Page 1
1
PENGARUH PEMBERIAN JUS BUAH ALPUKAT TERHADAP
GAMBARAN KADAR ASPARTATE TRANSMINASE ( AST ) DAN ALANINE
TRANSMINASE ( ALT ) PADA TIKUS PUTIH (Rattus norvegicus) YANG
DIINDUKSI MELOXICAM DOSIS TOKSIK
SKRIPSI
MELY
NIM O111 11 280
PROGRAM STUDI KEDOKTERAN HEWAN
FAKULTAS KEDOKTERAN
UNIVERSITAS HASANUDDIN
MAKASSAR
2015
A-PDF OFFICE TO PDF DEMO: Purchase from www.A-PDF.com to remove the watermark
Page 2
2
PENGARUH PEMBERIAN JUS BUAH ALPUKAT TERHADAP
GAMBARAN KADAR ASPARTATE TRANSMINASE (AST) DAN ALANINE
TRANSMINASE (ALT) PADA TIKUS PUTIH (Rattus norvegicus) YANG
DIINDUKSI MELOXICAM DOSIS TOKSIK
MELY
Skripsi :
Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar
Sarjana Kedokteran Hewan pada
Program Studi Kedokteran Hewan
Fakultas Kedokteran
PROGRAM STUDI KEDOKTERAN HEWAN
FAKULTAS KEDOKTERAN
UNIVERSITAS HASANUDDIN
MAKASSAR
2015
Page 3
3
HALAMAN PENGESAHAN SKRIPSI
Judul Skripsi : Pengaruh Pemberian Jus Buah Alpukat Terhadap Gambaran Kadar
Aspartate Aminotransferase (AST) dan Alanine Aminotransferase
(ALT) Pada Tikus Putih (Rattus norvegicus) Yang Diinduki
Meloxicam Dosis Toksik
Nama : Mely
NIM : O111 11 280
Disetujui Oleh,
Diketahui Oleh,
Tanggal lulus : 01 September 2015
Pembimbing Utama
Drh. Dini Kurnia Ikliptikawati, M.Sc
NIP. 19850513 201404 2 001
Pembimbing Anggota
Muh. Akbar Bahar S.Si M.Pharm .Sc.Apt
NIP. 19860516 200912 1 005
Dekan
Fakultas Kedokteran
Prof. Dr. dr. Andi Asadul Islam, Sp. Bs
NIP. 19551019 198203 1 001
Ketua Program Studi
Prof. Dr. Drh. Lucia Muslimin M.Sc
NIP. 19480307 197411 2 001
Page 4
4
PERNYATAAN KEASLIAN
Yang bertanda tangan dibawah ini :
Nama : Mely
NIM : O111 11 280
Fakultas : Kedokteran
Program Studi : Kedokteran Hewan
Dengan ini menyatakan bahwa Skripsi yang saya susun dengan judul :
Pengaruh Pemberian Jus Buah Alpukat Terhadap Gambaran Kadar
Aspartate Transminase (AST) dan Alanine Transminase (ALT) Pada Tikus
Putih (Rattus norvegicus) Yang Diinduksi Meloxicam Dosis Toksik
adalah benar-benar hasil karya saya dan bukan merupakan plagiat dari skripsi
orang lain. Apabila sebagian atau seluruhnya dari skripsi ini, terutama dalam bab
hasil dan pembahasan, tidak asli atau plagiasi, maka saya bersedia dibatalkan dan
dikenakan sanksi akademik yang berlaku.
Demikian pernyataan keaslian ini dibuat untuk dapat digunakan seperlunya.
Makassar, 01 September 2015
Pembuat pernyataan,
Mely
Page 5
5
ABSTRAK
MELY. O11111280. Pengaruh Pemberian Jus Buah Alpukat Terhadap Gambaran
Kadar Aspartate Transminase (AST) dan Alanine Transminase (ALT) pada Tikus
Putih (Rattus norvegicus) yang Diinduksi Meloxicam Dosis Toksik. Dibimbing oleh
DINI KURNIA IKLIPTIKAWATI dan AKBAR BAHAR
Alpukat (Persea americana Mill) diketahui memiliki senyawa antioksidan
yang tinggi, diantaranya glutathione, vitamin C, dan vitamin E. Beberapa senyawa
antioksidan tersebut bertindak sebagai peningkat sistem kekebalan tubuh dan
berperan sebagai penangkal radikal bebas. Dengan aktifitasnya sebagai antioksidan,
alpukat memiliki kemampuan sebagai hepatoprotektor yang dapat melindungi sel
hati. Kerusakan sel hati dapat terjadi karena adanya infeksi maupun aktifitas radikal
bebas yang masuk dalam tubuh. Salah satu radikal bebas yang berpotensi
menimbulkan kerusakan hati adalah senyawa kimia atau obat-obatan seperti
meloxicam. Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui bahwa jus buah alpukat
dapat menurunkan kadar Aspartate Transminase (AST) dan Alanine Transminase
(ALT) terhadap efek meloxicam dosis toksik. Penelitian ini merupakan penelitian
eksperimental laboratorium dengan menggunakan 24 ekor tikus jantan yang dibagi
dalam empat kelompok perlakuan. Kelompok pertama diberi Na CMC 1 % sebagai
kontrol negatif, kelompok kedua diberi suspensi meloxicam 30 mg/kgBB sebagai
kontrol positif, kelompok ketiga diberi meloxicam 30 mg/kgBB dan jus buah alpukat
dengan dosis 5 gr/kgBB, kelompok keempat diberi meloxicam 30 mg/kgBB dan jus
buah alpukat dengan dosis 10 gr/kgBB. Penelitian ini dilakukan slama 8 hari dan
dilakukan pemeriksaan kadar AST dan ALT pada hari ke-1 dan hari ke-8.. Analisis
data menggunakan uji statistik Anova Two Way With Replication, dan bila ada
perbedaan dilanjutkan dengan uji T-test (α=0,05). Uji perbandingan antara keempat
kelompok sesudah perlakuan berupa pemberian jus buah alpukat menggunakan uji
Anova Two Way With Replication menunjukkan bahwa terdapat perbedaan secara
nyata antara rerata keempat kelompok baik itu penurunan kadar AST dan ALT
dengan P<0,05. Pada kelompok perlakuan I dan perlakuan II terjadi penurunan kadar
AST sebesar 73,83 IU/L dan 60,17 IU/L, sedangkan kadar ALT sebesar 25,4 IU/L
dan 20,6 IU/L. Kesimpulannya adalah pemberian jus buah alpukat dapat menurunkan
kadar AST dan ALT pada tikus putih yang diinduksi meloxicam dosis toksik.
Kata kunci : jus buah alpukat, meloxicam, aspartate transminase, alanine
transminase
Page 6
6
ABSTRACT
MELY. O11111280. Pengaruh Pemberian Jus Buah Alpukat Terhadap Gambaran
Kadar Aspartate Transminase (AST) dan Alanine Transminase (ALT) pada Tikus
Putih (Rattus norvegicus) yang Diinduksi Meloxicam Dosis Toksik. Dibimbing oleh
DINI KURNIA IKLIPTIKAWATI dan AKBAR BAHAR
Avocadoes (Persea americana Mill) are known to contain highly antioxidant
compounds such as glutathione, Vitamin C and Vitamin E. These organic compounds
boost the immune system and act as a free radical scavenger. As an antioxidant,
avocados also hepatoprotectively preserve liver cells. Infection and free radical
activities can because damage to the liver. Some chemical compounds and drugs like
meloxicam are potentially dangerous example of free radicals. The goal of this
research is to acknowledge that avocado juice reduces the level of Aspartate
Transminase, (AST) and Alanine Transminase, (ALT) against the effects of toxic
dose of meloxicam using 24 rats, this research is a laboratory experiment carried out
by four individual group is given 30 mg/kgBB of meloxicam suspension for a positif
control. The third group is given 30 mg/kgBB of meloxicam and 5 gr/kgBB of
avocado juice, the fourth group is given 30 mg/kgBB of meloxicam and 10 gr/kgBB
of avocado juice. The study was conducted over 8 days, then examined the levels of
AST and ALT in 1st day and 8
th day. The result were analyzed by Anova Two Way
With Replication, then followed by T-test (α=0,05) if there were difference. Test
comparisons among the four groups after treatment with avocado juice using Anova
Two Way With Replication test showed that there were significant differences
between the mean of the four groups either decreased levels of AST and ALT with
p<0,05. In the treatment group I and treatment group II decreased AST by 73,83 IU/L
and 60,17 IU/L and a decreased levels of ALT by 25,4 IU/L and 20,6 IU/L. the
conclusion was that avocado juice decrease levels of AST and ALT in rat exposed to
meloxicam toxic doses.
Key words : avocado juice, meloxicam, aspartate transminase, alanine transminase
Page 7
7
KATA PENGANTAR
Segala puji syukur penulis panjatkan hanya kepada Tuhan YME yang telah
memberikan nikmat dan karunia-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi
yang berjudul “Pengaruh Pemberian Jus Buah Alpukat Terhadap Gambaran Kadar
Aspartate Transminase (AST) dan Alanine Transminase (ALT) Pada Tikus Putih
(Rattus norvegicus) Yang Diinduki Meloxicam Dosis Toksik” ini.
Proses penyusunan skripsi ini merupakan sebuah proses dan perjalanan panjang yang
tidak lepas dari dukungan banyak pihak, penulis mengucapkan terima kasih kepada :
1. Drh. Dini Kurnia Ikliptikawati, M.Sc dan Muh. Akbar Bahar S.Si.
M.Pharm.Sc.Apt sebagai dosen pembimbing skripsi yang telah memberikan
bimbingan dan nasihat penuh kesabaran dan rasa semangat selama penelitian
penyusunan skripsi ini.
2. Prof. Dr. dr. Andi Asadul Islam, Sp.BS sebagai Dekan Fakultas Kedokteran
Universitas Hasanuddin.
3. Prof. Dr. Drh. Lucia Muslimin, M.Sc sebagai Ketua Program Studi
Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin.
4. Drh. Wahyuni dan Andi Dian Permana S.Farm. Apt. sebagai dosen pembahas
dan penguji dalam seminar proposal dan hasil yang telah memberikan
masukan-masukan dan penjelasan untuk perbaikan penulisan skripsi ini.
5. Drh. Maghfira Satya Apada. sebagai pembimbing akademik yang telah
banyak memberi nasihat dan bimbingannya selama penulis kuliah di Program
Studi Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin.
6. Seluruh staf Dosen, Pegawai di Program Studi Kedokteran Hewan Fakultas
Kedokteran Universitas Hasanuddin yang telah memberikan dukungan penuh
bagi penulis selama kuliah.
7. Keluarga besar saya, ayahanda Thamrin Ijaya, ibunda Rita Liem, dan kakak
saya Vivianty, Fredy, Jemmy, Ricky dan Yogie. yang tidak henti-hentinya
memberikan dukungan moril, doa, kasih sayang, dan tentunya materil
sehingga peneliti mampu menyelesaikan skripsi ini.
8. Teman yang saya sayangi Tri Astuti, Heny Hastuti dan Rini Anggraini S yang
selalu memberikan semangat dalam penyusunan skripsi ini.
9. Teman yang saya sayangi Adlend, Christin Lupita, Tresiaty Oriza, Elvi
Susanti, Novelin Inriani dan Riswulan yang selalu memberikan dukungan
moril maupun doa.
10. Eko Pieter Santoso. kakak yang selalu memberikan dukungan moril maupun
doa dalam penyusunan skripsi ini.
Page 8
8
11. Teman sepenelitian Amelia Ramadhani Anshar yang telah bekerjasama
dengan baik dalam penelitian ini.
12. Micky Idil Pratama Fakultas Hukum Universitas Hasanuddin. teman yang
selalu memberikan semangat dalam penyusunan skripsi ini.
13. Ibu Cia bagian Laboratorium Biofarmasi dan Seluruh Asisten Laboratorium
Biofarmasi yang telah banyak membantu dalam penelitian ini.
14. Teman doa yang saya kasihi Andi Baratu Lestari Fakultas Kedokteran Gigi
Universitas Hasanuddin dan Henrikus Irawan Pendidikan Dokter Universitas
Hasanuddin yang selalu memberikan semangat dalam menjalankan penelitian.
15. Teman seangkatan 2011, ‘Clavata’, yang telah menjadi teman seperjuangan
dari awal masuk menjadi mahasiswa kedokteran hewan dan membantu serta
memberikan dukungan selama penelitian.
16. Kakak-kakak angkatan 2010 ‘V-Gen’, yang telah memberikan sebagian
ilmunya bagi penulis selama kuliah.
17. Adik-adik angkatan 2012 yang telah memberikan penulis kesempatan untuk
belajar kembali lagi materi sebelumnya sebagai asisten laboratorium klinik.
Penulis sadar tulisan ini jauh dari kesempurnaan, namun penulis berharap tulisan ini
dapat bermanfaat untuk kemajuan ilmu pengetahuan.
Makassar, 01 September 2015
MELY
Page 9
9
DAFTAR ISI
Halaman
HALAMAN JUDUL .................................................................................................... i
HALAMAN PENGESAHAN ..................................................................................... ii
PERNYATAAN KEASLIAN .................................................................................... iii
ABSTRAK .................................................................................................................. iv
KATA PENGANTAR ................................................................................................ vi
DAFTAR ISI ............................................................................................................. viii
DAFTAR GAMBAR ................................................................................................... x
DAFTAR TABEL ...................................................................................................... xi
BAB I. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang ........................................................................................................ 1
1.2 Rumusan Masalah ................................................................................................... 2
1.3 Tujuan Penelitian .................................................................................................... 2
1.4 Manfaat Penelitian .................................................................................................. 3
1.5 Hipotesis .................................................................................................................. 3
1.6 Keaslian Penelitian .................................................................................................. 3
BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Tanaman Alpukat (Persea americana Mill) ........................................................... 4
2.1.1 Kandungan dan Manfaat Buah Alpukat ............................................................... 5
2.2 Alpukat Sebagai Antioksidan .................................................................................. 6
2.3 Meloxicam............................................................................................................... 7
2.4 Hati .......................................................................................................................... 9
2.4.1 Anatomi Hati ........................................................................................................ 9
2.4.2 Fisiologi Hati ...................................................................................................... 11
2.5 Aspartate Transminase (AST) dan Alanine Transminase (ALT) ....................... 13
Page 10
10
2.6 Efek Samping Meloxicam ..................................................................................... 14
2.7 Hewan Percobaan ........................................................................................................... 15
2.8 Alur Penelitian ............................................................................................................... 17
BAB 3. METODOLOGI PENELITIAN
3.1 Waktu dan Tempat Penelitian ........................................................................................ 18
3.2 Jenis Penelitian ............................................................................................................... 18
3.3 Rancangan Penelitian ..................................................................................................... 18
3.4 Materi Penelitian ............................................................................................................ 19
3.4.1 Sampel ......................................................................................................................... 19
3.4.2 Alat .............................................................................................................................. 19
3.4.3 Bahan .......................................................................................................................... 19
3.5 Metode Penelitian .......................................................................................................... 20
3.5.1 Penyiapan Bahan Penelitian ........................................................................................ 20
3.5.2 Perlakuan Terhadap Hewan Uji .................................................................................. 20
3.5.3 Pemeriksaan Kadar AST dan ALT ............................................................................. 21
3.5.4 Pengamatan dan Pengumpulan Data ........................................................................... 21
3.6 Analisis Data .................................................................................................................. 21
BAB 4. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Aspartate Transminase (AST) ....................................................................................... 22
4.2 Alanine Transminase (ALT) .......................................................................................... 26
BAB 5. PENUTUP
5.1 Kesimpulan ................................................................................................................... 32
5.2 Saran .............................................................................................................................. 32
DAFTAR PUSTAKA ......................................................................................................... 33
Page 11
11
DAFTAR GAMBAR
1. Tanaman dan Buah Alpukat .................................................................................... 5
2. Organ Internal Pada Anjing ..................................................................................... 10
3. Anatomi Hati Normal Pada Anjing .......................................................................... 11
4. Alur Penelitian ......................................................................................................... 17
5. Rancangan Penelitian ............................................................................................... 18
6. Kadar AST Sebelum Perlakuan (Hari ke-0) Pada Tikus Putih ................................ 22
7. Kadar AST Sesudah Perlakuan (hari ke-8) Pada Tikus Putih ................................. 23
8. Kadar AST Sebelum Perlakuan dan Sesudah Perlakuan Pada Tikus Putih ............ 24
9. Kadar ALT Sebelum Perlakuan (Hari ke-0) Pada Tikus Putih ................................ 26
10. Kadar ALT Sesudah Perlakuan (hari ke-8) Pada Tikus Putih.................................. 27
11. Kadar ALT Sebelum Perlakuan dan Sesudah Perlakuan Pada Tikus Putih ............. 28
Page 12
12
DAFTAR TABEL
1. Komposisi Kimiawi Buah Alpukat ................................................................... 5
Page 13
13
DAFTAR LAMPIRAN
1. Hasil Penimbangan Berat Badan Tikus Wistar Jantan Sebelum Perlakuan .......... 36
2. Hasil Penimbangan Berat Badan Tikus Wistar Jantan Sesudah Perlakuan .......... 37
3. Volume pemberian Na CMC 1 % dan Meloxicam .............................................. 38
4. Volume pemberian Na CMC 1 % dan Jus Buah Alpukat ..................................... 39
5. Perhitungan Dosis Meloxicam .............................................................................. 40
6. Tabel Konversi Dosis ............................................................................................ 42
7. Hasil pemeriksaan kadar AST dan ALT hari ke-0 ................................................ 43
8. Hasil pemeriksaan kadar AST dan ALT hari ke-8 ................................................ 44
9. Hasil Uji Two Way Anova With Replication Kadar AST ...................................... 45
10. Hasil Uji Two Way Anova With Replication Kadar ALT ..................................... 46
11. Hasil Uji T-test Kadar AST .................................................................................. 47
12. Hasil Uji T-test Kadar ALT .................................................................................. 48
Page 14
14
1. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Meloxicam merupakan salah satu obat-obatan yang umum digunakan pada
hewan kesayangan khususnya pada klinik di kota Makassar. Obat tersebut digunakan
untuk meringankan rasa sakit, nyeri, kekakuan dan bengkak. Meloxicam merupakan
obat analgetik golongan Non Steroid Anti Inflammatory Drugs (NSAID) yang
memiliki indeks terapi yang tinggi dibandingkan NSAID yang lainnya. Obat ini
bekerja dengan menghentikan produksi suatu zat tubuh yang menyebabkan rasa sakit
seperti prostaglandin. Tetapi, dalam penggunaan dalam jangka panjang dan melebihi
dari dosis yang ditetapkan dapat menyebabkan perforasi yang serius dan berefek pada
hati sehingga terjadi peningkatan pada enzim yang terdapat pada sel hati (Sparkes et
al, 2010). Beberapa kasus yang pernah terjadi akibat penggunakan meloxicam antara
lain terjadi pada rat, anjing maupun kucing bahwa setelah pemberian meloxicam
menyebabkan kerusakan jaringan tertinggi terdapat pada organ hati dan ginjal (Busch
et al, 1998).
