République Algérienne Démocratique et Populaire Ministère de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche Scientifique UNIVERSITE KASDI MERBAH OUARGLA Faculté des Sciences de la Nature et de la Vie Département des Sciences Biologiques Mémoire MASTER ACADEMIQUE Domaine : Sciences de la Nature et de la Vie Filière: Biologie Spécialité: Contrôle de Qualité des Produits Alimentaires Présenté par : M me SALEM Nadjiba Investigation de quelques paramètres d’analyses biochimiques médicales (cas d’urée et de créatinine dans le laboratoire EL-MOURCHIDE Ouargla)
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République Algérienne Démocratique et PopulaireMinistère de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche Scientifique
UNIVERSITE KASDI MERBAH OUARGLA
Faculté des Sciences de la Nature et de la Vie
Département des Sciences Biologiques
MémoireMASTER ACADEMIQUE
Domaine : Sciences de la Nature et de la Vie
Filière: Biologie
Spécialité: Contrôle de Qualité des Produits Alimentaires
Investigation de quelques paramètres d’analyses biochimiques médicales (cas d’urée et de créatinine dans le laboratoire EL-MOURCHIDE Ouargla)
Dédicaces
Au nom du Dieu clément et miséricordieux et que le salut du Dieu soit sur son prophète
MOHAMED
Je dédie ce Modest travail
A tout qui sont les plus chères au monde :
A ma chère maman
A mon père et mes frères
A mes chères sœurs
A ma famille Salem
A tous mes collègues de la promotion
Remerciements
Tous nous remerciements vont d’abords à nôtre DIEU le tout puissant, pour nous avoir donnée la force et la patience.
Nous tenons à exprimer notre grande gratitude à Madame BAYOUSSEF Zahia. Docteur au département des sciences biologiques de faculté de la Nature de la vie de l’université KASDI MERBAH -OUARGLA pour son
soutien et ses encouragements.
A madame OULD EL HADJ KHELIL AMINATA de nous avoir honoré de présidé le jury et HANNOU Ghania d’avoir
accepté d’être notre examinateur
Nous remercions également le personnel du laboratoire d’analyse, médicale eu center de diagnostic médicale
EL- MORCHID d’Ouargla
Le personnel du laboratoire de l’hôpital de MOHAMMED BOUDIAF de Ouargla
Particulière nous présentons nos remerciements à Mr Bahi et la pharmacienne spécialiste de parasilogie et de
mycologie pour ses encouragements et son aide.
Et nous remercions tous les personnes qui nous on aider d’une façon ou d’une autre.
II.5.2.3. Comparaison de la répartition des patients entre les deux méthodes (UV et COLOR)........................................................................................................................51
II.6. Différence entre les deux méthodes....................................................................52
II.7. Comparaison des résultats obtenus............................................................................53
II.8. Comparaison entre les résultats obtenus et la valeur recommandée...........................54
II.8.1. Dosage de la créatinine.......................................................................................54
II.7.2.2. Dosage de l’urée..............................................................................................55
Mettre le spectrophotomètre à zéro avec l’eau distillé, puis dans un tube sec
qui contient 1ccm de la réactif (500µl R1+500µLR2), pipeter 100µl de plasma d’un
patient, utiliser micropipette convenable à chaque quantité, l’opération doit être très
vite après une simple agitation parce que la réaction est très sensible. L’apparition de
concentration sur la détecteur prendre une période de temps (2- 3 minutes).
La créatinine sérique est dosée par une méthode colorimétrique cinétique
basée sur la réaction de l’acide picrique avec la créatinine en milieu alcalin basique
formant un complexe coloré jaune orange. L’intensité de la coloration est mesurée à
une longueur d’onde de 492nm (490-510), consulter l’absorbation (A1) au bout de 30
secondes puis de 90 secondes (A2) , la concentration de l'échantillon est alors
exprimée en mg/l (1 mg/l équivalent à 8.85mmol/l et1 mg/dl X 8.85 équivalent à
µmol/l), avec le rapport suivant: (∆A Échantillon / ∆ A Etalon –∆A blanc) X 2
(concentration Etalon) X0,1=C Echantillon mg/l de créatinine dans l’échantillon (∆
A= A2 –A1).
38
Partie expérimentale
II.2.2.1.1.2. Dosage de l’urée
Préparer en ordre un blanc d’eau (eau distillé), un blanc réactif (mélange de
réactif avec l’eau distillé) une calibration (mélange de réactif avec un calibrateur de
l’urée) puis une série de sérum de contrôle (range normale et pathologique) pour
validé la calibration. Si les valeurs des contrôles sont situées dans la fourchette
prédéterminée, les échantillons des patients sont préparés. Les volumes réactionnels
sont résumés dans le Tableau 06.
