaño de partícula más estrecho (2-7 nm).46 Esta
sintonización de la fotoluminiscencia con el tamaño hace que los nanodots de
MoS2 sean de gran interés.
La reducción del tamaño de MoS2 monocapa es un objetivo y también un reto,
ya que el control necesario para obtener monocapas reales y copos
nanométricos de alta calidad no es sencillo. La caracterización del MoS2
monocapa de tamaño nanométrico también puede verse comprometida, ya
que los procedimientos estándar pueden no funcionar. Por ejemplo, el
parámetro más utilizado para la estimación del número de capas, Δω, puede
no ser adecuado si las muestras crecidas por CVD o PVT presentan defectos,
ya que las frecuencias de E12g y A1g pueden verse alteradas (ver Figuras 3.12 y
3.13). En la Figura 3.13 se observa que las muestras de partida de cada trabajo
muestran una gran variabilidad de los valores E12g, A1g y Δω
independientemente del método de obtención.
Aquí se van a estudiar las características de copos de MoS2 de una y pocas
capas con tamaños que van de 10 nm a 4 μm, combinando la espectroscopía
Raman con la de reflectancia y la fotoluminiscencia, lo que permite discernir
entre los efectos en los espectros Raman originados por los diferentes tipos
MoS2 bidimensional
127
de defectos o distorsiones estructurales de los relacionados con el número de
capas.
Figura 3.31. Representación de los valores de intensidad Raman del modo A1g
(círculos rojos) y de intensidad de PL (cuadrados azules) para regiones con distinto
número de capas de una muestra de MoS2 crecida por PVT.
La Figura 3.31 muestra el comportamiento estándar de la intensidad Raman
del modo A1g y de la fotoluminiscencia de copos de MoS2 grandes (decenas de
micras) a medida que aumenta el número de capas. Las intensidades se
representan en función de Δω y se pueden identificar fácilmente los copos de
1, 2, 3 y 4 capas. Se observa como la intensidad del fonón A1g aumenta
linealmente de una a tres capas, mientras que la intensidad de
fotoluminiscencia disminuye rápidamente al aumentar de N. Sin embargo,
para copos pequeños de MoS2, obtenidos por CVD y PVT, la situación es más
compleja y la determinación del número de capas utilizando Δω no es sencilla
(Figura 3.32).
CÁPITULO 3
128
Figura 3.32. Intensidad del pico A1g frente a Δω para MoS2 crecido por CVD con
tamaño de 0.5 µm (triángulos rosas) y para MoS2 crecido por PVT con tamaños de
entre 1-3 µm y 20 µm (cuadrados verdes y azules respectivamente).
En la Figura 3.33 se presentan imágenes de AFM de muestras de nanocopos
de MoS2, obtenidas por CVD (de 10 nm a 200 nm), e imágenes ópticas de
muestras con copos más grandes, de hasta 4 µm, obtenidas por PVT, todas
ellas crecidas sobre zafiro, junto con los correspondientes perfiles. En todos
los casos los copos tienen una forma triangular y son monocapa, con alturas
de copo que varían de 0.75 nm a 1.2 nm y valores de Δω que van de 20 cm-1 a
22.7 cm-1.
20 21 22 23 24 25 26
0
1000
2000
3000
4000
0.5 m (CVD)1-3 m (PVT) 20 m (PVT)
Int.
Ram
an (u
.a.)
(cm-1)
MoS2 bidimensional
129
Figura 3.33. a) Imágenes de topografía medidas por AFM de nanocopos de MoS2
crecidos por CVD sobre zafiro y b) sus correspondientes perfiles. c) Imágenes ópticas
de copos MoS2 crecido por PVT sobre zafiro.
Dado que las frecuencias de E12g, A1g pueden verse perturbadas debido a
diferentes efectos, se registraron los espectros de transmitancia y reflectancia
macroscópicas y microscópicas para verificar si las muestras son o no
monocapa. La Figura 3.34a muestra los espectros de micro-reflectividad de
una muestra de nanocopos de MoS2 (3-5 μm) y de una de las referencias PVT
con copos de 20 μm de una y dos capas. También se muestran los espectros
de absorción de nanocopos de distintos tamaños en la Figura 3.34b.
CÁPITULO 3
130
Figura 3.34. a) Espectros de micro-reflectividad de copos de MoS2 de tamaño 20 μm
(1L línea negra y 2L línea roja) y de tamaño 3-5 μm (línea azul). b) Espectros de
absorción de copos de MoS2 con tamaño 200 nm (línea verde) y 3-5 μm (línea azul).
El espectro de transmitancia del MoS2 monocapa presenta bandas alrededor
de 1.88 (660 nm), 2.05 (612 nm) y 2.88 eV (430 nm) que corresponden a los
excitones A, B y C.11 Las energías de los excitones A y B muestran cambios
bastante pequeños con N, lo que dificulta la determinación del número de
capas, mientras que la energía del excitón C se reduce drásticamente, de 2.88
a 2.75 eV (430 a 450 nm), al pasar de 1 a 2 o más capas (Figura 3.23). Por tanto,
es un excelente indicador del carácter monocapa de una muestra. Además, el
excitón C no se ve afectado por el dopado o la deformación, mientras que los
excitones A y B son, en principio, más susceptibles a la transferencia de
carga.24 Otro excelente indicador del carácter monocapa es la no detección
del fonón E1g, como se ha explicado en el apartado 3.2. Sin embargo, los
espectros Raman deben tener una alta relación señal/ruido, que no siempre
es fácil de alcanzar. Todas las gráficas que se muestran a continuación se han
realizado utilizando el lenguaje de programación R, las librerías tidyverse y
ggplot2 y la función ggplot(). En todos los casos el color indica el carácter
monocapa (rojo) o multicapa (azul) del MoS2 y la forma indica el método de
obtención que puede ser ME (triángulos), CVD (círculos) o PVT (cuadrados).
1.8 2.1 2.4 2.7 3.0
0.00
0.02
0.04
0.06
0.08C
B
1L 20 m 2L 20 m 1L 3-5 m
Ref
lect
anci
a (u
.a.)
(nm)
A
1.8 2.1 2.4 2.7 3.00.00
0.02
0.04
Abso
rban
cia
(u.a
.)
(nm)
1L 200 nm 1L 3-5 m
MoS2 bidimensional
131
Las muestras crecidas en nuestro laboratorio presentan forma sólida y las
utilizadas de referencia forma hueca.
Con la información sobre el carácter monocapa de las muestras obtenido a
partir de la energía del excitón C se hace evidente que, para los nanocopos de
una sola capa (rojo), Δω varía de 20 a 23 cm-1 y que, para MoS2 con N>1 (azul),
Δω varía entre 22.5 y 25 cm-1 (Figura 3.35).
Figura 3.35. Intensidad del modo Raman A1g con respecto a Δω para muestras de
MoS2 monocapa (rojo) y con más de una capa (azul) obtenidas por CVD (círculos),
PVT (cuadrados) y ME (triángulos). Las muestras crecidas en el laboratorio se indican
con formas sólidas, mientras que las de referencia presentan formas abiertas.
Las frecuencias de los espectros Raman de las muestras obtenidas por CVD
(círculos) y PVT (cuadrados) se han representado en función del tamaño de los
copos junto con los copos de MoS2 de referencia de mayor tamaño (10-30 μm)
obtenidos mediante ME (triángulos) y PVT (cuadrados). La Figura 3.36 muestra
que las frecuencias A1g y E12g aumentan a medida que se reduce el tamaño de
los copos. Las tendencias de 1L-MoS2 (área roja) y de pocas capas (área azul)
son paralelas, pero están desplazadas verticalmente, hacia arriba para A1g y
CÁPITULO 3
132
hacia abajo para E12g, lo que coincide con el signo de los cambios de frecuencia
con el número de capas.
Figura 3.36. Frecuencia de los modos Raman a) A1g y b) E12g de muestras MoS2
monocapa (rojo) y de pocas capas (azul) en función del tamaño.
La frecuencia E12g requiere una atención especial. La muestra de ME
transferida presenta frecuencias E12g similares a las de los copos grandes (10-
15 μm) crecidos por PVT meses después de su crecimiento (384.5 cm-1,
señalado en Figura 3.36b por la franja verde). Sin embargo, las frecuencias de
MoS2 bidimensional
133
estos copos PVT recién crecidos son significativamente menores (alrededor de
383.5 cm-1) (Figura 3.37). Se deduce que los copos de MoS2 recién sintetizados
están sometidos a una tensión de tracción ejercida por el sustrato de zafiro
(probablemente debido a los diferentes coeficientes de expansión durante el
proceso de enfriamiento)9 que luego se relajan lentamente hacia el valor de la
muestra ME sin tensión. Los copos pequeños crecidos por técnicas en fase de
vapor (ya sea por CVD o PVT) también sufren una tensión de tracción
(frecuencia E12g inferior al valor estándar relajado), pero el tensionamiento
debido al sustrato se reduce a medida que el tamaño del copo disminuye
alcanzando el valor de E12g sin tensión para copos de 10 nm, indicando que
estos nanocopos de MoS2 están relajados. La variación de la deformación se
estima en torno a 1% según las referencias.10,21
Figura 3.37. Espectros Raman de la muestra de referencia crecida por PVT en la
Universidad de Alabama después de un mes (negro) y después de un año (rojo).
Por su parte, el aumento de A1g a medida que se reduce el tamaño (Figura
3.36a) puede explicarse por un aumento del dopado tipo-p. El dopado con
huecos se debe típicamente a la transferencia de carga de O2 adsorbido27,32
que, en este caso, puede verse potenciado por una mayor densidad de
vacantes de azufre en los bordes de los copos cuyo peso es más importante a
380 390 400 410
0
200
400
600
800
1000
384.5
Inte
nsid
ad (u
.a.)
Desplazamiento Raman (cm-1)
1 mes 1 año
383.5
CÁPITULO 3
134
medida que se reduce el tamaño. En este caso se detecta una variación en A1g
de alrededor de 3 cm-1 que corresponde a un dopaje deaproximadamente un
8 % siguiendo los resultados de la referencia 29, en la que simulan la
sustitución de los átomos de azufre por átomos de nitrógeno.33
Figura 3.38. Relación de intensidades I(PL)/I(A1g) en función de a) la diferencia de
frecuencias Δω y b) el tamaño de los copos. c) Energía del máximo de
fotoluminiscencia (PL) en función del tamaño de los copos.
Mantener un alto rendimiento de la fotoluminiscencia a medida que el
tamaño de los copos disminuye es un requisito importante para utilizar
nanocopos de MoS2 en aplicaciones de optoelectrónica. Por lo tanto, puesto
que la fracción del área iluminada por el láser ocupada por nanocopos de MoS2
varía de una muestra a otra, para comparar de forma fiable el rendimiento de
MoS2 bidimensional
135
la fotoluminiscencia de las diferentes muestras, se ha empleado la relación de
intensidades entre la banda de fotoluminiscencia y el pico A1g, I(PL)/I(A1g),
utilizando la señal Raman para normalizar y hacer comparables los datos. La
Figura 3.38 presenta la dependencia de esta relación, I(PL)/I(A1g), con el
tamaño de los copos (Figura 3.38b) y con la diferencia de frecuencias, Δω
(Figura 3.38a). I(PL)/I(A1g) no parece estar correlacionada con el tamaño
(figura 3.38b) de las muestras monocapa (color rojo), pero sí con Δω (figura
3.38a). La dependencia exponencial (nótese la escala logarítmica para el
cociente de intensidad) se observa en todo el rango de Δω, de 19 a 25 cm-1,
que incluye muestras de 1L (color rojo) y de pocas capas (color azul), así como
las muestras de referencia ME y PVT (formas abiertas). La Figura 3.38 indica
que el aumento de Δω, independientemente de su origen, disminuye la
eficiencia de la fotoluminiscencia. También se observa un aumento de hasta
50 meV en la energía de la banda de fotoluminiscencia a medida que el
tamaño de los copos disminuye (Figura 3.38c). Además, la Figura 3.39 muestra
que las anchuras (FWHM) de los picos A1g y E12g aumentan con Δω. La
presencia de defectos da lugar a un ensanchamiento de los picos Raman y a
un incremento de Δω (Figura 3.11).12 Por lo tanto, la reducción de la eficiencia
de fotoluminiscencia, asociada a un incremento de Δω, debe estar relacionada
con un aumento del desorden estructural, y no con el tamaño de los copos.
CÁPITULO 3
136
Figura 3.39. Anchuras (FWHM) de los modos Raman a) A1g y b) E12g en función de la
diferencia de frecuencias entre ambos modos (Δω).
En conclusión, se observa que la energía de la fotoluminiscencia aumenta a
medida que se reduce el tamaño. Esta tendencia es consistente con el
aumento del dopado tipo-p deducido a partir de la tendencia de la frecuencia
A1g. Sin embargo, la eficiencia de fotoluminiscencia no muestra una tendencia
de aumento clara a medida que se reduce el tamaño, tal y como se esperaría
MoS2 bidimensional
137
para el dopado tipo-p. Esto podría deberse al desorden estructural
relacionado con la reducción de tamaño, compensando el aumento esperado
en la fotoluminiscencia y dando lugar a intensidades dentro de la dispersión
de valores que se registran para las monocapas de MoS2 de mayor tamaño sin
defectos. Por tanto, se han obtenido nanocopos monocapa de MoS2 en un
amplio rango de tamaños, desde 100 nm hasta varias micras, con una
excelente eficiencia de emisión.
CÁPITULO 3
138
3.4 AMPLIFICACIÓN RAMAN Y DE FOTOLUMINISCENCIA POR
NANOPARTÍCULAS DE MOO2
Una de las características observadas en las muestras de MoS2 sintetizadas por
CVD a partir de MoO3 y S es que algunas de ellas presentan señales Raman y
de fotoluminiscencia anómalamente intensas. Se observan distintas
situaciones: a) zonas monocapa donde tanto la señal Raman como la
fotoluminiscencia están, b) zonas monocapa donde sólo la fotoluminiscencia
está amplificada y c) zonas de varias capas (2 -3) donde ambas señales están
amplificadas, especialmente la de fotoluminiscencia, que debería ser
extremadamente pequeña. Como se mencionó anteriormente, a medida que
el número de capas aumenta, la intensidad Raman lo hace también, mientras
que la de la fotoluminiscencia disminuye, tal y como se observa en la Figura
3.29.
Figura 3.40. a) Imagen óptica de una muestra de MoS2 crecida por CVD, mapas de
intensidad b) del modo Raman A1g, c) de PL y d) la diferencia de frecuencias entre los
modos Raman A1g y E12g (Δω).
MoS2 bidimensional
139
Un ejemplo de estos casos es la muestra presentada en la Figura 3.40 (caso a).
En ella se distinguen dos zonas circulares en las que el MoS2 es monocapa (Δω
≤ 22 cm-1 en Figura 3.40d), pero cuya intensidad Raman (Figura 3.40b) es
mayor (zonas de amarillo a verde) que en el resto de la muestra (zonas negras),
donde el MoS2 es de dos o tres capas (Δω = 23-24 cm-1).
Figura 3.41. Imágenes ópticas de dos muestras de MoS2 crecidas por CVD a partir de
MoO3 y S con las mismas condiciones experimentales.
Como ya se mencionó en el Apartado 3.1 de este capítulo, “Síntesis de MoS2
por CVD”, con el crecimiento consecutivo de muestras fueron apareciendo
nanopartículas (NPs) de MoO2 con densidades cada vez más notables. La
intensidad Raman del MoO2 es aproximadamente 25 veces menor que la
intensidad del MoS2 (comparando polvos prensados) (Figura 3.5, apartado
3.1), por lo que, aunque no se detecte en los espectros Raman de todas las
muestras, las NPs presentes corresponden a este compuesto. Se ha reportado
que esferas de tamaño nanométrico (aproximadamente 40 nm) de MoO2
presentan propiedades plasmónicas, amplificando la señal Raman de
moléculas hasta en un factor 106,47por lo que los plasmones de estas NPs son
muy probablemente responsables de estas señales amplificadas observadas
en determinadas zonas. La mayor reflectancia de las zonas donde se produce
CÁPITULO 3
140
la amplificación sería debida a la presencia de estas NPs metálicas de MoO2.
Sin embargo, el efecto SERS no explica los detalles de los tres casos descritos.
Además, algunas de estas muestras con zonas altamente reflectantes (Figura
3.41) presentan una intensa fotoluminiscencia en zonas donde el MoS2 es de
varias capas, algo totalmente contrario a lo esperado (caso c).
En la Figura 3.41 se muestran imágenes ópticas en las que se observan “zonas
brillantes” con mayor reflectividad (zB, marcada con línea de puntos roja) y
“zonas lisas” (zL, marcada con línea de puntos verde). En todos los casos, el
carácter monocapa o multicapa de las distintas zonas ha sido comprobado con
la posición del excitón C a través de medidas de micro-reflexión (Figura 3.42).
Figura 3.42. Imagen óptica de una muestra de MoS2 crecido por CVD con zonas
brillantes y lisas y sus correspondientes espectros de micro-reflectancia.
Para poder analizar la anomalía en las intensidades Raman y de
fotoluminiscencia de estas muestras se ha tomado como referencia una de las
muestras crecidas por PVT en la Universidad de Alabama. Al igual que en el
apartado anterior, se ha utilizado la relación de intensidad entre la banda de
fotoluminiscencia y el fonón A1g, I(PL)/I(A1g) para comparar los resultados
entre muestras de manera fiable. Para unas condiciones de medida dadas, la
intensidad Raman del modo A1g de la muestra de referencia “estándar” es de
MoS2 bidimensional
141
aproximadamente 500 cuentas y la intensidad de fotoluminiscencia de unas
5000 cuentas, obteniendo valores de la relación de intensidades I(PL)/I(A1g) de
~10 para la monocapa, ~1 en la bicapa y < 1 para más de dos capas (Figura
3.31).