Menurut Food Animal Recidue Avoidance Databank (FARAD) dan Food and
Drug Administration (FDA), meloxicam merupakan salah satu NSAID yang
dimasukkan sebagai extralabel drugs. Label ini dimaksudkan sebagai peringatan
kepada dokter hewan mengenai resiko serius terkait dengan penggunaan obat tersebut
secara berulang-ulang. Resiko serius yang dapat terjadi berupa gagal ginjal, gangguan
fungsi hati hingga kematian pada kucing (Geof et al, 2008).
Hati merupakan kelenjar terbesar dalam tubuh yang mempunyai fungsi
kompleks. Salah satu fungsi hati adalah detoksikasi yang dilakukan melalui
mekanisme oksidasi, reduksi, hidrolisis atau konjugasi(Pramushinta, 2008). Tetapi,
hati dapat mengalami beberapa perubahan diantaranya adalah nekrosis yang dapat
disebabkan oleh pengaruh langsung agen yang bersifat toksik. Kerusakan hati dapat
diidentifikasi dengan cara mengukur substansi-substansi dalam serum yang berasal
dari hati antara lain Serum Glutamic Oxaloacetic Transaminase (SGOT) atau
Aspartate Transminase (AST) dan Serum Glutamic Pyruvic Transaminase (SGPT)
atau Alanine Transminas (ALT) (Sari, 2008).
Untuk mengatasi efek akibat meloxicam pemilik hewan maupun dokter
hewan mencari pengobatan alternatif seperti dengan menggunakan obat tradisional
berupa tanaman yang mengandung antioksidan tinggi sehingga dapat menurunkan
efek kerusakan hati . Adapun tanaman yang mengandung antioksidan salah satunya
adalah alpukat. Alpukat merupakan salah satu buah yang mudah didapatkan di
Sulawesi Selatan (Rukmana, 1997) dan dilaporkan mengandung glutathione yang
bertindak sebagai antioksidan (Dorantes, 2006). Selain mengandung glutathione,
alpukat juga mengandung beberapa vitamin Buah alpukat mengandung antioksidan
eksogen dan beberapa vitamin seperti vitamin A, riboflavin (vitamin B2), vitamin E,
dan vitamin C (Berdanier et al., 2008). Riboflavin (vitamin B2) pada alpukat
memiliki efek antioksidan yang berperan sebagai prekursor Flavin Adenina
Dinukleotida (FAD) yakni coenzim yang dibutuhkan oleh glutation reduktase
(Berdanier et al., 2008).
Page 15
15
Beberapa hasil dari penelitian menjelaskan khasiat dari jus buah alpukat
antara lain penelitian yang dilakukan oleh Sagala (2010), menyatakan bahwa hasil
dari penelitian yang dilakukan menjelaskan efek dari jus buah alpukat yang bertindak
sebagai antioksidan dapat menghambat kerusakan dari mukosa lambung. Hasil dari
penelitian tersebut menjelaskan bahwa kelompok perlakuan yang mendapatkan
pemberian obat NSAID berupa aspirin tanpa jus buah alpukat didapatkan sebagian
besar sampel dengan kerusakan berat yakni sebanyak 28 sampel dari 30 sampel.
Sedangkan kelompok perlakuan yang mendapatkan pemberian aspirin disertai jus
buah alpukat didapatkan sampel dengan kerusakan berat hanya sebanyak 6 sampel
dari 30 sampel.
Indikator yang dilihat pada penelitian ini antara lain Aspartate Transminase
(AST) dan Alanine Transminase (ALT). Sebab enzim yang terkandung di dalam
serum yang diproduksi dari sel-sel hati merupakan indikator kerusakan sel hepar.
1.2 Rumusan Masalah
Berdasarkan latar belakang yang telah diuraikan, maka rumusan masalah
sebagai berikut :
1. Bagaimana gambaran kadar AST dan ALT pada tikus putih (Rattus
norvegicus) yang diinduksi perlakuan meloxicam dosis toksik ?
2. Bagaimana pengaruh pemberian jus buah alpukat terhadap gambaran kadar
AST dan ALT dapat mengobati kerusakan hati pada tikus putih (Rattus
norvegicus) yang diinduksi meloxicam dosis toksik ?
1.3 Tujuan Penelitian
1.3.1 Tujuan Umum
Untuk mengetahui gambaran kadar AST dan ALT terhadap efektifitas jus
buah alpukat setelah pemberian meloxicam dosis toksik.
1.3.2 Tujuan Khusus
Adapun tujuan khusus dari penelitian ini adalah :
1. Untuk mengetahui gambaran kadar AST dan ALT pada tikus putih (Rattus
norvegicus) yang diinduksi meloxicam dosis toksik.
2. Untuk mengetahui pengaruh jus buah alpukat terhadap gambaran kadar AST
dan ALT pada tikus putih (Rattus norvegicus) yang diinduksi meloxicam
dosis toksik.
Page 16
16
1.4 Manfaat Penelitian
1. Aspek Teoritis
Memberikan penjelasan ilmiah yang jelas tentang pengaruh jus buah alpukat dalam
menurunkan kadar AST dan ALT pada tikus putih (Rattus norvegicus) yang diberi
meloxicam dosis toksik.
2. Aspek Aplikatif
• Memberikan informasi ilmiah bagi dokter hewan dan masyarakat tentang
khasiat jus buah alpukat saat hewan kesayangan mengalami efek samping dari
meloxicam.
• Bahan referensi untuk penelitian selanjutnya.
1.5 Hipotesis
Pemberian jus buah alpukat efektif menurunkan kadar AST dan ALT pada
tikus putih (Rattus norvegicus) yang diberikan meloxicam dosis toksik.
1.6 Keaslian Penelitian
Penelitian mengenai pengaruh pemberian jus buah alpukat terhadap gambaran
kadar AST dan ALT pada tikus putih (Rattus norvegicus) yang diinduksi meloxicam
dosis toksik belum pernah dilaporkan. Penelitian yang serupa sebelumnya pernah
dilakukan oleh Al-Rekabil et al pada tahun 2009 dengan judul “ Effects of subchronic
exposure to meloxicam on some hematological, biochemical and liver
histopatological parameters in rats ”. Pada penelitian tersebut memperoleh hasil
bahwa terjadi peningkatan yang signifikan pada kadar serum enzim pada hati dan
pada studi histopatologi menunjukkan adanya lesi pada hati. Selain itu penelitian
mengenai Meloxicam pernah dilakukan oleh Ulrich Busch et al pada tahun 1998
dengan judul “ Pharmacokinetics of Meloxicam in Animals and Relevance to
Humans”. Pada penelitian tersebut menjelaskan tentang farmakokinetik dari
meloxicam.
Page 17
17
2. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Tanaman Alpukat (Persea americana Mill)
Tanaman alpukat (Persea americana, Mill) merupakan tanaman yang berasal
dari daratan tinggi Amerika Tengah dan memiliki banyak varietas yang tersebar di
seluruh dunia. Alpukat secara umum terbagi atas tiga tipe: tipe West Indian, tipe
Guatemalan, dan tipe Mexican. Daging buah berwarna hijau di bagian bawah kulit
dan menguning kearah biji. Warna kulit buah bervariasi, warna hijau karena
kandungan klorofil atau hitam karena pigmen antosiasin (Lopez, 2002).
Secara resmi antara tahun 1920 – 1930 Indonesia telah mengintroduksi 20
varietas alpukat dari Amerika Tengah dan Amerika Serikat untuk memperoleh
varietas-varietas unggul guna meningkatkan kesehatan dan gizi masyarakat,
khususnya di daerah dataran tinggi. Pada daerah tropis seperti Indonesia, tanaman
alpukat dapat tumbuh subur di atas dataran rendah sampai dataran tinggi yang
berketinggian 2,000 m di atas permukaan laut (Lopez, 2002).
Berikut ini adalah toksonomi tanaman alpukat (Plantamor,2012):
� Kingdom : Plantae (Tumbuhan)
� Subkingdom : Tracheobionta (Tumbuhan berpembuluh)
� Super Divisi : Spermatophyta (Menghasilkan biji)
� Divisi : Magnoliophyta (Tumbuhan berbunga)
� Kelas : Magnoliopsida (Berkeping dua/dikotil)
� Sub Kelas : Magnoliidae
� Ordo : Laurales
� Famili : Lauraceae
� Genus : Persea
� Spesies : Persea americana Mill
Buah alpukat jenis unggul berbentuk lonjong, bola atau bulat telur dan bulat
tidak simetris, panjang 9 – 11,5 cm, memiliki massa 0,25 – 0,38 kg, berwarna hijau
atau hijau kekuningan, berbintik – bintik ungu, buahnya memiliki kulit yang lembut
dan memiliki warna yang berbeda-beda. Biasanya warna buah alpukat bervariasi dari
warna hijau tua hingga ungu kecoklatan. Buah alpukat berbiji satu dengan bentuk
seperti bola berdiameter 6,5 – 7,5 cm, keping biji berwarna putih kemerahan. Buah
alpukat memiliki biji yang besar berukuran 5,5 x 4 cm (Alfansuri, 2012).
Tanaman alpukat tumbuh baik di lingkungan tropis dengan suhu sekitar 25-
30˚ C pada siang hari dan 15-20˚ C pada malam hari (Quane, 2010). Curah hujan
minimum yang diperlukan adalah 750-1000 mm/tahun dan kebutuhan cahaya
matahari mencapai 40-80%. Keasaman tanah yang baik berkisar 5,6-6,4 (sedikit asam
sampai netral). Umumnya tanaman alpukat tumbuh di dataran rendah sampai dataran
tinggi (5-1500 m dpl), namun, akan tumbuh subur dengan hasil memuaskan pada
ketinggian 200-1000 m dpl (Prihatman, 2000). Daerah sentra produksi alpukat adalah
Page 18
18
Jawa Barat, Jawa Timur, sebagian Sumatera (Sumatera Utara, Sumatera Barat, NAD,
Sulawesi Selatan), dan Nusa Tenggara (Prihatman, 2000 ; Rukmana, 1997)
Gambar 2.1 : Tanaman dan Buah Alpukat (Sumber : Chandra et al, 2013)
2.1.1 Kandungan dan Manfaat Buah Alpukat
Alpukat merupakan buah yang sangat bergizi, mengandung 3-30 persen
minyak dengan komposisi yang sama dengan minyak zaitun dan banyak mengandung
vitamin (Samson, 1980). Buah alpukat mengandung antioksidan eksogen dan
beberapa vitamin seperti vitamin A, riboflavin (vitamin B2), vitamin E, dan vitamin
C (Berdanier et al., 2008). Menurut Nutrient data (2010), selain vitamin tersebut,
alpukat juga memiliki vitamin K, tiamin, niasin, vitamin B6, folat dan vitamin B12
yang juga berfungsi sebagai antioksidan. Riboflavin (vitamin B2) pada alpukat
memiliki efek antioksidan dengan berperan sebagai prekursor Flavin Adenina
Dinukleotida (FAD), coenzim yang dibutuhkan oleh glutation reduktase, sedangkan
selenium yang terkandung memiliki efek antioksidan pada enzim glutation
peroksidase (Berdanier et al., 2008).
Antioksidan eksogen yang dimiliki alpukat adalah glutation. Glutation
tersebut mencapai 17,7 mg per 100 gram alpukat. Jika dibandingkan dengan pisang,
apel, blewah, maupun anggur, kandungan glutation alpukat mencapai 3 kali lipat
(Dorantes, 2006).
Adapun komposisi kimiawi buah alpukat dalam 100 gram daging buah
alpukat dapat dilihat pada tabel 1 :
Tabel 1 : Komposisi Kimiawi Buah Alpukat
Komponen Kadar
Energi buah (kal) 85 - 233
Air (%) 67,49 - 84,30
Protein (%) 0,27 - 1,7
Lemak (gr) 6,5 - 25,18
Karbohidrat (gr) 5,56 - 8
Page 19
19
Sumber : Kali, 1997
2.2 Alpukat Sebagai Antioksidan
Menurut Sagala (2010), menyatakan bahwa hasil dari penelitian yang
dilakukan menjelaskan efek dari jus buah alpukat yang bertindak sebagai antioksidan
dapat menghambat kerusakan dari mukosa lambung. Hasil dari penelitian tersebut
menjelaskan bahwa kelompok perlakuan yang mendapatkan pemberian obat NSAID
berupa aspirin tanpa jus buah alpukat didapatkan sebagian besar sampel dengan
kerusakan berat yakni sebanyak 28 sampel dari 30 sampel. Sedangkan kelompok
perlakuan yang mendapatkan pemberian aspirin disertai jus buah alpukat didapatkan
sampel dengan kerusakan berat hanya sebanyak 6 sampel dari 30 sampel.
Penelitian terhadap efektifitas Vitamin E yang terkandung dalam jus buah
alpukat juga dijelaskan oleh Hidayat (2013) yang menyatakan bahwa Vitamin E dapat
menurunkan kadar ALT dan AST pada tikus yang terpapar timbale per-oral. Hasil
penelitian tersebut menjelaskan terjadinya penurunan yang signifikan terhadap kadar
ALT dan AST pada kelompok yang diberikan Vitamin E. Vitamin E tersebut mampu
berperan sebagai antioksidan pemutus rantai reaksi dalam melindungi hepatosit dari
radikal bebas dan menetralisir efek yang ditimbulkan dari paparan yang bersifat
toksik serta sebagai antioksidan preventif. Vitamin E berperan sebagai antioksidan
preventif dengan cara menghambat tahap inisiasi pembentukan radikal bebas
(Patrick,2006).