Tableau 6: Composition des tubes à analyser (dosage manuel d’urée coloré).
Blanc d’eau
Blanc réactif
Calibration
Sérum de contrôle
Echantillon de patient
L’eau distillée (ml)
1,0 10 -- --
Réactif A (µl)
-- 1000 1000 1000 1000
Réactif B (µl)
1000 1000 1000 1000
Etalon (µl) -- -- 10 -- --Echantillon (µl)
-- --- -- 10 10
Mettre spectrophotomètre à zéro avec l’eau distille, le tube à sec contient
1ccm de A Réactif avec 10µl de plasma de patient, agiter bien puis rester 10minutes
sur la paillasse à température ambiante ou 5 minutes au bain de marie (37°C), après
chauffage ajouter 1ccm de deuxième réactif c’est le B Réactif , agiter pour la
deuxième fois et mesurer l’absorbance.
L’hydrolyse de l’urée réalise dans l’échantillon par l’uréase donne
l’ammoniac et gaz carbonique (la forme réduite) absorbe fortement autour de 630nm
pour donner un complexe coloré en vert, la couleur est stable au moins 2 heures.
L’apparition de concentration sur la détecteur prendre une période de temps
(7-8 secondes). Selon les réactions couplées décrites ci-dessous qui est quantifié par
spectrophotomètre.
39
Partie expérimentale
Figure 18: Réaction colorimétrique pour dosage l’urée.
La concentration d’urée de l’échantillon est calculé selon la formule (A
Echantillon / A Etalon) X C Etalon (concentration Etalon) X 0 ,1=C Echantillon
mg/l de l’urée dans l’échantillon (∆ A= A2 –A1).
II.2.2.1.2. Dosage automatique
II.2.2.1.2.1. Dosage de créatinine
Il est conseillé de réaliser le dosage de la créatinine en commençant par le
blanc d’eau (l’eau distillé), blanc de réactif (solution contient réactif et l’eau
distillé), calibration (mélange de réactifs avec un calibrateur de créatinine), une
série de sérum de contrôle (range normale et autre pathologique), puis placer les
cuvettes dans l’automate. Utiliser un étalon de 2mg/l. Si les valeurs des contrôles
sont situées dans la fourchette prédéterminée. Les volumes réactionnels sont
résumés dans le Tableau 07.
Tableau 7: Composition des tubes à analyser (dosage automatique de la
créatinine).
Blanc d’eau
Blanc de Réactif
Calibreur Sérum normale
Sérum pathologique
L’eau distillée (ml)
400 40 -- -- --
Réactif (µl)
-- 400 400 400 400
Etalon (µl)
-- -- 40 -- --
Echantillon (µl)
-- -- -- 40 40
40
Partie expérimentale
Cet appareil permet le dosage de la créatinine, l’unité principale du
système est l’analyseur dans lequel s’effectuent toutes les manipulations et
mesures spectrophotométrie des échantillons. Un ordinateur indépendant contrôle
l’analyseur, recueille les données brutes et fournit l’interface utilisateur. Une unité
de refroidissement permet au système de garantir lastabilité de tous les réactifs
embarqués.
L’analyseur est commandé par micro-processeur. Toutes les fonctions
mécaniques sont dirigées et contrôlées par des processeurs dédiés.
Le manipulateur dispose d’une vision constante sur le statut du matériel et
sur les performances des analyses biochimiques. En cas d’erreur ou de résultat
marqué, l’analyseur propose une fonctionnalité de réexécution automatique. Il est
possible d’imprimer les courbes d’étalonnage, les courbes de réaction et les
méthodes d’analyses. Les réactifs utilisant au cours de dosage de la creatinine et
d’urée par l’automate sont moins consommés à celle de la méthode manuelle par
un spectrophotomètre pour doser les deux molécules précédente.
II.2.2.1.2.1. Dosage de l’urée
II.2.2.1.2.1.1. Méthode colorimétrique
Préparer les échantillons en ordre comme suivant le blanc d’eau (l’eau
distillé), blanc de réactif (solution contient réactif et l’eau distillé), calibration
(mélange de réactifs avec un calibrateur de l’urée), une série sérum de contrôle
(range normale et autre pathologique), puis mettre les cuvettes dans l’automate.
Utiliser un étalon de 0.5mg/l. Si les valeurs des contrôles sont situées dans la
fourchette prédéterminée, les échantillons des patients sont préparés. Les volumes
réactionnels sont résumés dans le Tableau 8.
41
Partie expérimentale
Tableau 8: Composition des cuvettes à analyser (dosage automatique d’urée
coloré).