En la Figura 3.43 se han representado espectros Raman y de fotoluminiscencia
representativos de las zonas brillantes y lisas junto con los de la muestra de
referencia crecida por PVT de una capa (Ref 1L) y de dos capas (Ref 2L).
Figura 3.43. a) Espectros Raman y b) de PL correspondientes a la muestra de
referencia monocapa (Ref-1L, línea negra) y a las zonas lisas de la muestra crecida
por CVD (zL, línea roja). Espectros c) Raman y d) de PL correspondientes a la muestra
de referencia bicapa (Ref-2L, línea negra) y a las zonas brillantes de la muestra
crecida por CVD (zB, línea roja). Las líneas estrechas en ~695 nm corresponden a
impurezas de Cr3+ en el zafiro.
CÁPITULO 3
142
El espectro Raman de la zona lisa (zL) indica que se trata de MoS2 monocapa
(Δω=20.5 cm-1) y su ratio I(PL)/I(A1g) es de aproximadamente 150, unas 15
veces mayor que el correspondiente a la muestra de referencia monocapa. En
este caso no se da una amplificación de la señal Raman, pero sí un gran
incremento (x15) de la fotoluminiscencia (caso b).
En la zona brillante (zB), los espectros Raman obtenidos muestran que el MoS2
es de unas pocas capas (Δω ~24 cm-1) y el cociente I(PL)/I(A1g) es ~25 (caso c).
Como ya se ha mencionado, normalmente para MoS2 de más de una capa
I(PL)/I(A1g) suele ser igual o inferior a 1. Sin embargo, en esta muestra es
sorprendentemente alto (x25), incluso mayor que el obtenido para el MoS2
monocapa de referencia. Además de la anomalía observada con respecto a la
intensa fotoluminiscencia que presentan las zonas de pocas capas (zB), la
intensidad Raman de estas zonas también es mayor a la esperada. La
intensidad Raman es proporcional, en general, al volumen de muestra que
origina la señal, por lo que en el MoS2 de pocas capas (entre 2-3L según la
diferencia de frecuencias entre los picos A1g y E12g) debería observarse una
intensidad Raman entre 2 y 3 veces mayor que en las zonas monocapa, como
se muestra en la Figura 3.31. Sin embargo, la intensidad es aproximadamente
20 veces mayor. Desgraciadamente, no es posible calcular el plasmón del
MoO2 en función del tamaño, como se ha hecho en el Capítulo 4 para las NPs
de plata, ya que en este caso no ha sido posible encontrar en la literatura el
índice de refracción (o la constante dieléctrica), ni siquiera para longitudes de
onda concretas. Hay que señalar que la obtención de películas de MoO2 con
fase pura no es sencilla y que hay pocos datos acerca de este compuesto.
Tampoco se han encontrado medidas experimentales del plasmón,
seguramente porque las películas o NPs generadas suelen contener varias
fases MoOx (en muchos casos con MoO3 y otras estequiometrías).
MoS2 bidimensional
143
Por otra parte, la fotoluminiscencia aparece desplazada en ambas zonas hacia
mayores energías con respecto a la de la muestra de referencia (de 1.85 eV en
Ref-1L a 1.87 eV en zL). Se observan, por tanto, dos efectos: una amplificación
de las intensidades Raman y de fotoluminiscencia en las zonas brillantes (zB)
y una importante mejora de la eficiencia de la fotoluminiscencia en las zonas
lisas (zL), además de un desplazamiento a mayor energía en ambas zonas (zB
y zL).
Figura 3.44. Imágenes de a) topografía y b) fase medidas por AFM de una muestra
con anomalías en las intensidades Raman y de PL, en particular en el borde de una
zona brillante (zB); c) Perfiles de topografía de las zonas señaladas en a).
En la Figura 3.44 se presentan las imágenes de topografía y de fase obtenidas
por AFM en el borde de una zona brillante (zB). Atendiendo a la imagen
correspondiente a la fase (panel b) se observan dos regiones diferenciadas: en
el lado izquierdo se detectan copos de MoS2 triangulares dispersos con
CÁPITULO 3
144
nanopartículas (granos negros), y en la parte derecha, se observa la
coalescencia de los copos y un aumento de la densidad de nanopartículas la
(zona brillante, zB). La diferencia de color entre los copos y las nanopartículas
en la imagen de fase indica que su composición química es diferente, lo que
concuerda con que correspondan a MoO2. El tamaño de estas NPs va desde
los 30 a los 180 nm en altura, siendo el tamaño medio aproximadamente 40
nm, y con un tamaño en el plano de 100-150 nm (Figura 3.44 c y d).
Figura 3.45. a) Imágen de topografía AFM, b) imagen con más resolución de la zona
marcada con el recuadro verde en a), d) y f) Perfiles topográficos de las zonas
señaladas en la imagen de topografía b).
En la Figura 3.45a se muestran otras imagenes AFM de la misma muestra pero
en una región que representa la denominada zona lisa (zL), donde se aprecian
NPs muy pequeñas y varios cristales de forma romboide similares a los
reportados en el trabajo de Li et al.8 En la Figura 3.45b se muestra la imagen
de topografía correspondiente al cuadrado verde en el panel a). En ella se ven
MoS2 bidimensional
145
copos triangulares de MoS2 de aproximadamente 1 μm con baja densidad de
NPs .Los copos son monocapa (altura de aproximadamente 0.7 nm según el
perfil de Fig. 41e) y las NPs son de un tamaño mucho menor (altura de 5 - 15
nm) al observado en la Figura 3.44.
Se observan, por tanto, dos morfologías distintas que se pueden asociar a las
zonas brillantes y zonas lisas. Las zonas brillantes muestran una mayor
densidad de NPs de MoO2 y de mayor tamaño, mientras que las zonas lisas
presentan menor densidad de NPs mucho más pequeñas.
A partir de estas observaciones se deduce que la presencia de MoO2 da lugar
a dos efectos distintos. Por un lado, causa la amplificación de las señales
Raman y de emisión de las zonas brillantes (zB), que puede explicarse por el
efecto SERS asociado al plasmón localizado de nanopartículas de MoO2. Por
otro lado, origina una mejora en la eficiencia de la fotoluminiscencia, además
de su desplazamiento a mayores energías, que puede explicarse por un efecto
de dopado tipo-p del MoS2. Es conocido que el O2 adsorbido sobre MoS2
produce un dopado tipo-p, que da lugar a un incremento de la energía de la
fotoluminiscencia y a un aumento de su intensidad debido al cambio en la
recombinación: de triones a excitones.27,29,32,48 En este caso, se deduce que el
MoO2 también induce una transferencia de huecos hacia el MoS2,
intensificando la fotoluminiscencia y desplazándola a mayores energías. Las
zonas brillantes, con NPs de mayor tamaño, parecen verse afectadas por
ambos efectos (SERS y dopado tipo-p), mientras que las zonas lisas, con NPs
más pequeñas, solo se ven afectadas por el dopado tipo-p.
3.4.1. Estabilidad temporal del MoO2 en las muestras de MoS2
Se ha estudiado la estabilidad temporal de estas muestras con señales
atípicas. También se ha estudiado el impacto que tiene el oxígeno en la
CÁPITULO 3
146
fotoluminiscencia de varias muestras mediante distintos tratamientos
térmicos en aire y vacío.
Se ha observado una disminución paulatina de la intensidad de la
fotoluminiscencia con el paso del tiempo (hasta un factor 20 en 60 días) y un
desplazamiento hacia menores energías (de 11 meV) (Figura 3.46). Estos
cambios podrían deberse a: i) una modificación de la interacción entre el MoS2
y el MoO2 y, por tanto, de la transferencia de carga entre ambos, ii) a la
desorción de oxígeno inicialmente presente o iii) a una posible transformación
de las NPs de MoO2 dada la relativa baja estabilidad de este compuesto.
Figura 3.46. a) Espectros de PL para distintas fechas de zB. Las intensidades de los
días 30 y 60 han sido aumentadas un factor 5. b) Posición de PL en función del
tiempo.
Para estudiar el efecto de la adsorción y absorción de oxígeno en MoS2, se ha
reportado la influencia de tratamientos térmicos y de irradiación con plasma
de oxígeno en un copo de MoS2 monocapa exfoliado mecánicamente.27 Al
calentar la muestra en una atmósfera con oxígeno residual (10-2 mbar)
obtienen un aumento de la intensidad de la fotoluminiscencia de hasta un
factor 80, así como un desplazamiento a mayor energía de 20 meV, mientras
que por irradiación con plasma la intensidad aumenta en un factor 100 y se
desplaza 25 meV.27 Después exponen ambas muestras a vacío y observan que
MoS2 bidimensional
147
en la muestra calentada disminuye su intensidad casi hasta recuperar los
valores iniciales, mientras que en la expuesta al plasma sólo se reduce en un
10-20 %, lo que indica que en el primer caso el oxígeno está solo adsorbido,
mientras que en el segundo el oxígeno se enlaza químicamente.
Figura 3.47. Espectros de PL de a) una muestra que no presentaba señales Raman y
PL amplificadas, b) zona brillante y c) zona lisa de muestra con impurezas de MoO2
antes (línea negra) y después de ser calentadas a 300 ºC durante 15 min al aire (línea
roja), y tras ser sometidas a vacío durante 1h (línea azul). d) Posición de la PL en cada
uno de los pasos para la zona brillante (zB), zona lisa (zL) y la muestra sin NPs (No
NPs).
Para estudiar el impacto del oxígeno en la fotoluminiscencia se han realizado
varios tratamientos térmicos en aire y en vacío sobre distintas muestras. Una
muestra con zonas brillantes y zonas lisas (muestra con NPs), y una muestra
sin NPs de MoO2, se calentaron a 300 ºC al aire durante 15 min. Nótese que la
CÁPITULO 3
148
energía de la fotoluminiscencia de esta última muestra antes de ser expuesta
al calentamiento (1.86 eV) es menor que la que presentan las zonas lisas y
brillantes de la muestra con impurezas (1.88 eV). Para la muestra sin NPs de
MoO2 se llevaron a cabo tres oxidaciones consecutivas (líneas roja, verde y
azul oscuro en Figura 3.47a) con la intención de saturar la adsorción de
oxígeno en la muestra. La relación I(PL)/I(A1g) aumenta ligeramente (un factor
~2) con la primera y segunda oxidación, además de aumentar su energía en
13 meV. Sin embargo, a partir de la tercera oxidación el MoS2 empieza a
degradarse, disminuyendo en gran medida tanto las intensidades Raman
como de fotoluminiscencia. En el caso de la muestra con NPs de MoO2, tras el
calentamiento se observa que la relación I(PL)/I(A1g) aumenta hasta un factor
10 tanto en las zonas brillantes (Figura 3.47b) como en las lisas (Figura 3.47c)
y la fotoluminiscencia aumenta su energía en 15 meV.
Todas las muestras fueron después calentadas a 300 ºC en vacío (10-5 mbar)
durante 1h para eliminar el posible oxígeno suministrado en los tratamientos
anteriores. Tras el calentamiento en vacío, se observa una disminución de la
intensidad de la fotoluminiscencia en un 70% en la muestra con NPs de MoO2,
además de un desplazamiento a menores energías, lo que podría asociarse
con una desorción de una parte del oxígeno, mientras que otra parte podría
haber reaccionado haciendo el proceso irreversible, de ahí que no se alcance
el valor inicial. Por otro lado, la muestra que no presenta NPs parece haber
sufrido daños irreparables, ya que su intensidad después del tratamiento a
vacío es menor que la inicial, al igual que su intensidad Raman. Haciendo
referencia únicamente a la primera oxidación parece que, de algún modo,
aunque los desplazamientos en energía de la fotoluminiscencia son similares
en las dos muestras, la fotoluminiscencia de la muestra con NPs de MoO2
muestra una mayor sensibilidad a la oxidación.
MoS2 bidimensional
149
En resumen, una suma de las contribuciones del efecto SERS originado por las
NPs de MoO2, de la transferencia de carga proporcionada por dichas NPs,
además de una posible adsorción de oxígeno en zonas con defectos podrían
justificar las diferentes intensidades Raman y de fotoluminiscencia
observadas, así como la activación de la fotoluminiscencia en zonas donde el
MoS2 es de pocas capas.
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CÁPITULO 3
154
155
4 SERS EN PLATAFORMAS DE GRAFENO Y
NANOPARTÍCULAS DE AG
Es sabido que la amplificación de la radiación electromagnética debida a las
resonancias plasmónicas superficiales localizadas (LSPR) de nanopartículas
metálicas (NPs) es muy eficiente, por lo que se utiliza comúnmente para
detectar señales Raman débiles de analitos diluidos. Es lo que se denomina
técnica SERS (del inglés surface enhancement Raman scattering).1–4 Por otro
lado, la distribución del aumento del campo eléctrico en la superficie de un
sustrato plasmónico es muy poco homogénea, localizándose principalmente
en puntos calientes o " hot spots". El Capítulo 1 recoge una explicación más
amplia y detallada de los conceptos aquí nombrados. Las plataformas SERS
más comunes pueden clasificarse en tres clases: i) nanopartículas metálicas en
suspensión, normalmente fabricadas por el método Creighton,5 que se basa
en la reducción de AgNO3 y cuyas NPs de Ag resultantes tienen un tamaño
medio de ~10 nm, o sintetizadas mediante la técnica de ablación láser en
medio líquido;6–9 ii) nanopartículas metálicas inmovilizadas en sustratos
sólidos,10 como cuarzo,11 papel;10,12 o filtros de alúmina;8 y iii) nanoestructuras
fabricadas directamente sobre sustratos sólidos, por ejemplo mediante
distintas técnicas de litografía,13–15 que puede utilizarse para producir
conjuntos periódicos 2D bien ordenados de nanopartículas.
Las plataformas desarrolladas en este trabajo pertenecen a la tercera
categoría, ya que las nanopartículas se depositan directamente sobre
sustratos sólidos (sílice vítrea o grafeno/cuarzo) mediante la técnica de
agregación en fase gas.16 Se trata de un método físico para generar un flujo
continuo de partículas ultrafinas de tamaño controlado (de 1 a ~10 nm de
radio, es decir, desde 103 hasta 106 átomos por partícula) con distribuciones
CÁPITULO 4
156
de tamaño de partícula estrechas, en un entorno limpio y controlado, en alto
vacío, lo que evita la presencia de cualquier subproducto durante el proceso
de fabricación, como tensioactivos utilizados en métodos de preparación de
NPs por disolución.
El objetivo de este trabajo es evaluar la capacidad de NPs esféricas de Ag
monodispersas ultra pequeñas (R = 1.8 nm) para amplificar las señales Raman
y compararla con otras NPs, de mayor tamaño y forma aplanada (similar a
semiesferoides cuya altura es menor que el radio), así como la relevancia de
la distancia inter-NP en la eficiencia de la amplificación SERS. Para ello se
emplean las señales del grafeno y de una molécula de referencia como la
Rodamina 6G (R6G). Para el análisis de los resultados se realizan y discuten las
simulaciones de campo cercano de los plasmones de NPs individuales y de
redes de NPs, que incluyen la dependencia del tamaño y la distancia media
entre las NPs. Las simulaciones han sido llevadas a cabo por el Dr. Rafael
Ramírez Jiménez (Universidad Carlos III de Madrid). Se comparan los
plasmones y amplificaciones originados por las NPs ultrapequeñas con las
debidas a películas de plata nanoestructuradas con granos de mayor tamaño
(7-15 nm), y se estudia el efecto que tiene la combinación de ambas
estructuras en una misma plataforma.17
4.1 TAMAÑO Y MORFOLOGÍA DE LAS NANOPARTÍCULAS DE AG
ULTRAPEQUEÑAS
Los parámetros descritos en el Capítulo 2 dan lugar a nanopartículas esféricas
monocristalinas, como se observa en las imágenes HRTEM (Figura 4.1a y b).
En la Figura 4.1c se ha representado la distribución de tamaños obtenida del
análisis de aproximadamente 100 NPs. De las medidas se obtiene un radio
medio de ~1.8 nm con una distribución muy estrecha (FWHM = 0.8 nm).
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
157
Figura 4.1. a) y b) Imágenes HRTEM de NPs de Ag con tiempo de depósito de 30 s (la línea de puntos roja define el perfil de la NP). c) Distribución de tamaños extraídos
del análisis de 94 NPs.
4.2 ANÁLISIS DE LOS PLASMONES DE LAS NANOPARTÍCULAS
ULTRAPEQUEÑAS: EXPERIMENTOS Y SIMULACIONES
Las nanopartículas de plata (AgNPs) se depositaron simultáneamente sobre
sílice vítrea (AgNPs-FS) y sobre monocapas de grafeno, previamente
transferidas a sustratos de cuarzo (AgNPs-Gr/Q). Se depositaron durante
diferentes tiempos que oscilan entre 300 s y 1200 s. En la Figura 4.2a y b se
han representado los espectros de extinción obtenidos de las medidas de
transmisión óptica de las muestras AgNPs-FS y AgNPs-Gr/Q respectivamente.
Se observa cómo la intensidad, posición y anchura del plasmón de las AgNPs
varía en función del tiempo de depósito y el sustrato.
0 1 2 30
5
10
15
N
Radio (nm)
R= 1.8 nm FWHM=0.8
5 nm20 nm
a) b)
c)
CÁPITULO 4
158
Figura 4.2. Espectros de extinción (-log(T)) de las AgNPs depositadas (a) sobre sílice
vítrea y (b) sobre Gr/Q para diferentes tiempos de depósito. (c) Comparación de las
medidas obtenidas para las NPs depositadas sobre sílice vítrea (línea) y sobre
grafeno (puntos) para depósitos de 900 s y 1200 s. (d) Posición de la longitud de
onda del máximo de extinción en función del tiempo de depósito, (e) anchura
(FWHM) de la banda asociada al plasmón de las NPs depositadas, (f) intensidad del
máximo y (g) área integrada de la banda (NPs depositadas sobre grafeno (triángulos
rojos) y sobre sílice vítrea (cuadrados negros).
