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PROGRAM PENGABDIAN KEPADA MASYARAKAT PROGRAM STUDI MANAJEMEN LINGKUNGAN DI BANTARAN SUNGAI CITARUM Sesuai dengan komitmen perguruan tinggi dalam progran penanggulaan dan pencemaran Sungai Citarum, Program Studi Magister Manajemen Lingkungan Universitas Pakuan menyelenggarakan Program Pengabdian Kepada Masyarakat (PKM) di bantaran Sungai Citarum di anak sungai Cikao Jatiluhur, Kabupaten Purwakarta. Program yang dilaksanakan selama 8 16 Desember 2018 dibuka secara langsung oleh Dr. Bibin Rubini, Rektor Universitas Pakuan. Program terdiri dari Penanaman Pohon secara massal, Pendidikan Lingkungan, dan infrastruktur penyediaan air bersih. Kegiatan ini juga merupakan kerjasama antara pihak antara lain, Kodim 0619 Purwakarta, PT. Berkah Alzico Antalatika, dan Pemerintah Daerah Kabupaten Purwakarta, Kecamatan Jatiluhur. Seluruh rangkaian kegiatan PKM penanaman pohon dimulai oleh survey dengan bertemu para tokoh masyarakat di Kelurahan Cisalada dan Kelurahan Parakanlima pada tanggal 30 November 2018. Pada kegiatan tersebut dihadiri oleh Prodi Manajemen Lingkungan, Camat Jatiluhur, Kepala Desa Cisalada, Wakil Kodim 0619, dan Babinsa. Hal-hal yang didiskusikan antara lain tata laksana penanaman, waktu dan lokasi penanaman, dan keterlibatan masyarakat. Prodi Manajemen Lingkungan di wakili oleh Dr. Yossa Istiadi, Dr. Natalis Situmorang, dan mahasiswa angkatan 2017 Anang Wisnu. Akhirnya disepakati penanaman berada di area kawasan Cikao yang memiliki kondisi lahan yang belum terkelola dan gundul, serta keberadaan sumber air bersih bagi warga. Penanaman berada di luas area 1 hektar terdiri dari tanaman buah, tanaman keras, dan tanaman pelindung. Tumbuhan tersebut adalah Pohon Sirsak, Jambu Biji, Mahoni, Gmelina, dan Trembesi.
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Oct 27, 2020

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Explora(on de l’hémostase 

Xavier DELABRANCHE, MD Service de Réanima(on Médicale 

Nouvel Hôpital Civil 

Les Hôpitaux Universitaires de STRASBOURG 

Les Hôpitaux Universitaires de STRASBOURG

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•  Physiologie •  Anticoagulants

•  Exploration de l’hémostase –  Généralités –  Les analyses

•  Plaquettes •  Temps de coagulation •  Analyses dynamiques

–  Exploration en fonction de l’anticoagulant

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Qu’est-ce que l’hémostase ?

•  C’est un ensemble d’interactions cellulaires et moléculaires visant à –  Maintenir la fluidité du sang –  Prévenir le saignement –  Permettre l’arrêt d’un saignement –  Restaurer l’intégrité du vaisseau lésé

•  Ces mécanismes sont impliqués dans –  L’embryogenèse –  La lutte contre les « pathogènes » –  L’intégrité du réseau vasculaire et l’angiogénèse

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De quoi dépend l’hémostase ? •  Des conditions de flux

–  Pression intravasculaire –  Flux laminaire / turbulent –  Viscosité (hématocrite, protidémie)

•  D’une surface catalytique (PhtdSer) –  Cellules activées (plaquettes, C. endothéliales, monocytes) –  Microparticules circulantes

•  D’un équilibre entre pro- et anti-coagulants Anti

Pro

Procoagulant

Anti Pro

Pas d’effet

Anti

Pro

Anticoagulant

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Hétérogénéité vasculaire

•  Régulation régionale de l’hémostase –  Cellules endothéliales –  Conditions de flux –  Micro-environnement

•  Diversité des manifestations cliniques –  Hémorragiques

•  Hémophilie : articulations, muscles •  Maladie de Willebrand : gingivorragies, métrorragies

–  Thrombotiques •  Déficit en PC : purpura •  MTHFR + homocystéinémie : infarctus du myocarde (?)