Blanc d’eau
Blanc de Réactif
Calibreur Sérum de contrôle
Echantillon de patient
L’eau distillée (ml)
400 3 -- -- --
Réactif (µl)
-- 480 480 480 480
Etalon (µl) -- -- 3 -- --Echantillon (µl)
-- -- -- 3 3
La détermination quantitative de la concentration plasmatique de l’urée est
réalisée au moyen de l’analyseur peut apporter 40 tubes des échantillons des patients
et 80 cuvettes. La période d’obtention des concentrations de dix échantillons prend
(38-45 minutes), selon la procédure de réduction d’urée en ammoniac et gaz
carbonique, la formation du complexe chromogène cause l’apparition d’une
coloration verte.
L’analyseur effectue une suivie par spectrophotométrie de la vitesse avec
laquelle l’urée produit un complexe coloré a une absorbance de 630nm et mesurer la
concentration, la concentration se calculée selon la formule suivante et exprimer par
(mg/l) : A Échantillon/A Etalon X C Etalon = C Echantillon.
II.2.2.1.2.1.2. Méthode enzymatique
Préparer les échantillons en ordre comme suivant: le blanc d’eau (l’eau
distillé), blanc de réactif (solution contient réactif et l’eau distillé), calibration
(mélange de réactifs avec un calibrateur d’urée), une série de sérum de contrôle
(range normale et autre pathologique), puis placer les cuvettes dans l’automate.
Utiliser un étalon de 0,5 mg/l. Si les valeurs des échantillons de contrôle sont situées
dans la fourchette prédéterminée, les échantillons des patients sont préparés. Les
volumes réactionnels sont résumés dans le Tableau 9.
42
Partie expérimentale
Tableau 9: Composition des tubes à analyser (dosage automatique d’urée UV).
Blanc d’eau
Blanc de Réactif
Calibreur Sérum normale
Sérum pathologique
L’eau distillée
400 3 -- -- --
Réactif (µl)
-- 300 300 300 300
Etalon (µl) -- -- 3 -- --Echantillon (µl)
-- -- -- 3 3
L’analyseur préchauffé le réactif à 37OC, l’urée est hydrolysée en présence
d’uréase pour donner naissance à l’ammoniac et à dioxyde de carbone, en présence
de glutamate déshydrogénase (GLDH) et de nicotinamide adénine dinucléotide sous
forme réduite (NADH), l’ammoniac se combine à l’α-cétoglutarate (α-CG) pour
former du L-glutamate.
L’analyseur va suivre par spectrophotométrie la diminution de l’absorbance à
340 nm après 30 seconds (A1) et 90 seconds (A2), Les résultats sont calculés
automatiquement selon le rapport (A1-A2) Echantillon/ (A1-A2) Etalon=C
Echantillon se exprime en (mg/l).
Figure 19: Réaction enzymatique d’uréase pour dosage l’urée.
43
Partie expérimentale
II.3. Comparaison des réactions et étude des données
II.3.1. Écart-type
L'écart-type sert à mesurer la dispersion ou l'étalement, d'un ensemble de
valeurs autour de leur moyenne. Plus l'écart-type est faible, plus la population est
homogène.
L'écart-type S est la racine carrée de la variance
II.3.2. L'erreur standard(SEM)
L'erreur standard (SEM) est directement proportionnelle à l'écart-type de la
population (estimé le plus souvent à partir de l'écart-type de l'échantillon) et
inversement proportionnelle à la racine carrée de l'effectif de l'échantillon.
σ =écart-type de la population
s =écart-type de l'échantillon
n =effectif de l'échantillon
II.3.3. Coefficient de Variance
Le coefficient de variance est une mesure relative de la dispersion des
données autour de la moyenne. Le coefficient de variance se calcule comme le ratio
de l'écart-type rapporté à la moyenne, et s'exprime en pourcentage. Il permet de
comparer le degré de variation d'un échantillon à un autre, même si les moyennes
sont différentes.
Où S représente l'écart-type de l'échantillon et la moyenne de
l'échantillon.
Lorsque l'écart-type et la moyenne proviennent des mesures répétées sur un même
individu, le coefficient de variance devient une mesure importante de la fiabilité.
44
Partie expérimentale
II.4. Résultats et discussions
II.4.1 Caractéristique biochimique
II.4.1.1 Dosage de la créatinine (méthode semi-automatique)
Pour le dosage de la créatinine utilisant le réactif (SPINREACT), le mélange
initial de réactif 1 et réactif 2 a une couleur jaune vif. Pour les échantillons Figure 20
C1 (1) de concentration normale (créatinine<14mg/l) aucune différence en coloration
peut être observé à la fin de test avec l’œil nue. Par contre les échantillons
pathologique (créatinine>14mg/l) présentent à la fin de test une coloration différentes
qui range de jaune-orangé ou rouge brique foncée selon la concentration Figure 18 C2
et C3 (2 et 3).