El análisis de estas curvas se presenta en la Figura 4.2d-g. En las NPs
depositadas tanto sobre FS como sobre Gr/Q se observa que, a medida que
aumenta el tiempo de depósito, la longitud de onda de resonancia del
plasmón se desplazada fuertemente hacia el rojo (Figura 4.2d), desde 420 nm
hasta más de 450 nm sobre FS y hasta 490 sobre Gr/Q, y además el plasmón
420440460480500
100
150
200
250
0.05
0.10
0.15
300 600 900 12000
10203040
AgNPs-FS AgNPs-GQ
(n
m)
FWH
M (n
m)
DO
Área
Tiempo (s)
0.00
0.05
0.10
0.15
0.00
0.05
0.10
0.15
c)
a)AgNPs/Gr/Q
Extin
ción
(DO
) 300 s 900 s 1200 s
AgNPs/FS
b)
300 s 600 s 900 s 1200 s
200 400 600 8000.00
0.05
0.10
0.15 1200 s Gr 1200 s 900 s Gr 900 s
(nm)
d)
e)
f)
g)
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
159
se ensancha significativamente (Figura 4.2e). Esto ocurre a pesar de que el
radio de las NPs (R = 1.8 nm) es constante en todas las series. Los valores
máximos de la extinción (Figura 4.2f) y de la intensidad integrada del plasmón
(Figura 4.2g) son proporcionales al tiempo de depósito.
En un primer paso, se ha utilizado la teoría de Mie para calcular la extinción
de esferas de Ag independientes (suficientemente alejadas para que su
interacción sea despreciable) teniendo en cuenta el cambio en la constante
dieléctrica debido a la amortiguación adicional en la superficie de las NPs que
tiene un peso importante en el límite de tamaño pequeño.18,19 En la Figura 3
se muestra la dependencia del espectro de extinción del plasmón en función
del radio de la NP, normalizado a la masa de la NP. La resonancia del plasmón
presenta un pequeño desplazamiento hacia el rojo, de 8 nm a medida que
aumenta el radio de 2 a 20 nm (recuadro en Figura 4.3). Al aumentar el radio
a valores mayores que 20 nm, se produce un importante desplazamiento hacia
el rojo y un ensanchamiento, así como una drástica disminución de la
intensidad del plasmón. El plasmón más eficiente para las partículas de Ag sin
interacción está alrededor de R = 20 nm, sin embargo, se encuentra en el UV
(365 nm) lo cual no es conveniente para las aplicaciones, siendo preferibles
plasmones en el rango del visible en el que los láseres y los equipos Raman
son más comunes.
CÁPITULO 4
160
Figura 4.3. Cálculos Mie normalizados a la masa y con la constante dieléctrica
corregida de las intensidades de extinción de AgNPs de distintos tamaños. Recuadro:
posición de la resonancia del plasmón en función del radio de la NP.
Las longitudes de onda de resonancia (420-500 nm) y las anchuras (FWHM
100-200 nm) de los plasmones observados (Figura 4.2) no se ajustan bien por
el método Mie para NPs de plata de 2 nm no interactivas (356 nm y 50 nm de
posición y anchura del plasmón, respectivamente). La anchura de los
plasmones medidos no puede deberse a una distribución de los tamaños de
las NPs, ya que, en el caso de estas NPs, la distribución de los radios es
extremadamente estrecha (1.8 ± 0.8 nm, figura 4.1c). La posición y anchura de
los plasmones observados deben estar relacionadas con el aumento de la
densidad de NPs (o lo que es lo mismo, una reducción de la distancia entre
NPs), que da lugar a interacciones entre ellas.
300 400 500 600 700 8000
2
4
6
8
10r=2 nm
r=20 nm
Extin
ción
Nor
m. M
asa
(nm)
r=50 nm
r=100 nm
300 350 400 450
0 5 10 15 20355
360
365
m
ax (n
m)
R(NP) (nm)
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
161
Figura 4.4. a) Plasmón para una matriz periódica de NPs de 2 nm de radio usando
simulaciones FDTD para distintas distancias inter-partícula, d, normalizada al radio
de la NP R, desde valores d/R = 0.1 (azul) hasta d/R = 5 (amarillo). b) Posición y
anchura (FWHM) del plasmón en función de la relación d/R.
Para determinar la dependencia del plasmón en función de la distancia entre
partículas se realizaron simulaciones tridimensionales de dominio temporal de
diferencia finita (finite-difference time-domain, FDTD). Se realizaron
simulaciones tanto para pares de NPs como para matrices 2D de NPs con
diferentes tamaños. Un punto clave es evaluar la importancia de una
distribución aleatoria de las NPs, es decir, diferentes distancias inter-particula
alrededor de un valor medio d, por lo que se compararon los resultados de las
simulaciones de 2-NPs, de matrices periódicas de NPs y de NPs dispersas
(número pequeño, 15 NPs). La conclusión es que los resultados de una
distribución periódica de NPs con una distancia inter-partícula, d, reproducen
bien los resultados obtenidos para NPs dispersas al azar y tiene la enorme
ventaja de que la simetría de la distribución periódica permite tiempos de
simulación más cortos.
En la Figura 4.4a se muestran los espectros de extinción simulados de una red
periódica de NPs de R = 2nm con una distancia entre partículas variable, d. Se
400 600 800
Extin
ción
(nm)
R = 2nm
d
d400
450
500
0.1 1 100
50
100
Posi
ción
(nm
)
FWH
M (n
m)
d/R (nm)
a) b)
CÁPITULO 4
162
observa cómo, a medida que se reduce d, la longitud de onda de resonancia
se desplaza hacia el rojo y el plasmón se ensancha. Para una mejor
visualización, se han representado la posición y la anchura de las bandas frente
a la distancia entre NPs normalizada al radio, d/R (Figura 4.4b). Al reducirse la
distancia para valores de d ≤ R se observa un importante desplazamiento al
rojo de la longitud de onda de resonancia del plasmón (desde 350 nm hasta
más de 500 nm, lo que concuerda con los espectros experimentales), así como
un aumento de la anchura del plasmón. Este resultado concuerda con la
observación experimental de un desplazamiento al rojo en el caso de pares de
nanodiscos de Au fabricados litográficamente y los cálculos realizados
mediante la aproximación discreta de dipolos (DDA).20 A medida que se reduce
la distancia los espectros se vuelven complejos presentando más de un pico.
Figura 4.5. Datos experimentales (puntos) de la figura 2 de las muestras AgNPs-FS
con tiempo de depósito de 300 (rojo) y 1200 s (negro) y ajustes (línea) utilizando las
distribuciones de distancias inter-partícula representadas en el recuadro.
Sin embargo, la forma de los espectros medidos (Figuras 4.2 y 4.5) no se ajusta
bien a un plasmón calculado para una distancia inter-partícula dada, siendo
necesario convolucionar los espectros calculados con las distribuciones de
300 400 500 600 700 800
1200s fit 300s fit
Extin
ción
(OD
)
(nm)
0.1 1 10
Peso
d (nm)
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
163
distancia entre partículas. En el recuadro de la Figura 4.5 se han representado
las distribuciones inter-partícula necesarias para el ajuste de las muestras
AgNPs-FS con tiempos de depósito de 300 y 1200 s. La distribución
correspondiente a la muestra más densa (1200 s), se desplaza a distancias
inter-partícula más cortas en comparación con la muestra de 300 s, como es
de esperar, con un peso significativo de las distancias muy pequeñas. Por lo
tanto, la reducción de las distancias entre las partículas a medida que aumenta
la densidad es el origen del desplazamiento del plasmón a longitudes de onda
más largas y de su ensanchamiento.
Figura 4.6. Posición y anchura de los plasmones para AgNPs obtenidos por
simulación con una capa superficial dieléctrica para diferentes distancias inter-
partícula.
También se ha evaluado el impacto que tendría una capa superficial dieléctrica
en la posición y forma del plasmón de las NPs, como consecuencia de la
posible oxidación de las NPs o de la adsorción de moléculas orgánicas
presentes en el ambiente. Contrariamente al importante desplazamiento del
plasmón que se ha reportado para NPs de mayor tamaño recubiertas por una
350
400
450
500
550
Posi
ción
(nm
)
0.0 0.4 0.8 1.2
50
100
150
FWH
M (n
m)
d/R
C C C % (4)
2 nm Ag1.8 nm Ag + 0.2 nm n=1.41.8 nm Ag +0.2 nm n= 2.1
CÁPITULO 4
164
capa superficial de SiOx,21 en este caso de Nps muy pequeñas, el impacto sólo
es notable para valores muy altos del índice de refracción de la capa
dieléctrica. Por ejemplo, para una NP con una capa dieléctrica exterior cuyo
grosor es del orden del 10 % del radio de la NP, y un índice de refracción de
2.1, la banda del plasmón se desplaza al rojo en un 5 % y se produce un cierto
ensanchamiento cuando la distancia entre las partículas es corta (<1 nm)
(Figura 4.6). Con todo esto se puede concluir que este factor no juega ningún
papel relevante en la dependencia observada del plasmón con el tiempo de
depósito.
El papel del grafeno se revela cuando se comparan los espectros de extinción
de las AgNPs depositadas sobre FS y sobre Gr/Q. Se aprecian algunas
modificaciones, especialmente en las regiones espectrales del rojo y el IR
(Figura 4.2b y c)). Los aspectos más evidentes son: i) un aumento de los valores
de extinción y de la extinción integrada (Figuras 4.2f y g), ii) un
ensanchamiento (mayor peso del rojo y del IR) y iii) un desplazamiento de la
resonancia hacia el rojo (Figuras 4.2e y 4.d). El aumento de los valores de
extinción probablemente está relacionado con la mayor adherencia de las NPs
durante el depósito al grafeno que a la sílice vítrea. El mayor peso espectral
del IR se debe a la intervención del grafeno en la interacción entre las NPs,
proporcionando un canal para la conexión eléctrica sin producir una
deslocalización total de los electrones oscilantes. Se realizaron simulaciones
para las NPs sobre grafeno, pero no se consiguió reproducir la cola del IR
debido a que la superficie de contacto entre las NPs y el grafeno es muy
pequeña. Además, el efecto del grafeno no se corresponde con el debido a
una variación de la constante dieléctrica del medio en el que las NPs
estuvieran incrustadas. Se ha reportado que en simulaciones DDA de
partículas de plata parcialmente incrustadas en esferas de mica se produce un
desplazamiento al rojo,20 pero no se ha informado de un aumento de la cola
IR como el que se observa para las NPs sobre grafeno.
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
165
4.3 AMPLIFICACIÓN RAMAN ORIGINADA POR LAS AGNPS DE 1.8
NM
Para evaluar el comportamiento de la amplificación Raman de las NPs
ultrapequeñas, se ha calculado el cuadrado del campo eléctrico, E2, para un
conjunto periódico de NPs con diferentes tamaños, 1.2 < R < 10 nm, en función
de la distancia inter-partícula. El comportamiento en este rango de radios es
similar, por lo que de nuevo se normalizan los resultados por R (z/R, siendo z
la posición del plano horizontal en el que se calcula E). En la Figura 4.7 se
muestra E2 en el plano ecuatorial (z=0) de las NPs para dos distancias, d = 1.6R
y d = 0.3R. La onda incidente es perpendicular al sustrato y la polarización se
indica en la Figura 4.7a mediante una flecha blanca. Se observa la formación
de puntos calientes (hot spots) en la superficie de las NPs en la dirección de la
polarización incidente y un aumento de su intensidad a medida que las NPs se
acercan. En la Figura 4.7d se muestran los perfiles de intensidad de E2 de las
NPs a lo largo de la línea tangente a la NP (línea negra vertical en la Figura 4.7c)
así como del 10% hacia dentro (línea azul) y hacia fuera (línea roja). Se observa
cómo a una distancia del 10% del radio el campo eléctrico aumenta
significativamente. Los puntos calientes están muy localizados en ciertas
zonas de la superficie de las NPs, pero su extensión aumenta
significativamente a medida que se reduce la distancia inter-partícula. Estos
cálculos muestran que la amplificación Raman a lo largo de la superficie de las
NPs es muy poco homogénea.
CÁPITULO 4
166
Figura 4.7. Mapa de E2 en plano z = 0 para un conjunto periódico de NPs de Ag (a)
para d = 1.6R y (b) para d = 0.3R. c) esquema de dos NPs que indica mediante la
línea continua el plano ecuatorial (z = 0). (d) Perfiles de intensidad de E2 a lo largo de
las líneas verticales indicadas en c): la línea negra corresponde a la superficie de la
NP y las líneas azul y roja a las posiciones desplazadas R/10 hacia adentro y hacia
afuera, respectivamente. El sustrato está en z/R= -1. Las líneas continuas y
discontinuas corresponden a d= 0.3R y d=1.6R, respectivamente.
En la Figura 4.8a se muestran las señales Raman de moléculas de R6G
depositadas por “spin-coating” a partir de soluciones de R6G 10-3 M en
metanol sobre las muestras AgNPs-Gr/Q con diferentes tiempos de depósito
de NPs (300 – 900 s). Como es de esperar, la intensidad Raman aumenta con
el tiempo de depósito de forma no lineal debido a una mayor cantidad de
puntos calientes. También se han hecho diferentes pruebas disminuyendo la
concentración de R6G (Figura 4.8b) que muestran que la amplificación Raman
debida a las AgNPs, en este caso de la muestra con un tiempo de depósito de
1200 s, es significativa incluso para concentraciones inferiores a 10-6 M. En
Escala intensidad: 0 - 5
Escala intensidad: 0 - 40
a)
b)
d)
c)
z=0
-1 0 10
10
20
30
40
50
E2
z/R
surface R/10 out R/10 in
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
167
todas las gráficas, la intensidad Raman se ha normalizado a la absorbancia de
la R6G de cada muestra.
Figura 4.8. a) Espectros Raman obtenidos de muestras con una capa de R6G sobre
las muestras AgNPs-Gr/Q para diferentes tiempos de depósito de NPs. b) Espectros
obtenido con diferentes concentraciones de R6G sobre la muestra AgNPs-Gr/Q con
un tiempo de depósito de 1200 s. c) Señal Raman de grafeno para diferentes
muestras de AgNPs-Gr/Q. d) Intensidad Raman del grafeno (normalizada a su valor
sin NPs) y de R6G en función de la densidad de NPs.
800 1200 1600
0
2k
4k
6k
8k
In
t. No
rm. (
u.a)
Desplazamiento Raman(cm-1)
300s 600s 900s
0.00 0.05 0.10 0.15100
101
103
104
105
R6G Gr
In. N
orm
. (u.
a.)
DO Ag 488 nm
800 1200 16000
6k
12k
18k
24k
30k
36k
42k 10-5M 10-6M
Int.
Norm
. (u.
a.)
Desplazamiento Raman (cm-1)
10001500200025003000
600 1200 1800 2400 3000
0
10
20
30
40 1200s 900s 600s 300s 0s
Int.
Nor
m. (
u.a.
)
Desplazamiento Raman (cm-1)
a) b)
c) d)
CÁPITULO 4
168
La Figura 4.8c muestra la señal Raman del grafeno de las muestras AgNPs-Gr/Q
con diferentes tiempos de depósito de NPs (0 - 1200 s). En la Figura 4.8d se ha
representado la dependencia de la amplificación de la señal Raman del
grafeno (calculada después de normalizar a su intensidad sin NPs) y de la señal
Raman las moléculas de R6G en función de la extinción del plasmón de las
AgNPs (relacionada con el tiempo de depósito de las NPs como se muestra en
la Figura 4.2) a la longitud de onda del láser de excitación (488 nm). No es
posible normalizar la intensidad Raman de la R6G a la señal sin NPs ya que su
intensidad está por debajo del límite de detección. Hay dos observaciones
importantes que discutir: i) la amplificación medida para los fonones de
grafeno es mucho más baja que para las moléculas de R6G; ii) la amplificación
para las vibraciones de R6G no es lineal con la intensidad del plasmón
(estrechamente relacionada con la masa total) mientras que para el grafeno
es casi lineal.
La diferencia entre la amplificación Raman para el grafeno y para las moléculas
de R6G se origina principalmente por sus diferencias en las configuraciones
geométricas: el grafeno es una capa plana que contacta con cada NP sólo en
un punto tangencial, mientras que las moléculas R6G envuelven a las NPs
(Figura 4.9).
Figura 4.9. Esquema de la configuración geométrica del grafeno y de la R6G con
respecto a las NPs.
Para estudiar estas diferencias geométricas se han realizados simulaciones de
la distribución de E2 en el plano ecuatorial (z=0), en la posición del sustrato
(z=-R), que se corresponde con la ubicación del grafeno, y en un plano
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
169
intermedio (z = -R/2) para un conjunto periódico de NPs con una distancia
inter-partícula de 1.6R. Los resultados se muestran en la Figura 4.10a. Se
observa que el plano en el que se encuentra el grafeno (z=-R) es el que
presenta los valores más bajos de E2, lo que explica la amplificación mucho
más baja observada en los fonones Raman del grafeno frente a la
amplificación de los modos de la R6G.
Figura 4.10. Mapas de intensidad de E2 (a) para un conjunto periódico de NPs con d=
1.6 R en diferentes planos (z= 0, -R/2 y -R= sustrato, el origen de z está en el plano
ecuatorial de las NPs) y (b) en el plano del sustrato (z= -R) para d= 1.6R y 0.3R. Los
círculos indican la posición de las partículas
Además, para evaluar el efecto de la densidad de NPs en este plano, se ha
representado la distribución de E2 en z=-R para dos distancias inter-partícula,
1.6R y 0.3R (Figura 4.10b). Se observa que la reducción de la distancia entre
las partículas tiene un enorme efecto en la amplificación del campo eléctrico
en las regiones donde las superficies de las NPs están más cerca (z=0, Figura
7a y b); mientras que en z= -R tiene un efecto muy débil. En el plano del
CÁPITULO 4
170
grafeno no se generan puntos calientes, por lo que se espera que la
amplificación en este caso sea proporcional a la densidad de NPs, como se
observa en la Figura 4.8d.