Antioksidan adalah senyawa yang mampu menghambat oksidasi molekul
target sehingga dapat melawan atau menetralisir radikal bebas. Dikenal ada tiga
kelompok antioksidan, yaitu antioksidan enzimatik, antioksidan pemutus rantai dan
antioksidan logam transisi terikat protein. Yang termasuk antioksidan enzimatik
adalah superoksida dismutase (SOD), katalase (CAT), gluthathion peroksidase (GPx),
gluthathion reduktase (GR) dan seruloplasmin. Mekanisme kerja antioksidan
Abu (gr) 0,70 - 1,4
Vitamin (mg) :
A 0,13 - 0,51
B1 0,025 – 0,12
B2 0,13 – 0,23
B3 0,79 – 2,16
B6 0,45
C 2,3 – 7
D 0,01
E 3
K 0,008
Mineral (mg) :
Ca 10
Fe 0,9
P 20
Page 20
20
enzimatik adalah mengkatalisir pemusnahan radikal bebas dalam sel. Antioksidan
pemutus rantai adalah molekul kecil yang dapat menerima atau memberi elektron dari
atau ke radikal bebas, sehingga membentuk senyawa baru stabil, misal vitamin E dan
vitamin C. Sedangkan antioksidan logam transisi terikat protein bekerja mengikat ion
logam mencegah radikal bebas (Sulistyowati, 2006).
Kandungan Vitamin C yang terdapat pada alpukat mampu membantu tubuh
dalam memproduksi pendetoks glutathione (Ide, 2010). Vitamin C memiliki struktur
sangat mirip dengan glukosa, pada sebagian besar mamalia. Vitamin C terdapat
dalam bentuk asam askorbat maupun dehidroaskorbat. Asam askorbat diabsorpsi
pada usus halus dan hampir seluruh asam askorbat dari makanan terabsorpsi
sempurna kemudian masuk kesirkulasi untuk didistribusikan ke sel-sel tubuh. Asam
askorbat dioksidasi in vivo menjadi radikal bebas askorbil. Sebagian proses reversibel
menjadi asam askorbat kembali, sebagian menjadi dehidroaskorbat yang akan
mengalami hidrolisis, oksidasi dan akhirnya diekskresi melalui urine. Vitamin C
bersifat hidrofilik dan berfungsi paling baik pada lingkungan air sehingga merupakan
antioksidan utama dalam plasma terhadap serangan radikal bebas (ROS) dan juga
berperan dalam sel. Sebagai zat penyapu radikal bebas, vitamin C dapat langsung
bereaksi dengan superoksida dan anion hidroksil, serta berbagai hidroperoksida
lemak. Sedangkan sebagai antioksidan pemutus-reaksi berantai, memungkinkan
untuk melakukan regenerasi bentuk vitamin E tereduksi (Sulistyowati, 2006).
Vitamin E (tokoferol) merupakan suatu zat penyapu radikal bebas lipofilik
dan antioksidan paling banyak dialam. Vitamin E berfungsi sebagai pelindung
terhadap peroksidasi lemak di dalam membran. Vitamin E terdiri dari struktur
tokoferol, dengan berbagai gugus metil melekat padanya dan sebuah rantai sisi fitil.
Diantara struktur tersebut α-tokoferol adalah antioksidan yang paling kuat. Vitamin E
adalah penghenti reaksi penyebar radikal bebas yang efisien di membran lemak,
karena bentuk radikal bebas distabilkan oleh resonansi. Oleh karena itu radikal
vitamin E memiliki kecenderungan kecil untuk mengekstraksi sebuah atom hydrogen
dari senyawa lain dan menyebarkan reaksi. Bahkan radikal vitamin E berinteraksi
secara langsung dengan radikal peroksi lemak sehingga atom hidrogen lainnya
berkurang dan menjadi tokoferil quinon teroksidasi sempurna. Vitamin E radikal juga
bisa mengalami regenerasi dengan adanya vitamin C atau gluthathion (Sulistyowati,
2006).
Vitamin C dan E telah diketahui peranannya sebagai antioksidan alami
berperan penting untuk menangkal serangan radikal bebas penyebab penuaan sel dan
pemicu timbulnya berbagai penyakit. Radikal bebas adalah atom atau molekul yang
memiliki satu atau lebih electron yang tidak berpasangan, sehingga bebas berikatan
dengan berbagai sel dan jaringan serta menjadi pemicu berbagai penyakit seperti
kanker, jantung, serta terjadi penuaan dini (Astawan dan Leomitro, 2008).
2.3 Meloxicam
Meloxicam merupakan suatu senyawa terbaru dari golongan AINS (Anti-
Inflamasi Non Steroid), turunan oksikam (fenolat), yang memiliki keunggulan
kerjanya yang spesifik menghambat enzim siklooksigenase (COX-2) sehingga efek
Page 21
21
samping terhadap gastrointestinal sangat rendah dibandingkan obat-obat AINS
lainnya. Banyak studi menunjukkan bahwa meloxicam mempunyai efek samping
pada saluran pencernaan lebih rendah dibandingkan dengan NSAID yang lain,
dengan fungsinya sebagai antiinflamasi dan analgetik. Pemakaian meloxicam 15 mg
tidak memperlihatkan perbedaan dalam hal efek sampingnya terhadap saluran
gastrointestinal yang dinilai sebelum dan sesudah pengobatan (Gilman et al, 1991 ).
Meloxicam kurang berpengaruh pada mukosa lambung dibanding dengan
obat NSAID lainnya. Walaupun NSAID dalam bantuk ini seringkali dianggap kurang
menyebabkan timbulnya iritasi gastrointestinal akibat kontak langsung dengan
gastroduodenal umumnya obat dalam bentuk ini tetap memiliki efek sistemik
terutama dalam menekan sintesis prostaglandin sehingga obat ini juga harus
digunakan secara hati-hati terutama pada pasien yang telah memiliki gangguan
mukosa gastroduodenal. Efek samping lain yang mungkin dijumpai pada pengobatan
NSAIDs antara lain adalah reaksi hipersensitivitas, gangguan fungsi hati dan ginjal
serta penekanan hematopoetik (Day et al, 2000).
Meloxicam digunakan dalam kontrol muskuloskeletal akut peradangan dan
nyeri pada kucing dan juga digunakan dalam penanganan nyeri kronis dan
peradangan. Dosis Meloxicam pada tikus adalah 0,2 hingga 10 mg / kg BB. Pada
anjing yang menerima 0,3 mg / kgBB per hari dan 0,5 mg / kgBB per hari selama
enam minggu terlihat adanya pembesaran hati dan ginjal. Ketika hati diperiksa secara
mikroskopis, terlihat adanya nekrosis pada sel hati tiga anjing yang diinduksi 0,5 mg /
kgBB per hari. Dan hati merupakan organ yang paling sensitif , untuk itu dilakukan
pengukuran enzim hati antara lain enzim aminotransferase. Adapun enzim
aminotransferase antara lain aminotransferase aspartat (AST atau SGOT) dan alanine
aminotransferase (ALT atau SGPT). Enzim ini biasanya terkandung dalam sel hati.
Jika hati mengalami kerusakan, maka sel-sel hati akan mengeluarkan enzim ke dalam
darah dalam jumlah yang tinggi dan terlihat pada kasus shock atau keracunan obat
(Al-Rekabil et al, 2009).
Profil farmakokinetik nonsteroidal anti-inflammatory meloxicam pada
sejumlah spesies hewan termasuk rat, mouse, anjing, mini-pig, dan punt setelah
pemberian meloxicam terlihat waktu konsentrasi profil plasma untuk meloxicam pada
rat dan anjing sebanding dengan manusia dibandingkan antara manusia dan mouse,
mini-pig, dan babun. Kerusakan jaringan tertinggi akibat meloxicam pada rat dan
mini-pig terlihat pada hati dan ginjal. Sebaliknya, kerusakan rendah akibat
meloxicam ditemukan dalam sistem saraf pusat. Seperti pada manusia, meloxicam
beredar terutama dalam bentuk senyawa induk dalam plasma rat, mouse, anjing,
mini-pig, dan babun (Busch et al, 1998) .
Meloxicam umumnya diberikan untuk mengontrol rasa sakit arthritis pada
anjing meskipun dapat diberikan untuk kondisi keadaan lainnya seperti cedera,
kanker, operasi, infeksi gigi, dan lain-lain. Pada anjing, meloxicam biasanya
diberikan sekali sehari dalam bentuk cairan. Meloxicam dilengkapi dengan jarum
suntik dosis khusus yang ditandai untuk menunjukkan berapa banyak yang dapat
diberikan untuk berat badan hewan peliharaan. Meloxicam dapat digunakan pada
kucing, tapi dengan hati-hati. Karena dosis meloxicam yang salah dapat berbahaya
bagi kucing, sehingga dalam pemberian meloxicam pada kucing penting untuk tidak
Page 22
22
menjatuhkan tetes langsung ke dalam mulut kucing dari botol sehingga bisa dengan
mudah memberikannya dengan dosis berlebih. Pada kucing, meloxicam baik
diberikan dengan suntikan tunggal satu kali saat operasi (disetujui oleh FDA) atau
jangka panjang dua sampai tiga kali per minggu. Pasien yang menggunakan
meloxicam dalam jangka panjang perlu dipertimbangkan dengan melakukan
pemeriksaan fisik yang lengkap dan tes darah skrining awal untuk mengidentifikasi
faktor-faktor, seperti penyakit hati atau ginjal yang mungkin dapat menghalangi
penggunaan meloxicam atau lainnya NSAID (Stelio et al, 2007).
2.3 Hati
2.4.1 Anatomi Hati
Hati merupakan organ yang memiliki peran penting dalam metabolisme dan
memiliki beberapa fungsi dalam tubuh. Unit fungsional dasar hati adalah lobulus hati
yang berbentuk silindris. Lobulus hati dibangun sekeliling vena sentralis dan terdiri
atas banyak lempengan sel hepatik yang tersebar secara sentrifugal dari vena sentralis
seperti jari-jari roda. Selain itu, hati mempunyai venula porta dan arteriola hepatic di
dalam septum interlobularis. Sinusoid vena dilapisi oleh dua jenis sel, yaitu sel
endotel yang khas dan sel-sel Kupfer yang besar (Guyton, 1997).
Hati tikus secara anatomis terletak di rongga abdomen dan dihubungkan ke
diafragma melalui alat penggantung ligamentum triangulare dextrum, ligamentum
triangulare sinistrum, dan ligamentum falciformis hepatis. Selain itu, hati
dihubungkan ke ginjal kanan oleh ligamentum hepatorenale (Ressang 1963).
Aktivitas hati secara umum ialah aktivitas sekresi dan eksresi, aktivitas metabolik
(biosintesis senyawa-senyawa dalam tubuh, penyimpanan) dan detoksifikasi
senyawa-senyawa toksik melalui biotransformasi (Koolman & Röhm, 2001).
Hati dapat mengalami beberapa perubahan diantaranya ialah degenerasi.
Degenerasi hidropis dan degenerasi berbutir kadang terlihat pada sel-sel hati. Hati
juga dapat mengalami nekrosis yang disebabkan oleh dua hal, yaitu toksopatik
disebabkan oleh pegaruh langsung agen yang bersifat toksik dan trofopatik
disebabkan oleh kekurangan oksigen, zat-zat makanan, dan sebagainya (Ressang
1984).
Hati (Hepar) merupakan kelenjar terbesar dalam tubuh yang menyumbang
sekitar 2 persen dari berat tubuh total. Hepar bertekstur lunak, lentur, dan terletak di
bagian atas cavitas abdominalis tepat di bawah diaphragma. Sebagian besar hepar
terletak di profunda arcus costalis dextra dan hemidiaphragma dextra memisahkan
hepar dari pleura, pulmo, pericardium, dan cor. Hepar terbentang ke sebelah kiri
untuk mencapai hemidiaphragma sinistra (Snell, 2006).
Hepar tersusun atas lobuli hepatis. Vena centralis pada masing-masing
lobulus bermuara ke venae hepaticae. Dalam ruangan antara lobulus-lobulus terdapat
canalis hepatis yang berisi cabang-cabang arteria hepatica, vena portae hepatis, dan
sebuah cabang ductus choledochus (trias 12 hepatis). Darah arteria dan vena berjalan
di antara sel-sel hepar melalui sinusoid dan dialirkan ke vena centralis (Sloane,
2004).
Page 23
23
Hati mempunyai selubung peritoneum dan menerima darah dari vena porta.
Hati terdiri dari dua sel utama (Bijanti et al, 2010):
• Hepatosit : berasal dari epitel yang aktif secara metabolik, membentuk
empedu dan diekskresikan kedalam kanalikuli yang terletak di antara
hepatosit, kemudian masuk ke saluran ekstrahepatik terakhir masuk kedalam
saluran atau duktus hepatikus communis.
• Sel Kupfer : bersifat fagosit dan merupakan bagian sistem retikuloendothelial.
Satuan anatomis yang terkecil pada hati adalah lobulus yang tersusun dari
rangkaian hepatosit yang merupakan unit mikroskopik dan fungsional organ hati.
Setiap lobulus merupakan bentuk hexagonal yang terdiri yang terdiri atas lempeng-
lempeng sel hati berbentuk kubus yang tersusun radial mengelilingi vena sentralis.
Sedangkan sinusoid merupakan cabang vena porta dan arteri hepatica yang
merupakan kapiler di antara lempengan sel hati (Bijanti et al, 2010).
Selain cabang-cabang vena porta dan arteri hepatica yang mengelilingi bagian
perifer lobules, hati juga terdapat saluran empedu. Saluran empedu interlobular
membentuk kapiler empedu yang sangat kecil dinamakan kanalikuli yang terletak
ditengah-tengah lempengan hati. Hati mempunyai kapasitas cadangan yang besar
sehingga kerusakan hati secara klinis baru dapat diketahui jika kerusakan hati tersebut
sudah lanjut (Bijanti et al, 2010).
Hati mempunyai dua suplai darah yang berasal dari dua sumber yaitu arteri
hepatica mengatur darah langsung dari aorta dan vena porta memasukkan darah yang
telah melalui kapiler-kapiler dari limpa dan saluran cerna. Sebagian besar darah
dalam hati berasal dari vena porta dan sebagian kecil berasal dari aorta. Hepatosit
mudah terkena pengaruh oleh tekanan darah, penyaluran darah dan kadar oksigen
dalam darah, selain itu hati mempunyai kemampuan regenerasi yang baik, hal ini
dapat ditunjukkan pada kebanyakan kasus sel hati yang mati atau sakit akan diganti
dengan jaringan hati yang baru (Bijanti et al, 2010).
Gambar 2.2 : Organ Internal Pada Anjing (Sumber : Allen, 2013)
Page 24
24
Gambar 2.3 : Anatomi Hati Normal Pada Anjing (Sumber : Allen, 2013)
2.4.2 Fisiologi Hati
Hepar merupakan kelenjar terbesar dalam tubuh yang berperan dalam hampir
setiap fungsi metabolisme tubuh dan mendetoksifikasi berbagai senyawa serta racun
(Pramushinta, 2008). Pada hewan percobaan telah dibuktikan bahwa 10% parenchim
hati saja, sudah cukup untuk mempertahankan fungsi hati normal (Bijanti et al,
2010). Banyak uji fungsi hati yang telah diperkenalkan tetapi hanya beberapa saja
yang bernilai praktis untuk bidang veteriner. Hasil uji fungsi hati tergantung dari
sejumlah aktivitas enzimatik yang berada dalam sel hati (Salasia dan Hariono, 2010).
Hati mempunyai fungsi yang komplek, detoksikasi merupakan salah satu
fungsi hati yang dikerjakan oleh enzim melalui mekanisme oksidasi, reduksi,
hidrolisis atau konjugasi. Setiap hari hati mensekresikan cairan empedu, unsure
Page 25
25
utama cairan empedu meliputi : 97% air, elektrolit, garam empedu, fosfolipid,
kolesterol, dan pigmen empedu terutama bilirubin terkonjugasi. Kemampuan hati
untuk mensekresikan empedu mempunyai beberapa manfaat yang penting bagi tubuh
dalam membantu pencernaan makanan, membantu ekskresi zat yang tidak berguna
bagi tubuh dan berfungsi dalam metabolisme bilirubin (Bijanti et al, 2010).