La réaction de Jaffée permet l’apparition de couleur jeune -orangé grâce à la
composition de milieu alcalin, la créatinine réagisse avec l’acide picrique et elle
contrôle l’intensité de la couleur, la coloration foncée indique une concentration
élevée, donc la concentration de la créatinine est proportionnelle avec l’intensité de
couleur.
Figure 20: colorations par méthode semi-automatique (creatinine).
Figure 20 C1 (1) Le mélange de réactif et le plasma de l’échantillon
(concentration de la créatinine <14mg/l) donne un complexe de même couleur que la
45
C2 C1SALEMN(2016)C3SALEMN(2016)
C2SALEMN(2016)C1SALEMN(2016)
Partie expérimentale
couleur initial (jaune vif). Le mélange de réactif et le plasma de l’échantillon
(concentration 14-60 mg/l) coloration jaune orangé qu’est diffère de la coloration
initial C2(2). Le mélange de réactif et le plasma de l’échantillon (concentration >60
mg/l) donne coloration rouge brique qu’est totalement diffèrent de la coloration
initial C3(3). La méthode de Jaffe est une réaction cinétique permet d’obtenir un
mélange chromogène avec des colorations proportionnelle avec la concentration de
la créatinine C1, C2, C3, (4).
II.4.1.2. Dosage de l’urée (méthode semi-automatique)
Pour le dosage de l’urée utilisant le réactif (BUN-COLOR), le mélange initial
de réactif 1 et réactif 2 (avec 10µl de plasma de malade au début de test) est jaune.
Pour les échantillons de concentration normale (urée<0.45mg/l) la couleur jaune est
transformé en vert clair Figure 21 B1 (1). Les échantillons pathologique
(urée>0.45mg/l) présentent à la fin de test une coloration différentes qui range de
vert ou vert foncée selon la concentration figure 19 B2 et B3 (2 et 3).
Le dosage de l’urée par la méthode colorimétrique permet la formation d’un
complexe colorée en vert car la procédure de réduction de l’urée en ammoniac et gaz
carbonique, la coloration foncée indique une concentration élevée, donc la
concentration de l’urée est proportionnelle avec l’intensité de couleur.
Figure 21: coloration par méthode semi-automatique (urée).
46
B
SALEMN(2016
4
SALEMN(201
3SALEMN(2016
2
SALEMN(2016
1
Partie expérimentale
Figure 21 B1(1) le mélange de réactif et plasma d’un échantillon a une
concentration normal de l’urée <0,45 mg/l forment une chromogène de coloration
verte claire.B2 (2) Le mélange de réactif et plasma d’un échantillon a une
concentration (0,45 -1 mg/l) coloration verte. B3(3) le mélange de réactif et plasma
d’un échantillon a une concentration >1 mg/l coloration verte fonce. B1, B2, B3 (4) la
méthode colorimétrique de dosage de l’urée est une réaction chimique qui donne une
coloration proportionnelle avec la concentration de l’urée présente dans l’échantillon.
II.4.1.3. Dosage d’urée et la créatinine (automatique)
Figure 22 (A) l’urée UV est une méthode ou le dosage est effectué à 340nm
(non coloré) dance le milieu réactionnel maintient le même aspect au cours de test, la
mesure de concentration est cinétique. Les deux méthodes créatinine Jaffé (C) et urée
COLOR (B) forment des complexes chromogènes dont l’intensité de couleur
proportionnelle avec u la concentration.
Figure 22: coloration par méthode automatique (l’urée et la créatinine).
Figure 22 la cuvette A1 (1), A2 (2) et A 3 (3) contient le réactif (BUN_UV+
plasma d’échantillon) cette réaction concerne le dosage d’urée UV, le mélange a une
coloration transparente, par ailleurs la cuvette C1(1) contient le mélange de dosage de
créatinine<14 mg/l a une couleur jaune et la cuvette B1 (1) contient le mélange de
47
4
C1
C3
B1
B3C2B2
SALEMN(2016)SALEMN(2016)
3
C3B3 A3
SALEMN(2016)
2
A2 B2 C2
1
SALEMN(2016)C1B1 A1
Partie expérimentale
dosage d’urée COLOR a une coloration verte claire (urée <0.45 mg/l). La cuvette B2
(2) contient le mélange de dosage de créatinine (14-60 mg/l) à une couleur jaune
oronge, la cuvette C2 (2) contient le mélange de dosage d’urée COLOR à une
coloration verte. La cuvette B3 (3) contient le mélange de dosage de créatinine>60
mg/l a une couleur rouge brique et la cuvette C3 (3) contient le mélange de dosage
d’urée colore a une coloration verte foncé.