Figura 4.11. (a) Amplificación Raman calculada para NPs de R= 2 nm en función de d;
(b) en función de la posición del plasmón para excitaciones de 488 (rojo) y 600 nm
(negro). (c) Intensidad Raman experimental de la R6G y calculada en función de la
posición del plasmón.
La amplificación Raman calculada e integrada sobre toda la superficie de las
esferas donde se encuentran las moléculas R6G se ha representado en las
Figuras 4.11a y b en función de la distancia inter-partícula, d, y de la longitud
de onda de resonancia, respectivamente, para AgNPs de R = 2 nm. Se ha
calculado para dos longitudes de onda de excitación en el rango habitual de la
espectroscopia Raman (488 nm y 600 nm). Esta amplificación depende en gran
medida de d y, por lo tanto, de la posición del plasmón (Figura 4.4). Por último,
en la Figura 4.11c se observa que la tendencia y los valores calculados se
ajustan muy bien a las intensidades Raman experimentales (una vez
multiplicadas por una constante de normalización).
Por otra parte, la interacción entre las moléculas de R6G y las AgNPs
probablemente involucre transferencia de carga y modificaciones en la
configuración de las moléculas. Se sabe que el espectro de absorción de las
a) b) c)
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
171
moléculas puede variar no sólo en función del disolvente sino también de su
concentración, ya que las interacciones entre las moléculas y la formación de
dímeros modifican su configuración geométrica y sus estados electrónicos.
Figura 4.12. a) Espectros de absorción medidos en películas de R6G sobre vidrio en
soluciones de concentración 10-3 a 10-5 M (DO en escala logarítmica). b) Espectros de
extinción para las muestras NPs-Gr/Q con R6G 10-3 M (círculos negros) y sin R6G
(triángulos azules) y su diferencia (línea roja). La línea verde es la extinción de R6G
10-2 M sobre vidrio. Las regiones rojas indican la transferencia de peso espectral
relacionada con el depósito de R6G sobre las AgNPs.
Para estudiar las modificaciones de la estructura electrónica de las
transiciones HOMO-LUMO observadas por transmisión óptica se han
depositado películas de R6G de soluciones con concentraciones 10-2 − 10-5 M
sobre vidrio (Figura 4.12a). Se observa que para películas con valores de
densidad óptica (DO) tan bajos como 6x10-3 (10-4 M) el espectro comienza a
modificarse en comparación con el de 10-5 M, donde con una DO = 0.03, la
banda a 524 nm se divide claramente en dos bandas a 516 y 552 nm (para
películas más gruesas la forma del espectro permanece casi inalterada). Estos
cambios se deben a las interacciones entre moléculas y a la formación de
dímeros o trímeros.22,23 Sin embargo, las modificaciones que se producen son
diferentes cuando las moléculas de R6G se depositan sobre las AgNPs.
300 400 500 600 700 800
0.0
0.1
0.2
0.3 AgNPs/Gr/Q R6G on AgNPs/Gr/Q difference R6G on Glass
Ext
intio
n (O
.D.)
wavelenght (nm)
QGAg900 QGAg900R6G resta2 vidrioR6G % (5)
vidrio con pelicula de 10-2MQ/G/Ag900 sec con y sin R6G (10-3)resta: Q/G/Ag+ R&G - vidrio con R6G
En la Figura 4.12b se muestra el espectro de las moléculas de R6G depositadas
sobre la muestra de AgNPs-Gr/Q con un tiempo de depósito de 900 s (círculos
negros) y el de la misma muestra antes de depositar las moléculas (triángulos
azules), que muestra el típico plasmón de Ag. La línea verde traza el espectro
para una película de R6G sobre vidrio con DO similar y la línea roja es la
diferencia entre los espectros de la muestra de AgNPs-Gr/Q con y sin R6G. Este
espectro de diferencia difiere significativamente del de R6G sobre vidrio (línea
verde), lo que evidencia la interacción entre la R6G y las AgNPs. También se
produce un importante desplazamiento del peso espectral del UV (<400 nm)
al rojo (>600 nm) (zonas sombreadas en rojo). En el grupo de J. Zhao se reportó
un desplazamiento del plasmón de Ag a causa de las moléculas de R6G para
determinadas longitudes de onda de plasmón,22 sin embargo, para las
longitudes de onda de estos plasmones no se espera ningún desplazamiento.
Además, las simulaciones del espectro de extinción de AgNPs de recubiertas
con R6G, como una capa con índice de refracción distinto al del aire, no
explican el efecto observado experimentalmente, lo que confirma el efecto
por transferencia de carga.
4.4 COMPARACIÓN DE PELÍCULAS DE AG NANOESTRUCTURADAS
Y NANOPARTÍCULAS DE AG ULTRAPEQUEÑAS.
Se depositaron mediante sputtering una serie de películas delgadas de Ag
sobre sílice vítrea con un grosor nominal de 1, 2 y 4 nm (TF1, TF2 y TF4). En la
Figura 4.13a se muestran las imágenes topográficas de AFM y los
correspondientes perfiles característicos de cada muestra. Las películas
presentan un aspecto granular y una relación de aspecto que disminuye,
pasando de 10 (para TF1) a 3 (TF4) a medida que aumenta el grosor nominal.
El promedio de los radios en el plano aumenta de 7 (TF1) a 15 nm (TF4)
(valores después de la deconvolución del tamaño de la punta del AFM) así
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
173
como la altura media, de 0.7 a 8 nm, cuando el grosor nominal de la película
varía de 1 a 4 nm (Figura 4.13b).
Figura 4.13. a) Imágenes de topografía obtenidas por AFM de las muestras TF1, TF2 y
TF4 (izquierda) y sus correspondientes perfiles (derecha). b) Distribución de alturas
cada muestra.
Se depositó R6G sobre cada una de estas muestras para estudiar la
amplificación Raman. En la Figura 4.14a se han representado las curvas de
extinción óptica de las películas nanoestrucuradas de Ag. También se ha
CÁPITULO 4
174
representado la extinción máxima en función del grosor nominal, así como la
posición de los plasmones (Figura 4.14b y c) y la intensidad Raman de la
vibración a 1653 cm-1 de las moléculas de R6G depositadas sobre las muestras
frente al valor de extinción del plasmón correspondiente a la longitud de onda
del láser utilizado en las medidas Raman (488 nm) (Figura 4.11d). Se observa
que el aumento del grosor de las películas conduce a i) un desplazamiento al
rojo del plasmón (Figura 4.11d); ii) su ensanchamiento; y iii) un aumento de su
intensidad (Figura 4.11c).
Figura 4.14. a) Extinción óptica de las películas TF1, TF2 y TF4. b) Espectro Raman de
R6G depositada sobre las peículas TF1, TF2 y TF3. c) Extinción máxima vs. el grosor
nominal de cada película, d) posición vs. extinción máxima y e) Intensidad Raman del
modo a 1653 cm-1 de la R6G vs. extinción de las películas delgadas a 488 nm
(intensidad normalizada por la absorción de la R6G depositada).
0.0 0.1 0.2 0.30
5k
10k
15kR6G 1653 cm-1
Int.
Ram
an N
orm
. (u.
a.)
D.O. Ag 488 nm
1nm
4nm
2nm
e)
500 1000 1500
0
10k
20k
30k
40k
Int.
Ram
an N
orm
. (u.
a.)
Desplazamiento Raman (cm-1)
R6G/TF1 R6G/TF2 R6G/TF4
b)
200 400 600 8000.0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.1 0.2 0.30
5k
10k
1 2 3 40.0
0.1
0.2
0.3
0.0 0.1 0.2 0.3450
500
550 d)
Extin
ción
(D.O
.)
Thickness (nm)
c)
Posi
ción
(nm
)
Extinción (D.O.)
1nm
4nm
2nm200 400 600 800
0.0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.1 0.2 0.30
5k
10k
1 2 3 40.0
0.1
0.2
0.3
0.0 0.1 0.2 0.3
450
500
550
Wavelength (nm)
Ext
intio
n (O
.D.)
TF! TF2 TF4
a)
R6G 1653 cm-1
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
175
Las posiciones observadas del plasmón (450-550 nm) están extremadamente
desplazadas hacia el rojo en comparación con las predicciones de Mie (Figura
4.3) para los tamaños actuales (360-365 nm). Además, la tendencia observada
con la relación de aspecto no concuerda con en las características del plasmón
ya que, al reducirse la relación de aspecto, el plasmón debe desplazarse al
azul.2 En este caso la distancia entre partículas es también el parámetro más
relevante y explicaría el desplazamiento al rojo del plasmón a medida que
aumenta el grosor nominal. Es importante señalar que, en el caso de estas
nanoestructuras de Ag más grandes, la amplificación de la señal Raman de R6G
es lineal con la extinción, contrariamente al comportamiento exponencial
observado para las AgNPs de R=2 nm (Figura 4.8d).
Figura 4.15. Comparación de la intensidad Raman del modo de vibración a 1653 cm-1
de la R6G obtenida por las nanopartículas ultrapequeñas (NPs) y por las
nanoestructuras alargadas de 7-15 nm (TF) en función de la densidad óptica del
plasmón a 488 nm. Intensidades normalizadas por la absorción de la rodamina.
Una observación importante es que la amplificación Raman, para una
densidad óptica determinada, originada por NPs ultra-pequeñas es mayor que
la debida a estas nanoestructuras granulares de 7-15 nm, cuyo tamaño se
acerca más al óptimo para partículas no interactivas. Con este análisis puede
0.0 0.1 0.2 0.3 0.4
103
104
105
NPs TFIn
t. R
aman
Nor
m. (
u.a.
)
DO Ag 488 nm
CÁPITULO 4
176
concluirse que, en la amplificación Raman, el peso de los puntos calientes es
especialmente importante para las NPs extremadamente pequeñas en los que
la relación superficie/volumen es muy alta.
4.5 PELÍCULAS DE AG NANOESTRUCTURADAS COMBINADAS CON
AGNPS DE R = 1.8 NM
Para evaluar la posibilidad de mejorar aún más la amplificación de la señal, se
fabricaron sistemas más complejos combinando las películas delgadas
nanoestructuradas de granos con R=10 nm con NPs de R= 1.8 nm. De este
modo se pretende aumentar la amplificación Raman relacionada con una
mayor masa de Ag de las películas nanoestructuradas, y promover la
formación de puntos calientes debidos a las NPs ultra-pequeñas.
Figura 4.16. Esquema de las tres zonas de las que consta cada muestra:
nanopartículas ultrapequeñas (NPs, zona A), película delgada nanoestructurada (TF,
zona B), y una combinación de ambas (TF+NPs, zona C).
Cada muestra presenta tres regiones: NPs (zona A), película delgada
nanoestructurada (TF) (zona B) y NPs y TF combinados (zona C) depositados
en sustratos de sílice vítrea (Figura 4.16). De esta manera es posible comparar
de manera fiable las características del plasmón de las diferentes zonas, así
como la amplificación Raman de los modos vibracionales de las moléculas de
R6G depositadas posteriormente por inmersión.
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
177
Figura 4.17. Esquemas de las secciones transversales, imágenes topográficas de AFM
y sus correspondientes perfiles las de las tres regiones: NPs, TF y TF+ NPs, zonas A, B
y C respectivamente.
El grosor nominal de las películas de Ag nanoestructuradas es de 3 nm y sobre
ellas se depositaron diferentes densidades de NPs de Ag. La Figura 4.17
presenta un análisis de AFM de las tres regiones de la muestra para una
densidad alta de NPs (tiempo de depósito 600 s): la zona A con sólo NPs (R=1.8
nm), la zona B corresponde a la película de 3 nm con semiesferas aplanadas y
una relación de aspecto de alrededor de 5 y, finalmente, la zona C, con TF y
NPs, con una altura media similar a la zona B, pero donde los perfiles revelan
la presencia de las NPs.
CÁPITULO 4
178
Figura 4.18. Espectros de extinción de las zonas A (NPs, línea azul), B (TF, línea roja) y
C (TF+NPs, línea negra) para a) una densidad de NPs baja (tiempo de depósito de 75
s), en el recuadro se muestra una zona aumentada del espectro de las NPs y b) una
densidad de NPs alta (tiempo de depósito 600 s).
La Figura 4.18 muestra los espectros de extinción de las muestras con baja
densidad de NPs (Figura 4.18a con un tiempo de depósito de 75 s) y con alta
densidad de NPs (Figura 4.18b con un tiempo de depósito de 600 s). Se han
representado en rojo los espectros correspondientes a las regiones sin NPs
(TF), en negro con NPs (TF+NPs) y en azul sólo las NPs. Las películas delgadas
(TF) muestran plasmones desplazados al rojo, 450-470 nm, con respecto a los
de las NPs que presentan la resonancia en 400-420 nm. En la Figura 4.18a se
observa que los plasmones correspondientes a una baja densidad de NPs son
extremadamente débiles (ver recuadro) y que su combinación con las
películas da lugar a un aumento del peso espectral en el rojo-infrarrojo, así
como a una pequeña reducción de la intensidad en los máximos con respecto
a las películas sin NPs. Esto se debe muy probablemente a un cierto grado de
deslocalización de los portadores causada por las NPs depositadas, pero sin
llegar a la percolación, ya que la muestra es eléctricamente aislante. Para esta
baja densidad de NPs (estimada en unos 9.7 x 1011 cm-2), la DO en la longitud
de onda de excitación láser (488 nm) se reduce en la región TF+NPs con
respecto a la región sin NPs y, sin embargo, la señal Raman R6G aumenta un
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
179
factor 3 con el depósito de las NPs (Figura 4.19). En la Figura 4.18b se observa
que el depósito de una mayor densidad de NPs sobre las películas delgadas da
lugar a un aumento en la intensidad de los máximos. La amplificación en este
caso aumenta sólo linealmente con la DO debido a que la formación de puntos
calientes se ve obstaculizada por una mayor deslocalización de los portadores.
Figura 4.19. Espectros de amplificación Raman de R6G sobre TF (rojo) y sobre
TF+NPs (negro) con baja densidad de NPs. Recuadro: Intensidad Raman del pico a
600 cm-1 frente a la DO del plasmón a la longitud de onda de excitación del láser
(488 nm).
En resumen, se ha evaluado la capacidad de amplificación de NPs ultra-
pequeñas de plata, monocristalinas, libres de reactivos, con un radio R = 1.8
nm y una distribución de tamaño muy estrecha, depositadas sobre sílice vítrea
y sobre grafeno/cuarzo. Independientemente del sustrato utilizado, el
aumento de la densidad de las NPs provoca un desplazamiento de la longitud
de onda del máximo del plasmón medido hacia el rojo (de 400 a 500 nm) así
como su ensanchamiento.
Las simulaciones de conjuntos de NPs de Ag 2D utilizando cálculos
tridimensionales de diferencias finitas de dominio temporal (FDTD)
500 1000 1500
0
20k
40k
60k
80k
0.20 0.25
20k
40k
Int. Ra
man (
u.a.)
(nm)
TF TF + NPs
DO Ag 514 nm
500 1000 1500
0
20k
40k
60k
80k
0.22 0.24 0.260
20k
40k
Int. Ra
man (
u.a.)
(nm)
DO Ag 488 nm
500 1000 1500
80k
60k
40k
20k
0
500 1000 1500
0
20k
40k
60k
80k
0.20 0.25
20k
40k
Int.
Ram
an (u
.a.)
(nm)
TF TF + NPs
DO Ag 514 nm
500 1000 1500
0
20k
40k
60k
80k
0.22 0.24 0.260
20k
40k
Int.
Ram
an (u
.a.)
(nm)
DO Ag 488 nm
Desplazamiento Raman (cm-1)
Int.
Ram
an (
u.a
.)
CÁPITULO 4
180
demostraron que la reducción de la distancia inter-partícula, d, conduce a un
desplazamiento hacia el rojo y a un ensanchamiento del plasmón. Estos
efectos son generales para las NPs con radios, R, hasta 10 nm, en términos de
distancia normalizada d/R, y son importantes cuando d<R.
Se ha calculado la influencia de una posible capa de recubrimiento de las NPs
(debido a la oxidación o a la adsorción de especies derivadas del carbono), el
resultado indica una pequeña variación. Los plasmones medidos se originan
por distribuciones de distancias inter-partícula que se estrechan y se
desplazan a distancias más pequeñas a medida que la densidad de NPs
aumenta.
El papel del grafeno como sustrato para el depósito de NPs es deslocalizar
parcialmente los portadores libres, así como favorecer la adherencia de las
NPs sobre el sustrato.
La amplificación de las señales Raman del grafeno y de una película de R6G
depositada por “spin-coating” varía de manera muy diferente al aumentar la
densidad de las NPs. En el caso del grafeno, la amplificación aumenta
linealmente con la extinción del plasmón, mientras que en el caso de la R6G la
amplificación es casi exponencial. Esta diferencia se debe a la diferente
configuración geométrica de ambos con respecto a las NPs. El campo eléctrico
en la posición del sustrato (la posición del grafeno) presenta una amplificación
débil y no se ve significativamente afectada por la reducción de la distancia
entre las partículas. Por el contrario, las moléculas R6G, que envuelven las
NPs, se ven afectadas por los altos campos creados en los espacios entre las
NPs (hot-spots) a medida que la distancia entre estas disminuye. La variación
observada de la intensidad Raman en función de la intensidad del plasmón se
corresponde muy bien con la amplificación calculada al reducir la distancia
media entre las partículas. El comportamiento exponencial demuestra la alta
eficiencia de los puntos calientes que se forman en los espacios inter-partícula.
