KENTANG - Universitas Udayana

�

Tentang

KENTANG

��

Undang-Undang Republik Indonesia Nomor 28 Tahun 2014 Tentang Hak Cipta

Lingkup Hak Cipta Pasal 1 1. HakCiptaadalahhakeksklusifpenciptayangtimbulsecaraotomatisberdasarkanprinsipdeklaratif

setelahsuatuciptaandiwujudkandalambentuknyatatanpamengurangipembatasansesuaidenganketentuanperaturanperundang-undangan.

Ketentuan Pidana Pasal 113 1. SetiapOrangyangdengantanpahakmelakukanpelanggaranhakekonomisebagaimanadimaksud

dalamPasal9ayat(1)hurufIuntukPenggunaanSecaraKomersialdipidanadenganpidanapenjarapalinglama1(satu)tahundan/ataupidanadendapalingbanyakRp.100.000.000,00(seratusjutarupiah).

2. Setiap Orang yang dengan tanpa hak dan / atau tanpa izin Pencipta atau pemegang Hak CiptamelakukanpelanggaranhakekonomiPenciptasebagaimanadimaksuddalamPasal9ayat(1)hurufc,hurufd,huruff,dan/atauhurufhuntukPenggunaanSecaraKomersialdipidanadenganpidanapenjarapalinglama3(tiga)tahundan/ataupidanadendapalingbanyakRp.500.000.000,00(limaratusjutarupiah).

���

UdayanaUnIveRSItyPReSS2018

Tentang

KENTANG

Ida Ayu AstariniI Gede Rai Maya Temaja

KusmanaDebora Margareth

�v

Hak Cipta pada Penulis. Hak Cipta Dilindungi Undang-Undang :

dilarangmengutipataumemperbanyaksebagianatauseluruhisibukuinitanpaizintertulisdaripenerbit.

Penulis:Idaayuastarini

IGedeRaiMayatemajaKusmana

deboraMargareth

Editor:Jiwaatmaja

Cover & Ilustrasi: Repro

Design & Lay Out:IWayanMadita

Diterbitkan oleh:UdayanaUniversityPress

KampusUniversitasUdayanadenpasarJl.P.B.Sudirman,denpasar-Balitelp.(0361)255128

[email protected] http://penerbit.unud.ac.id

Cetakan Pertama:2018,x+178hlm,15x23cm

ISBN: 978-602-294-xxx-x

TentangKENTANG

v

PRAKATA

Puji syukur kami panjatkan kehadirat Ida Sang Hyang Widhi Wasa, Tuhan Yang Maha Esa karena berkat limpahan rahmat dan karunia Beliau, Buku “Tentang Kentang” dapat kami susun dan terbitkan. Buku ini memuat berbagai aspek yang berkaitan dengan kentang, mulai dari sejarah dan penyebaran tanaman kentang di dunia, kandungan nutrisi kentang, pemuliaan, varietas kentang, teknik budidaya, hama penyakit yang menyerang kentang budidaya dengan fokus utama pada virus, teknik mengeliminasi virus, teknik kultur jaringan untuk penyediaan benih kentang bermutu, pasca panen, hingga resep–resep mudah dan menarik berbahan kentang. Buku ini dapat dijadikan acuan bagi mahasiswa yang mengambil mata kuliah Hortikultura, Pemuliaan Tanaman, Kultur Jaringan Tanaman, dan praktisi yang tertarik dalam pembudidayaan kentang.

Kami menyadari dalam penyusunan buku ini masih terdapat kekurangan, untuk itu kritik dan saran untuk penyempurnaan buku ini sangat diharapkan. Semoga buku ini dapat memberi maanfaat bagi mahasiswa, dosen, peneliti serta semua pihak yang tertarik dan berkecimpung dalam usaha dan pembudidayaan kentang.

Denpasar, 1 Oktober 2018

Ida Ayu Astarini

v�

DAFTAR ISI

Prakata ................................................................................... vDaftar Isi ................................................................................... vii

Bab I. Pendahuluan ........................................................................ 1Sejarah Kentang ............................................................................. 2Asal dan Domestikasi .................................................................... 2Introduksi Kentang ke Eropa ......................................................... 5Kandungan Nutrisi Kentang .......................................................... 7Produk Olahan ............................................................................... 9Produksi Kentang di Dunia ............................................................ 10Produksi Kentang di Indonesia ...................................................... 11Kebijakan Pemerintah dalam Pengembangan Kentang di Indonesia ................................................................................... 12Tantangan dan Kendala .................................................................. 13

Bab II. Botani Kentang ................................................................. 15Botani Kentang .............................................................................. 15Biologi Reproduksi Kentang .......................................................... 20Habitat ................................................................................... 21Perubahan Iklim ............................................................................. 21

Bab III. Pemuliaan Kentang .......................................................... 23Varietas Kentang ............................................................................ 23Pemuliaan Kentang ........................................................................ 27Tujuan Pemuliaan dan Kriteria Seleksi .......................................... 28Petunjuk Teknis Pemuliaan Kentang ............................................. 33Perluasan Sumberdaya Genetik ..................................................... 38Variasi Somaklonal dan Pemuliaan Mutasi ................................... 39Transformasi Genetik ..................................................................... 40

v��

Tujuan Pemuliaan saat ini di Negara Asia, Afrika, dan Amerika Latin ......................................................................... 41Perkembangan Pemuliaan Kentang di Indonesia ........................... 42Benih Kentang Sejati (True Potato Seed) ...................................... 47

Bab IV. Sistem Produksi Kentang di Texas, USA ......................... 49Persilangan Tanaman Kentang ...................................................... 50Field Trial ................................................................................... 52Strategi Produksi Kentang di Texas ............................................... 55Panen ................................................................................... 56PVP (Plant Variety Protection) = Plant Variety Right .................. 58Perbanyakan Benih ........................................................................ 58Aklimatisasi ................................................................................... 60Sertifikasi Benih ............................................................................. 61Pengolahan kentang menjadi French Fries – kunjungan ke Pabrik Simplot, Prosser, Washington ........................................ 61

Bab V. Teknik Produksi Benih Kentang berkualitas di Indonesia 63Sistem Perbanyakan Benih Kentang di Belanda dan Texas .......... 66Sistem Perbanyakan Benih Kentang di Jawa Barat ....................... 67Pembibitan Kentang G0 ................................................................. 68Pembibitan Kentang G1 ................................................................. 69Pembibitan Kentang G2, G3, G4 ................................................... 69Pasca Panen ................................................................................... 70Teknologi Produksi Benih Penjenis Kentang (G0) Varietas Granola Kembang di Malang, Jawa Timur .................................... 71Distribusi Benih Kentang di Indonesia .......................................... 72Permasalahan Pembibitan Kentang ................................................ 73

Bab VI. Penyakit Virus Pada Kentang ........................................... 74Potato Virus Y................................................................................ 74Potato Leafroll Virus ...................................................................... 76Potato Virus S ................................................................................ 78Potato Virus X................................................................................ 78

v���

Potato Mop Top Virus ................................................................... 79Tobacco Rattle Virus ..................................................................... 80Potato Spindle Tuber Viroid .......................................................... 81Alfalfa Mosaic Virus ...................................................................... 82Panduan Umum Penanggulangan Virus ........................................ 83

Bab VII. Teknologi Eliminasi Virus: Kultur Meristem, Thermotherapy dan Kemotherapy ................................................. 85Karakteristik Jaringan Meristem .................................................... 87Deteksi Virus pada Ujung Meristem .............................................. 89Meristem-tip Culture (MTC) ......................................................... 90Kultur dan Perkembangan Meristem ............................................. 92Faktor yang Mempengaruhi Perkembangan Meristem .................. 94Kultur Potongan Batang ................................................................. 101Indexing ................................................................................... 102Eradikasi virus ............................................................................... 103Pemeliharaan Stok Tanaman Bebas Virus dan Re-Infeksi ............ 108

Bab VIII. Budidaya Kentang ......................................................... 110Persiapan Lahan ............................................................................. 110Persiapan Bibit ............................................................................... 111Penanaman ................................................................................... 112Pemeliharaan .................................................................................. 113Pemanenan dan Penyimpanan ........................................................ 115Rotasi Tanaman ............................................................................. 115

Bab IX. Resep Masakan Berbahan Kentang ................................. 1161. Garlic Roasted Potatoes (Kentang panggang dengan bawang putih) ......................................................................... 1162. Kentang Panggang Accordion ................................................ 1173. Mashed Potato ........................................................................ 1184. Salad Kentang ........................................................................ 1195. Kentang Panggang dengan Brokoli Saus Keju ...................... 1206. Kentang Panggang Saus Keju ................................................ 121

�x

7. Potato Wedges ........................................................................ 1228. Keripik Kentang – Homemade ............................................... 1239. Bacon and Cheese Stuffed Potatoes ....................................... 12410. Chicken Stuffed Potato Bombs .............................................. 12511. The Best Fresh Tomato Salsa ................................................. 126

Bab X. Standar Operasional Prosedur Panen dan Pasca Panen .... 128

Daftar Pustaka ............................................................................... 159

Biodata Penulis ............................................................................. 178

x

�

BAB I PENDAHULUAN

Kentang (Solanum tuberosum L.) adalah tanaman pangan ketiga terpenting di dunia setelah gandum dan beras. Produksi

kentang pada tahun 2014 mencapai 382 juta ton dari 19,2 juta hektar lahan (FAOSTAT, 2017). China merupakan produsen kentang terbesar di dunia (96 juta ton), diikuti oleh India di urutan kedua (45 juta ton), Rusia di urutan ketiga (30 juta ton), Ukraina (22 juta ton) di urutan ke empat dan USA (20 juta ton) di urutan ke lima. Peningkatan produksi kentang di China utamanya tidak hanya disebabkan oleh peningkatan jumlah lahan pertanaman (naik empat kali lipat sejak tahun 1960), tetapi diikuti dengan peningkatan produksi per hektar (1,5 kali lipat sejak 1960), sedangkan di India, peningkatan produksi mencapai 3 kali lipat (Bradshaw dan Bonierbale, 2010).

Urutan konsumsi per kg/kapita/tahun pada tahun 2013 adalah Rusia (125 kg), Jerman (66,8 kg), USA (52,8 kg), Cina (40,8 kg), dan Jepang (20,6 kg) (FAOSTAT, 2015). Sebagai pangan utama, kentang berkontribusi

�

pada tujuan pengembangan millenium PBB untuk menyediakan ketahanan pangan dan mengentaskan kemiskinan, karena kentang tidak hanya sebagai penyedia pangan, tetapi juga penyedia tenaga kerja dan sumber penghasilan. Untuk menunjukkan peran penting tersebut, PBB menamakan tahun 2008 sebagai Tahun International Kentang (International Year of the Potato) (Bradshaw dan Bonierbale, 2010).

Sejarah KentangPengumpulan kentang liar hingga membudidayakan kentang dan

akhirnya mendomestikasi kentang telah dimulai sejak awal manusia menjejakkan kaki di Amerika. Sisa kentang liar telah ditemukan pada akhir jaman Pleistocene di Chile tengah selatan, pada 12.500 sebelum masehi (Ugent et al., 1987). Sisa makanan yang diawetkan ditemukan di berbagai lokasi ekskavasi pada pesisir Peru dan di dataran tinggi Chilca Canyon, Lima Selatan (Engel, 1970). Akselerator radiocarbon Oxford berhasil menentukan sisa umbi yang ditemukan Engel berumur sekitar 7.000 tahun sebelum masehi. Kentang segar umumnya dipanggang dalam bara api atau dimasak pada oven tanah atau batu panas (Hawkes, 1990). Sisa terasering bekas budidaya yang sangat luas di seluruh bagian Andes menunjukkan bahwa kentang merupakan tanaman yang ditanam secara luas di pegunungan Andes sebelum ditemukannya Amerika Selatan oleh bangsa Spanyol pada 1533 dan masih tetap menjadi pangan penting hingga kini. Menariknya, CIP (International Potato Center) di daerah ini memiliki sebuah proyek, yaitu PAPA ANDINA yang bertujuan untuk mengembangkan rantai pasar kentang dari petani skala kecil di daerah desa miskin di Ecuador, Peru, Bolivia untuk pasar lokal dan luar negeri (Anderson, 2007).

Asal dan DomestikasiAsal muasal spesies liar dari kentang budidaya banyak

diperbincangkan. Spooner et al. (2005a) memberikan bukti taksonomi molekuler untuk domestikasi tunggal di dataran tinggi Peru Selatan dari anggota grup utara S. brevicaule kompleks yang merupakan spesies diploid. Grup ini terdiri atas spesies seperti S. canasense, S. multidissectum, dan S. bukassovii, dan beberapa tidak selalu diketahui pasti dan mungkin lebih

�

baik diturunkan ke spesies tunggal, S. bukasovii. Sukhotu dan Hosaka (2006) menyimpulkan dari data kloroplas bahwa spesies ini pertama kali didomestikasi di Peru dengan penyebaran selanjutnya ke Bolivia. Hasil domestikasi adalah cultigen diploid S. tuberosum grup Stenotomum (Dodds, 1965) yang menjadi sumber kentang budidaya.

Dodds (1962) mengklasifikasikan kentang budidaya ke dalam lima grup tak resmi pada satu spesies S. tuberosum dan grup Andigena, Chaucha, Phureja dan Tuberosum diturunkan dari grup Stenotomum (Gambar 1.1). Ia juga menunjukkan dua spesies hibrida tambahan yang melibatkan spesies liar (S. x curtilobum dan S. x jazepczukii), sementara penulis berikutnya menambahkan S. x ajanhuiri, sehingga menjadi total delapan grup. Hawkes (1990) memberikan grup Andigena dan tuberosum berstatus subspesies dan enam grup lainnya sebagai spesies, sehingga total ada 8 spesies budidaya.

Spooner et al. (2007), dengan menggunakan data molekuler, berargumentasi ada 4 spesies. Mereka menganggap frost-tolerant S. x ajanhuiri (diploid), frost-resistant S. x juzepczukii (triploid), dan frost-resistant S. c curtilobum (pentaploid) sebagai spesies hibrida terpisah yang diturunkan dari persilangan antara spesies yang sudah terdomestikasi dengan spesies liar. Kentang pahit ini dibudidayakan pada altitude tinggi (hingga 4.500 m untuk S. x juzepczukii) di central Andes, Peru dan Bolivia (Hawkes, 1990). S. × ajanhuiri adalah hibrida dari S. tuberosum grup Stenotomum dengan spesies diploid frost-resistant liar S. megistacrolobum, S. × juzepczukii adalah hibrida dari S. tuberosum grup Stenotomum dengan frost-resistant tetraploid liar spesies S. acaule, dan S. × curtilobum adalah hibrida antara gamet tidak tereduksi triploid S. × juzepczukii dengan gamet normal S. tuberosum grup Andigena. Spooner et al. (2007) mengelompokkan Andigena, Chaucha, Phureja, Stenotomum, dan Tuberosum (di sana disebut Chilotanum) sebagai spesies tunggal S. tuberosum, tetapi sekarang dibagi menjadi dua grup kultivar. Ini adalah grup Andigenum yang berasal dari dataran tinggi Andean yang terdiri atas diploid, triploid, dan tetraploid, dan grup landrace Chilotanum, tetraploid yang berasal dari dataran rendah Chile. Saat ini perlu mengingat kembali bagaimana landraces tersebut muncul.

�

Gambar 1.1 Asal grup kentang budidaya S. tuberosum (Dodds, 1962) dan S. x ajanhuiri, S. x juzepczukii dan S. x curtilobum, tanaman budidaya yang

memiliki rasa pahit dan tahan frost.

Pertama–tama, penting untuk mempertimbangkan bagaimana grup Andigena muncul dari grup Stenotomum. Sukhotu dan Hosaka (2006) menyimpulkan dari kloroplas dan marka DNA nukleus bahwa grup Andigena muncul dari grup Stenotomum melalui polyploidisasi seksual dari gamet yang tidak tereduksi berkali–kali di banyak tempat pada grup Stenotomum. Tetraploid ini kemudian termodifikasi sewaktu–waktu dan terjadi seleksi tak sengaja (hibridisasi alami) dengan spesies liar yang berdekatan, sehingga menghasilkan grup Andigena seperti saat ini. Scurrah et al. (2008) menunjukkan bahwa spesies yang berhubungan dekat, yang tumbuh sekitar lahan petani dapat bersilang dengan grup Andigena dan bahwa beberapa progeni hibrida akan diseleksi oleh petani Andean saat ini. Hasil ini menunjukkan bahwa kromosom dan keturunan tetrasomik dari tetraploid S. tuberosum dan mengapa hal ini bisa dianggap sebagai autotetraploid dari diploid grup Stenotomum untuk tujuan praktis. Hosaka (2004) menunjukkan bahwa sitoplasma tuberosum Chile (T) dihasilkan

�

dari spesies liar selatan S. tarijense sehingga grup Tuberosum tidaklah hanya grup Andigena yang telah diseleksi untuk menghasilkan umbi pada hari panjang. Spooner et al. (2007) menunjukkan bahwa sitoplasma T juga ditemukan ada frekuensi yang rendah di Andean landraces termasuk beberapa diploid, menunjukkan bahwa sitoplasma T pindah ke arah utara dan juga menjadi predominan pada plasma nutfah Chile. Akan tetapi, hal ini tidak berlawanan dengan pandangan bahwa landrace Chile diturunan secara sekunder dari landrace Andean dan bahwa landrace yang beradaptasi hari panjang di pesisir Chile sangat berbeda secara genetik dari landrace yang beradaptasi hari pendek di Andes (Raker dan Spooner, 2002).

Landraces S. x cahucha adalah hibrida triploid antara diploid S. tuberosum grup Stenotomum dengan tetraploid S. tuberosum grup Andigena dan, seperti grup Stenotomum, serupa dengan landrace Central Andes di Peru dan Bolivia. Sebaliknya, S. tuberosum grup Phureja (diploid) diseleksi dari grup Stenotomum oleh petani Andean untuk sifat dormansi umbi yang pendek dan pertumbuhan umbi yang lebih cepat sehingga mereka dapat menanam hingga 3x per tahun pada daerah yang lebih rendah, lebih hangat di lembah timur Andes. Kentang Phureja karenanya dapat menyebar ke Ecuador utara, Colombia dan Venezuela dan merupakan kentang kedua terluas pembudidayaannya di Amerika Selatan, setelah Andigena yang tumbuh di seluruh dataran tinggi Andes di Amerika selatan. Menariknya, Ghislain et al. (2006) menemukan bahwa 32 dari 102 aksesi Phureja pada koleksi di International Potato Center (CIP) adalah triploid atau tetraploid, bukan diploid, sesuai pendapat Hawkes (1990) bahwa tidak semua Phureja adalah diploid.

Introduksi kentang ke EropaPizzarro dan anak buahnya dianggap orang-orang pertama Eropa

yang melihat pembudidayaan kentang di Andes, Peru pada 1533 saat Bangsa Spanyol menaklukkan Inca, walaupun tidak ada catatan. Catatan pertama adalah di Colombia tahun 1537 (Hawkes, 1990). Catatan pertama budidaya kentang di luar Amerika selatan adalah tahun 1567 dari Canary Islands ke Antwerp, Belgia, dan catatan tahun 1573 menunjukkan kentang telah diperkenalkan di Rumah Sakit de La Sangre di Seville. Jadi, kentang

�

mungkin diintroduksi dari Amerika selatan ke Canary Island sekitar tahun 1562, kemudian dari sana dibawa ke Eropa (Hawkes dan Fransisco-Ortega, 1993). Hasil penelitian menunjukkan kentang yang berasal dari Canary Island terdiri atas tipe/landrace Andean dan Chile, sehingga Rios et al. (2007) memperkirakan ada beberapa introduksi awal dari kedua tipe tersebut. Selanjutnya diperkirakan bahwa kentang di Eropa pada masa awal diseleksi dari hasil introduksi kentang Chile karena memiliki daya adaptasi lebih baik pada kondisi di Eropa. Analisis DNA dari 49 spesimen herbarium menunjukkan keberadaan kentang Andean dari tahun 1700-an dan kentang Chile sekitar 1811 di Eropa (Ames dan Spooner, 2008; Bradshaw dan Bonierbale, 2010).

Setelah diintroduksi ke Eropa, kentang pada awalnya hanya menjadi koleksi botani, ditanam untuk diteliti apakah ada manfaat untuk pengobatan. Potensinya sebagai tanaman pangan pertama kali diketahui di Irlandia akhir abad ke-17 dan selama abad ke-18 (Burton, 1989). Iklim dan tanah di Irlandia terbukti sangat cocok untuk kentang, tetapi ada alasan sosial ekonomi yang melatarbelakangi peningkatan konsumsi kentang di Irlandia. Akibatnya, populasi penduduk Irlandia meningkat tajam dari 2 juta pada 1700 menjadi 8,5 juta pada 1845 (Reader, 2008). Namun kemudian terjadi bencana serangan penyakit ‘late blight’ pada kentang tahun 1845 – 1846, yang mengakibatkan kelaparan dan penurunan populasi yang signifikan (Zadoks, 2008).

Ironisnya, kekurangan pangan menjadi pemicu pembudidayaan kentang di seluruh Eropa pada abad ke-18 karena kekuatan ekonomi dan militer tergantung pada kemampuan memberi makan pada masyarakat. Selama abad ke-17 dan 18, banyak Negara – negara Eropa melakukan eksplansi perdagangan dan politik ke dunia ketiga. Misionaris dan kolonis bangsa Eropa (Inggris, Belanda, Perancis, Portugis dan Spanyol) membawa serta berbagai bahan pangan mereka, termasuk kentang (Pandery dan Kaushik, 2003). Produksi kentang mendunia pada abad ke-19, utamanya karena penyebaran ke Cina dan India, sehingga saat ini kedua Negara tersebut menjadi produsen kentang tertinggi pertama dan ketiga di dunia.

�

Kandungan Nutrisi KentangUmbi kentang adalah batang bawah tanah yang membengkak yang

berevolusi untuk bertahan hidup dari musim ke musim sebagai organ penyimpanan yang dorman. Penyimpanan energi hampir keseluruhan dalam bentuk pati. Karena itu, kentang merupakan sumber energi karbohidrat pada diet jutaan orang dan bahkan dipertimbangkan sebagai pangan pertahanan hidup manusia di ruang angkasa (Wheeler, 2009). Pati kentang resisten terhadap pencernaan oleh enzim pada perut dan usus kecil, sehingga mencapai usus besar dalam bentuk yang utuh. Pati yang resisten ini dianggap memiliki efek fisiologis dan keuntungan kesehatan yang serupa dengan serat: memberi rasa kenyang, memberi proteksi terhadap kanker colon, meningkatkan toleransi glukosa dan sensitifitas tehadap insulin, menurunkan konsentrasi kolesterol plasma, trigliserida, dan bahkan mungkin menurunkan penyimpanan lemak.

Jumlah pati resisten pada kentang tergantung pada metode pengolahan. Memasak dan kemudian mendinginkan kentang dilaporkan meningkatkan resistensi pati secara signifikan. Englyst et al. (1992) melaporkan bahwa 7% pati kentang yang dimasak adalah pati resisten, tetapi persentase ini meningkat 13% saat didinginkan.

Selain dikenal sebagai sumber karbohidrat, kentang juga merupakan sumber protein berkualitas tinggi. Meskipun kentang mengandung hanya 2% protein berdasarkan berat segar, nilainya meningkat menjadi 10% ketika diuji berdasarkan berat kering, setara dengan kebanyakan serealia seperti beras dan gandum. Kentang merupakan penyedia lysine yang bagus, tetapi rendah kandungan asam amino sulfur yang membatasi nilai nutrisinya (Friedman, 1996). Kentang mengandung vitamin C, B6, dan B1, folate, yang signifikan, mineral potassium, fosfor, kalsium, dan magnesium, juga kandungan mikronutrien besi dan seng. Potasium adalah mineral yang paling banyak. Konsentrasi besi dan seng pada kentang relatif rendah dibandingkan dengan konsentrasi mikronutrien tersebut pada serealia dan kacang – kacangan. Akan tetapi, ketersediaan besi pada kentang lebih tinggi dari sereal dan kacang-kacangan karena keberadaan asam askorbat yang tinggi (promotor penyerapan besi) dan kandungan asam fitik yang rendah (penghambat penyerapan besi) (Fairweather-Tait, 1983).

�

Kentang kaya serat, khususnya ketika dimakan tanpa kulit; dan kaya antioksidan yang terdiri atas polifenol, vitamin C, karotenoid, dan tokoferol (Storey, 2007). Konsentrasi vitamin C pada umbi menurun jika dimasak. Akan tetapi, tingkat penurunan tergantung pada kultivar dan pada cara memasak. Penelitian menggunakan kentang asli (native) dari Peruvian Andes menunjukkan bahwa konsentrasi vitamin C pada umbi yang direbus bersama kulitnya, lebih tinggi dibandingkan yang dipanggang atau dimasak pada microwave oven (Burgos et al., 2009a). Seratus gram kentang masak memberi 25–50% asam askorbat harian (100–120 mg/hari) yang direkomendasikan (Naidu, 2003).

Konsentrasi karotenoid pada umbi kentang berkaitan dengan warna daging umbi. Kentang yang memiliki daging berwarna kuning memiliki konsentrasi total karotenoid yang tinggi, bervariasi hingga 1,840 µg/100 g berdasarkan berat basah, dengan zeaxanthin merupakan yang utama (Burgos et al., 2009b). Kentang yang memiliki daging berwarna krem memiliki konsentrasi total karotenoid yang rendah, dengan lutein, vioaxanthin, dan beta-karoten yang utama. Lutein dan zeaxathin, dua karotenoid tinggi konsentrasinya pada serum manusia, terlokalisasi dengan jumlah yang signifikan pada retina dan berperan untuk memproteksi terhadap degenerasi makular. Konsentrasi zeaxanthin pada umbi kentang berdaging kuning mencapai 1,290 µg/100 g berdasarkan berat basah. Karakteristik khusus pada kentang berdaging kuning sangatlah penting karena sumber zeaxanthin sangatlah jarang. Tampaknya memasak memiliki pengaruh negatif pada konsentrasi lutein dan zeaxanthin pada kentang. Seratus gram daging kentang kuning menyediakan jumlah zeaxanthin yang cukup (di atas 500 µg) untuk asupan tubuh.

Semua kentang mengandung asam klorogenik sebagai asam fenolik prinsip. Kentang ungu dan merah juga mengandung antosianin. Kentang utuh tanpa dikupas dengan daging berpigmen penuh mengandung 40 mg/100 g berat segar total antosianin. Kentang berdaging merah mengandung glikosida kilated, yaitu pelargonidin, sementara kentang ungu mengandung pula malvidin, petunidin, peonidin dan delfinidin (Brown, 2005). Karena properti anti-oksidatifnya, senyawa fenolik memiliki potensi manfaat kesehatan, mengandung antibakteri, antivirus, anti-karsinogenik, anti-

�

inflamatori, dan aksi vasodilatori (Mattila dan Hellstrom, 2006). Umbi kentang dengan daging berwarna ungu kaya sumber senyawa fenolik. Umbi yang dimasak menunjukkan konsentrasi senyawa fenolik yang lebih tinggi yang mungkin dikarenakan ekstraksi yang lebih efisien dari sampel yang dimasak (Burgos et al., 2009c).

Sebagai pangan utama dan sayuran, kentang perlu dimasak karena pati ungelatinized-nya tidak dapat dicerna (Burton, 1989). Cara memasak umumnya dipanggang, direbus, dikukus, dibakar, digoreng, atau di microwave, meskipun di daerah asalnya Andes, berbagai cara memasak juga digunakan. Ketika dipanggang, direbus atau dihancurkan (mashed) dan dimakan, kentang memiliki index glisemik (GI) tinggi, yang merupakan ukuran dari efek konsumsi karbohidrat terhadap level glukosa darah. Jadi GI yang tinggi pada kentang menjadi kekawatiran untuk penderita diabetes tipe 2, dan lebih umumnya, pada peningkatan obesitas di banyak negara (Foster – Powell et al., 2002). Namun, Monro dan Mishra (2009) menunjukkan bahwa kentang rebus atau mashed tidak berglisemik tinggi, serupa dengan spaghetti atau beras yang direbus dalam jumlah berat segar yang sama. Kentang biasanya dimakan bersama dengan makanan lain dan karenanya nilai nutrisinya akan sangat berguna bagi tubuh manusia (McGregor, 2007). Kentang memegang peranan penting sebagai sumber energi yang mengandung karbohidrat dengan densitas sedang, yang cocok untuk diet yang seimbang. Kentang segar bebas lemak dan kolesterol dan memiliki kandungan air sebanyak 80% (Monro dan Mishra, 2009).

Produk OlahanNilai komersial kentang meningkat jika diproses menjadi produk yang

disukai konsumen. Saat ini produk olahan utama adalah kripik kentang, French fries, dan produk beku lainnya, diikuti oleh produk yang dihilangkan kadar airnya seperti kentang yang dikupas-bekukan, dan kentang kaleng. Produksi skala industri kripik kentang dimulai 1920-an, French fries pada tahun 1950-an, dan olahan kentang sejak saat itu tumbuh menjadi industri global yang terus meluas. Di Amerika utara dan beberapa negara Eropa, 50 – 60% kentang dibuat menjadi produk olahan. Selanjutnya, pabrik – pabrik pengolah kentang dibangun di berbagai negara dimana kentang dikonsumsi

�0

sebagai pangan utama. Diperkirakan konsumsi global olahan kentang akan meningkat dari 13% total pangan yang digunakan pada 2002 menjadi 18% di tahun 2020 (Li et al., 2006; Kirkman, 2007).

Sejak pati kentang dikembangkan di USA pada 1830an (Treadway, 1959), industri kentang telah berkembang di Amerika Utara dan Eropa, utamanya di Belanda, Polandia, Perancis, dan Jerman. Saat ini pati kentang merupakan bahan dasar untuk lebih dari 500 macam produk komersial (Burton, 1989). Sejak tahun 1990-an, kentang telah terbukti berguna untuk molecular farming di mana sel – sel tanaman digunakan untuk mengekspresikan gen rekombinan dan menghasilkan produk bernilai tinggi seperti vaksin (Li et al., 2006). Di beberapa negara, kentang masih diberikan sebagai pakan hewan, tetapi penggunaannya terus menurun.

Produksi Kentang di DuniaKentang dibudidayakan di 149 negara pada latitude 65oN – 50oS

dan pada ketinggian 0 - 4.000 m (Hijmans, 2001). Kentang dapat tumbuh di tempat yang tidak terlalu panas (rata – rata suhu harian ideal < 21oC) dan tidak terlalu dingin (> 5oC), dan ada cukup air hujan atau irigasi (Govindakrishan dan Haverkort, 2006). Kentang merupakan tanaman musim panas di dataran tinggi tropis Bolivia, Peru dan Mexico; sepanjang tahun di sebagian Cina, Brazil, dan di ekuator dataran tinggi di Amerika Selatan (misalnya Ecuador dan Colombia) dan Afrika Timur (misal Kenya dan Uganda): sebagai tanaman musim dingin di dataran rendah subtropis (misal India Utara dan Cina Selatan), sebagai tanaman musim semi dan musim gugur di daerah Mediteranian (misal Afrika Utara), dan musim panas di dataran rendah temperate (Amerika Utara, Eropa Barat dan Timur, Cina Utara, Australia dan New Zealand).

Masa pertumbuhan umumnya 90 – 120 hari, paling pendek 75 hari pada dataran rendah subtropis, dan bisa mencapai 180 hari pada dataran tinggi Andes. Pada dataran rendah temperate, jika penanaman dilakukan saat musim semi dan dipanen saat musim gugur, lama penanaman umumnya 120 – 150 hari dengan potensi hasil panen yang tinggi. Kentang modern memiliki indeks panen tinggi, sekitar 0,80 (proporsi keseluruhan berat kering tanaman, yaitu umbi yang dipanen) dan hasil percobaan menunjukkan berat

��

basah umbi mencapai 120 ton/ha di Australia Barat dengan masa tanam yang panjang, tanpa serangan hama dan penyakit dan dengan input air dan pupuk mencukupi (Mackay, 1996). Akan tetapi, dalam praktiknya hasil ini sulit tercapai. Rata – rata hasil berat basah umbi sangat bervariasi antarnegara, berkisar antara 15 – 50 ton/ha (FAOSTAT, 2017).

Karena kentang tidak dapat ditanam sepanjang tahun pada sebagian besar lokasi di dunia, penting untuk menyimpan umbi benih untuk ditanam pada musim berikutnya dan juga menyimpan umbi konsumsi. Karenanya, infrastruktur pascapanen seperti transportasi darat dan fasilitas penyimpanan suhu dingin juga sangat penting untuk keberhasilan produksi kentang.

Produksi Kentang di IndonesiaKentang diintroduksi oleh bangsa Eropa ke Indonesia sekitar

abad ke- 17 – 18 dan pertama kali ditanam di daerah Cimahi, Bandung. Kentang di Indonesia merupakan salah satu komoditas sayuran penting karena mempunyai nilai ekonomi yang cukup tinggi. Indonesia merupakan produsen kentang terbesar di Asia Tenggara dan berada pada posisi kedua setelah China di antara negara-negara prioritas di Pusat Kentang Internasional (International Potato Center-CIP) di kawasan Asia Timur, Asia Tenggara, dan Pasifik (Dimyati, 2008). Produksi kentang di Indonesia meningkat dua kali lipat dalam 19 tahun terakhir, yaitu dari 525.839 ton pada 1991 menjadi 1.060.580 ton pada 2010. Area kentang juga meningkat lebih dari 50% yaitu dari 39.620 ha menjadi 66.508 ha, dan produktivitas meningkat 22% dari 13,2 ton/ha menjadi 15,9 ton/ha (Dirjen Hortikultura, 2011).

Sejak 1980-an, varietas kentang yang banyak ditanam petani di Indonesia adalah varietas Granola yang menempati sekitar 80 sampai 85% dari luasan kentang di Indonesia. Basuki et al. (2005) menyatakan bahwa varietas Granola merupakan varietas yang sangat disukai petani ditinjau dari tipe pertumbuhan maupun hasilnya. Walaupun varietas Granola peka terhadap penyakit busuk daun (Phytophthora infestans), tetapi karena ketahanannya yang moderat terhadap penyakit virus PLRV dan PVY, varietas tersebut merupakan varietas kentang yang paling banyak ditanam oleh petani sampai saat ini. Penyakit busuk daun merupakan penyakit

��

utama pada tanaman kentang terutama pada musim penghujan. Penggunaan fungisida yang berlebih (sampai 20 kali penyemprotan) dalam satu periode musim tanam sering dilaporkan.

Namun, dengan perkembangan jaman yang mengarah pada keamanan pangan dan budidaya tanaman yang ramah lingkungan, maka diperlukan varietas kentang yang tahan terhadap penyakit seperti busuk daun yang dapat mengurangi penggunaan pestisida dan aman untuk dikonsumsi karena residu pestisida yang terkandung tidak melebihi ambang yang telah ditetapkan. Pengembangan varietas kentang yang tahan penyakit busuk daun telah dilakukan dengan menyilangkan RB transgenik Katahdin SP904 dan transgenik Katahdin SP951 sebagai induk jantan dengan dua varietas kentang, Atlantik dan Granola yang rentan penyakit busuk daun, sebagai induk betina (Ambarwati et al., 2011). Selain itu, pada saat ini permintaan akan kentang prosesing untuk industri makanan terutama untuk keripik kentang (potato chips) terus meningkat terutama di daerah perkotaan (Ezeta, 2008). Pada saat ini varietas kentang yang digunakan untuk kentang proses adalah varietas Atlantik, tetapi varietas Atlantik mempunyai daya hasil lebih rendah dari Granola, tidak tahan penyakit busuk daun dan layu bakteri serta masa degenerasinya sangat cepat (Kusmana dan Basuki, 2004; Basuki et al., 2003).

Kebijakan Pemerintah dalam Pengembangan Kentang di IndonesiaDi Indonesia, kegunaan kentang adalah sebagai pangan dan sekaligus

sumber nutrisi karbohidrat, protein, vitamin dan mineral. Kentang dapat menjadi pilihan untuk diversifikasi sumber karbohidrat dan dapat diproses menjadi berbagai penganan seperti donut, keripik dan kentang goreng. Kentang di Indonesia dapat ditanam sepanjang tahun sehingga tersedia juga sepanjang tahun (Gambar 1.2).

Dalam hal penyerapan tenaga kerja, budidaya kentang melibatkan 300 – 400 orang per hektar lahan selama tiga bulan sejak tanam hingga panen. Karenanya budidaya kentang dapat menjadi pilihan untuk penyerapan tenaga kerja harian di daerah padat penduduk. Sebagai contoh, pada 2006, total luas panen kentang di Indonesia adalah 59.748 ha dan menyerap 17 – 23 juta orang.

��

Kentang di Indonesia dapat menjadi sumber penghasilan utama keluarga tani dengan pendapatan Rp. 15 – 20 juta/ha/3 bulan dengan produktivitas mencapi 15 – 30 ton per hektar tergantung kualitas bibit yang digunakan. Kentang memiliki nilai ekonomi cukup tinggi karena diperlukan oleh industri makanan, terutama restoran – restoran cepat saji (Dimyati, 2008).

Gambar 1.2. Sentra produksi kentang di Indonesia yang utama adalah: Nangro Aceh Darussalam, Sumatera Utara, Sumatera Barat, Jambi, Jawa Barat, Jawa

Tengah, Jawa Timur, Sulawesi Selatan, Sulawesi. Utara, NTB

Tantangan dan KendalaPertanaman kentang di Indonesia umumnya berada di dataran

tinggi, karena kentang memerlukan suhu yang relatif sejuk (20 – 22oC) untuk pembentukan umbi. Areal produksi di dataran tinggi berpotensi membahayakan lingkungan seperti banjir dan erosi, akibat konversi hutan sebagai penahan air menjadi areal produksi tanaman hortikultura. Permasalahan lain adalah respon petani yang relatif rendah untuk menerapkan teknik budidaya yang ramah lingkungan (Good Agricultural Practice). Kendala produksi kentang lainnya adalah lahan usaha tani yang sempit dan menyebar, serta keterbatasan benih berkualitas.

��

Strategi pengembangan usaha tani kentang yang diterapkan pemerintah adalah: 1) Menentukan area pengembangan dengan mempertimbangkan kesesuaian iklim, 2) Pengembangan pasar dan kemitraan dengan penerapan SCM, 3) Menerapkan GAP/SOP untuk memperbaiki kualitas dan meningkatkan produksi, 4) Memberdayakan kelembagaan kelompok tani dan meningkatkan sumberdaya manusia, 5) Mengintegrasikan semua investasi dengan semua pihak, dan 6) Meningkatkan konsumsi dengan melakukan promosi.

Program Pengembangan yang dicanangkan pemerintah melalui Kementerian Pertanian, khususnya Direktorat Jenderal Hortikultura meliputi: 1) Pengembangan area produksi yang ramah lingkungan di dataran tinggi yang datar, dataran menengah, mempertimbangkan usaha konservasi lahan, 2) memperbaiki rantai pasok yang telah ada, pengembangan pasar dengan mendorong kemitraan, 3) Meningkatkan kualitas dan produksi dengan menerapkan GAP/SOP serta mengadopsi teknologi baru (mulsa, sprinkler), 4) Mengintegrasikan semua investasi untuk memperkuat industri perbenihan, memperbaiki fasilitas pasca panen, memperkuat permodalan petani, menyediakan/memperkuat/memperbaiki infrastruktur, mengembangkan sistem informasi untuk pola tanam, 5) Memperkuat kelembagaan tani, kelembagaan penangkar benih, kelompok tani, koperasi, asosiasi, 6) Meningkatkan konsumsi melalui promosi, pengembangan diversifikasi produk dan promosi produk.

��

BAB IIBOTANI KENTANG

Botani Kentang

Pengetahuan tentang sistematik botani dan morfologi kentang sangat penting untuk memahami aspek botani dalam kaitan

dengan penelitian dan produksi kentang. Kentang (Solanum tuberosum L.) tergolong famili Solanaceae. Famili ini terdiri dari sekitar 2000 spesies, di antaranya tomat (Solanum lycopersicum L.), cabai (Capsicum annuum L.), terong (S. melongena L. var. esculentum), tembakau (Nicotiana tabacum L.), dan petunia (Petunia hybrid L.). Genus Solanum bersifat polimorfik dan memiliki genus yang dapat tumbuh di daerah tropis serta subtropis (Spooner dan Knapp, 2013).

Ada pun taksonomi kentang adalah sebagai berikut:Kingdom : PlantaeSubkingdom : Tracheobionta (tumbuhan berpembuluh)Superdivisi : Spermatophyta (tumbuhan berbiji)Divisi : Magnoliophyta (tumbuhan berbunga)Kelas : Magnoliopsida (Dikotiledon)Subkelas : AsteridaeOrdo : SolanalesFamili : SolanaceaeSubfamili : SolanoideaeGenus : Solanum L.Section : PetotaSubsection : PotatoeSeries : TuberosaSpesies : Solanum tuberosum L.

Solanum tuberosum L. merupakan tanaman herba (herbaceous) dengan tinggi berkisar 0,4 – 1,4 m. Habitus tanaman bervariasi inter

��

dan antarspesies, tegak, roset atau horizontal (Huaman, 1986; Spooner dan Knapp, 2013) (Gambar 2.1). Batang ada yang tanpa rambut hingga banyak rambut, warna batang hijau, ungu atau bercak hijau dan ungu. Daun berbentuk pinnate dengan satu anak daun kecil di ujung dan 3 - 4 pasang anak daun berbentuk ovoid dan anak daun yang lebih kecil di antaranya. Helai daun keseluruhan daun berukuran 8 – 22 cm x 5 – 13 cm dan petiol berukuran 2 – 6 cm. Warna daun hijau sedang sampai hijau tua, berbulu sedikit atau banyak di kedua sisinya (Huaman, 1986) (Gambar 2.2).