II.4.2. Caractéristique de population
II.4.2.1. Répartition des patients
II.4.2.1.1. Sexe
La Figure 23 représente la répartition des échantillons par apport le sexe, le
total est de 92 patients, la prédominance est de 55 patients de sexe masculin et de 37
patients de sexe féminin.
Figure 23: Répartition des échantillons par rapport au sexe.
II. 4.2.1.2. L’âge
La Figure 24 représente la distribution des patients selon l’âge, les chiffres
des intervalles variaient entre 9mois et 87 classés en cinq catégories.
48
Partie expérimentale
Figure 24: Répartition des échantillons en fonction de l’âge.
II. 4.2.1.3. Concentration de créatinine
La Figure 25 représente des informations sur les 92 échantillons analysés
selon la valeur de concentration de créatinine, 34 patients présentent une
concentration de créatinine qui est considère comme un taux normal (concentration
créatinine<14) alors que 58 patients sont des taux élevés considère comme un taux
pathologique (concentration de créatinine >14).
Figure 25: Répartition des résultats par rapport au taux de créatinine (normale
[créatinines] < 14mg/l et pathologique [créatinine] >14mg/l).
49
Partie expérimentale
II. 4.2.1.3.1. Réparation dans le groupe normal
La Figure 26 représente le nombre totale des échantillons sont des valeurs de
concentration de la créatinine<14mg/l, elle est nommée normale, le nombre total est
32 patients repartent comme suivants : trois enfants, 15 homme et 14 femme.
Figure 26: Répartition des échantillons de taux normal (créatinine<14mg/l).
II.4.2.1.3.2. Réparation dans le groupe pathologique
La Figure 27 exprime le nombre totale des patients qui ont des valeurs de
concentration de la créatinine ≥14mg/l qui considéré comme un taux pathologique.
Le nombre total de 56 patients repartent comme suivant : 2 enfants, 32 hommes et 22
femmes.
50
Partie expérimentale
Figure 27: Répartition des échantillons de taux de pathologique
(créatinine≥14mg/l).
II.4.2.1.4 Répartition dans chaque groupe
Les différents concentrations de la créatinine classes les patients en quatre
groupes, groupe 1 caractérise par des échantillons ont des concentrations <14 mg/l,
groupe 2 caractérise par des échantillons ont des concentrations entre (14 -20 mg/l),
les échantillons de groupe 3 ont des concentrations (20-60 mg/l), finalement groupe 4
contient des échantillons > 60 mg/l.
Figure 28 représente la distribution des patients à partir de la concentration de
la créatinine qui permet de les groupées en quatre groupes: groupe 1 contient 29
patients, 20 patients au groupe 2, 25 patients dans le groupe 3 et 18 patients dans le
groupe 4.
51
Partie expérimentale
Figure 28: Répartition des échantillons par rapport le taux de la créatinine dans
les quatre groupes.
II.5. Evaluation de la précision des réactions et protocole
Pour estimer la concentration de la créatinine et l’urée le protocole demande
d’utiliser des réactifs approprié pour chaque paramètre, l’ensemble des réactifs –
appareils assurent la bonne pratique qui permet la détermination de dosage pour
chaque échantillon.
Les résultats expérimentaux liant à l’étude statistique calculer par un logiciel
(INSTAT GRAPH PAD) concernant le dosage de la créatinine par la méthode de
Jaffé et les deux méthodes de dosage de l’urée soit par méthode UV enzymatique ou
colorimétrique, les calculs de coefficient de variance permettent de classées les
résultats selon le coefficient de variance (cv <5% ou cv >5%).
II.5.1. Dosage de la créatinine par méthode Jaffé
Le nombre des échantillons qui ont un CV>5% dans chaque groupe est
repartie comme suivant: groupe 1 contient trois patients, un patient pour le groupe 2,
ainsi que deux patients présent dans le groupe 3, par ailleurs y a pas des patients
dans le groupe 4.
52
Partie expérimentale
Le CV de moyen total (2.64%) et le CV de moyen chaque groupe; groupe 1
(CV=4,14%), groupe 2 (CV=2,55%), groupe 3 (CV=1.92%), groupe 4 (CV=1.34%)
sont acceptable par rapport le CV>5%.
L’augmentation de concentration de la créatinine a une relation avec la
diminution de CV de moyen de chaque groupe.