Menurut Husadha (1996), Hati mempunyai fungsi yang sangat banyak dan
kompleks yang penting untuk mempertahankan hidup, yaitu :
a. Pembentukan Dan Ekskresi Empedu
Pembentukan dan ekskresi empedu merupakan fungsi utama hati. Hati mensekresikan
sekitar satu liter empedu setiap hari. Garam empedu inilah yang penting untuk
pencernaan dan absorbsi lemak dalam usus halus.
b. Metabolisme Karbohidrat
Metabolisme karbohidrat mencakup glikogenesis, glikogenolisis, dan
glukoneogenesis. Pada metabolisme karbohidrat, hati berperan penting dalam
mempertahankan kadar glukosa darah normal dan menyediakan energi untuk tubuh.
c. Metabolisme Protein
Metabolisme protein mencakup sintesis protein, pembentukan urea dan produk
khusus serta penyimpanan protein. Protein serum yang disintesis oleh hati adalah
albumin serta globulin alfa dan beta (gamma globulin tidak disintesis oleh hati).
Faktor pembentukan darah yang disintesis oleh hati adalah fibrinogen serta
protrombin.
d. Metabolisme Lemak
Metabolisme lemak mencakup ketogenesis, biosintesis kolesterol dan penimbunan
lemak. Hidrolisis trigliserida, kolesterol, fosfolipid, dan lipoprotein (diabsorbsi dalam
usus) menjadi asam lemak dan gliserol.
e. Penimbunan Vitamin dan Mineral
Hati berperan dalam penyimpanan zat-zat seperti vitamin larut air, B12, B3, B5, B6,
asam folat. Vitamin sukar larut air A,D,E,K juga tembaga dan besi.
f. Fungsi Pertahanan Tubuh
Hati mempunyai fungsi detoksifikasi dan fungsi perlindungan. Fungsi detoksifikasi
dilakukan oleh enzim- enzim hati yang melakukan oksidasi, reduksi, hidrolisis, atau
konjugasi zat yang kemungkinan membahayakan dan mengubahnya menjadi zat yang
Page 26
26
secara fisiologis tidak aktif. Fungsi perlindungan dilakukan oleh sel kupfer yang
terdapat di dinding sinusoid hati.
g. Detoksifikasi
Hati bertanggung jawab terhadap biotransformasi zat-zat berbahaya, misalnya obat
menjadi zat-zat yang tidak berbahaya yang kemudian diekskresikan oleh ginjal.
2.5 Alanine Transminase (ALT) dan Aspartate Transminase (AST)
Sel hepar mengandung berbagai enzim, beberapa diantaranya penting untuk
diagnostik karena dialirkan ke pembuluh darah, aktifitasnya dapat diukur sehingga
dapat menunjukkan adanya penyakit hepar, atau tingkat keparahannya. Enzim-enzim
ini adalah aspartat aminotransferase, alanine aminotransferase, dan gamma glutamil
transferase (Underwood, 1999).
Dua macam enzim yang sering digunakan dalam menilai penyakit hepar
adalah Serum Glutamic Oxaloacetic Transaminase (SGOT) atau Aspartate
Transminase (AST), dan Serum Glutamic Piruvic Transaminase (SGPT) atau Alanine
Transminase (ALT). SGOT mengerjakan reaksi antara aspartat dan asam alfa
ketoglutamat, dan SGPT mengerjakan reaksi serupa antara alanin dan asam
alfaketoglutamat (Widmann, 1995).
Menurut Widmann (1995) Life span untuk enzim pada hati seperti Serum
Glutamic Oxaloacetic Transaminase (SGOT) atau Aspartate Transminase (AST)
dalam darah adalah 12-22 jam sedangkan Life span Serum Glutamic Piruvic
Transaminase (SGPT) atau Alanine Transminase (ALT) dalam darah adalah 37-57
jam (Widmann, 1995).
Seperti yang banyak diketahui AST dan ALT adalah pemeriksaan
laboratorium untuk melihat fungsi hati (liver). Kadar nilai AST dan ALT tidak hanya
berhubungan dengan kelainan di hati saja (non-hepatik) . Tetapi, jaringan hati
mengandung lebih banyak ALT daripada AST (Meyes et al., 1991).
ALT paling banyak ditemukan dalam hati, sehingga untuk mendeteksi
penyakit hati, ALT dianggap lebih spesifik dibanding AST. Peningkatan kadar AST
dan ALT akan terjadi jika adanya pelepasan enzim secara intraseluler ke dalam darah
yang disebabkan nekrosis sel-sel hati atau adanya kerusakan hati (Wibowo, et al.,
2008). Pada kerusakan hati yang disebabkan oleh keracunan atau infeksi, kenaikan
aktivitas AST dan ALT dapat mencapai 20-100x harga batas normal tertinggi.
Umumnya pada kerusakan hati yang menonjol ialah kenaikan aktivitas SGPT
(Sadikin, 2002).
Enzim AST terdapat dalam sel-sel organ tubuh, terbanyak otot jantung,
kemudian sel-sel hepar, otot tubuh, ginjal dan pankreas. Sedangkan ALT banyak
terdapat dalam sel-sel jaringan tubuh dan sumber utama adalah sel-sel hepar.
(Sudjarwadi et al, 2013). Peningkatan kadar AST dan ALT akan terjadi jika adanya
pelepasan enzim secara intra seluler ke dalam darah yang disebabkan nekrosis sel-sel
hati atau adanya kerusakan hati secara akut (Wibowo et al, 2008). Kadar normal AST
Page 27
27
pada tikus adalah 45,7-80,8 IU/L dan kadar normal ALT tikus adalah 17,5-30,2 IU/L
(Smith, 1988)
Serum transaminase adalah indikator yang peka pada kerusakan sel-sel hepar.
AST adalah enzim sitosolik, sedangkan ALT adalah enzim mikrosomal. Kenaikan
enzim-enzim tersebut meliputi kerusakan sel-sel hepar oleh karena virus, obat-obatan
atau toksin yang menyebabkan hepatitis, karsinoma metastatik, kegagalan jantung
dan penyait hepar granulomatus dan yang disebabkan oleh alkohol. Kenaikan kembali
atau bertahannya nilai transaminase yang tinggi biasanya menunjukkan
berkembangnya kelainan dari nekrosis hepar. Maka perlu pemeriksaan secara serial
untuk mengevaluasi perjalanan penyakit hepar (Sudjarwadi et al, 2013).
2.6 Efek Samping Meloxicam
AINS mempunyai efek samping pada tiga sistem organ yaitu saluran cerna,
ginjal, dan hati. Efek yang paling sering adalah tukak peptik (tukak duodenum dan
tukak lambung) yang kadang – kadang terjadi anemia sekunder karena perdarahan
saluran cerna pada obat-obatan AINS yang tergolong non-selektif.. Pada AINS yang
tergolong selektif umumnya tidak menimbulkan efek samping gangguan pada
mukosa lambung, karena pada golongan selektif spesifik menghambat COX-2(Stelio
et al, 2007).
Efek samping pada hati dapat terjadi akibat penggunaan yang lama dan
melebihi dosis yang ditetapkan. Pada kerusakan sel hepar, terjadi perubahan jaringan
dalam hubungannya dengan reaksi melawan racun. Pada kerusakan sel hepar ini,
terjadi kerusakan membran sel dan organel yang akan menyebabkan enzim-enzim
hepar intrasel masuk ke dalam pembuluh darah sehingga kadar enzim-enzim tersebut
akan meningkat dalam darah. Gejala yang umum ditimbulkan antara lain mual,
kehilangan nafsu makan, maupun muntah. Untuk mengetahui ada tidaknya kerusakan
hati maka dilakukan pemeriksaan kimia darah untuk mengetahui kadar enzim dalam
hati. Jika pasien memiliki batas fungsi hati dan ginjal , NSAID tidak boleh digunakan
karena dapat mengurangi aliran darah melalui hati dan ginjal. Hal ini juga penting
bahwa OAINS tidak diberikan kepada pasien dehidrasi terutama pada kucing karena
dapat berefek potensial(Stelio et al, 2007).
Di dalam hepar, sebagian besar meloxicam akan berkonjugasi dengan asam
glukuronat dan sulfat. Sedangkan sisanya akan dimetabolisme oleh sitokrom P450
(CYP450). P450 merupakan enzim yang berperan penting dalam metabolisme dan
eliminasi obat. Hasil metabolisme yang dihasilkan oleh meloxicam biasanya tidak
berbahaya karena berinteraksi dengan antioksidan endogen yaitu glutathione.
Namun, jika terjadi overproduksi dari metabolit meloxicam maka cadangan
glutathione dalam hati menjadi berkurang dan metabolit menjadi menumpuk
sehingga menyebabkan kerusakan sel pada hati.
Page 28
28
2.7 Hewan Percobaan
Menurut Adiyati (2011), hewan coba merupakan hewan yang dikembang
biakkan untuk digunakan sebagai hewan uji coba. Tikus sering digunakan pada
berbagai macam penelitian medis selama bertahun-tahun. Hal ini dikarenakan tikus
memiliki karakteristik genetik yang unik, mudah berkembang biak, murah serta
mudah untuk mendapatkannya. Tikus merupakan hewan yang melakukan
aktivitasnya pada malam hari (nocturnal).
Tikus merupakan hewan mamalia yang paling umum digunakan sebagai
hewan percobaan pada laboratorium, dikarenakan banyak keunggulan yang dimiliki
oleh tikus sebagai hewan percobaan, yaitu memiliki kesamaan fisiologis dengan
manusia, siklus hidup yang relatif pendek, jumlah anak per kelahiran banyak, variasi
sifat-sifatnya tinggi dan mudah dalam penanganan (Moriwaki et al., 1994).
Adapun taksonomi tikus menurut Besselsen (2004) adalah sebagai berikut ;
� Kingdom : Animalia
� Filum : Chordata
� Sub-filum : Vertebrata
� Kelas : Mammalia
� Sub-kelas : Theria
� Ordo : Rodensia
� Sub-ordo : Scuirognathi
� Famili : Muridae
� Sub Famili : Murinae
� Genus : Rattus
� Spesies : Rattus norvegicus
Tikus putih merupakan strain albino dari Rattus norvegicus. Tikus memiliki
beberapa galur yang merupakan hasil pembiakkan sesama jenis atau persilangan.
Selain Wistar, galur tikus yang sering digunakan untuk penelitian adalah galur
Sprague dawley. Galur ini berasal dari peternakan Sprague Dawley, Madison,
Wiscoustin (Sirosis,2005).
Menurut Sirois (2005), tikus putih (Rattus norvegicus) galur Sprague dawley
termasuk ke dalam hewan mamalia yang memiliki ekor panjang. Ciri-ciri galur ini
yaitu bertubuh panjang dengan kepala lebih sempit. Telinga tikus ini tebal dan pendek
dengan rambut halus. Mata tikus putih berwarna merah. Ciri yang paling terlihat
adalah ekornya yang panjang (lebih panjang dibandingkan tubuh). Bobot badan tikus
jantan pada umur dua belas minggu mencapai 240 gram sedangkan betinanya
mencapai 200 gram. Tikus memiliki lama hidup berkisar antara 4 – 5 tahun dengan
berat badan umum tikus jantan berkisar antara 267 – 500 gram dan betina 225 – 325
gram.
Standar pemeliharaan hewan laboratorium perlu memperhatikan etik
penelitian kesehatan secara umum tercantum dalam World Medical Association
Page 29
29
Refinement adalah memperlakukan hewan percobaan secara manusiawi (humane),
memelihara hewan dengan baik, tidak menyakiti hewan, serta meminimalisasi
perlakuan yang menyakitkan sehingga menjamin kesejahteraan hewan coba sampai
akhir penelitian. Pada dasarnya prinsip refinement berarti membebaskan hewan coba
dari beberapa kondisi. Yang pertama adalah bebas dari rasa lapar dan haus, dengan
memberikan akses makanan dan air minum yang sesuai dengan jumlah yang
memadai baik jumlah dan komposisi nutrisi untuk kesehatannya. Makanan dan air
minum memadai dari kualitas, dibuktikan melalui analisa proximate makanan,
analisis mutu air minum, dan uji kontaminasi secara berkala. Analisis pakan hewan
untuk mendapatkan komposisi pakan, menggunakan metode standar
(Bousfield,2010).
Kedua, hewan percobaan bebas dari ketidak-nyamanan, disediakan
lingkungan bersih dan paling sesuai dengan biologi hewan percobaan yang dipilih,
dengan perhatian terhadap: siklus cahaya, suhu, kelembaban lingkungan, dan fasilitas
fisik seperti ukuran kandang untuk kebebasan bergerak, kebiasaan hewan untuk
mengelompok atau menyendiri. Berikutnya, hewan coba harus bebas dari nyeri dan
penyakit dengan menjalankan program kesehatan, pencegahan, dan pemantauan, serta
pengobatan tehadap hewan percobaan jika diperlukan. Penyakit dapat diobati dengan
catatan tidak mengganggu penelitian yang sedang dijalankan. Bebas dari nyeri
diusahakan dengan memilih prosedur yang meminimalisasi nyeri saat melakukan
tindakan invasif, yaitu dengan menggunakan analgesia dan anesthesia ketika
diperlukan. Euthanasia dilakukan dengan metode yang manusiawi oleh orang yang
terlatih untuk meminimalisasi atau bahkan meniadakan penderitaan hewan coba.
Hewan juga harus bebas dari ketakutan dan stress jangka panjang, dengan
menciptakan lingkungan yang dapat mencegah stress, misalnya memberikan masa
adaptasi/aklimatisasi, memberikan latihan prosedur penelitian untuk hewan. Semua
prosedur dilakukan oleh tenaga yang kompeten, terlatih, dan berpengalaman dalam
merawat/memperlakukan hewan percobaan untuk meminimalisasi stres. Hewan
diperbolehkan mengekspresikan tingkah laku alami dengan memberikan ruang dan
fasilitas yang sesuai dengan kehidupan biologi dan tingkah laku spesies hewan
percobaan. Hal tersebut dilakukan dengan memberikan sarana untuk kontak social
(bagi spesies yang bersifat sosial), termasuk kontak social dengan peneliti;
menempatkan hewan dalam kandang secara individual, berpasangan atau
berkelompok; memberikan kesempatan dan kebebasan untuk berlari dan bermain
(Fitzpatrick,2003).
Page 30
30
2.8 Alur Penelitian
Secara skematis alur penelitian sebagai berikut :
Gambar 2.4. Alur Penelitian
Pemeriksaan kadar AST dan ALT Tikus ke-n
Analisis Statistik
Hari
8
K1
Larutan Plasebo
(Na CMC)
Hari
1-7
P1
Jus buah alpukat
5g/kgBB/hari
P2
Jus buah alpukat
10g/kgBB/hari
K2
Larutan Plasebo
(Na CMC)
K1
Larutan Plasebo
(Na CMC)
K2
Meloxicam
30mg/kgBB
P1
Meloxicam
30mg/kgBB
Hari
0
P2
Meloxicam
30mg/kgBB
n Sampel
Pemeriksaan kadar AST dan ALT Tikus ke-n Hari
1
Page 31
31
3. METODOLOGI PENELITIAN
3.1 Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan pada 29 Mei - 5 Juni 2015. Penelitian
dilaksanakan di Laboratorium Biofarmasi Fakultas Farmasi Universitas Hasanuddin
dan Laboratorium Klinik Rumah Sakit Pelamonia Kota Makassar.
3.2 Jenis Penelitian
Jenis penelitian yang dilakukan adalah penelitian eksperimental laboratoris.
Penelitian eksperimental laboratoris merupakan kegiatan percobaan (experiment)
yang bertujuan untuk mengetahui ada tidaknya pengaruh yang timbul akibat dari
adanya suatu perlakuan dengan cara membandingkan kelompok yang tidak menerima
perlakuan dengan kelompok yang menerima perlakuan.
3.3 Rancangan Penelitian
Rancangan penelitian yang digunakan adala Pre-Post Test Control Group
Design. Rancangan tersebut dipilih dengan asumsi bahwa didalam suatu populasi
tertentu, tiap unit populasi adalah sama. Rancangan penelitian ini dilakukan dengan
membagi sampel dalam kelompok kontrol dan kelompok perlakuan. Rancangan ini
melibatkan lebih dari satu variabel bebas, dengan kata lain perlakuan dilakukan pada
lebih dari satu kelompok dengan bentuk perlakuan yang berbeda. Untuk memperoleh
kesimpulan mengenai perbedaan diantaranya melalui analisis data tertentu
(Notoatmodjo,2005).