Sistem batang kentang terdiri dari batang, stolon dan umbi. Tanaman kentang yang ditumbuhkan dari benih (true potato seed) memiliki satu batang utama, sedangkan jika ditumbuhkan dari umbi, akan memiliki beberapa batang utama. Batang lateral merupakan cabang dari batang utama (Gambar 2.3).

Secara morfologi, stolon merupakan batang lateral yang tumbuh secara horizontal di bawah tanah. Stolon muncul dari pangkal batang di bawah tanah. Panjang stolon merupakan karakter varietas yang penting. Stolon panjang umum didapati pada kentang liar. Pemuliaan kentang diarahkan untuk memperoleh stolon yang pendek. Stolon pada akhirnya akan membesar membentuk umbi. Namun, tidak semua stolon akan menghasilkan umbi. Stolon yang tidak tertutupi oleh tanah akan berkembang menjadi batang dan daun (Huaman, 1986).

Secara morfologi, umbi merupakan modifikasi batang dan merupakan organ penyimpanan utama pada tanaman kentang. Umbi umumnya berbentuk lonjong (Gambar 2.4) Warna daging umbi bervariasi dari putih, kuning, hingga coklat, serta dari merah hingga biru. Warna daging umbi mungkin atau dapat juga tidak terkait dengan warna kulit umbi. Tekstur umbi bervariasi dari halus, berjaring atau russet/kasar (Spooner dan Salas, 2006). Pada permukaan umbi ada tunas aksilar dengan cekukan yang disebut mata umbi. Pada saat umbi matang, mata umbi menjadi dorman dan tidak dapat berkembang. Setelah periode waktu tertentu, tergantung varietas, mata apikal yang akan pertama kali pecah dormansi. Ketika umbi ditanam, mata umbi berkembang menjadi batang untuk menghasilkan generasi vegetatif baru (Struik et al., 2007).

��

Gambar 2.1. Habitus tanaman kentang bervariasi inter dan antarspesies. Sumber: Huaman, 1986.

Gambar 2.2. Daun kentang bersifat majemuk, terdiri dari daun tunggal dan beberapa anak daun. Sumber: Huaman, 1986

��

Tanaman kentang dapat ditumbuhkan dari biji atau umbi. Tanaman yang ditumbuhkan dari biji memiliki akar utama yang kurus dengan cabang-cabang lateral. Tanaman yang tumbuh dari umbi menghasilkan akar adventif dari pangkal tiap tunas, dan nantinya, di atas ruas pada bagian batang yang ada di dalam tanah. Terkadang, akar dapat tumbuh pada stolon. Jika dibandingkan dengan tanaman budidaya lain, akar kentang tergolong lemah, sehingga kentang perlu ditanam pada tanah yang gembur (Huaman, 1986).

Gambar 2.3. Sistem batang kentang terdiri dari batang, stolon dan umbi. Sumber: Huaman, 1986

Gambar 2.4. Umbi kentang. Sumber: Huaman, 1986

��

Karangan bunga terminal berbentuk cymes sepanjang 5 -11 cm dan biasanya ditemukan pada pertengahan tinggi tanaman (Gambar 2.5). Karangan bunga biasanya bercabang dan umumnya berisi hingga 25 kuntum bunga. Bunga pentamerous berdiameter 3 – 4 cm, bunga sempurna dengan putik yang sama panjang. Variasi warna mahkota bunga mulai dari putih, pink, lila, biru, ungu dan ungu kemerahan. Petal bergabung membentuk bunga tubular. Tangkai polen (filamen) memiliki panjang 1 -2 mm dan anther berukuran 3 – 8 mm. Anther berbentuk kerucut, berwarna kuning terang atau oranye, kecuali tanaman yang steril jantan memiliki anther berwarna kuning muda atau hijau kekuningan (Spooner dan Knapp, 2013) (Gambar 2.6).

Buah bertipe beri, berbentuk bulat lonjong dengan diameter 1 – 4 cm. Buah berwarna hijau dengan spot ungu jika matang. Buah beri bersifat racun karena kandungan glycoalkaloid-nya. Buah dapat berisi sedikit biji hingga ratusan biji tergantung fertilitas varietas. Biji berbentuk pipih lonjong dengan ukuran panjang 2 mm, sangat kecil (1000 – 1500 benih per gram, berwarna keputihan atau kehijauan saat baru panen dan kecoklatan ketika kering (Gambar 2.6) (Bailey dan Bailey, 1976). Setiap biji dikelilingi oleh kulit biji (testa), yang bertugas melindungi embrio dan jaringan penyimpan (endosperma). Benih biasanya dikenal dengan sebutan true atau botanical seed.

Gambar 2.5. Tangkai daun membentuk tangkai bunga (infloresence) berbentuk cymose. Sumber: Huaman, 1986

�0

Gambar 2.6. a. Bunga kentang bersifat bisexual. Memiliki 4 bagian bunga penting: calyx, corolla, stamen dan pistil. b. Bakal buah menunjukkan dua

lokus (gambar atas). Embrio umumnya berbentuk melengkung seperti huruf U (gambar bawah). Sumber Huaman, 1986.

Biologi Reproduksi KentangPengetahuan tentang biologi reproduksi kentang sangat penting

untuk menciptakan variasi. Kentang dapat bereproduksi secara seksual atau aseksual melalui perbanyakan umbi. Kentang dapat berbunga dan menghasilkan buah yang berisikan benih sejati (true potato seed). Polinator umumnya serangga lebah (Scurrah et al., 2008). Kentang memiliki mekanisme gametofitik self-incompatibility (dikontrol oleh S-locus, multi-alel) yang mendorong terjadinya penyerbukan silang, baik pada spesies yang dibudidayakan, maupun spesies liar (Dodds, 1965). Namun, mekanisme self-incompatibility tidak terjadi pada S. tuberosum tetraploid, 21-74% polinasi alami diperkirakan terjadi pada grup Andigena di daerah Andes (Brown, 1993) dan 14 – 3% pada populasi buatan Andigena (Glendinning, 1976).

Reproduksi seksual menciptakan keanekaragaman yang sangat banyak, dengan mengkombinasikan varian – varian gen yang timbul dari mutasi. Kentang merupakan tanaman yang sangat heterozygous yang menunjukkan inbreeding depression jika diserbuk sendiri. Bibit yang memiliki genetik unik yang tumbuh dari benih sejati (true seed)

��

menghasilkan umbi yang dapat ditanam kembali sebagai umbi dan kemudian klon yang berbeda/baru dapat dikembangkan dan dipertahankan secara asexual (vegetatif). Sebagian besar varietas kentang diperbanyak melalui umbi bibit dan karenanya seragam secara genetik. Akan tetapi, ada situasi tertentu, di mana pengembangan kultivar dilakukan melalui TPS (true potato seeds).

HabitatKentang sangat jarang ditemui sebagai tanaman liar. Kentang dapat

ditanam di seluruh dunia, tetapi untuk daerah tropis, kentang dibudidayakan di dataran tinggi yang memiliki suhu sejuk, umumnya pada ketinggian lebih dari 1000 m. Di daerah subtropis, kentang ditanam saat musim dingin yang sejuk, musim gugur dan musim semi, atau pada ketinggian sedang (Hijmans, 2001). Jika kentang ditanam pada suhu yang relatif lebih hangat, akan memicu pertumbuhan vegetatif dan bukan tuberisasi. Kentang tidak tahan terhadap frost dan mati pada suhu di bawah -3oC (Li, 1977). Kentang dapat tumbuh di berbagai tipe tanah, tetapi sensitif terhadap cekaman kekeringan, karenanya dapat ditanam ketika ada hujan yang cukup atau diberi irigasi.

Perubahan IklimHaverkort dan Verhagen (2008) mengkaji kemungkinan konsekuensi

perubahan iklim terhadap produksi kentang berdasarkan laporan International Panel on Climate Change (IPCC, 2007). Perubahan iklim akan menyebabkan peningkatan suhu, peningkatan konsentrasi karbon dioksida di udara, dan perubahan pola hujan. Di daerah Mediteranian dan Sahelian Afrika, produksi kentang akan menurun karena periode bebas panas dalam satu tahun produksi akan menjadi lebih pendek. Karenanya, di daerah ini, pemuliaan ke arah toleran panas lebih penting, karena suhu tinggi berefek buruk terhadap pengumbian.

Selain itu, tingginya evaporasi, pemuliaan untuk toleransi terhadap cekaman kekeringan menjadi sangat penting. Sebaliknya, produksi kentang di daerah temperate kemungkinan akan meningkat akibat peningkatan konsentrasi CO2 di udara dan musim tanam yang lebih panjang. Di Eropa utara, akan ada penurunan jumlah hari beku (frost), lebih banyak hujan

��

saat musim dingin dan sedikit hujan pada saat musim panas, lebih banyak hujan lebat dan badai yang tidak menentu. Ketersediaan air untuk irigasi merupakan faktor penting untuk menjaga hasil panen dan kualitas umbi.

Di seluruh dunia saat ini, dengan perubahan iklim, diperlukan kultivar-kultivar yang menggunakan air secara lebih efisien, seperti menghindari kekeringan (pengisian umbi yang lebih cepat) atau toleran terhadap kekeringan. Saat ini banyak penelitian yang berfokus pada akar (Iwama, 2008), yang melihat pengaruh variasi penggunaan air dan korelasi antara penanaman di lapangan dan di rumah kaca. Pengaruh arsitektur akar pada pupuk juga harus diperhatikan. Kentang memerlukan pupuk fosfat yang lebih banyak dibandingkan tanaman pangan lain. Perubahan iklim juga mungkin membawa tantangan baru untuk mengurangi kerugian akibat hama dan penyakit. Suhu yang lebih tinggi dan musim tanam yang lebih panjang mungkin mengakibatkan perubahan kisaran geografis hama dan penyakit dan tekanan yang mereka timbulkan terhadap produksi kentang (Haverkort dan Verhagen, 2008). Konsekuensinya, pemulia mungkin perlu memikirkan apa yang menjadi prioritas mereka. []

��

BAB IIIPEMULIAAN KENTANG

Varietas Kentang

Solanum terdiri dari sekitar 2.000 spesies, sekitar 150 jenis di antaranya menghasilkan umbi. Ada lima kelompok secara

sitologi, dengan jumlah kromosom somatik 24, 36, 48, 60 dan 72. Sekitar 70% spesies kentang adalah diploid. Sebagian besar self-incompatible dan hanya dapat menghasilkan benih jika diserbuki dengan polen yang memiliki S allele yang berbeda. Spesies diploid yang self-compatible adalah S. morelliforme, S. poly-adenium, dan S. verrucosum. Diploid kultivar yang banyak ditanam adalah S. phureja, yang banyak ditanam di lembah pegunungan Amerika Selatan. Spesies ini dibedakan dengan tidak adanya dormansi umbi, yang memungkinkan penanaman secara kontiniu sebanyak mungkin. Spesies ini sudah digunakan secara ekstensif sebagai pollinator untuk menghasilkan tanaman haploid S. tuberosum, sebagai tetua jembatan antara spesies diploid lainnya, dan S. tuberosum sebagai dasar studi genetika (Peloquin et al., 1996). Kultivar diploid lainnya adalah S. stenotomum, yang ditanam di areal serupa dengan S. phureja; S. ajanhuire, spesies yang keras dan tumbuh di dataran tinggi Bolivia dimana umbinya digunakan untuk produksi tunta, produk kering-beku; dan S. goniocalyx; yang tumbuh di lembah Peru (Bradshaw, 2007).

Tanaman Solanum tetraploid dan menghasilkan umbi mungkin bersifat self-fertile menunjukkan bahwa haploid (diploid) dari tetraploid memiliki sifat self-incompatibility sama seperti spesies yang diploid. Mungkin tetraploid menjadi self-compatible ketika pollen memiliki dua S allele yang menginduksi pelemahan mutual. Meskipun mayoritas spesies diploid tidak kompatibel, variasi selalu ada dalam spesies. Salah satu penyebab variasi ini adalah produksi unreduced gamet secara spontan pada tanaman yang heterozigot untuk S-alel (Bradshaw, 2007).

��

Persilangan antara tanaman tetraploid dan diploid jarang menghasilkan turunan triploid karena ‘triploid block’ yang muncul dari faktor endosperma yang tidak seimbang dalam nukleus (Den Nijs dan Peloquin, 1977b). Beberapa klon triploid dibudidayakan, tetapi karena steril, dipertahankan dengan cara perbanyakan aseksual. Tetraploid menghasilkan sekitar 15% spesies yang menghasilkan umbi. Klon S. tuberosum subspesies andigena dapat bersilang dengan klon subspesies tuberosum, tetapi umumnya menghasilkan hibrida yang matang lambat (late maturing), kecuali tetua andigena telah diseleksi untuk matang cepat (early maturing). Klon dari subspesies ini merupakan sumber yang berharga untuk banyak karakter yang diinginkan.

Koleksi utama Solanum yang menghasilkan umbi disimpan di International Potato Center di Peru, the IR-1 project di Sturgeon Bay, Wisconsin Commontwealth Potato Collection di Pentlandfield, Scotland, the German-Dutch Potato Collection at Braunschweig, Jerman Barat, the Central Colombian Collection di Bogota, Colombia, dan the Potato Colleciton di Balcarce, Argentina (Bradshaw, 2007). The International Potato Center memiliki koleksi terbaik untuk spesies yang dibudidayakan, khususnya andigena, phureja, dan ‘kentang pahit’. IR-1 collection merupakan sumber yang sangat baik untuk spesies liar, dan juga banyak aksesi spesies yang dibudidayakan. Karena pembatasan karantina untuk mengimpor umbi ke US, IR-1 merupakan sumber plasma nutfah yang sangat penting bagi yang berminat. Restriksi tidak berlaku untuk impor benih sejati (true potato seed), jika bahan ini diperlukan untuk koleksi.

Kentang budidaya dapat diklasifikasikan menjadi 5 grup tidak resmi dalam spesies Solanum tuberosum, yaitu group Andigena, Chaucha, Phureja, Stenotomum dan Tuberosum, dan ada tiga hibrida dengan spesies liar. Grup Tuberosum beradaptasi dan menghasilkan umbi pada hari panjang. Namun, akibat pemuliaan tanaman, penjelasan diperlukan jika membicarakan tentang grup Andigena (Neo-tuberosum) dan kentang Phureja yang beradaptasi pada hari panjang. Grup lain beradaptasi pada hari pendek. Ada juga pengelompokkan berdasarkan lama panen. Di Inggris, varietas dikelompokkan menjadi first early (100 – 110 hari), second early (110 – 120 hari, early maincrop (120 – 130 hari), maincrop (130 – 140 hari), dan late maincrop (140 – 150 hari).

��

The World Catalogue of Potato Varieties 2009/2010 menyebutkan lebih dari 4500 varietas kentang dari 120 negara (Pieterse dan Hils, 2009). Pada buku tersebut diberikan informasi tentang kemasakan, bentuk umbi, warna kulit umbi, kedalaman mata, warna daging, ketahanan terhadap penyakit dan kegunaan varietas. Preferensi konsumen bervariasi berdasarkan negara dalam hal kulit umbi (misal merah, putih, russet) dan warna daging. Untuk kentang Andean, de Haan. (2008) membedakan 3 grup kultivar untuk keperluan rumah tangga, yaitu native floury, native bitter dan kentang untuk membuat roti. Berbagai database untuk kultivar kentang telah tersedia, misalnya The European Cultivated Potato Database (Http://www.europotato.org) yang saat ini memiliki informasi tentang lebih dari 4000 varietas kentang budidaya. Google search juga menyediakan database dari berbagai negara dan organisasi di seluruh dunia. Kultivar-kultivar modern ini dapat menjadi tanaman induk untuk pemuliaan dengan tujuan tertentu seperti adaptasi lingkungan, musim tanam, penggunaan, dll. Gambar 3.1 menampilkan evolusi kentang liar menjadi kentang budidaya. Gambar 3.2 menampilkan ringkasan sumberdaya genetik yang tersedia untuk pemuliaan kentang.

Gambar 3.1. Evolusi kentang (Bradshaw, 2007)

��

Gambar 3.2. Sumberdaya genetik dan penggunaannya dalam pemuliaan tanaman (sumber: Scottish Crop Research Institute,

Annual Report 1997/1998)

��

Pemuliaan Kentang Pemuliaan tanaman kentang dimulai pada tahun 1807 di

Inggris ketika Knight pertama kali mencatat telah melakukan hibridisasi antarvarietas dengan polinasi buatan. Pengembangan varietas berkembang di Eropa dan Amerika Utara pada semester kedua abad ke-19 di mana pertukaran plasma nutfah mulai terjadi dan banyak kultivar-kultivar baru diproduksi oleh petani, penghobi, dan penghasil benih. Saat itu, pembibitan dari benih yang terbentuk sendiri masih menjadi praktik yang umum dilakukan hingga abad ke-20. Kultivar kentang yang paling popular di Amerika Utara, Russet Burbank, dirilis pada 1914, merupakan keturunan dari Rough Purple Chili melalui 3 generasi polinasi terbuka (Ortiz, 2001). Pemuliaan kentang modern di India dan Cina dimulai sejak 1930an, tetapi penyebaran yang cepat terjadi berturut – turut pada 1948 dan 1978 (Gaur et al., 2000; Jin et al., 2004). Besarnya perkembangan sejak 1807 dapat dinilai pada buku World Catalogue of Potato Varieties yang terbaru (Pieterse dan Hils, 2009) yang mendaftarkan lebih dari 4.500 varietas dari 102 negara, meliputi semua daerah pertanaman kentang di dunia.

Kemampuan bersilang antarspesies ditentukan melalui polinasi buatan yang telah dilakukan bertahun-tahun (Jansky, 2006). Hasil pemuliaan dapat dijelaskan utamanya dalam hal jumlah keseimbangan endosperma (endosperm balance number=EBN), yang dapat dianggap lebih efisien dibandingkan tingkat ploidinya (Johnston et al., 1980). Pada persilangan interspesifik dengan EBN sama, hibrida memiliki endosperma yang normal untuk memberi makan embrio normal, sedangkan persilangan interspesifik dengan EBN berbeda, endosperm akan rusak. Endosperma berkembang setelah penggabungan inti nukleus dari tetua jantan dengan dua inti polar dari tetua betina, sehingga mendapatkan inti fusi tiga dan komposisi genetik nukleus inilah yang penting. Endosperma akan normal jika tiga nuklei memiliki EBN yang sama dan memiliki rasio 2 maternal/1 parental endosperm balance factors.

Saat ini pemulia kentang biasanya dapat melakukan hibridisasi seksual antara S. tuberosum dengan kerabat liarnya dengan cara memanipulasi ploidi dengan memperhatikan EBN. EBN dapat mengganda secara meiosis melalui unreduced 2n gamet yang dihasilkan dari beberapa mutasi meiosis

��

resesif yang terjadi secara alami yang umum terjadi pada Solanum (Jansky, 2006). Bisa juga mengganda secara mitosis dengan menambahkan kolkisin untuk penggandaan kromosom, hal yang dapat terjadi secara alami pada kultur kalus. Stupar et al. (2007) dapat menghasilkan keturunan diploid dan tetraploid ketika sel daun somatik dari monoploid diekspos untuk regenerasi dari keping daun. EBN dapat menjadi separuhnya akibat haplodisasi menggunakan teknik in vitro androgenesis (kultur anter) atau yang lebih umum pada S. tuberosum dengan cara partenogenesis menggunakan polinasi dengan klon diploid dari grup phureja (Veilleux, 2005). Selain itu, embryo rescue dapat digunakan untuk menyelamatkan suatu hibrida ketika aborsi embrio terjadi akibat cacat endosperma (Jansky, 2006).

Barrier dalam persilangan antar varietas kentang dapat terjadi, seperti misalnya karena ketakserasian pollen – pistil, dan mandul jantan sitoplasmik – nuklear, meskipun gen restorer kesuburan telah ditemukan. Ketakserasian unilateral terjadi ketika spesies yang memiliki ketakserasian sendiri (self-incompatibility/SI) dipolinasi oleh spesies self-compatible (SC). Contohnya pada persilangan S. verrucosum (betina sc x S. phureja (SI jantan) sukses, tetapi persilangan resiproknya gagal. Kadangkala, polen yang tidak kompatibel dapat dibantu mencapai fertilisasi melalui polinasi tambahan dengan polen yang kompatibel. Teknik ini dikenal dengan istilah polinasi mentor (Jansky, 2006). Pemulia kentang selalu menghadapi kesuksesan atau kegagalan dari waktu ke waktu untuk mengatasi barrier dalam persilangan.

Pemulia tanaman dapat juga menggunakan fusi protoplas untuk tanaman yang sulit disilangkan secara seksual, atau untuk manipulasi ploidi level guna mencapai heterozigositas maksimal (Thieme dan Thieme, 2005). Fusi protoplas dapat dilakukan dengan bahan kimia PEG (Polycation polyethylene glycol) atau melalui elektrofusion yang saat ini lebih banyak digunakan.

Tujuan Pemuliaan dan Kriteria SeleksiKarakteristik yang dicari dalam pemuliaan kentang meliputi: berat

basah umbi, stabilitas hasil produksi pada lingkungan tertentu, jumlah umbi, ukuran umbi, berat kering (specific gravity) dan kandungan pati,

��

ketepatan umur panen untuk musim tanam tertentu, lama dormansi yang sesuai dengan lama simpan yang diperlukan. Bentuk umbi dan cacat umbi: mata tunas tidak terlalu dalam, bentuk bulat untuk kentang yang dibuat chips (keripik) dan oval panjang untuk French fries. Tidak ada cacat luar (pecah karena pertumbuhan, kerusakan mekanis, lebam dan kehijauan). Tidak ada cacat internal (rongga hati, coklat di bagian tengah dan internal rust spot) (Bradshaw, 2007).

Nutrisi. Kandungan pigmen antosianin yang lebih tinggi (kentang daging merah atau ungu) atau karotenoid (daging kuning), kandungan vitamin C yang lebih tinggi, peningkatan kandungan nutrisi mikro (biofortification), kandungan glycoalkaloid di bawah 20 mg/100 g berat segar, penurunan potensi produksi akrilamid pada kentang panggang atau kentang goreng (penurunan kandungan gula dan asparagin).

Kualitas pangan berbahan kentang. Meningkatkan rasa (aroma dan rasa, kandungan bahan volatile dan non-volatile). Tekstur yang cocok (lengket, bertepung, kandungan bahan kering, kandungan pati), tidak mencoklat setelah dimasak, warna cerah setelah digoreng (pengurangan kandungan gula). Ketahanan terhadap tekanan abiotik: toleran terhadap kekeringan, efisien dalam penggunaan air, toleran terhadap panas, toleran suhu dingin, toleran terhadap salinitas tinggi, toleran terhadap defisiensi mineral.

Ketahanan terhadap hama. Hama umum pada kentang sebagai berikut:a) potato tuber moth (Phthorimaea operculella Zeller), yang larvanya

melubangi daun, batang dan umbi di lapang dan di ruang simpan. Serangga ini merupakan hama di seluruh dunia, utamanya di daerah beriklim tropis dan subtropis.

b) Colorado potato beetle (CPB, Leptinotars decemlineata Say), menyebabkan gugur daun di lapang, hama utama di belahan bumi utara, seperti Amerika Utara, Eropa, Rusia dan Asia tengah.

c) Andean potato weevil (APW, Premnotrypes spp.), green peach aphid (Myzus persicae, utamanya sebagai vektor virus), dan lalat pengerat daun (Liriomyza huidobrensis), merupakan hama di banyak negara berkembang.

�0

d) d) Cyst nematode (G. rostochiensis Woll dan G. pallida Stone): masuk dan memakan akar, merupakan nematoda yang sangat merusak di seluruh dunia.

e) root – knot nematodes (Meloidogyne spp.), merupakan masalah utama di daerah beriklim hangat, sedangkan Columbia root-knot nematode (M. chitwoodi) dan northern rootknot nematode (M. hapla) merupakan yang utama di daerah temperate.

Ketahanan terhadap penyakit. Penyakit yang umum menyerang tanaman kentang adalah sebagai berikut:a) Late blight (Phytophthora infestans), penyakit yang paling sering

menyerang kentang di seluruh dunia. Merupakan penyakit jamur yang menyerang daun, batang dan umbi di daerah beriklim hangat (tropis).

b) Layu Verticilium (Verticilium dahlia Kelb.), penyakit yang berasal dari tanah yang umum terjadi.

c) Early blight (Alternaria solani), penyakit yang berasal dari udara. d) Layu Fusarium (Fusarium solani), penyakit yang berasal dari tanah.

Penyakit Jamur pada Umbi a) Wart (Synchytrium endobioticum) berasal dari tanah, mengakibatkan

blemish pada umbi.b) Powdery scab (Spongospora subterranean), mengakibatkan blemish

pada umbi. c) Dry rot (Fusarium coeruleum, F. sulphureum, F. sambucinum, dan

F. avenaceum Sacc.: penyakit yang berasal dari umbi, penyebab utama busuk umbi selama penyimpanan di daerah beriklim hangat.

d) Gangrene (Phoma foveata): penyakit yang berasal dari umbi, penyebab utama kerusakan umbi di daerah Eropa utara.

e) Black scurf (Rhizoctonia solani) dan kanker batang: penyakit blemish yang berasal dari umbi.

f) Spot kulit umbi (Polyscytalum pustulans): penyakit blemish yang berasal dari umbi.

g) Silver scurf (Helminthosporium solani): penyakit blemish yang berasal dari umbi.

��

h) Black dot (Colletotrichum coccodes): penyakit blemish yang berasal dari umbi.

i) Actinomycete: penyakit pada umbi. j) Scab (Streptomyces scabies): persistent soil-borne, penyebab blemish pada umbi.

Penyakit bakteri a) Layu bakteri atau busuk coklat (Ralstonia solanacearum): penyakit

yang paling serius menyerang kentang setelah layu fusarium di Negara berkembang.

b) Blackleg (batang) dan busuk lunak (menyerang umbi selama penyimpanan) (Pectobacterium spp.).

c) P. carotovorum subsp. atrosepticum merupakan penyakit umum pada iklim temperate, sedangkan P. chrysanthemi dominan pada daerah yang lebih hangat, dan P. carotovorum subsp. carotovorum beradaptasi pada kedua iklim.

d) Bacterial ring rot (Clavibater michiganensis subsp. sepedonicus): masalah pada umbi di daerah temperate.

Penyakit virus a) PLRV (Potato leafroll virus): penyakit yang paling merusak dan

menyebar luas. Ditransmisikan oleh aphid secara persisten. b) PVY (Potato virus Y): kedua terpenting, ditransmisikan oleh aphid

secara nonpersistent, sehingga lebih sulit dikendalikan dengan pestisida.

c) PVA (Potato virus A): penyebaran di seluruh dunia. d) PVX (Potato virus X): penyebaran di seluruh dunia. e) PVM (Potato virus M): dapat menyebabkan kerusakan parah pada

umbi dan kentang yang disimpan di daerah Eropa tengah dan timur. f) PVS (Potato virus S): penyebaran di seluruh dunia. g) TRV (Tobacco rattle virus): penting di daerah dengan iklim lebih

sejuk, ditransmisikan oleh nematoda Trichodorid, mengakibatkan gejala spraing, masalah utama pada umbi yang diolah.

h) PMTV (Potato mop-top virus): masalah utama pada tanah berpasir ringan, ditransimisikan oleh Spongospora subterranea, mengakibatkan gejala spraing pada umbi, masalah utama pada umbi yang diolah.

��

i) PSTVd (Potato tuber-spindle viroid): penyakit yang ditransmisikan melalui benih sejati, dan merupakan penyakit yang menjadi perhatian karantina pada negara yang tidak mengalami endemik penyakit ini.

Kebanyakan program pemuliaan kentang bertujuan untuk mendapatkan ketahanan terhadap hama dan penyakit. Dalam program penelitian tersebut, pemulia tanaman kentang harus bersikap realistik dalam menentukan prioritas untuk meningkatkan ketahanan terhadap penyakit, dan mengetahui bahwa keberhasilan secara komersial suatu varietas terutama bergantung pada hasil dan kualitas kentangnya. Untuk hama dan penyakit utama yang menyerang kentang, bentuk baru dan resistensi yang bertahan lama akan terus dicari, bersama – sama dengan cara menginkorporasikannya ke dalam kultivar baru secepat mungkin. Untuk hama dan penyakit yang kurang penting/tidak terlalu banyak menimbulkan masalah, kultivar-kultivar berpotensi akan diskrining untuk mencegah kerentanan. Ini dapat dilakukan melalui pengujian, atau ketika terjadi epidemik alami penyakit minor. Persyaratan utama untuk keberhasilan pemuliaan adalah sumber resisten yang kuat, skrining yang tepat untuk resistensi suatu penyakit dengan menggunakan isolat patogen yang tepat, dan yang tidak kalah penting, mengerti penurunan sifat resistensinya.

Pemuliaan kentang konvensional merujuk pada perkembangan kultivar baru dari persilangan yang diikuti dengan perbanyakan klon dan seleksi. Hampir semua varietas – varietas baru kentang dihasilkan dengan cara konvensional, tidak ada teknologi modern seperti penyisipan gen. Pemulia kentang secara terus menerus mencari plasma nutfah baru, karena kentang sebagai tanaman pangan masih sangat rentan terhadap tekanan biotik dan abiotik (Brown, 2011).

Untuk memperluas basis genetik pada kentang, saat ini sudah mulai diseleksi galur – galur kentang hasil pemuliaan atau varietas yang telah dirilis atau kentang liar atau tanaman family Solanaceae yang lebih jauh jarak genetiknya, yang dapat diperlakukan dengan teknik hibridisasi somatik. Perluasan basis genetik merupakan suatu cara meningkatkan heterozigositas. Varietas – varietas yang telah dirilis umumnya berasal dari genetic pool yang sangat terbatas, akibat seleksi yang terus menerus selama proses pemuliaan (Brown, 2011).

��

Pemuliaan kentang saat ini mesti diarahkan pada adaptasi pertanian modern, mampu bertahan pada cuaca yang tak menentu, hasil panen yang memiliki kulit dan daging umbi dengan warna menarik, dapat bertahan selama penyimpanan serta cocok untuk diolah. Plasma nutfah kentang sangat banyak sehingga era baru varietas kentang yang memiliki manfaat kesehatan dapat tersedia (Brown, 2011).

Strategi pemuliaan dapat dilihat sebagai keputusan kunci yang diambil oleh pemulia tanaman tentang tujuan pemuliaan, metode pemuliaan dan plasma nutfah mana yang digunakan, apakah kultivar baru akan diperbanyak secara vegetatif atau melalui benih sejati, apakah kultivar baru akan direkayasa genetik dan bagaimana mendapatkan ketahanan hama dan penyakit yang kuat. Keputusan yang baik memerlukan pengetahuan tentang evolusi tanaman modern, lingkungan target dan kegunaan kultivar baru, biologi reproduksi kentang budidaya dan kerabat liarnya, serta struktur populasi patogen dan epidemiologi penyakitnya. Pengetahuan genetik juga diperlukan dan telah meningkat tajam pada kentang sejak dibuat peta molecular marker pada tahun 1988 (Bradshaw, 2007).

Tujuan pemuliaan berbeda di tiap negara, tetapi program pemuliaan umumnya bertujuan untuk meningkatkan hasil, masa panen yang tepat, dormansi pendek, karakteristik umbi yang mempengaruhi kualitas dan kecocokan untuk penggunaanya (misal untuk keripik, untuk direbus), dan ketahanan terhadap tekanan abiotik dan biotik.

Petunjuk Teknis Pemuliaan KentangPenanaman tanamana. Lahan

Klon yang berasal dari zone temperate akan menghasilkan bunga 60 hari setelah ditanam di lapang. Penyerbukan bunga di lapang biasanya tidak menghasilkan benih. Banyak program pemuliaan menangani kesulitan ini dengan menggunaan teknik cut stem (potongan batang) yang dijelaskan oleh McLean dan Stevenson (1952) dan dikembangkan selanjutnya oleh Peloquin dan Hougas (1959). Metode ini melibatkan pemotongan batang yang berisi karangan bunga (inflorescence) yang panjang dengan beberapa bunga yang belum terbuka. Batang dipotong 20 – 30 cm dengan sedikitnya 1 daun yang

��

terbuka penuh. Batang yang sudah dipotong langsung ditempatkan pada air keran dan dibawa ke green house ber-AC atau ruang tumbuh. Bunga yang sudah terbuka dibuang.

Jarak tanam untuk tanaman yang akan digunakan untuk persilangan mesti mempertimbangkan ruang agar dapat mengakses dan mengindentifikasi tanaman. Sebaiknya lajur/baris dibuat berjarak 2 m dan jarak tanam 1 m dalam baris. Tanaman stok sebaiknya bebas virus dan kebun dibuat agar bebas serangan kutu daun (aphid).

b. Ruang tumbuh dan Green houseKetika menggunakan cut stem, green house atau ruang tumbuh harus

memiliki setidaknya 16 jam sinar atau 20 lux cahaya artifisial. Penting untuk menjaga suhu sekitar 19oC dengan RH yang tinggi selama masa polinasi. Biasanya, sebuah inflorescence akan menghasilkan bunga selama 5 – 10 hari. Setelah fertilisasi tercapai, batang dapat diletakkan di rumah kaca yang lebih hangat jika tempat terbatas. Aspek yang paling kritis dalam teknik ini adalah bagaimana menjaga agar potongan batang tidak membusuk. Ini dapat dihindari dengan mengganti air dalam wadah dengan air baru 2-3 kali seminggu selama 2 minggu pertama. Dapat juga menambahkan 5 – 10 ppm Streptomycin sulfate ke dalam air, dan air diganti seminggu sekali pada suhu 19oC. Jika ada yang busuk, batang dapat diselamatkan dengan memotong tangkai yang busuk. Tangkai yang diperlakukan dengan cara ini dapat menghasilkan buah matang dan dapat dipanen dalam 6 minggu. Beberapa pemulia tanaman menggunakan botol susu untuk memegang tiap tangkai. Teknik lain adalah dengan menggunakan plastic paint pails dengan kawat ayam di atas untuk mendukung keempat tangkai.

Biasanya persilangan kentang dilakukan di rumah kaca selama musim dingin, karena suhu dapat dijaga pada 19oC. Panjang hari mesti dibuat 16 jam sejak kemunculan bunga hingga polinasi. Cahaya dengan intensitas tinggi, seperti lampu halide metal, menghasilkan pertumbuhan yang terbaik. Pembungaan terjadi jika pupuk dikurangi dan tuberisasi dikurangi. Pemulia kentang di Belanda mengembangkan sistem dengan meletakkan kentang pada batu bata dan ditutupi dengan pasir (Thijn, 1954). Segera setelah akar menembus tanah, pasir dibersihkan dan umbi dibuang

��

jika sudah terbentuk. Cara lain adalah dengan menanam umbi dalam 20 cm pot tanah dan letakkan dalam rumah kaca (pada rak atau pun di lantai). Ini akan menghambat pertumbuhan akar dan merangsang pembungaan. Tanaman perlu dipangkas menjadi 1 – 2 batang dan diikat ke ajir berukuran 2 meter.

c. Karakteristik BungaKentang memiliki inflorescence yang terletak di ujung tangkai dan

jumlah bunga berkisar antara 1 – 30, yang paling umum adalah 7 – 15. Jumlah inflorescence per tanaman dan jumlah bunga per inflorescence sangat dipengaruhi oleh kultivar. Saat bunga pertama mekar penuh, tunas baru berkembang, kemudian berkembang bunga di luar kelompok bunga pertama untuk menghasilkan inflorescence yang kedua.

Bunga berdiameter 3 – 4 cm dengan 5 petal yang memberikan bentuk bunga seperti bintang. Ukuran bunga dan distribusinya pada inflorescence membuatnya mudah untuk dimanipulasi. Ada 5 anter, panjang 5 – 7 cm, dan tampil terbuka dalam bentuk kolom yang mengelilingi pistil. Stigma biasanya muncul di atas anter. Korola biasanya putih atau kadang biru, merah dan ungu, tergantung ada tidaknya antosianin. Anter berwarna kuning terang, kecuali klon yang steril jantan, mungkin memiliki warna kuning muda atau hijau kekuningan. Stigma biasanya hijau, meskipun beberapa klon mungkin memiliki stigma yang berpigmen. Petal biasanya menutupi anter pada kuncup bunga yang matang, meskipun pada beberapa klon, petal dari kuncup bunga tidak akan terbuka cukup penuh untuk menutupi anter. Stigma biasanya tidak keluar ke ujung cone anther pada kuncup bunga yang matang, sampai sehari sebelum bunga terbuka.

Bunga pada cabang yang terdekat dengan basal akan terbuka lebih awal dengan 2 – 3 bunga terbuka setiap hari. Bunga akan tetap terbuka 2 – 4 hari, dan membuat inflorescence dengan 5 – 10 bunga terbuka saat puncak waktu berbunga. Stigma receptivity dan lama produksi polen adalah 2 hari. Fertilisasi terjadi paling cepat 36 jam setelah polinasi. Embrio yang viabel dapat diambil 14 hari setelah polinasi. Enam minggu setelah polinasi merupakan waktu minimum untuk pertumbuhan penuh benih viabel (Jannsen dan Hermsen, 1976).

��

d. Hibridisasi buatan dan polinasi sendiri (self-pollination)

A. PeralatanJika banyak bunga yang akan dipolinasi dengan satu sumber polen,

perlu banyak polen, karenanya, vibrator mekanis akan membantu dalam pengoleksian polen. Vibrator ini dapat dibuat menggunakan wadah senter (flashlight case) dengan modifikasi (Standford dan Hanneman, 1977). Dalam pengoperasiannya, kawat yang melengkung dikencangkan ke lengan yang bervibrasi dan buzzer diletakkan pada dasar bunga dan anter divibrasi untuk mengeluarkan pollennya. Polen kemudian dapat dikoleksi pada tes tube kecil dan diisi dengan parafin sampai 1 cm dari ujung atasnya, dengan kapsul gelatin, atau pada plastik syringe yang dimodifikasi dimana plunger dapat mengatur kedalaman polen.

B. Persiapan bunga betinaPotongan tangkai sebaiknya dilakukan di lapang pada dini hari.

Bunga yang sudah terbuka harus dibuang saat itu juga dan kuncup matang yang belum terbuka dapat diemaskulasi. Kuncup pada tahap ini sudah menggembung, petal tampak siap memisah, dan menampilkan warna akhir mereka.

Ketika kentang ditanam saat musim dingin di rumah kaca, dan tidak dipengaruhi oleh goncangan angin kencang oleh arus udara ventilasi, bunga mekar biasanya gagal menghasilkan buah, kecuali dipolinasi dengan tangan. Konsekuensinya, emaskulasi tidaklah penting di rumah kaca jika kemungkinan terjadi selfing dieliminasi. Emaskulasi dapat dilakukan dengan mudah karena struktur bunga yang sederhana dan anter yang besar. Gunakan pinset atau scalpel untuk membuang 5 anternya. Karena polinasi dilakukan pagi hari setelah petal terbuka, emaskulasi kuncup dapat dilakukan sore hari. Petal dapat dibuka paksa untuk mengekspos anternya. Bunga yang diemaskulasi tidak memerlukan proteksi.

C. Polinasi

Polinasi umumnya berhasil dilakukan di pagi hari, segera setelah bunga mekar penuh. Pada musim dingin yang gelap, mungkin perlu

��

menunggu sekitar 1 jam setelah cahaya buatan dinyalakan. Jadwal polinasi 3 kali seminggu biasanya cukup untuk mendapatkan semua bunga dan mengurangi kemungkinan polinasi ganda dari masing – masing individu.

Bunga yang anternya sudah menggembung dan berwarna kuning dengan ujung kecoklatan adalah yang paling baik untuk sumber polen. Polen biasanya paling banyak pada pagi hari. Kebanyakan bunga dapat digunakan sebagai sumber polen selama dua hari setelah corolla terbuka pertama (Janssen dan Hermsen, 1976). Jika bunga dari lapang digunakan sebagai sumber polen, tangkai tanaman jantan mungkin harus dipotong sebelum polinasi dan ditaruh di air. Jika polen dikoleksi langsung dari lapang, pengumpulan pada dini hari memungkinkan keberhasilan yang tinggi.

Polen tanaman kentang bertahan lama jika disimpan pada suhu dingin dan kering. Polen dapat disimpan selama 1 bulan pada suhu 2,5oC atau setahun pada suhu -24oC (Blomquist dan Lauer, 1962). Longevity meningkat jika tempat penyimpanan kering, seperti desikator dengan silica gel (Howard, 1958). Polen yang disimpan pada suhu ruang dan lembab, kehilangan viabilitasnya setelah satu hari.

Jika hanya akan melakukan beberapa polinasi dengan satu sumber polen, polen dapat diambil dari anter matang dengan memasukkan scalpel yang tajam pada dasar anther lobe dan menggaruknya sesuai panjang anter. Jika klon tersebut merupakan sumber polen yang bagus, akan menghasilkan cukup polen untuk mempolinasi 3 – 4 stigma.

Kuncup yang sudah matang, dan bunga yang baru terbuka siap untuk dipolinasi. Polen dapat diaplikasikan dengan berbagai cara, seperti menyentuh stigma dengan scalpel yang ujungnya sudah berisi polen, atau memasukkan stigma ke dalam tabung yang berisi polen. Melapisi dengan polen yang mulai berkecambah adalah cara yang efektif untuk mencegah polinasi selanjutnya.

Ketika penyerbukan sendiri (selfed-polination) diperlukan, bunga yang sudah diemaskulasi dibiarkan terbuka dan polen diambil dari anter dan diaplikasikan ke stigma bunga mekar pada tanaman tersebut. Mencelupkan scalpel ke dalam alkohol akan mencegah kontaminasi antar penyerbukan. Jika benih hasil penyerbukan sendiri diperlukan, dapat menggunakan

��

vibrator, memasukkan stigma di dalam polen yang sudah dikoleksi dari klon tersebut.