II.5.2. Dosage de l’urée
Le nombre total des échantillons dans les deux méthodes de dosage de l‘urée
(UV et COLOR) qui ont un CV>5% dans chaque groupe est repartie comme
suivant : groupe 1 contient 29 patients, 20 patients pour le groupe 2, ainsi que 25
patients présent dans le groupe 3, par ailleurs il y a 18 patients dans le groupe 4.
L’augmentation de concentration d’urée a une relation avec la diminution de CV de
moyen de chaque groupe ; La distribution de ces patients dans chaque méthode sont
reparties comme suivant.
II.5.2.1. Urée UV
Le nombre des échantillons qui ont un CV>5% dans chaque groupe est
repartie comme suivant : groupe 1 contient neuf patients, quatre patient pour le
groupe 2, ainsi que deux patients présent dans le groupe 3, par ailleurs y a un patient
dans le groupe 4.
Le CV de moyen total (2.66%) et celui de chaque groupe; groupe 1
(CV=4%), groupe (CV=3.33%), groupe 3 (CV=1.70), groupe 4 (CV=1.04%).
Acceptable par rapport eux CV>5%.
II.5.2.2.Urée COLOR
Le nombre des échantillons qui ont un CV>5% dans chaque groupe est
repartie comme suivant : groupe 1 contient 19 patients, cinq patient pour le groupe 2,
ainsi que trois patients présent dans le groupe 3, par ailleurs y a deux patients dans le
groupe 4.
53
Partie expérimentale
L’ensemble de CV de moyen total (CV=7,31%) et le moyen de groupe 1
(CV=14.94%), groupe 2 (CV=4.90%), groupe 3 (CV=3.54%), groupe 4 (CV=2.90%)
sont inacceptable.
II.5.2.3. Comparaison de la répartition des patients entre les deux méthodes (UV
et COLOR)
Figure 29 représente le nombre des patients ont des cv >5% évalués dans les
deux méthodes de dosage d’urée (UV ou COLOR), dans le groupe 1 il y a neuf
patients pour UV et 19 patients pour COLOR, le deuxième groupe contient quatre
patients pour UV et cinq patients pour COLOR, troisième groupe deux patients
pour UV et trois patients pour COLOR, finalement le quatrième groupe a un patient
pour UV et deux patients pour COLOR.
Figure 29: Comparaison de la répartition des patients par rapport au CV entre
les deux méthodes de dosage d’urée dans les quatre groupes.
Le nombre des patients pour la méthode COLOR est toujours supérieure que
la méthode UV.
54
Partie expérimentale
II.6. Différence entre les deux méthodes
Figure 30 représente le nombre des patients ont des valeurs de P value< 0,05 dans
chaque groupe, ils repartent comme suivant : deux patients pour le groupe1, dix
patients pour le groupe 2, 15 patients pour le groupe3 et 14 patients pour le groupe 4.
Figure 30: Répartition des échantillons à partir de la valeur de P value (P
value<0,05) dans chaque groupe.
Lorsque le Pvalue <0.05 la différence est dite statistiquement significative,
c’est à dire les deux méthodes de dosage d’urée (UV et COLOR) statistiquement sont
différentes.
II.7. Comparaison des résultats obtenus
Le CV exprime de point de vue statistique la fiabilité et la reproductibilité des
résultats obtenus à partir des différentes méthodes de dosage, la méthode qui a le
moins nombre des patients par rapport au CV c’est la méthode la plus fiable.
Les valeurs de coefficient de variance supérieur à cinq (CV >5%) sont des
résultats inacceptables parce que les résultats ne garantis pas un dosage précise et
reproductible.
55
Partie expérimentale
Les laboratoires d’analyse préfèrent CV<5% qui indique des résultats d’un
dosage reproductible s’explique le choix de la méthode d’urée UV par rapport à la
méthode COLOR.
Le P value estimer statistiquement la différence entre les deux méthodes de
dosage de l’urée est réalisé sur le même échantillon. Les laboratoires d’analyse
médicale préfèrent la méthode qui présente le moins nombre des patients, pour cela
la méthode de dosage d’urée UV appliquée plus que la méthode colorimétrique.
II.8. Comparaison entre les résultats obtenus et la valeur recommandée
II.8.1. Dosage de la créatinine
L’ISO 17511 suggère un CV < 6,2% pour des résultats satisfaisants
(ALLAIRE et al., 2011). A partir de cette valeur nous trouvons les nombre de
patients comme suivant; pour les créatinémies inférieures à14mg/l il y a quatre
patient ont un coefficient de variance >6,2%, trois patients pour une concentration
de créatinine (14mg/l-20mg/l), il y a aussi un patient a un coefficient de variance
>6,2%, autre patient dans la classe de créatinémie (20mg/l-60mg/l).