SERS en plataformas de grafeno y nanopartículas de Ag
181
También se ha comparado la amplificación de las NPs ultra-pequeñas con la
de granos más grandes (7<R<15 nm) de películas delgadas de plata. El
desplazamiento hacia el rojo y el ensanchamiento del plasmón que se observa
a medida que el grosor de la película aumenta también se deben
principalmente a la reducción de la distancia entre las partículas, sin embargo,
la amplificación de R6G en este caso es sólo proporcional a la extinción del
plasmón. Es importante señalar que, para el mismo valor de extinción, la
amplificación proporcionada por las NPs ultra-pequeñas es mayor que la de
los granos más grandes de las películas, debido principalmente a los puntos
calientes entre las NPs ultra-pequeñas.
Desde el punto de vista de las aplicaciones, resulta relevante la posibilidad de
aumentar eficientemente la amplificación obtenida con películas de plata
depositando sobre ellas bajas densidades de NPs ultra-pequeñas, de manera
que se crean puntos calientes adicionales.
Una vez normalizada la intensidad de los respectivos plasmones debido a la
mayor densidad de puntos calientes que se pueden generar para una misma
masa de plata, el presente trabajo demuestra que las NPs ultra-pequeñas son
más eficientes para el SERS que las NPs más grandes comúnmente utilizadas.
4.6 REFERENCIAS
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CÁPITULO 4
182
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185
5 FUNCIONALIZACIÓN DE GRAFENO CON GRUPOS
CARBOXÍLICOS PARA APLICACIONES EN
BIODETECCIÓN
En los últimos años, los materiales de grafeno propuestos para aplicaciones de
detección de biomoléculas se han basado habitualmente en la adaptación del
óxido de grafeno (GO) mediante procesos químicos de reducción,1–4 lo que
plantea algunos problemas de eliminación de reactivos, de reproducibilidad y
de baja conductividad debido a defectos inherentes a ese material. El GO
presenta distintos grupos funcionales oxigenados como grupos carboxilo (-
COOH), hidroxilo (-OH), epoxi y carbonilo (CO), que permiten una gran
variedad de procesos de funcionalización.5 La funcionalización covalente para
el reconocimiento de antígenos suele basarse en el anclaje de un anticuerpo
a través de los grupos carboxilo, mientras que la presencia del resto de grupos
oxigenados interrumpe la conjugación y aumentan la resistividad del grafeno,
convirtiéndolo en un material aislante y dificultando su aplicabilidad en
dispositivos electrónicos.
En este trabajo se ha diseñado una nueva ruta de síntesis para funcionalizar
in-situ grafeno-CVD con grupos -COOH de una forma controlada. Esta
funcionalización pretende facilitar la posterior unión con otros grupos
específicos, como las aminas primarias (-NH2) vía enlaces carbodiimida,
presentes en diferentes moléculas biológicamente activas y disponer así de
plataformas aptas para sensores ópticos o electrónicos de biomoléculas.6
CÁPITULO 5
186
5.1 OPTIMIZACIÓN DE LA FUNCIONALIZACIÓN IN-SITU DE
GRAFENO CVD CON COOH
En la Figura 5.1 se esquematiza el procedimiento de carboxilación de grafeno
in-situ durante su síntesis por CVD mediante vapor de ácido dicloroacético
(DCA).
Figura 5.1. Secuencia de rampas y condiciones para el crecimiento y la
funcionalización in-situ de grafeno CVD con ácido dicloroacético. Se indican los gases
según el color del sombreado, los tiempos y temperaturas empleados en las distintas
fases.
El proceso completo está compuesto por cinco etapas (ver Capítulo 2), pero
dentro del proceso global de CVD, se pueden destacar tres pasos que
conforman la formación y funcionalización del grafeno (ta, tb y tc). Estas tres
etapas son las siguientes:
ta) Etapa durante la cual tiene lugar la formación de la monocapa de
grafeno. Las condiciones estándar para la síntesis de grafeno
monocapa a partir de CH4:H2 en nuestro sistema CVD son de 30
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
187
minutos a 910 ºC. Para la obtención de muestras funcionalizadas se
escogieron tiempos de 15 y 30 min.
tb) En esta etapa se introduce el vapor de DCA. Dependiendo de la
muestra se mantienen o se eliminan los flujos de H2 y CH4 y se lleva a
cabo a la misma temperatura que la etapa anterior (910 ºC). Esta etapa
tiene duraciones diferentes en función de la muestra (0-30 min).
tc) En algunas muestras se mantiene el flujo de DCA durante los primeros
minutos (tc) de la etapa de enfriamiento.
Se crecieron sucesivas muestras variando los tiempos y flujos de gases de
estos tres pasos de manera sistemática con el fin de optimizar el proceso y
obtener grafeno monocapa con el máximo grado de funcionalización. Se han
resumido en la Tabla 5.1 las muestras representativas obtenidas con
diferentes combinaciones de tiempos en ta, tb y tc etiquetadas como
'FGr_ta.tb.tc'. Por ejemplo, la etiqueta 'FGr_30.15.0' se refiere a una muestra
obtenida con un tiempo de crecimiento de grafeno de 30 min con CH4:H2 (ta =
30 min) a 910 ºC seguido de 15 min a 910 ºC con vapor de DCA (tb = 15 min), y
sin vapor de DCA durante el enfriamiento (tc = 0 min). SLG y MLG hacen
referencia a grafeno monocapa y multicapa respectivamente, y su
terminación -F implica que está funcionalizado. En algunas muestras el tipo de
grafeno no es homogéneo a lo largo de la muestra, por lo que el etiquetado
indica las diferentes características.
CÁPITULO 5
188
Tabla 5.1. Resumen de las muestras representativas de grafeno funcionalizado con
grupos -COOH incluyendo los tiempos y atmósferas gaseosas características utilizados
para la funcionalización.
Muestra ta
(min) Gases en tb DCA:CH4:H2
tb (min)
gases en tc DCA:CH4:H2
tc (min)
Grafeno obtenido
F-Gr_15.15.0 15 1:9:90 15 - 0 SLG-F/SLG-F
F-Gr_30.0.15 30 - 0 100:0:0 15 SLG/MLG-F
F-Gr_30.15.0 30 100:0:0 15 - 0 SLG/MLG-F
F-Gr_30.30.0 30 100:0:0 15 100:0:0 5 SLG-F/MLG-
F
F-Gr_15.30.0 15 100:0:0 30 - 0 SLG-F/SLG-F
F-Gr_15.30.5 15 100:0:0 30 1:9:90 5 SLG-F
5.2 CARACTERIZACIÓN MEDIANTE ESPECTROSCOPÍA RAMAN DEL
GRAFENO OBTENIDO MEDIANTE FUNCIONALIZACIÓN IN-SITU
Las características del espectro Raman de las muestras de grafeno se utilizan
comúnmente para obtener información sobre diferentes parámetros como el
número de capas, la densidad de los defectos puntuales o el tamaño lateral
del cristal presente en la estructura. Como ya se explicó en el Capítulo 1, el
espectro Raman de grafeno de una sola capa (SLG) incluye el pico G, situado a
~1580 cm-1 y el pico 2D, a ~2700 cm-1. La presencia de defectos induce la
aparición del pico D a ~1350 cm-1. La relación de intensidad de este pico D al
modo G es una medida de los defectos de la monocapa de grafeno, por lo que
proporciona una estimación del grado de funcionalización.¡Error! Marcador
no definido. Sin embargo, es importante señalar que la intensidad del pico D
está relacionada con la presencia de cualquiera de los grupos GO y no sólo de
los carboxilos.
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
189
En la Figura 5.2 se han representado espectros de las zonas más
representativas de cada una de las muestras. Inicialmente, la funcionalización
se llevó a cabo introduciendo el vapor de DCA en la segunda mitad de la etapa
de crecimiento estándar, es decir, ta tuvo una duración de 15 min, y durante
los siguientes 15 minutos se introdujo DCA manteniendo también la mezcla
H2:CH4 (FGr_15.15.0, Fig 5.2a). La muestra obtenida fue de grafeno monocapa
con una funcionalización débil en un 30 % de la muestra (con ID/IG en el rango
0.1 - 0.2). Se observó que la presión de trabajo en la etapa tb fue la misma que
en la etapa ta a pesar de introducir el DCA. Esto se debe a que el flujo
conseguido al evaporar el DCA es muy pequeño en comparación al flujo de
H2:CH4 y por ello la funcionalización es débil. En base a este resultado y con la
intención de conseguir un mayor grado de funcionalización, en las siguientes
muestras se introdujo el DCA en ausencia de los gases H2:CH4 después del paso
de crecimiento del grafeno estándar (ta de 30 minutos), y se hizo de tres
maneras diferentes: i) en los primeros 15 minutos de la rampa de enfriamiento
('FGr_30.0.15', Fig 5.2b), ii) durante 15 y iii) 30 minutos a la temperatura de
crecimiento 910 °C ('FGr_30.15.0', Fig 5.2c y 'FGr_30.30.0', Fig 5.2d,
respectivamente). En los dos primeros casos la funcionalización no es
homogénea y, curiosamente, se puede observar que en la región
funcionalizada (con una intensidad D significativa) se forma grafeno multicapa
(MLG-F), mientras que para las regiones no funcionalizadas se registra el
espectro de grafeno monocapa sin defectos (SLG). La confirmación de que el
grafeno es monocapa viene dada por la relación de intensidad I2D/IG > 1,
típicamente en el rango 2-4. Sin embargo, la intensidad 2D máxima puede
reducirse por las distorsiones y defectos de la red, de modo que un SLG con
defectos puede presentar I2D/IG ≤ 1. Por otro lado, un mayor tiempo tb
(‘FGr_30.30.0’), da lugar a grafeno monocapa y multicapa funcionalizados
(SLG-F y MLG-F) de manera homogénea en toda la muestra.
CÁPITULO 5
190
Figura 5.2. Espectros Raman representativos de cada muestra. Los colores hacen
distintos colores hacen referencia al tipo de grafeno obtenido: SLG (azul), SLG-F
(verde), MLG-F (rojo). Se ha representado para cada una de las muestras un espectro
de una muestra de grafeno de referencia (gris).
El número de capas hasta alrededor de 5 puede obtenerse a partir del análisis
de la forma de la banda 2D, siempre que el apilamiento de las capas se
corresponda bien con el apilamiento de grafito ordenado. En estas muestras
de grafeno funcionalizado, y por lo tanto defectuosas, con un tipo de
1000 1500 2500 3000
0
40
80
1000 1500 2500 3000
0
20
40
60
1000 1500 2500 3000
0
20
40
60
1000 1500 2500 3000
0
20
40
60
80
100
1000 1500 2500 3000
0
20
40
60
1000 1500 2500 3000
0
20
40
60
FGr_30.30.0
Inte
nsid
ad (c
nt/s
)In
tens
idad
(cnt
/s)
Inte
nsid
ad (c
nt/s
)
Inte
nsid
ad (c
nt/s
)In
tens
idad
(cnt
/s)
Desplazamiento Raman
Inte
nsid
ad (c
nt/s
)
Desplazamiento Raman
D
FGr_15.15.0
Desplazamiento Raman Desplazamiento Raman
Desplazamiento Raman Desplazamiento Raman
G
2D
D
G
2D
D
G
2DFGr_30.0.15
FGr_30.15.0
2DFGr_15.30.0
DG
2D FGr_15.30.5
DG
D
G
2D
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
191
apilamiento desconocido, se ha utilizado la intensidad del pico G para obtener
una estimación del número de capas.7 Como aproximación razonable, el
número de capas se obtiene de la relación entre la intensidad del pico G de la
muestra y la de un grafeno monocapa sin defectos de referencia. De esta
manera, el número de capas para las muestras con ta=30 min es de entre 2 y
15, dependiendo de la zona de la muestra, y el cociente ID/IG está en el rango
0.25 – 0.35.
Dado que ta= 30 min da como resultado películas de grafeno funcionalizadas
pero multicapa, se probó a utilizar un tiempo ta más corto, 15 min, y tb más
largo, 30 min, con el objetivo de obtener grafeno funcionalizado monocapa.
Como resultado se obtuvieron muestras de grafeno monocapa/bicapa (I2D/IG
≥ 1), funcionalizado de manera heterogénea, con valores de ID/IG en el rango
0-0.3 (‘FGr_15.30.0’, Fig 5.2e). Introduciendo el DCA también durante los
primeros minutos de enfriamiento es posible obtener un grafeno
Para comprobar la uniformidad de las películas de grafeno funcionalizado se
realizaron mapas Raman de 15x15 μm. En la Figura 5.3 se representan las
imágenes ópticas y sus correspondientes mapas que muestran las relaciones
de intensidad ID/IG (azul) y I2D/IG (verde) de los cuatro tipos de muestras
representativos, así como de una muestra de referencia de grafeno CVD
monocapa sin funcionalizar. En las imágenes Raman I2D/IG las zonas oscuras
representan las zonas multicapa, MLG, y las zonas claras las zonas monocapa,
SLG, mientras que en las imágenes ID/IG las regiones oscuras corresponden al
grafeno no funcionalizado (ID débil) y las claras al grafeno funcionalizado (ID
más intenso). Observando estas imágenes Raman se hace evidente que las
regiones de grafeno multicapa están siempre funcionalizadas.
CÁPITULO 5
192
Figura 5.3. (a) Imágenes ópticas de los cuatro tipos de muestras funcionalizadas
principales. Imágenes Raman de las mismas regiones de la relación de intensidades
(b) I2D/IG y (c) ID/IG. La escala es la misma para todas las imágenes. Los puntos
abiertos (grafeno funcionalizado) y los puntos cerrados (grafeno sin funcionalizar) se
corresponden con los espectros representados en la Figura 5.2.
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
193
Como ya se ha mencionado, las muestras crecidas con ta=30 min son
multicapa, lo que indica que el DCA en la etapa tb promueve la formación de
grafeno, ya que para este mismo tiempo de crecimiento, pero sin DCA, se
obtiene una lámina continua de grafeno monocapa sin defectos. Debido a esta
contribución al crecimiento de grafeno por parte del DCA, se probó crecer
grafeno funcionalizado usando DCA como única fuente de carbono (sin CH4)
con la intención de obtener una muestra de grafeno fuertemente
funcionalizado. Sin embargo, se observó que, sin haber crecido previamente
una capa de grafeno con CH4, el DCA corroe totalmente la lámina de Cu hasta
su desaparición. Para confirmarlo, se sumergieron una lámina de Cu con
grafeno (Cu/Gr) y otra sin grafeno en DCA a 150 ºC.
Figura 5.4. Imagen de las láminas de Cu y Cu/Gr sumergidas en DCA a 150ºC a)
durante 10 min.
En la Figura 5.4 se observa cómo la lámina que no tiene grafeno se corroe a
una velocidad mayor. Esto demuestra el efecto protector del grafeno como
barrera contra la corrosión.
CÁPITULO 5
194
Figura 5.5. Esquema con los tipos de muestra obtenidos en función de los tiempos
de cada etapa ta, tb y tc.
En resumen, en función de los tiempos de crecimiento y funcionalización se
obtienen cuatro tipos de muestra (Figura 5.5): i) muestras con regiones de
grafeno monocapa no funcionalizado y regiones de grafeno de varias capas
funcionalizado (SLG/MLG-F), ii) grafeno monocapa y multicapa ambos con
funcionalización homogénea (SLG-F/MLG-F), iii) grafeno monocapa con
funcionalización no homogénea (SLG/SLG-F) y iv) grafeno monocapa con
funcionalización homogénea (SLG-F).
5.3 CARACTERIZACIÓN XPS DE GRAFENO OBTENIDO MEDIANTE
FUNCIONALIZACIÓN IN-SITU
La espectroscopia Raman demuestra la funcionalización del grafeno pero no
proporciona información selectiva de los grupos funcionales presentes. Sin
embargo, mediante el análisis de los espectros de XPS del carbono (C1s) en
muestras de grafeno u óxidos de grafeno es posible obtener información sobre
el contenido de cada grupo funcional. Las medidas XPS así como los ajustes
correspondientes fueron llevados a cabo por el Instituto de Ciencia y
Tecnología del Carbono. En la Figura 5.6 se muestra el espectro XPS del nivel
1s del C de tres muestras con diferente grado de funcionalización. Se observa
un pico principal correspondiente al enlace C-C con hibridación sp2 a 284.4 eV.
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
195
Además, el ajuste proporciona otros cuatro picos a 285.5, 286.6, 287.8 y 288.6
eV (con FWHM de aproximadamente 1.1 eV), característicos del enlace C-C
con hibridación sp3 y de los grupos funcionales hidroxilo (C-OH), carbonilo y
epoxi (C=O), y carboxilo (COOH) respectivamente.8–10
Figura 5.6. Espectro XPS C1s de las muestras ‘FGr_15.15.0’, ‘FGr_15.30.5’ and ‘F-
Gr_30.15.0’. El inset muestra el grado de funcionalización obtenido por la técnica
XPS en función de la relación de intensidades Raman ID/IG.
En primer lugar, se define el grado de funcionalización como la suma de los
porcentajes de todos los grupos funcionales obtenidos por XPS. Este grado de
funcionalización muestra una clara correlación con la relación ID/IG obtenida
en los espectros Raman representada en el recuadro de la Figura 5.6.
282 284 286 288 290
0.0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0
1.2
0.1 0.2 0.3
468
10
F-Gr_15.15.0
F-Gr_15.30.5
In
tens
idad
(u.a
.)
Energía de Enlace (eV)
COOHC=O
C-O
Csp3
Csp2
F-Gr_30.15.0
G. F
uncz
. (%
)Raman ID/IG
CÁPITULO 5
196
Los porcentajes de los diferentes grupos funcionales obtenidos en las
muestras de grafeno CVD funcionalizado in-situ representativas se indican en
la Figura 5.7. El análisis XPS indica que el porcentaje de los grupos carboxilos
(4-5 %) es mayor que el de los demás grupos funcionales (excepto para la
muestra ‘FGr_15.15.0’).