Umumnya, semua bunga dari tangkai tunggal diserbuki dari sumber polen yang sama. Ketika polinasi dilakukan, penanda (tag) benang, yang mengindentifikasi jantan atau jantan dan betina, dapat dipasang/dilingkarkan di sekitar tangkai. Kode warna untuk tag dapat digunakan untuk memudahkan pencarian bunga untuk polinasi di hari berikutnya.

Keberhasilan dalam penyerbukan silang tergantung pada kedua tetua. Jika tanaman yang tidak diketahui karakteristiknya digunakan sebagai tetua, keberhasilan lebih dari 50% sudah bagus. Jika tetua betina diketahui menghasilkan bunga matang yang bagus, dan bunga jantan menghasilkan polen yang bagus, persentase keberhasilan akan lebih tinggi, namun tidak selalu. Polinasi dengan polen campuran dari beberapa klon dapat menghasilkan kesuksesan hingga 90%.

D. Faktor – faktor yang mempengaruhi efisiensiPada beberapa program pemuliaan, kentang disambungkan ke akar

tomat untuk merangsang pembungaan pada klon yang sulit. Jumlah bunga dan lama berbunga akan meningkat dan jumlah bunga yang gugur setelah diserbuki menurun. Teknik ini utamanya berguna untuk klon – klon yang cenderung gugur bunga sebelum polinasi.

Penanda yang paling efisien untuk mengindentifikasi benih hibrid adalah spot embrio seperti yang digunakan oleh Peloquin dan Hougas (1959). Penanda ini digunakan pada spesies diploid S. phureja. Gen dominan Bc dan Bd dengan kehadiran P atau R mengkondisikan spot biru atau merah pada ruas kotiledon embrio. Penanda yang efisien pada tanaman dewasa adalah juga pigmen antosianin, yang diturunkan sebagai gen dominan. Sederhananya, alel resisten penyakit yang diturunkan, seperti gen H1 untuk Race A golden nematode resistance dapat juga digunakan.

Perluasan Sumberdaya GenetikSelama pertengahan abad ke-20, penghargaan diberikan terhadap

kultivar budidaya di Amerika selatan untuk perluasan basis genetik dari program pemuliaan Eropa dan Amerika Utara. Percobaan pemuliaan di

��

Eropa dan Amerika Utara menunjukkan bahwa melalui seleksi masa sederhana di daerah/lintang utara, kondisi musim panas dengan hari panjang, grup Andigena lebih beradaptasi dan menghasilkan tetua yang cocok untuk diinkorporasikan langsung pada program pemuliaan di Eropa dan Amerika Utara (Munoz dan Plaisted, 1981).

Plasma nutfah Neotuberosum memberikan sumber ketahanan terhadap berbagai patogen termasuk Globodera sostochiensis (nematode sis kentang emas) dan virus kentang Y (PVY). Meski telah banyak dilakukan usaha pemuliaan, relatif sedikit klon Neotubersoum (Andigena grup hari panjang) dan Phureja grup hari panjang/Stenotomum grup yang telah digunakan untuk pemuliaan kultivar modern. Sebagian alasan untuk ini adalah karena klon Neotuberosum memiliki ukuran umbi yang kurang teratur, sedangkan umbi dari grup Phureja tidak memiliki masa dormansi. Karenanya, populasi ini mesti diseleksi lebih jauh untuk perbaikan guna mencapai tujuan pemuliaan yang diinginkan.

CIP dalam perkembangannya menyadari pentingnya memperluas genetic base dari plasma nutfah mereka dan menyiapkan varietas kandidat dari koleksi dunia yang ada di Program Nasional di Negara berkembang, khususnya plasma nutfah dengan ketahanan terhadap late blight. Tujuannya adalah untuk membantu perbaikan kultivar yang dapat beradaptasi pada berbagai lingkungan, yang memiliki tingkat ketahanan tinggi dan stabil terhadap late bligt, dalam kombinasi dengan virus dan tipe umbi yang cocok, serta kualitas olahan dan kuliner.

Variasi Somaklonal dan Pemuliaan MutasiVariasi somaklonal dapat terjadi ketika tanaman beregenerasi dan

bermultiplikasi secara kultur jaringan, khususnya ketika melalui fase kalus. Variasi semacam ini pertama kali dilaporkan pada kultivar Russet Burbank (Shepard et al., 1980). Variasi yang timbul ini merupakan metode pemuliaan secara otomatis dari tanaman itu sendiri. Perbaikan karakter yang diinginkan pada beberapa kultivar telah dilaporkan dan diuji pada kondisi lapang, namun kebanyakan variasi somaklonal menghasilkan perubahan karakter yang tidak disukai yang tidak bermanfaat untuk usaha pemuliaan selanjutnya (Veilleux, 2005). Saat ini variasi somaklonal dipandang sebagai

�0

sumber variasi yang kurang diminati, dan perlu dibuang selama program pemuliaan yang melibatkan regenerasi tanaman.

Serupa dengan hal tersebut di atas, mutasi secara alami merupakan sumber variasi genetik, namun kentang tidak cocok dilakukan, karena kentang merupakan tanaman tetraploid yang diperbanyak secara vegetatif. Namun, ada keberhasilan dalam pemuliaan mutasi pada kentang, contohnya, seleksi mutan sinar gamma dari kultivar Lemhi Russet yang memiliki sifat lebih baik terhadap ketahanan memar hitam dan pemanisan pada suhu rendah (Love et al., 1993).

Transformasi Genetik Transformasi kentang menggunakan sistem yang dimediasi dengan

Agrobacterium telah dikembangkan pada tahun 1980, pertama kali dengan A. rhizogenes (Ooms et al., 1986) dan kemudian A. tumefaciens (Dale dan Hampson, 1995). Gen yang diminati akan diinkorporasikan ke dalam plasmid bakteri bersama – sama dengan promotor dan selectable marker, misalnya karakter resisten terhadap antibiotik atau herbisida. Bakteri dikulturkan bersama dengan potongan umbi kentang segar atau potongan daun atau potongan ruas sebagai eksplan. Selanjutnya regenerasi tunas dengan selectable marker akan terjadi pada kultur jaringan tanaman dengan keberadaaan selectable agent.

Monsanto pertama kali mengkomersialisasikan kentang GM di Amerika Utara tahun 1995. Kultivar – kultvar GM adalah Russet Burbank, Atlantic, Snowden dan Superior dengan gen Bt untuk resistensi terhadap bakteri Bacillus thuringiensis. Juga ketahanan terhadap virus telah bertambah. Kestabilan karakter ditunjukkan pada percobaan lapang selama beberapa tahun. Penggunaan pestisida telah menurun pesat (Duncan et al., 2002). Namun perusahaan – perusahaan fast food besar di Amerika Utara kurang tertarik untuk membeli kentang hasil rekayasa genetik, karena kekawatiran konsumen terhadap produk kentang rekayasa, sehingga Monsanto menghentikan pemasaran kentang hasil rekayasa pada tahun 2001.

��

Tujuan pemuliaan saat ini di Negara Asia, Afrika, dan Amerika LatinDi Negara berkembang seperti Asia, Afrika dan Amerika Latin,

diperlukan peningkatan produksi kentang untuk memenuhi kebutuhan masyarakat yang populasinya terus meningkat, untuk memastikan ketahanan pangan. Cina dan India merencanakan peningkatan yang besar dalam produksi kentang dengan cara meningkatkan jumlah area budidaya, dan India juga memproyeksikan peningkatan hasil (Anderson, 2009).

Menariknya, jika Cina dapat meningkatkan luas penanaman kentang dengan menanam benih kentang yang sehat dari saat ini 20%, dan dapat menanggulangi late blight, layu bakteri, dan virus secara efektif, hasil panen per hektar diperkirakan dapat meningkat ganda (Anderson, 2009). Hal ini menunjukkan pentingnya mengembangkan varietas yang memiliki ketahanan terhadap hama dan penyakit. Seleksi untuk hasil panen yang tinggi dan stabil juga penting, namun harus memperhitungkan input pupuk dan air, jika tidak, interaksi genotipe x lingkungan mungkin dapat mencegah peningkatan hasil. Perluasan penanaman kentang pada kisaran lingkungan yang lebih luas mungkin memerlukan adaptasi terhadap perubahan musim tanam (waktu tanam dan masa tanam) dan resistensi terhadap tekanan abiotik sangatlah penting. Ini termasuk kekeringan, panas, dingin, defisiensi mineral, salinitas, dan stres air adalah yang paling penting mempengaruhi produksi kentang di sebagian besar area pertanaman kentang di dunia. Jika tumpang sari meningkat di daerah beriklim hangat, tanaman penaung (misal tebu di India) dapat membantu menurunkan stres panas pada kentang, namun kultivar toleran panas masih lebih disukai.

Meskipun kentang merupakan pangan wholesome, perbaikan nutrisi untuk kesehatan perlu dipertimbangkan. Saat ini ada ketertarikan untuk meningkatkan kesehatan masyarakat miskin dengan melakukan pemuliaan tanaman pangan utama yang kaya nutrisi mikro (biofortification). CIP telah menemukan aksesi pada koleksi plasma nutfah mereka yang memiliki kandungan besi dan zinc yang lebih tinggi (Burgos et al., 2007). Uji in vitro juga menunjukkan variasi ketersediaan besi antara genotipe kentang, khususnya kentang berdaging kuning, yang biasanya memiliki kandungan karotenoid yang lebih tinggi dibandingkan kentang berdaging putih atau krem. Heritabilitas konsentrasi karotenoid belum ditentukan, namun

��

heritabilitas konsentrasi Fe dan vitamin C, yang juga meningkatkan ketersediaan, cukup tinggi. Hal ini menunjukkan bahwa pemuliaan untuk meningkatkan ketersediaan Fe pada kentang cukup fisibel.

Kandungan beta-caroten (vitamin A) yang lebih tinggi saat ini merupakan target yang realistis untuk kentang dengan kesuksesan memodifikasi biosintesis karotenoid melalui transformasi genetik (Ducreux et al., 2005), dan peningkatan kandungan protein dan keseimbangan asam amino yang lebih baik telah dicapai melalui transformasi dengan gene albumin benih non-alergen (AmA1) dari Amaranthus hypochodriacus (Chakraborty et al., 2000).

Di Negara–negara dimana kentang dibudidayakan sebagai pangan utama, perlu dikembangkan kentang yang beradaptasi lokal, yang memenuhi persyaratan untuk mesin prosesor. Morfologi dan tekstur umbi yang tepat, kandungan padatan yang cukup, kandungan gula rendah, dan juga tahan kerusakan mekanis, leban dan tidak ada cacat internal.

Perkembangan Pemuliaan Kentang di IndonesiaPemuliaan kentang di Indonesia terutama dilakukan di Balai

Penelitian Tanaman Sayuran (Balitsa) yang berlokasi di Lembang, Jawa Barat. Pemuliaan terutama ditujukan untuk ketahanan terhadap penyakit dan peningkatan produksi. Klon/varietas kentang sebagai tetua persilangan bersumber dari introduksi plasma nutfah, CIP (Center International Potato), yang berupa kentang dataran rendah dan resisten virus (Lowland Tropics and Virus Resistant), serta kentang dataran tinggi dan resisten Late blight (Highland Tropics and Late Blight Resistant).

Berbagai kultivar telah dihasilkan selama lebih dari 35 tahun, diantaranya Dayang Sumbi, Sang Kuriang, Olimpus, Maglia, Amabile, Andina, GM05, Spudy Agrihorti dan Medians, yang melengkapi varietas yang paling umum ditanam di Indonesia yaitu Granola. Data koleksi kentang hasil pemuliaan Balitsa sejak tahun 1980 hingga 2018 tersaji pada Tabel 3.1. Data selengkapnya pada website Balitsa yaitu http://www.balitsa.litbang.pertanian.go.id

Kentang varietas Spudy Agrihorti yang baru dirilis tahun 2018 oleh pemulia tanaman di Balitsa, berasal dari tetua betina Atlantik M dan

��

tetua jantan dari varietas Repita. Perakitan varietas ini bertujuan untuk menghasilkan kentang varietas unggul yang dapat memenuhi kebutuhan masyarakat, terutama sebagai bahan baku industri chips. Atlantik M merupakan varietas kentang tahan terhadap nematoda, dengan kadar pati tinggi dan kadar gula yang rendah. Bila digoreng, umbi menjadi kering namun tidak mencoklat. Varietas ini umum digunakan sebagai bahan baku chips di Indonesia. Sifat unggul dari varietas Repita yang tahan busuk daun dan berpotensi menghasilkan umbi 30-32 ton/hektar dipilih dengan harapan persilangan kedua varietas ini menghasilkan varietas unggul yang berpotensi hasil tinggi, tahan terhadap busuk daun juga nematoda, serta cocok untuk industri chips.

Kegiatan diawali dengan persilangan kedua tetua di screen house Balai Penelitian Tanaman Sayuran. Kombinasi silangan sebanyak 21 persilangan, diantaranya dengan menggunakan tetua Atlantik M x Repita, Atlantik x Ping 06, dan Atlantik x Merbabu17. Calon Varietas Unggul Baru (VUB) Spudy Agrihorti diperoleh dari single cross antara Atlantik M sebagai tetua betina dengan Repita sebagai tetua jantan yang berasal dari koleksi plasma nutfah Balitsa.

Proses seleksi dimulai sejak periode seedling (tanaman hasil F1) yang dinamakan progeni. Hasil persilangan menghasilkan 500 biji progeni. Biji disemai pada baki semaian, selanjutnya biji ditanam pada polybag untuk diumbikan. Umbi hasil panen diambil 1 umbi per polybag. Populasi umbi tersebut ditempatkan pada kantong jala, kemudian disimpan pada box plastik atau krat. Tanaman yang tumbuh pada populasi awal sebanyak 400 tanaman, sehingga diperoleh 400 calon umbi benih. Pengelompokan ini dinamakan tuber family.

Sebanyak 400 umbi benih terpilih ditanam dalam barisan dan diseleksi. Kriteria seleksi pada karakter pertumbuhan tanaman dan umbi meliputi vigor tanaman, bentuk umbi, warna kulit umbi, dan warna daging umbi. Seleksi ini menghasilkan 60 klon terpilih. Keenam puluh umbi tersebut diperbanyak dan terpilih 24 klon. Pada tahap seleksi ini, dilakukan pengulangan dan uji daya hasil pendahuluan menggunakan Rancangan Kelompok Lengkap Teracak (RKLT), dengan 3 ulangan dan 20 tanaman per plot. Seleksi dilakukan pada fase pertumbuhan vegetatif meliputi habitus

��

tanaman dan vigor tanaman, sedangkan pada fase generatif pengamatan dilakukan terhadap umur panen, hasil umbi dan kualitas umbi. Hasil seleksi terpilih 12 klon potensial untuk dilakukan uji lebih lanjut.

Uji keunggulan 3 klon terpilih (klon PB12.20, PB12.8 dan PB14.5.1) dilakukan di Kabupaten Garut, Jawa Barat dengan varietas pembanding yaitu Atlantik, Granola, dan Medians. Pengujian menggunakan Rancangan Kelompok Lengkap Teracak (RKLT) dengan ulangan sebanyak 4 kali. Populasi per plot adalah 80 tanaman. Sebelas tanaman per plot diambil acak sebagai sampel.

Penanaman kentang dilakukan dengan menggunakan penutup mulsa. Sebanyak 20 ton pupuk kandang ayam, 500 kg NPK, dan 40 kg nematisida dengan perbandingan 16:16:16 untuk setiap hektarnya diaplikasikan pada lahan 1 minggu sebelum penutupan mulsa. Pemeliharaan tanaman dilakukan dengan pengairan, pemberian pupuk susulan NPK pada umur 30 HST sebanyak 500 kg/ha. Pengendalian OPT hama dan penyakit dilakukan 2 kali seminggu menggunakan OPT penyakit jenis Mancozeb, sedangkan untuk OPT hama dari jenis Prefenofos.

Untuk mendapatkan varietas baru, mesti dilakukan beberapa pengujian klon kentang terpilih, yaitu uji keunggulan dan uji kebenaran. Kedua pengujian ini dilakukan bersamaan. Uji keunggulan dilakukan oleh pemulia, petani, dan pengusaha kentang untuk mendapat VUB (dalam hal ini, Spudy Agrihorti). Sedangkan uji kebenaran bertujuan untuk memverifikasi kebenaran varietas terpilih Spudy Agrihorti, dilakukan oleh beberapa lembaga, yaitu perwakilan dari Balai Komoditas dalam hal ini Balitsa, Universitas, dan Balai Pengawasan dan Sertifikasi Benih Pertanian (BPSBP) setempat. Melalui pengujian yang dilakukan, varietas Spudy Agrihorti berpotensi hasil sangat tinggi yaitu 40,8 ton/ha, lebih dari varietas pembanding Atlantik (29,4 ton/ha), dan varietas Medians (32,3 ton/ha). Spudy Agrihorti cocok untuk produksi keripik. Varietas ini disukai oleh responden karena memiliki warna keripik kuning.

��

Atlantik M X Repita (2012)

F1 sebanyak 500 seedling (2012)

Seleksi awal (terseleksi 60 klon, 2013)

Seleksi lanjut I (terseleksi 24 klon, 2014)

Seleksi lanjut II (terseleksi 12 klon, 2015)

Uji daya hasil pendahuluan (terseleksi 3 klon, 2016)

Uji keunggulan dan kebenaran di Garut 2017Terpilih klon PB12.8 (Spudy Argihorti)

Pelepasan varietas Spudy Agrihorti (2018)

Gambar 3.3. Skema perakitan varietas kentang Spudy Agrihorti

Gunadi et al. (2014) melaporkan kegiatan pemuliaan kentang di dataran tinggi Malino, Sulawesi Selatan. Klon kentang unggul yang berasal dari CIP dievaluasi kesesuaiannya untuk berproduksi di Indonesia, khususnya di Malino. Tujuannya adalah untuk mendapatkan klon kentang dengan hasil umbi yang tinggi baik untuk kentang konsumsi maupun untuk kentang olahan yang dapat diterima petani secara berkelanjutan. Dataran tinggi Malino (1500 dpl) dipilih sebagai lokasi percobaan lapang karena merupakan salah satu daerah penghasil kentang di Sulawesi Selatan dan mempunyai potensi untuk pengembangan benih kentang (Rukmana et al., 2012).

��

Gambar 3.4. Tetua persilangan, buah hasil persilangan, tanaman kentang pada tahap seleksi

Gambar 3.5. Uji keunggulan dan kebenaran varietas kentang baru

Dua puluh klon dicobakan dan sebagai pembanding digunakan varietas Granola yang umum digunakan petani dan varietas Atlantik yang merupakan varietas kentang untuk olahan. Hasil penelitian menunjukkan tiga klon kentang yaitu 393708.31, 388615.22, dan 397079.6 menunjukkan hasil umbi per ha tertinggi yang berbeda nyata dengan beberapa klon kentang lainnya dan cv. Granola.

��

Tabel 3.1 Varietas kentang yang dilepas BalitsaVarietas Tetua Tahun lepas

Cipanas Cosima Granola–LAtlantik MalangMerbabu-17AmudraManoharaTanggoKrespoErikaBalsaFriesRepitaMargahayuKikondoGm-05Gm-08Pink 06VerneyKastanumAndinaAmabileMediansMagliaAR 7 AgrihortiAR 8 AgrihortiOlympus AgrihortiSang kuriang AgrihortiDayang sumbi AgrihortiSpudy Agrihorti

Introduksi dari GermanIntroduksi dari USAIP 81001-1 x MF-1Shepody x Ritex-CIP 380584.3 (CIP)FBA-4 (CIP)I-1085 (CIP)FLS-2 (CIP)(CIP)LBr-40 (CIP), 3821.25 x 575049Hertha x CIP FLS-17CIP 720050.1Granola x Michigan PinkGranola x Michigan PinkGranola x Michigan PinkCIP 391011.17 x 385524.9CIP 393077.54 x CIP 391011.17CIP 391580.30 x CIP 385524.39Atlantik x CIP 393280.64Atlantik x CIP 393284.39Atlantik x CIP 391058.175Atlantik x Repita (CIP LBr-40)Atlantik x Repita (CIP LBr-40)CIPAtlantik x kathadinGranola x kathadinAtlantik Malang x Repita

198019802000200020022002200520052005200520052005200820082009200920092009201120112011201320132013201520152015201620172018

Benih Kentang Sejati (True Potato Seed) Kebanyakan kentang diperbanyak secara vegetatif melalui umbi

yang memiliki sifat sama persis dengan induknya. Namun ada beberapa situasi dimana kultivar dikembangkan melalui perbanyakan benih sejati (True Potato Seed, TPS), walaupun secara genetik menghasilkan anakan yang bervariasi. Pemuliaan kultivar dengan cara TPS mulai dilakukan di

��

CIP tahun 1972 dengan tujuan meningkatkan hasil dan keseragaman yang cukup.

Perbanyakan melalui TPS menjadi daya tarik tersendiri di dataran rendah tropis dan subtropis. Di daerah ini, kesulitan mengembangkan tanaman TPS, kemasakan yang lama, dan kurang seragam, terabaikan oleh tiga keuntungan. Biaya benih dapat ditekan karena lebih sedikit bahan tanaman yang diperlukan. Waktu penanaman cukup fleksibel karena petani tidak perlu memikirkan umur fisiologi dan kondisi umbi kentang. Dan yang paling penting, umbi bebas dari penyakit umbi (tuber-borne disease), meskipun ada sedikit kemungkinan infeksi virus pada benih sejati kentang. Kentang TPS sudah dikembangkan di Bangladesh, Cina, Mesir, India, Indonesia, Nicaragua, Peru, Philipina, Itali Selatan dan Vietnam (Simmonds, 1997). TPS terbukti sangat berguna untuk ketahanan pangan, terutama pada petani skala kecil.

��

BAB IVSISTEM PRODUKSI KENTANG

DI TEXAS, USA

Texas merupakan salah satu negara bagian di US yang melakukan pemuliaan dan produksi kentang. Produksi kentang di Texas

saat ini menempati urutan ke-empat di US, setelah Idaho, Colorado dan Washington State. Kegiatan penelitian kentang dilakukan di salah satu Universitas ternama di Texas, yaitu Texas A & M University (TAMU). Pengembangan kentang di universitas ini dipimpin oleh Prof. Dr. J. C. Miller, dibantu oleh asisten peneliti Mr. Douglas Scheuring dan manager laboratorium kultur jaringan, Ms. Angel Chappel.

Penelitian dan pengembangan varietas kentang telah dilakukan selama kurang lebih 20 tahun. Dalam kurun waktu tersebut, beberapa varietas telah dirilis dan menjadi pilihan favorit warga, di antaranya Russet Norkotah, Sierra Gold dan Sierra Rose. Dalam pengembangan pemuliaan kentang di TAMU, ada beberapa tahap yang dilakukan yaitu: 1) seleksi tanaman induk dan penyilangan, yang meliputi produksi benih hasil silangan, 2) percobaan lapang, evaluasi, termasuk di dalamnya field day yang mempertemukan petani kentang di Texas dengan stakeholder, 3) inisiasi eksplan kentang in vitro, 4) eliminasi virus dengan berbagai teknik, dan diuji virus free dengan uji serologi ELISA, 5) tanaman yang bebas virus selanjutnya diperbanyak secara in vitro, 6) Aklimatisasi di glass house dan produksi umbi kentang generasi awal (G0), 7) Perbanyakan kentang bibit G1, G2 dan G3.

�0

Persilangan Tanaman KentangPersilangan tanaman kentang dilakukan di Research station milik

TAMU di Lubbock, 8 jam perjalanan (sekitar 800 km) ke arah utara dari kampus Texas A&M di College station. Bahan persilangan didapatkan dari hasil percobaan lapang musim sebelumnya (hasil field trial dipilih dari pendapat stakeholder (petani, pemulia dan pengusaha) tentang kentang yang ditanam. Panen umbi kentang percobaan biasanya sekitar bulan Agustus (panen di daerah Springlake) dan September (panen di daerah Dallhart). Hasil panen yang akan digunakan sebagai bahan persilangan lalu disimpan di ruang dingin (10oC) untuk penyimpanan jangka panjang. Bahan persilangan juga berasal dari pemulia – pemulia tanaman kentang di lokasi lain di US, seperti dari Idaho, Colorado State University, North Dakota State University, dan Cornell University.

Tanaman kentang yang dijadikan tetua persilangan (parent line) ditanam di pot berukuran 3 gallon, di dalam rumah plastik berbentuk setengah lingkaran. Penanaman dilakukan pada musim gugur (fall, September), selanjutnya dipanen saat spring (Maret tahun depannya) dan dibawa ke College station untuk ditanam pada musim gugur tahun tersebut. Benih hasil persilangan (potato true seed, botanical seed) tersebut selanjutnya ditumbuhkan dalam tray kecil di dekat jendela besar, dengan media tanam permiculite (Gambar 4.1). Bahan ini digunakan untuk menjamin tidak ada kontaminasi dari bakteri maupun jamur. Bibit yang baru tumbuh 2 minggu selanjutnya ditransfer ke rumah kaca untuk hardening (Gambar 4.2) dan produksi umbi.

Umbi hasil panen dari true potato seed dipisahkan ke dalam empat paper bag. Biasanya hanya ada 4 umbi yang dihasilkan dari tiap benih awal (G0). Benih yang paling besar disimpan di College Station, benih lain dikirim ke-3 lokasi perbenihan lain, yaitu Colorado, North Dakota dan Wisconsin. Dengan demikian, ada 4 sibling yang diperbanyak di lokasi yang berbeda. Benih yang disimpan di Texas selanjutnya ditanam di lokasi Springlake dan Dallhart untuk dievaluasi (disebut seedling oleh Dr. Miller).

��

Gambar 4.1 True potato seed ditanam pada trayyang berisi media permiculite

Gambar 4.2. Bibit kentang dibawa ke rumah kaca untuk hardening selanjutnya ditransfer ke pot individu, dan menghasilkan

umbi generasi awal (G0).

Dr. Miller (pemulia kentang) langsung yang memilih mana yang disukai. Biasanya hanya satu tanaman yang diambil dari setiap silangan (single seed descent). Selanjutnya, umbi tanaman terpilih ditanam kembali di Dalhart untuk menghasilkan umbi G1. Jika performance umbi G2 yang dihasilkan baik, Dr. Miller akan mengintroduce langsung ke tissue culture program, di cek apakah ada virus, dengan teknik ELISA. Jika ada yang

��

mengandung virus, akan dieliminasi dengan cara heat treatment. Saat ini sedang dipelajari cara lain yaitu dengan cryotherapy untuk mengeliminasi virus.

Field TrialSemua hasil persilangan kentang dan sumber lainnya ditanam pada

lahan milik petani. Field trial dapat berupa G1, G2 atau generasi 3, 4 dan 5. Field trial diperlukan untuk mengetahui performance hasil silangan atau seleksi sebelum dirilis sebagai kultivar. Untuk rilis kultivar, persyaratan multi years dan multi location harus dipenuhi.

Kentang ditanam pada bedeng tunggal berjarak 9 inch dalam bedeng. Ada 20 tanaman dalam satu genotipe. Antarbedeng berjarak 35 inch (90 cm). Dalam field trial kali ini, seleksi diutamakan pada 3 macam kentang, yaitu Russet (kulit kasar, warna coklat muda, ukuran umbi relatif besar, lebih dari 10 cm, berbentuk lonjong). Tipe kedua, yaitu kentang berwarna merah/ungu, sedangkan tipe ketiga adalah fingerling (berbentuk lonjong seperti jari, ada yang berwarna ungu, merah, atau coklat muda). Tipe russet ideal untuk dipanggang (roast) dan fries, kentang merah cocok untuk direbus dan dibuat mash potato, sedangkan fingerlink diarahkan untuk fries dengan ukuran yang kecil sehingga cocok untuk satu orang (Gambar 4.3).

Pertanaman kentang untuk field trial dilakukan di kebun milik petani kentang, yaitu Bruce Barret. Semua kebutuhan operasional selama pertanaman juga dipenuhi oleh Bruce, seperti pengolahan tanah, penanaman, obat-obatan untuk pengendalian hama, penyakit dan gulma serta irigasi yang dilakukan dengan sistem pivot. Menurut Dr. Miller sumbangan Bruce mencapai $40.000 per tahunnya. Ada pun keuntungan yang diperoleh oleh Bruce adalah, perusahaannya dikenal oleh pemain – pemain kentang seperti Real Potato (melakukan trial kentang dari kentang pilihan hasil breeding), supermarket besar seperti HEB. Dengan menyumbangkan sebesar $40 ribu, Bruce juga mendapat pengurangan pajak dari hasil usahanya. Terpenting, Bruce sebagai petani kentang, mendapatkan teknologinya, mendapatkan varietas yang terbaik yang dipastikan akan diterima oleh supermarket untuk dipasarkan ke masyarakat.

Pilihan kultivar yang masuk ke pasar cenderung ditentukan bukan oleh masyarakat sebagai pembeli, karena masyarakat akan membeli apa yang ada di pasar atau supermarket ternama. Pilihan pasar ditentukan oleh

��

supermarket dan grower besar yang terlibat di dalamnya. Juga USDA atau Departemen Pertaniannya yang melakukan inspeksi terutama kesehatan tanaman.

Gambar 4.3. Variasi morfologi kentang hasil pemuliaan. a) Russet/kasar, b) kulit merah muda, c) kulit ungu dengan daging ungu, d) kulit krem halus,

bentuk bulat kecil dengan daging kekuningan, e) fingerling berkulit krem, f) fingerling berkulit ungu, g) fingerling berkulit merah muda.

Field Day

Field day merupakan bagian penting dari pemuliaan tanaman kentang di Texas. Pemulia tanaman di Texas A&M University mengadakan field day setiap tahun pada bulan Juli. Sehari sebelum field day, berbagai genotipe hasil silangan, seleksi yang ditanam pada bulan Mei, digali sebanyak 10 tanaman, diletakkan dengan alas karung kentang, diletakkan tepat di sebelah

a b

c d

e f g

��

tanamannya, sehingga keesokan harinya, pengunjung akan dapat melihat umbi sekaligus bentuk tanamannya untuk dievaluasi dan dipilih mana yang mereka sukai. Setiap kultivar juga diberi plang nama yang dipasang pagi hari menjelang field day. Seluruh pertanaman dirapikan, gulma dihilangkan/dicabuti, dikeruk dengan traktor dan jalan dirapikan menggunakan traktor.

Sehari sebelum field day, saat umbi telah digali, Dr. Miller, pemulia tanaman dari Texas A&M University berkeliling untuk memberikan penilaian (skoring) setiap genotipe yang ditanam di lapang. Penilaian meliputi warna kulit umbi, mulus atau kasarnya kulit umbi, bentuk umbi, warna daging umbi, tampilan keseluruhan, umur tanaman (early atau late, ini diketahui dari tipis tebalnya kulit umbi, karena semua kultivar digali pada hari yang sama untuk field day). Beberapa minggu sebelumnya, Jeff, asisten peneliti, juga melakukan pengamatan terhadap vigor tanaman (skoring) dan jumlah cabang (karena berkaitan dengan jumlah umbi).

Pada saat Field Day, semua undangan berkumpul jam 10 pagi di lokasi yang telah ditentukan, yaitu shed house milik petani Bruce Barret. Shed house merupakan kantor Bruce, yang meliputi lokasi penempatan segala macam alat berat seperti traktor, mobil pick up besar, Gator, ATV, ruang pengepakan kentang dan juga kantor pemasaran. Tampak truk container berukuran besar berdatangan di pagi hari untuk mengambil pesanan kentang dan mengirim ke lokasi sekitar Texas ataupun state lainnya.

Setelah undangan semua hadir, Dr. Miller memberi kata pembukaan, memberikan buku panduan ke masing – masing peserta, membagikan topi Potato Breeding Texas A&M University, dan memberi kesempatan setiap orang untuk memperkenalkan diri, dengan menyebutkan nama dan tempat bekerja. Selanjutnya rombongan berangkat ke lokasi fied trial dan mengamati setiap kentang yang sudah dijejer di depan tanaman masing – masing berikut plang nama. Peserta field day berasal dari kalangan petani (grower), departemen pertanian (USDA), perusahaan potato trial (Real Potato), mahasiswa Ph.D, dan industri serta wartawan yang memastikan kegiatan ini terpublikasi (Gambar 4.4).

��

Gambar 4.4. a) Suasana field day, komponen masyarakat meninjau lokasi pertanaman kentang, dan b) Dr. Miller, pemulia kentang di Texas

diwawancarai media mengenai varietas kentang yang diproduksi.

Setelah puas berkeliling di lokasi field trial, peserta langsung menuju lodge atau rumah peristirahatan milik Bruce, yang ditata apik khas Texas, kursi kayu, interior kayu dan rustic. Peserta disuguhi hidangan khas Texas, yaitu Brisket (Daging sapi yang dimasak dengan teknik slow cooking, kurang lebih selama 10 jam sehingga lembut), roast potato dan pickle (asparagus, mentimun), juga sup kacang merah berisi ham. Sedapnya. Dilengkapi dengan desert berupa peach dan cherry pie + ice cream. Minuman disediakan berupa ice tea dan ice water.

Strategi Produksi Kentang di TexasProduksi kentang di US didominasi oleh produksi di negara bagian

utara seperti New York, Idaho, Washington, dll. Negara – negara bagian tersebut umumnya mulai menanam kentang pada bulan Juni – Agustus untuk produksi bulan September – selambatnya November. Dengan kemajuan teknologi penyimpanan, kentang mampu disimpan pada cold storage selama beberapa bulan. Namun, persediaan kentang hanya bisa disimpan hingga bulan Mei/Juni, yang berarti sangat sedikit tersedia kentang untuk pasar bulan Juli dan Agustus.

Negara bagian Texas terletak paling selatan dibandingkan state lainnya di US. Dalam pertanian kentang, hal ini memberi keuntungan karena memungkinkan Texas yang bersuhu lebih hangat untuk menanam kentang pada bulan Maret/April untuk dipanen pada bulan Juli/Agustus. Ketersediaan kentang yang sangat terbatas saat ini memberi keuntungan harga tinggi pada petani kentang di Texas. Window inilah yang dimanfaatkan

a b

��

oleh petani kentang seperti Bruce Barrett, yang mensuplai kentang ke negara bagian di utara selama bulan Juli-Agustus dan awal September.

Cara lain yang diterapkan Bruce untuk memastikan panenan kentang pada Juli/agustus adalah dengan menyemprot tanaman kentang yang sudah berumur 90 hari dengan Sulfuric Acid (dengan asumsi ukuran umbi sudah mencapai maksimal). Dengan cara ini, seluruh tanaman bagian atas akan mati, dan memberikan kesempatan untuk umbi agar cepat matang (kulit menebal) dan siap dipanen. Umbi dapat dipanen kurang lebih 15 hari setelah disemprot. Hal ini terutama diterapkan jika penanaman terlambat dilakukan, akibat udara masih dingin, masih ada hasil di bulan April (Gambar 4.5).

PanenPanen dilakukan pagi hari mulai pukul 6.30 am untuk menghindari

udara yang terlampau panas. Panen dilakukan manual agar tidak tercampur antar satu genotipe dengan genotipe lainnya. Setiap bedeng yang terdiri dari 2 baris kultivar yang sama, diletakkan 1 wadah berjala untuk meletakkan kentang hasil panen. Garpu besar digunakan untuk menggaruk kentang, lalu kentang diambil dengan menggunakan tangan. Jika semua kultivar sudah dipanen, diangkut ke shade house untuk di grading.

Grading dilakukan di shade house. Pertama – tama, ditimbang kentang yang berukuran 4 pound, 10 pound dan 16 pound, untuk dijadikan standar (Gambar 4.6a). Ukuran kentang di bawah 2 lb dimasukkan kelas 1, 2-4 pound (lb) dimasukkan kelas 2, kelas 3 berukuran antara 5 – 10 lb, kelas 4 berukuran 10 – 16, kelas 5 lebih besar dari 16 lb. Juga dihitung kentang yang reject, yaitu yang bentuknya aneh (Gambar 4.6b), seperti bentuk jantung, mickey mouse, terbelah (akibat residu glyphosate), dll. Jumlah kentang dihitung tiap kelasnya, juga dihitung berat totalnya. Selanjutnya dilakukan gravity test untuk menghitung kepadatan total kentang (total solid). Total solid diperlukan untuk kentang yang diolah menjadi chip. Pengukuran gravity dilakukan dengan menimbang berat kentang kurang lebih sebanyak 10 kentang, lalu kentang dicelupkan ke dalam air dan ditimbang kembali. Ada cara khusus, yaitu dengan menggantung wadah besi yang direndam di air (Gambar 4.7).

��

(Gambar 4.5). Tanaman kentang dengan umbi yang sudah matang, disemprot dengan bahan kimia untuk mematikan/menghentikan pertumbuhan vegetatif

dan memastikan pengisian dan pematangan umbi. Foto diambil di daerah Spring Lake, Texas.

Gambar 4.6. a) Patokan grading kentang, b) kentang reject

Gambar 4.7. Alat pengukuran gravity untuk menghitung total solid kentangPVP (Plant Variety Protection) = Plant Variety Right

a b

��

Varietas yang sudah dikembangkan dan akan dirilis harus didaftarkan untuk mendapatkan semacam paten. Perolehan paten ini melalui proses yang cukup rumit dan harus memenuhi kriteria DUS (Distinction, Uniformity, Stability) atau Berbeda, Seragam dan Stabil. Ini terutama menyangkut kriteria morfologi seperti jumlah mata pada umbi, warna tunas yang baru muncul dari umbi, jumlah tunas, jumlah cabang tanaman di lapang, jumlah daun kedua dan ketiga, jumlah inflorescence, jumlah bunga, jumlah polen, dll. Varietas baru dapat didaftarkan jika benar – benar berbeda dari varietas lain yang sudah ada.

Perbanyakan BenihUntuk menghasilkan seed potato yang baik, kentang harus

ditumbuhkan di high latitude atau high altitude. Texas yang terletak di selatan (lower latitude) terlalu panas untuk menumbuhkan seed potato, sehingga usaha seed potato dan sertifikasi benih tidak ada di sini. Varietas yang sudah dirilis diperbanyak untuk produksi seed potato di lokasi lain seperti Idaho, North Dakota, Maine, Minnesota dan lokasi – lokasi di utara lainnya. Sertifikasi benih kentang dilakukan di North Dakota, Colorado, Idaho dan Michigan.

Kentang, karena diperbanyak secara vegetatif, mudah terserang virus. Virus yang umum menyerang pertanaman kentang adalah virus Y, X, LR, LV dan S. Untuk mencegah penyebaran virus di lapang yang mengakibatkan penurunan produksi kentang, produksi benih harus bebas virus. Cara yang sudah dilakukan rutin di negara maju adalah dengan memperbanyak kentang secara kultur jaringan. Kentang hasil panen, dicuci dengan 50% bleach, lalu diangin-anginkan pada lokasi ruang di dekat jendela, hingga tumbuh tunas. Suhu ruang pertumbuhan sekitar 23oC. Tunas yang baru tumbuh lalu disterilisasi permukaan dan ditanam dalam botol (in vitro) pada media LS (Linsmaier and Skoog). Tunas yang tumbuh diperbanyak secara kultur jaringan pada media yang sama dan selanjutnya di test baik dengan PCR maupun ELISA. ELISA merupakan persyaratan yang harus dilakukan untuk sertifikasi benih bebas virus.

Jika hasil pengujian ELISA menunjukkan bahwa varietas kentang tertentu terinfeksi virus, maka kentang in vitro tersebut diberi perlakuan

��

untuk mengeliminasi virus. Di Texas A&M, teknik eliminiasi virus yang digunakan adalah dengan menambahkan Ribavirin pada media dan heat treatment. Selain teknik tersebut, teknik yang lebih baru dan banyak digunakan di lembaga lain seperti USDA, Michigan State University dan CIP, adalah teknik Cryopreservasi (Wang et al., 2008, Wang et al., 2014). Teknik ini menggunakan nitrogen cair yang memiliki suhu sangat rendah, yaitu -196oC untuk mematikan virus pada tunas in vitro kentang. Meskipun teknik ini banyak digunakan saat ini baik pada tanaman kentang maupun tanaman lainnya, penguasaan teknik yang tepat perlu dipelajari secara detil untuk mendapatkan survival rate yang cukup baik. Ada beberapa teknik cryopreservasi yang dapat digunakan, di antaranya encapsulation – dehydration, encapsulation – vitrification, vitrification. Perlu diingat, varietas kentang yang berbeda memiliki respon yang berbeda pada teknik yang digunakan, sehingga perlu dicoba beberapa teknik dan ditentukan teknik yang cocok untuk varietas tertentu.

Setelah perlakuan eliminasi virus, tunas – tunas kentang in vitro tersebut kembali diuji dengan ELISA untuk mengkonfirmasi bahwa tanaman benar - benar telah bebas virus. Selanjutnya tanaman dimultiplikasi sesuai kebutuhan. Jika tunas sudah mencapai tinggi maksimal dalam botol kultur (baby jar) (Gambar 4.9), tunas siap digunakan sebagai bahan perbanyakan di rumah kaca.

�0

Gambar 4.9. Tunas kentang hasil perbanyakan kultur jaringan

AklimatisasiTunas yang sudah cukup besar dan tinggi kurang lebih 10 – 15 cm,

dipotong 2 buku dan ditanam pada media LS pada wadah half pine jar, atau semacam botol selai berdiameter sekitar 15 cm dengan tinggi sekitar 10 cm. Media LS diberikan sedikit saja, yaitu 10 ml per botol, karena hanya perlu untuk menumbuhkan tanaman selama 1 – 2 minggu sebelum ditransfer ke potting mix dalam tray di rumah plastik. Tiap botol diisi 40 tunas.

Dalam 1 – 2 minggu, tunas sudah meninggi dan tumbuh sedikit akar. Tunas siap ditransfer jika sudah memiliki sedikit akar. Jika terlalu banyak akar, akan sulit saat transplanting. Botol – botol half pine tersebut selanjutnya dibawa ke rumah kaca. Tunas kecil ditransfer ke potting mix yang merupakan campuran tanah, serasah dan permiculite dengan perbandingan 1:1:1 yang sudah steril. Saat mentransfer tunas in vitro, agar – agar diikutsertakan untuk mencegah rusaknya akar. Jika akar terlalu panjang dan membelit satu sama lain, dapat digunting dan segera ditanam dalam tray berisi potting mix.

