Polyoma Polyoma - - Virusinfektion Virusinfektion nach Nierentransplantation nach Nierentransplantation Uwe Groß Uwe Groß Institut für Medizinische Mikrobiologie Institut für Medizinische Mikrobiologie der Universitätskliniken Göttingen der Universitätskliniken Göttingen Nationales Referenzzentrum für Systemische Mykosen Nationales Referenzzentrum für Systemische Mykosen Nationales Nationales Konsiliarlabor Konsiliarlabor für Toxoplasmose für Toxoplasmose Kreuzbergring 57, 37075 Göttingen Kreuzbergring 57, 37075 Göttingen www.bakteriologie.uni www.bakteriologie.uni - - goettingen.de goettingen.de Tel. 0551 Tel. 0551 - - 39 5801 ; Fax: 0551 39 5801 ; Fax: 0551 - - 39 5861; 39 5861; [email protected][email protected]
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Polyoma-Virusinfektion nach Nierentransplantation · - 70% bzw. 75% Homologie mit SV40 und JCV (-> PML) - Pathogenitätsfaktor: Genetische Heterogenität der Transkriptions-Kontrollregion?
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PolyomaPolyoma--Virusinfektion Virusinfektion nach Nierentransplantationnach Nierentransplantation
Uwe GroßUwe GroßInstitut für Medizinische MikrobiologieInstitut für Medizinische Mikrobiologie
der Universitätskliniken Göttingender Universitätskliniken GöttingenNationales Referenzzentrum für Systemische MykosenNationales Referenzzentrum für Systemische Mykosen
- Bis 2000 -> BKV, JCV und SV40 gehörten zu Papovaviren(Papilloma-, Polyoma- und Simian Vacuolating Virus)
- Ab 2001 -> eigenständige Familie (Polyomaviridae)- Genvariabilität (mindestens 4 Gentypen)- Genom = 5.300 bp -> early (T), late (VP) and regulatory genes
(agno)- 70% bzw. 75% Homologie mit SV40 und JCV (-> PML)- Pathogenitätsfaktor: Genetische Heterogenität der
Transkriptions-Kontrollregion?- Kein Tiermodell
envelope naked
ssDNA
Papillomaviridae
Classification of viruses
Vergleich BKV versus CMV
BKV CMVDNA zirkulär ds linear dsKapsidtyp Ikosaeder IkosaederHülle o +Genom 5.300 bp 235 kbpGene 6 >200Größe 45 nm ca. 200 nm
Genorganisation des BK VirusEarly genes-> Tumor antigens-> for Transcription
Late genes-> Virion proteins-> for Capsid formation
Regulatorisches Masterprotein
Lebenszyklus des BK-Virus
Endozytose
VP1-3
Keine eigene DNA-Polymerase!
Erstbeschreibung des BK-Virus
Lancet 1971
39jähriger sudanesischer Patient nach Nieren-TPX
Prävalenz von Antikörpern gegen BK-Virus und JC-Virus in den USA
Fields et al., 1996
2.-5. Lebensjahr: Inzidenzrate am höchsten Serumprävalenz nimmt später wieder ab (Ursache ?):-> Erwachsene = 46-94% (Deutschland = 71%)
- 10-68% der Nierenempfänger zeigen BKV-Replikation OHNE klinische Symptome- 5-8% entwickeln PVN (Tacrolimus-Azathioprin-Predison oder CyclosporinA-Mycophenolat-Prednison)- PVN entsteht im Durchschnitt ca. 12 (-44) Wochen nach TPX (1 Monat bis 2 Jahre)
Hirsch und Steiger, Lancet Infect Dis 2003Nickoleit et al., Current Opin Nephrol Hypert 2003
Risikoprofil der Entstehung von BKVN(BKVN = BKV-assoziierte Nephropathie oder PVN = Polyomavirus-assoziierte Nephropathie)
Erhöhtes Risiko:- seronegativer Empfänger einer Niere eines seropositiven Spenders (Risiko x3.5)- HLA-Mismatch zwischen Spender und Empfänger (umstritten!)- höheres Alter- männliches Geschlecht- Tacrolimus > 8ng/ml (Risiko x13) (Mengel et al., 2003)
Modell der 2-Schritt Pathogenese
1.
2.
Risiko x13
Modifiziert nach de Bruyn and Limaye, Rev. Med. Virol. 2004
Verlauf des Serumkreatinins bei BKVN(oft initialer Hinweis!)
Nickeleit et al., J. Am. Soc. Nephrol. 1999
Diagnostische VerfahrenDecoy-Zellen im Urinsediment
-> Urethialzellen mit viralen Einschlusskörpern-> Beweis für Replikation des BKV
• Three decoy cells whose nucleistain positively for the SV-40 immunohistochemical stain, confirming the cytologic impressionthat these cells are infected withthe human polyoma virus. (Voidedurine, SV-40 immunoperoxidasestain, 630x)
Urinsediment mit Decoy-Zellen(Infektion tubulärer Epithelialzellen mit BK Virus)
- Vergrößerter, hyperchromatischer Nucleus(wie bei malignen Zellen)
Intranukleäre basophile virale Einschlüsse in tubulären Epithelzellen Immunhistologie (SV40 T Antigen)mit tubulärem Epithelschaden, Störung der Integration der BM
160x400x
PVW=73%, NVW = 100%
Nickeleit et al., J. Am. Soc. Nephrol. 1999
Intranukleäre virale Einschlusskörper bei BKV-Nephritis
3800x 5600x
97.000x
Nickeleit et al., J. Am. Soc. Nephrol. 1999
Immunhistologie (SV40 T Antigen)
bei Abstoßungsreaktion
80x
Infiltration mit Mononukleären Zellen und Tubulitis.