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Lésion endothéliale ULvWF GPIbα-IX-V GPIIb-IIIa (αIIbβ3) FT Fibrinogène

Expression FT et PhtdSer

Expression vWF et adhésines

• • • • • • • • • •

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Activation plaquettaire

ULvWF GPIbα-IX-V GPIIb-IIIa FT Fibrinogène vWF ADAMST13

FVII FVIIa FXa FIIa

FX FII

Adhésion

Activation -  outside-in -  inside-out

Agrégation X

• • • • • • • • • • • • • • • • • • • •

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Thrombinoformation

FVII FVIIa FXa FIIa

FX FII

FV / FVIII

FVa / FVIIIa

ULvWF GPIbα-IX-V GPIIb-IIIa (αIIbβ3) FT Fibrinogène

Activation des cofacteurs FV et FVIII

Activation de FVII et génération de thrombine

• • • • • • • • • • • • • • • • • • • •

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Régulation par le TFPI

FVa / FVIIIa

FXa•PS TFPI Complexe TFPI•FXa •PS pouvant lier FT et FVII

FXa X FVII

FXa•PS

FXa

Inhibition de la voie du FT

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10 10

Thrombinoformation « explosive »

FXIa FIXa•FVIIIa

FXa•FVa FII

FIIa FIX

FX Activation de FXI par FIIa

FXI

Amplification

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Fibrinoformation Monomère fibrine FXIII FXIIIa Fibrine

FIIa

FIIa Formation du gel de fibrine

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12 12

Régulation par la protéine C EPCR (récepteur endothélial de PC) Thrombomoduline (TM)

FXIa FIXa•FVIIIa

FIIa FIX

FX PC FIIa

X

Arrêt de la génération de thrombine

APC•PS

FXa•FVa

FVai

X Inhibition de FVa

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Focalisation par l’antithrombine

(*) : effet potentialisé par l’héparine (HNF et HBPM)

FXI FVIIIa

FVa

FIIa FIIa

FIIa

GAG Antithrombine (AT) FIIai

Complexe Thrombine-AntiThrombine (TAT)

FIIai

Inactivation de la thrombine libre (*)

Arrêt de la génération de thrombine

X

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•  Physiologie •  Anticoagulants •  Exploration de l’hémostase

–  Généralités –  Les analyses

•  Plaquettes •  Temps de coagulation •  Analyses dynamiques

–  Exploration en fonction de l’anticoagulant

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Anti-thrombotique idéal •  Définition

–  Effet prévisible : pas de surveillance –  Effet sélectif : pas d’interférence –  Administrable per os –  Pas d’action anti-hémostatique –  Réversible

•  Utopie ? –  Les « anciens » : héparines, AVK, hirudine –  Les « nouveaux » : IDT « -atran », anti-Xa « -aban » –  Les « inhibiteurs » : TFPI, AT, rhPCa, sTM –  Les « futurs » : anti-XII(a)

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Anti-plaquettaires

•  Définition –  Inhibition de l’activation plaquettaire –  Inhibition de l’agrégation plaquettaire

•  Classification –  Antithrombiniques (HNF, HBPM, etc.) –  Inhibiteurs de COX : Aspirine, AINS –  Inhibiteurs de P2Y12

•  Clopidogrel (Plavix®) •  Prasugrel (Efient®)

–  Anti-GPIIb-IIIa •  Abciximab (RéoPro®) •  Eptifibatide (Integrilin®)

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Activation plaquettaire

FVII FVIIa FXa FIIa

FX FII

X

ULvWF GPIbα-IX-V GPIIb-IIIa FT Fibrinogène vWF ADAMST13

Adhésion

Activation -  outside-in -  inside-out

Agrégation

• • • • • • • • • • • • • • • • • • • •

X X X

HNF, HBPM Aspirine Anti-P2Y12

Anti-GPIIbIIIa

AVK

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Anti-IIa / anti-Xa indirects

•  Définition –  Médicaments inhibant FIIa/FXa en renforçant l’action

physiologique de l’AT –  Inactifs en l’absence d’AT !