L’OMS exige le coefficient de variance (CV= 4%) comme un résultat
satisfaisant et acceptable (HATTCHOUEL, 2012).
L’analyse statistique confirme ces observations: pour les créatinémies
inférieures à 14mg/l il ya 11 patients ont un coefficient de variance >4%, quatre
patients pour une concentration de créatinine (14mg/l-20mg/l), il y a aussi trois
patients ont un coefficient de variance >4% dans la classe de créatinémie (20mg/l-
60mg/l), sauf le moyen de groupe 1 est supérieur à coefficient de variance de
référence.
(WHO) les méthodes recommandées sont celles qui présentent un CV de
reproductibilité inférieur à 5 (CV<5%) (ALLAIRE et al., 2011).
L’analyse statistique confirme ces observations : Pour les créatinémies
inférieures ou égal à14mg/l il y a six patients ont un coefficient de variance >5%, un
56
Partie expérimentale
patient pour une concentration de créatinine (14mg/l-20mg/l), il y a aussi deux
patients ont un coefficient de variance >5% dans la classe de la créatinémie (20mg/l-
60mg/l).
Le CV de moyen total et celui de chaque groupe sont acceptable par rapport
les CV précédents.
II.7.2.2. Dosage de l’urée
L’ISO 15223-1 est déterminé un coefficient de variance (CV =3,4) pour des
résultats satisfaisantes (COBAS, 2015).
Pour la méthode de l’urée enzymatique, les nombres des patients sont été
distribués comme suivant: Pour les créatinémies inférieures ou égal à14mg/l il y a
16 patients ont un coefficient de variance >3,4%, il ya aussi six patients pour une
concentration de créatinine (14mg/l-20mg/l), quatre patients ont un coefficient de
variance > 3,4% dans le groupe3 où la créatinémie (20mg/l-60mg/l), un seule patient
dans le groupe quatre où la créatinémie > 60mg/l.
Pour la méthode colorimétrique, les nombres des patients sont été distribués
comme suivant: Pour les créatinémies inférieures ou égal à14mg/l il y a 22 patients
ont un coefficient de variance >3,4%, il ya aussi 11 patients pour une concentration
de créatinine (14mg/l-20mg/l), neuf patients ont un coefficient de variance > 3,4%
dans le groupe 3 où la créatinémie (20mg/l-60mg/l), deux patients dans le groupe 4
où la créatinémie >60mg/l.
On général le moyens du CV de groupe1, groupe 2, groupe 3 et le moyens
total sont inacceptables.
L’OMS est déterminé un coefficient de variance (CV <4,1%) pour des
résultats satisfaisantes et acceptable (WEBELl, 2015).
Pour la méthode de l’urée enzymatique, les nombres des populations sont été
distribués comme suivante: Pour le créatinémie inférieure ou égal à14mg/l il y a dix
patients ont un coefficient de variance > 4,1%, il y a aussi quatre patients pour
une concentration de créatinine (14mg/l-20mg/l), deux patients ont un coefficient de
57
Partie expérimentale
variance >4,1% dans le groupe3 où la créatinémie (20-60mg/l), une seule patients
dans le groupe 4 où la créatinémie >60mg/l.
Pour la méthode colorimétrique, les nombres des patients sont été distribués
comme suivante: Pour les créatinémies inférieures ou égal à14mg/l il y a 22 patients
ont un coefficient de variance > 4,1%, il ya aussi neuf patients pour une
concentration de créatinine (14mg/l-20mg/l), sept patients ont un coefficient de
variance ≥ 4,1% dans le groupe 3 où la créatinémie (20mg/l-60mg/l), deux patients
dans le groupe 4 où la créatinémie > 60mg/l.
On général le moyens du CV de groupe 1, groupe 2 et le moyens total sont
inacceptables.
L’WHO est déterminé un coefficient de variance (CV<2,8%) pour des
résultats satisfaisantes et acceptable (HATTCHOUEL et al., 2011).
Pour la méthode de l’urée enzymatique, les nombres des patients sont été
distribués comme suivante: Pour le créatinémie inférieure ou égal à 14mg/l, il y a 16
patients ont un coefficient de variance supérieur à 2,8% et sept patients pour une
concentration de créatinine (14mg/l-20mg/l) et aussi six patients ont un coefficient
de variance supérieur à 2,8% dans le groupe 3 où la créatinémie (20mg/l-60mg/l),
un seul patient dans le groupe 4 où la créatinémie>60mg/l. Généralement le CV de
groupe 4 et le moyen de CV total de les quatre groupe sont inacceptable.