Secara sistematis, rancangan penelitian dapat dilihat pada gambar 3.1 dibawah
ini :
Gambar 3.1 Rancangan Penelitian
K
S
P
K1
K2
P2 : A10
P1 : A5
Hari 0 Hari 1-7
Meloxicam Jus Buah Alpukat
D4
D3
D2
D1
Page 32
32
Keterangan :
S = Sampel
K1 = Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1 %
K2 = Kelompok kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis 30 mg/kgBB
pada hari ke-0
P1 = Kelompok perlakuan 1 dengan dosis meloxicam 30 mg/kgBB pada hari ke-0
dan dosis jus buah alpukat sebanyak 5 g/kgBB/hari selama 7 hari
P2 = Kelompok perlakuan 2 dengan dosis meloxicam 30 mg/kgBB pada hari ke-0
dan dosis jus buah alpukat sebanyak 10 g/kgBB/hari selama 7 hari
A5 = Jus buah alpukat dengan dosis 5 g/kgBB/hari
A10 = Jus buah alpukat dengan dosis 10 g/kgBB/hari
D1 = Data kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1 %
D2 = Data kelompok kontrol positif dengan pemberian Meloxicam dosis 30
mg/kgBB pada hari ke-0
D3 = Data kelompok perlakuan 1 dengan dosis meloxicam 30 mg/kgBB pada hari ke-
0 dan dosis jus buah alpukat sebanyak 5 g/kgBB/hari selama 7 hari
D4 = Data kelompok perlakuan 2 dengan dosis meloxicam 30 mg/kgBB pada hari ke-
0 dan dosis jus buah alpukat sebanyak 10 g/kgBB/hari selama 7 hari
3.4 Materi Penelitian
3.4.1 Sampel
Pada penelitian ini sampel yang digunakan adalah sebanyak 24 ekor dibagi
dalam 4 kelompok. Jumlah sampel pada masing-masing kelompok sebanyak 6 ekor.
Penentuan sampel dilakukan berdasarkan rumus Federer (1955) yaitu (k-1) (n-1) >15.
Sampel yang digunakan adalah hewan coba tikus putih jantan dewasa yang
sehat dengan bobot badan rata-rata 150 – 200 gram sebanyak 24 ekor dan berumur ±2
bulan.
3.4.2 Alat
Alat penelitian yang digunakan antara lain; sonde lambung (kanula), gelas
pengukur dan pengaduk, timbangan hewan, neraca dosis jus alpukat dan meloxicam,
kandang hewan, sekam kandang, kawat, dan wadah makanan dan minuman hewan
coba.
3.4.3 Bahan
Bahan penelitian yang digunakan antara lain Meloxicam dosis toksik 30
mg/KgBB, jus buah alpukat sebanyak 5 g/kgBB/hari dan 10 g/kgBB/hari, Natrium
Carboxy Methyl Celullose (Na CMC) 1 %, spoit 1 ml dan 3 ml, tabung penyimpanan
Page 33
33
darah, aquadest dan larutan eter. Serta bahan pemeriksaan yang digunakan dalam
penelitian adalah serum darah tikus.
3.5 Metode Penelitian
3.5.1 Penyiapan Bahan Penelitian
•••• Meloxicam
Meloxicam berbentuk suspensi yang dibuat dari sediaan tablet meloxicam yang
ditimbang sesuai dosis toksik (tunggal) untuk masing-masing tikus (30 mg/kgBB),
disuspensikan dalam larutan Na CMC 1 % sebagai pembawa meloxicam.
•••• Jus Buah Alpukat
Bahan penelitian yang digunakan adalah buah alpukat yang diperoleh dari
daerah Makassar. Buah alpukat dihaluskan menggunakan blender dan disaring
menggunakan saringan teh untuk menghasilkan jus yang lebih halus. Kemudian
dibagi sesuai dosis untuk masing-masing perlakuan yaitu 5 g/kgBB/hari dan 10
g/kgBB/hari.
•••• Larutan Plasebo
Larutan plasebo adalah larutan Na CMC 1 % yang dibuat dengan cara
melarutkan 1 gr Na CMC ke dalam 100 ml aquadest.
3.5.2 Perlakuan Terhadap Hewan Uji
• Adaptasi Hewan Coba
Sebelum penelitian dimulai, tikus diadaptasikan terlebih dahulu sesuai dengan
standar manajemen pemeliharaan hewan laboratorium selama satu minggu di
Laboratorium Biofarmasi Fakultas Farmasi Universitas Hasanuddin. Makanan
diberikan dalam jumlah tertentu berdasarkan berat badan, berdasarkan standar
laboratorium (10 gram/kg Berat Badan) dan minuman diberikan secara adLibitum.
• Pemberian Perlakuan
Tikus jantan sebanyak 24 ekor yang telah diadaptasikan selama satu minggu
dibagi menjadi 4 kelompok, yaitu kelompok control positif, kelompok control
negative, kelompok perlakuan 1 dan kelompok perlakuan 2. Pada hari ke-0,
Kelompok K1 diberi Na CMC 1 % , sedangkan pada Kelompok K2 , Kelompok P1
dan Kelompok P2 diberi Meloxicam dosis toksik 30 mg/KgBB.
Page 34
34
Pada hari ke-1, dilakukan pengambilan darah sebanyak 1 ml untuk
pemeriksaan kadar AST dan ALT pada hewan coba. Setelah dilakukan pengambilan
darah, dilanjutkan dengan pemberian jus buah alpukat sebanyak 5 g/kgBB pada
kelompok 3 dan sebanyak 10 g/kgBB pada kelompok 4. Sedangkan pada kelompok 1
(Kontrol) dan Kelompok 2 diberikan larutan placebo atau Na CMC 1 %.
Pemberian jus buah alpukat dilakukan per oral dengan menggunakan alat
bantu sonde lambung (kanula) yang bertujuan mencegah jus buah alpukat
dimuntahkan dalam jumlah tertentu setiap kali pemberian.
Setelah masa perlakuan selesai selama 7 hari, pada hari ke-8 seluruh tikus
dianastesi menggunakan larutan eter, kemudian darah diambil melalui mata dan
jantung. Pengambilan darah ini bertujuan untuk memeriksa kadar Aspartate
Transminase (AST) dan Alanine Transminase (ALT).
3.5.3 Pemeriksaan Kadar AST dan ALT
Pemeriksaan kadar AST dan ALT dilakukan sebanyak dua kali yakni setelah
pemberian meloxicam dosis toksik dan setelah dilakukan perlakuan dengan
pemberian jus buah alpukat dengan dosis yang berbeda pada masing-masing
kelompok perlakuan. Sampel darah yang diambil sebanyak 1 sampai 2 ml. Setiap
sampel darah diletakkan pada botol sampel plain 10 ml. Sampel darah disentrifugasi
selama 5 menit dengan kecepatan 5000 rpm. Hal ini bertujuan untuk memisahkan
serum dari plasma darah. Setelah serum telah terpisah dengan plasma, selanjutnya
serum dipisahkan dan dimasukkan ke dalam cup serum. Setelah semua sampel serum
telah dimasukkan ke dalam masing-masing cup, kemudian cup dimasukkan ke dalam
mesin Siemens yang merupakan alat yang digunakan untuk mengukur kadar AST
dan ALT.
3.5.4 Pengamatan dan Pengumpulan Data
Pengamatan dan pencatatan dilakukan terhadap serum darah tikus putih jantan
yang diamati setelah pemberian meloxicam dan setelah pemberian perlakuan selama
7 hari.
3.6 Analisa Data
Analisis data yang digunakan adalah uji Two Way Anova With Replication,
dimana data diambil dari hasil pengamatan kadar AST dan ALT pada tikus putih dari
2 kelompok kontrol dan 2 kelompok perlakuan terhadap pengaruh jus buah alpukat.
Kemudian dilanjutkan dengan uji T-Test.
Page 35
Pemeriksaan kadar
Pelamonia Kota Makassar.
(hari ke-0) dan pemeriksaan akhir (hari ke
berikut ini:
Gambar 4.1 Kadar AST Sebelum Perlaku
Keterangan :
n = 6 sampel
K1 = Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
K2 = Kelompok kontrol positif
mg/kg BB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian melo
= Berbeda Signifikan (P<0,05)
SEM = Standard Error o
x = Kelompok
y = Nilai rata-rata (Mean)
Berdasarkan gambar 4.1, rata
ke-0) untuk kelompok K1 adalah 58,33 IU/L (SEM= 3,66), kelompok K2 memiliki
rata-rata kadar AST sebesar 280,33 IU/L (SEM= 41,2), kelompok P1 memiliki rata
y
x
4 HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Aspartate Transminase (AST)
emeriksaan kadar AST dilakukan di Laboratorium Klinik Rumah Sakit
Pelamonia Kota Makassar. Hasil dari pemeriksaan kadar AST pada pemeriksaan awal
0) dan pemeriksaan akhir (hari ke-8) dapat dilihat pada diagram batang
T Sebelum Perlakuan (Hari ke-0) Pada Tikus Putih
= Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
gnifikan (P<0,05)
ror of Mean
rata (Mean)
ambar 4.1, rata-rata hasil kadar AST pada pemeriksaan awal (hari
0) untuk kelompok K1 adalah 58,33 IU/L (SEM= 3,66), kelompok K2 memiliki
T sebesar 280,33 IU/L (SEM= 41,2), kelompok P1 memiliki rata
35
T dilakukan di Laboratorium Klinik Rumah Sakit
pada pemeriksaan awal
diagram batang
0) Pada Tikus Putih
dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
xicam dosis toksik 30 mg/kg BB
T pada pemeriksaan awal (hari
0) untuk kelompok K1 adalah 58,33 IU/L (SEM= 3,66), kelompok K2 memiliki
T sebesar 280,33 IU/L (SEM= 41,2), kelompok P1 memiliki rata-
Page 36
rata kadar AST sebesar 222,17 IU/L (
rata kadar AST sebesar 215 IU/L (SEM= 31,3).
Gambar 4.2 Kadar AST
Keterangan :
n = 6 sampel
K1 = Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na
K2 = Kelompok kontrol positif
mg/kg BB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
= Berbeda Signifikan (P<0,05)
SEM = Standard Error o
x = Kelompok
y = Nilai rata-rata (Mean)
Berdasarkan gambar
(hari ke-8) untuk kelompok K1 adalah 54 IU/L (SEM= 2,64), kelompok K2 memiliki
rata-rata kadar AST sebesar 264,5 IU/L (SEM= 35,9), kelompok P1 memiliki rata
rata kadar AST sebesar 73,83 IU/L (SEM= 1,85) dan kelompok P2 memiliki rat
kadar AST sebesar 60,17 IU/L (SEM= 2,24).
x
y
T sebesar 222,17 IU/L (SEM=24,2) dan kelompok P2 memiliki rata
sebesar 215 IU/L (SEM= 31,3).
Sesudah Perlakuan (Hari ke-8) Pada Tikus Putih
ontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
gnifikan (P<0,05)
ror of Mean
rata (Mean)
Berdasarkan gambar 4.2, rata-rata hasil kadar AST pada pemeriksaan akhir
8) untuk kelompok K1 adalah 54 IU/L (SEM= 2,64), kelompok K2 memiliki
T sebesar 264,5 IU/L (SEM= 35,9), kelompok P1 memiliki rata
T sebesar 73,83 IU/L (SEM= 1,85) dan kelompok P2 memiliki rat
sebesar 60,17 IU/L (SEM= 2,24).
36
SEM=24,2) dan kelompok P2 memiliki rata-
) Pada Tikus Putih
dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
toksik 30 mg/kg BB dan
T pada pemeriksaan akhir
8) untuk kelompok K1 adalah 54 IU/L (SEM= 2,64), kelompok K2 memiliki
T sebesar 264,5 IU/L (SEM= 35,9), kelompok P1 memiliki rata-
T sebesar 73,83 IU/L (SEM= 1,85) dan kelompok P2 memiliki rata-rata
Page 37
Gambar 4.3 Kadar AST Sebelum Perlakuan (Hari ke
ke-8) Pada Tikus Putih
Keterangan :
n = 6 sampel
K1 = Kelompok kontrol negatif dengan
K2 = Kelompok kontrol positif
mg/kg BB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian meloxica
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
= Berbeda Signifikan (P<0,05)
x = Kelompok
y = Nilai rata-rata (Mean)
Berdasarkan gambar
analisis data kadar AST
antara kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan
(P<0,05). Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan
(P<0,05). Begitu pun antara kelompok K1 dan kelomp
yang signifikan (P<0,05).
tidak adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), antara kelompok K2 dan kelompok
P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), begitu
kelompok P1 dan kelompok P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan
(P>0,05). Hal ini menunjukkan bahwa pada kelompok K1 yang diberi Na CMC 1%
tidak menunjukkan terjadinya peningkatan kadar
dibandingkan dengan kelompok K2, kelompok P1, maupun kelompok P2
menunjukka adanya peningkatan kadar
y
T Sebelum Perlakuan (Hari ke-0) dan Sesudah Perlakuan (hari
= Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
gnifikan (P<0,05)
rata (Mean)
Berdasarkan gambar 4.1, Pada hari ke-0 (sebelum perlakuan) diketahui hasil dari
dengan menggunakan analisis data T-test menjelaskan bahwa
antara kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan
(P<0,05). Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan
(P<0,05). Begitu pun antara kelompok K1 dan kelompok P2 menunjukkan perbedaan
yang signifikan (P<0,05). Dan antara kelompok K2 dan kelompok P1 menunjukkan
tidak adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), antara kelompok K2 dan kelompok
P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), begitu
kelompok P1 dan kelompok P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan
(P>0,05). Hal ini menunjukkan bahwa pada kelompok K1 yang diberi Na CMC 1%
tidak menunjukkan terjadinya peningkatan kadar AST atau masih dalam batas normal
n dengan kelompok K2, kelompok P1, maupun kelompok P2
menunjukka adanya peningkatan kadar AST setelah pemberian meloxicam dengan
x
37
dan Sesudah Perlakuan (hari
dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
m dosis toksik 30 mg/kg BB dan
0 (sebelum perlakuan) diketahui hasil dari
menjelaskan bahwa
antara kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan
(P<0,05). Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan
ok P2 menunjukkan perbedaan
Dan antara kelompok K2 dan kelompok P1 menunjukkan
tidak adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), antara kelompok K2 dan kelompok
P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), begitu pun pada
kelompok P1 dan kelompok P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan
(P>0,05). Hal ini menunjukkan bahwa pada kelompok K1 yang diberi Na CMC 1%
T atau masih dalam batas normal
n dengan kelompok K2, kelompok P1, maupun kelompok P2
T setelah pemberian meloxicam dengan
Page 38
38
dosis 30 mg/kgBB yang dapat dilihat dari hasil bahwa perbandingan antara kelompok
K1 dan kelompok K2, P1, maupun P2 menunjukkan perbedaan yang signifikan.
Berdasarkan hasil analisis data tersebut menunjukkan adanya efek hepatotoksik dari
meloxicam sehingga memberikan efek terhadap peningkatan kadar AST. Hal ini
dikarenakan meloxicam dapat menyebabkan peningkatan produksi Raktive Oxygen
Species (ROS) dan secara langsung menekan sistem antioksidan tubuh dan
menimbulkan peroksidasi lipid. ROS dapat bereaksi dapat bereaksi dan menyebabkan
kerusakan pada banyak molekul di dalam sel. Fosfolipid yang menjadi unsur utama
dalam membran plasma dan membran organela sel seringkali menjadi subjek dari
peroksidasi lipid. Peroksidasi lipid adalah suatu reaksi rantai radikal bebas yang
diawali dengan terbebasnya hidrogen dari suatu asam lemak tak jenuh oleh radikal
bebas. Akibat dari peroksidasi lipid adalah meningkatnya permeabilitas membran dan
mengganggu distribusi ion-ion yang mengakibatkan kerusakan sel dan organela
(Devlin, 2002). Dan AST merupakan salah satu enzim transaminase yang terdapat di
dalam sel dan akan keluar ke dalam plasma apabila sel mengalami kerusakan,
sehingga kadarnya di dalam plasma akan meningkat (Widman, 1995). Hal tersebut
juga dijelaskan pada penelitian yang dilakukan oleh Al-Rekabi et al yang
menunjukkan peningkatan serum hati yaitu AST dan ALT pada pemberian
meloxicam dengan dosis bertingkat selama 60 hari.