Figura 5.7. Composición de grupos funcionales obtenida de los espectros XPS de las
muestras de grafeno CVD funcionalizadas in-situ.
En la Figura 5.8a se comparan los porcentajes de los grupos funcionales de las
muestras ‘FGr_30.15.0’ y ‘FGr_15.30.5’ con muestras de grafeno
funcionalizado por otras técnicas presentes en la literatura. Algunas de estas
técnicas, como la exfoliación/reducción térmica de óxido de grafito
('TRG127'),11 grafeno crecido por CVD y tratado posteriormente con plasma
de oxígeno ('O2PLASMA'),12¡Error! Marcador no definido. recocido térmico a alta
temperatura (600 ºC) de grafeno exfoliado electroquímicamente13 y óxido de
grafeno reducido por plasma de Ar/H2,14 proporcionan muestras con
concentraciones de C=O y C-OH más altas que la de los grupos COOH. Las
muestras de óxido de grafeno reducido con hidracina ('Hyz-rGO-2')8 y de óxido
FGr_30.0.15
FGr_30.15.0
FGr_30.30.0
FGr_15.15.0
FGr_15.30.0
FGr_15.30.5
0
1
2
3
4
5
6
Com
posi
ción
(%)
OH CO COOH
0
5
10
15
20
TRG127
O2-Plas
ma
AEHOPG600
H2-Plas
ma
Hyz-rG
O-2
ERGO2C
F-Gr_3
0.15.0
F-Gr_1
5.30.5
0.0
0.2
0.4
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
197
de grafeno reducido electroquímicamente ('ERGO2C')15 también presentan
cantidades de C-OH superiores a las de los grupos COOH.
Figura 5.8. Comparación con otras técnicas de funcionalización de (a) los porcentajes
de los distintos grupos funcionales oxigenados y (b) del grado de funcionalización
COOH.
Mediante todas estas técnicas se obtienen porcentajes de COOH similares a
los del grafeno CVD funcionalizado in-situ pero con mayor densidad de
defectos debido a la presencia de los otros grupos funcionales, que
inevitablemente provocan un deterioro de la conductividad. En la Figura 5.8b
se muestra el grado de funcionalización con grupos carboxilo obtenido a partir
del porcentaje de COOH con respecto a la suma de todos los grupos
funcionales. Las muestras ‘F-Gr_30.15.0’ y ‘F-Gr_15.30.5’ presentan
claramente un mayor grado de funcionalización COOH que las muestras
funcionalizadas por otras técnicas.
F-Gr_3
0.0.15
F-Gr_3
0.15.0
F-Gr_1
5.15.0
F-Gr_1
5.30.0
F-Gr_1
5.30.5
0123456
0
5
10
15
20 OH CO COOH
Com
posi
ción
(%)
TRG127
O2-Plas
ma
AEHOPG600
H2-Plas
ma
Hyz-rG
O-2
ERGO2C
F-Gr_3
0.15.0
F-Gr_1
5.30.5
0.0
0.2
0.4
(b)
(a)
G. F
unc
CO
OH
Muestrasde estetrabajo
CÁPITULO 5
198
5.4 CARACTERIZACIÓN ELÉCTRICA DEL GRAFENO OBTENIDO
MEDIANTE FUNCIONALIZACIÓN IN-SITU
Dado que una de las posibilidades de detección de antígenos es medir la
modificación de la conductividad después del anclaje del anticuerpo, las
propiedades de transporte eléctrico de estas plataformas de grafeno
funcionalizado con COOH son extremadamente relevantes. Para este
propósito, tanto el grafeno funcionalizado in-situ como el grafeno CVD sin
defectos como referencia, se transfirieron sobre sustratos de sílice vítrea
(aislante eléctrico) para realizar la caracterización eléctrica.
La metodología de transferencia de grafeno CVD se ha descrito en el Capítulo
2, sin embargo, las muestras de grafeno funcionalizado requieren modificar el
protocolo. Esto es debido a que las muestras funcionalizadas tienen defectos,
lo que las hace más frágiles, siendo necesaria una capa de PMMA de mayor
grosor. En las disoluciones de PMMA cuanto mayor es su concentración más
densa es la disolución y más difícil es que la capa depositada sea uniforme,
siendo la del 6 % el límite para obtener un recubrimiento homogéneo. Sin
embargo, la capa depositada con la disolución del 6% sigue sin ser lo
suficientemente gruesa, por lo que finalmente se concluyó que es necesario
depositar dos capas al 6 %, respetando los tiempos de curado y secado entre
cada una de ellas. Por otra parte, las muestras MLG-F presentan una mayor
cantidad de defectos, en parte debidos a los grupos funcionales y en parte a
la rotura del grafeno en pequeños dominios, por lo que sólo ha sido posible la
transferencia de las muestras SLG-F.
Resistencia laminar y movilidad de grafeno obtenido mediante
funcionalización in-situ.
En la Figura 5.9a se han representado las curvas I-V obtenidas según la
configuración de cuatro puntas de Van der Pauw de las muestras transferidas,
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
199
a partir de las cuales es posible obtener la resistencia laminar (sheet
resistance). La curva representada para cada muestra se ha obtenido a partir
de un promedio de las dos mediciones necesarias en el método de van der
Pauw (Ra,b).
Figura 5.9. Representación de (a) las curvas I-V obtenidas según la configuración de
Van de Pauw y de las medidas Hall aplicando una intensidad de corriente (b) de 0.01
mA y (c) 0.05 mA, para la muestra de grafeno CVD de referencia y las muestras de
grafeno CVD funcionalizado in-situ transferidas sobre sílice vítrea.
También se ha representado el voltaje Hall obtenido aplicando dos
intensidades de corriente distintas (Figura 5.9b y c). A partir de las pendientes
de estas curvas y de la resistencia laminar es posible obtener los valores de la
densidad de portadores y de la movilidad de las muestras.
En la Tabla 5.2 se recogen los valores obtenidos en la caracterización eléctrica
de las muestras transferidas, donde 𝑅𝑎,𝑏 es la pendiente de las mediciones de
Van der Pauw dadas en la Figura 5.9a; 𝑅𝑆 es la resistencia laminar; 𝑆𝐻 es la
0 200 400 600 800
0.000
0.002
0.004
0.006
0 200 400 600 800
0.00
0.01
0.02
0.03
V H (V
)
H (mT)
V H (V
)
H (mT)
-0.1 0.0 0.1-0.2
-0.1
0.0
0.1
0.2 Gr_Ref F-Gr_15.30.5 F-Gr_15.30.0
Volta
je (V
)
Intensidad de corriente (mA)
Iapl=0.01 mA Iapl=0.05 mA
(a)
(b) (c)
CÁPITULO 5
200
pendiente de las mediciones de Hall representadas en la Figura 5.9b y c; 𝑅𝐻𝑎𝑙𝑙
es la resistencia Hall obtenida a partir de la expresión la Ec. 5.1, 𝑁𝑆 es la
densidad de portadores de carga (Ec. 5.2), donde t es el grosor de la muestra
y e la carga del electrón) y µ la movilidad (Ec. 5.3).
𝑅𝐻𝑎𝑙𝑙 =𝑉𝐻𝑎𝑙𝑙(𝐼𝑎𝑝𝑙 𝐻)
Ec. 5.1
𝑁𝑆 = 𝑡(𝑅𝐻𝑎𝑙𝑙 𝑒)−1 Ec. 5.2
𝜇 =𝑆𝐻
𝑅𝑆 𝐼𝑎𝑝𝑙 Ec. 5.3
Tabla 5.2. Resumen de la caracterización eléctrica de las muestras sintetizadas
transferidas sobre sílica fundida.
Muestra Ra,b
()
RS
()
Iappl
(mA)
SH
(V/T)
RHall
(V/A T)
NS
(cm-2)
µ
(cm2/V s)
‘Gr_Ref’ 5.5·102 2.5·103 0.01
0.05
2.0·10-3
1.0·10-2
2.0·102
2.0·102 3.1×1012 80020
‘FGr_15.30.0’ 1.8·103 8.1·103 0.01
0.05
6.6·10-3
3.3·10-2
6.6·102
6.7·102 9.5×1011 90020
‘F-Gr_15.30.5’ 1.7·103 7.6·103 0.01
0.05
3.1·10-3
1.6·10-2
3.1·102
3.1·102 2.0×1012 40020
Los valores de resistencia laminar obtenidos para las muestras 'FGr_15.30.0' y
'FGr_15.30.5' (SLG-F) son de aproximadamente 7-8 kΩ/sq, valores más que
adecuados para que las plataformas sean utilizadas en sensores electrónicos.
Por otra parte, los valores de movilidad eléctrica son de 400 y 900 cm2V-1s-1,
respectivamente. El nivel de dopado y la movilidad del grafeno transferido
dependen en cierta medida del proceso de transferencia y de posibles
residuos de PMMA. Esta puede ser la causa de que la muestra “FGr_13.30.0”
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
201
presente una movilidad mayor a la del grafeno de referencia. En general, los
valores de resistencia y movilidad obtenidos para las muestras funcionalizadas
son comparables a los obtenidos para el grafeno CVD de referencia
transferido.
En la Tabla 5.3 se resumen las características eléctricas y el grado de
funcionalización COOH de las muestras obtenidas en nuestro laboratorio junto
con los obtenidos por otras técnicas de funcionalización. Vemos cómo los
valores de resistencia laminar de las muestras de grafeno CVD funcionalizado
in-situ son inferiores a los obtenidos por rGO reducido por plasma de Ar/H214
y a los del grafeno obtenido mediante la exfoliación de grafito pirolítico
altamente orientado (HOGP) y posteriormente oxidado por plasma de O2.16
Son similares a los del grafeno funcionalizado mediante oxidación por plasma
de oxígeno,17,18 a los de HOGP exfoliado electroquímicamente sometido a un
recocido térmico a alta temperatura (600 ºC),13 y a los de grafeno
funcionalizado por vía electroquímica.19 En cuanto a los valores de la
movilidad, la comparación es difícil pues no son valores que se encuentren
habitualmente en las publicaciones, pero se observa que lo sobtenidos en este
trabajo son superiores a los reportados, como es el caso de grafeno oxidado
por plasma.16,18 Además, el porcentaje de grupos carboxilos en relación con el
total de grupos funcionales obtenidos mediante estas técnicas es inferior, en
todos los casos, al logrado por el crecimiento y la funcionalización in-situ en
CVD que se presenta en este trabajo.
CÁPITULO 5
202
Tabla 5.3 Características eléctricas (resistencia laminar y movilidad), grado de
funcionalización COOH y relación de intensidades Raman ID/IG de muestras
funcionalizadas por varias técnicas reportadas en la literatura comparadas con las
obtenidas en este trabajo.
Técnica Ref. RS
(/sq)
Movilidad
(cm2/Vs)
G. Func.
COOH ID/IG
Grafeno CVD Este
trabajo 300 800 0 0
‘F-Gr_15.30.0’ Este
trabajo 7.2×103 900 0.50 ~ 0.3
‘F-Gr_15.30.5’ Este
trabajo 7.6×103 400 0.45 ~ 0.3
Gr sobre SiC
+ plasma O2 18 3×103 25 0 ~ 0.2
HOPG Exfoliado
+ plasma O2 16 1×104 600 - 3
Gr CVD + plasma O2 17 1×103- 4×104 - - 0.5 - 2
rGO por
plasma Ar/H2 14 4.8×104 - 0.11 ~ 1.2
Exfoliación HOPG
+ recocido 13 4×103 - 0.12 ~ 1
Funcionalización
electroquímica de Gr 19 3x103 - - -
En resumen, puede verse claramente que las muestras ‘FGr_15.30.0’ y
‘FGr_15.30.5’ tienen valores apropiados de resistencia laminar, comparables
a los de las mejores muestras obtenidas con otras técnicas, además de una
mejor movilidad y un mayor grado de funcionalización COOH.
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
203
5.5 INMOVILIZACIÓN DE ANTICUERPOS POR EL MÉTODO
CARBODIIMIDA
Una cuestión importante para poder usar de manera fiable las plataformas
basadas en grafeno para la detección de antígenos es la inmovilización
efectiva de un anticuerpo específico que tiene que ser unido covalentemente
al grafeno. Por lo tanto, tras el crecimiento y la funcionalización in-situ del
grafeno, varias muestras se sometieron al anclaje del anticuerpo por el
método carbodiimida,20,21 según se esquematiza en la Figura 5.10. En este
método, el clorhidrato de N-(3-dimetilaminopropil)-N′-etilcarbodiimida (EDC)
reacciona con los grupos de ácido carboxílico de las muestras formando un
estado intermedio inestable que, tras añadir N-hidroxisuccinimida (NHS),
deriva en un éster-NHS de mayor estabilidad. Después, la amina primaria del
anticuerpo IgG1-FITC reacciona con el éster-NHS para formar un enlace fuerte
amida. El procedimiento completo se ha descrito en el Capítulo 2.
CÁPITULO 5
204
Figura 5.10. Esquema del proceso de síntesis completo: (a) lámina de cobre después
del tratamiento de limpieza, (b) grafeno funcionalizado con grupos COOH sobre la
lámina de cobre después del crecimiento y la funcionalización in-situ en CVD, (c)
Activación de los grupos carboxilos e (d) inmovilización del anticuerpo por el método
carbodiimida.
El anticuerpo viene marcado con el fluoróforo, FITC (isotiocianato de
fluoresceína), un derivado de la fluoresceína que emite a 518 nm. Las
muestras funcionalizadas, así como una muestra de grafeno CVD de
referencia, fueron sometidas a las reacciones simultáneamente. Dado que las
muestras se lavan rigurosamente en agua desionizada y en PBS, se espera que
sólo queden los anticuerpos que se han unido covalentemente. La
confirmación de que el anclaje ha sido adecuado viene dada por la detección
de la fluorescencia de los anticuerpos marcados.
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
205
Figura 5.11. Espectro de emisión del marcador FICT de los anticuerpos y esquema
del proceso de excitación (488 nm) y recolección de la fluorescencia emitida.
Para realizar las medidas de epi-fluorescencia se excitó con la línea de 488 nm
de un láser Ar+ desenfocado sobre las muestras y la emisión fue recogida como
imágenes de fluorescencia a través de un microscopio. Se utiliza un filtro de
paso alto de 500 nm (permite transmitir las longitudes de onda por encima de
500 nm) para eliminar la señal proveniente del láser (Figura 5.11).
Las imágenes de fluorescencia originadas a partir de la IgG1-FITC de la muestra
de referencia y de las muestras funcionalizadas se muestran en la Figura 5.12.
CÁPITULO 5
206
Figura 5.12. Imágenes ópticas (izquierda) y sus correspondientes imágenes de epi-
fluorescencia (derecha) de la muestra de grafeno CVD de referencia y de las
muestras funcionalizadas con COOH después del proceso de inmovilización del
anticuerpo obtenidas con el mismo tiempo de adquisición. La escala es la misma
para todas las imágenes excepto las últimas, que son ampliaciones de las áreas
señaladas.
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos…
207
Se observa cómo las imágenes correspondientes a la muestra de grafeno CVD
de referencia (Gr_Ref en la Figura 5.12) son casi negras, a excepción de algunas
regiones brillantes donde la solución de anticuerpos está confinada
probablemente debido a aspectos topológicos de la superficie de cobre. Por
el contrario, en las imágenes de emisión recogidas de las muestras
funcionalizadas con COOH (FGr_15.30.5 y FGr_15.30.0 en la Figura 5.12) se
observa una distribución verde homogénea en toda la superficie lo que
demuestra su capacidad para inmovilizar el anticuerpo. Estas imágenes
respaldan que el grado de funcionalización alcanzado con esta técnica, en el
que alrededor del 5 % de los átomos de carbono está enlazado a un grupo
COOH, es suficiente, ya que según este porcentaje se obtiene una distancia
media de 7 Å entre los grupos COOH, una separación adecuada para detección
molecular.
En conclusión, se ha demostrado que un método basado en el crecimiento del
grafeno por vía CVD y el flujo del vapor de ácido dicloroacético in-situ da como
resultado grafeno funcionalizado con grupos COOH.
En función de los tiempos característicos de las distintas etapas del proceso,
se han obtenido muestras funcionalizadas de grafeno monocapa o multicapa.
La optimización de los tiempos de las etapas de crecimiento y funcionalización
de grafeno da lugar a grafeno funcionalizado con grupos COOH, con un
porcentaje de carboxilos del orden del 5 %, superior al de los demás grupos
funcionales oxigenados presentes. La funcionalización carboxílica obtenida en
relación con el total de los grupos funcionales es superior a la obtenida por
otros métodos.
Se transfirieron varias muestras de grafeno funcionalizado a sustratos de sílice
vítrea para evaluar las propiedades de transporte electrónico, obteniéndose
valores de resistencia laminar similares a los de las mejores muestras
CÁPITULO 5
208
reportadas con otras técnicas y con valores de movilidad significativamente
más altos.
Por último, se ha utilizado el método carbodiimida para formar derivados
estables éster NHS, creados en los lugares donde el grafeno ha sido
funcionalizado con grupos -COOH, lo que permite la formación de fuertes
enlaces con las aminas primarias presentes en los anticuerpos monoclonales
antihumanos IgG1. El eficaz enlace covalente de la IgG1 se pone de manifiesto
en la distribución homogénea de la epi-fluorescencia que se observa en las
imágenes de emisión del marcador isotiocianato de fluoresceína.
El carácter covalente del enlace se verifica mediante la comparación con las
imágenes obtenidas del grafeno de referencia sometido simultáneamente al
mismo proceso, en el que no se detecta ninguna emisión significativa.