Die Anwesenheit weniger viraler inclusion bodiesspricht gegen eine Virusgenese.
Differenzierende PCR zum Nachweis von Polyoma-Viren
Deutsches Konsiliarlaborfür Polyomaviren:Frau Dr. K. Dörries,Institut für VirologieUniversität Wü[email protected]
Auch u.a. - Charité Berlin- Uni Münster- TU München- Uni Tübingen
PCR aus Blutplasma (Hirsch et al., NEJM 2002):Sensitivität: 100%Spezifität: 88%NVW: 100%PVW: 50%
- Verschiedene Protokolle, z. B. real-time PCR, competitive PCR-> Viruslast > 7.700 Kopien/ml Serum ist prädiktiv für Vorliegen einer BKVN
- Verschiedene Targets, z. B. Capsid VP1-mRNA, large T, small T
Bedeutung der PCR aus Blut- BKV Virämie: nachweisbar 23 Wochen nach Transplantation (Median)
- I. d. R. vor Nephropathie nachweisbar
- Als quantitative Methode zum Therapiemonitoring geeignet
- Nach Nephrektomie schnell negativ -> Niere ist Reservoir für Virämie!!!
- PCR aus Urin weniger geeignet: -> BKV-Persistenz im Urin trotz Elimination der Viren
aus Blut und Niere-> Nachweis von BKV im Urin bei asymptomatischen
Patienten
De Bruyn and Limaye, Rev. Med.Virol. 2004
Diagnostische Verfahren
1. Decoy-Zellen in großer Anzahl im Urinsediment(16 Wochen post-TPX)
2. PCR aus Blut (Urin weniger geeignet)(23 Wochen post-TPX)
3. (Immun-) Histologie, ggf. einschließlich PCR-> Goldener Standard
CAVE: Ausschluss anderer viraler Infektionen, z. B. HSV, Adenoviren, CMV
Histologische Diagnose erfolgt i. d. R. spät (!):-> 5-6 Monate nach Nachweis von Decoyzellen im Urin -> Wochen bis Monate nach Virämie-Nachweis
-> frühe Diagnostik per Urinzytologie (Decoy) und PCR aus Blut anstreben!-> S c r e e n i n g von Risikopatienten!!!
Vorgehensweise nach Nierentransplantation
Vorgehen bei Verdacht auf BKN(Freiburger Modell; 12/2004)
Therapie durch Reduktion der Immunsuppressiva(bei frühzeitiger Therapie ist BKVN reversibel)
Hirsch et al. J. Infect. Dis. 2001
Cidofovir (Vistide)
- Nukleosid-Analogon- Aktivität in-vivo und in-vitro gegen CMV- DNA-Polymerase-Inhibitor (bei Herpesviren)- Polyomaviren haben keine DNA-Polymerase-> Mechanismus?- Renale Ausscheidung- Hohe Konzentration im Nierengewebe- Cave: Nephrotoxizität
- Dosierung: 0.25-1.0 mg/kg/Tag i. v. alle 2-3 Wochen ohne Probenicid- ausreichend Volumen zuführen- Nierenfunktion überwachen
- Wirksam nur in Kombination mit Reduktion der Immunsuppression (!)(z. B. Leflunomid anstelle von MMF)
- Evtl. Retransplantation anstreben (wenn keine aktive Infektion)
De Bruyn and Limaye, Rev.Med. Virol. 2004
Vidarabin -> Erfolg bisher nur in Einzelfällen
Therapie-Erfolg durch Cidofovir
Kadambi et al., Am. J. Transplant. 2003
Prognose
Bei histologischem Nachweis von BKVN
-> 30-50% der Patienten entwickeln eine progessive renale Dysfunktion mit Abstoßung
-> frühzeitige Diagnose durch Routinebiopsie verbessert die Prognose
Hirsch and Steiger, Lancet Infect. Dis. 2003
Unterscheidung zwischen BKN und Abstoßungsreaktion durch Immunhistologische Bestimmung des SV40 T Antigens und der
MHC Klasse II (HLA-DR) Expression (110x)
BKVN
BKVN Abstoßungsreaktion
SV40 T-Ag POSITIV negativ
MHC II negativ POSITIV
Tubulitis nein JAmitInflammation
Abstoßung
Nickeleit et al., 1998 und 2000
Mögliche Mechanismen der Malignom-Entwicklung durch BKV(-> z. B. Tumorinduktion im Hamstermodell)
Zusammenfassung BKVN- Opportunistische Infektion- Nierentropismus- Bei starker therapeutisch-indizierter Immunsuppression
nach Nieren-TPX- Diagnostik: Decoy-Zellen im Urin, Nierenhistologie,
PCR aus Blut (Monitoring)- Therapie: Cidofovir und Reduzierung der
Immunsuppression (Balance-Akt!)- Nutzen der Retransplantation?- Anzahl der Fälle unterschätzt?- BKVN nach TPX anderer Organe nur in Ausnahmefällen
(z. B. nach Herz-TPX; Menahem et al., Transplantation 2005)