Berdasarkan gambar 4.2, pada hari ke-8 (sesudah perlakuan ) diketahui hasil
dari analisis data AST dengan menggunakan T-test menjelaskan bahwa antara
kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Antara kelompok K2 dan kelompok P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan
(P<0,05). Antara kelompok K2 dan kelompok P2 menunjukkan perbedaan yang
signifikan (P<0,05). Begitu pun antara kelompok P1 dan kelompok P2 menunjukkan
perbedaan yang signifikan (P<0,05). Sedangkan antara kelompok K1 dan kelompok
P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan.
Sedangkan berdasarkan gambar 4.3 menjelaskan perbandingan antara
kelompok pada hari ke-0 (sebelum perlakuan) dan hari ke-8 (sesudah perlakuan)
menjelaskan bahwa antara kelompok P1 hari ke-0 (sebelum perlakuan) dan P1 hari
ke-8 (sesudah perlakuan) menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05). Begitu
pun antara kelompok P2 hari ke-0 (sebelum perlakuan) dan P2 hari ke-8 (sesudah
perlakuan) menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05). Didukung pula dengan
hasil dari analisis data Two Way Anova With Replication dengan membandingkan
antara hasil pemeriksaan sebelum perlakuan (hari ke-0) dan hasil pemeriksaan
sesudah perlakuan (hari ke-8) menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05) atau
(F>Fcrit).
Dari uraian tersebut, menunjukkan bahwa pada pemeriksaan akhir setelah
perlakuan (hari ke-8) penurunan kadar AST pada kelompok P1 dan kelompok P2
yang diberi perlakuan jus buah alpukat selama 7 hari dibandingkan dengan kelompok
kontrol positif yang diberi meloxicam 30 mg/kgBB tanpa pemberian jus buah alpukat
terdapat perbedaan yang signifikan (P<0,05) antara kelompok K2 (tanpa pemberian
jus buah alpukat) dengan kelompok P1 (dengan pemberian jus buah alpukat
5gr/kgBB). Begitu pun antara kelompok K2 (tanpa pemberian jus buah alpukat)
Page 39
dengan kelompok P2 (dengan pemberian jus buah alpukat 10gr/kgBB) menunjukkan
perbedaan yang signifikan (P<0,05). Sedangkan jika dibandingkan kelompok K1
(kontrol negatif dengan pemberian Na CMC) dengan kelompok P2 (dengan
pemberian jus buah alpukat 10gr/kgBB) tidak terdapat perbedaan yang signifikan
yang menunjukkan bahwa jus buah alpukat dapat menurunkan kadar
batas normal dalam tubuh.
Berdasarkan hal tersebut menunjukkan bahwa
dapat menurunkan kadar AST bila dibandingkan dengan kelompok yang hanya
diberikan meloxicam, bahkan pada kelompok yang diberikan jus buah alpukat dengan
dosis 10 gr/kgBB/hari menunjukkan situasi yang tak jauh berbeda bila dibandingkan
dengan kelompok kontrol neg
membuktikan bahwa jus buah alpukat mampu bertindak sebagai antioksidan yang
dapat memecahkan proses autokatalitik dari proses lipid peroksidasi membran sel
sehingga dapat memelihara integrit
dilakukan oleh Sagala (2010) yang menyatakan bahwa jus buah alpukat dapat
bertindak sebagai antioksidan dalam menghambat kerusakan dari mukosa lambung
akibat pemberian aspirin dan penelitian oleh Hidayat (2013) yang menyatakan bahwa
Vitamin E yang terkandung juga dalam buah alpukat dapat menurunkan kadar
dan ALT pada tikus yang terpapar timbal
berperan sebagai antioksidan pemutus rantai reaksi dalam melindungi hepatosit dari
radikal bebas dan mene
toksik serta sebagai antioksidan preventif (Patrick,2006).
Pemeriksaan kadar
Pelamonia Kota Makassar. Hasil dari pemeriksaan kadar
(hari ke-0) dan pemeriksaan akhir (hari ke
Gambar 4.4 Kadar ALT Sebelum Perlakuan (Hari
x
y
dengan kelompok P2 (dengan pemberian jus buah alpukat 10gr/kgBB) menunjukkan
perbedaan yang signifikan (P<0,05). Sedangkan jika dibandingkan kelompok K1
(kontrol negatif dengan pemberian Na CMC) dengan kelompok P2 (dengan
n jus buah alpukat 10gr/kgBB) tidak terdapat perbedaan yang signifikan
yang menunjukkan bahwa jus buah alpukat dapat menurunkan kadar
batas normal dalam tubuh.
Berdasarkan hal tersebut menunjukkan bahwa pemberian jus buah alpukat
menurunkan kadar AST bila dibandingkan dengan kelompok yang hanya
diberikan meloxicam, bahkan pada kelompok yang diberikan jus buah alpukat dengan
dosis 10 gr/kgBB/hari menunjukkan situasi yang tak jauh berbeda bila dibandingkan
dengan kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%. Hal ini
membuktikan bahwa jus buah alpukat mampu bertindak sebagai antioksidan yang
dapat memecahkan proses autokatalitik dari proses lipid peroksidasi membran sel
sehingga dapat memelihara integritas sel. Hal ini didukung oleh penelitian yang
Sagala (2010) yang menyatakan bahwa jus buah alpukat dapat
bertindak sebagai antioksidan dalam menghambat kerusakan dari mukosa lambung
akibat pemberian aspirin dan penelitian oleh Hidayat (2013) yang menyatakan bahwa
itamin E yang terkandung juga dalam buah alpukat dapat menurunkan kadar
pada tikus yang terpapar timbal per-oral. Vitamin E tersebut mampu
berperan sebagai antioksidan pemutus rantai reaksi dalam melindungi hepatosit dari
radikal bebas dan menetralisir efek yang ditimbulkan dari paparan yang bersifat
toksik serta sebagai antioksidan preventif (Patrick,2006).
4.2 Alanine Transminase (ALT)
Pemeriksaan kadar ALT dilakukan di Laboratorium Klinik Rumah Sakit
Pelamonia Kota Makassar. Hasil dari pemeriksaan kadar ALT pada pemeriksaan awal
0) dan pemeriksaan akhir (hari ke-8) dapat dilihat pada gambar
T Sebelum Perlakuan (Hari ke-0) Pada Tikus Putih
39
dengan kelompok P2 (dengan pemberian jus buah alpukat 10gr/kgBB) menunjukkan
perbedaan yang signifikan (P<0,05). Sedangkan jika dibandingkan kelompok K1
(kontrol negatif dengan pemberian Na CMC) dengan kelompok P2 (dengan
n jus buah alpukat 10gr/kgBB) tidak terdapat perbedaan yang signifikan
yang menunjukkan bahwa jus buah alpukat dapat menurunkan kadar AST hingga
jus buah alpukat
menurunkan kadar AST bila dibandingkan dengan kelompok yang hanya
diberikan meloxicam, bahkan pada kelompok yang diberikan jus buah alpukat dengan
dosis 10 gr/kgBB/hari menunjukkan situasi yang tak jauh berbeda bila dibandingkan
atif dengan pemberian Na CMC 1%. Hal ini
membuktikan bahwa jus buah alpukat mampu bertindak sebagai antioksidan yang
dapat memecahkan proses autokatalitik dari proses lipid peroksidasi membran sel
oleh penelitian yang
Sagala (2010) yang menyatakan bahwa jus buah alpukat dapat
bertindak sebagai antioksidan dalam menghambat kerusakan dari mukosa lambung
akibat pemberian aspirin dan penelitian oleh Hidayat (2013) yang menyatakan bahwa
itamin E yang terkandung juga dalam buah alpukat dapat menurunkan kadar AST
oral. Vitamin E tersebut mampu
berperan sebagai antioksidan pemutus rantai reaksi dalam melindungi hepatosit dari
tralisir efek yang ditimbulkan dari paparan yang bersifat
T dilakukan di Laboratorium Klinik Rumah Sakit
pada pemeriksaan awal
berikut ini:
0) Pada Tikus Putih
Page 40
Keterangan :
n = 5-6 sampel
K1 = Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
K2 = Kelompok kontrol positif
mg/kg BB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian melo
= Berbeda Sifgnifikan (P<0,05)
SEM = Standard Error o
x = Kelompok
y = Nilai rata-rata (Mean)
Berdasarkan gambar 4.4,
untuk kelompok K1 adalah 25,17 IU/L (SEM= 1,5), kelompok K2 memiliki rata
kadar ALT sebesar 104,67 IU/L (SEM= 7,38), kelompok P1 memiliki rata
ALT sebesar 58,67 IU/L (SEM= 2,9) dan kelompok P2 memiliki rata
sebesar 80,67 IU/L (SEM= 4,72).
Grafik 4.5 Kadar ALT Se
Keterangan :
n = 5-6 sampel
K1 = Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
K2 = Kelompok kontrol positif
mg/kg BB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
= Berbeda Sifgnifikan (P<0,05)
SEM = Standard Error o
y
x
= Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
= Berbeda Sifgnifikan (P<0,05)
ror of Mean
rata (Mean)
4.4, rata-rata hasil kadar ALT pada pemeriksaan awal (hari ke
untuk kelompok K1 adalah 25,17 IU/L (SEM= 1,5), kelompok K2 memiliki rata
T sebesar 104,67 IU/L (SEM= 7,38), kelompok P1 memiliki rata
T sebesar 58,67 IU/L (SEM= 2,9) dan kelompok P2 memiliki rata-rata kadar
sebesar 80,67 IU/L (SEM= 4,72).
T Sesudah Perlakuan (Hari ke-8) Pada Tikus Putih
= Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
= Berbeda Sifgnifikan (P<0,05)
= Standard Error of Mean
40
dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
xicam dosis toksik 30 mg/kg BB
T pada pemeriksaan awal (hari ke-0)
untuk kelompok K1 adalah 25,17 IU/L (SEM= 1,5), kelompok K2 memiliki rata-rata
T sebesar 104,67 IU/L (SEM= 7,38), kelompok P1 memiliki rata-rata kadar
rata kadar ALT
dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
Page 41
x = Kelompok
y = Nilai rata-rata (Mean)
Berdasarkan gambar 4.5, rata
(hari ke-8) untuk kelompok K1 adalah 22 IU/L (SEM= 1,05), kelompok K2 memiliki
rata-rata kadar ALT sebesar 96,17 IU/L (SEM= 7,13), kelompok P1 memiliki rata
rata kadar ALT sebesar 26,
kadar ALT sebesar 20,83 IU/L (SEM= 1,27).
Grafik 4.6 Kadar ALT Sebelum Perlakuan (Hari ke
ke-8) Pada Tikus Putih
Keterangan :
n = 5-6 sampel
K1 = Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
K2 = Kelompok kontrol positif
mg/kg BB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
= Berbeda Signifikan (P<0,05)
x = Kelompok
y = Nilai rata-rata (Mean)
Berdasarkan gambar
analisis data kadar AL
kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<
Begitu pun antara kelompok K1 dan kelompok P2 menunjukkan perbedaan yang
rata (Mean)
Berdasarkan gambar 4.5, rata-rata hasil kadar ALT pada pemeriksaan akhir
8) untuk kelompok K1 adalah 22 IU/L (SEM= 1,05), kelompok K2 memiliki
T sebesar 96,17 IU/L (SEM= 7,13), kelompok P1 memiliki rata
T sebesar 26,17 IU/L (SEM= 0,93) dan kelompok P2 memiliki rata
sebesar 20,83 IU/L (SEM= 1,27).
T Sebelum Perlakuan (Hari ke-0) dan Sesudah Perlakuan (Hari
= Kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%
kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
= Berbeda Signifikan (P<0,05)
rata (Mean)
Berdasarkan gambar 4.4, Pada hari ke-0 (sebelum perlakuan) diketahui h
ALT dengan menggunakan T-test menjelaskan bahwa antara
kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<
Begitu pun antara kelompok K1 dan kelompok P2 menunjukkan perbedaan yang
x
y
41
T pada pemeriksaan akhir
8) untuk kelompok K1 adalah 22 IU/L (SEM= 1,05), kelompok K2 memiliki
T sebesar 96,17 IU/L (SEM= 7,13), kelompok P1 memiliki rata-
17 IU/L (SEM= 0,93) dan kelompok P2 memiliki rata-rata
sudah Perlakuan (Hari
dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
= Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
0 (sebelum perlakuan) diketahui hasil dari
menjelaskan bahwa antara
kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Begitu pun antara kelompok K1 dan kelompok P2 menunjukkan perbedaan yang
Page 42
42
signifikan (P<0,05). Dan antara kelompok K2 dan kelompok P1 menunjukkan tidak
adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), antara kelompok K2 dan kelompok P2
menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan (P>0,05), begitu pun pada
kelompok P1 dan kelompok P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan
(P>0,05). Hal ini menunjukkan bahwa pada kelompok K1 yang diberi Na CMC 1%
tidak menunjukkan terjadinya peningkatan kadar ALT atau masih dalam batas normal
dibandingkan dengan kelompok K2, kelompok P1, maupun kelompok P2
menunjukkan adanya peningkatan kadar ALT setelah pemberian meloxicam dengan
dosis 30 mg/kgBB yang dapat dilihat dari hasil bahwa perbandingan antara kelompok
K1 dan kelompok K2, P1, maupun P2 menunjukkan perbedaan yang signifikan.
Berdasarkan hasil analisis data tersebut menunjukkan adanya efek hepatotoksik dari
meloxicam sehingga memberikan efek terhadap peningkatan kadar ALT. Hal ini
dikarenakan meloxicam dapat menyebabkan peningkatan produksi (ROS) dan secara
langsung menekan sistem antioksidan tubuh dan menimbulkan peroksidasi lipid. ROS
dapat bereaksi dapat bereaksi dan menyebabkan kerusakan pada banyak molekul di
dalam sel. Fosfolipid yang menjadi unsur utama dalam membran plasma dan
membran organela sel seringkali menjadi subjek dari peroksidasi lipid. Peroksidasi
lipid adalah suatu reaksi rantai radikal bebas yang diawali dengan terbebasnya
hidrogen dari suatu asam lemak tak jenuh oleh radikal bebas. Akibat dari peroksidasi
lipid adalah meningkatnya permeabilitas membran dan mengganggu distribusi ion-
ion yang mengakibatkan kerusakan sel dan organela (Devlin, 2002). Dan ALT
merupakan salah satu enzim transaminase yang terdapat di dalam sel dan akan keluar
ke dalam plasma apabila sel mengalami kerusakan, sehingga kadarnya di dalam
plasma akan meningkat (Widman, 1995). Hal tersebut juga dijelaskan pada penelitian
yang dilakukan oleh Al-Rekabi et al yang menunjukkan peningkatan serum hati yaitu
AST dan ALT pada pemberian meloxicam dengan dosis bertingkat selama 60 hari.
Berdasarkan gambar 4.5, pada hari ke-8 (sesudah perlakuan ) diketahui hasil
dari analisis data ALT dengan menggunakan T-test menjelaskan bahwa antara
kelompok K1 dan kelompok K2 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Antara kelompok K1 dan P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05).
Antara kelompok K2 dan kelompok P1 menunjukkan perbedaan yang signifikan
(P<0,05). Antara kelompok K2 dan kelompok P2 menunjukkan perbedaan yang
signifikan (P<0,05). Begitu pun antara kelompok P1 dan kelompok P2 menunjukkan
perbedaan yang signifikan (P<0,05). Sedangkan antara kelompok K1 dan kelompok
P2 menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan.
Sedangkan berdasarkan gambar 4.6 menjelaskan perbandingan antara
kelompok pada hari ke-0 (sebelum perlakuan) dan hari ke-8 (sesudah perlakuan)
menjelaskan bahwa antara kelompok P1 hari ke-0 (sebelum perlakuan) dan P1 hari
ke-8 (sesudah perlakuan) menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05). Begitu
pun antara kelompok P2 hari ke-0 (sebelum perlakuan) dan P2 hari ke-8 (sesudah
perlakuan) menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05). Didukung pula dengan
hasil dari analisis data Two Way Anova With Replication dengan membandingkan
antara hasil pemeriksaan sebelum perlakuan (hari ke-0) dan hasil pemeriksaan
sesudah perlakuan (hari ke-8) menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05) atau
(F>Fcrit).