Tray yang sudah penuh berisi tunas kentang, segera dipindah ke fogging chamber, berupa bench yang dikurung dengan plastik berdimensi kurang lebih 2 m x 1 m x 1 m dan di dalamnya dipasangi sprinkle/fogger

��

yang menyemprotkan titik – titik air selama 10 detik. Fogging rate diset setiap 5 menit pada hari pertama, selanjutnya 10 menit pada hari kedua, 20 menit pada hari ketiga, 30 menit pada hari ke-empat, 1 jam pada hari kelima, 1,5 jam pada hari ke-enam dan 2 jam pada hari ke 7. Pada hari ke-delapan, tanaman di pindah ke bench terbuka dengan pengairan biasa pada pagi dan sore hari saja. Diharapkan dalam 90 hari tanaman sudah menghasilkan umbi mini.

Hasil pengamatan penulis, penanaman pada half pine jars dilakukan pada akhir bulan Agustus, selanjutnya ditanam di screen house pada awal September. Umbi mini yang dihasilkan dari tanaman ini selanjutnya dipanen dan ditanam pada musim tanam tahun berikutnya, yaitu musim spring, atau sekitar bulan April.

Sertifikasi BenihSelanjutnya, benih kentang yang diproduksi dari hasil perbanyakan

dengan kultur jaringan (G0) ditanam di lapang dengan pengawasan ketat dan harus memenuhi kriteria yang ditetapkan oleh badan sertifikasi. Benih yang telah disertifikasi dapat dijual ke petani untuk produksi kentang. Di Amerika, ada dua macam petani kentang, yaitu petani penghasil benih kentang, dan petani penghasil kentang konsumsi.

Pengolahan kentang menjadi French Fries – kunjungan ke Pabrik Simplot, Prosser, Washington

Washington state merupakan produsen kentang yang cukup besar di USA, bersama – sama dengan Idaho yang terletak bersebelahan. Daerah ini memiliki lahan yang tandus, tetapi berkat pengairan yang sangat baik, dengan mengalirkan air dari Columbia River, menjadikan Washington daerah pertanian yang ternama untuk buah – buahan dan kentang.

Kentang yang ditanam di daerah ini utamanya untuk kentang yang diproses menjadi French fries. Varietas kentang yang umum ditanam untuk processed potato adalah ‘Shepody’ dan ‘Russet’ karena ukurannya yang panjang sehingga cocok untuk French Fries.

Kentang dipanen pada pagi hari, selanjutnya langsung dibawa ke pabrik, masuk conveyer belt untuk dicuci, disikat, lalu digrading, dipotong

��

sesuai ukuran chip, digoreng, dibekukan dan dikemas. Semua proses, mulai panen hingga packing hanya memerlukan waktu 10 jam. Tidak lupa setiap batch diuji untuk rasa dan kualitas.

Kentang French Fries yang sudah dikemas ini sebagian besar dikirim ke negara – negara Asia seperti Jepang, Korea, Cina dan mungkin termasuk Indonesia. Simplot memiliki kontrak dengan McDonald, yang awalnya dimulai hanya dengan ‘jabat tangan’, artinya berdasarkan kepercayaan saja, tidak ada paper work atau tanda tangan ke notaris. Hingga saat ini hubungan kerjasama mereka terpelihara dengan baik.

NetworkDalam kaitan dengan kentang di Amerika, ada 3 badan yang berperan

dalam pengembangannya, yaitu Potato Association of America (PAA) yang bersifat research dan melakukan pertemuan setiap tahunnya untuk mengetahui perkembangan riset di bidang kentang dan bertukar pikiran mengenai pengembangan kentang di Amerika. Kedua adalah NSRP-6 yaitu badan yang mengumpulkan germplasm kentang dari seluruh dunia. Yang ketiga adalah ARS.

��

BAB VTEKNIK PRODUKSI BENIH KENTANG

BERKUALITAS DI INDONESIA

Produksi benih kentang bermutu di Indonesia utamanya dilakukan oleh Balai Penelitian Sayuran Lembang. Benih sumber

(G0, Breeder Seed) dihasilkan melalui teknik kultur jaringan dengan menggunakan eksplan bagian meristem ujung tunas kentang. Selanjutnya G0 berupa stek dikirimkan ke BBI (Balai Benih Induk) Pengalengan untuk diperbanyak di rumah jaring (screen house) guna memproduksi umbi mini. Umbi mini selanjutnya ditanam di rumah jaring untuk menghasilkan G1, dan ditanam di lapang untuk menghasilkan G2. Perbanyakan dari G2 ke G3 dilaksanakan di BBU Pangalengan dan selanjutnya diperbanyak menjadi G4 oleh para penangkar yang telah terlatih. Benih awal G1 diuji oleh BBI untuk mendapatkan sertifikasi, sedangkan benih G2 (benih dasar) diuji oleh BPSBTPH (Suwarno, 2000).

Prinsip perbenihan kentang adalah untuk menghasilkan jumlah umbi yang banyak serta memenuhi syarat dan standar mutu yang ditentukan. Pada setiap kemasan benih yang telah lulus diberi label dan didistribusikan sebagai benih kentang bermutu tinggi (Suwarno, 2000). Gambar 1 menunjukkan alur sistem perbanyakan kentang di Indonesia.

Gambar 5.1. Sistem Perbanyakan Benih Kentang di Indonesia (Wattimena, 2000; Suwarno, 2000)

��

Produksi benih kentang bebas patogen oleh Balitsa dikerjakan di laboratorium dan screen house. Tunas umbi kentang bebas virus diperlukan sebagai materi induk. Umbi kentang selama masa dormansi ditumbuhkan tunasnya dengan meletakkan umbi di dekat jendela yang bertujuan agar umbi terkena cahaya. Umbi dengan tunas yang cukup (biasanya tunas hijau dengan beberapa primodial daun) diambil sebagai bahan kultur meristem. Kultur meristem segera dilakukan untuk menghindari serangan kutu.

Tunas pada umbi kentang dipilih yang sudah cukup pertumbuhan primordial daunnya. Sterilisasi tunas dilakukan dengan pencucian aquades sebanyak 3 kali masing-masing 10 menit. Pencucian eksplan dilakukan juga dengan alkohol 70% sebanyak 1 kali selama 5 menit, dan dibilas aquades 1 x 1 menit. Pencucian dengan kalsium hipoklorit sebanyak 2 kali, yaitu kalsium hipoklorit 10% 1 x 10 menit, kemudian dibilas aquades 1 x 1 menit, dan kalsium hipoklorit 20% 1 x 7 menit yang selanjutnya dibilas aquades sebanyak 3 x 1 menit. Setiap pengerjaan distrirer.

Setelah sterilisasi luar, eksplan dibawa ke dalam Laminar Air Flow Cabinet (LAFC). Di dalam laminar, eksplan kembali dibilas aquades beberapa kali hingga air bilasan benar-benar jernih (tidak berwarna). Semua alat yang digunakan, termasuk cawan petri, disterilisasi dengan cara dibakar, tetapi sebelumnya diberikan alkohol 70% terlebih dahulu. Alat didiamkan hingga dingin, selanjutnya pengerjaan kultur meristem dilakukan.

Primordial daun dikupas satu persatu dengan menggunakan pisau scalpel. Perlu ketelitian dalam pengerjaan untuk menghindari kerusakan pada jaringan meristem. Jaringan meristem ditanam pada media dasar MS di botol vial, satu eksplan untuk satu botol vial. Eksplan disimpan dalam ruang penyimpanan, di atas rak kultur, dengan suhu 18-22oC, RH 90, dan intensitas cahaya 2500 lux.

Jaringan meristem akan tumbuh menjadi planlet pada botol vial setelah 1 – 3 bulan. Planlet selanjutnya diuji kandungan virusnya. Planlet bebas virus disubkultur pada botol selai (botol jam) dengan 10 – 12 planlet per botol. Planlet disimpan sebagai stok indukan. Perbanyakan masa stek in vitro juga dilakukan. Produksi benih di screen house dimulai saat planlet dirasa sudah mencukupi untuk diaklimatisasi. (Gambar 5.2).

��

Planlet kentang yang merupakan benih penjenis ditanam pada baki di screen house. Perawatan tanaman tetap dilakukan, seperti penyiraman, pemupukan, juga penyemprotan fungisida/insektisida. Tanaman dipotong per 4 buku untuk disulam dan ditransfer ke bak tanam. Gunting dan cutter disterilisasi dengan alkohol 70% sebelum digunakan. Planlet disisakan 2-3 daun pada ujungnya, guna mengurangi penguapan. Pangkal tanaman diberikan pupuk perangsang pertumbuhan akar, selanjutnya ditanam pada bak tanam dengan jarak ideal antarlubang tanam 10-15 cm, dengan kedalaman kurang lebih 5 cm. Penanaman ini akan menghasilkan umbi mini (G0). Benih penjenis dapat berbentuk planlet, umbi mikro, dan stek planlet yang sudah siap disebar kepada petani penangkar. Benih penjenis akan menjadi benih sebar (G2) jika langsung ditanam di lapang, tanpa harus melalui beberapa tahapan sebelumnya.

Gambar 5.2 Produksi G0Keterangan : A) planlet kentang, B) aklimatisasi planlet pada baki tanam, C) planlet dipotong per 4 buku, daun digunting dan disisakan 2-3 daun,

D) ujung batang diberikan perangsang akar, E) planlet siap ditanam di bak tanam, F) planlet pada bak tanam

A B C

D E F

��

Perbanyakan benih secara vegetatif dengan cara konvensional untuk tanaman semusim diatur oleh Permentan 48/2012 yang diperbaharui dalam Permentan 116/2013. Permentan 116/2013 pasal 7 ayat 2 menjelaskan bahwa G0 yang merupakan hasil perbanyakan dari Benih Penjenis (BS), G1 merupakan perbanyakan dari G0, dan G2 merupakan perbanyakan dari G1. Berikut perubahan yang terjadi pada peraturan mengenai benih kentang di Indonesia (Tabel 5.1).

Tabel 5.1 Peraturan kementerian pertanian Permentan 48/2012 Permentan 116/2013

G0 = Benih penjenis (BS)G1 = Benih dasar 1 (BD-1)G2 = Benih dasar 2 (BD-2)G3 = Benih pokok (BP)G4 = Benih sebar (BR)

G0 = Benih dasar (BD)G1 = Benih pokok (BP)G2 = Benih sebar (BR)

Sistem Perbanyakan Benih Kentang di Belanda (Wattimena, 2000) dan Texas

Sumber benih kentang di Belanda berasal dari benih penjenis hasil seleksi klonal oleh pemulia tanaman. Benih penjenis selanjutnya diperbanyak secara klonal untuk menghasilkan pra benih dasar (G1, G2), benih dasar (G3, G4, G5, G6) dan benih sertifikat (Gambar 5.3).

Gambar 5.3. Sistem Perbanyakan Benih Kentang di Belanda (Wattimena, 2000)

��

Berdasarkan Gambar 5.3, terdapat dua kategori benih sertifikat, yaitu : (1) benih dasar (basic seed) dengan kelas S (G4), SE (G5), E (G6), (2) benih sertifikat (certified seed) dengan kelas A (G7), B (G8), dan C (G9). Kontrol kualitas dilakukan melalui pengamatan di lapang (3 kali) untuk mengecek penyakit pada tanaman (tular umbi dan virus), keadaan umum pertanaman, serta kebenaran dan kemurnian kultivar. Batas toleran uji virus pasca panen pada umbi kentang yang terinfeksi untuk masing - masing kelas adalah sebagai berikut : S, SE (0 dari 200 umbi), E (1 dari 200 umbi), A (5 dari 1000 umbi), B (8 dari 100 umbi) dan C (10 dari 100 umbi).

Sistem Perbanyakan Benih Kentang di Jawa BaratUmmah dan Purwito (2009) yang mempelajari sistem pembibitan

kentang di Hikmah Farm, Pengalengan, Bandung, Jawa Barat, menjelaskan produksi bibit kentang diawali dengan permohonan sertifikasi kepada Balai Pengawasan dan Sertifikasi Benih Tanaman Pangan dan Hortikultura (BPSBTPH). Dalam pelaksanaannya dilakukan beberapa fase pemeriksaan yang meliputi fase sebelum tanam, yaitu sejarah lahan tersebut di mana pemilihan lahan berdasarkan kelayakan untuk dilakukan penangkaran bibit, luas lahan, serta varietas kentang.

Pemeriksaan kedua adalah pada masa penanaman. Dilakukan tiga kali pemeriksaan yaitu saat tanaman berumur 30-40 HST, 40-50 HST, dan 50-60 HST. Pemeriksaan dilakukan di lapang meliputi penyakit yang menyerang (busuk daun, virus, layu bakteri, serta penyakit lainnya). Pihak pengawas benih memeriksa setiap lapangan dengan mengambil sampel kurang lebih 1000 tanaman dari setiap hektar.

Pemeriksaan ketiga adalah pada umbi, yang ini dilakukan setelah tanaman dipanen dan disortasi. Pihak pengawas bibit akan memeriksa kurang lebih 1000 butir umbi secara acak dari setiap lot umbi yang telah disortir dalam setiap hektar. BPSBTPH akan mengeluarkan sertifikat dan label segera setelah permintaan penangkar bibit dinyatakan lulus pemeriksaan (Ummah dan Purwito, 2009).

��

Pembibitan Kentang G0 Pembibitan kentang G0 dilakukan di greenhouse. Plantlet hasil

kultur jaringan dipotong menjadi 3-5 potong dengan 1-2 buku per tanaman. Plantlet tersebut ditanam pada media arang sekam dalam bak semai dengan jarak tanam 5 cm x 5 cm. Setelah tanaman berumur 14 HST dilakukan penyetekan. Stek tersebut ditanam dalam media sekam di bak bedengan dengan ukuran 1.5 m x 16 m dengan jarak tanam 5 cm x 5 cm. Pengairan dilakukan tiga kali sehari menggunakan alat sprinkler dan drip irrigation fertigation. Pupuk yang diberikan yaitu multigrand-K dengan dosis 30 gram yang dilarutkan dalam 12 liter air (Ummah dan Purwito, 2009).

Penyiangan dilakukan untuk menghilangkan rumput atau gulma yang tumbuh. Kegiatan ini harus dilakukan secara hati-hati agar tidak mengganggu perakaran mengingat jarak tanam yang sempit. Tanaman yang layu atau berwarna kuning segera dicabut. Panen dilakukan pada tanaman berumur 150-180 HST. Umbi hasil panen dibawa ke gudang dan disimpan di ruangan dalam kondisi bersih. Sortasi dan grading dilakukan di gudang penyimpanan. Bibit yang disortasi dan grading berdasarkan ukuran (Tabel 5.2).

Tabel 5.2. Pengkelasan umbi kentang bibit G0 berdasarkan ukuranKelas umbi Ukuran (gram)

L (besar) > 60 M (sedang) 31-60 S (kecil) 21-30 SS (sangat kecil) <20

Penyimpanan umbi G0 dilakukan di dalam cool storage dengan suhu 17-20oC, yang berfungsi untuk memperpanjang umur simpan bibit. Bibit yang disimpan di ruang pendingin setelah panen, masa dormansinya semakin panjang. Sebelum dimasukkan dalam cool storage, umbi disemprot pestisida, di antaranya Probox (30 gram), Score (15 ml), Alika (15 ml), dan Previcur (30 ml) (Ummah dan Purwito, 2009). Penyimpanan bibit kentang dengan suhu rendah sangat baik untuk mencegah penyakit (Samadi, 2007).

��

Pembibitan Kentang G1 Selanjutnya Ummah dan Purwito (2009) menjelaskan, bibit kentang

G0 tersebut ditanam kembali untuk memperoleh bibit G1. Bibit yang digunakan adalah bibit yang telah mengalami masa dormansi 3-4 bulan dan telah tumbuh 3-4 mata tunas, umbi tidak luka dan cacat.

Penanaman kentang G0 ini dilakukan di screenhouse, menggunakan media tanah seperti di lapang dengan penambahan pupuk kandang berupa kotoran ayam atau sapi dengan dosis 280-360 kg/200 m2. Pengolahan tanah dilakukan dengan dicangkul dan disterilkan. Sterilisasi menggunakan pestisida basamid dengan dosis 40 g/m2 ditabur di atas bedengan secara merata, kemudian ditutup dengan mulsa plastik dan dibiarkan selama dua minggu. Bibit ditanam di bedengan yang berukuran 1.4 m x 16 m. Jarak tanam yang digunakan yaitu 20 cm x 20 cm. Pemeliharaan tanaman dilakukan bila rumput liar sudah tumbuh di areal tanaman kentang. Pestisida digunakan untuk pengendalian hama dan penyakit (Tabel 5.3) (Ummah dan Purwito, 2009).

Tabel 5.3 Jenis dan Fungsi Pestidida per 200 m2 pada tanaman KentangUmur Tanaman (HST) Jenis Fungsi Dosis

15-30 Multigrand-K Unsur hara 30 gram

30-60

Aminil AcrobatAlikaAbsek

Fungisida FungisidaInsektisida Perekat

40 gram 4 gram10 ml5 ml

60-95EquationAgrifosAquarez

FungisidaFungisida Perekat

8 gram40 ml4 ml

Pembibitan Kentang G2, G3, G4 Pembibitan dilakukan di lapangan. Pengolahan tanah dilakukan

secara konvensional menggunakan cangkul. Jika lahan bekas ditanami jagung dan kubis, tanah diolah dengan metode ”laci”, yaitu dengan menarik atau menggeser rumput dan gulma yang berada di atas bedengan dan yang di antara bedeng dengan cangkul ke antara bedeng berikutnya, kemudian sisa-sisa rumput tersebut ditimbun tanah yang berasal dari bedengan di

�0

kanan dan kiri sisa rumput tersebut kemudian diratakan dengan diinjak-injak dengan kaki.

Bedengan dibuat dengan panjang 6 m, lebar 76 cm dan lebar antar bedeng 15-20 cm. Pemupukan dilakukan pada awal tanam yaitu pupuk kandang, pupuk kimia, dan pupuk hayati. Pupuk kandang yang digunakan biasanya berasal dari kotoran ayam atau sapi sebanyak 14-18 ton per ha. Dosis yang digunakan untuk pupuk hayati yaitu sebanyak 200 kg/hektar. Aplikasi yang pertama yaitu pupuk hayati ditabur disamping bedengan dan ditimbun pupuk kandang serta pupuk kimia kemudian ditimbun tanah dari sebelah kanan dan kiri bedengan sehingga terbentuk bedengan baru (Ummah dan Purwito, 2009).

Penanaman kentang umbi G4 merupakan kelanjutan dari penanaman bibit G3. Hasil panen dari penanaman kentang ini merupakan bibit lokal dan dijadikan kentang konsumsi. Teknik budidaya sama dengan penanaman kentang pada generasi sebelumnya, hanya berbeda pada jarak tanam yang lebih lebar. Semakin renggang jarak umbi yang ditanam maka umbi yang dihasilkan jumlahnya akan sedikit namun ukurannya besar. Kentang konsumsi dipanen pada umur 110-120 HST.

Pasca Panen Umbi hasil panen dibawa ke gudang dan disimpan di ruangan dalam

kondisi bersih dan terlindung dari sinar matahari, karena cahaya dapat menyebabkan pertumbuhan tunas, selain itu juga harus terlindung dari hujan dan kehilangan. Pastikan gudang memenuhi syarat seperti fentilasi cukup, lantai terbuat dari kayu agar dapat memberikan pertukaran udara bagi umbi. Untuk mencegah serangan hama dan penyakit, pada permukaan umbi diberi insektisida Agrosip dengan dosis 2 kg/ton dengan cara ditabur tipis-tipis.

Di gudang penyimpanan ini dilakukan sortasi dan grading. Sortasi adalah kegiatan memisahkan umbi kentang berdasarkan kualitas yaitu umbi yang bagus dan yang jelek. Grading adalah kegiatan memisahkan umbi kentang berdasarkan bentuk dan ukuran. Proses persiapan bibit kentang dimulai dari sortasi dan grading I, pengangkutan ke gudang, penyimpanan dan sortasi grading II, penggasan, penyimpanan dan sortasi III, penyimpanan

��

sortasi IV, persiapan sertifikasi oleh BPSBTPH, pengemasan dan pelabelan, dan pemasaran benih kentang.

Sortasi dan grading I dilakukan saat umbi masih di kebun. Setelah disortasi dan grading umbi selanjutnya diangkut ke gudang. Di gudang ini umbi disimpan dan dilakukan sortasi II. Umbi ukuran MS (<61 gram) dibedakan lagi menjadi ukuran M (31-60 gram) dan S (<30 gram). Penggasan umbi dilakukan pada saat kebutuhan umbi meningkat. Jenis obat yang digunakan yaitu CS2 dengan dosis 800 ml per 8 ton umbi kentang.

Setelah umbi digas, umbi disimpan kembali. Sortasi III dilakukan untuk memisah umbi yang abnormal (terserang penyakit) dan yang sehat. Kemudian umbi disimpan kembali pada krat yang berbeda. Kegiatan sortasi IV dilakukan sampai pemeriksaan umbi oleh BPSBTPH.

Teknologi Produksi Benih Penjenis Kentang (G0) Varietas Granola Kembang di Malang, Jawa Timur

Salah satu varietas kentang dari Jawa Timur dan telah dilepas sebagai varietas unggul nasional adalah Varietas Granola Kembang. Penyediaan benih penjenis diawali dengan memproduksi plantlet kentang bebas virus menggunakan kultur meristem. Proses produksi plantlet ini dilakukan di Laboratorium Kultur Biak BPTP Jawa Timur. Plantlet kemudian diuji dengan uji Elisa untuk mengidentifikasi bahwa plantlet bebas dari virus PVY, PVX, PVS, dan PLRV.

Laboratoruim Kultur Biak mampu memproduksi sekitar 15.000 - 20.000 plantlet pertahunnya. Selanjutnya plantlet ditanam di dalam rumah kasa kedap serangga yang terletak di Pusat Perbenihan kentang di Tosari Jawa Timur pada ketinggian tempat 1.850 m dpl, dan setelah 1 bulan dilakukan Uji ELISA. Perbanyakan tanaman menggunakan metode stek 3 ruas dan dalam waktu 3 bulan tanaman siap dipanen. Potensi penyediaan benih penjenis (G0) di Jawa Timur cukup besar, yang mencapai 70.000 tanaman/panen.

Pemanfaatan benih G0 di tingkat petani cukup baik dan menjanjikan khususnya oleh petani penangkar benih. Penyebaran benih kentang telah merambah di lima kabupaten, yaitu Pasuruan, Probolinggo, Lumajang, Magetan, dan Trenggalek. Saat ini penyebaran benih juga sudah sampai di

��

Bali. Tersedianya benih G0 turut memacu penangkar benih untuk mencukupi kebutuhan benih kentang bermutu di Jawa Timur sampai sekitar 10.500 ton/ tahun. Penyediaan benih kentang G0 bermutu tentu membutuhkan dukungan dari berbagai instansi terkait, sehingga dapat terbangun sistem produksi benih yang sistematis dan berkelanjutan (Prahardini, 2015).

Distribusi Benih Kentang di IndonesiaSistem distribusi benih kentang yang berlaku saat ini, merupakan

sistem yang diberlakukan sejak adanya proyek JICA (Gambar 4). Sampai saat ini sistem distribusi tersebut masih berjalan, tetapi ada beberapa pendapat yang menyatakan bahwa sistem tersebut terlalu panjang dan hasil akhirnya sangat lambat. Pada saat ini perkembangan benih kentang di luar sistem tersebut sudah sangat pesat dan perlu pemecahannya. Sebagai contoh: G0–G1 merupakan benih sumber, yang sumbernya berasal dari breeder dan institusi yang berwenang adalah BBI atau badan/institusi yang dibebani akreditas. Namun kenyataan di lapangan sudah banyak badan/institusi/swasta yang menyalurkan G0/G1 ke tingkat petani. Sehingga perlu rambu-rambu khusus agar tidak merugikan bagi yang taat dan untuk melindungi konsumen (petani) dari kerugian yang disebabkan oleh benih.

Gambar 5.4 Distribusi kentang di Indonesia

��

Keterangan: BS= breeder seed= benih penjenis, FS= foundation seed= benih dasar SS= stock seed= benih pokok ES= extention seed= benih sebar

Permasalahan Pembibitan KentangPermasalahan yang dihadapi pada perbanyakan G0 ini adalah:

1. Ketersediaan laboratorium kultur jaringan yang memenuhi standar sehingga dapat menghasilkan plantlet kentang bermutu.

2. Tanah untuk memenuhi Screen House, karena harus lapisan top soil dan harus bebas dari penyakit yang dapat ditularkan melalui tanah.

3. Prosedur sertifikasi benih kentang yang lebih baik untuk memastikan kentang bebas virus, sehingga menghindari ketergantungan akan impor benih.

��

BAB VIPENYAKIT VIRUS PADA KENTANG

D�adops� dar� Burrows M. E. dan T. A. Zitter. 2005. Virus problem on potato. USDA-ARS and Department of Plant Pathology. Cornell University Ithaca, NY 14853.

Kentang dapat diinfeksi oleh berbagai jenis virus yang dapat menurunkan hasil dan kualitas umbi. Penyakit virus seringkali

dapat didiagnosis oleh gejala pola mosaik pada daun, pengkerdilan pada tanaman (stunting), malformasi daun, dan malformasi umbi. Gejala tidak selalu terekspresi akibat adanya interaksi antara virus dan tanaman kentang, kondisi pertumbuhan seperti fertilitas dan cuaca, atau umur tanaman ketika diinfeksi. Deteksi dengan teknik serologi dan asam nukleat seringkali digunakan untuk mendiagnosis dan mengkaraterisasi gejala penyakit virus. Berikut ini dijealaskan beberapa penyakit virus yang umum ditemui pada pertanaman kentang di New York, deskripsi tentang vektor virus dan juga cara penanggulangannya.

Potato Virus YDeskripsi dan gejala virus

Potato virus Y (PVY) adalah salah satu jenis virus yang paling penting dan prevalent pada kentang. Strain virus PVY yang menyebabkan nekrosis (dead spot pada daun dan umbi) telah ditemukan, menimbulkan kekawatiran yang lebih besar terhadap penyebaran virus ini. PVY termasuk Potyvirus, merupakan tipe dari grup terbesar virus tanaman. Virus ini ditularkan oleh aphids dengan cara non-persisten, dengan cara melekat (sticking) pada bagian mulut aphid. Virus ini dapat diperoleh segera dari tanaman yang terinfeksi, dan ditularkan ke tanaman sehat dengan cepat. PVY dapat pula ditularkan secara mekanis dengan alat, mesin dan akibat

��

perusakan tanaman saat berjalan sepanjang pertanaman kentang. Aphid merupakan cara penularan yang paling efisien.

Beberapa strain PVY telah diidentifikasi, yang berbeda gejalanya pada kentang dan tembakau. PVY adalah strain yang umum, dan menimbulkan gejala mosaik. PVYo menyebabkan stipple streak (guratan stipple). PVYN, strain nekrotik, umumnya menyebabkan gejala daun yang tidak jelas, tetapi menunjukkan ciri nekrosis pada daun dari varietas kentang yang rentan. Infeksi gabungan strain umum dan strain nekrotik umum terjadi, dan genome (materi genetik) dapat bercampur, menghasilkan strain hibrida (misal PVYNO dan PVY NTN). Strain PVYNTN dapat menyebabkan nekrosis pada umbi, dan merupakan penyakit virus yang sangat penting di New York. Diagnosis sulit dilakukan, karena ada antibody untuk PVY0 dan PVYN , tetapi metode imunologi (ELISA, Enzyme Linked Immunosorvent Assay) tidak dapat membedakan PVYNTN dari kedua strain virus ini. Lagi pula, tidak semua isolate PVYN akan bereaksi dengan antibody PVYN-spesifik, dan beberapa PVY0 akan bereaksi. Gejala saja tidak dapat membedakan strain virus, karena gejala bervariasi tergantung umur, waktu infeksi, suhu dan genetik dari kedua virus dan inang tanaman. Strain PVY dapat berinteraksi dengan semua virus kentang seperti Potato virus X (PVX) dan Potato virus A (PVA) untuk menghasilkan kehilangan yang lebih besar. Gejala nekrosis pada umbi sering meningkat setelah disimpan. Beberapa varietas seperti Russet Norkota dan Shepody jarang menunjukkan gejala, namun dapat membawa virus dan berlaku sebagai reservoir untuk penularan aphid. Yukon Gold sangat rentan terhadap nekrosis umbi.

PengelolaanKarena PVY merupakan virus non-persisten dan ditularkan secara

cepat oleh aphid, penggunaan insektisida untuk mengontrol penyebaran virus umumnya tidak efektif. Strategi terbaik untuk mengontrol PVY adalah dengan menggunakan umbi/bibit kentang yang bersertifikat, yang kandungan virusnya rendah. Minyak mineral dapat digunakan untuk mengurangi penyebaran oleh aphid, tetapi haus diaplikasikan ulang dalam interval yang sering agar efektif. Kurangi penyebaran mekanis dengan membersihkan peralatan dan mengurangi jalan – jalan pada areal

��

penanaman. Tanaman terinfeksi dapat menjadi sumber inokulum di areal tanaman, jadi cabut dan buanglah tanaman yang bergejala. Tanaman famili Solanaceae seperti tomat, cabai dapat menjadi tempat persinggahan virus dan menjadi sumber inokulum. Hindari menanam kentang dekat dengan tanaman gulma dan rerumputan, dan lakukan pembersihan gulma pada pertanaman kentang. Varietas yang memiliki toleransi cukup baik terhadap PVY adalah Eva, Dark Red Norland, Belrus, HiLite, Russet, Kennebec, Monona, Norwid dan Sebago (source: http://muextension.missouri.edu/xplor/agguides/hort/g06202.htm).

Gambar 6.1 Gejala nekrosis pada daun kentang dan tembakau (bawah kanan) yang disebabkan oleh PVYN.

Gambar 6.2 Gejala nekrosis pada umbi kentang varietas Nicola yang disebabkan oleh PVYNTN

��

Potato Leafroll VirusDeskripsi dan gejala virus

Potato leafroll virus (PLRV) adalah penyakit Luteovirus yang hanya menyerang floem yang ditularkan oleh aphid dengan cara yang persisten. Berbeda dengan PVY dan AMV, PLRV perlu waktu lebih lama untuk didapatkan (10 – 30 menit) dan ditularkan (24 – 48 jam) oleh aphid, karena virus perlu berpindah ke perut dan ke seluruh tubuh dan kembali keluar melalui sistem salivary aphid. Gejala PLRV, yaitu ciri tegak dan daun menggulung, klorosis (menguning) atau memerah, daun terasa halus (leathery), nekrosis floem (titik mati sepanjang vena daun), stunting (pemendekan) tanaman, dan nekrosis jala pada umbi. Keganasan nekrosis jala bervariasi tergantung pada saat kapan tanaman terinfeksi, dan mungkin meningkat selama penyimpanan. Beberapa varietas lebih rentan dibandingkan lainnya, termasuk Russet Burbank, varietas yang paling banyak ditanam secara komersial di US bagian barat.

Gambar 6.3 Gejala PLRV pada daun (daun menggulung, tanaman kerdil) dan umbi (nekrosis jala).

PengelolaanKarena penyebaran PLRV memerlukan waktu lebih lama

dibandingkan PVY, penyemprotan insektisida bisa efektif jika populasi aphid dimonitor dengan baik. Aphid yang berkoloni adalah vektor yang paling penting untuk virus ini karena penyebaran memerlukan masa feeding yang cukup lama. Green peach aphid, Mysus persicae, adalah vektor yang paling penting. Penggunaan benih yang bersih sangatlah penting. Mencabut

��

dan membuang tanaman terinfeksi membantu mencegah penyebaran PLRV dan melakukan panen lebih awal dapat mencegah infeksi late-season. Penanganan tanaman tidak akan menyebarkan virus, karena PLRV tidak dapat disebarkan secara mekanis.Potato Virus SDeskripsi dan gejala virus

Potato virus S (PVS) merupakan penyakit yang semakin penting pada kentang. PVS masih belum dikenal hingga tahun 1950 karena gejalanya sangat tidak konsisten. PVS dapat menurunkan hasil hingga 20%. Benih kentang umumnya belum bersertifikat untuk PVS, sehingga hal ini berkontribusi pada penyebarannya yang meluas.

Kebanyakan kultivar kentang tidak menunjukkan gejala PVS. Pada beberapa kultivar, jika terinfeksi pada musim awal, akan menunjukkan gejala cekukan (deepening) pada vena, daun kasar, pertumbuhan yang lebih terbuka, mild mottle, bronzing (seperti tembaga), atau spot nekrotik kecil pada daun. PVS adalah Carlavirus, dan disebarkan secara non-persisten oleh aphid, termasuk Myzus persicae, aphid peach hijau. PVS dapat disebarkan secara mekanis dan disebarkan melalui umbi.

PengelolaanPVS sangat sulit dideteksi gejala visualnya. Insektisida tidak efektif

untuk menanggulangi virus – virus yang disebarkan secara nonpersisten. Pemberian minyak tanaman dapat dilakukan pada awal penanaman. Tanaman kentang cenderung resisten terhadap infeksi PVS menjelang akhir masa tanam. Cegah penyebaran mekanis pada areal pertanaman dengan cara membersihkan peralatan dan kurangi pergerakan di seputar areal pertananaman. Cabut dan buang tanaman yang bergejala.

Potato Virus XDeskripsi dan gejala virus

Potato virus X merupakan anggota Potexvirus dari famili virus tanaman. Tanaman seringkali tidak menunjukkan gejala, tetapi virus dapat menyebabkan gejala klorosis, mosaik, berkurangnya ukuran daun, dan necrotic lesion pada umbi. PVX dapat berinteraksi dengan PVY dan PVA

��

sehingga menyebabkan gejala yang lebih parah dan penurunan hasil panen, dibandingkan masing – masing virusnya sendiri. Sumber virus adalah umbi yang terinfeksi. Virus ini disebarkan secara mekanis, bukan dari vektor serangga. Tembakau, cabai, tomat dapat juga menjadi inang PVX.Pengelolaan

Cara terpenting untuk mengontrol virus ini adalah dengan menanam benih bersertifikat. Penyebaran terjadi karena penggunaan peralatan dan mesin. Bersihkan semua peralatan, cabut dan buang semua tanaman terinfeksi, dan batasi pergerakan dalam areal pertanaman. Beberapa varietas lebih resisten terhadap PVX, seperti HiLite Russet, Atlantic, Norwis dan Sebago (source: http://muextension.missouri.edu/xplor/agguides/hort/g06202.htm).

Potato Mop Top VirusDeskripsi dan gejala virus

Potato mop top virus (PMTV) adalah Pomovirus, dan disebarkan oleh patogen (protozoa dengan zoospore) untuk menginfeksi yang menyebabkan penyakit scab bertepung, Spongospora subterranea. PMTV adalah salah satu penyebab penyakit spraing, yang lainnya adalah Tobacco rattle virus. “Spraing” artinya umbi memiliki nekrosis karat-coklat yang berbentuk cincin atau fleck. PMTV terjadi lebih sering pada tanah yang berat dan basah. Suhu rendah dan kondisi basah yang disukai untuk perkecambahan spora S. subterranean memudahkan penyebaran penyakit. Virus ini dapat bertahan pada vektornya di tanah selama bertahun-tahun.

PengelolaanKondisi yang cocok untuk penyebaran powdery scab, sejuk,

kondisi basah, adalah juga cocok untuk penyebaran virus ini. Infeksi virus mungkin berkurang pada beberapa kasus dengan cara memperbaiki drainase, mengurangi irigasi, atau menunda penanaman sampai tanah lebih hangat dan lebih kering. Spora yang terinfeksi virus dapat bertahan di tanah selama bertahun-tahun. Rotasi yang lebih panjang dapat membantu mengurangi insiden powdery scab. Jika vektor tidak ada, virus dengan cepat terlarutkan.

�0

Gambar 6.4 Gejala spraing

Gambar 6.5 Gejala PMTV pada daun dan nekrosis pada umbi.

Gambar 6.6 Gejala daun akibat infeksi TRV dan gejala pada umbi akibat penyakit corky ringspot.

��

Tobacco Rattle VirusDeskripsi dan gejala virus

Tobacco rattle virus (TRV) merupakan Tobravirus yang dapat mengakibatkan corky ringspot atau penyakit spraing. Terjadi lebih sering pada tanah berpasir kasar. Gejala seringkali tidak muncul pada daun, tetapi umbi mengandung lapisan jaringa corky yang menyebar dengan cincin pada jaringan sehat dan flek coklat terdistribusi pada umbi. Virus ini ditransmisikan oleh nematode genus Paratrichodorus atau Trichodorus, dan juga dapat ditransmisikan secara mekanis.

PengelolaanHal yang paling penting dilakukan adalah menghindari introduksi

inokulum ke areal pertanaman, dengan menanam benih kentang bersertifikat. Tanah mesti diambil sampelnya untuk identifikasi nematode yang dapat menyebarkan TRV. Jika vektor nematode tidak ada, virus tidak akan menyebar. Nematisida dapat digunakan untuk menghancurkan vektor pada tanah. TRV dapat bertahan pada nematode yang dorman selama 2 – 4 tahun.

Populasi nematode dapat meningkat pada tanaman serealia, sehingga rotasi sebaiknya tidak menyertakan tanaman serealia. Beberapa gulma seperti sheperd’s purse dan chickweed merupaka sumber virus, sehingga kontrol gulma yang baik dapat membatasi serangan virus. Batasi penanganan bahan tananam dan bersihkan peralatan secara rutin.

Potato Spindle Tuber ViroidDeskripsi dan gejala viroid

Potato spindle tuber viroid (PSTV) bukanlah virus, tetapi viroid yang pada dasarnya adalah RNA yang dapat mereplikasi sendiri, tanpa protein pelindung. PSTV merupakan penyakit yang penting pada benih pemulia (breeding stock), dan virus ini sering ditransmisikan secara mekanis dan juga melalui pollen dan benih botani (true seed). Virus ini menunjukkan gejala ringan pada daun seperti daun yang mengecil dan menggulung ke arah bawah, sehingga tanaman tampak memiliki pertumbuhan yang tegak. Tanaman dapat pula memendek, dan daun tampak berwarna keabu-abuan

��

dan bentuknya tidak normal. Batang memiliki cabang yang lebih banyak, dan cabang-cabang ini memiliki sudut yang tajam terhadap batang. Umbi menjadi berbentuk menyempit, spindle atau lonjong; pada beberapa varietas, tampak lebih bundar dari semestinya, dan memiliki alis yang tampak jelas. Umbi kadang pecah atau membentuk benjolan (knob) dan pembengkakan. PSTV dapat pula menginfeksi tomat.

PengelolaanCara penanggulangan yang paling penting untuk mencegah PSTV

adalah penggunaan benih bersertifikat. Berbagai serangga telah dilaporkan mentransmisikan PSTV, tetapi disseminator utama adalah pergerakan manusia di sekitar areal penanaman. Bersihkan alat dan mesin. Cabut dan buang tanaman terinfeksi sebelum mereka dapat menjadi sumber inokulum.

Alfalfa Mosaic VirusDeskripsi dan gejala virus

Alfalfa mosaic virus (AMV) adalah Potyvirus, seperti PVY. Virus ini ditransmisikan secara non-persistent oleh aphids. AMV menimbulkan pola spot kuning (yellow blotching) yang jelas pada daun. Beberapa strains virus dapat menyebabkan pengkerdilan yang parah dan nekrotik pada batang dan umbi. Virus ini dianggap tidak penting secara ekonomi. Aphid membawa virus ke tanaman kentang dari areal pertanaman alfalfa atau clover.

PengelolaanPenanggulangan AMV serupa dengan PVY. Insektisida tidak efektif.

Hindari penanaman kentang dekat dengan penanaman alfalfa atau clover.

��

Gambar 6.7 Daun bergejala PSTV. Tampak daun mengecil dengan habitus tegak. PSTV menyebabkan pemanjangan umbi (kanan).

H. David Thurston, Cornell University.

Gambar 6.8 AMV menyebabkan ‘calico mosaic,’ atau yellow blotching pada daun kentang.

Panduan Umum Penanggulangan Virus1. Belilah benih kentang yang telah tersertifikasi bebas virus.

Menggunakan kentang hasil panen yang telah terinfeksi virus akan meningkatkan jumlah tanaman yang berperan sebagai sumber virus pada musim tanam berikutnya.

��

2. Buanglah kentang ‘volunteer’ (tumbuh sendiri), yang tersisa dari musim tanam sebelumnya, karena tanaman tersebut dapat menjadi sumber virus.

3. Buang tanaman bergejala, karena tanaman tersebut berperan sebagai sumber penyebaran virus yang sangat baik pada areal pertanaman. Jangan meletakkan tanaman yang telah dicabut, pada areal pertanaman. Buang jauh – jauh atau bakar. Dapat pula dijadikan kompos dengan cara yang tepat. Menjadikan kompos efektif untuk menghilangkan Potyviruses, Carlaviruses, atau Potexviruses, tetapi tidak pada protozoan atau vektor nematode.

4. Cabut dan buanglah gulma yang berperan sebagai sumber (reservoir) virus.

5. Hindari penanaman kentang bersebelahan dengan alfalfa atau red clover untuk mengurangi resiko terserang AMV.

Gejala virus bervariasi bergantung waktu infeksi, suhu, varietas dan strain virus. Tidak mungkin menentukan virus apa saja yang ada pada tanaman kentang hanya dengan melihat gejalanya saja. Agar dapat memilih teknik penanggulangan yang tepat, lakukan tes pada tanaman bergejala. Bersihkan semua peralatan, alat tanam secara rutin, khususnya ketika memindahkan alat ke areal pertanaman yang baru. Hindari penyebaran tanah antararea pertanaman, karena dapat menjadi tempat tinggal vektor atau virus kentang.