•  Classification –  Héparine non fractionnée (HNF) –  Héparines de bas poids moléculaires (HBPM) –  Héparanoïdes

•  Danaparoïde sodique (Orgaran®)

–  Pentasaccharide •  Fondaparinux (Arixtra®)

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Xa

IIa

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Anti-Xa directs

•  Définition –  Médicaments inhibant FXa –  Action indépendante de l’antithrombine

•  Classification –  Rivaroxaban (Xarelto®)

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Anti-IIa directs

•  Définition –  Inhibiteur direct et réversible de FIIa liée et libre

•  Classification –  Analogues de l’hirudine

•  Lépirudine (Refludan®) •  Bivalirudine (Angiox®) •  Desirudine (Revasc®)

–  Argatroban (Arganova®) –  Dabigatran (Pradaxa®)

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Anti-vitamine K (AVK)

•  Définition –  Inhibiteurs de VKORC1 : vitamin K epoxide reductase –  Protéines circulantes (PIVKA) non γ-carboxylées

•  FII, FVII, FIX, FX •  PC, PS, (Gas-6), PZ

–  Pas de liaison à PhtdSer (fixation Ca2+)

•  Classes thérapeutiques –  Dérivés de la coumarine

•  Acénocoumarol (Sintrom®) –  Dérivés de l’indione

•  Fluindione (Préviscan®)

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Le paradoxe des AVK

•  Diminution de l’activité pro- et anti-coagulante •  Variable dans le temps

–  Initiation : PC (7h) < FII (48h) excès de FII procoagulant

–  Équilibre : PC = FII limitation mais non inhibition !

–  Déficit en PC et surdosage PC ≈ 0 % purpura fulminans

–  RPCA = augmentation « compensatrice » de PC aggravation du risque thrombotique (↓ PC, PS)

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Thrombinoformation ULvWF GPIbα-IX-V GPIIb-IIIa (αIIbβ3) FT Fibrinogène

FVII FVIIa FXa FIIa

FX FII

FV / FVIII

FVa / FVIIIa

Activation des cofacteurs FV et FVIII

Activation de FVII et génération de thrombine

• • • • • • • • • • • • • • • • • • • •

X AVK X

rhPCa sTM-FIIa

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Thrombinoformation « explosive »

FXIa FIXa•FVIIIa

FXa•FVa FII

FIIa FIX

FX Activation de FXI par FIIa

FXI

Amplification X HNF-AT IDT HBPM-AT

Fondaparinux-AT Anti-Xa

X

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•  Physiologie •  Anticoagulants

•  Exploration de l’hémostase –  Généralités –  Les analyses

•  Plaquettes •  Temps de coagulation •  Analyses dynamiques

–  Exploration en fonction de l’anticoagulant

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Quand ?

•  Pour « voir » –  Admission –  Évolution au cours du séjour

•  Pour faire un diagnostic –  Maladie thrombo-embolique –  Hémorragie –  Sepsis

•  Pour adapter un traitement –  Anticoagulant –  Procoagulant –  Besoins transfusionnels

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Comment ?

•  Interrogatoire –  Antécédents personnels et familiaux –  Anamnèse

•  Examen clinique –  Purpura, pétéchies –  Saignements aux points de ponction, en nappe –  Lésions en « carte de géographie »

•  Examens biologiques –  Numération plaquettaire –  Tests globaux ou spécifiques

•  Collaboration clinicien / biologiste

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Quel type d’analyse ?