El conjunto de todos estos resultados lleva a la conclusión de que el método
que se presenta en este trabajo para la carboxilación in-situ del grafeno es
adecuado para la fabricación de plataformas funcionales que pueden
explorarse como sensores ópticos o electrónicos conductores.
5.6 REFERENCIAS
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CÁPITULO 5
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211
6 MOS2 MONOCAPA COMO DETECTOR DE
BIOMARCADORES DE CÁNCER DE MAMA
En la búsqueda de nuevas estrategias para biosensores basados en materiales
2D, se ha llevado a cabo una colaboración con los grupos de los Drs. Andrés
Redondo y Encarnación Lorenzo de la Universidad Autónoma de Madrid, en la
que se estudiaron distintas aproximaciones basadas en MoS2 monocapa de las
cuales fue efectiva la que aquí se describe.
Como ya se comentó en el Capítulo 1, en los últimos años los materiales
bidimensionales han surgido como una vía prometedora para su uso en
biosensores.1,2 Entre ellos, los TMDCs han atraído una intensa atención como
materiales funcionales para la detección del gen miARN21 y de ADN.3–7 Un
micro-ARN (miARN) es un ARN monocatenario no codificante, de una longitud
de entre 21 y 25 nucleótidos, que participa en la regulación de la expresión
génica. Hasta ahora, muchas de las estrategias de detección se han centrado
en sensores basados en electrodos, que pueden ser electroquímicos, dónde
se detectan especies iónicas generadas en reacciones rédox y el MoS2 recubre
el electrodo de trabajo, o en sensores basados en transistores de efecto
campo (FET), donde la hibridación de la sonda, adsorbida sobre el MoS2, con
el biomarcador da lugar a un desplazamiento de la tensión umbral y a un
cambio de la corriente de drenaje.8 Los biosensores ópticos basados en TMDCs
están todavía en desarrollo9 y la mayoría están basados en FRET (del inglés,
fluorescence resonance energy transfer), en los que la sonda está marcada
con un fluoróforo, y al reaccionar con el biomarcador, el MoS2 inhibe
fluorescencia de la sonda.10 En este trabajo, se pretende aprovechar las
posibles modificaciones de la fotoluminiscencia (PL) del MoS2 monocapa para
el desarrollo de nuevos biosensores. Para ello, se ha utilizado MoS2 monocapa
CÁPITULO 6
212
crecido por PVT sobre zafiro como transductor en un nuevo tipo de biosensor
para la detección de biomarcadores de cáncer de mama. En el diagnóstico de
cáncer de mama, el gen miRNA21 posee una alta sensibilidad (87.6%) y
especificidad (87.3%) en las fases iniciales.11 Además, este gen se
sobreexpresa en muchos tejidos cancerosos y su regulación ha sido
ampliamente estudiada,12 por lo que se ha escogido como biorreceptor del
biosensor desarrollado en este trabajo. En la mayoría de los casos, el
biomarcador típico es el miRNA21 complementario o una versión modificada
de éste. En este trabajo se ha utilizado el miRNA21 complementario
(miRNA21-C) y otro no complementario (miRNA21-NC) con el fin de demostrar
la selectividad del biosensor.13
6.1 CARACTERIZACIÓN POR ESPECTROSCOPÍAS RAMAN Y DE
FOTOLUMINISCENCIA DE PLATAFORMAS DE MOS2 CRECIDAS
POR PVT SOBRE ZAFIRO
En un biosensor óptico, la calidad de la plataforma es crucial para la posterior
comprensión del procedimiento de transducción. La Figura 6.1a muestra la
imagen óptica de una de estas muestras, en la que se distingue la morfología
triangular de los copos de MoS2, con dimensiones de decenas de micras. Las
muestras de MoS2 monocapa se sintetizaron en el sistema PVT del grupo del
Dr. Kung descrito en el Capítulo 2 gracias a la estancia en la Universidad de
Alabama. En la Figura 6.1a se identifican diferentes copos triangulares aislados
(A-D), que se caracterizaron mediante espectroscopia Raman y de
fotoluminiscencia para valorar la calidad y homogeneidad de estos.
MoS2 Monocapa como Detector de Biomarcadores…
213
Figura 6.1. a) Imagen óptica de los copos de MoS2 crecidos sobre zafiro. b) Espectros
de PL (zona 675 nm) y Raman (zona señalada a 500 nm) de los copos identificados en
el panel (a) como A-D. En el recuadro se muestra la intensidad media de PL teniendo
en cuenta el error estadístico de los cuatro puntos medidos en cada copo. c)
Ampliación de la zona Raman señalada de los espectros del panel (b).
La Figura 6.1c muestra los espectros Raman de los diferentes copos,
observándose que son muy similares. Los dos picos principales, corresponden
a los fonones de primer orden E12g y A1g, y se sitúan en 384 cm-1 y 404 cm-1,
respectivamente. Como ya se explicó en el Capítulo 1, la diferencia de
frecuencia entre estos dos picos (20 cm-1) es un indicador del carácter
monocapa del material.14 En este caso, los espectros Raman se obtuvieron con
CÁPITULO 6
214
la red de difracción de 600 l/mm del monocromador, en los mismos puntos y
condiciones que las medidas de fotoluminiscencia, por lo que la resolución es
inferior a la habitual (empleando la red de 1800 l/mm).
Figura 6.2. a) Imagen óptica de un copo de MoS2 sobre zafiro y b) mapa de
intensidad de PL de la zona señalada en el panel (a).
La intensidad de la fotoluminiscencia es otro indicador del carácter monocapa
del MoS2.15 Los espectros de fotoluminiscencia de los copos analizados se
muestran en la Figura 6.1b. Todos ellos muestran una banda ancha centrada
en aproximadamente 673 nm (1.84 eV). Los débiles picos estrechos, alrededor
de 693 nm, corresponden a impurezas de Cr3+ del sustrato de zafiro.16,17 Para
analizar la homogeneidad dentro de un copo se realizó un mapa detallado de
la intensidad de la fotoluminiscencia del copo de la Figura 6.2a. En el mapa
(Figura 6.2b) se observa que la intensidad en la parte central del copo es
constante, y aumenta un factor 2 en los bordes.
Según nuestras observaciones, en algunos casos, los bordes de los copos de
MoS2 obtenidos por PVT presentan una mayor intensidad de la
fotoluminiscencia y un pequeño desplazamiento hacia mayores energías
como ocurre en la muestra aquí empleada (Figura 6.2.b). Como se explicó en
el Capítulo 3, esto puede asociarse o bien con dopado tipo-p, o con una
tensión de compresión generada en los bordes durante el enfriamiento,
debida a los diferentes valores del coeficiente de expansión térmica del MoS2
MoS2 Monocapa como Detector de Biomarcadores…
215
y del sustrato.18 En el caso de tratarse de dopado tipo-p puede ser debido bien
a una mayor densidad de vacantes de S en los bordes, que favorece la
adsorción de oxígeno y la transferencia de huecos al MoS2, o podría deberse a
vacantes de Mo. Las vacantes de Mo han sido estudiadas desde un punto de
vista teórico, pero sólo se ha reportado su detección en muestras sometidas a
irradiación con iones o electrones.19
6.2 ANÁLISIS DE LA FOTOLUMINISCENCIA DEL MOS2 MONOCAPA
EN LA DETECCIÓN DE BIOMARCADORES
El desarrollo del biosensor basado en MoS2 se muestra esquemáticamente en
la Figura 6.3. El proceso de biofuncionalización de los copos de MoS2 fue
llevado a cabo por los grupos de A. Redondo y E. Lorenzo de la Universidad
Autónoma de Madrid. La Figura 6.3a muestra la estructura del MoS2 con una
vacante de azufre, defecto que servirá como punto de anclaje para la sonda
(Figura 6.3b). Una secuencia de ADN modificada en el extremo 5′ con un
hexalquiltiol (ss-DNAp-SH) puede inmovilizarse sobre MoS2 a través del grupo
tiol (-SH). Las moléculas orgánicas con el grupo -SH tienden a reparar o
eliminar las vacantes de S de la red de MoS2, dando lugar a la funcionalización
molecular.20–23 Para llevar a cabo este paso se depositaron 10 µl de una
solución 10 nM de sonda (ss-DNAp-SH) sobre las muestras de MoS2 y se
mantuvieron a 4 °C durante 24 h. Después, las muestras de MoS2
funcionalizado (plataforma de detección, ss-DNAp-SH-MoS2) se lavaron con
agua destilada para eliminar la sonda adsorbida de forma inespecífica y se
secaron con nitrógeno. Después de este paso, la plataforma funcionalizada se
hibrida con las secuencias complementaria (miRNA21-C) y no complementaria
(miRNA21-NC), esta última utilizada como control. Para ello, la plataforma de
detección, ss-DNAp-SH-MoS2, se hibridó con una solución de analito mediante
la adición de 10 µl de una secuencia complementaria (miRNA21-C) o no
CÁPITULO 6
216
complementaria (miRNA21-NC) 10 nM a una solución 10 mM de tampón
fosfato + solución 0.4 M de NaCl de pH 7.0 (1 h, 40 °C). Después se
sumergieron en agua destilada y se secaron con nitrógeno. Las Figura 6.3c y
6.3d esquematizan estos dos ensayos de hibridación.
Figura 6.3. Esquema de los pasos seguidos para el procedimiento de biosensado. (a)
Superficie típica de MoS2, con la eventual presencia de defectos, (b) sonda ss-DNAp-
SH unida a la superficie de MoS2 a través de las zonas de defectos. Hibridación en la
superficie de MoS2 con (c) miRNA21-C o (d) miRNA21-NC.
La Figura 6.4 muestra los espectros de fotoluminiscencia obtenidos para las
dos rutas descritas anteriormente realizadas en dos copos diferentes. Como
procedimiento estándar, se seleccionaron diferentes copos para el análisis
antes de la funcionalización y se adquirieron varios espectros en diferentes
puntos de cada uno de ellos para analizar la reproducibilidad y aumentar la
significación estadística.
MoS2 Monocapa como Detector de Biomarcadores…
217
Figura 6.4. Espectros de PL para dos copos de MoS2 (negro), MoS2 funcionalizado
con el receptor (rojo) y posteriormente hibridado con (a) miRNA21-C y (b) miRNA21-
NC (azul). Espectros normalizados al modo Raman A1g.
La Figura 6.4a muestra mediciones de fotoluminiscencia para un copo de MoS2
sin funcionalizar (líneas negras), para el mismo copo después de la
inmovilización de la sonda ss-DNAp-SH (líneas rojas), y después de la
hibridación con miRNA21-C (línea azul). La Figura 6.4b muestra los resultados
de otro copo en la que se utilizó el control miRNA21-NC en lugar de la
secuencia complementaria. En ambos casos se observa un aumento de la
fotoluminiscencia tras la inmovilización de la sonda ss-DNAp-SH, sin embargo,
el proceso de hibridación da lugar a resultados diferentes para las dianas
complementaria, miRNA21-C (Figura 6.4a), y no-complementarias, miRNA21-
NC (Figura 6.4b). En ambas se observa una disminución de la señal de
fotoluminiscencia, sin embargo, el miRNA21-C produce un desplazamiento de
la banda de fotoluminiscencia al rojo, que no se da en el caso del miRNA21-
NC.
CÁPITULO 6
218
Para cuantificar este efecto, en la Figura 6.5 se ha representado la longitud de
onda del pico de fotoluminiscencia para los diferentes ensayos realizados:
miRNA21-C (Figura 6.5a) y el miRNA21-NC (Figura 6.5b). Se produce un
desplazamiento de la banda hacia el rojo de ~16 nm (43 meV) para la
secuencia complementaria, miRNA21-C, mientras que, para la no
complementaria, miRNA21-NC, la posición permanece prácticamente
constante. Se han realizado estas pruebas en cuatro copos diferentes y varios
puntos para cada copo para garantizar una buena reproducibilidad de los
datos dentro de los errores estadísticos (Figura 6.5c y 6.5d). Aunque la
intensidad de la fotoluminiscencia varía de un copo a otro (en el caso la
funcionalización con la sonda, ss-DNAp-SH, la intensidad varía hasta en un
factor 2), los valores de la posición de la fotoluminiscencia para cada ensayo
son muy similares, encontrándose los errores estadísticos dentro de los
puntos del gráfico (Figura 6.5c y 6.5d). Estos resultados demuestran la
especificidad del biosensor y la viabilidad del reconocimiento del biomarcador
miRNA21 justificados por los cambios de longitud de onda de la emisión del
MoS2 monocapa.
MoS2 Monocapa como Detector de Biomarcadores…
219
Figura 6.5. Espectros de los ensayos en 4 copos diferentes para (a) miRNA21-C y (b)
miRNA21-NC y sus respectivas posiciones de PL (c) miRNA21-C y d) miRNA21-NC. Los
valores son la media de los diferentes espectros medidos en cada copo. Los errores
estadísticos se encuentran dentro de los puntos del gráfico.
Para analizar más a fondo la homogeneidad de las plataformas, se registraron
mapas de fotoluminiscencia para cada uno de los pasos seguidos durante los
ensayos en áreas de 100 m2. La Figura 6.6 muestra los mapas de las
posiciones de la fotoluminiscencia de los copos, donde la escala de colores
representa la longitud de onda del pico principal. Tanto los copos de MoS2 sin
funcionalizar como los funcionalizados con la sonda, ss-DNAp-SH, (Figura 6.6a)
muestran esencialmente la misma emisión de PL, con variaciones máximas de
2 nm. Cuando se produce la hibridación con el miRNA21-C (Figura 6.6b), el
mapa de fotoluminiscencia cambia desde un rango 670-675 nm hasta 687-689
nm (de azul a amarillo en la escala de colores), indicando un desplazamiento
homogéneo hacia el rojo en toda la superficie del copo. Sin embargo, la
CÁPITULO 6
220
incorporación de la secuencia no complementaria, miRNA21-NC, (Figura 6.6c)
no cambia la longitud de onda.
Figura 6.6. Espectros de PL y mapas de área de 10 × 10 μm2que muestran la
variación de la longitud de onda de la PL en los copos de a) MoS2 funcionalizado con
la sonda y posteriormente hibridado con b) miRNA21-C y c) miRNA21-NC. La
intensidad de los espectros ha sido normalizada.
La fotoluminiscencia del MoS2 es en realidad una banda compleja que
presenta varias componentes. Como se ha explicado anteriormente (ver
Capítulo 1), a temperatura ambiente, las componentes más importantes
corresponden a los excitones A (~ 1.90 eV) y B (~ 2.03 eV), y en ocasiones se
observa, con un peso importante, una tercera componente asociada al trión
A- (~ 1.85 eV).24–27 Este trión negativo se atribuye normalmente a la
MoS2 Monocapa como Detector de Biomarcadores…
221
combinación de un par electrón-hueco fotoexcitado con un electrón originado
por la presencia de defectos que producen un dopado tipo-n del MoS2.28
Teniendo esto en cuenta, se han ajustado, mediante lorentzianas, los
espectros de fotoluminiscencia representativos mostrados en la Figura 6.7 y
resumidos en la Tabla 6.1. La Figura 6.7a muestra los ajustes del pico de
fotoluminiscencia para el MoS2 sin funcionalizar. Se identifican tres
contribuciones principales a ~ 1.80, ~ 1.85 y ~ 2.00 eV, que corresponden al
trión A-, al excitón A y al excitón B, respectivamente.
Tabla 6.1 Posición y área de los picos de fotoluminiscencia correspondientes al análisis de la Figura 6.7.
Muestra
A- trion (eV) A excitón (eV) B excitón (eV)
E (eV) Área
(%)
E (eV) Área
(%)
E (eV) Área
(%)
MoS2 1.80(4) 27 1.85(1) 71 2.00(2) 2
Sonda ss-DNAp-SH 1.82(4) 58 1.85(3) 41 2.01(2) 0
Hibridación con miRNA21-C 1.78(5) 43 1.83(6) 38 1.96(8) 19
Hibridación con miRNA21-
NC
1.81(7) 10 1.85(5) 74 2.00(5) 16
CÁPITULO 6
222
Figura 6.7. Espectros y ajustes de la PL del MoS2 en las diferentes etapas con trión
(A-, rosa) y excitones A (azul) y B (verde): a) MoS2 sin funcionalizar, b) MoS2 después
de la funcionalización con ss-DNAp-SH, c) después de la hibridación con la secuencia
complementaria miRNA21-C, y d) con la secuencia no complementaria miRNA21-NC.
La Figura 6.6b muestra el ajuste de un espectro de fotoluminiscencia
característico tras la funcionalización con la sonda ss-DNAp-SH. Se observa
que el cambio en la fotoluminiscencia tiene dos características claras: la
mejora global de la intensidad y un incremento importante del peso de la
banda asociada a triones (A’). Como se ha comentado, los grupos tiol (-SH) de
la sonda pueden reparar las vacantes de S causando la pasivación de defectos
y por tanto inhibiendo la recombinación no radiativa.22,29 Recientemente se
han descrito mecanismos de transferencia de carga entre la monocapa de
MoS2 Monocapa como Detector de Biomarcadores…
223
MoS2 y otras moléculas, y se han validado mediante cálculos de la teoría del
funcional de la densidad (DFT).30 Por otra parte, estos efectos también son
compatibles con mecanismos de apantallamiento debidos al cambio de la
función dieléctrica del entorno producido por la funcionalización. La sonda
actuaría como un medio de alta constante dieléctrica aumentando la
intensidad general, la ratio A-/A y la energía de los picos, especialmente la del
trión, como ocurre en este caso en la figura 6b.27 Por lo tanto, una
combinación de estos dos fenómenos (reparación de las vacantes de S y
cambio en la constante dieléctrica) puede explicar los resultados obtenidos.
Figura 6.8. Energía de fotoluminiscencia de los excitones A y B y del trión A- para cada una de las etapas: MoS2 sin funcionalizar, MoS2 con la sonda ss-DNAp-SH y
posteriormente hibridada con miRNA21 complementario (C) y no complementario (NC).