��

BAB VIITEKNOLOGI ELIMINASI VIRUS:

KULTUR MERISTEM, THERMOTHERAPYDAN KEMOTHERAPY

Diadopsi dari G. Faccioli UCI S.T.A.A. Instito di Patologia vegetale, Universita degli Studi di Bologna, Via Filippo Re 8, 40126 Bologna, Italy G. Loebenstein et al. (eds.), Virus and Virus-like Diseases of Potatoes and Production of Seed-Potatoes, 365-390. © 2001 Kluwer Academic Publishers

Penyakit virus pada kentang telah menyebar di seluruh dunia, dan seringkali mengakibatkan kerugian hasil yang signifikan.

Penanganannya sulit, karena tidak seperti mikroorganisme patogenik, virus tahan terhadap perlakuan obat; karenanya cara terbaik meminimalisir penyebarannya hanya dengan cara pencegahan. Karena kentang diperbanyak dengan perbanyakan vegetatif, infeksi penyakit meningkat pada generasi berikutnya, jadi sangatlah penting untuk menghasilkan kentang yang sehat dan bebas penyakit.

Ketika mempelajari distribusi Tomato mosaic virus (ToMV) pada akar tomat, White (1934) pertama kali menyampaikan bahwa meristem tanaman mungkin bebas virus. Ketika mengkulturkan meristem ujung tunas secara aseptik, Morel (1948) menghasilkan tanaman bebas virus, dari tanaman terinfeksi, dan membuat hipotesa bahwa meristem tersebut kebal terhadap virus. Tanaman sehat dari beberapa kultivar kentang yang terinfeksi virus pertama kali dihasilkan oleh Morel dan Martin (1955) yang mengkulturkan meristem pada medium sintetik steril, hasil ini menunjukkan suatu cara baru untuk menanggulangi virus pada kentang.

Kultur ujung meristem (meristem-tip culture=MTC) pertama kali digunakan untuk menghasilkan tanaman bebas virus dengan asumsi bahwa virus tidak dapat menginvasi jaringan meristematik pada kuncup (Kassanis, 1965), meskipun telah diketahui bahwa beberapa virus (missal: Carnation mottle dan Carnation ringspot viruses) terjadi pada meristem (Hollings dan Stone, 1964).

��

Teknik – teknik sederhana dan kurang efisien, seperti inokulasi mekanis tanaman yang diuji dan serologi, pertama kali digunakan untuk mendeteksi virus pada meristem. Selanjutnya, metode – metode yang lebih canggih, tetapi menghabiskan waktu (seperti menggunakan mikroskop elektron) digunakan. Teknik – teknik yang tepat dan sensitif seperti autoradigrafi dan Dot-ELISA akhirnya diadopsi dan menunjukkan bahwa virus yang tak terdeteksi ada pada meristem kentang. Keberadaan virus pada ujung meristem tidak selalu menghasilkan tanaman yang terinfeksi virus. Tanaman bebas virus didapatkan dari meristem yang terinfeksi oleh Potato virus X (PVX), Potato virus M (PVM) dan Potato virus S (PVS), menunjukkan bahwa eradikasi virus terjadi saat kultur in vitro (Beemster dan Rozendaal, 1972); Faccioli dan Rubies-Autonell, 1982; Faccioli dan Colombarini, 1996).

Berbagai hipotesis telah diajukan untuk menjelaskan ketidakmampuan virus untuk menginvasi ujung meristem pada spesies tertentu, dan pengeliminasian virus pada meristem saat kultur jaringan. Kegagalan virus untuk menginvasi meristem dikaitkan dengan tingginya kandungan auksin dari sel – sel meristematik yang aktif membelah (Wu et al., 1960), hingga kompetisi untuk mendapatkan nutrisi saat sintesis nukleuprotein normal dan viral (Quak, 1965) atau pada ketidakhadiran jaringan vaskuler dan plasmodesmata yang menghubungkan sel – sel meristematik (Quak, 1977). Hal terakhir mungkin terjadi pada luteovirus dan sebagian besar closterovirus yang terperangkap pada sel - sel floem, tetapi tidak ada hipotesis yang dapat menjelaskan dengan baik. Berbagai faktor mungkin mempengaruhi hubungan sel inang – virus, sehingga saat ini hanya dapat dinyatakan bahwa sel meristematik membantu proses oksidatif-reduktif mungkin dapat menimbulkan lingkungan yang kurang cocok untuk replikasi virus.

Hipotesis yang menjelaskan eradikasi virus saat kultur in vitro termasuk peran zat pengatur tumbuh, khususnya sitokinin (Quak, 1977), inhibitor seperti phenolamine (Martin-Tanguy, 1985), gangguan metabolit saat replikasi virus, dan degradasi RNA virus akibat luka sel saat pengambilan eksplan (Mellor dan Stace-Smith, 1977). Studi multiplikasi virus pada kultur jaringan tanaman telah memperlihatkan bahwa, meskipun beberapa

��

virus tidak diaktifkan, virus lainnya (misal PVX) tetap ada pada hampir semua kultur (Mellor dan Stace-Smith, 1977). Beberapa faktor mungkin mempengaruhi keberadaan virus dalam kultur meristem dan semua kejadian mempengaruhi metabolisme sel inang (misal suhu dan komposisi media kultur) mempengaruhi replikasi virus.

Meskipun kehadiran beberapa virus pada kultur in vitro belum sepenuhnya dapat dijelaskan, MTC telah berhasil digunakan untuk eradikasi virus multiplikasi dan penyimpanan yang aman pada plasma nutfah penting. Penggunaan terus menerus dari thermo dan chemoteraphy telah meningkatkan potensi untuk menghasilkan material yang tidak hanya bebas virus tetapi juga bebas bakteri dan jamur.

Dalam perkembangannya, beberapa virus juga telah dieradikasi lebih cepat dan simple dari stek batang kentang terinfeksi virus dengan cara thermo dan kemoterapi (Griffiths et al., 1990; Sanchez et al., 1991; Faccioli dan Zoffoli, 1998).

Karakteristik Jaringan MeristemMeristem apikal adalah dome/kubah dari sel – sel yang aktif

membelah, terletak pada ujung tunas dan akar (Gambar 14.1), yang masih aktif membelah selama fase vegetatif tanaman, membentuk jaringan dan organ baru (tunas, daun, akar); Meristem apikal, karenanya, memiliki kemampuan untuk menghasilkan tanaman yang lengkap secara in vivo maupun in vitro. Totipotensi ini merupakan basis dari teknik MTC yang digunakan untuk memproduksi plantlet.

Plantlet yang dihasilkan melalui teknik MTC biasanya mempertahankan karakteristik genetik dari tanaman induk, dan plantlet yang dihasilkan dari jaringan yang lain seperti protoplas, kalus, nuselus atau primordial bunga mungkin berbeda (D’Amato, 1977).

Tujuan MTC adalah untuk mengeliminasi virus dari kultivar tertentu, guna memperoleh tanaman yang secara fenotip identik dengan tanaman induk. Frekuensi variannya sebanding dengan tanaman yang diperoleh dengan cara perbanyakan konvensional (Beauchesne, 1982). Meristem secara genetik dalam kondisi stabil karena merupakan lokasi penyimpanan informasi genetik, yang pada tumbuhan berbiji, ditransfer ke galur

��

gametofit melalui bunga saat transisi dari fase vegetatif ke fase reproduktif. Jadi, stabilitas genetik galur-germ sel meristem merupakan prasyarat untuk stabilitas genetik galur-germ spesies (D’Amato, 1978). Stabilitas genetik meristem dikontrol erat oleh sintesa DNA, yang tidak mengijinkan duplikasi ekstra DNA yang bertanggungjawab terhadap poliploidi somatik, dan pembelahan sel secara kontinyu yang akan mengeliminasi adanya perubahan struktural kromosom secara spontan.

Gambar 7.1. Micrograf Phase-contrast kubah dan dua bagian primordial daun pertama cv Majestic ujung meristem.

Keseragaman genetik pada meriklon tergantung pada beberapa faktor

yang berbeda, tetapi utamanya pada penggunaan teknik yang mencegah pembentukan kalus (dihasilkan dari jaringan yang tidak terdiferensiasi), yang merupakan sumber utama variasi genetik. Telah dikenal luas bahwa frekuensi mutasi meningkat ketika pembentukan tunas adventif terjadi pada perbanyakan klonal (perbanyakan mikro), atau pada kultur kalus (variasi somaklonal) atau ketika somatik embriogenesis terjadi pada kultur kalus. Jalur embrionik ini, di mana tanaman dihasilkan dari satu sel atau solid mutan, penting dalam studi mutagenesis.

Tipe jaringan yang digunakan sebagai materi awal juga mempengaruhi probabilitas mutasi (Sheridan, 1975). Pada jaringan yang tidak berdiferensiasi seperti meristem apikal, kambium, prokambiun dan perisikel, di mana sel diploid yang seragam tetap dipelihara, peluang mutasi biasanya lebih kecil dibandingkan jaringan yang berdiferensiasi,

��

seperti pith, di mana induksi pembelahan sel mengarah ke kultur kalus. Zat pengatur tumbuh yang digunakan pada media pertumbuhan khususnya 2,4-D, NAA dan sitokinin sintetik juga bertanggungjawab untuk menginduksi mutasi. Khususnya 2,4-D telah dilaporkan sebagai penginduksi langsung poliploidisasi pada kultur jaringan (Sunderland, 1977). Induksi ploidi yang lebih tinggi berbanding terbalik dengan konsentrasi zat pengatur tumbuh.

Perubahan pada nukleus, termasuk poliploidi, aneuploidi dan mutasi kromosom, juga berkaitan dengan subkultur in vitro yang berulang-ulang dan pada kultur kalus jangka panjang, yang dapat digunakan dalam seleksi mutan somaklonal (Larkin dan Snowcroft, 1981).

Deteksi Virus pada Ujung MeristemJaringan meristematik pada tunas dan akar adalah bagian tanaman

dengan kandungan virus yang sangat rendah atau kadang tidak ada virus. Dari dome/kubah meristem, konsentrasi virus meningkat secara basipetal ke primordial. Probabilitas untuk memperoleh tanaman bebas virus, karenanya, berbanding terbalik dengan ukuran meristem yang digunakan. Sebaliknya, perkembangan meristem menjadi tanaman lengkap berkorelasi langsung dengan ukuran eksplan. Karenanya penting untuk menggunakan ukuran maksimal meristem, yang akan menghasilkan jumlah terbanyak plantlet bebas virus. Penggunaan meristem bebas virus memastikan 100% progeni bebas virus tapi tanaman yang mengandung virus mungkin juga berkembang menjadi tanaman sehat.

Distribusi virus pada ujung tunas sangat tergantung pada tipe virus dan tipe tanaman inang. Pada kentang, juga tergantung kultivar (Colombarini, 1990) dan strain virus (Mellor dan Stace-Smith, 1970). Sebelum produksi skala besar dengan MTC, distribusi virus untuk tiap kombinasi virus-inang semestinya, ditentukan. Pada masa lalu, jumlah plantlet bebas virus yang diperoleh melalui kultur meristem beda ukuran merupakan parameter yang digunakan, tetapi sekarang deteksi langsung virus pada ujung meristem, dan pilihan selanjutnya ukuran eksplan yang convenient, merupakan pendekatan cepat yang digunakan. Mikroskopi elektron jaringan (Appiano dan Pennazio, 1972) atau immunofluorescence (Mori dan Hosokawa, 1977) pertama kali digunakan untuk ini, tetapi sangat

�0

laborious dan tidak cocok untuk skrining skala-besar. Autoradiografi dengan mikroskop fase-kontras adalah metode yang lebih cepat dan tepat untuk mendeteksi virus pada beberapa meristem, tetapi masih terlalu rumit untuk skrining masal (Faccioli dan Rubies-Autonell, 1982; Faccioli et al., 1988). Teknik ini didasarkan pada inkorporasi uridine-H3 ke dalam viral RNA saja, karena sintesis selular-RNA dicegah oleh perlakuan actinomycin (AMD). “Silver grain” yang diproduksi dengan cara radiasi isotopic dalam emulsi fotografik mengindikasikan keberadaan virus. Perbaikan sensitivitas metode serologi, khususnya Dot-ELISA (Banntari dan Godwin, 1985), memungkinkan identifikasi cepat pada meristem tunggal dari 1 pg PVX dan PVS (Gambar 7.2; Rubies-Autonell et al., 1987; 1990; Faccioli dan Colombarini, 1996). Dengan menguji sejumlah besar meristem dan mengkulturkan sejumlah yang sama, memungkinkan untuk: i) menyatakan bahwa meristem yang mengandung virus dalam jumlah yang terbatas, dapat menghasilkan tanaman bebas virus, ii) menentukan, untuk kombinasi tanaman-virus tertentu (PVX, PVY, PVM/potato), tingkat virus meristem, seberapa rendah kiranya keturunannya akan sebagian besar bebas virus (Faccioli dan Colombarini, 1990; 1996).

Meristem-tip Culture (MTC)Tanaman induk yang digunakan untuk menyediakan meristem

mesti dipilih yang memiliki sifat agronomi yang baik. MTC melibatkan tiga tahapan: isolasi meristem, kultur in vitro dan perkembangan meristem (misal induksi tunas, akar) dan transplantasi planlet ke pot dan virus indexing selanjutnya.

Isolasi Meristem Eksplan yang cocok untuk eliminasi virus adalah ‘ujung tunas’,

‘ujung/tips’, meristem dan ujung meristem (Hollings, 1965). Nama 2 terakhir mengindikasikan eksplan diambil dari kubah meristematik dan satu atau dua pasang primordial daun, berukuran panjang kira – kira 100 µm. ‘Shoot tips” atau ujung tunas, dan ‘tips’ adalah tunas apikal, masing – masing termasuk meristem, dengan beberapa primordial daun dan jaringan batang yang berdiferensiasi di sekitarnya.

��

Istilah ‘MTC” dan ‘propagasi klonal’ seringkali digunakan secara sinonim, mungkin karena keduanya telah digunakan untuk menghasilkan tanaman bebas virus. Hal ini kurang tepat dan mesti dibedakan, karena jaringan nonmeristematik dari tanaman yang terinfeksi virus, jika diperbanyak akan menghasilkan tanaman terinfeksi.

Gambar 7.2. Deteksi PVS dengan teknik Dot-ELISA pada membra nitrocellulose. Garis paling atas- konsentrasi standar virus concentration dalam picograms (pg); garis lebih di bawah- uji keberadaan virus dari

meristem yang telah diberi perlakuan suhu panas cv .Primura

Eksplan ujung meristem harus diisolasi di bawah mikroskop stereo (x8 – 40) dengan peralatan yang sesuai (forcep, jarum dan scalpel), dilakukan di dalam laminar air flow cabinet steril, atau jika ini tidak tersedia, dilakukan di ruang yang bersih. Peralatannya harus disterilisasi dengan panas sebelum melakukan pekerjaan isolasi, dan platform dari dissecting microscope mesti disterilisasi terlebih dahulu dengan 75% ethanol. Isolasi mesti dilakukan secepat mungkin untuk menghindari eksplan menjadi kering akibat panas dari lampu mikroskop. Dehidrasi dapat diminimalisir dengan menggunakan illuminator cahaya dingin atau lampu fiber-kaca dan/atau melakukan isolasi pada permukaan yang dingin (misalnya, petri dish yang dipenuhi es), atau pada kertas saring lembab yang steril. Isolasi dimulai dengan membuang daun luar, daun bagian dalam dibuang dibawah mikroskop stereo; meristem tanpa daun diisolasi bersama dengan 1-2 primordia daun dengan 4 potongan tegak lurus terhadap area meristem. Meristem tip akhirnya diisolasi dengan memotong bagian dasar dan segera ditempatkan pada media nutrisi.

��

Pada MTC, penting untuk menghindari kontaminasi eksplan oleh jamur dan pathogen bakteri. Precaution yang diperlukan untuk tujuan ini tergantung pada asal meristem. Meristem yang diambil dari tunas yang sedang tumbuh biasanya terproteksi baik oleh beberapa primordial daun, sehingga sterilisasi tidaklah terlalu penting; karena sesungguhnya, usaha disinfeksi kadang meningkatkan level kontaminasi. Sebaiknya, saat menumbuhkan tanaman donor dalam green house pada tanah yang telah disterilisasi, usahakan menyiram tanah dan bukan daunnya untuk membantu mengurangi kontaminasi. Penyemprotan tanaman secara teratur dengan fungisida sistemik juga penting. Untuk tanaman yang ditumbuhkan di lapang, dianjurkan untuk mengambil potongan kecil, tumbuhkan pada larutan nutrisi, kemudian ambil meristem dari tunas aksiler yang baru muncul, yang tentunya lebih sedikit terkontaminasi. Meristem tip yang diambil dari umbi dalam tanah sebaiknya direndam dalam 75% ethanol untuk menghilangkan udara yang terperangkap, lalu sterilisasi dengan sodium hypochlorite atau calcium chloride selama 10 menit dan selanjutnya dicuci 3 kali pada air steril.

Kami biasanya tidak melakukan sterilisasi, tetapi orang lain mesti mencari cara terbaik untuk menghindari kontaminasi pada kondisi bekerja mereka.

Kultur dan Perkembangan MeristemPotensi morfogenik meristem kentang untuk menghasilkan plantlet

bergantung pada ukuran meristem, kondisi fisiologi dari tanaman donor, posisi meristem tanaman dan juga kultivar kentang.

Ukuran MeristemUkuran optimum meristem yang akan digunakan ditentukan

berdasarkan panjang meristem atau jumlah primordial daun. Tips berukuran 0.2 – 1 mm (meristematic dome plus 2 atau lebih primordial daun) merupakan yang umumnya digunakan. Untuk menghindari kesalahan, sebaiknya ditentukan jumlah daun primordial, dibandingkan ukurannya.

Semakin besar ukuran meristem yang dikulturkan, semakin besar jumlah tanaman baru yang diproduksi, tetapi jumlah plantlet bebas virus

��

yang diperoleh berbanding terbalik dengan ukuran tip yang dikulturkan. Ukuran eksplan karenanya mesti disesuaikan di antara keduanya. Seperti pada spesies lain, tingkat hidup meristem kentang tanpa primordial bunga sangatlah rendah. Tingkat hidup yang rendah umum terjadi pada meristem yang kecil, sebagai contoh, 21% meristem kentang dengan 2 primordia daun (panjang 0.3 mm) dan 69% dengan 3 – 4 primordia (0.8 mm) menghasilkan plantlet (Marani dan Pisi, 1977). Perkembangan rata – rata mendekati 80% untuk cv Majestic dan Kennebec dan 90 – 95% untuk cv Majestic dan Primura dihasilkan menggunaka meristem dengan 4 primordia daun (Faccioli dan Rubies-Autonell, 1982). Dengan menggunakan ‘multimeristem’ teknik (Roca et al., 1978), 7-9 kali jumlah meristem kentang yang awalnya dikulturkan, berkembang menjadi plantlet (Faccioli et al., 1988, Gambar 7.3).

Gambar 7.3. Tunas yang telah berakar dari kultivar ‘Majestic’ diiinisasi dari ujung meristem (4 primordial daun) pada media MS + 1mg/l IAA and 1mg/l IDA setelah 14 minggu dalam kultur. Kondisi Fisiologis Tanaman Donor.

Meristem diambil terbaik dari tanaman donor pada saat sedang pertumbuhan vegetatif aktif. Karenanya, perlu menyediakan kondisi pertumbuhan yang bagus dengan menggunakan phytotron, ruang tumbuh terkontrol atau green house yang memiliki cahaya dan suhu yang dapat diatur. Ketika tanaman tidak dipelihara pada kondisi ideal, fluktuasi

��

musiman dari intensitas cahaya dan fotoperiode sangatlah penting. Sebagai contoh, meristem dari sebagian besar kultivar kentang yang dikoleksi pada musim semi dan awal musim panas, akan menghasilkan akar lebih mudah dibandingkan yang dikoleksi kemudian (Mellor dan Stace-Smith, 1969; Quak, 1977). Untuk kultivar Primura dan Spunta, 69% meristem (dome dengan 3-4 primordia daun, panjang 0.8 mm) yang dikoleksi di bulan Mei telah berkembang menjadi plantlet, sedangkan hanya 37% yang diambil pada bulan Februari (Marani dan Pisi, 1977).

Posisi Meristem pada TanamanSemua meristem tanaman dapat digunakan sebagai materi awal,

tetapi potensi morfogenik dan kandungan virus dari meristem apikal atau aksiler berbeda adanya. Ada meristem aksiler, posisi tunas pada bantang juga penting. Pada tunas dari cv. Majestic terinfeksi PVS, contohnya, ditemukan peningkatan konsentrasi virus dari meristem apical ke tunas aksiler bawah; hanya meristem pertama dan kedua meristem aksiler pertama yang memiliki virus kurang dari 10 pg (Faccioli and Colombarini, 1996).

Posisi meristem pada tanaman juga penting untuk tahap fenologi dari plantlet yang dihasilkan, namun sayangnya, belum ada penelitian ini pada kentang.

Faktor yang Mempengaruhi Perkembangan MeristemPerkembangan selanjutnya dari meristem in vitro akan bergantung

utamanya pada karakteristik media kultur, tetapi juga tergantung pada cahaya dan suhu, serta faktor lainnya.

Media kulturMedia kultur umumnya merupakan campuran yang seimbang

dari garam mineral, sumber energi karbon, zat pengatur tumbuh, vitamin dan komponen minor. Karena meristem tidak dapat mensintesi faktor pertumbuhan, perkembangannya terutama bergantung pada komposisi hormon media kultur. Kelompok hormon yang berbeda memiliki efek sebaliknya pada diferensiasi meristem. Karenanya, cukup sulit untuk memformulasi media yang sempurna-seimbang. Percobaan

��

awal dengan menggunakan kultur media-tunggal untuk kentang hanya berhasil secara partial, dan jumlah plantlet yang berkembang selalu lebih rendah dibandingkan menggunakan dua media (Pennazio dan Vecchiati, 1978). Saat ini, praktik umum untuk menggunakan media kaya sitokinin untuk perkembangan tunas, lalu dilanjutkan dengan media kaya auksin untuk menstimulasi formulasi akar. Penggunaan media bebas hormon sebagai intermediate, untuk mencuci sisa sitokinin dari tunas kentang, memungkinkan peningkatan pengakaran pada media kedua (Faccioli, tidak terbit). Media ketiga (multimeristem teknik) dilakukan untuk menstimulasi perkembangan tunas yang lebih banyak dari meristem kentang (Roca et al., 1978).

Meristem kentang tumbuh baik pada media yang dipadatkan dengan agar (0.6 – 0,8%) tetapi media cair bias juga digunakan, meskipun jembatan kertas (paper bridge) diperlukan untuk meletakkan meristem. Konsentrasi dan kualitas agar mempengaruhi pertumbuhan meristem; Difco Bacto agar atau produk alternatif seperti Biogel P200, alginate atau Gelrite mesti digunakan (Pierrik, 1987), daripada agar biasa yang mungkin mengandung kontaminan anorganik atau organik yang beracun. Dianjurkan untuk menggunakan konsentrasi zat pengatur tumbuh yang lebih rendah pada media cair karena dapat diserap lebih cepat, dan konsentrasi in planta bisa menjadi terlalu tinggi. Dianjurkan untuk menggunakan paper bridge (Heller, 1953) atau bahan berpori lainnya dicelupkan pada media cair dan membantu eksplan (Pierick, 1987). PH media kultur umumnya 5.0 – 6.5, merupakan variabel penting, yang dapat mempengaruhi perkembangan meristem pada spesies yang berbeda, serta mengatur organogenesis meristem. Hal ini mungkin memodifikasi penyerapan ZPT, vitamin dan ion amonium dari sel, dan juga mempengaruhi penyerapan gula dan asam amino oleh sel – sel (Margara, 1982). Pada kentang, pH 5.7 – 5.8 umumnya cocok (Mellor dan Stace-Smith, 1969; Pennazio dan Redolfi, 1973; Gregorini dan Lorenzi, 1974; Marani dan Pisi, 1977). pH yang lebih rendah (4.8) dan lebih tinggi (6.2) mencegah pembentukan akar (Mellor dan Stace-Smith, 1969).

Kelebihan auksin dan sitokinin pada media, ditambah konsentrasi gula yang rendah (kurang dari 6 g/l), RH tinggi dan akumulasi gas, dapat mengakibatkan ‘vitrifikasi’ atau ‘transparan seperti kaca’. Ketidaknormalan

��

fisiologi ini dicirikan oleh produksi daun yang menyimpan air, dengan ruang antarsel yang dipenuhi air, yang dapat menghambat pertumbuhan dan mengakibatkan kerugian saat transfer hingga 60% (Maene dan Deberg, 1985; Kevers et al., 1984). Rekomendasi akhir adalah hanya bahan – bahan murni yang dapat digunakan dalam kultur jaringan.

Lama kultur pada media sebelum ditransfer bervariasi dan tergantung pada spesies dan kultivar tanaman. Untuk kentang, tunas yang telah memiliki akar dapat ditransfer setelah berumur 3 – 3.5 bulan; kultivar berumur pendek memerlukan waktu transfer yang sedikit lebih cepat (Faccioli, tidak dipublikasikan).

Untuk lebih mengerti peran bahan kimia pada media tumbuh terhadap perkembangan meristem, berikut detailnya.

Garam mineral. Campuran utama garam mineral pada konsentrasi yang berbeda, yang telah digunakan pada media pertumbuhan, telah direview oleh Bhojwani dan Razdan (1966) dan Gamborg (1984). Meskipun kualitas nutrisi anorganik cukup konstan pada semua media, kuantitas garam dan ion yang digunakan, bervariasi. Konsentrasi berbagai nutrisi anorganik (khususnya K+ dan NH4) rendah pada media White’s (1943) dan Heller’s (1953), awalnya digunakan secara luas, dan bertanggungjawab pada perkembangan yang buruk serta klorosi pada meristem tip kentang. Karenanya media tersebut dimodifikasi. Beberapa unsur non-esensial minor, seperti Al dan Ni, dieliminasi karena tidak diperlukan. Besi, pertama kali ditambahkan dalam bentuk F2S(S04)3 digantikan dengan FeCl2 lalu oleh Fe-EDTA, yang meningkatan ketersediaan elemen ini pada berbagai kondisi pH pada kultur jaringan, dan juga penyerapan nutrisi mikro mungkin mencegah presipitasinya (Gamborg et al., 1976).

Pada media Murashige dan Skoog (1962), nitrogen disuplai dalam bentuk senyawa nitrat dan ammonium. Nitrat lebih baik dibandingkan ammonium sebagai sumber nitrogen, tetapi digunakan sendiri menyebabkan perubahan pada pH media ke arah basa, ditentukan oleh hadirnya senyawa NH4. Jadi keseimbangan yang benar antara NO3/NH4 adalah penting untuk perkembangan yang baik bagi eksplan. Media MS, awalnya dianjuran untuk meristem tembakau, juga efektif pada meristem kentang (Stace-Smith dan Mellor, 1968) dan karenanya digunakan secara luas.

��

Sumber energi dan karbon. Sumber karbon yang sering digunakan pada kultur jaringan tanaman adalah sukrosa, yang dengan cepat dihidrolisa menjadi fruktosa dan glukosa, dan glukosa digunakan terlebih dahulu.

Vitamin. Vitamin seperti thiamine-HCl, biotin, pyridoxine, pantothenic acid dan nicotinic acid seringkali ditambahkan ke media pada konsentrasi rendah (0.1 – 0.5 mg/L) meskipun peran mereka belum diketahui pasti. Hanya thiamine-HCl yang tampaknya esensial pada kultur tanaman (Murashige, 1977).

Zat Pengatur Tumbuh. Telah dikenal luas bahwa rasio auksin/sitokinin menentukan tipe dan arah organogenesis karena sitokinin yang disuplai dari luar mengakibatkan proliferasi tunas pada kultur sel empulur tembakau, sedangkan auksin menstimulasi pembentukan akar (Skoog dan Miller, 1957); respon serupa ditemukan kemudian untuk berbagai spesies tanaman. Akan tetapi, ada variasi yang luas pada kebutuhan auksin dan sitokinin untuk morfogenesis antartaxa dan genotipe, sehingga tipe dan konsentrasi hormon yang tepat mesti ditentukan untuk tiap spesies, dan kadang bahkan untuk kultivar. Selain dua grup hormon tersebut, bahan tambahan lain yang dapat mempengaruhi pertumbuhan dan morfogenesis tanaman telah diidentifikasi. Ini termasuk giberelin, etilen, dan senyawa kompleks meskipun mekanisme biokimia bagaimana mereka mengubah respon pertumbuhan tanaman belum dimengerti benar. Secara umum, kejadian utama atau lokasi aksi auksin dan sitokinin belum diketahui pasti, atau mereka memiliki aksi langsung pada level gen, atau memiliki efek melalui suatu seri atau intermediate.

Zat pengatur tumbuh umumnya diberikan pada konsentrasi antara 0.01 – 10 mg/l. Auksin yang biasa dipakai adalah 3-indoacetic acid (IAA), 3-indolbutyric acid (IBA), dan naphthaleneacetic acid (NAA); 2,4-D mesti dihindari karena biasanya mendorong terbentuknya kalus pada eksplan, bukan morfogenesis.

Hormon tumbuh tidak selalu diperlukan untuk eksplan dengan meristem-tip besar (panjang 500 µm atau lebih), yang kadang juga berkembang menjadi tanaman lengkap pada media yang kurang zat pengatur tumbuh, tapi sejumlah kecil auksin atau sitokinin atau keduanya (0.1 – 0.5 mg/L) sangat berguna dan sangat penting untuk eksplan berukuran kecil.

��

Karena pasangan primordia daun yang kedua kemungkinan mensintesis auksin, kubah meristem shoot tip tidak bersifat otonom untuk auksin. Hal ini ditunjukkan oleh perlunya auksin eksogen untuk berkembang, pada meristem berbagai spesies yang tidak memiliki primordia (Smith dan Murashige, 1970).

Seperti telah disebutkan sebelumnya, dua macam media biasanya digunakan. Pertama adalah media dasar MS yang dimodifikasi dengan penambahan 1 mg/l benzylaminopurine (BA), diikuti dengan media kedua, dimana BA diganti dengan 1 mg/l indolebutyric acid (IBA) dan 1 mg/l indoleacetic acid (IAA), pastikan meristem kentang memiliki 3-4 primordia daun (Faccioli dan Rubies Autonell, 1982).

Induksi lebih banyak tunas per meristem tergantung pada spesies yang terlibat, tetapi umumnya bergantung pada level sitokinin pada media. Sitokinin dapat menanggulangi dominansi apikal dan menginduksi pertumbuhan tunas aksilar walaupun ada apikal meristem ujung (terminal apex). Stimulasi pembentukan tunas adventif ini dapat diulangi beberapa kali, dan merupakan dasar dari perbanyakan klonal (Bhojwani dan Razdan, 1996).

Peran GA3 tampaknya cukup bervariasi; dapat memperbaiki pertumbuhan pada beberapa kultivar kentang, namun tidak ada pengaruhnya pada meristem tip kultivar kentang lainnya. Pengakaran meristem kentang pada media MS tanpa GA3 tampaknya lebih rendah (17%) dibandingkan pada medium mengandung GA3 (66%) (Mellor dan Stace-Smith, 1977).

Untuk menginduksi pembentukan multipel tunas pada meristem aksilar kentang (Gambar 14.4), kami berhasil menggunakan 3 urutan media, yang pertama mengandung 1 mg/l BA, kedua dengan 0.5 mg/I BA + 0.5 mg/l GA3 dan ketiga dengan 1 mg/l IBA + 1 mg/L IAA (Faccioli et al., 1988).

Selain untuk produksi plantlet, kultur in vitro dapat digunakan untuk memproduksi minituber. Untuk tujuan ini, tunas yang telah berakar dapat ditempatkan pada media cair yang mengandung BA konsentrasi tinggi (10 mg/l ) dan gula dengan konsentrasi tinggi (8%), seperti yang dianjurkan oleh Wang dan Hu (1982), atau potongan ruas tunggal dapat diletakkan pada media padat yang diperkaya dengan Coumarin (25 mg/l) seperti

��

dilaporkan oleh Stallknecht dan Farnsworth (1982). Kami menemukan metode yang pertama lebih mudah, dan minituber yang dihasilkan tetap viable hingga 6 bulan disimpan pada suhu 4oC dalam ruang gelap, pada media pasir (Faccioli et al., 1988).

Antibiotik. Setelah beberapa bulan dalam kultur, kontaminasi oleh bakteri eksogen yang mengakibatkan penghambatan pertumbuhan dapat terjadi. Hal ini jarang terjadi pada kentang, tetapi untuk pencegahan, antibiotik non toksik dapat ditambahkan ada media. Gentamicin dan tetracycline (100 – 200 mg/l) tampaknya paling efekif pada kultur tanaman buah, tetapi ini perlu diuji pada kentang.

Komponen minor. Kultur in vitro merilis metabolit ke media, yang mungkin beracun, atau menjadi penghambat pertumbuhan jaringan. Senyawa ini tidak tampak, kecuali yang dapat membuat warna media berubah, atau terjadi pencoklatan pada jaringan dan media sekitarnya. Jika terjadi pencoklatan, ini kemungkinan besar disebabkan oleh oksidasi polifenol menjadi quinon, yang bersifat toksik. Untuk mengurangi pencoklatan media, mungkin perlu memberikan periode gelap pada awal kultur, karena cahaya merangsang oksidasi. Antioksidan dan senyawa penyerap dapat juga digunakan, seperti asam askorbat, yang rutin digunakan sebagai antioksidan pada kultur stroberi dan tanaman buah. Cistine, thiourea dan asam sitrat dapat digunakan pada kentang (Murashige, 1974). Arang aktif (0.5 – 3%) dapat digunakan sebagai adsorbant (bahan penyerap), karena mampu mengikat fenol, tetapi mungkin juga menyerap zat pengatur tumbuh dan senyawa organik lainnya. Pada kentang, arang aktif dapat menstimulasi pertumbuhan meristem menjadi tunas dan meningkatkan pengakaran tunas mikro (Fridborf dan Eriksson, 1975). Polyvynilpyrrolidone (PVP, 250 – 1000 mg/l) juga berguna sebagai penyerap (Pierik, 1987).

Untuk membebaskan media dari senyawa sel dan debris, meristem dapat ditransfer ke media kultur baru setelah satu atau beberapa hari, meskipun hal ini tidak perlu pada kentang karena ini dapat menjadi penyebab kontaminasi.

Wadah kultur. Glass tubes (10 x 120 mm) yang dilengkapi tutup yang memungkinkan pertukaran udara, adalah wadah yang umum digunakan pada kultur meristem dan cocok untuk kentang. Dimensi

�00

wadah mesti dipertimbangkan karena dapat mempengaruhi morfogenesis. Menutup rapat (sealing) wadah kultur untuk mencegah kontaminasi bukanlah hal yang baik dilakukan, karena dapat menghambat pertukaran gas dan dapat mengakibatkan akumulasi karbon dioksida dan etilen yang dapat berpengaruh buruk terhadap morfogenesis (Thomas dan Murashige, 1979).

SuhuKebutuhan suhu untuk pertumbuhan meristem serupa dengan

tanaman induknya dan tergantung juga pada interaksi dengan komposisi cahaya dan hormon substrat. Suhu konstan 26oC, dengan 16 jam cahaya 3-4 Klux, cocok untuk kultivar kentang yang ditumbuhkan pada media MS termodifikasi (Faccioli et al., 1988).

CahayaCahaya mempengaruhi organogenesis meristem melalui lama

terpapar, intensitas dan panjang gelombang. Secara umum, persyaratan cahaya kultur meristem tidak banyak berbeda dengan persyaratan tanaman induknya (Murashige, 1974).

Untuk kentang, dianjurkan menerapkan fotoperiode 16 jam pada 1-4 Klux (Styler dan Chin, 1983). Kualitas cahaya yang diperlukan untuk fotosintesis pada tanaman, dan juga pada kultur jaringan, serupa untuk berbagai spesies, dan preferensi ada pada panjang gelombang dengan klorofil a dan b menyerap cahaya, i.e. band merah (680-650 nm) dan biru (440-470 nm). Pada kultur jaringan, kedua band cahaya ini mampu mengarahkan morfogenesis ke arah pembentukan akar adventif (band merah, 680 – 650 nm) (Letouze dan Beauchesne, 1969) dan tunas (band biru, 440 – 470 nm). Berbagai lampu telah diuji untuk mengetahui kualitas cahaya yang paling efektif. Untuk meristem kentang, efek tiga cahaya yang berbeda telah diteliti (Pennazio dan Redolfi, 1973) menggunakan sumber cahaya merah, atau sumber serupa cahaya matahari, atau 2:1 kombinasi keduanya. Tanaman yang memiliki akar yang paling kuat dihasilkan di bawah lampu kombinasi Fluora 77R (Osram), dengan prevalent emittin bands cahaya merah dan biru (3 K lux), 16 jam/hari, merangsang morfogenesis yang

�0�

sangat baik dari meristem dengan 4 primordia daun, dari berbagai kultivar kentang (Faccioli dan Rubies-Autonell, 1982).

Transplanting PlantletJika tunas telah menghasilkan sistem perakaran yang memuaskan,

plantlet siap ditransfer dari wadah kultur ke tanah berdrainase baik, misal campuran peat : tanah : pasir dengan perbandingan 1 : 1 : 1. Perhatian diperlukan selama periode transplanting untuk menghindari kerusakan akar, dan agar mesti dihilangkan dengan cara mencuci bagian akar plantlet secara perlahan. Hal ini dilakukan untuk menghindari kontaminasi oleh jamur dan bakteri. Selanjutnya, plantlet harus dipelihara pada RH tinggi (90 – 100%) untuk 10 – 15 hari pertama, karena tanaman yang tumbuh pada wadah gelas memiliki kutikula yang belum tumbuh sempurna dan selama transplantasi, tanaman mengalami kehilangan udara akibat evapotranspirasi. Pada beberapa jam pertama aklimatisasi, plantlet mengalami stress air yang signifikan: stomata tidak beroperasi sempurna, karena pada kultur jaringan, mekanisme buka tutup stomata tidak terjadi, dan plantlet yang tumbuh in vitro tidak memiliki rambut akar. Karenanya, tanaman yang baru ditransfer umumnya ditutup dengan plastik bening atau diberi semburan uap air secara periodik. Selama beberapa hari pertama, penyiraman dengan larutan nutrisi, seperti larutan Hoagand, dapat membantu perkembangan plantlet. Kelembaban dapat diturunkan secara perlahan untuk memungkinkan tanaman menyesuaikan dengan kondisi normal, dan 2-4 minggu kemudian, plantlet dapat tumbuh normal pada kondisi greenhouse. Alternatifnya, untuk mengatasi fase kritikal ini, tunas kentang dapat diinduksi untuk menghasilkan umbi mikro pada kultur.

Kultur Potongan BatangKultur kentang dengan eksplan potongan batang, lebih mudah

dibandingkan kultur meristem. Bahan pertumbuhan yang digunakan mungkin sama dengan yang digunakan pada kultur meristem, tetapi tanpa perlu ditambah hormon tumbuh. Vitamin mungkin tidak diperlukan, tetapi ini perlu ditentukan. Potongan batang satu ruas (single node), setelah daun kecilnya dihilangkan, dapat digunakan, meskipun bahan awal selalu

�0�

terinfeksi virus, semakin kecil explants, semakin besar peluang untuk mendapatkan keturunan bebas virus. Hal ini mungkin karena semakin kecil eksplan, semakin sedikit jumlah virusnya. Lebih baik menggunakan potongan batang sekecil mungkin, misalnya diameter 1,5 mm, panjang 5 mm, karena mereka tidak memiliki masalah untuk tumbuh. Eksplan dapat diambil langsung dari tuber yang baru bertunas, tetapi lebih baik dari potongan kecil tunas umbi mini yang ditumbuhkan di greenhouse. Dalam hal ini, perlu dilakukan sterilisasi dengan 1% sodium hypochlorite dalam laminar-flow cabinet (Faccioli dan Zoffoli, 1998). Cutting/stek dapat juga diambil dari plantlet yang sudah tumbuh in vitro (Griffiths et al., 1990). Keperluan tumbuh lainnya, seperti suhu dan cahaya, serupa dengan kultur meristem, meskipum pada stek batang, persyaratan ini tidak terlalu kritikal.

IndexingPlantlet yang ditransfer dari media kultur ke tanah harus diuji untuk

memastikan tanaman tersebut bebas virus. Untuk memastikan hal ini, tanaman diuji beberapa kali pada saat perkembangannya, karena konsentrasi virus mungkin awalnya berada pada level di bawah deteksi (sehingga tidak terdeteksi). Tanaman induk yang dipelihara di rumah kaca, juga harus dites berulangkali sebelum digunakan untuk bahan multiplikasi.

Metode testing virus telah dikaji penuh pada Chapter 10. Akan tetapi, harus disebutkan bahwa sensitivitas metode DAS-ELISA pada beberapa virus kentang (PVY, PVX, PVS, dan PVM) pada kisaran pg, sementara Dot-ELISA sedikit dimodifikasi dengan memerangkap virus langsung pada NCM, dan mendeteksi virus kentang hingga sesedikit 1 pg (Rubies-Autonell et al., 1987; Colombarini, 1990; Faccioli dan Colombarini, 1996). Ekstrak (sap) tanaman yang mengandung klorofil, tidak seperti ekstrak meristem, dapat mengganggu reaksi warna pada tes ini, tetapi mengencerkan sap dan/atau ‘memutihkan” NCM dengan sodium hypochlorite dapat mengatasi hal ini. Versi yang lebih sederhana dari ELISA bernama “squash blot” untuk deteksi luasan terinfeksi, memiliki sensitivitas yang sama dengan DAS-ELISA (Mitchell et al., 1990). Ini dapat dilakuan dengan memeras daun tanaman di antara strip PVC yang murah, untuk analisis Dot-ELISA.