•  Analyses quantitatives –  Numération plaquettaire –  Dosage facteurs (FV, FII, AT, etc.) –  Peptides d’activation (F1+2, TAT, FPA, FM, DDi, PAP)

•  Analyses qualitatives –  vWF:RCo –  Agrégation, PFA-100™

•  Analyses dynamiques –  ROTEM™

–  Génération de thrombine sur sang total

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Conditions pré-analytiques •  Primordiales pour la fiabilité des résultats •  Responsabilité du biologiste •  Prélèvement

–  Ponction veineuse à l’aiguille –  Pas de garrot –  Rejet de 10 mL de sang (libération FT) –  Attention à l’ordre des tubes (EDTA / sec / CTAD / héparine) –  4,5 mL sang pour 0,5 mL CTAD (impératif), retournement

•  Acheminement –  Température ambiante (activation FVII) –  Délai 2 h (citrate) ou 4 h (CTAD)

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•  Physiologie •  Anticoagulants

•  Exploration de l’hémostase –  Généralités –  Les analyses

•  Plaquettes •  Temps de coagulation •  Analyses dynamiques

–  Exploration en fonction de l’anticoagulant

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Numération plaquettaire •  Intervalle de référence : 150 à 400 G.L-1

–  Tube EDTA –  Contrôle sur lame (agrégats) –  Contrôle sur CTAD (agrégation à l’EDTA, - 10 %)

•  Et alors… interprétation difficile –  Valeurs faussement « normales »

•  Syndrome inflammatoire + consommation •  Saignement à la phase aiguë

–  Thrombopénie •  Thrombotique (PTT, CIVD, TIH) •  Hémorragique

–  Effets des anti-plaquettaires

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PFA-100™ •  Test fonctionnel : temps d’occlusion

–  Tube citrate –  Flux sous vide à haut stress (> 4000 s-1) –  Remplace le temps de saignement –  Différents agonistes

•  Collagène-adrénaline •  Collagène-ADP

•  Limites –  Numération > 80 G.L-1

–  Résistance au clopidogrel

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•  Physiologie •  Anticoagulants

•  Exploration de l’hémostase –  Généralités –  Les analyses

•  Plaquettes •  Temps de coagulation •  Analyses dynamiques

–  Exploration en fonction de l’anticoagulant

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Généralités •  Plasma pauvre en plaquettes

–  Élimine l’effet « thrombopénie » –  Élimine l’inhibition fonctionnelle des plaquettes

•  Réalisation en un temps –  Incubation avec un substitut plaquettaire et un agoniste

spécifique –  Déclenchement du chronomètre lors de l’ajout de Ca++

–  Arrêt du chronomètre lors de la détection d’un caillot (visuel ou magnétique)

•  Comment rendre le résultat ? •  Quelle signification ?

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Ah ! les beaux jours (?)

TF•FVIIa

FXa•FVa FII FIIa

Fibrinogène

Fibrine soluble

Fibrine insoluble

FXIIIa

•  Voie extrinsèque (TQ, PT)

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Temps de Quick (TP)

•  Expression du résultat –  En seconde, par rapport à un témoin –  En % (TP), par rapport à une courbe d’étalonnage –  Standardisé : INR = (TQpatient/TQtémoin)ISI

•  Signification –  Allongement TQ

•  Risque hémorragique •  Risque thrombotique

–  Dosage systématique de FV –  Présence d’héparinase (1,5 UI/mL)

•  Pas de sensibilité à l’héparine « thérapeutique » (surveillance AVK)

•  Allongement « brutal » en cas de surdosage !

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Ah ! les beaux jours (?)

FXa•FVa

FIXa•FVIIIa

FXIa

FII FIIa

Fibrinogène

Fibrine soluble

Fibrine insoluble

FXIIIa

FXIIa PK KHPM

•  Voie intrinsèque (TCA, aPTT) «

Con

tact

»

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Temps de Céphaline Activé (TCA)

•  Expression du résultat –  En seconde, par rapport à un témoin

•  Signification –  Allongement TCA

•  Déficit en FVIII, FIX, FX, FV, FII, Fg •  Déficit en FXI •  Déficit en FXII, PK, KHPM •  Traitement par antithrombines (HNF, Hirudine) •  Anticoagulant circulant [anti-β2GPI, anti-FVIII]