La Figura 6.6c muestra la fotoluminiscencia de la plataforma hibridada con el
ARN complementario, miRNA21-C, evidenciando una disminución global de la
intensidad y un desplazamiento hacia el rojo. El desplazamiento hacia el rojo
de la banda es debido a desplazamientos de todas las componentes (A-, A y B).
Estos cambios podrían explicarse por una transferencia de carga que causase
MoS2 Sonda NC C1.75
1.80
1.85
1.95
2.00
Ener
gía
(eV)
Trion A B
CÁPITULO 6
224
un dopado tipo-n del MoS2, disminuyendo la señal de fotoluminiscencia, al
aumentar los canales no radiativos de relajación de los pares e-h, y
produciendo un desplazamiento hacia menores energías.31,32 No se puede
descartar por completo la existencia de un pico adicional (ya que también es
posible un buen ajuste con 4 picos para el caso de la plataforma hibridada con
miRNA21-C). Por el contrario, no se observa un desplazamiento relevante de
las energías de los excitones al incorporar el ARN no-complementario de
control, miRNA21-NC, (Figura 6.6d y 6e) y la intensidad del pico del trión
disminuye significativamente en el espectro. Los cambios observados en las
distintas etapas son complejos pues compiten varios mecanismos y, a pesar
de los recientes avances,24,25,33 las publicaciones actuales no permiten
determinar de forma unívoca su origen. En la Figura 6.7 se han representado
las energías de los tres picos (excitones A y B y trión A-) para cada etapa y se
observa cómo para la sonda hibridada con el miRNA21-C la energía de los tres
picos disminuye drásticamente con respecto a los demás casos.
En resumen, en este trabajo en colaboración con la UAM se ha desarrollado
un biosensor óptico para el biomarcador miRNA21 del cáncer de mama
basado en la modificación de la fotoluminiscencia de MoS2 monocapa. Este
sensor se ha fabricado en tres pasos: (1) crecimiento del MoS2 monocapa por
PVT sobre zafiro, (2) funcionalización con una sonda de ADN tiolada (ss-DNAp-
SH), y (3) hibridación con secuencias complementarias y no complementarias
de miRNA21 (esta última utilizada como control).
La modificación con el biomarcador ss-DNAp-SH (la sonda) aumenta la
intensidad de la fotoluminiscencia del MoS2, que posteriormente disminuye
tras la hibridación. Se observa un desplazamiento de 16 nm en la banda de
fotoluminiscencia exclusivamente para la hibridación con el ARN
complementario, miRNA21-C, pero no para la secuencia de control miRNA21-
NC, demostrando la especificidad del biosensor y la viabilidad del
MoS2 Monocapa como Detector de Biomarcadores…
225
reconocimiento a través de la fotoluminiscencia del MoS2 monocapa. La
reproducibilidad de los resultados se verificó con espectros de
fotoluminiscencia en varios copos.
El análisis detallado de los espectros revela cambios en la relación
trión/excitón, A-/A, atribuyéndose a ambos picos el desplazamiento al rojo
observado tras la hibridación debido a una de transferencia de electrones
hacia el MoS2.
Estos resultados indican las ventajas en términos de selectividad de los
biosensores ópticos basados en MoS2 monocapa. El método de transducción
a través del cambio de longitud de onda de la fotoluminiscencia, en lugar de
la intensidad, es novedoso y un logro significativo para el desarrollo de
biosensores comerciales en el futuro.
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229
7 CONCLUSIONES
MoS2 Bidimensional
• Se han determinado las condiciones óptimas para crecer MoS2 monocapa
sobre zafiro por CVD a partir de MoO3 y S en polvo en el sistema puesto
a punto en el laboratorio: una presión de 1 mbar y un flujo de Ar de 25
sccm, con temperaturas de 700 ºC y 200 ºC para el MoO3 y el S
respectivamente. En el caso de los sustratos de Si y FS, el MoS2 obtenido
es de pocas capas, independientemente de las condiciones utilizadas.
• Se ha observado la formación de nanopartículas de MoO2 en muestras
de MoS2-2D cuya morfología depende de la temperatura del azufre. Un
adecuado control de esta temperatura y una limpieza del horno a vacío y
alta temperatura evita la formación de las NPs de MoO2.
• Se ha diseñado, montado y optimizado en el laboratorio del ICMM un
sistema apto para el crecimiento en fase de vapor de TMDCs. El MoS2
obtenido en este sistema por PVT a partir MoS2 en polvo sobre sustratos
de zafiro y Si es siempre monocapa. Los copos crecidos tienen forma
triangular y tamaños entre 1 y 5 μm, formándose zonas donde los copos
conectan creando capas cuasi-continuas. Las condiciones empleadas son:
temperaturas de 970 ºC y 800 ºC para el MoS2 y los sustratos,
respectivamente, presión de 1 mbar y flujo de 20 sccm.
• Se ha hecho un estudio exhaustivo de los espectros Raman de muestras
de MoS2 en volumen y MoS2 bidimensional de distinto número de capas
y obtenido por diferentes técnicas: exfoliación mecánica (ME), PVT y CVD.
Las medidas se llevaron a cabo a temperatura ambiente empleando la
línea en 488 nm (2.54 eV) de un láser de Ar+. Se han detectado picos
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prohibidos de primer orden correspondientes a ramas acústicas
activados por la presencia de defectos intrínsecos. Dependiendo del
proceso Raman que da lugar a cada uno de los fonones, éstos son
sensibles a diferentes variables como el número de capas, el método de
crecimiento o el sustrato. Para dos picos detectados a 150 y 190 cm-1, la
frecuencia varía con el número de capas debido a las modificaciones en
la estructura de la banda electrónica, a través de un proceso de doble
resonancia mediado por defectos intrínsecos, que activa los fonones
alrededor del punto Q de la zona de Brillouin. Esto se debe a que, en el
MoS2, se produce un anidamiento de las bandas electrónicas cerca de los
puntos y Q, que da lugar al excitón C a 2.7 eV, muy cerca de la energía
empleada para la excitación (2.4 eV). Además, las bandas electrónicas
alrededor de los puntos Q y son especialmente sensibles al número de
capas. También se observa una banda compleja en el rango 420-470 cm-
1 (procesos de dos fonones), que es resonante para energías de excitación
cercanas al excitón B (2 eV), y que es sensible a la interacción del MoS2
con el sustrato y a la temperatura. También se han encontrado picos
específicos de las técnicas de depósito de vapor a 247, 498 y 550 cm-1 y
otros que sólo se detectan en MoS2 monocapa a 220 y 310 cm-1,
independientemente del método de obtención.
• Se han obtenido nanocopos de MoS2 monocapa y de 2-3 capas por CVD
(tamaños entre 10 nm y 500 nm) y copos monocapa crecidos por PVT
(tamaños entre 1-5 μm). Mediante el análisis de los espectros Raman, de
fotoluminiscencia y de micro-reflectancia, combinado con imágenes de
AFM (topología y fase), se han podido determinar los efectos inducidos
por la reducción del tamaño en las propiedades de los nanocopos de
MoS2. Por una parte, el crecimiento sobre zafiro por PVT de MoS2-2D de
varias micras da lugar a una expansión biaxial (en torno al 1%) del MoS2.
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A medida que el tamaño de los copos se reduce, esta tensión va
desapareciendo, siendo inapreciable para nanocopos de tamaño inferior
a 100 nm. Por otra parte, al reducirse el tamaño de los copos, se produce
un incremento del dopado tipo p, probablemente originado por la
transferencia de huecos debido a la adsorción de O2. Se propone que el
incremento de la relación borde/superficie (al disminuir el tamaño)
proporciona una mayor densidad de vacantes de azufre que facilita la
adsorción de O2. Este dopaje tipo p da lugar un incremento de la energía
de la emisión a medida que el tamaño de reduce (50 meV) que también
suele implicar un aumento en su intensidad. En este caso, la intensidad
permanece constante (dentro de la dispersión de valores registrados para
MoS2 monocapa, de mayor tamaño y sin defectos) debido al desorden
estructural. Esta distorsión e incorporación de defectos es muy moderada
en todo el rango estudiado, hasta 10 nm. Estos efectos son similares en
nanocopos monocapa y en los de 2-3 capas.
• Se ha demostrado que la presencia de nanopartículas (NPs) de MoO2 en
muestras de MoS2 sintetizadas por CVD, da lugar a una amplificación de
la señal Raman y de fotoluminiscencia debido a distintos efectos. Por una
parte, el efecto SERS originado por las NPs de MoO2 de mayor tamaño da
lugar a una amplificación de ambas señales. Por otra parte, la
transferencia de electrones del MoS2 a las NPs de MoO2 da lugar a un
dopado tipo-p que provoca un aumento de la intensidad y de la energía
de la fotoluminiscencia, pero no de la intensidad Raman. Además, se ha
obtenido una señal de fotoluminiscencia anómalamente intensa en copos
de 2-3 capas.
• Los tratamientos de recocido en aire y en vacío de distintas muestras de
MoS2-2D han confirmado la relevancia de la adsorción y el enlace de
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oxígeno en la intensidad de la fotoluminiscencia y su capacidad de
transferir huecos.
Amplificación Raman por nanopartículas de Ag
ultrapequeñas: efectos de tamaño y distancia entre
partículas
• Se ha evaluado la capacidad de amplificación SERS de NPs de Ag
ultrapequeñas, de radio 1.8 nm, depositadas por la técnica de agregación
en fase gas sobre sustratos de sílice vítrea y sobre monocapas de grafeno,
previamente transferidas sobre cuarzo. Se han empleado simulaciones de
conjuntos de NPs de plata de distintos tamaños utilizando cálculos
tridimensionales de diferencias finitas de dominio temporal (FDTD) para
analizar los resultados experimentales. Se demuestra que, el
desplazamiento de la longitud de onda del plasmón hacia el rojo (de 400
a 500 nm) y su ensanchamiento se originan por distribuciones de
distancias inter-partícula que se estrechan y se desplazan a distancias
más pequeñas a medida que la densidad entre NPs aumenta. La
reducción de la distancia inter-partícula media es determinante en la
formación de puntos calientes (hot-spots) y por tanto en los valores de
amplificación SERS.
• Se ha observado que el papel del grafeno como sustrato para el depósito
de NPs consiste en deslocalizar parcialmente los portadores libres, así
como favorecer la adherencia de las NPs sobre el sustrato.
• Se ha observado que la configuración geométrica del analito con respecto
a las NPs es determinante para la magnitud de la amplificación de las
señales Raman. Por ejemplo, en el caso del grafeno, la amplificación
aumenta linealmente con la extinción del plasmón, mientras que en el
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caso de la R6G la amplificación es casi exponencial. Este comportamiento
exponencial en el caso de la R6G demuestra la alta eficiencia de los
puntos calientes que se forman en los espacios entre partículas.
• Para granos de plata de mayor tamaño (7<R<15 nm) depositados por
sputtering también se observa un desplazamiento hacia el rojo y el
ensanchamiento del plasmón a medida que el grosor de la película
aumenta (de 1 a 4 nm). En este caso, la amplificación de R6G es sólo
proporcional a la extinción del plasmón. Es importante señalar que, para
el mismo valor de extinción, la amplificación proporcionada por las NPs
ultra-pequeñas es mayor que la de los granos más grandes de las
películas, debido principalmente a los puntos calientes formados entre
las NPs ultra-pequeñas.
• Desde el punto de vista de las aplicaciones, resulta relevante la
posibilidad de aumentar eficientemente la amplificación obtenida con
películas de plata depositando sobre ellas bajas densidades de NPs ultra-
pequeñas, y creando así puntos calientes adicionales.
Funcionalización de grafeno con grupos carboxílicos
para aplicaciones en biodetección
• Se ha demostrado que un nuevo método de funcionalización de grafeno
basado en el crecimiento del grafeno por vía CVD con un flujo de vapor
de ácido dicloroacético (DCA) in-situ da como resultado grafeno
funcionalizado con grupos COOH.
• En función de los tiempos característicos de las distintas etapas del
proceso ta (tiempo de la etapa de crecimiento) y tb (tiempo de la etapa de
funcionalización) es posible obtener muestras funcionalizadas de grafeno
monocapa o multicapa: i) un ta largo (30 min) y tb corto (15 min) da lugar
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a muestras con regiones de grafeno monocapa no funcionalizado y
regiones de grafeno de varias capas funcionalizado (SLG/MLG-F); ii) para
ta y tb largos (ambos 30 min) se obtiene grafeno monocapa y multicapa
ambos con funcionalización homogénea (SLG-F/MLG-F); iii) para un ta
corto (15 min) y tb largo se obtiene grafeno monocapa con
funcionalización no homogénea (SLG/SLG-F) y iv) si al último caso se le
añaden 5 min de flujo de DCA durante la etapa de enfriamiento se
obtiene grafeno monocapa con funcionalización homogénea (SLG-F).
• La optimización de los tiempos de las etapas de crecimiento y
funcionalización de grafeno da lugar a grafeno funcionalizado con grupos
COOH, con un porcentaje de carboxilos del orden del 5 %, que es superior
al de los demás grupos funcionales oxigenados presentes. La
funcionalización carboxílica obtenida en relación con el total de los
grupos funcionales es superior a la obtenida por otros métodos.
• Se ha optimizado el proceso de transferencia de grafeno, haciendo
posible la transferencia de las muestras de grafeno funcionalizado
monocapa para la realización de medidas eléctricas.
• En la evaluación de las propiedades de transporte electrónico de las
muestras funcionalizadas, se obtienen valores de resistencia laminar de
7-8 kΩ/sq, similares a los de las mejores muestras reportadas con otras
técnicas, y valores de movilidad de hasta 900 cm2V-1s-1, significativamente
más altos que los reportados en la literatura.
• Por último, se utiliza el método carbodiimida para anclar anticuerpos en
los lugares donde el grafeno ha sido funcionalizado con grupos -COOH. El
enlace entre el grafeno funcionalizado y el anticuerpo IgG1 se pone de
manifiesto en la distribución homogénea de la epi-fluorescencia que se
observa en las imágenes de emisión del marcador isotiocianato de
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fluoresceína. El carácter covalente del enlace se verifica mediante la
comparación con las imágenes obtenidas del grafeno de referencia
sometido simultáneamente al mismo proceso, en el que no se detecta
ninguna emisión significativa.
• El conjunto de todos estos resultados lleva a la conclusión de que el
método que se presenta en este trabajo para la carboxilación in-situ del
grafeno es adecuado para la fabricación de plataformas funcionales que
pueden explorarse como sensores ópticos o electrónicos conductores.
MoS2 monocapa como detector de biomarcadores de
cáncer de mama a través de cambios en la
fotoluminiscencia
• Se ha desarrollado un biosensor óptico para el biomarcador del cáncer de
mama miRNA21 basado en la modificación de la fotoluminiscencia del
MoS2 monocapa. Este sensor se ha fabricado en tres pasos: (1)
crecimiento del MoS2 monocapa por PVT sobre sustratos de zafiro a partir
de MoS2 en polvo, (2) funcionalización con una sonda de ADN tiolada (ss-
DNAp-SH), y (3) hibridación con secuencias complementarias y no
complementarias de miRNA21 (esta última utilizada como control).
• Tras la hibridación con el ARN complementario se observa un
desplazamiento de 16 nm en la banda de fotoluminiscencia que no se da
para la hibridación con el ARN no complementario, demostrando así la
especificidad del biosensor y la viabilidad del reconocimiento a través de
la fotoluminiscencia del MoS2 monocapa.
• Se ha verificado la reproducibilidad de los resultados se registrando
espectros de fotoluminiscencia en varios copos.
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• El análisis detallado de los espectros revela cambios en la relación
trión/excitón, A-/A, atribuyéndose a ambos picos el desplazamiento al
rojo observado tras la hibridación debido a una de transferencia de
electrones hacia el MoS2.
• Estos resultados muestran las ventajas en términos de selectividad de los
biosensores ópticos basados en MoS2 monocapa. El método de
transducción a través del cambio de longitud de onda de la
fotoluminiscencia, en lugar de la intensidad, es novedoso además de
significativo para el desarrollo de biosensores comerciales en el futuro.
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ANEXO
SIMULACIONES POR DIFERENCIAS FINITAS EN EL DOMINIO DEL
TIEMPO (FDTD)
El método de las Diferencias Finitas en el Dominio del Tiempo (FDTD, del inglés
finite-difference time-domine) fue desarrollado para resolver las ecuaciones
de Maxwell y actualmente se utiliza para resolver problemas
electromagnéticos transitorios.1–4 En este trabajo se ha utilizado para llevar a
cabo las simulaciones del Capítulo 4.
Para llevar a cabo las simulaciones tridimensionales se ha utilizado el software
Lumerical FDTD (https://www.lumerical.com/fdtd/), que permite calcular el
campo eléctrico y los espectros de extinción de matrices de nanopartículas en
cualquier punto. Los cálculos de los campos eléctricos y los espectros de
extinción para una única nanopartícula (ya sean esferas o elipsoides) se han
realizado utilizando la teoría de Mie,5 y han utilizado como primer paso para
comprobar los resultados de las simulaciones FDTD.
Los parámetros FDTD utilizados en las simulaciones dependen en gran medida
de la simetría de los conjuntos de nanopartículas considerados. En el caso de
esferas aisladas y de esferas distribuidas de forma aleatoria, se han utilizado
fuentes de campo disperso total (TFSF, del inglés Total-field Scattered-field).
Se han utilizado condiciones de contorno simétricas y antisimétricas en
función de la polarización de las direcciones x e y (en el plano del sustrato) y
condiciones de capas perfectamente acopladas (PML, del inglés Perfectly
Matched Layers) para la dirección z (perpendicular al sustrato). Para las PML
distribuidas aleatoriamente se han utilizado condiciones de contorno. En el
caso de matrices periódicas de nanopartículas, se utilizaron fuentes de ondas