�0�

Metode ini cepat dan menghemat tenaga kerja untuk mendeteksi PVY, PVX, PVS, PVM namun bukan PLRV (Faccioli dan Colombarini, 1990).

Sensitivitas hibridisasi molekuler untuk mendeteksi PLRV dan PVX sebanding dengan DAS-ELISA, tapi kurang efisien dibandingkan Dot-ELISA (Faccioli, tidak diterbitkan), mungkin karena kandungan ekstrak tanaman mengganggu reaksi hibridisasi.

Eradikasi virusKultur Meristem

Korelasi antara ukuran meristem dengan eradikasi virus pada kentang telah diketahui baik. Laporan awal tentang eradikasi virus menunjukkan pola yang berbeda antarvirus; meristem yang diisolasi dengan 2 primordia daun menghasilkan 100% plantlet bebas virus PLRV, PVY dan PVM, tapi hanya 66% di antaranya bebas PVX dan PVS (Accatino, 1966). Eradikasi dengan persentasi sangat tinggi (95%) untuk PVX dan PVS dihasilkan dengan mengkulturkan meristem dengan panjang 0.1 mm dengan atau tanpa primordial daun, tetapi hanya 20 plantlet yang mampu beregenerasi dari 196 meristem (Kassanis dan Varma, 1967). Virus kentang A (PVA) dan PVY mudah dieradikasi (85 – 90%) dengan menggunakan meristem berukuran kurang dari 0.3 mm (Morel et al., 1968), sementara virus lain seperti PVX dan PVS tidak tereliminasi karena mereka dapat menginvasi meristem.

Pada kentang yang terinfeksi ganda oleh PVY dan PVA, Marani dan Pisi (1977) menghasilkan 21% regenerasi dari meristem dengan panjang 0.3 mm, 90% di antaranya berkembang menjadi tanaman yang sehat, dan 69% beregenerasi dari meristem dengan panjang 0.8 m, di mana hanya 7% menghasilkan keturunan bebas virus. Dengan menggunakan autoradiografi, yang menunjukkan ketidakhadiran PVY dan PLRV pada kubah dan 4 daun primordia pertama, adalah memungkinkan untuk menghasilkan regenerasi bebas virus dari meristem berukuran tersebut (Faccioli dan Rubies-Autonell, 1982; Faccioli et al., 1988). Eradikasi yang lebih baik untuk PVX pada beberapa kultivar kentang, dicapai melalui ukuran meristem tip yang lebih keci (0.2 mm) daripada yang lebih besar (0.4 mm), (berturut – turut 47.4% dan 21.2% eradikasi), tetapi survival dan kecepatan pertumbuhan relatif

�0�

dari meristem yang lebih kecil, cenderung lebih rendah (El-Fiki et al., 1992). Hasil eradikasi terakhir ini menunjukkan bahwa kandungan virus lebih rendah pada ukuran meristem yang lebih kecil.

Termoterapi dan KemoterapiTermoterapi dan kemoterapi bersama dengan MTC meningkatkan

kesuksesan untuk memperoleh tanaman bebas virus jika dome dan primordial daun telah terinfeksi.

Termoterapi dapat diaplikasikan pada tanaman induk sebelum meristem diisolasi, atau ke meristem tip saat kultur in vitro. Aplikasi pada tanaman induk tidak terlalu merusak dan juga memungkinkan untuk menggunakan meristem yang lebih besar, yang lebih mudah berkembang menjadi plantlet dengan kemungkinan bebas virus yang sama, karena perlakuan panas menghambat multiplikasi virus (Stace-Smith dan Mellor, 1968; Wang dan Hu, 1980). Meristem dapat diisolasi dari ujung yang sedang tumbuh dari umbi yang diberi perlakuan panas. Mekanisme eradikasi virus dengan menggunakan panas belum diketahui, tetapi induksi perubahan pada lingkungan sel mungkin menghambat multiplikasi dan/atau transport virus. Alterasi bergantung panas dari metabolisme sel mungkin memungkinan pembentukan o-quinones, aktivasi ribonuklease, penghambatan replikasi, dan pengurangan pada ribosom. Beberapa kultivar kentang telah bebas dari PVX dan PVS dengan termoterapi (Stace-Smith dan Mellor, 1968; 1970; MacDonald, 1973). Meristem yang diambil dari umbi yang mendapat perlakuan panas biasanya tumbuh tidak memuaskan. Sip (1972), misalnya, menghasilkan hanya 14% plantlet yag bebas PVA atau PVS dari 0.3-1 mm long meristem-tips yang diambil dari kecambah umbi yang telah diberi perlakuan panas selama 52 0 124 hari (awalnya 33oC, lalu ditingkatkan menjadi 37oC selama 4 minggu).

Hasil yang lebih baik dan lebih cepat untuk mendapatkan keturunan bebas virus diperoleh dengan termoterapi. Jumlah plantlet bebas PVX diperoleh dari pemberian perlakuan panas pada tanaman dengan suhu 30oC, dari 14 – 42 hari meningkat dari 12.5 menjadi 82% dengan menggunakan meristem dengan panjang 0.3 mm, dan dari 0 – 53% dengan 0.8 mm meristem (Pennazio dan Vecchiati, 1978). Keturunan bebas virus (92-91%)

�0�

dihasilkan dengan mengkulturkan meristem tips dengan 4 primordia daun yang diisolasi dari kultivar yang terinfeksi PVX, yatu kultivar Majestic dan Kennebec, diperlakukan panas pada suhu 35oC selama 27 hari dan 93% dari kultivar Majestic terinfeksi PVS, diperlakukan panas selama 26 hari. Kesuksesan eradikasi meningkat dengan lama perlakuan (Faccioli dan Rubies-Autonell, 1982; Faccioli dan Colombarini, 1996).

Selanjutnya, untuk bahan terinfeksi PVS, korelasi tampak jelas antara kandungan virus pada meristem dengan persentase tanaman bebas virus yang diperoleh; pada kebanyakan meristem (85%), perlakuan termoterapi menurunkan kandungan virus dari 10-100 pg hingga menjadi kurang dari 10 pg (Fig. 14.3); jadi, kandungan virus kurang dari 10 pg memastikan eradikasi virus pada MTC. Hasil ini mungkin dipengaruhi oleh penggunaan kultivar yang berbeda, media yang berbeda dan cahaya yang berbeda. Juga, perbedaan pada strain virus atau isolat juga mempengaruhi eradikasi (Mellor dan Stace-Smith, 1970). Jadi, ketika memulai program eradikasi, semua faktor tersebut mesti dipertimbangkan. Karena paparan panas yang tetap dalam waktu yang cukup lama dapat merusak jaringan tanaman, sebaiknya diterapkan suhu yang diselang seling (alternate).

Suhu rendam juga digunakan untuk membebaskan jaringan dari virus sebelum isolasi meristem. Sebagai contoh, PVA dan PVY dieradikasi dengan menumbuhkan jaringan kentang pada suhu 5oC (Moskovets et al., 1973). Namun, perlakuan suhu rendah, paling efektif terhadap viroid yang memperbanyak diri pada suhu di atas 30oC. Potato spindle tuber viroid (PSTVd) dapat dieradikasi dengan mengisolasi meristem dengan 1 primordia daun dari pantlet yang disimpan pada suhu 5 – 6oC selama 6 bulan (53% progeni bebas virus) atau dari umbi yang disimpan pada suhu 8oC selama 4 bulan (30%) (Lizarraga et al., 1980); sebaliknya, hanya 2,4 – 6% plantlet bebas viroid diperoleh dari 2 siklus perlakuan panas (33 – 35oC) dilanjutkan dengan suhu rendah (Stace-Smith dan Mellor, 1970).

Kemoterapi dapat juga diaplikasikan untuk kultur meristem in vitro, atau pada tanaman sebelum meristem diisolasi. Pada kultur in vitro meristem, bahan kimia ditambahkan pada media kultur, namun dapat mempengaruhi pertumbuhan meristem. Berbagai bahan kimia telah diuji untuk aktivitas antivirusnya, tetapi hanya sedikit yang efektif (Schuster, 1988). Bahan yang

�0�

paling sering digunakan adalah alaog sintetik guanosine, yaitu rivabirin (=virazole; 1-β D-ribofuranosyl-1, 2,4-triazole-3-carboxamide), yang jika ditambahkan ke media pada konsentrasi 10 – 50 mg/l, efektif terhadap PVX, PVY, PVS dan PVM pada kentang (Cassel dan Long, 1982; Klein dan Livingston, 1982; 1983; Cassel, 1987). Namun, ribavirin pada dosis aktif, yang bervariasi pada spesies tanaman dan virus, biasanya bersifiat phytotoxic dan menyebabkan peningkatan waktu kultur, kematian beberapa meristem, dan perlu subkultur lebih banyak ke media baru. Penggunaan 190 mg/l untuk eradikasi PVX pada kentang, misalnya, meningkatkan waktu kultur hingga 6 – 8 bulan (Klein dan Livingston, 1982). Regenerasi tunas kentang dari kultur meristem tertunda 6 – 8 minggu, ketika diberikan 10 – 50 mg/l ribavirin (Cassel, 1987).

Untuk mengatasi toksisitasnya, ribavirin dosis rendah diberikan selama 2 minggu pada kultur hidroponik stek batang kentang, bersama dengan antimetabolit non-toksi 2,4 DHT (Rubies-Autonell et al., 1987; Faccioli dan Colombarini, 1996). Sembilan puluh persen meristem dengan 4 primordia daun, diambil dari stek yang diperlakukan dengan 5 mg rivabirin + 5 mg DHT, berkembang menjadi tanaman lengkap, 74% di antaranya menghasilkan tanaman bebas PVS. Dot-ELISA menunjukkan 90% meristem memiliki virus di bawah 10 pg; masing – masing bahan kimia jika diberikan tunggal (10 mg/l DHT atau 5 mg/l ribavirin) memiliki efek yang lebih kecil. Hasil serupa ditemukan untuk PVM, ketika 69% tanaman bebas virus dihasilkan, dibandingkan dengan 39% tanaman kontrol (tanpa perlakuan). Penggunaan kedua bahan kimia ini secara simultan juga berguna karena rivabirin di atas 5 mg/l menghambat perkembanan meristem. Analog basa lainnya, cyanoguanidin, memberi hasil serupa (61.4% plantlet bebas virus vs 34.7% kontrol) pada PVM (Schuster, 1982).

Tiga metode eradikasi telah digunakan bersama untuk mendapatkan bahan bebas virus dari 34 genotipe Solanum (Sanchez et al., 1991). Plantlet yang dihasilkan secara in vitro dari stek ruas, diletakkan pada media MS mengandung 20 mg/l ribavirin dan 15 hari kemudian, diberi perlakuan panas (tidak ada interupsi, pergantian suhu 35oC- 4 jam cahaya/31oC – 4 jam gelap). Meristem (panjang 0.2 – 0.4) yang diambil dari plantlet tidak menunjukkan tampilan yang lebih baik dibandingkan termo atau

�0�

kemoterapi yang dilengkapi dengan kultur meristem untuk PVS dan PVX (berturut – turut 43.9 dan 65.8% keturunan bebas virus) dan lebih buruk dibandingkan MTC saja untuk PVY dan PLRV (37 dan 57%) (Faccioli dan Rubies-Autonell, 1982; Faccioli et al., 1988).

Kemo dan termoterapi, masing – masing atau kombinasi, mesti digunakan untuk menghasilkan plantlet bebas virus dari stek batang terinfeksi virus. Dengan menggunakan kombinasi kemoterapi (50 mg/l ribavirin + 100 mg/l DHT), 36-91% plantlet bebas PVX dari 5 kultivar kentang (keberhasilan tergantung kultivar) dihasilkan dari stek ruas tunggal besar (0.3 x 2 cm), dikulturkan in vitro selama 4 mingggu, dan 100% plantlet bebas virus dihasilkan setelah 4 minggu (Faccioli dan Zoffoli, 1998). Untuk eradikasi PVS, stek yang lebih kecil (0.15 x 0.5 cm), diperlukan konsentrasi ribavirin yang lebih tinggi (50 mg/l) selama 2 kali 4 minggu, perlu dilakukan, dan tergantung kultivar, menghasilkan 40-87% plantlet bebas virus. Untuk eradikasi PVM, PLRV, PVS, PVX dan PVY dari 18 kultivar kentang dan 6 spesies Solanum, stek nodal ditumbuhkan pada media MS mengandung 20 mg/l ribavirin selama 14 hari (Sanchez et al., 1991). Kemudian plantlet dipelihara selama 28 hari pada media yang sama dalam ruang panas (alternating siklus 4 jam terang, 35oC, 4 jam gelap-31oC) umumnya menghasilkan tanaman bebas PVS, PVM dan PVX; namun tidak bebas PLRV dan hanya beberapa tanaman yang bebas PVY.

Pengaruh Eradikasi VirusEliminasi virus dengan kultur meristem-tip atau potongan batang

dapat mengakibatkan berbagai efek pada tanaman yang dihasilkan dan produktivitasnya. Pengaruh pada peningkatan kualitas dan kuantitas umbi yang dihasilkan, dibahas secara detil pada Bab 20, tetapi di samping hasil umbi, karakteristik tanaman yang terinfeksi virus akan berubah. Sebagai contoh, tanaman akan bereaksi secara berbeda terhadap infeksi sekunder, sehingga membebaskan tanaman dari satu infeksi yang mungkin menyebabkan kerentanan terhadap virus atau patogen lainnya.

Ada istilah “proteksi silang” di mana suatu strain virus biasanya memberikan proteksi terhadap strain lain dari virus yang sama. Perolehan resisten terhadap infeksi virus merupakan fenomena yang umum, yang

�0�

dapat melindungi tanaman dari infeksi suksesif (Ross, 1961). Pada kasus di atas, membebaskan tanaman dari virus, karenanya, mungkin meningkatkan kerentanan terhadap infeksi virus. Sebaliknya, ada beberapa contoh yang menunjukkan peningkatan kerentanan tanaman terinfeksi terhadap infeksi sekunder, atau kerusakan yang lebih besar oleh infeksi campuran, dibandingkan dengan jumlah pengaruh infeksi tunggal. Contoh klasiknya adalah infeksi PVX – PVY pada kentang. Interaksi antara virus dan jamur juga mempengaruhi kerentanan tanaman inang. Contoh peningkatan resistensi terhadap infeksi jamur tanaman yang terinfeksi virus cukup banyak, dan dalam kasus ini, peningkatan kerentanan tanaman yang sudah pulih juga ditemukan. Kentang yang terinfeksi PVX dan PVY, sebagai contoh, sedikit rentan terhadap infeksi Phytophthora infestans (Muller dan Munro, 1951). Umbi yang terinfeksi PVX memiliki kerentanan yang lebih sedikit terhadap Fusarium roseum (busuk kering) dibandingkan umbi yang sehat (Jones dan Mullin, 1974). Banyak laporan yang mengindikasikan bahwa infeksi virus meningkatkan kerentanan terhadap infeksi jamur (Brunt, 1986), dan pada kasus ini, eradikasi juga meningkatkan resistan ke arah infeksi jamur. Tanaman kentang yang diperoleh dari MTC biasanya menunjukkan sedikit atau tidak sama sekali perbedaan dengan sumber aslinya yang terinfeksi virus. Namun, sedikit perubahan fisiologis, terjadi pada tanaman yang dihasilkan setelah perlakuan bebas virus. Variasi ini mungkin sering terjadi, namun jarang dipertimbangkan, meskipun variasi somaklonal dapat dieksploitasi untuk tujuan pemuliaan.

Pemeliharaan Stok Tanaman Bebas Virus dan Re-infeksiTanaman bebas virus yang diperoleh melalui kultur meristem dan

kultur potongan batang dapat dengan mudah terinfeksi kembali. Untuk mencegah kontaminasi, prosedur yang hati – hati berdasarkan pengetahuan epidemiologi dan tipe virus tanaman mesti digunakan.

Tanaman induk bebas virus (tanaman inang) mesti ditumbuhkan pada tanah yang steril, untuk mencegah infeksi nematode atau virus yang ditransfer melalui jamur, dan dipelihara pada rumah kaca bebas virus dan bebas vektor. Selanjutnya, bahan tanaman mesti dimultiplikasi (2-3 kali) pada screen house yang tidak tercemar serangga, dan perbanyakan dilakukan

�0�

pada area yang terisolasi, di mana peluang re-infeksi diminimalisir dengan tidak adanya sumber virus dan vektornya. Tanaman induk mesti dikontrol terus menerus, sedangkan tanaman yang diperbanyak pada lokasi pembibitan atau di lapang untuk penggunaan komersial mesti diuji secara periodik, dalam grup atau secara acak. Kebersihan yang ketat mesti dilaksanakan utamanya untuk mencegah infeksi oleh virus yang ditransfer melalui kontak (contact-transmitted viruses); tanaman yang sehat dapat disimpan secara aman in vitro.

Untuk mengurangi re-infeksi di lapang, pestisida mesti digunakan tergantung pada vektor virusnya. Untuk mengurangi penyebaran virus yang ditransfer melalui aphid (kutu), minyak mineral dapat digunakan, meskipun pelapisan dengan minyak akan mengurangi penyerapan oksigen pada kentang dan mengurangi produksi (Faccioli, tidak dipublikasikan).

Tanaman yang dihasilkan melalui MTC dapat disimpan secara in vitro untuk mencegah re-infeksi dan mengirit tempat. Stok awal (nuclear stock) dari kultur shoot-tip kentang juga perlu disimpan untuk memelihara koleksi plasma nutfah (Westcott et al., 1977). Penggunaan nutrisi secara minimal pada media, penambahan inhibitor (zat penghambat, misalnya asam absisik) dan suhu rendah, akan mengurangi kecepatan pertumbuhan untuk keperluan konservasi tidak perlu sering disubkultur; kentang dapat disimpan dalam kondisi ini selama 1 tahun.

Kriopreservasi menggunakan nitrogen cair telah juga digunakan untuk menyimpan sel tanaman dari jaringan dan spesies yang berbeda. Keberhasilannya tergantung pada respon jaringan terhadap pembekuan. Meristem lebih disukai daripada kultur kalus untuk penyimpanan jangka panjang plasma nutfah, karena menghasilkan tanaman lebih mudah, secara genetik lebih stabil dan tahan pembekuan ekstrim. Tiga kultivar tanaman kentang telah dihasilkan, dari pengawetan beku meristem (-196oC) selama 24 bulan (Bajaj, 1981). Karena kentang bebas virus yang dihasilkan melalui MTC dapat diinfeksi kembali secara mekanikal atau melalui vektor ketika ditumbuhkan di lapang, program sanitasi dilaksanakan berbeda pada negara yang berbeda.

��0

BAB VIIIBUDIDAYA KENTANG

Kentang tumbuh di dataran tinggi (1000 – 3000 m dpl), dengan iklim bersuhu rendah atau sejuk, suhu harian 15 – 20o C,

kelembaban udara 80 – 90%, dan penyinaran yang cukup, serta curah hujan antara 200 – 300 mm per bulan. Suhu tanah optimum untuk pembentukan umbi berkisar antara 15 – 18oC. Pertumbuhan umbi akan sangat terhambat apabila suhu tanah kurang dari 10oC dan lebih dari 30oC (Setiadi, 2009).

Tanaman kentang membutuhkan tanah yang subur, gembur, banyak mengandung bahan organik, bersolum dalam, aerasi dan drainase baik. Kentang dapat beradaptasi di berbagai jenis tanah, tetapi tanah lempung berpasir yang dalam dengan porositas tinggi sangat ideal. Jenis tanah berpasir biasanya kering dan hangat di awal musim semi, sehingga memungkinkan tanaman tumbuh lebih cepat. Jika memiliki irigasi yang baik, tanah berpasir akan menghasilkan tanaman kentang yang baik. Kurangnya irigasi harus dihindari karena cenderung menghaislkan bentuk umbi yang buruk, dan intensitas hujan yang tinggi menyebabkan kebusukan pada umbi (ref).

Tingkat keasaman ideal tanah bagi pertumbuhan kentang yaitu antara 5,2 - 6,5 (Setiadi, 2009) guna mencegah keropeng/kudis pada kentang. Jika tingkat keasaman tanah melebihi pH ideal bagi tanaman kentang, maka dapat ditanam varietas kentang scab-resistant (tahan terhadap kudis), seperti varietas Superior atau Russet Burbank, atau menurunkan pH tanah dengan memberi belerang, sesuai yang direkomendasikan setelah uji tanah. Tergantung pada tekstur tanah, diperlukan 680 gram belerang pada lahan seluas 2,5 m2 untuk menurunkan pH sekitar satu unit penuh (misalnya, dari 6,2 menjadi 5,2).

Persiapan LahanPengolahan lahan dalam bercocok tanam kentang menjadi syarat

utama dalam keberhasilan. Menurut Setiadi (2009) persiapan lahan tanam

���

yang harus dilakukan dalam bercocok tanam kentang yaitu melalui beberapa tahapan, yaitu;

Pengolahan tanah, dilakukan dengan cara pembajakan atau pencangkulan sedalam kurang lebih 30 cm hingga gembur, dan dibiarkan selama 1 – 2 minggu bertujuan menetralkan kandungan gas berbahaya (Setiadi, 2009).

Pembuatan bedengan dan selokan untuk irigasi yang dibuat membujur, umumnya searah dari Utara ke Selatan, agar penyebaran cahaya matahari dapat merata mengenai seluruh tanaman. Bedengan berukuran lebar 70 – 100 cm, tinggi 30 cm, jarak antarbedeng adalah 40 cm dan panjangnya disesuaikan dengan kondisi lahan. Permukaan bedengan ditutup dengan plastik mulsa di mana bagian berwarna cerah berada di permukaan atas (Setiadi, 2009).

Pemupukan dasar yaitu pemberian pupuk yang terdiri dari pupuk organik dan pupuk kompos. Pemberian pupuk organik diberikan pada permukaan bedengan. Pupuk dasar tersebut lebih baik diberikan satu minggu sebelum tanam agar tercampur dengan baik. Pemupukan dapat dilakukan dengan cara dicampurkan dengan tanah bedengan dengan kedalaman 20 cm ketika penggemburan tanah terakhir atau dengan menaburkannya pada lubang tanam saat pembuatan lubang tanam (Setiadi, 2009).

Persiapan BibitBibit kentang bersertifikat (bebas dari penyakit kentang), disimpan di

tempat yang sejuk sampai sekitar dua minggu sebelum tanam. Green-sprout ditumbuhkan pada suhu ruang dengan kelembaban tinggi, dan dihamparkan dalam satu lapis yang terkena cahaya. Green house menjadi tempat ideal untuk penyimpanan benih kentang, tetapi gudang, atau area serupa dengan intensitas cahaya yang cukup juga dapat digunakan. Bibit kentang dibalik setiap empat hingga lima hari untuk memastikan keseragaman pertumbuhan tunas. Tujuan dari green sprouting adalah untuk memperoleh tunas yang kuat, yang sangat pendek dan kuat, yang muncul dan tumbuh cepat saat ditanam.

���

Ciri – ciri umbi bibit yang telah siap untuk ditanam yaitu umbi bibit yang telah melalui masa dormansi selama 3 – 6 bulan, telah bertunas, daging umbi tidak mengempis, warna umbi tidak mengalami perubahan dan penampakan kulit umbi masih rata tidak mengalami pengelupasan (Rukmana, 2002). Penanaman umbi bibit yang masih dalam masa dormansi atau belum bertunas pertumbuhannya akan lambat, waktu panen tidak merata dan produktivitasnya rendah. Selain itu, masa dormansi membantu menghilangkan kadar air dalam umbi, sehingga mencegah potensi terjadinya pembusukan oleh penyakit yang ada di dalam tanah.

Pemilihan varietas. Pemulia tanaman telah mengembangkan banyak varietas kentang yang cocok untuk petani. Meskipun umumnya diklasifikasikan sebagai varietas musim awal, pertengahan dan akhir, pertimbangkan faktor lain seperti resistensi terhadap penyakit, penggunaan yang dimaksudkan (memanggang, merebus, tujuan umum, penyimpanan musim dingin) dan, tentu saja, rasa. Bacalah katalog mengenai deskripsi varietas, berbincang dengan para penjual kentang di kebun, dan berkonsultasi dengan petani kentang berpengalaman dapat dilakukan sebelum memutuskan varietas kentang yang akan ditanam.

PenanamanWaktu penanaman yang baik di lahan tanam adalah pada kondisi

cuaca cerah. Penanaman bibit kentang yang paling baik dilakukan pada pagi atau sore hari. Penanaman pada siang hari dapat menyebabkan kelayuan sehingga pertumbuhan umbi akan terhambat, bahkan umbi menjadi tidak tumbuh (Samadi, 2007).

Penanaman dilakukan dengan menyiram lubang tanam pada bedengan terlebih dahulu. Umbi kemudian diletakkan pada lubang tanam yang sudah disiapkan pada bedengan, dengan kondisi bagian umbi yang memiliki mata tunas paling banyak menghadap ke bagian atas, kemudian umbi ditimbun dengan tanah di sekitar lubang tersebut (Samadi, 2007).

Jarak tanam yang baik pada kentang varietas Granola adalah 25 x 30 cm dengan kedalaman lubang tanam antara 8 – 10 cm. Khusus di dataran menengah, jarak tanam diatur 50 – 30 cm untuk sistem bedengan atau 60 – 70 cm x 30 cm untuk sistem guludan (Rukmana, 2002; Utami et al., 2015).

���

PemeliharaanKegiatan pemeliharaan pada tanaman kentang meliputi:

a. PengairanPengairan dilakukan secara rutin, setiap hari, tergantung cuaca dan

keadaan air. Waktu pengairan yang paling baik adalah pagi hari atau sore hari saat udara dan penguapan tidak terlalu tinggi dan penyinaran matahari tidak terlalu terik (Setiadi, 2009).

b. PenyulamanPenyulaman adalah penggantian dengan bibit baru terhadap tanaman

yang mati. Waktu atau periode penyulaman maksimum 15 hari setelah tanam. Penyulaman dilakukan pada pagi atau sore hari, bersamaan dengan waktu penyiraman (Rukmana, 2002).

c. PenyianganPenyiangan dilakukan segera setelah terlihat adanya pertumbuhan

rumput dengan memperhitungkan pula bila selesai kegiatan ini akan dilanjutkan dengan pembumbunan. Waktu penyiangan umumnya saat tanaman kentang berumur satu bulan. Cara menyiangi adalah mencabut atau membersihkan gulma dengan alat bantu tangan atau kored. Penyiangan dilakukan secara berhati – hati agar tidak merusak perakaran tanaman kentang. Penyiangan sebaiknya dilakukan pada daerah kira – kira 15 cm di sekitar tanaman (Pitojo, 2004).

d. PembumbunanPembumbunan adalah penimbunan kembali pangkal batang. Tujuan

pembumbunan adalah mengupayakan agar stolon dan umbi berkembang dengan baik, memperbaiki drainase tanah, mencegah umbi kentang yang terbentuk terpapar sinar matahari dan mencegah serangan hama penggerek umbi (Phithorimaea opercuella). Ketebalan pembumbunan kira – kira 10 cm, yang dilakukan dua kali (Pitojo, 2004).

���

e. PemupukanPemberian pupuk setelah masa tanam disebut pemberian pupuk

susulan, dilakukan dengan menyebar pupuk tersebut di sekeliling tanaman pada jarak 10 cm dari batang tanaman, dengan dosis 10 – 20 g per tanaman atau diberikan pada barisan diantara tanaman dengan ukuran kurang lebih 20 – 25 cm kemudian menimbunnya dengan tanah sambil dilakukan pembumbunan (Rukmana, 2002).

Kecenderungan petani melakukan pemupukan berlebih pada tanaman kentang. Pemupukan berlebih menyebabkan pertumbuhan gulma, hasil panen yang rendah, dan pembusukan pada umbi. Sebagian besar bertumbuh dengan baik pada lahan yang memiliki tingkat kesuburan yang tinggi, dalam hal ini pupuk dengan komposisi 10-10-10 disebarkan sebanyak 1.5 kg per 100 m2 dianggap cukup. Pengolahan lahan perlu dilakukan; ini akan mencegah kontak langsung antara benih dan pupuk, yang dapat menyebabkan benih panas dan busuk. Meskipun pupuk kandang memberikan dampak yang sangat baik untuk tanah, pupuk kandang harus dikomposkan terlebih dahulu sebelum diaplikasikan ke tanah di mana kentang akan tumbuh.

Tanam kentang saat musim semi (untuk daerah 4 musim) segera setelah tanah cukup kering dan mulai hangat. Kentang varietas “Russet Burbank” ditanam dengan jarak tanam 12 – 14 inchi dalam baris). Tutupi benih umbi dengan tanah setebal sekitar 5 cm.

f. Pengendalian hama dan penyakit Kutu daun, kutu kumbang dan kumbang Colorado merupakan

serangga yang paling umum pada kentang. Penyakit hawar daun adalah penyakit pada tanaman kentang yang menyerang daun. Hama dan penyakit biasanya dapat dikendalikan dengan menggunakan campuran insektisida-fungisida berfungsi umum yang tersedia di sebagian besar pusat pasokan kebun. Aplikasi mingguan, dimulai ketika tinggi tanaman 8 hingga 10 inci, sehingga hama dan penyakit dapat dikendalikan. Jika kondisi cuaca kering, aplikasi pada interval 10 hari dapat dilakukan.

���

Pemanenan dan PenyimpananKentang dari ukuran dan kualitas yang diinginkan dapat dipanen

untuk segera digunakan setiap saat setelah tanaman telah berkembang. Panen kentang penyimpanan ketika suhu tanah dan udara mendingin, dan sebagian besar bagian atasnya sudah menguning, biasanya sekitar pertengahan September. Sepuluh hari sebelum panen, potong atau tarik tanaman merambat. Gali tanaman ketika tanah kering, jika memungkinkan, angkat umbi dengan hati-hati dan atur agar kering selama satu atau dua jam di atas tanah. Pilih hanya kentang suara untuk penyimpanan, buang yang sudah lapuk atau terluka, atau potong titik-titik buruk dan segera gunakan. Simpan kentang di lingkungan yang gelap dan sangat lembab dengan suhu sekitar 4oC. Gunakan palet untuk menjaga kentang terlepas dari lantai lembab, sediakan sirkulasi dan hindari penyimpanan potensial.

Rotasi Tanaman Jika memungkinkan, jangan menanam kentang lebih dari satu kali

di area yang sama untuk menghindari penyakit yang ditularkan melalui tanah. Sebisa mungkin, hindari menanam kentang dengan stroberi, tomat atau kacang polong, karena tanaman ini dapat terinfeksi dengan beberapa penyakit yang sama pada kentang. Jagung, tanaman keluarga kubis, dan sebagian besar tanaman anggur adalah alternatif yang lebih baik untuk ditanam pada lahan kentang, hal ini didasari pada ketahanannya terhadap tanah asam dibandingkan pada kebanyakan sayuran lainnya.

���

BAB IXRESEP MASAKAN BERBAHAN KENTANG

1. Garlic Roasted Potatoes (Kentang panggang dengan bawang putih)

Bahan- 1.5 kg kentang- ¼ cangkir minyak zaitun- 1 ½ sendok teh garam- 1 sendok the merica hitam butiran, digerus- 6 siung bawang putih dipotong kasar- 2 sendok makan parsley segar

Cara membuat:1. Panaskan oven 200oC2. Potong setiap butir kentang menjadi 4 bagian, letakkan dalam

mangkok, tambahkan minyak zaitun, garam, merica dan bawang putih. Campurkan merata sehingga semua kentang terselimuti bumbu dan minyak. Letakkan kentang tersebar pada loyang datar. Masak selama 45 menit hingga 1 jam, atau hingga berwarna coklat dan garing. Balikkan dua kali dengan menggunakan spatula saat

���

masak untuk memastikan kematangan yang merata.3. Keluarkan kentang dari oven, taburi parsley. Hidangkan selagi

hangat.

2. Kentang Panggang Accordion

Bahan- 6 kentang, digosok dan dibersihkan kulitnya, tidak perlu dikupas- Minyak zaitun (atau mentega yang dilelehkan)- Garam- Garnish: potongan herbs seperti chives, parsley, oregano

Cara membuat:1. Panaskan oven 175oC. 2. Iris kentang agak tebal, sekitar 0.3 cm, namun jangan dipotong

hingga bagian bawah.3. Letakkan pada Loyang panggang. Percikkan minyak zaitun atau

mentega cair. Taburi garam untuk memberi rasa4. Panggang selama 60 menit, lumuri lagi dengan minyak yang

menggenang. Jika kentang telah matang, irisan akan membentuk kipas.

5. Keluarkan kentang dari oven dengan menggunakan capit atau spatula.

6. Letakkan kentang pada piring dan taburi dengan irisan herbs jika suka.

���

7. Bisa juga ditaburi keju parmesan pada saat 10 – 15 menit dalam pemanggangan

8. Untuk 6 orang

3. Mashed Potato

Bahan- 800 g kentang- 40 gram mentega, dipotong dadu- 1/3 cup susu hangat- Mentega extra, untuk menghidangkan

Cara membuat1. Kupas kentang dan potong besar – besar. 2. Didihkan air yang telah diisi garam, masak kentang selama 20 menit

atau hingga kentang menjadi lembut, tapi tidak hancur.3. Tiriskan kentang dengan baik. Masukkan kembali ke panci, panaskan

dengan api kecil.4. Goyang – goyangkan panci secara perlahan hingga sisa air menguap.

Dengan menggunakan potato masher, hancurkan kentang.5. Tambahkan mentega, susu hangat ke dalam kentang yang telah

dihancurkan. Cabik – cabik dengan sendok kayu sampai fluffy (mekar). Tambahkan garam dan merica.

6. Hidangkan dengan menambahkan sedikit mentega, garam dan merica.

���

4. Salad Kentang

Bahan- 5 kentang- 2 telur- 1 gelas seledri yang telah dipotong – potong- ½ gelas bawang bombay yang telah dipotong-potong- ½ gelas pickle manis untuk penambah rasa- ¼ sendok teh garam dengan rasa bawang putih- ¼ sendok teh garam dengan rasa seledri- 1 sendok makan saus mustard- Merica hitam yang telah dihancurkan- ¼ gelas mayonnaise

Cara membuat1. Panaskan panci yang telah berisi air dan garam hingga mendidih.

Masukkan kentang dan rebus hingga empuk namun tidak hancur, sekitar 15 menit. Tiriskan, dinginkan, kupas dan potong – potong.

2. Rebus telur hingga matang. Dinginkan, kupas dan potong-potong.3. Dalam mangkok besar, campurkan kentang, telur, seledri, bawang

Bombay, garam, saus mustard, merica dan mayonnaise. Campurkan dengan baik lalu masukkan ke dalam lemari pendingin. Hidangkan dingin.

��0

5. Kentang Panggang dengan Brokoli Saus Keju

Bahan- 3 siung bawang putih, cincang kasar- 200 gram daging ayam giling- 500 gram kentang rebus setengah matang, potong kecil- 300 ml susu UHT- 65 gram keju cheddar parut- 50 gram keju mozzarella- 2 sendok makan tepung terigu- 2 sendok makan margarin- 1 sendok teh lada- Garam dan gula secukupnya- 500 gram brokoli, rebus setengah matang

Cara membuat1. Tumis bawang putih hingga harum, masukan daging ayam giling,

setelah berubah warna tambahkan tepung terigu. Aduk rata.2. Masukan susu UHT, aduk rata. Kemudian beri keju cheddar parut.

Jika sudah mengental, tambahkan kentang dan brokoli. Aduk hingga matang. Tambahkan garam, lada, gula.

3. Pindahkan ke dalam wadah tahan panas dan adonan siap dipanggang kurang lebih 15-20 menit. Sajikan dalam keadaan hangat disertai saus sambal atau tomat.

���

6. Kentang Panggang Saus Keju

Bahan-bahan- 4 buah Kentang- 300 gram brokoli- 1 sendok makan tepung terigu- 400 ml Susu Cair Sapi- 150 gram Keju Cheddar- 3 sendok makan Mentega- 1/2 sendok teh Gula Pasir- 1/4 sendok teh Garam- 1/4 sendok teh Merica (Lada) BubukCara membuat1. Bungkus kentang dengan kertas alumunium foil, lalu panaskan

oven dengan suhu 180oC. Panggang selama 35 menit. Angkat dan sisihkan.

2. Sambil menunggu kita bisa sambil memasak saus keju. Panaskan mentega dalam wajan lalu masukkan terigu dan aduk hingga membentuk adonan.

3. Tuang susu sedikit demi sedikit sambil diaduk, Masukkan keju parut, gula, garam, dan merica. Aduk rata hingga mengental. Matikan api.

4. Angkat kentang lalu belah bagian atasnya, tekan sedikit supaya merekah. Olesi bagian dalam kentang dengan mentega, sisipkan brokoli, siram dengan saus keju, lalu letakkan irisan keju diatasnya.

5. Panggang di oven bersuhu 180 celcius selama 15 menit. Siap dihidangkan.

���

7. Potato Wedges

Bahan- Garam laut (sea salt)- Merica hitam digerus segar- 600 g kentang dipotong wedges, panggang dalam oven- Minyak zaitun

Cara membuat1. Panaskan oven 200oC.2. Potong kentang berbentuk wedges.3. Masukkan ke dalam air panas dan direbus selama 8 menit. Tiriskan

dan biarkan uap air keluar selama beberapa menit.4. Pindahkan ke tray pemanggangan, tambahkan minyak zaitun cukup

banyak, garam dan merica secukupnya. Campurkan merata sehingga semua wedges terselimuti minyak dan sebarkan dalam pada tray pemanggangan. Jangan sampai ada yang menumpuk. Masa pada oven selama 30 menit hingga kuning keemasan.

���

8. Keripik kentang – homemade

Bahan- 4 kentang berukuran sedang, kupas dan diiris tipis- 3 sendok makan garam- 1 quart minyak untuk menggoreng

Cara membuat1. Sambil mengiris, letakkan irisan kentang dalam mangkok besar berisi

air dingin.2. Tiriskan, buang airnya, lalu mangkok diisi air lagi, tambahkan sedikit

garam.3. Biarkan kentang menyerap air garam selama kurang lebih 30 menit.

Tiriskan, cuci dan tiriskan lagi.4. Panaskan minyak hingga 185oC. Goreng kentang dalam jumlah

kecil. Begitu kentang mulai berubah coklat keemasan, angkat dan tiriskan pada paper towel. Lanjutkan higga semua irisan kentang telah digoreng. Tambahkan garam dan merica jika perlu.

Dengan microwave1. 1 sendok makan minyak sayur.2. 1 kentang, iris setipis mungkin (bisa dikupas terlebih dahulu atau

tidak).3. ½ sendok teh garam, atau secukupnya.4. Tuangkan minyak sayur ke dalam tas plastik. Masukkan irisan

kentang, lalu kocok sehingga terselimuti minyak.5. Lapisi piring besar dengan sedikit minyak sayur. Atur irisan kentang

dalam 1 lapis pada piring.6. Masak dalam microwave selama 3 – 5 menit, atau sedikit mencoklat

(jika tidak coklat, tidak akan renyah. Waktu bervariasi tergantung power microwave anda. Pindahkan chips dari piring, dan taburi garam. Tunggu hingga dingin. Siap dihidangkan.

���

9. Bacon and Cheese Stuffed Potatoes

Bahan- Kentang berukuran sedang- ¼ gelas mentega, dipotong dadu- 1 gelas (8 ons) sour cream- 1 gelas (4 ons) keju cheddar parut- 4 Bacon strips, sudah matang dan dipotong kecil – kecil- 3 – 4 bawang, diiris

Cara membuat1. Panggang kentang pada suhu 200 oC selama 30 menit sampai empuk.

Dinginkan sebentar, turunkan suhu ke 175oC.2. Potong masing – masing kentang melintang memanjang. Keluarkan

isinya (pulp kentang), sehingga masih ada selapis tipis kentang.3. Dalam mangkok besar, hancurkan pulp kentang dengan mentega.

Tambahkan sour cream, keju, bacon dan bawang Bombay. 4. Letakkan kembali pada cangkang kentang.5. Letakkan pada Loyang panggang. Panggang selama 30 -35 menit

atau hingga panas merata.

���

10. Chicken Stuffed Potato Bombs

Bahan- 8 kentang berukuran sedang, kupas dan potong kasar- Air untuk merebus kentang- 2 sendok teh cabe bubuk- Garam dan merica- 1 sendok makan minyak sayur- 3 siung bawang putih, dicincang- 1 gelas bawang, dipotong dadu- 1 gelas paprika, dipotong dadu,- 6 daging paha atas ayam, dipotong dadu- 2 sendok teh bubuk cabai- 2 sendok teh kunyit bubuk- 3 telur- 2 gelas tepung roti- Minyak sayur untuk memasak- Saos sambal

Cara membuat1. Didihkan air, tambahkan kentang yang sudah dipotong kasar, rebus

hingga kentang empuk. Tiriskan, taburi garam, merica 1 sendok teh bubuk cabai, lalu hancurkan kentang. Biarkan mendingin.

���

2. Panaskan wajan, masukkan minyak sayur, lalu masukkan bawang putih cincang, bawang Bombay, dan paprika. Masak hingga bawang tampak memucat (translucent). Masukkan potongan ayam, tambahkan garam dan merica, bubuk cabai dan kunyit secukupnya. Masak hingga ayam matang. Dinginkan.

3. Ambil 1 genggam mashed potato (kentang yang sudah dihancurkan) dan bentuk bola – bola. Ambil 1 sendok adonan ayam dan masukkan ke dalam bola kentang. Tambahkan keju dan bentuk menjadi bola.

4. Celupkan bola kentang ke dalam telur, lalu gulingkan pada tepung roti.

5. Goreng pada minyak sayur hingga berwarna coklat keemasan dan renyah.

6. Nikmati dengan saos sambal !

11. The Best Fresh Tomato Salsa

Bahan- 1 gelas tomat yang telah dipotong kecil- ½ gelas paprika yang telah dipotong kecil- 1 gelas bawang Bombay, dipotong dadu- ¼ gelas cilantro segar, dicincang kasar- 2 sendok makan air perasan jeruk limau- 4 sendok akan cabai jalapeno segar, dipotong kecil

���

- ½ sendok teh cumin bubuk- ½ sendok teh garam- ½ sendok teh lada hitam diulek

Cara membuat- Campurkan tomat, paprika hijau, cilantro, perasan jeruk limau cabai

jalapeno, cumin, gara dan lada dalam mangkok.- Hidangkan- Cocok dengan chips, dll.