–  Raccourcissement TCA •  Génération de thrombine in vivo

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Temps de Coagulation Activé (ACT)

•  Réalisation –  Sur sang total –  Activation par l’apport de calcium –  Biologie délocalisée

•  Sensible à tous les anticoagulants ! •  Expression du résultat

–  En secondes

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Dosage antithrombine

•  À ne pas oublier ! –  Cofacteur des HNF, HBPM, danaparoïde, pentasaccharide –  Supplémentation si AT < 40% (Aclotine®)

•  Méthode chromogénique –  Activation standardisée –  Clivage d’un substrat chromogène –  Ne détecte pas tous les déficits

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Dosage de l’activité anti-Xa

•  Méthode chromogénique –  Activation standardisée –  Clivage d’un substrat chromogène

•  Calibration –  Courbes spécifiques (apport d’AT ?)

•  HNF / HBPM •  Fodaparinux •  « -aban »

–  Conversion en activité et/ou en dosage pondéral

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Dosage de l’activité anti-IIa

•  Méthodes chronométriques –  Temps de thrombine (TT)

•  HNF •  Hirudines

–  Temps d’écarine (ECT) •  Hirudines •  Argatroban

•  Méthode chromogénique (ECA) –  Activation standardisée –  Clivage d’un substrat chromogène par MzIIa

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•  Physiologie •  Anticoagulants

•  Exploration de l’hémostase –  Généralités –  Les analyses

•  Plaquettes •  Temps de coagulation •  Analyses dynamiques

–  Exploration en fonction de l’anticoagulant

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Peptides d’activation

•  Thrombinoformation –  F1+2 –  Complexes TAT (Thrombine-Antithrombine)

•  Fibrinoformation –  FPA (fibrinopeptide A) –  Monomères de fibrine

•  Fibrinolyse –  D-dimères –  Complexes PAP (Plasmine-Antiplasmine)

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ROTEM™

•  Thromboélastométre rotatif –  Dérive du TEG, mais informatisé –  Reproductible

•  Sang total –  Effet des plaquettes, de l’hématocrite –  Met en jeu les facteurs pro- et anti-coagulants (sauf APC) –  Mesures dynamiques en fonction du temps

•  Activation standardisée –  Définition de profils normaux et pathologiques

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Exemples de tracés (1) •  Tracés normaux

exTEM

fibTEM apTEM

inTEM

•  Profils typiques Hyperfibrinolyse

Hypercoagulabilité

Hypocoagulabilité

Données fournies par le laboratoire BIODIS

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Exemples de tracés (2) •  Fibrinolyse

•  Effet de l’héparine et hémostase « résiduelle »

•  Part relative du fibrinogène et des plaquettes

exTEM

fibTEM exTEM

hepTEM inTEM

apTEM

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Génération de thrombine

•  Détection de la thrombine générée et de sa cinétique –  Sur PRP ou PPP avec substitut phospholipidique –  Réalisation en « double », thrombine et calibrateur

•  Limites –  Numération plaquettaire standardisée en PPP –  La voie de la PC n’est pas impliquée (pas de TM) –  Technique complexe, laboratoire spécialisé

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Résultats normaux

0

50

100

150

0 10 20 30 Minutes

Thr

ombi

ne (n

M)

lag time

Pic

Aire sous la courbe (ETP)

Temps au pic

Paramètre Homme Femme

Lag Time (min) 2,63 ± 0,59 2,49 ± 0,39

ETP (nM.min) 1745 ± 259 1803 ± 241

Pic thrombine (nM) 293,4 ± 48,5 318,5 ± 52,9

Temps au pic (min) 5,82 ± 0,88 5,52 ± 0,85

Temps total (min) 22,05 ± 2,56 21,26 ± 1,86

www.thrombinoscope.com

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Effets des AVK

Orfeo T, PLoS One 2011;6:e27852

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Effet des anti-Xa

Fondaparinux Rivaroxaban

Orfeo T, J Thromb Haemost 2010;8:1745

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•  Physiologie •  Anticoagulants