Page 43
43
Dari uraian tersebut, menunjukkan bahwa pada pemeriksaan akhir setelah
perlakuan (hari ke-8) terjadi penurunan kadar ALT pada kelompok P1 dan kelompok
P2 yang diberi perlakuan jus buah alpukat selama 7 hari dibandingkan dengan
kelompok kontrol positif yang diberi meloxicam 30 mg/kgBB tanpa pemberian jus
buah alpukat dengan hasil terdapat perbedaan yang signifikan (P<0,05) antara
kelompok K2 (tanpa pemberian jus buah alpukat) dengan kelompok P1 (dengan
pemberian jus buah alpukat 5gr/kgBB). Begitu pun antara kelompok K2 (tanpa
pemberian jus buah alpukat) dengan kelompok P2 (dengan pemberian jus buah
alpukat 10gr/kgBB) menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05). Sedangkan
jika dibandingkan kelompok K1 (kontrol negatif dengan pemberian Na CMC) dengan
kelompok P2 (dengan pemberian jus buah alpukat 10gr/kgBB) tidak terdapat
perbedaan yang signifikan yang menunjukkan bahwa jus buah alpukat dapat
menurunkan kadar ALT hingga batas normal dalam tubuh.
Untuk mengetahui pengaruh dosis jus buah alpukat terhadap penurunan AST
dan ALT berdasarkan analisis data diperoleh hasil bahwa pemeriksaan kadar ALT
pada hari ke-8 (setelah perlakuan) diperoleh hasil bahwa antara kelompok P1 dan
kelompok P2 menunjukkan perbedaan yang signifikan (P<0,05). Begitu pun pada
hasil pemeriksaan kadar ALT pada hari ke-8 (setelah perlakuan) diperoleh hasil
bahwa antara kelompok P1 dan kelompok P2 menunjukkan perbedaan yang
signifikan (P<0,05). Hal ini menunjukkan bahwa pemberian jus buah alpukat dengan
dosis yang berbeda dapat menimbulkan penurunan yang berbeda pula yaitu semakin
besar dosis jus buah alpukat yang diberikan, maka semakin tinggi penurunan AST
maupun ALT yang diperoleh.
Berdasarkan hal tersebut menunjukkan bahwa pemberian jus buah alpukat
dapat menurunkan kadar ALT bila dibandingkan dengan kelompok yang hanya
diberikan meloxicam, bahkan pada kelompok yang diberikan jus buah alpukat dengan
dosis 10 gr/kgBB/hari menunjukkan situasi yang tak jauh berbeda bila dibandingkan
dengan kelompok kontrol negatif dengan pemberian Na CMC 1%. Hal ini
membuktikan bahwa jus buah alpukat mampu bertindak sebagai antioksidan yang
dapat memecahkan proses autokatalitik dari proses lipid peroksidasi membran sel
sehingga dapat memelihara integritas sel. Hal ini didukung oleh penelitian yang
dilakukan oleh Sagala (2010) yang menyatakan bahwa jus buah alpukat dapat
bertindak sebagai antioksidan dalam menghambat kerusakan dari mukosa lambung
akibat pemberian aspirin dan penelitian oleh Hidayat (2013) yang menyatakan bahwa
Vitamin E yang terkandung juga dalam buah alpukat dapat menurunkan kadar AST
dan ALT pada tikus yang terpapar timbal per-oral. Vitamin E tersebut mampu
berperan sebagai antioksidan pemutus rantai reaksi dalam melindungi hepatosit dari
radikal bebas dan menetralisir efek yang ditimbulkan dari paparan yang bersifat
toksik serta sebagai antioksidan preventif (Patrick,2006). Buah alpukat yang
digunakan dalam penelitian ini mengandung antioksidan berupa prekursor dari
glutathione yaitu asam glutamate, glisin, sistin, dan metionin. Keempat asam amino
ini diserap melalui jalur pencernaan protein di dalam lambung dan berlanjut di usus
halus, dan memasuki sirkulasi darah melalui vena porta, kemudian akan dibawa ke
hati dan dipergunakan sebagai substansi untuk mensintesis glutathione (Almatsier,
2001). Selain itu, glutathione dapat meregenerasi antioksidan terpenting yaitu asam
Page 44
44
lipoat, vitamin E dan vitamin C kembali ke bentuk aktif (Mohora et al, 2007). Selain
kandungan precursor glutathione, alpukat juga memiliki vitamin B2 (riboflavin) yang
berperan sebagai prekursor Flavine Adenine Dinucleotida (FAD), koenzim yang
dibutuhkan oleh glutathione reduktase dan mineral berupa selenium yang terkandung
memiliki efek antioksidan pada enzim glutathione peroksidase (Berdanier et al,
2008).
Page 45
45
BAB 5. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan
Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan, dapat disimpulkan sebagai berikut :
a. Pemberian jus buah alpukat dapat menurunkan kadar AST dan ALT pada
tikus putih yang diinduksi meloxicam dosis toksik.
b. Dosis optimal jus buah alpukat dalam menurunkan kadar AST dan ALT
adalah 10 g/kgBB/hari.
5.2 Saran
Berdasarkan hasil penelitian, saran yang dapat diberikan sebagai berikut :
a. Dapat dilakukan penelitian lebih lanjut dengan melakukan pengamatan pada
gambaran histopatologi organ hati.
b. Dapat dilakukan penelitian sejenis dengan menerapkan pada hewan
kesayangan.
Page 46
46
DAFTAR PUSTAKA
Adiyati, P. N. 2011. Ragam Jenis Ektoparasit pada Hewan Coba Tikus Putih (Rattus
norvegicus) Galur Sprague Dawley. Skripsi. Fakultas Kedokteran Hewan
Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Alfansuri, A.F . 2012 . Identifikasi Chilling Injury Buah Alpukat (Persea americana)
dengan Gelombang Ultrasonik. IPB : Bogor.
Almatsier, S. 2001. Prinsip Dasar Ilmu Gizi. Jakarta: Gramedia
Al-Rekabi, F.M.K., Abbas D.A dan Hadi N.R . 2009 . Effect of Subchronic exposure
to meloxicam on some hematological, biochemical and liver histopathological
parameters in rats . Iraq Journal of Veterinary Sciences Vol.23 Supplement II :
249-254. Baghdad University : Iraq
Allen, P.G., 2013. College of Veterinary Medicine. Washington State University:
Washington
Astawan M. dan Leomitro A. 2008. Khasiat warna-warni makanan. Jakarta : PT
Gramedia Pustaka Utama, pp : 154-160, 128, 129.
Berdanier, C., Dwyer, J., dan Feldman, E. 2008. Handbook of Nutrition and Food.
Second Edition. Boca Raton: CRC Press
Besselsen, D.G. 2004. Biology of Laboratory Rodent. Medical Books. New York.
Bijanti, Retno. 2010 . Buku Ajar Patologi Klinik Veteriner Edisi Pertama .
Percetakan Universitas Airlangga : Surabaya
Bousfield, B.B.R.W. Veterinary Bulletin, Agriculture, Fisheries and Conservation
Department Newsletter. 2010; 1(4):1-12.
Busch, Ulrich et al . 1998 . Pharmacokinetics of meloxicam in animals and the
relevance to humans . Department of pharmacokinetics : U.S.A
Chandra, A et al . 2013 . Pengaruh pH dan Jenis Pelarut Pada Perolehan dan
Karakterisasi Pati dan Biji Alpukat : Universitas Katolik Parahyangan.
Day, R., D, Williams, K., Handel, M. dan Brooks, P . 2000. Cognnective tissue and
bone disorders. In : SG, Carruthers, BB. Hoffman, KL. /Melmon & DW..
Nierenberg (eds), Clinical Pharmacology. Edisi 4 : New York.
Devlin, MT. 2002. Bionergetics and Oxidative Metabolism In : Biochemistry with
clinical correlation. Wiley-lisss. Canada :590-592
Dorantes, Lidia, FAO. 2006. Avocado Post Harvest Operation Chapter : Italy
Federer, W.T. 1955. Experimental Design. The Macmillan Company, New York.
Fitzpatrick, A. 2003. Ethics and animal research. J Lab Clin Med.;41:89-90.
Gilman, AG., Rall., TW., Nies, AS & Taylor, P . 1991 . The Pharmacological basis
of therapeutics. Vol.11 . Edisi 8 . Pergamon Press : New York.
Geof, W.S., Jennifer, L.D., Lisa, A.T et al . 2008 . Extralabel Use Of Nonsteroidal
Anti-Inflammatory Drugs In Cattle . JAVMA Vol.232 No.5 : FARAD Digest
Guyton AC, Hall JE. 1997. Buku Ajar Fisiologi Kedokteran. Setiawan I, Tengadi KA,
Santoso A, penerjemah. Jakarta: EGC. Terjemahan dari: Textbook of Medical
Physiology.
Hariono, B. 2005. Hematology Veteriner. Bagian Patologi Klinik Fakultas
Kedokteran Hewan Universitas Gadjah Mada . Yogyakarta, 7-8
Page 47
47
Hidayat, A . 2013 . Pengaruh Vitamin E Terhadap Kadar SGPT dan SGOT Serum
Darah Tikus Putih (Rattus norvegicus) Jantan Galur Wistar Yang Dipapar
Timbale Per-Oral. Universitas Negeri Semarang : Semarang.
Husadha, Y. 1996. Fisiologi dan Pemeriksaan Hati. Dalam : Buku Ajar Ilmu
Penyakit Dalam. Jilid I. Edisi ketiga. Jakarta : Balai Penerbit FKUI. Hal : 224-
226.
Ide P. 2010. Health Secret Of Kiwi fruit. Jakarta : PT. Alex Media Computindo, pp :
9,11,15,16.
Katja, D.G., Suryanto, E., dan Wehantouw, F., 2009, Potensi Daun Alpukat (Persea
Americana Mill) Sebagai Sumber Antioksidan Alami, Chem. Prog. 2 (1) : 58-
64.
Kali, M.B. 1997. Alpukat Budidaya dan Pemanfaatan. Penerbit Kanisius, Yogyakarta
Koolman J, Röhm KH. 2001. Atlas Berwarna dan Teks Biokimia. Wanandi SI,
penerjemah. Jakarta: Hipokrates. Terjemahan dari Color Atlas of Biochemistry.
Lopez. VMG. 2002. Fruit Characterization of high oil contect avocado varieties.
Scientia Agricol.
Meyes PA, DK Granner, VW Rodwell dan DW Martin. 1991 . Biokimia. Alih Bahasa
Mohora, Greabu, Muscurel, Duta, dan Totan. 2007. The Sources and the Targets of
Oxidative Stress in the Etiology of Diabetic Complications. J. Biophys. Vol. 17
(2): 63–84.
Moriwaki, K., T. Shiroishi dan H. Yonekawa. 1994. Genetic in Wild Mice. Its
Aplication to Biomedical Research. Japan ScientificSocieties Press. Karger,
Tokyo.
Notoatmodjo, S. 2005. Metodologi Penelitian Kesehatan, edisi revisi. Jakarta: Rineka
Cipta.
Nutrient data. 2010. Nutrition Facts Avocados, Raw, All Commercial Varieties. http://
www.nutritiondata.com/facts/fruits-and-fruit-juices/1843/2 [24 Mei 2010]
Patrick, L. 2006 . Lead Toxicity Part II: The Role Of Free Radical Damage And The
Use Of Antioxidants In The Pathology And Treatment Of Lead Toxicity.
Alternative Medicine Review : 114-127
Plantamor. 2012 . Persea americana M. (http://www. plantamor.com /index.php.
plant=970) diakses 10 Januari 2015.
Pramushinta, A.A . 2008 . Pengaruh Teh Hijau Terhadap Kadar Enzim Alkali
Phospatase Serum Tikus Wistar Yang Diberi Kloramfenikol . Fakultas
Kedokteran Universitas Diponegoro : Semarang.
Prihatman, Kemal. 2000. ALPUKAT / AVOKAD (Persea americana Mill/Persea
gratissima Gaerth). Jakarta: Kantor Deputi Menegristek Bidang
Pendayagunaan dan Pemasyarakatan Ilmu Pengetahuan dan Teknologi.
Putz, R. and Pabst, R., 2005. Atlas Anatomi Manusia Sobotta Kepala, Leher,
Extremitas Atas. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC.
Quane, D . 2010 . Varietas Alpukat di Indonesia . (http://www.ristek.go.id diakses 10
Januari 2015)
Ressang AA. 1984. Patologi Khusus Veteriner. Ed ke-2. Denpasar: Bali Pr.
Rukmana, R. 1997. Alpukat Seri Budi Daya. Kanisius : Jakarta.
Sadikin M. 2002. Biokimia Enzim. Jakarta : Penerbit Widya Medika Jakarta
Page 48
48
Sagala, P.S . 2010 . Efek Protektif Jus Alpukat (Persea Americana Mill) Terhadap
Kerusakan Mukosa Lambung Mencit Yang Diinduksi Aspirin . Universitas
Sebelas Maret : Surakarta
Samson, J.A. 1980. Tropical Fruits. Longman Inc: New York
Sari, W . 2008 . Care Your Self : Hepatitis. Jakarta. Penebar Plus : 27-28.
Sirois, M. 2005. Laboratory animal medicine: Principles and procedures. Elsevier
Mosby, Philadelphia, USA. Pp 167,172.
Sloane,Ethel. 2004 . Anatomi dan Fisiologi. Jakarta : EGC.
Smith, J.B and Mangkoewidjoyo, S . 1988 . Pemeliharaan, Pembiakan dan
Penggunaan Hewan Coba Di Daerah Tropis . Universitas Indonesia : Jakarta.
Snell, R. S., 2006. Anatomi Klinik. Edisi 6. Jakarta:EGC. 350-360. Universitas
Sparkes, A.H et al . 2010 . Long-term use of NSAIDs in Cats . Journal of Feline
Medicine and Surgery Vol.12, 519 : JFMS Cinical Practice
Stelio, P.L et al . 2007 . Evaluation Of Adverse Effects Of Long-Term Oral
Administration Of Carprofen, Etodolac, Flunixin Meglumine, Ketoprofen, And
Meloxicam In Dogs . AVJR Vol.68 No.3 . School Of Veterinary Medicine And
Animal Science : Brazil.
Sudjarwadi., Taufan, R and Dharmana, E . 2013 . Pengaruh Pemberian Ekstrak
Phaleria Maccocarpa Dan Phyllanthus Niruri Terhadap Kadar AST, ALT dan
Kreatinin Mencit. Fakultas Kedokteran Universitas Diponegoro : Semarang.
Sulistyowaty, Yeny. 2006 . Pengaruh Pemberian Likopen Terhadap Status
Antioksidan (Vitamin C, Vitamin E, Gluthathion Peroksidase) Tikus (Rattus
norvegicus galur Sprague Dawley) Hiperkolesterolnemia . Universitas
Diponegoro : Semarang.
Underwood, J. C. E. 1999. Patologi Umum dan Sistemik. edisi 2 vol.2. Jakarta: EGC.
Wibowo AW, L Maslachah & R. Bijanti. 2008. Pengaruh Pemberian Perasan Buah
Mengkudu (Morinda citrifolia) terhadap Kadar SGOT dan SGPT Tikus
Putih(Rattus norvegicus) Diet Tinggi Lemak .Jurnal Veterinerian Medika
Universitas Airlangga Vol. 1: 1- 5.
Widmann, F. K. 1995. Tinjauan Klinis atas Hasil Pemeriksaan Laboratorium.
Jakarta: EGC.