Sumber:http://www.foodnetwork.com/recipes/ina-garten/garlic-roasted-potatoes-recipehttp://www.shockinglydelicious.com/baked-accordion-potato-recipe/https://cookpad.com/id/resep/674466-kentang-panggang-dengan-brokoli-saus-kejuhttps://cookpad.com/id/resep/179512-kentang-panggang-saus-kejuhttp://www.jamieoliver.com/recipes/vegetables-recipes/potato-wedges/http://www.tasteofhome.com/recipes/bacon--n--cheese-stuffed-potatoes

���

BAB XSTANDAR OPERASIONAL PROSEDUR PANEN

DAN PASCAPANEN

Kentang merupakan tanaman pangan utama keempat terpenting di dunia, setelah gandum, jagung, dan padi. Tingginya

nilai gizi menyebabkan kentang banyak dikonsumsi dan diproduksi di berbagai wilayah di dunia. Produksi kentang di Indonesia cukup baik, tetapi dibandingkan dengan produktivitas kentang di Eropa yang rata-rata mencapai 35 ton per hektar, produktivitas kentang di Indonesia masih cukup rendah (sekitar 16 ton – 25 ton per hektar). Rendahnya produksi kentang tersebut terkait dengan pemakaian bibit yang rendah mutunya, teknik budidaya yang kurang sesuai, penanganan pascapanen yang kurang baik, serta iklim dan cuaca yang kurang mendukung.

Panen kentang dianjurkan dilakukan di pagi atau sore hari dan saat cuaca cerah. Intensitas cahaya yang cukup saat penjemuran, sangat diperlukan saat panen. Hal ini dimaksudkan agar umbi kentang setelah pembongkaran dapat dijemur, sehingga umbi kering bersih dari tanah. Jika penjemuran tidak maksimal, kadar air dalam umbi dan sisa tanah di kulit umbi yang masih basah, dapat menyebabkan pembusukan pada umbi. Sebelum panen, tanaman kentang mesti dipangkas. Pemangkasan dilakukan 1-2 minggu sebelum panen kentang. Tanaman yang dipangkas menghentikan proses pengangkutan fotosintesis (source dan sink), sehingga umbi dapat terfokus pada pembentukan kulit umbi yang tebal dan kuat. Pemangkasan tanaman penting dilakukan untuk menghindari kerusakan umbi pada proses selanjutnya (pengepakan, distribusi, dll).

Usaha meningkatkan produktivitas kentang di Indonesia semestinya dimulai dengan penggunaan benih bermutu. Untuk memperoleh benih atau kentang bibit yang bermutu, diperlukan Standar Operasional Prosedur (SOP) sebagai acuan dalam pelaksanaan penyediaan kentang bibit bermutu. Standar Operasional Prosedur ini mengkhusus dalam penyimpanan kentang bibit.

���

TARGETtargetyangingindicapaidenganpenerapanSOPiniadalah

diperolehnya kentang bibit yang bermutu sebagai bahan awaluntuk pertanaman kentang di lapangan, sehingga pada akhirnyamendapatkanproduksikentangyangbermututinggi,baikdarisegikuantitasmaupunkualitas.

targetkentangbibityangingindicapaiadalah(tabel1dan2):• kentang bibit yang sehat selama dalam penyimpanan.• Tingkat serangan hama dan penyakit yang rendah selama

penyimpanan.• Kentang bibit siap digunakan untuk musim tanam berikutnya.

tabel1.PersyaratanmutuumbikentangG2digudangpenyimpanan

Tabel 2. Persyaratan mutu umbi kentang G3 di gudang penyimpanan

��0

KegiatanSistem penjaminan mutu kentang bibit meliputi beberapa kegiatan

dimulai persiapan ruang penyimpanan dengan cara pembersihan dan disinfektasi, dokumentasi yang mendetail saat panen kentang bibit di lapangan, pengepakan, delivery, pembersihan dan disinfestasi ruang penyimpanan kentang bibit, kondisi ruang penyimpanan dan pengendalian hama dan penyakit.

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Operasional Prosedur Nomor: 1 Tanggal:Pembersihan dan disinfestasi peralatan dan fasilitas ruang penyimpanan kentang bibit

Halaman: Revisi:

I. PEMBERSIHAN DAN DISINFESTASI PERALATAN DAN FASILITAS RUANG PENYIMPANAN KENTANG BIBIT

A. DefinisiPembersihan dan disinfestasi peralatan dan fasilitas ruang

penyimpanan kentang bibit adalah usaha untuk membersihkan semua peralatan dan fasilitas terkait penyimpanan kentang bibit dari hama dan penyakit yang dapat menginfeksi umbi kentang yang akan disimpan. Peralatan dan ruang penyimpanan kentang selalu terpapar berbagai hama penyakit termasuk jamur, bakteri, serangga, nematoda dan gulma. Hama penyakit ini dapat meluas dari satu umbi ke umbi lain atau dari lahan satu ke lahan lainnya melalui peralatan ataupun dalam penyimpanan, yang menyebabkan timbulnya permasalahan pada pertanaman berikutnya jika tidak dieliminasi atau setidaknya diminimalisasi.

B. TujuanPembersihan dan disinfestasi peralatan dan fasilitas ruang

penyimpanan kentang bibit dimaksudkan untuk mencegah terbawanya penyakit dari satu musim simpan ke musim simpan berikutnya, serta

���

menjaga agar kualitas kentang bibit tetap terjaga hingga musim tanam berikutnya.

C. Bahan dan Alat1. Fungisida dan insektisida sesuai kebutuhan2. Disinfektan berbahan aktif Chlorine seperti sodium hypochlorite,

chlorine dioxide dan calcium hypochlorite. 3. Air, alat ukur pH, atau kertas pH4. High pressure sprayer (jika tersedia). Bisa juga sprayer jenis lain.5. Alat pel lantai6. Hand sprayer atau power sprayer (alat aplikasi)7. Ember dan pengaduk8. Takaran (skala ml dan liter)9. Alat/sarana pelindung seperti sarung tangan, masker, topi, sepatu

boot, baju lengan panjang

D. Standar• Tersedia tempat dan peralatan ruang penyimpanan dalam kondisi

bersih.• Tersedia tenaga yang terampil melakukan pembersihan dan

disinfestasi fasilitas ruang penyimpanan.

E. Prosedur1. Keluarkan atau bersihkan semua tanaman, sisa kentang dari musim

sebelumnya serta bahan dan alat yang tidak diperlukan dari ruang penyimpanan.

2. Cermati ruang penyimpanan jika ada yang perlu diperbaiki, seperti AC, sistem ventilasi, kabel – kabel, kayu yang patah.

3. Bersihkan lantai, pipa – pipa dan peralatan lainnya. 4. Bersihkan dengan sabun dan air panas atau uap panas (gunakan high

– pressure sprayer jika tersedia), seluruh ruang simpan termasuk dinding, instalasi, lampu, lantai, sistem ventilasi dan sistem humiditas, lalu dibilas.

���

5. Semprot dengan disinfektan dengan konsentrasi bahan aktif 500 ppm, pH 6 - 7, lalu biarkan permukaan tetap basah selama 10 – 15 menit agar disinfestasi efektif.

6. Tutup ruang penyimpanan selama 2 minggu, kemudian buka kembali untuk memungkinkan pertukaran udara dan mengeringkan fasilitas ruang penyimpanan.

7. Jika selalu mengalami masalah dengan penyakit silver scurf, gunakan disinfektan yang tepat untuk membunuh bibit penyakit silver scurf dari musim simpan sebelumnya.

8. Hubungi Dinas Pertanian terdekat untuk disinfektan yang diperbolehkan.

F. Validasi/ReferensiOlsen N and P. Nolte. 2011. Cleaning and disinfecting potato

equipment and storage facilities. University of Idaho extension. Shetty, K . 2011. Potato storage disinfection and sanitation.

University of Idaho, Extension Potato Specialist

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Prosedur Operasional Nomor: 2 Tanggal:Dokumentasi/Nota Pengantaran Halaman: Revisi:

II. DOKUMENTASI / NOTA PENGANTARAN A. Definisi

Dokumentasi/nota pengantaran adalah catatan untuk melengkapi setiap batch kentang bibit yang masuk ke gudang penyimpanan. Dibuat dua rangkap, satu copy untuk dibawa ke gudang penyimpanan dan 1 copy dipegang oleh petani pensuplai bibit.

B. TujuanMemberikan data yang lengkap pada batch (Lot) kentang yang akan

disimpan dalam gudang penyimpanan.

���

C. Bahan dan Alat• Kertas, alat tulis, penggaris.

D. Standar • Tersedia informasi yang lengkap untuk setiap batch kentang bibit

yang akan diangkut ke gudang penyimpanan.• Tersedia tenaga yang terlatih untuk pengisian nota pengantaran.

E. Prosedur: Tuliskan detail berikut pada formulir yang telah disediakan (Tabel

3):• Varietas• Keadaan awal• Ukuran bibit• Generasi• Pemberi sertifikat/Approved certifier• Tanggal penanaman• Tanggal pemanenan bagian atas/bulan senescence• Saat panen• Tanggal inspeksi• Perlakuan fungisida atau insektisida yang diberikan ke bibit setelah

panen.• Kondisi penyimpanan (misal penyimpanan suhu dingin, berapa

derajat Celsius, atau suhu kamar).• Informasi lain yang terkait, termasuk nama petani dan waktu

pengepakan.

F. Validasi/ReferensiDAWA. 2003. Western Australian Certified Seed Potato Scheme,

Incorporating the National Standard for the Certification of Seed Potatoes. Agwest Western Australian.

���

Tabel 3. Form Dokumentasi/Nota Pengantaran

No Item Keterangan1 Varietas2 Keadaan awal3 Ukuran bibit4 Generasi5 Pemberi sertifikat/Approved certifier6 Tanggal penanaman7 Tanggal pemanenan bagian atas/bulan senescence8 Saat panen9 Tanggal inspeksi

10 Perlakuan fungisida atau insektisida yang diberikan ke bibit setelah panen.

11 Kondisi penyimpanan (misal penyimpanan suhu dingin, berapa derajat Celsius, atau suhu kamar)

12

Informasi lain yang terkait, termasuk nama petani dan waktu pengepakan.

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Prosedur Operasional Nomor: 3 Tanggal:Pengepakan dan transportasi kentang bibit

Halaman: Revisi:

III. PENGEPAKAN DAN TRANSPORTASI KENTANG BIBITA. Definisi

Pengepakan kentang bibit merupakan kegiatan pengumpulan kentang bibit dalam suatu wadah tertentu seperti kantong besar atau keranjang yang selanjutnya diangkut menuju tempat penyimpanan.

B. TujuanTujuan pengepakan adalah untuk memastikan kentang bibit berada

dalam keadaan baik selama proses transportasi dari lapang ke gudang penyimpanan.

���

C. Bahan dan alat1. Kantong plastik besar / keranjang /boks.2. Dokumen/nota pengantaran.3. Kendaraan pengangkut.

D. Standar• Tersedia bahan kemasan kentang bibit yang bersih berupa kantong/

boks/keranjang untuk mengepak kentang bibit.• Tersedia kendaraan pengangkut yang memadai untuk mengangkut

kentang bibit yang sudah dipak.• Kentang bibit yang sudah dipak tersusun rapi di dalam kendaraan

pengangkut.• Kentang bibit tiba di gudang penyimpanan dalam kondisi baik dalam

pak.• Tersedia tenaga terlatih untuk mengepak kentang bibit, melabel,

memasukkan ke kendaraan pengangkut, mengeluarkan dari kendaraan pengangkut dan memasukkan ke gudang penyimpanan.

E. Prosedur• Umbi kentang yang telah dipanen dimasukkan dengan hati – hati ke

dalam kantong/boks/keranjang.• Beri label/dokumentasi/nota pengantaran.• Kantong yang telah berisi kentang disusun rapi dalam kendaraan

pengangkut, untuk menghindari kerusakan fisik.• Tutup tumpukan umbi kentang dalam kendaraan (misal dengan

terpal, jika diangkut dengan truk) untuk mencegah terekspos sinar matahari langsung dan suhu udara yang panas.

• Kendaraan harus dijalankan dengan hati – hati agar tidak menyebabkan getaran yang berlebihan yang berakbat pada kerusakan fisik buah.

F. Validasi/ReferensiDAWA. 2003. Western Australian Certified Seed Potato Scheme,

Incorporating the National Standard for the Certification of Seed Potatoes. Agwest Western Australian.

���

Yanta, J. P. and Tong, C. 2011. Commercial Postharvest Handling of Potatoes (Solanum tuberosum). Regents of the University of Minnesota. http://www.extension.umn.edu/ distribution/horticulture/DG6239.html

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Operasional Prosedur Nomor: 4 Tanggal:Delivery/pengantaran umbi kentang dari lapang, sortasi dan curing kentang bibit

Halaman: Revisi:

IV. DELIVERY/PENGANTARAN UMBI KENTANG DARI LAPANG, SORTASI DAN CURING KENTANG BIBIT

A. DefinisiPengantaran kentang bibit dari lapang adalah proses penerimaan

kentang bibit yang telah diangkut dari lapang ke lokasi ruang penyimpanan. Sortasi adalah pemisahan kentang bibit yang utuh dengan mengalami kerusakan mekanis dan terkena penyakit. Curing adalah proses pemulihan kentang yang mengalami kerusakan mekanis seperti luka ringan atau memar pada saat panen dan pengangkutan. Pemulihan luka sangat penting untuk meminimalkan peluang masuknya sumber penyakit seperti jamur dan bakteri.

B. TujuanTujuan kegiatan ini adalah untuk memastikan kentang tiba di ruang

penyimpanan dalam kondisi baik sebelum disimpan dan memulihkan luka memar pada kentang bibit sebelum disimpan.

C. Bahan dan Alat• Wheel barrow atau alat pengangkut kentang dari kendaraan ke ruang

penyimpanan.• Ruang penyimpanan yang sudah bersih, lengkap dengan pengatur

suhu dan pengatur kelembaban.

���

D. Standar• Kentang bibit dalam kondisi baik saat tiba di ruang penyimpanan.• Kentang bibit terdistribusi merata di seluruh ruang penyimpanan.• Suhu ruang penyimpanan atau jika ada ruang khusus untuk curing

diatur 10 – 15oC dengan kelembaban 90 – 95% selama 10 – 14 hari. Pemulihan luka melalui pembentukan lapisan suberin berlangsung cepat pada suhu rendah dan kelembaban tinggi. Curing terutama sangat efektif untuk mencegah serangan Fusarium dan busuk bakteri.

E. Prosedur1. Pastikan membawa/mengantarkan 75% umbi kentang yang utuh dan

bebas memar (bruise-free potatoes) baik untuk penyimpanan jangka pendek maupun jangka panjang.

2. Cek suhu pulp (daging umbi) kentang saat masuk ke ruang penyimpanan. Suhu dijaga agar selalu pada kisaran 10°C – 15°C Usahakan saat pemanenan kentang dilakukan pada suhu kisaran tersebut.

3. Batasi tumpukan umbi kentang sekitar 75 – 85 cm untuk meminimalkan memar akibat tekanan/tumpukan. Memar akibat tertumpuk juga tergantung varietas.

4. Nyalakan kipas angin dan alat pengatur kelembaban segera setelah umbi sampai di ruang penyimpanan. Hal ini untuk menyesuaikan suhu penyimpanan umbi dengan segera.

5. Buang sisa kentang dan bahan lainnya untuk mengoptimalkan sirkulasi udara.

6. Distribusikan kentang secara merata pada ruang penyimpanan. 7. Tutup ruang penyimpanan segera setelah ruangan penuh, agar suhu

ruang tetap terjaga.8. Lakukan curing dengan cara menjaga suhu pulp antara 10 – 15°C

dengan kelembaban udara 95% selama 10 – 14 hari agar luka ringan / memar umbi menutup sempurna. RH 95% selalu dianjurkan untuk periode pemulihan luka dan untuk penyimpanan jangka pendek dan panjang.

���

9. Monitor ruang penyimpanan setiap hari. Kurangi kecepatan blower kipas angin jika suhu sudah stabil, untuk mengurangi biaya operasional.

F. Validasi/ReferensiDAWA. 2003. Western Australian Certified Seed Potato Scheme,

Incorporating the National Standard for the Certification of Seed Potatoes. Agwest Western Australian.

Janssen, D. 2002. Potatoes: Harvesting and Storing. http://lancaster.unl.eduJobling, J. 2000. Potatoes, Handle with care. Good Fruit and Vegetables

magazine Melbourne, Australia 11(4): 34 – 35. Okonkwo, J. C., C. O. Amadi, H. N. Nwokocha, J. O. William and W. I.

Okoye. 2003. Assessment of six storage methods for seed potato storage in Nigeria. Niger Agric. J. 34:91 - 96

Olsen N and P. Nolte. 2011. Cleaning and disinfecting potato equipment and storage facilities. University of Idaho extension. http://www.kimberly.uidaho.edu/potatoes/INFO.htm

Voss R. E., Davis, K. G. Baghott, M. S. Counties and H. Timm. 2004. Proper environment for potato storage. Vegetable Research and Information Center. University of California, Davis.

Yanta, J. P. and Tong, C. 2011. Commercial Postharvest Handling of Potatoes (Solanum tuberosum). Regents of the University of Minnesota. http://www.extension.umn.edu/ distribution/horticulture/DG6239.html

���

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Operasional Prosedur Nomor: 5 Tanggal:Penyimpanan kentang bibit Halaman: Revisi:

V. PENYIMPANAN KENTANG BIBITA. Definisi

Penyimpanan kentang bibit adalah kegiatan menempatkan kentang bibit pada ruang penyimpanan selama 2 -3 bulan sedemikian rupa sehingga kentang bibit tetap sehat, tidak terserang penyakit selama penyimpanan dan terjaga mutunya hingga digunakan pada musim tanam berikutnya.

B. TujuanTujuan penyimpanan adalah untuk menjaga mutu kentang bibit

sehingga dapat menjadi bibit yang baik pada musim tanam berikutnya. Suhu dan pertukaran udara merupakan 2 faktor yang sangat mempengaruhi penyimpanan kentang bibit. Untuk memaksimalkan kualitas umbi dan mencegah umbi mengkerut pada penanaman berikutnya, sangatlah penting untuk memastikan pengontrolan suhu dan sistem ventilasi.

C. Bahan dan Alat Ruang penyimpanan yang dilengkapi alat pengatur suhu dan

pengatur kelembaban.

D. Standar• Tersedia kentang bibit yang sehat, tidak banyak kerusakan mekanis

maupun serangan hama dan penyakit.

E. Prosedur• Lot benih (generasi dan varietas) dilabel dengan jelas dan akurat.• Kentang bibit ditempatkan terpisah dengan kentang produksi.• Benih dapat diberi pestisida sebelum disimpan. Misalnya

penyemprotan pestisida Curacron dengan dosis 50 cc dalam 17 liter air (utk 1 ton), Sevin dengan cara ditaburkan, 75 – 200 g per kuintal umbi.

��0

• Perlakuan lain untuk mencegah penyakit adalah dengan mencelupkan umbi dalam larutan pemutih 1% selama 2 jam. Bilas lalu keringanginkan.

• Tumpukan kentang bibit tidak melebihi 85 cm di ruang penyimpanan.

• Kentang bibit dapat disimpan dengan cara dikemas dalam peti yang terbuka atau dihamparkan (Gambar 1a dan 1b).

• Turunkan suhu ruang penyimpanan secara perlahan, kira – kira 2 – 3 derajat per minggu, hingga mencapai suhu kisaran 3 – 5°C.

• Monitor ruang penyimpanan setiap hari. Kurangi kecepatan blower kipas angin jika suhu sudah stabil, untuk mengurangi biaya operasional.

• Jika kondensasi terjadi akibat ruang penyimpanan yang terlampau dingin dan lembab, gunakan ventilator untuk memungkinkan pertukaran udara dan mencegah kondensasi.

• Kontrol perkecambahan harus dilakukan oleh petugas yang berwenang (bersertifikat). Tipe penginduksi pertumbuhan tunas dan waktu aplikasi mungkin berbeda untuk varietas yang berbeda.

• Jika kentang bibit siap digunakan, tingkatkan suhu ruang simpan menjadi sekitar 10 – 13oC beberapa hari menjelang kentang diangkut ke lapang.

Gambar 1a. Penyimpanan kentang bibit dengan kemasan, 1b. dihamparkan.

a b

���

F. Validasi/ReferensiAnonymous. 2010. Memilih kentang bibit. Kementerian Pertanian

Republik Indonesia dan ACIAR, Australia. www.indopetani.com.DAWA. 2003. Western Australian Certified Seed Potato Scheme,

Incorporating the National Standard for the Certification of Seed Potatoes. Agwest Western Australian.

Janssen, D. 2002. Potatoes: Harvesting and Storing. http://lancaster.unl.eduJobling, J. 2000. Potatoes, Handle with care. Good Fruit and Vegetables

magazine Melbourne, Australia 11(4): 34 – 35. Okonkwo, J. C., C. O. Amadi, H. N. Nwokocha, J. O. William and W. I.

Okoye. 2003. Assessment of six storage methods for seed potato storage in Nigeria. Niger Agric. J. 34:91 - 96

Olsen N and P. Nolte. 2011. Cleaning and disinfecting potato equipment and storage facilities. University of Idaho extension. http://www.kimberly.uidaho.edu/potatoes/INFO.htm

Voss R. E., Davis, K. G. Baghott, M. S. Counties and H. Timm. Proper environment for potato storage. Vegetable Research and Information Center. University of California, Davis. http://vric.ucdavis.edu/pdf/POTATOES/potato_storage.pdf. Diakses 7 Desember 2011.

Yanta, J. P. and Tong, C. 2011. Commercial Postharvest Handling of Potatoes (Solanum tuberosum L.). Regents of the University of Minnesota. http://www.extension.umn.edu/ distribution/horticulture/DG6239.html

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Operasional Prosedur Nomor: 6 Tanggal:Pemeriksaan kentang bibit di gudang penyimpanan

Halaman: Revisi:

VI. PEMERIKSAAN KENTANG BIBIT DI GUDANG PENYIMPANAN

A. DefinisiPemeriksaan umbi di gudang penyimpanan adalah kegiatan pengujian

sampel kentang bibit untuk memastikan mutu kentang bibit tetap terjaga.

���

B. TujuanTujuan pemeriksaan adalah untuk mengetahui apakah kentang bibit

mengalami kerusakan mekanis, atau terkena hama dan penyakit, sehingga selanjutnya dapat diambil tindakan pengendalian.

C. Bahan dan Alat1. Buku log book/catatan, alat tulis

D. Standar-

E. Prosedur1. Waktu pemeriksaan dilakukan setelah sortasi. 2. Dalam log book (buku catatan) catat tanggal panen, jumlah dan

kualitas umbi. 3. Pemeriksaan ulang dapat dilaksanakan dalam tempo 1 (satu) minggu

setelah pemeriksaan sebelumnya. 4. Pada saat pemeriksaan penangkar/pemohon atau yang mewakili

harus mengikuti pemeriksaan. 5. Pemeriksaan dilakukan terhadap kualitas, kemurnian varietas,

kerusakan benih. 6. Metode pemeriksaan umbi dilakukan dengan memeriksa contoh

secara acak minimal 1000 umbi dalam satu unit penangkaran (untuk tonase sampai 15 ton).

7. Untuk tonase lebih dari 15 ton gunakan rumus sebagai berikut: Y X = ------------- x 200 3dengan: X = minimal contoh Y = tonase lot (ton)

E1. Pemeriksaan Status Kesehatan a. Pemeriksaan busuk coklat dan busuk lunak. Periksa contoh umbi

yang bergejala secara ketat dan hati-hati agar tidak terlewat meskipun yang bergejala kecil.

���

b. Pemeriksaan common scab, powdery scab, black scrurf scab, late blight. Hitung meskipun infeksi ringan.

c. Pemeriksaan busuk kering. Periksa contoh umbi yang bergejala kecuali gejala ringan tidak dihitung.

d. Pemeriksaan kerusakan oleh penggerek umbi. Hitung umbi yang rusak tanpa memperhatikan ada atau tidaknya ulat penggerek umbi di dalam.

e. Pemeriksaan nematoda bintil akar. Hitung meskipun infeksi ringan kalau gejalanya jelas.

E.2. Pemeriksaan campuran verietas lain a. Pemeriksaan dilakukan secara bersamaan dengan hama dan penyakit

yang lain. b. Periksa contoh umbi apakah karakteristiknya berbeda dengan

deskripsi yang dinyatakan oleh pemulia tanaman. c. Hitung umbi yang berbeda karakteristiknya dari deskripsi.

E.3. Pemeriksaan kerusakan umbi a. Hitung contoh umbi yang rusak oleh mekanis dan serangga atau

binatang kecil. b. Kerusakan tidak dihitung bila dangkal atau ukurannya sebesar kuku

jempol.

E.4. Penghitungan hasil pemeriksaan Hasil pemeriksaan campuran varietas lain (CVL), status kesehatan

dan kerusakan umbi dinyatakan dalam % dengan menggunakan rumus sbb:

Persentase VL/infeksi penyakit/umbi rusak = Jumlah VL/umbi yang terinfeksi/umbi rusak ------------------------------------------------------------X 100 % Jumlah umbi yang diperiksa

���

E.5. Pemeriksaan ulang umbi di gudang a. dilaksanakan bila tidak lulus dengan syarat penangkar maupun

memperbaiki kondisi lot benih; b. pemeriksaan ulang hanya berlaku satu kali; c. cara pemeriksaan dan standar yang digunakan sama.

F. Validasi/ReferensiBadan Standarisasi Nasional. 2004. Benih kentang (Solanum

tuberosum L.) kelas benih dasar G2. Standar Nasional Indonesia.Badan Standarisasi Nasional. Benih kentang (Solanum tuberosum

L.) kelas benih pokok G3. Standar Nasional Indonesia.

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Operasional Prosedur Nomor: 7 Tanggal:Pengendalian hama dan penyakit selama penyimpanan

Halaman: Revisi:

VII. PENGENDALIAN HAMA DAN PENYAKIT SELAMA PENYIMPANAN

A. DefinisiKegiatan untuk mengendalikan hama dan penyakit agar kentang

bibit berada dalam kondisi optimal selama penyimpanan dan siap ditanam pada musim tanam berikutnya.

B. Tujuan Tujuan pengendalian hama dan penyakit ini adalah agar diperoleh

kentang bibit yang sehat untuk musim tanam berikutnya dan menghindari kerugian ekonomi berupa kekurangan kentang bibit dan kekurangan produksi kentang.

C. Bahan dan Alat• Pestisida (terutama fungisida, insektisida) yang terdaftar dan diijinkan

oleh Dinas Pertanian.

���

• Air• Hand sprayer atau power sprayer (alat aplikasi)• Ember dan pengaduk• Takaran (skala ml dan liter)• Alat/sarana pelindung seperti sarung tangan, masker, topi, sepatu

boot, baju lengan panjang

D. Standar• Tersedia tenaga yang terampil dalam identikasi hama dan penyakit

kentang dalam penyimpanan.• Tersedia tenaga yang terampil dalam pelaksanaan pengendalian

hama dan penyakit kentang dalam penyimpanan.• Tersedia kentang bibit yang sehat.

E. Prosedur pengujian penyakit umbi kentang1. Lakukan pengamatan pada umbi secara berkala (seminggu sekali).2. Umbi kentang hanya dapat diperlakukan setelah pengujian penyakit/

pathogen pada umbi yang diikuti dengan perhitungan/perkiraan potensi keuntungan dari tiap perlakuan yang akan dilakukan.

3. Contoh umbi mesti diambil dari stok/penyimpanan, dicuci dan diuji keberadaan tiap penyakit sebelum memberikan perlakuan yang tepat.

4. Pertimbangan juga perlu diberikan untuk jumlah kerusakan yang ada pada stok dan dipertimbangkan apakah stok cocok atau tidak untuk diberikan perlakuan.

5. Ambil 100 umbi secara acak dari setiap 20 ton stok kentang bibit. Hindari memilih umbi hanya dari tumpukan teratas kotak, karena ini tidak akan mencerminkan keadaan stok seluruhnya.

6. Cuci umbi, kenali dan identifikasi gejala serangan, jenis hama dan penyakitnya.

7. Jika silver scurf terjadi pada lebih dari 5% umbi, atau ada black scurf, fungisida perlu diberikan.

8. Tentukan teknik pengendalian hama dan penyakit. Pilih fungisida yang diterima oleh pembeli.

���

9. Skin spot, gangrene dan dry rot jarang terjadi pada awal penyimpanan.

10. Jika ditemukan busuk lembek pada stok umbi, jangan disemprot fungisida. Stok ini mesti diventilasi untuk mengeringkan busuk, kemudian dilakukan pengujian lagi untuk pemilihan pengendalian penyakit yang tepat.

Jenis hama dan penyakit yang menyerang umbi kentang dalam penyimpanan:

1. GangreneGangrene adalah busuk umbi yang disebabkan oleh jamur patogen

Phoma foveata. Ciri umum meliputi luka berwarna agak gelap, cekung pada permukaan umbi (Gambar 2). Busuk bagian dalam berwarna coklat atau hitam, dengan batas yang nyata antara jaringan yang terinfeksi dengan jaringan yang masih sehat, yang membedakannya dari penyakti busuk kering, yang (biasanya) batasnya tidak tampak jelas atau berbaur (difuse). Lubang internal kadang memperlihatkan busuk berwarna abu –abu atau kuning. Jamur yang menyerang dapat berasal dari umbi maupun tanah. Infeksi penyakti ini biasanya terjadi pada saat penanganan pascapanen, di mana memar dan luka mengakibatkan patogen masuk ke dalam umbi. Penyakit ini menyukai suhu rendah, karenanya menjadi masalah dalam penyimpanan di ruang bersuhu dingin. Penyakit ini dapat diikuti penyakit lain yaitu busuk lembek, terutama jika umbi dipindahkan dari penyimpanan suhu rendah.

Pengendalian1. Minimalisasi kerusakan pada saat panen.2. Lakukan curing untuk pemulihan luka dan pemulihan kulit umbi

sebelum penyimpanan.3. Perlakuan dengan imazalil dan/atau thiabendazole, untuk mencegah

perkembangan penyakit selama penyimpanan.

���

Gambar 2. Gangrene

1. Dry rotDry rot atau busuk kering disebabkan oleh jamur Fusarium sp. dan

Phoma sp. Jamur ini menyerang jaringan yang masuk ke umbi melalui luka pada kulit umbi. Gejala pada permukaan bisa berupa luka nekrosis berbentuk lingkaran coklat. Kulit yang terinfeksi seringkali berkerut dengan pertumbuhan jamur berbentuk cincin konsentris berwarna putih, biru atau kuning. Di bagian bawah permukaan busuknya berwarna coklat dan biasanya kering. Lubang berupa garis berisi miselia putih (Gambar 3). Umbi dengan mudah diinfeksi oleh bakteri penyebab busuk lembek. Jamur ini berada dalam tanah dan infeksi terjadi melalui luka dan kerusakan saat panen, pada saat pemilahan (grading) dan saat penanganan. Dalam ruang penyimpanan, penyakit ini tumbuh baik pada kondisi lembab dan hangat.

Gambar 3. Dry rot

���

Pengendalian1. Hindari kerusakan mekanis pada saat panen.2. Hindari menanam kentang bibit yang telah terserang penyakit.3. Lakukan dry curing untuk pemulihan kulit umbi dan pemulihan luka,

sebelum menyimpan umbi.4. Penyimpanan di ruang yang kering dan sejuk untuk mencegah

serangan penyakit.5. Beri perlakuan Imazalil dan Thiabendazole (TBZ) selama

penyimpanan untuk mencegah serangan penyakit.

3. Skin spotSkin spot atau spot kulit (Gambar 4) disebabkan oleh patogen jamur

Polyscutalum pustulans yang menimbulkan spot kecil seperti jerawat pada permukaan. Penyakit ini akan berkembang perlahan selama penyimpanan dan dapat mempengaruhi kemunculan tunas pada kentang bibit, jika bagian mata tunas terinfeksi. Penyakit ini tumbuh baik pada kondisi basah dan dingin pada ruang penyimpanan.

Pengendalian1. Tanam kentang bibit sedini mungkin.2. Tanam pada tanah yang hangat untuk mengurangi resiko gagal

bertunas.3. Dry curing segera setelah panen untuk mengurangi resiko timbulnya

spot pada kulit umbi.4. Perlakukan umbi dengan campuran Imazalil dan TBZ selama

penyimpanan.5. Pastikan kebersihan umbi saat panen, kebersihan ruang penyimpanan

dan jaga ruang penyimpanan selalu kering.

4. Silver scurfSilver scurf disebabkan oleh jamur Helminthosporium solani. Jamur

ini berada dalam tanah. Penyakit ini mengakibatkan kerusakan pada kulit umbi, menjadi tampak keperak – perakan (Gambar 5). Bagian yang terkena penyakit dapat juga mengelupas. Warna keperakan terutama tampak jelas

���

ketika bagian tersebut basah. Dapat mengakibatkan umbi mengkerut. Penyakit ini menyukai kondisi penyimpanan yang hangat dan lembab sehingga serangan penyakit mudah meningkat selama penyimpanan.

Gambar 4. Skin spot

Gambar 5. Silver scurf

Style A - Ringan(< 5% permukaan)

Style B - Sedang(±10% permukaan)

Style C – Parah(± 20% permukaan)

��0

Pengendalian1. Lakukan curing pada umbi kentang dengan cara menyimpan pada

suhu 12 – 13oC, kelembaban 95%, selama 2 – 3 minggu untuk mencegah berkembangnya penyakit silver scurf.

2. Mengontrol ruang penyimpanan, suhu sebaiknya kurang dari 5oC dan meminimalkan kondensasi untuk mencegah serangan.

3. Berikan perlakuan dengan fungisida seperti imazalil, sebelum penyimpanan dan selama penyimpanan.

4. Berikan fungisida Thiophanate-methyl dengan mancozeb, Captan dengan mancozeb, dan fludioxonil pada pertanaman kentang untuk mencegah infeksi silver scurf yang akan terbawa hingga panen dan penyimpanan.

5. Black dotBlack dot atau noda hitam disebabkan oleh jamur Collecotrichum

coccoides, menyebabkan gejala serupa silver scurf. Noda cenderung lebih coklat dibandingkan yang terjadi pada penyakit silver scurf, bentuknya lebih tidak teratur, dan diselimuti oleh spora hitam (Gambar 6). Gejala dapat menjadi lebih jelas selama penyimpanan. Penyakit ini menyukai kondisi penyimpanan yang basah, panas dan lembab.

���

Pengendalian1. Pastikan ruang penyimpanan dalam keadaan sejuk dan kering.2. Berikan perlakuan dengan imazalil atau thiabendaxole selama

penyimpanan.

Gambar 6. Black dot

Gambar 7. Bacterial soft rot/busuk lembek bakteri

1. Bacterial soft rot (busuk lembek bakteri)Busuk bakteri merupakan penyebab utama kerugian dalam

penyimpanan dan target utama pencegahan penyakit dalam penyimpanan suhu dingin. Busuk lembek selama penyimpanan terutama disebabkan oleh Pectobacterium carotovorum. Penyakit ini masuk dengan mudah melalui luka maupun lentisel. Busuk lembek menyukai kondisi lembab dan panas dalam ruang penyimpanan (Gambar 7).

Pengendalian1. Diusahakan panen kentang bibit lebih awal untuk mencegah resiko

terinfeksi busuk bakteri. Panen terlambat akan meningkatkan resiko pemanenan dalam kondisi basah, sehingga sulit mengeringkan umbi dan resiko berkembangnya penyakit busuk umbi meningkat.

���

2. Hindari kerusakan umbi saat panen.3. Alat – alat yang digunakan saat panen dan pemilahan harus bersih

dan didisinfestasi segera setelah terkena umbi yang busuk.4. Lakukan curing kering setelah panen umbi untuk penyembuhan

umbi.1. Black scurf

Black scurf (Gambar 8) yang disebabkan jamur Rhizoctonia solani adalah penyakit yang terbawa dalam bibit atau dari tanah. Jamur ini menyebabkan kanker batang yang mempengaruhi perkembangan tunas kentang di lapang. Penyakit ini bertahan pada umbi sebagai sclerotia hitam yang mengakibatkan penurunan daya jual baik untuk kentang bibit maupun kentang produksi.

Gambar 8. Black scurfPengendalian1. Beri perlakuan pada umbi dengan pencycuron, flutolanil atau

tolclofos methyl sebelum penanaman.

Style A - Ringan (< 5% permukaan)

Style B – Sedang(±10% permukaan)

Style C - Parah(± 20% permukaan)

���

8. Common Scab/Kudis (Streptomyces sp.)

Gambar 9. Common scab/kudis

9. Powdery scab/ kudis bertepung(Spongospora subterranea)

Gambar 10. Powdery scab

10. Root knot nematode / Nematode bintil akar (Meloidogyne sp.)

Gambar 11. Root knot nematode

Style A – Ringan(± 2 bercak)

Style B – Sedang(± 7 bercak)

Style C – Parah(± 20 bercak)

Style A – Ringan (± 2 bercak)

Style B – Sedang(± 7 bercak)

Style C – Parah (± 20 bercak)

Style A(Infestasi ringan)

Style B(Infestasi sedang)

Style C(Infestasi parah)

���

11. Pink rot (Phytophthora sp.)

Gambar 12. Pink rot

12. Kerusakan karena serangga – Ngengat kentang (Potato Moth)

Kerusakan pada permukaan (larva) Potongan melintang (tanda panah menunjukkan serangan larva)

Gambar 13. Kerusakan karena serangga

Style A(Permukaan umbi)

Style B(Segera setelah dipotong)

Style C(± 20 menit setelah dipotong)

Style A(Tanah sedikit menempel)

Style B(Tanah menempel sedang)

Style C(Tanah banyak menempel)

���

Ada beberapa perlakuan fungisida yang dapat diaplikasikan ketika kentang bibit masuk dan keluar dari penyimpanan, yang tentunya akan mengurangi resiko terkena penyakit. Perlakuan fungisida pada kentang bibit dapat mencegah serangan penyakit silver scurf, skin spot, dry rot, gangrene dan blank scurf/kanker batang.

Prosedur aplikasiUntuk memaksimalkan penggunaan fungisida, sangat penting untuk

mempertimbangkan waktu aplikasi yang tepat. Untuk penyakit yang berkaitan dengan kerusakan (seperti dry rot dan gangrene), perlakuan dini penting untuk mencegah perkembangan penyakit pada umbi. Fungisida yang mengurangi perkembangan silver scurf dan skin spot di ruang penyimpanan juga mesti diaplikasikan segera setelah panen.

Tabel 4. Perlakuan kentang bibit untuk mencegah perkembangan penyakit selama penyimpanan

*resisten terhadap TBZ umum terjadi tapi hany pada dry rot yang disebabkan F. sulphureumKeterangan :+++ = pengendalian baik++ = pengendalian cukup+ = pengendalian terbatas- = tidak dianjurkan* = resistensi terhadap thiabendazole umum ditemukan pada jamur ini

Produk Bahan aktif Silver

scurf

Black dot Skin spot Dry rot Gangrene Black scurf/

kanker batang

Storite Super imazalil

thiabendazole

+++ ++ +++ +++ +++ -

Fungazil 100SL imazalil +++ ++ +++ +++ +++ -

Storite excel thiabendazole ++* ++ +++* +++* +++ -

���

Mencegah Resistensi terhadap fungisidaResistensi terhadap thiabendazole (TBZ) telah terdeteksi pada

beberapa patogen seperti Helminthosporium solani (silver scurf), Polyscytalum pustulans (skin spot) and Fusarium sambucinum (formerly sulphureum). Jenis dry rot juga terdeteksi pada patogen yang kurang resisten seperti Fusarium avenaceum.

Prosedur untuk meminimalisasi resistensi terhadap fungisida:Gunakan fungisida apabila satu atau lebih hal tersebut di bawah ini

berlaku:1. Varietas yang dibudidayakan sangat rentan terhadapa penyakit

tertentu.2. Ada sejarah ketahanan terhadap penyakit tertentu di lapang.3. Terjadi tingkat serangan penyakit yang cukup signifikan pada

tanaman induk.4. Keberadaan penyakit akan sangat mempengaruhi penjualan.5. Perlakuan dengan fungisida merupakan bagian dari kontrak.6. Semua tindakan untuk mengurangi penyakit telah dilakukan.7. Strategi pengendalian yang terintegrasi harus dilakukan, jika

memungkinkan, termasuk pemanenan sedini mungkin, dry curing, kebersihan ruang simpan yang cukup, dan penyimpanan dengan suhu dingin.

8. Minimalkan penggunaan fungisida yang sama secara berulang dari tahun ke tahun selama proses perbanyakan kentang bibit.

9. Pertimbangkan penggunaan produk pengganti.10. Batasi penggunaan TBZ secara tunggal pada ruang penyimpanan.11. Jika perlakuan diperlukan pada kentang bibit, gunakan imazalil untuk

mengendalikan silver scurf dan skin spot.12. Jika segera ditanam, jangan mengaplikasikan TBZ pada kentang

bibit.

Informasi lebih lanjut tentang manajemen resistensi dapat dilihat pada Fungicide Resistance Action Group – UK’s website at http://www.pesticides.gov.uk/uploadedfiles/Web_Assets/RAGs/ FRAG_potato_tuber_diseases_2008.pdf

���

F. Validasi/ReferensiTechnical Note TN630. 2010. The Scottish Agricultural College.

West Mains Road, Edinburgh EH9 3JGFrazier M. J., Shetty, K. K., Kleinkopf, G. E. and Nolte, P. 1998.