•  Exploration de l’hémostase –  Généralités –  Les analyses

•  Plaquettes •  Temps de coagulation •  Analyses dynamiques

–  Exploration en fonction de l’anticoagulant

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Héparine Non Fractionnée

•  Prélèvement –  Perfusion continue : 6 h après initiation, 4 h après

adaptation posologique –  Injection sous-cutanée : 4 h après

•  Zone thérapeutique –  Thérapeutique

•  TCA-ratio entre 2,0 et 3,0 •  TT > 60 s •  Héparinémie entre 0,4 et 0,8 U anti-Xa/mL

–  Prophylactique •  TCA-ratio entre 1,3 et 1,8 •  Héparinémie ? (0,2 à 0,3 U anti-Xa/mL)

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Héparine Bas Poids Moléculaire

•  Prélèvement –  4 à 6 h après une injection sous-cutanée (après la 5éme)

•  Zone thérapeutique –  Thérapeutique

•  TCA-ratio < 1,5 (sinon surdosage ?) •  Héparinémie entre 0,5 et 0,8 U anti-Xa/mL

–  Prophylactique •  TCA-ratio < 1,3 •  Héparinémie ? (0,2 à 0,5 U anti-Xa/mL)

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Danaparoïde sodique (Orgaran®)

•  Prélèvement –  Entre la 5ème et la 6ème injection en s/c –  Au moins 12 h après début de perfusion continue, et 6 h

après adaptation posologique •  Zone thérapeutique

–  Habituelle : 0,5 à 0,8 U anti-Xa/mL –  Thrombose extensive : 0,8 à 1,1 U anti-Xa/mL

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Fondaparinux (Arixtra®)

•  Prélèvements –  Pic : 2 heures après injection –  Résiduel : avant injection –  Mesure d’une activité anti-Xa spécifique

•  Zone thérapeutique –  Pic : 1,2 à 1,4 U anti-Xa/mL –  Résiduel : 0,6 à 0,8 U anti-Xa/mL

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Anti-Xa directs (Xarelto®)

•  Prélèvements –  Pic : 2 heures après injection –  Mesure d’une activité anti-Xa spécifique

•  Zone thérapeutique –  TQ

•  Exprimé en secondes (13 à 25) et non en % ou en INR (< 1,5) •  Calibration pour conversion en dosage pondéral

–  TCA •  Linéaire, peu sensible

–  Activité anti-Xa •  Linéaire, sensible

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Argatroban (Arganova®)

•  Prélèvements –  2 h après initiation ou après adaptation posologique

•  Zone thérapeutique –  TCA-ratio entre 1,5 et 3 –  ACT entre 170 et 230 s

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Anti-IIa directs (Pradaxa®)

•  Prélèvements –  Pic : 2 heures après injection

•  Zone thérapeutique –  TCA-ratio

•  Non linéaire, peu sensible si surdosage •  1,8 à 2,5

–  ECT entre 45 et 100 s –  Concentration 70-150 ng/mL sur temps de thrombine

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Anti-IIa directs : hirudines

•  Zone thérapeutique –  Bivalirudine (Angiox®)

•  5 min. après injection •  ACT entre 250 et 450 s

–  Desirudine (Revasc®) •  2 h après perfusion continue •  TCA-ratio 2

–  Lepirudine (Refludan®) •  2 h après perfusion continue •  TCA-ratio entre 1,5 et 2,5

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Conclusions

•  Pas d’anticoagulant idéal –  Meilleure prédiction de la réponse –  Pas de test biologique disponible en routine –  Pas de zone thérapeutique définie –  Pas d’antidote

•  Comment évaluer le risque hémorragique ? –  Analyses « conventionnelles »

•  Modélisation mathématique (KG Mann) –  Analyses « dynamiques » et fonctionnelles

•  Temps d’occlusion sur PFA-100™ •  ROTEM™ •  Test de génération de thrombine

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MERCI…