Page 49
49
Lampiran 1 :
Hasil Penimbangan Berat Badan Tikus Wistar Jantan Sebelum Perlakuan
Tikus ke-n Berat Badan
(gram)
Kelompok
1 170 Kontrol Negatif (K1)
2 160 Kontrol Negatif (K1)
3 170 Kontrol Negatif (K1)
4 160 Kontrol Negatif (K1)
5 170 Kontrol Negatif (K1)
6 170 Kontrol Negatif (K1)
7 170 Kontrol Positif (K2)
8 170 Kontrol Positif (K2)
9 160 Kontrol Positif (K2)
10 180 Kontrol Positif (K2)
11 170 Kontrol Positif (K2)
12 160 Kontrol Positif (K2)
13 160 Perlakuan I (P1)
14 160 Perlakuan I (P1)
15 180 Perlakuan I (P1)
16 180 Perlakuan I (P1)
17 160 Perlakuan I (P1)
18 160 Perlakuan I (P1)
19 160 Perlakuan II (P2)
20 160 Perlakuan II (P2)
21 170 Perlakuan II (P2)
22 170 Perlakuan II (P2)
23 160 Perlakuan II (P2)
24 180 Perlakuan II (P2)
Page 50
50
Lampiran 2 :
Hasil Penimbangan Berat Badan Tikus Wistar Jantan Setelah Perlakuan
Tikus ke-n Berat Badan
(gram)
Kelompok
1 185 Kontrol Negatif (K1)
2 165 Kontrol Negatif (K1)
3 180 Kontrol Negatif (K1)
4 185 Kontrol Negatif (K1)
5 175 Kontrol Negatif (K1)
6 180 Kontrol Negatif (K1)
7 175 Kontrol Positif (K2)
8 170 Kontrol Positif (K2)
9 170 Kontrol Positif (K2)
10 180 Kontrol Positif (K2)
11 175 Kontrol Positif (K2)
12 165 Kontrol Positif (K2)
13 185 Perlakuan I (P1)
14 190 Perlakuan I (P1)
15 210 Perlakuan I (P1)
16 225 Perlakuan I (P1)
17 200 Perlakuan I (P1)
18 190 Perlakuan I (P1)
19 240 Perlakuan II (P2)
20 250 Perlakuan II (P2)
21 220 Perlakuan II (P2)
22 235 Perlakuan II (P2)
23 210 Perlakuan II (P2)
24 250 Perlakuan II (P2)
Page 51
51
Lampiran 3 :
Volume Pemberian Na CMC 1% dan Meloxicam Pada Hari Ke-0
Volume pemberian diperoleh dari rumus :
� =�,���
��× BB
Tikus ke-n Berat Badan
(gram)
Jenis Perlakuan Volume Pemberian (ml)
1 170 Na CMC 1 % 1,7
2 160 Na CMC 1 % 1,6
3 170 Na CMC 1 % 1,7
4 160 Na CMC 1 % 1,6
5 170 Na CMC 1 % 1,7
6 170 Na CMC 1 % 1,7
7 170 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,7
8 170 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,7
9 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
10 180 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,8
11 170 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,7
12 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
13 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
14 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
15 180 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,8
16 180 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,8
17 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
18 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
19 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
20 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
21 170 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,7
22 170 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,7
23 160 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,6
24 180 Na CMC 1 % + Meloxicam 1,8
Page 52
52
Lampiran 4 :
Volume Pemberian Na CMC 1 % dan Jus Buah Alpukat Selama 7 Hari
Volume pemberian diperoleh dari rumus :
� ����1% =�,���
��× BB
Tikus ke-n Berat Badan
(gram)
Jenis Perlakuan Volume Pemberian
(ml)
1 170 Na CMC 1 % 1,7
2 160 Na CMC 1 % 1,6
3 170 Na CMC 1 % 1,7
4 160 Na CMC 1 % 1,6
5 170 Na CMC 1 % 1,7
6 170 Na CMC 1 % 1,7
7 170 Na CMC 1 % 1,7
8 170 Na CMC 1 % 1,7
9 160 Na CMC 1 % 1,6
10 180 Na CMC 1 % 1,8
11 170 Na CMC 1 % 1,7
12 160 Na CMC 1 % 1,6
13 160 Jus Buah Alpukat 5gr/kgBB
14 160 Jus Buah Alpukat 5gr/kgBB
15 180 Jus Buah Alpukat 5gr/kgBB
16 180 Jus Buah Alpukat 5gr/kgBB
17 160 Jus Buah Alpukat 5gr/kgBB
18 160 Jus Buah Alpukat 5gr/kgBB
19 160 Jus Buah Alpukat 10gr/kgBB
20 160 Jus Buah Alpukat 10gr/kgBB
21 170 Jus Buah Alpukat 10gr/kgBB
22 170 Jus Buah Alpukat 10gr/kgBB
23 160 Jus Buah Alpukat 10gr/kgBB
24 180 Jus Buah Alpukat 10gr/kgBB
Page 53
53
Lampiran 5 :
MELOXICAM
a. Konversi Dosis Meloxicam
- Dosis Lazim (DL) manusia = 7,5 mg
- Faktor Konversi (Fk) dari manusia 70 kg ke tikus 200 gr = 0,018
- Berat Meloxicam dalam 1 papan (Isi = 10 tablet) = 1,75 gr
- Berat Rata-Rata Meloxicam (1,75 gr / 10 tablet) = 0,175 gr = 175 mg
- Volume Pemberian Na CMC = sesuai berat badan tikus
Rumus konversi dosis dari manusia ke tikus : ����� = �� × ��
� Dosis untuk berat badan tikus 200 gr :
����� = �� × ��
= 0,018 × 7,5 mg
= 0,135 mg/grBB
� Dosis untuk berat badan tikus 280 gr :
����� = ������� ��!!"##$% × ��
!&%' !'('�
= 0,135mg/grBB × 7,5mg
280gr
= 0,189mg/grBB
b. Perhitungan Dosis Pemberian
� Dosis Lazim Pemberian Pada Tikus
����� = ������� ��!!"4#$% × !&%' 5' ' − 5' '7&8�9�:';
��
= 0,189 × 175mg
7,5mg
= 4,31mg/200grBB
Page 54
54
� Dosis Toksik Meloxicam
����� = = × �� Pada Tikus
= = × =, >?;$
= ?@, >?;$
c. Perhitungan Volume Pemberian Meloxicam
� Volume Na CMC = 30,1 ml
� Meloxicam yang dibutuhkan = 16,31 mg × 18 ekor tikus
= 293,58 mg/grBB
� Pemberian meloxicam sebanyak 293,58 mg/grBB dalam 30,1 ml Na CMC
Page 55
55
Lampiran 6
TABEL KONVERSI DOSIS
Hewan dan
bobot badan
rata-rata
Mencit
20 gr
Tikus
200 gr
Marmot
400 gr
Kelinci
2 kg
Kucing
2 kg
Kera
4 kg
Anjing
12 kg
Manusia
70 kg
Mencit 20 gr 1 7 12,29 27,8 26,7 64,1 124,2 387,9
Tikus 200 gr 0,14 1 1,74 3,9 4,2 9,2 17,8 60,5
Marmot 400 gr 0,08 0,57 1 2,25 2,4 5,2 10,2 31,5
Kelinci 2 kg 0,04 0,25 0,44 1 1,06 2,4 4,5 14,2
Kucing 2 kg 0,03 0,23 0,41 0,92 1 2,2 4,1 13
Kera 4 kg 0,016 0,11 0,19 0,42 0,45 1 1,9 6,1
Anjing 12 kg 0,008 0.06 0,1 0,22 0,24 0,52 1,0 3,1
Manusia 70 kg 0,0026 0,018 0,031 0,07 0,36 0,16 0,32 1
Page 56
56
Lampiran 7 :
Tanggal Periksa : 30 Mei 2015
Pemeriksaan Hari Ke-0
Tabel. Hasil Pemeriksaan AST Pada Tikus Wistar Jantan (Normal 45,7-80,8 IU/L)
Sampel K1 IU/L K2 IU/L P1 IU/L P2 IU/L
1 49 207 306 148
2 54 189 205 359
3 66 408 283 193
4 49 193 205 178
5 70 396 179 240
6 62 289 155 172
Mean 58,33 280,33 222,17 215
SEM 3,66 41,2 24,2 31,3
Tabel. Hasil Pemeriksaan ALT Pada Tikus Wistar Jantan (Normal 17,5-30,2 IU/L)
Sampel K1 IU/L K2 IU/L P1 IU/L P2 IU/L
1 25 65 60 55
2 30 303 90 204
3 28 56 43 52
4 22 43 57 50
5 19 92 47 76
6 27 69 55 47
Mean 25,17 104,67 58,67 80,67
SEM 1,5 7,38 2,9 4,72
Keterangan :
K1 = Kelompok kontrol negative dengan pemberian Na CMC 1%
K2 = Kelompok kontrol positif dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30
mg/kgBB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
SEM = Standard Error Of Mean
Page 57
57
Lampiran 8 :
Tanggal Periksa : 05 Juni 2015
Pemeriksaan Hari ke-8
Tabel. Hasil Pemeriksaan AST Pada Tikus Wistar Jantan (Normal 45,7-80,8 IU/L)
Sampel
(Tikus)
K1 IU/L K2 IU/L P1 IU/L P2 IU/L
1 46 203 78 62
2 52 184 71 60
3 55 353 80 68
4 50 190 70 51
5 56 387 75 59
6 65 270 69 61
Mean 54 264,5 73,83 60,17
SEM 2,64 35,9 1,85 2,24
Tabel. Hasil Pemeriksaan ALT Pada Tikus Wistar Jantan (Normal 17,5-30,2 IU/L)
Sampel
(Tikus)
K1 IU/L K2 IU/L P1 IU/L P2 IU/L
1 20 66 25 18
2 28 280 30 22
3 19 50 22 18
4 24 41 25 19
5 18 87 28 24
6 23 60 27 24
Mean 22 96,17 26,17 20,83
SEM 1,05 7,13 0,93 1,27
Keterangan :
K1 = Kelompok Kontrol
K2 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB
P1 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 5g/kg BB
P2 = Kelompok dengan pemberian meloxicam dosis toksik 30 mg/kg BB dan
pemberian jus buah alpukat 10 g/kg BB
SEM = Standard Error Of Mean
Page 58
58
Lampiran 9 :
Tabel. Hasil uji Two Way Anova With Replication Kadar AST
Source of
Variation SS df MS F P-value F crit
Sample 78408.33 1 78408.33 22.74507 2.46E-05 4.084746
Columns 286782.4 3 95594.14 27.73042 7.25E-10 2.838745
Interaction 60328.5 3 20109.5 5.833462 0.002101 2.838745
Within 137890.7 40 3447.267
Total 563409.9 47
Page 59
59
Lampiran 10 :
Tabel. Hasil uji Two Way Anova With Replication Kadar ALT
Source of
Variation SS df MS F P-value F crit
Sample 3062.5 1 3062.5 28.72216 6.98E-06 4.149097
Columns 8330.7 3 2776.9 26.04361 1.02E-08 2.90112
Interaction 1965.9 3 655.3 6.145838 0.002018 2.90112
Within 3412 32 106.625
Total 16771.1 39
Page 60
60
Lampiran 11 :
Tabel. Hasil Uji T-test Kadar AST Pada Pemeriksaan Awal
K1 K2 P1 P2
K1 0.000319915 5.56143E-05 0.000571643
K2 0.000319915 0.252387753 0.236260193
P1 5.56143E-05 0.252387753 0.860294583
P2 0.000571643 0.236260193 0.860294583
Signifikan bila P<0,05
Tabel. Hasil Uji T-test Kadar AST Pada Pemeriksaan Akhir
K1 K2 P1 P2
K1 0.00016241 0.00010949 0.105751763
K2 0.00016241 0.000346142 0.000204007
P1 0.00010949 0.000346142 0.000841654
P2 0.105751763 0.000204007 0.000841654
Signifikan bila P<0,05
Tabel. Hasil Uji T-test Kadar AST Pada Pemeriksaan Awal Dan Akhir
K1 K2 P1 P2
K1 0.359720647
K2 0.778165403
P1 0.000117178
P2 0.000604238
Signifikan bila P<0,05
Page 61
61
Lampiran 12 :
Tabel. Hasil Uji T-test Kadar ALT Pada Pemeriksaan Awal
K1 K2 P1 P2
K1 0.001136466 4.996E-05 0.000378116
K2 0.001136466 0.185493643 0.376035511
P1 4.996E-05 0.185493643 0.569587028
P2 0.000378116 0.376035511 0.569587028
Signifikan bila P<0,05
Tabel. Hasil Uji T-test Kadar ALT Pada Pemeriksaan Akhir
K1 K2 P1 P2
K1 0.000976499 0.017890606 0.915044714
K2 0.000976499 0.002032593 0.00097619
P1 0.017890606 0.002032593 0.024595269
P2 0.915044714 0.00097619 0.024595269
Signifikan bila P<0,05
Tabel. Hasil Uji T-test Kadar ALT Pada Pemeriksaan Awal Dan Akhir
K1 K2 P1 P2
K1 0.130824675
K2 0.71868089
P1 4.13577E-05
P2 0.000167197
Signifikan bila P<0,05
Page 62
Lampiran Foto 1 :
Persiapan Meloxicam
a.
b.
Meloxicam 7,5 mg
Meloxicam 7,5 mg digerus hingga halus
PERSIAPAN BAHAN
Meloxicam 7,5 mg
Meloxicam 7,5 mg digerus hingga halus
62
Page 63
63
Persiapan jus buah alpukat
a.
b.
Buah alpukat jenis alpukat mentega tipe
guatemalan
Setelah alpukat diblender dilanjutkan dengan
penyaringan untuk menghasilkan buah alpukat
yang lebih halus
Page 64
Persiapan Na CMC 1 %
a.
b.
Natrium Carboxy Methyl Celullose
(Na CMC
Pemanasan 80 ml aquadest dengan suhu
80
Persiapan Na CMC 1 %
Carboxy Methyl Celullose
CMC)
ml aquadest dengan suhu
80˚C
64
Page 65
Lampiran Foto 2:
a. Penimbangan Hewan Cob
b. Pemberian Label Pada Hewan Coba
Penimbangan dilakukan pada hari ke
sebelum pemberian meloxicam
Pemberian label pada ekor
untuk memberikan tanda pada masing
masing hewan coba
PERSIAPAN HEWAN COBA
Penimbangan Hewan Coba
Pemberian Label Pada Hewan Coba
Penimbangan dilakukan pada hari ke-0
sebelum pemberian meloxicam
Pemberian label pada ekor dilakukan
untuk memberikan tanda pada masing-
masing hewan coba
65
Page 66
Lampiran Foto 3:
a. Pemberian Meloxicam
b. Pemberian Jus Buah Alpukat
Meloxicam diberikan secara oral menggunakan
kanula pada hari ke
Jus buah alpukat diberikan secara oral menggunakan
kanula pada hari ke
PERLAKUAN HEWAN COBA
Pemberian Meloxicam
Pemberian Jus Buah Alpukat
Meloxicam diberikan secara oral menggunakan
kanula pada hari ke-0
alpukat diberikan secara oral menggunakan
kanula pada hari ke-1 hingga hari ke-7
66
Page 67
67
Lampiran Foto 4:
PEMERIKSAAN KADAR AST DAN ALT
a. Pengambilan Sampel Darah
b.
Darah diambil melalui jantung dan
sebagian melalui mata sebanyak 1 ml
Darah yang diambil disimpan pada
tabung sampel darah
Page 68
68
c.
d.
Tabung sampel darah dimasukkan ke
dalam centrifuge dengan kecepatan 5000
rpm selama 5 menit
Setelah plasma dan serum terpisah,
serum diambil dan diletakkan pada cup
serum
Page 69
69
e.
f.
Cup serum diletakkan pada rak
Rak yang telah berisi cup serum dimasukkan
kedalam mesin Siemens dan dilakukan
pengaturan indikator yang ingin diketahui
yaitu AST dan ALT pada layar monitor
Page 70
70
RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan pada tanggal 9 Mei 1993 di Baubau dari
ayahanda Thamrin Ijaya dan ibunda Rita Liem. Penulis
merupakan anak ke enam dari enam bersaudara.
Penulis menyelesaikan Sekolah Dasar di SDN 3 Baubau pada
tahun 2005, kemudian penulis melanjutkan pendidikan ke SMPN
1 Baubau dan lulus pada tahun 2008. Pada tahun 2011 penulis
menyelesaikan pendidikan di SMAN 1 Baubau. Penulis diterima
di Program Studi Kedokteran Hewan, Fakultas Kedokteran,
Universitas Hasanuddin pada tahun 2011 melalui ujian
SNMPTN.
Selama perkuliahan penulis aktif dalam organisasi internal kampus yaitu Himpunan
Mahasiswa Kedokteran Hewan (HIMAKAHA) FKUH menjabat sebagai anggota
divisi Kesekretariatan pada periode 2012-2013. Selain itu, penulis juga aktif dalam
berbagai kegiatan yang diselenggarakan oleh Ikatan Mahasiswa Kedokteran Hewan
Indonesia (IMAKAHI).