(Helminthosporium solani) with Fungicide Seed Treatments and Storage Practices. Amer J of Potato Res 75:129-135.

AUSVEG. 2007. Australian National Standard Certification of Seed Potatoes.

STANDAR OPERASIONAL PROSEDUR

Standar Operasional Prosedur Nomor: 8 Tanggal:Induksi tunas pada kentang bibit

Halaman: Revisi:

VIII. INDUKSI TUNAS PADA KENTANG BIBITA. Definisi

Induksi tunas pada kentang bibit adalah kegiatan memperlakukan kentang bibit dengan bahan kimia atau bahan organik tertentu untuk merangsang munculnya tunas baru pada kentang bibit. Kentang memiliki masa dormansi yang berbeda untuk tiap kultivar. Dormansi juga dipengaruhi oleh suhu simpan. Mengetahui perbedaan lama dormansi tiap kultivar sangat penting untuk menentukan kapan mengaplikasikan bahan penginduksi tunas kentang.

B. Tujuan Tujuan induksi kentang bibit adalah untuk mendapatkan kentang

bibit dengan tunas yang cukup, sehat dan seragam, sehingga bibit siap ditanam di lapang.

C. Bahan dan Alat• Bahan kimia penginduksi tunas yang terdaftar dan diijinkan oleh

Dinas Pertanian.• Air.

���

• Hand sprayer atau power sprayer (alat aplikasi).• Ember dan pengaduk.• Takaran (skala ml dan liter).• Alat/sarana pelindung seperti sarung tangan, masker, topi, sepatu

boot, baju lengan panjang.

D. Standar• Tersedia tenaga yang terampil dalam pengaplikasikan bahan

penginduksi tunas.• Tersedia kentang bibit yang bertunas dan siap ditanam di lapang.

E. Prosedur 1. Perlakuan dengan bahan kimia CS2 pada dosis 10 – 20 cc /kantong

yang berisi 1 – 1.5 kuintal umbi.2. Umbi dimasukkan kantung plastik besar (Gambar 14a). 3. Kapas dicelup ke cairan CS2, segera masukkan ke kantong plastik,

tutup rapat selama 24 jam.4. Tunas muncul 1 bulan kemudian (Gambar 14b).

Gambar 14a. Umbi kentang dalam kantung plastik, b. Tunas muncul setelah perlakuan

F. Validasi/ReferensiAstarini, I. A. 1991. Pengusahaan tanaman kentang (Solanum tuberosum

L.) di Desa Batur, Kecamatan Batur, Kabupaten Banjarnegara. Laporan Keterampilan Profesi. Jurusan Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian

���

DAFTAR PUSTAKA

Accatino, P. 1966. Papa corahila libre de virus mediante cultivo de meristemas. Agric.Tec. 26:34-39.

Ambarwati, A.D., M. Herman, A. Purwito, S.M. Sumaraw and H. Aswidinnoor. 2011. Resistance evaluation on populations of crosees between transgenic potato Katahdin RB and –non-transgenik Atlantic and Granola to late blight (Phytophthora infestans in confined field trial’, Indonesian Journal Agricultural Sciences 2(1):33-39.

Ames, M. and D.A. Spooner. 2008. DNA from herbarium specimens settles a controversy about origins of the European potato. American Journal of Botany 95: 252–257.

Anderson, J.R. (2007). Agricultural Advisory Services. Background paper for the World Development Report 2008. Washington, DC: Agriculture and Rural Development Department, World Bank.

Anderson, P. 2009. Potato in global food and nutritional security. In: Pandey, S.K., J.S. Minhas, S.K. Chakrabarti (eds.). Proceedings Global Potato Conference 2008, New Delhi, India, pp. 44–49.

Anonymous. 2010. Memilih kentang bibit. Kementerian Pertanian Republik Indonesia dan ACIAR, Australia. www.indopetani.com.

Appiano, A. and Pennazio, S. 1972. Electron microscopy of potato meristem tips infected with potato virus X. J.gen. Virol. 14: 273-276.

Astarini, I. A. 1991. Pengusahaan tanaman kentang (Solanum tuberosum L.) di Desa Batur, Kecamatan Batur, Kabupaten Banjarnegara. Laporan Keterampilan Profesi. Jurusan Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian

AUSVEG. 2007. Australian National Standard Certification of Seed Potatoes.

Bailey, L. H. and E. Z. Bailey, 1976. Hortus Third: A concise dictionary of plants cultivated.

Bajaj, Y.P.S. 1981. Regeneration of plants from potato meristems freeze-preserved for 24 months. Euphytica 30: 141-145.

��0

Banttari, E.E. and Goodwin, P.H. 1985. Detection of potato viruses S, X and Y by enzymelinked immunosorbent assay on nitrocellulose membranes. Plant Dis. 69: 202-205.

Basuki, R.S., Kusmana., A. Dimyati., N. Hartuti., E. Sofiari., dan U. Jayasinghe. 2003. Evaluation of processing potato clones in Indonesia. Progress in potato and sweet potato research in Indonesia. Fuglie, Keith O. (ed): Proceedings of the CIP-Indonesia research review workshop, held in Bogor Indonesia, March 26-27, 2002. International Potato center (CIP), Bogor, Indonesia, 2003, pp. 45-61.

Basuki, R.S., Kusmana dan A. Dimyati. 2005. Analisis Daya Hasil, Mutu dan Respons Pengguna terhadap Klon 380584, TS-2, FBA-4, I-1085, dan MF-II sebagai bahan baku kripik kentang. Jurnal Hortikultura 15(3):60-70.

Beauchesne, G. 1982. Appearance of plants not true to type during in vitro plant propagation. In: Variability in Plants Regenerated from Tissue Culture (eds.) E.D. Earle and Y. Demarly, pp. 268-302 PraegerPublishers, New York U.S.A.

Beemster, A.B.R. and Rozendaal, A. 1972. Potato viruses: properties and symptoms. In: Viruses of Potatoes and Seed Potato production. (ed.) A.de Bokx, pp. 115-143. Cent. Agric. Publ.Doc. (PUDOC), Wageningen, The Netherlands.

Bhojwani, S.S. and Razdan, M.K. 1996. Plant Tissue Culture: Theory and Practice (a revised edition, 767 pp . . Elsevier, Amsterdam, The Netherlands.

Bradshaw, 2007. Potato breeding strategy. In: D. Vregdenhil (ed) Potato biology and biotechnology: Advances and perspectives, pp. 157-177. Elsevier, Oxford.

Bradshaw, J. E. and M. Bonierbale. 2010. Chapter 1: Potatoes. In. J.E. Bradshaw (ed.), Root and Tuber Crops, Handbook of Plant Breeding 7, Springer Science+Business Media, LLC.

Brown, C.R. 1993. Outcrossing rate in cultivated autotetraploid potato. American Potato Journal 70: 725–734.

���

Brown, C.R. 2005. Antioxidants in potato. American Journal of Potato Research 82: 163–172.

Brown, C.R. 2011. The contribution of traditional potato breeding to scientific potato improvement. Potato Research, 54:287-300

Brunt, A.A. 1986. Methods of producing and some benefits of growing virus-free plants. In: Healthy Planting Material: Strategies and Technologies. Monogt. 33, pp. 55-65. Brit. Crop Protect. Counc., Thornton Heath, U.K.

Burgos, G., S. Auqu and, W. Amoros. 2009a. Ascorbic acid concentration of native Andean potato varieties as affected by environment, cooking and storage. Journal of Food Composition and Analysis 22: 533–538.

Burgos, G., E. Salas and W. Amoros. 2009b. Total and individual carotenoid profiles in the Phureja group of cultivated potatoes: I. Concentrations and relationships as determined by spectrophotometry and high performance liquid chromatography (HPLC). Journal of Food Composition and Analysis 22:503–508.

Burgos, G., E. Salas and W. Amoros. 2009c. Concentration of ascorbic acid, carotenoids, total phenolics and total anthocyanins in cooked potatoes, Poster at ISTRC-2009.

Burton, W.G. 1989. The potato, 3rd edn. Longman Scientific & Technical, Harlow.

Cassel, A.C. 1987. In vitro induction of virus-free potatoes by chemotherapy. In: Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol.3. Potato .(ed.) Y.P.S. Bajaj, pp. 40-50. Springer-Verlag, Berlin, Germany.

Cassel, A.C. and Long, R.D. 1982. The elimination of potato viruses X, Y, S and M in meristem and explant cultures of potato in the presence of virazole. Potato Res. 25: 165-173.

Chakraborty, S., Chakraborty, N., and Datta, A. 2000. Increased nutritive value of transgenic potato by expressing a non-allergic seed albumin gene from Amaranthus hypochondriacus. Proc. Nat. Acad. Sci., 97, 3722-3929.

Colombarini, A. 1990. Individuazione dei virus PVS e PVM in patata e risanamento mediante coltura di meristemi, chemio- e termoterapia. Dr.degree Thesis, 65 pp. University of Bologna, Italy.

���

D’Amato, F. 1977. Cytogenetics of differentiation in tissue and cell cultures. In: Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture (eds.) J. Reinert and Y.P.S. Bajaj, pp. 343-357. Springer-Verlag, Berlin, Germany.

D’Amato, F. 1978. Chromosome number variation in cultured cells and regenerated plants. In: Frontiers of Plant Tissue Culture (ed.) T.A. Thorpe, pp. 287-295. Univ. Calgary Press, Canada.

Dale, P. J., and Hampson, K. K. 1995. An assessment of morphogenic and transformation efficiencies in a range of varieties of potato (Solanum tuberosum L.). Euphytica, 85, 101-108.

DAWA. 2003. Western Australian Certified Seed Potato Scheme, Incorporating the National Standard for the Certification of Seed Potatoes. Agwest Western Australian.

Dodds, K.S. 1962. Classification of cultivated potatoes. In: Correll, D.S. (ed.). The potato and its wild relatives. Texas Research Foundation, Renner, TX, pp. 517–539.

Dodds, K.S. 1965. The history and relationships of cultivated potatoes. In: Hutchinson JB (ed.) Essays in crop plant evolution. Cambridge University Press, Cambridge, England, pp. 123–141.

Dimyati, A. 2008. Direktorat Jenderal Hortikultura. Kementerian Pertanian Republik Indonesia. Dirjen Hortikultura 2011.

Ducreux, L. J. M., Morris, W. L., Hedley, P. E., Shepherd, T., Davies, H. V., Millam, S., and Taylor, M. A. 2005. Metabolic engineering of high carotenoid potato tubers containing enhanced levels of β-carotine and lutein. J. Exp Bot., 56, 81-89.

Duncan, D., Hammond, D., Zalewski, J., Cudnohufsky, J., Kaniewski, W., Thornton, M., Bookout, J., Lavrik, P., Rogan, G., & Feldman-Riebe, J. (2002). Field performance of transgenic potato, with resistance to Colorado Potato Beetle and viruses. HortScience, 37(2), 275-276.

El-Fiki A.I.I., El-Din T.M.N., Fawzy R.N. and Ali A.S., 1992.Tissue culture combined with thermo or chemotherapy for elimination of potato virus X (PVX). Ann. Agric.Sci., Mosthtohor 30: 179-194

Engel, F. 1970. Exploration of the Chilca canyon, Peru. Curr Anthropol 11: 55–58.

���

Englyst, H.N., S.M. Kingman and J.H. Cummings. 1992. Classification and measurement of nutritionally important starch fractions. European Journal of Clinical Nutrition 46: S33–S50.

Ezeta, F.N. 2008. An overview of potatoproduction in Asia and the Pasific region: markets, development and constraints. Proceedings of a workshop tp commemorate the international year of potato – 2008, Bangkok, Thailand May 6, 2008, Food and agriculture organization of the unitednations regionaloffice for Asia and the Pasific, pp. 11-17.

Faccioli, G. and Colombarini, A. 1990. Risanamento della patata da seme dai principali virus a mezzo coltura di meristemi ed eventuali termoterapia e chemioterapia. Agricoltura e Ricerca 115: 19-22.

Faccioli, G. and Colombarini, A. 1996. Correlation of potato virus S and virus M contents of potato meristem tips with the percentage of virus-free plantlets produced in vitro. Potato Res. 39: 129-140.

Faccioli, G. and Rubies-Autonell, C. 1982. PVX and PVY distribution in potato meristem tips and their eradication by the use of thermotherapy and meristem-tip culture. Phytopathol .z 103:66-76.

Faccioli, G., Rubies-Autonell, C. and Resca, R. 1988. Potato leafroll virus distribution in potato meristem tips and production of virus-free plants. Potato Res. 31: 511-520.

Faccioli, G. and Zoffoli, R. 1998. Fast eradication of potato virus X (PVX) and potato virus S (PVS) by chemotherapy. Phytopath. medit. 37: 9-12.

FAOSAT. 2017. http//faostat.fao.org FAOSTAT. 2015. http:/faostat.fao.org.Fairweather-Tait S. 1983. Studies on the availability of iron in potatoes. Br

Journal of Nutrion 50: 15–23.Foster Powwel, K., Holt, S. H. A., and Brand Miller, J. C. 2002. International

table of glycemic index and glycemic load value. American Journal Clinical Nutrition, 76: 5-56.

Frazier M. J., Shetty, K. K., Kleinkopf, G. E. and Nolte, P. 1998. (Helminthosporium solani) with Fungicide Seed Treatments and Storage Practices. Amer J of Potato Res 75:129-135.

���

Fridborg, G. and Eriksson, T. 1975. Effects of activated charcoal on growth and morphogenesis in cell cultures. Physiol.Plant. 34: 306-308.

Friedman, M. 1996. Nutritional value of proteins from different food sources. A review. Journal of Agricultural and Food Chemistry 44: 6–29.

Gamborg, O.L. 1984. Plant cell cultures: nutrition media. In: Cell Culture and Somatic Cell Genetics of Plants, Vol.l (ed.) I.K. Vasil, pp.18-26. Academic Press, New York, USA.

Gamborg, O.L., Murashige, T., Thorpe, T.A. and Vasil, I.K. 1976. Plant tissue culture media. In Vitro 12: 473-478.

Gaur, P. C., and Pandey, S.K. 2000. Potato improvement in sub-tropics. In: S. M. P. Khurana, G. S. Shekhawat, B. P. Singh, S. K. Pandey (eds.). Potato, Global Research and Development, I. pp, 52-63. India Potato Association, Shimla, India.

Ghislain, M., D. Andrade and F. Rodriguez. 2006. Genetic analysis of the cultivated potato Solanum tuberosum L. Phureja Group using RAPDs and nuclear SSRs. Theoretical and Applied Genetics 113:1515–1527.

Glendinning, D.R. 1976. Neo-Tuberosum: New Potato Breeding Material 4. The breeding system of Neo-Tuberosum, and the structure and composition of the Neo-Tuberosum gene pool. Potato Research 19: 27–36.

Govindakrishan, P.M. and A.J. Haverkort. 2006. Ecophysiology and agronomic management. In: Gopal, J., S.M.P. Khurana (eds.) Handbook of potato production, improvement, and postharvest management. Food Products Press, New York, NY, pp. 179–229.

Gregorini, G. and Lorenzi R. 1974. Meristem tip culture of potato plants as a medium method of improving productivity. Potato Res. 1 7:24-33.

Griffiths, H.M., Slack S.A and Dodds, J.H. 1990. Effect of chelnical and heat therapy on virus concentration in vitro potato plantlets. Can. J. Botany 68: 1515-1521.

Gunadi, N., Karjadi, A.K., dan Sirajuddin. 2014. Pertumbuhan dan Hasil Beberapa Klon Kentang Unggul Asal International Potato Center di

���

Dataran Tinggi Malino, Sulawesi Selatan (The Growth and Yields of Some Advance Potato Clones Introduced from the International Potato Center in the Highlands of Malino, South Sulawesi). J. Hort. 24(2):102-113.

Haverkort, A.J., and A. Verhagen. 2008. Climate change and its repercussions for the potato supply chain. Potato Research 51: 223–237.

Hawkes, J.G. 1990. The potato: evolution, biodiversity & genetic resources. Belhaven Press, London.

Hawkes, J. G., and Fransisco-Ortega, J. 1992. The potato in Spain during the late 16th century. Economic Botany 46: 86-97.

Hawkes J.G., and J. Francisco-Ortega. 1993. The early history of the potato in Europe. Euphytica 70:1–7.

Heller, R. 1953. Recherches sur Ia nutrition minerale des tissus vegetaux cultivees in vitro. Ann.Sci.Bot. Veg.Paris 14: 1-223.

Hijmans, R.J. 2001. Global distribution of the potato crop. Am J Potato Res 78: 403–412.

Hollings, M. 1965. Disease control through virus-free stock. Annu. Rev.Phytopathol. 3: 367-396.

Hollings, M. and Stone, O.M. 1964. Investigation of carnation viruses.l.Carnation mottle. Ann.appl.Bioll53: 103-118.

Hosaka, K. 2004. Evolutionary pathway of T-type chloroplast DNA in potato. American Journal Potato Research., 81, 153-158.

Howard, H.W. 1958. The storage of potato pollen. American Potato Journal 35: 676-678.

Huaman, Z. 1986. Botanica sistematica y morfologica de la papa. Volume 6 dari CIP. Boletin de Informacion Tecnica. CIP. Peru.

http://www.foodnetwork.com/recipes/ina-garten/garlic-roasted-potatoes-recipe

http://www.shockinglydelicious.com/baked-accordion-potato-recipe/https://cookpad.com/id/resep/674466-kentang-panggang-dengan-brokoli-

saus-kejuhttps://cookpad.com/id/resep/179512-kentang-panggang-saus-kejuhttp://www.jamieoliver.com/recipes/vegetables-recipes/potato-wedges/http://www.tasteofhome.com/recipes/bacon--n--cheese-stuffed-potatoes

���

IPCC (2007) Climate change synthesis report, 2007, URL: http://www.ipcc.ch/pdf/ assessmentreport/ar4/syr/ar4_syr.pdf

Iwama, K. 2008. Physiology of the potato: new insights into root system and repercussions for crop management. Potato Research 51: 333–353.

Jannsen, A. W. and J. G. T. Hermsen. 1976. Estimating pollen fertility in Solanum species and haploids. Euphytica 25:577-586.

Janssen, D. 2002. Potatoes: Harvesting and Storing. http://lancaster.unl.eduJansky, S. 2006. Overcoming hybridization barriers in potato. Plant

Breeding 125: 1-12.Jin, L. P., Qu, D. Y., Xie, K. Y., Bian, C. S., and Duan, S. G. 2004. Potato

germplasm, breeding studies in China. In “Proceedings of the Fifth World Potato Congress” (pp. 175-178). Kunming, China.

Jobling, J. 2000. Potatoes, Handle with care. Good Fruit and Vegetables magazine Melbourne, Australia 11(4): 34 – 35.

Johnston, S. A., der Nijs, T. P. M., Peloquin, S. J., and Hanneman, R. E. Jr. 1980. The significance of genic balance to endosperm development in interspesific crosses. Theoretical and Applied Genetics 57: 5-9.

Jones, A.D. and Mullin, J.M. 1974. The effect of potato virus X on susceptibility of potato tubers to Fusarium roseum “Avenacearum “. Amer.Potato J. 51: 200-215.

Kassanis B. 1957. The use of tissue culture to produce virus-free clones from infected potato varieties. Ann. appl. Biol. 45: 422-427.

Kassanis, B. 1965. Therapy of virus infected plants. J.R. Agric.Soc.Engl. 126: 105-114.

Kassanis, B. and Varma, A. 1967. The production of virus-free clones of some British potato varieties. Ann.app.Biol. 59: 447-450.

Kevers, C., Coumans, M., Coumans-Gilles, M.F. and Gaspar, Th. 1984. Physiological and biochemical events leading to vitrification of plants in vitro. Physiol.Plant. 61: 69-74.

Kirkman, M.A. 2007. Global markets for processed potato products. In: Vreugdenhil, D. (ed.) Potato biology and biotechnology advances and perspectives. Elsevier, Oxford, pp. 27–44.

Klein, R.E. and Livingston, C.H. 1982. Eradication of potato virus X from potato by ribavirin treatment of cultured potato shoot tips. Amer.Potato J. 59: 359-365.

���

Klein, R.E. and Livingston, C.H. 1983. Eradication of potato viruses X and S from potato shoot- tip cultures with ribavirin. Phytopathology 73: 1049-1050.

Kusmana dan R.S. Basuki. 2004. Produksi dan mutu umbi klon kentang dan kesesuaiannya sebagai bahan baku kentang goreng dan kripik kentang. Journal Hortikultura14(4):246-252.

Kusmana, 2018. Usulan pendaftaran varietas kentang Spudy Agrihorti. Balai Penelitian Tanaman Sayuran, Pusat Penelitian dan Pengembangan Hortikultura: Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian Kementerian Pertanian.

Larkin, P.J. and Scowcroft, W.R. 1981. Somaclonal variation, a novel source of variability from cell cultures for plant improvement. Theor.App/.Genet. 60: 197-214.

Letouze, R. and Beauchesne, G. 1969. Action d ‘ eclairements monochromatiques sur Ia rhizogenese de tissue topinambour. C.R.Acad.Sci. Paris, 269: 1528-1531.

Li, P.H., 1977. Frost killing temperatures of 60 tuber-bearing Solanum species. Amer Potato J 54: 452–456

Li X-Q, M.G. Scanlon, and Q. Liu. 2006. Processing and value addition. In: Gopal J, Khurana, S.M.P. (eds.) Handbook of potato production, improvement, and postharvest management. Food Products Press, New York, NY, pp. 523–555.

Lizarraga, R.E., Salazar, L.F., Roca, W.M.T. and Schilde-Reutschler, L. 1980. Elimination of potato spindle tuber viroid by low temperature and meristem culture. Phytopathology 70: 754-755.

Love, S.I., A.Thompson-Johns, T. Bake. 1993. Mutation breeding for resistance to black spot bruise and low temperature sweetening in potato cultivar Lehme Russet. Euphytica 70: 69-74.

MacDonald, D.M. 1973. Heat treatment and meristem culture as a means of freeing potato varieties from viruses X and S. Potato Res. 16: 263-269.

Mackay, G.R. 1996. An agenda for future potato research. Potato Research 39: 387–394.

���

Maene, L.J. and Debergh, P.C. 1985. Liquid medium additions to established tissue cultures to improve elongation and rooting in vivo. Plant Cell Tissue Org. Cult. 5: 23-33.

Marani, F. and Pisi. 1977. A meristem-tip culture and vegetative propagation in potato. Acta Hort. 78: 415-424.

Margara, J. 1982. Bases de Ia multiplication vegetative. Les Meristemes et l’Organogenese,262 pp. INRA, Paris.

Martin-Tanguy, J. 1985. The occurrence and possible function of hydroxycinnamoyl acid arnides in plants. Plant Growth Regul. 3: 381-399.

Mattila, P. and J. Hellstrom. 2006. Phenolic acids in potto, vegetables and some of their products. Journal of Food Composition and Analysis 20: 152 – 160

McGregor, I. 2007. The fresh potato market. In: Vreugdenhil D (ed.) Potato biology and biotechnology advances and perspectives. Elsevier, Oxford, pp. 3–26.

Mellor, F.C. and Stace-Smith, R. 1969. Development of excised buds in nutrient medium. Can.J. Bot. 47: 1617-1621.

Mellor, F.C. and Stace-Sinith R. 1970. Virus strain differences in eradication of potato virus X and S. Phytopathology 60: 1587-1590.

Mellor, F.C. and Stace-Sinith, R. 1977. Virus-free potatoes by tissue culture. In: Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture (eds.) J. Reinert, and Y.P.S. Bajaj, pp.616-635. Springer-Verlag, Berlin, Germany.

Miller, J.C. 2014. Komunikasi pribadi. Department of Horticulture, Texas A&M Unversity, USA.

Mitchell, D.J., Powell, P.J. and Rose, D.O. 1990. Squash blot, a novel device for sampling plant viruses. (Abstr.) Potato Res. 33: 144-145.

Morel, G. 1948. Recherches sur Ia culture associee de parasities obligatoires et de tissus vegetaux. Ann.Epiphyt. 1: 123-234.

Morel, G. and Martin, 1955 Guerison de pomrnes de terre atteints de maladies a virus. C.R. Acad.Agr. Fr. 41:472-475.

Morel, G., Martin, C. and Muller, J.F. 1968. La guerison des pomrnes de terre atteints de maladies a virus. Ann.physiol. Veg. 10: 113-119.

���

Mori, K. and Hosokawa, D. 1977. Localization of viruses in apical meristems and production of virus-free plants by means of meristem and tissue culture. Acta Hart. 78: 389-396.

Moskovets, S.N., Gorbarenko, N.I. and Zhuk, J.P. 1973. The use of the method of the culture of apical meristems in the combination with low temperature for the sanitation of potato against mosaic virus. Sel-skokhozyaiastvennaya Bioi. 8: 271-275.

Muller, K.O.L. and Munro, J. 1951. The reaction of virus infected potato plants to Phytophthora infestans. Ann.appl.Biol. 38: 765-773.

Munoz F, Plaisted R (1981) Yield and combining abilities in Andigena potatoes after six cycles of recurrent phenotypic selection for adaptation to long day conditions. American Journal of Potato Research 58:469–479.

Murashige, T. 1974. Plant propagation through tissue cultures. Annu.Rev.Plant Physiol. 25:135-166.

Murashige, T. 1977. Manipulation of organ initiation in plants tissue cultures. Bot. Bull. Acad. Sin. 18: 1-24.

Murashige, T. and Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol.Plant. 15: 473-497.

Naidu, K.A. 2003. Vitamin C in human health and disease is still a mystery? An overview. Nutrional Journal 2: 7–16.

Okonkwo, J. C., C. O. Amadi, H. N. Nwokocha, J. O. William and W. I. Okoye. 2003. Assessment of six storage methods for seed potato storage in Nigeria. Niger Agric. J. 34:91 - 96

Olsen N and P. Nolte. 2011. Cleaning and disinfecting potato equipment and storage facilities. University of Idaho extension. http://www.kimberly.uidaho.edu/potatoes/INFO.htm

Ooms, G., Bossen, M. E., Burrell, M. M., and Carp, A. 1986. Genetic manipulation in potato with Agrobacterium rhizogenes. Potato Research., 29, 367-379.

Ortiz, R. 2001. The state of the use of potato genetic diversity. In: H. D. Cooper, C. Spillane, T. Hodgkin (Eds.). broadening the genetic base of crop production (pp. 181-200). CAB International, Wallingford.

��0

Pandery, S.K., and S.K. Kaushik. 2003. Origin, evolution, history and spread of potato. In: Khurana S.M.P., J.S. Minhas, S.K. Pandey (eds.) The potato – production and utilization in sub-tropics. Mehta Publishers, New Delhi, pp. 15–24.

Peloquin, S. J., and Hougas, R. W. 1959. Decapication and genetic markers as related to haploidy in Solanum tuberosum. European potato journal, 2, 176-183.

Peloquin, J. S., Gabert, A. C., and Ortiz, R. 1996. Nature of pollinator effect in potato (Solanum tuberosum L.) haploid production. Annals of Botany, 77, 539-542.

Pennazio, S. and Redolfi, P. 1973. Factors affecting the culture in vitro of potato meristem tips. Potato Res. 16: 20-29.

Pennazio, S. and Vecchiati M. 1978. Sulla posssibilita di ottenere elevate rese di piantine per coltura in vitro di apici meristematici. Riv. Ortoflorofrutt. !tal., 58: 456-460.

Plissey, E.S. and Wilfred H. Erhardt. University of Maine Cooperative Extension Potato Specialist and University of Maine Cooperative Extension Vegetable Specialist

Pierik, R.L.M. 1987. In Vitro Culture of Higher Plants, 321 pp. Martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht, Netherlands. Quak, F. 1965. Infection of tobacco-callus tissue with tobacco mosaic virus and multiplication of virus in such tissue. Proc.lnt.ConfPlant Tissue Culture, pp. 513-519. Berkeley, USA.

Pitojo, S. 2004. Benih Kentang. Yogyakarta: KanisiusPrahardini, P.E.R. 2015. Teknologi produksi benih penjenis kentang G0

varietas Granola Kembang. Balai Pengkajian Teknologi Pertanian Jawa Timur, 100 inovasi pertanian spesifik lokasi. http://cybex.deptan.go.id/penyuluhan/teknologi-produksi-benih-penjenis-kentang-g0 -varietas-granola-kembang

Quak, F. 1977. Meristem culture and virus-free plants. In: Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture (eds.) J. Reinert and Y.P.S. Bajaj, pp. 598-615. Springer-Verlag, Berlin, Germany.

���

Raker, C.M. and D.M. Spooner. 2002. Chilean tetraploid cultivated potato, Solanum tuberosum, is distinct from the Andean populations: microsatellite data. Crop Science 42: 1451–1458.

Reader, J. 2008. Propitious esculent. William Heinemann, London.Rios D., M. Ghislain and F. Rodriguez. 2007. What is the origin of the

European potato? Evidence from Canary Island landraces. Crop Science 47: 1271–1280.

Roca, W.M., Espinoza, N.O., Roca, M.R. and Bryan, J.E. 1978. A tissue culture method for the rapid propagation of potatoes. Amer Potato J. 55: 691-701.

Ross, A.F. 1961. Systemic acquired resistance induced by localized virus-infections in plants. Virology 14: 340-358.

Rubies-Autonell, C., Faccioli, G. and Colombarini, A. 1990. Detection of PVM in potato meristem tips and preliminary results on its eradication. (Abstr.) Potato Res. 33: 142.

Rubies-Autonell, C., Resca, R., Faccioli, G. and Colombarini, A. 1987. PVS and PYX rapid detection in potato meristem tips and of thermo- and chemotherapy. (Abstr) Proc.7th Congress Medit. Phytopathol. Union, Granada, Spain: 78-80.

Rukmana R. 2002. Usaha Tani Kentang Sistem Mulsa Plastik. Kanisius. Yogyakarta.

Samadi, B. 2007. Kentang dan Analisis Usaha Tani. Yogyakarta (ID): Kanisius.

Sanchez, G.E, Slack, S.A. and Dodds, J.H. 1991. Response of selected Solanum species to virus eradications. Amer. Potato J. 68: 299-315.

Schuster, G. 1982. Antiphytovirale Verbindungen mit Guanidinstruktur. Phytopathol.Z. 103: 77-86.

Schuster, G. 1988. Synthetic antiphytoviral substances. Appl. Virology Res. 1: 265-283.

Scurrah, M., C. Celis-Gamboa., and S. Chumbiauca. 2008. Hybridization between wild and cultivated potato species in the Peruvian Andes and biosafety implications for deployment of GM potatoes. Euphytica 164: 881–892.

���

Setiadi. 2009. Budidaya Kentang. Penebar Swadaya Press. Jakarta.Sheridan, W.F. 1975. Plant regeneration and chromosome stability in tissue

culture. In: Genetic Manipulation with Plant Material. (ed). L. Ledoux, pp. 263-295 .. Plenum Press, London, UK.

Shetty, K. 2011. Potato storage disinfection and sanitation. University of Idaho, Extension Potato Specialist.

Simmonds, N.W. 1997. A review of potato propagation by means of seed, as distinct from clonal propagation tubers. Potato Research., 40, 191-214.

Sip, V. 1972. Eradication of potato viruses A and S. Potato Res. 15: 270-273.

Skoog, F. and Miller, C.O. 1957. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro. Symp.Soc.Exp.Biol. 11: 118

Smith, R.H. and Murashige, T. 1970. In vitro development of isolated shoot apical meristems of angiosperms. Amer.J.Bot. 57: 562-568.

Spooner, D. M., McLean, K., Ramsay, G., Waugh, R., and Bryan, G. J. 2005a. A singe domestication for potato based on multilocus amplified fragment length polymorphism genotyping. Proc. Nat. Acad. Sci, 102, 14694-14699.

Spooner, D.M and A. Salas. 2006. Structure, biosystematics, and genetic resources. In: Gopal J and S.M.P. Khurana (eds.) Handbook of potato production, improvement, and postharvest management. Food Products Press, New York, NY, pp. 1–39.

Spooner, D.M., J. Nunez, G. Trujillo. 2007. Extensive simple sequence repeat genotyping of potato landraces supports a major re-evaluation of their gene pool structure and classification. Proc Natl Acad Sci 104: 19398–19404.

Spooner, D. M. and Knapp, S. 2013. Solanum tuberosum. [12 December 2014].

Stace-Smith, R. and Mellor, F.C. 1968. Eradication of potato viruses X and S by thermotherapy and axillary bud culture. Phytopathology 58: 199-203.

���

Stace-Smith, R. and Mellor,F. 1970. Eradication of potato spindle tuber virus by thermotherapy and axillary bud culture. Phytopathology 60: 1857-1858.

Stallknecht, G.G. and Farnsworth, 1982. General characteristics of Cumarin-induced tuberization of axillary shoots of Solanum tuberosum L. cultured in vitro. Amer. Potato J.59: 17-32.

Storey, M. 2007. The harvested crop.In: Vreugdenhil, D. (ed.) Potato biology and biotechnology advances and perspectives. Elsevier, Oxford, pp. 441–470.

Struik, P.C., W.J.M. Lommen, and A.J. Haverkort. 2007. The canon of potato science. Potato Research 50:205–417.

Styer, D.J. and Chin, C.K. 1983. Meristem and shoot-tip culture for propagation, pathogen elimination and germplasm preservation. Hortic. Rev. 5: 221-277. Sunderland, N. 1977. Nuclear cytology. In: Plant Tissue and Cell Culture. (ed.) H.E. Street, pp. 177-205. Blackwell Scientific Publishers, Oxford, UK.

Sukhotu, T. and K. Hosaka. 2006. Origin and evolution of Andigena potatoes revealed by chloroplast and nuclear DNA markers. Genome 49: 636–647.

Suwarno, W. B. 2000. Sistem Perbenihan Kentang di Indonesia. http://www.situshijau.co.id Dipublikasi kembali di tanggal 15 Maret 2008.

Technical Note TN630. 2010. The Scottish Agricultural College. West Mains Road, Edinburgh EH9 3JG.

Thieme, T., and Thieme, R. 2005. Resistance to viruses. In: M. K. Razdan, A. K. Matto (Eds.), Genetic improvement of Sonanaceous crops volume I: Potato (pp, 293-337). Science Publishers, Inc., Enfield.

Thomas, D.D.S. and Murashige, T. 1979. Volatile emissions of plant tissue cultures. I. Identification of the major components. In Vitro 15: 654-658. Wang,P. and Hu C.,l980. Regeneration of virus-free plants through in vitro culture. In: Advances in Biochemical Engineering. (ed.) A. Fletcher) Vol. 18, Plant Cell Culture II, pp.61-69 .Springer-Verlag, Berlin, Germany.

���

Treadway, R.H. 1959. Potato starch. In: Talburt, W.F. and O. Smith (eds.) Potato processing. The Avi Publishing Company, Inc, Westport, CT, pp. 374–389.

Ugent, D., T. Dillehay and C. Ramirez. 1987. Potato remains from a late Pleistocene settlement in south central Chile. Economical Botany 4: 17–27.

Ummah, K. dan A. Purwito. 2009. Budidaya tanaman kentang (solanum tuberosum l.) dengan aspek khusus pembibitan di Hikmah Farm, Pangalengan, Bandung, Jawa Barat. Makalah Seminar Departemen Agronomi Dan Hortikultura Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor.

Utami, G.R., M.S. Rahayu, dan A. Setiawan. 2015. Penanganan budidaya kentang (Solanum tuberosum L.) di Bandung, Jawa Barat. Buletin Agrohorti, 3(1): 105-109.

Veileux, R. E. 2005. Cell and tissue culture of potato (Solanaceae). In: M. K. Razdan, A. K. Matto (Eds.), Genetic improvement of Sonanaceous crops volume I: Potato (pp, 185-208). Science Publishers, Inc., Enfield.

Voss R. E., Davis, K. G. Baghott, M. S. Counties and H. Timm. Proper environment for potato storage. Vegetable Research and Information Center. University of California, Davis. http://vric.ucdavis.edu/pdf/POTATOES/potato_storage.pdf. Diakses 7 Desember 2011.

Wang, P. and Hu, 1982. In vitro mass tuberization and virus-free seed potato production in Taiwan. Amer. Potato J. 59: 33-37.

Wang, Q. C., B. Panis, F. Engelmann, M. Lambardi and J.P.T. Valkonen. 2008. Cryotherapy of shoot tips: a technique for pathogen eradication to produce healthy planting materials and prepare healthy plant genetic resources for cryopreservation. Annals of Applied Biology, 154:351–363.

Wang, B., J.W. Li, Z.B, Zhang, R.R. Wang, Y.L. Ma, D.R. Blystad, E.R.J. Keller, and Q.C. Wang. 2014. Three vitrification-based cryopreservation procedures cause differentcryo-injuries to potato shoot tips while all maintain genetic integrityin regenerants. Journal of Biotechnology, 184:47–55.

���

Wattimena, G.A. 2000. Pengembangan propagul kentang bermutu dan kultivar kentang unggul dalam mendukung peningkatan produksi kentang di Indonesia. Orasi ilmiah guru besar tetap ilmu hortikultura. Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor.

Westcott, R.J., Henshaw, G.G. and Roca, W.M. 1977. Tissue culture storage of potato germplasm: culture initiation and plant regeneration. Plant Sci. Letters 9: 309-315.

Wheeler, R.M. 2009. Potatoes for human life support in space. In: Singh J and L. Kaur (eds.) Advances in potato chemistry and technology. Academic Press, Burlington, VT, pp. 465–495.

White, P.R., 1934. Multiplication of the viruses of tobacco and aucuba mosaic in growing exiced tomato roots. Phytopathology 24: 1003-1011.

White, P.R. 1943. A Handbook of Plant Tissue Culture, 227 pp. J.Cattel Press, Lancaster, PA, USA.

Wu, J.H., Hildebrandt, A.C. and Riker, A.J. 1960. Virus-host relationships in plant tissue culture. Phytopathology 50: 587-594.

Yanta, J. P. and Tong, C. 2011. Commercial Postharvest Handling of Potatoes (Solanum tuberosum). Regents of the University of Minnesota. http://www.extension.umn.edu/ distribution/horticulture/DG6239.html

Zadoks, J.C. 2008. The potato murrain on the European continent and the revolutions of 1848. Potato Research 51: 5–45.

���

BIODATA PENULIS

IDa ayU asTaRINIdilahirkandidenpasar,menyelesaikanpendidikansekolahmenengahdi SMa 1 denpasar, kemudian melanjutkanstudi di Jurusan Budidaya Pertanian, InstitutPertanian Bogor dan lulus pada tahun 1991.Penulis diterima sebagai dosen di JurusanBiologipadatahun1993.Selanjutnyapadatahun1994, penulis melanjutkan jenjang pendidikan

S2ditheUniversityofWesternaustralia,PerthpadabidangKulturJaringan tanaman dan Pemuliaan tanaman Hortikultura yangdiselesaikan pada tahun 1997. tahun 2002, Penulis mengambilProgram S3 di Universitas yang sama dan berhasil menamatkanpendidikan tahun 2006. Pada bulan Juni – November 2014, Penulis memperoleh beasiswa Fulbright dari USaId untuk melakukanposdoktoralrisetpadabidangkulturjaringankentang.tahun2010- 2014 Penulis menjabat sebagai Sekretaris pada Program Magister Biologi, Desember 2014 - Desember 2017 menjabat sebagai Ketua ProgramMagisterBiologidansejak2Januari2018menjabatsebagaiWakil direktur I Pascasarjana Universitas Udayana, membidangiPerencanaan,akademikdanKemahasiswaan.

���

I GEDE RAI MAYA TEMAJA, dilahirkan di Badung 9 Oktober 1962, adalah Guru Besar Fakultas Pertanian Universitas Udayana, menamatkan Magister Pertanian (MP), Fitopatologi, Universitas Gadjah Mada, lulus tahun 1994, dan Doktor (Dr), Fitopatologi, Insitut Pertanian Bogor, lulus tahun 2008. Kini menjabat Ketua Lembaga Penelitian dan Pengabdian Kepada Masyarakat

Unud (2017-sekarang), Anggota International Society for Southeast Asian Agricultural Sciences (ISSAAS) (2000-sekarang), Anggota Perhimpunan Fitopatologi Indonesia (PFI) (1989-sekarang), Anggota Perhimpunan Entomologi Indonesia (PEI) (1989-sekarang), Anggota Perhimpunan Mikologi Indonesia (MIKOINA) (2015-sekarang), Ketua Perhimpunan Mikologi Indonesia (MIKOINA) cabang Bali (2015-sekarang), Anggota Perhimpunan Agroekoteknologi Indonesia (PAGI) (2016-sekarang). Sebelumnya, menjabat sebagai Sekretaris Lab.Mikologi, Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan FP Unud (2003 – 2009), Bendahara Kebun Percobaan Fak.Pertanian Unud (2009 – 2010), dan Sekretaris Lab.Penyakit Tumbuhan Jurusan Agroekoteknologi Fak.Pertanian Unud (2009-2015).

���

KUSMANA dilahirkan di Bandung, menyelesaikan studi S1 di Universitas Bandung Raya. Penulis merupakan peneliti madya dengan bidang keahlian Genetika dan Pemuliaan Tanaman di Balai Penelitian Tanaman Sayuran, Lembang. Dengan pengalaman dan keahlian yang dimiliki, penulis telah mengantongi lisensi perakitan beberapa Varietas Unggul Baru kentang.

DEBORA MARGARETH lahir di Bitung, 12 Maret 1990, menyelesaikan pendidikan sekolah menengah di SMA N 1 Negara. Pendidikan S1 diselesaikan penulis tahun 2013 pada Program Studi Pendidikan Biologi di Universitas Palangkaraya. Penulis melanjutkan pendidikannya di Program Studi Ilmu Biologi Universitas Udayana untuk meraih gelar Master, dan lulus pada tahun 2017.

Selepas menyandang gelar Master, penulis menjadi asisten peneliti dan membantu proyek penelitian dengan topik kentang hingga saat ini.