Pour la méthode colorimétrique, les nombres des patients sont été distribués
comme suivante: Pour les créatinémies inférieures ou égal à 14mg/l il y a 23 patients
ont un coefficient de variance > 2,8% , il y a aussi 14 patients pour une
concentration de créatinine (14mg/l-20mg/l), 12 patients ont un coefficient de
variance >2,8% dans le groupe 3 où la créatinémie (20-60 mg/l), deux patients dans
le groupe 4 où la créatinémie > 60mg/l. On général les moyens du CV de groupe4 et
le moyen de cv total de les quatre groupes sont inacceptables.
58
Conclusion
Conclusion
CONCLUSION
Le contrôle cyclique des résultats des dosages de l’urée et de créatinine
permet d’amélioré les méthodes et les technique utiliser au cours de dosage de l’urée
et de la créatinine au niveau de les laboratoires d’analyses biochimique médicale.
L’évaluation du coefficient de variation assurer d’obtenir des résultats juste
et fiable parce qu’il rendre le choix entre les déférents méthodes du même paramètre
plus facile, les laboratoires préfèrent les méthodes qui ont les moins nombres des CV
inacceptables.
Au cours de cette étude on a trouvé que le dosage de la créatinine par la
méthode de Jaffé est acceptable selon les normes recommandées avec des CV
inférieur à 6,2%.
Cette fiabilité est remarquable dans toute les ranges de concentration testé.
Le dosage de l’urée apparaitre avec des coefficients de variance plus élevée
que ça sont observées avec le dosage de la créatinine. Il y a aussi des variabilités de
justesse selon la concentration et dépendant dans la réaction. On a observé que le
dosage d’UV est plus fiable comparant avec la méthode colorée.
Les deux méthodes de dosage de l’urée soit par méthode enzymatique ou
l’autre colorimétrique sont déférentes, lorsque la valeur de P value<0.05 signifier la
différence entre les résultats des dosages par les deux méthodes précédentes des
même échantillons pour un paramètre identique.
.
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Références
bibliographiques
Références bibliographiques
Références bibliographiques
ALLAIRE M, CECCHIN M, BANKOUSSOU S et SAKO B. Décembre2011- Évaluation du débit de filtration glomérulaire et du dosage de la créatininémie dans le diagnostic de la maladie rénale chronique chez l’adulte. Haute autorité de santé. France .Vol: 25.
ARAGON G et YOUNOSSI ZM. 2010 - When and how to evaluate mildly elevated liver enzymes in apparently healthy patient’s .Cleveland Clinic of medicine. USA. P 195-204.
AUBRUN F et DUPEPERRET S.2013- Hépatologie aiguë en anesthésie réanimation urgence. 2 Ed. Arnette. France. P 366
BALAS B.2008- histologie de l’appareil urinaire. 2Ed .Lavoisier .France .p25
BANGERT SK et MARSHALL WJ. 2005- Biochimie medical. 2 Ed. Elsevier. Pays-Bas. P 120.
Bayer P, Boutten A, Couderc R, Froissart M, Gillery P, Graeve J, Houillier P et
BENNETW M. 1997- Rénal failure. Ed. Springer .USA. P 221-224.
BIERENS DE HAAN J.1968-Analyse Automatique Continue, Discontinue et Analyse Rapide. Eingegangen .Allemagne. P 83 -88
BLETRY O, GEPNER P, KAHN JE, LEPORT J, MATHIEU E et MELCHOIR Y.2009. Du symptôme à la prescription en médecine générale Symptômes Diagnostic Thérapeutiques.3 Ed. Masson .Vol : 13- 70
BOREL JB et RANDOUX A.1997- Biochimie dynamique.2 Ed. Boeck Supérieur. P 79- 123
BRAUN JP, COTARD JP et DELVERDIER M. 2003. Bases morphologiques et fonctionnelles de l'exploration rénale chez le chien.4eme Ed. Lavoisier. France. P 141.
BRUNNER R, SUDDARTH JL, SHOLTIS L, SMELTZER S , SMELTZER C, DORIS S et BRENDA B.2007- Soins infirmiers en médecine et en chirurgie: de Fonctions rénale.3 Ed. Boeck Supérieur. Vol : 134 – 254
BUNK DM, CURHAN GC et NARVAL AS.2010-Annales de biologie Clinique. 2 Ed 2. Eurotext. France. P 200 -210.
BYWATERS EG et BEALL l D. 1941- Crush injuries with impairment of renal function. Ed. Springer. UK. P 22-32.
CABÉ É. 2006- Variabilité de la mesure de la créatinine de chien dans les cliniques vétérinaires. Doctorat .Université Toulouse. France .P 24-30-41
60
Références bibliographiques
CATIZONE L.2001- Guide de la dialyse.2 Ed. Springer Shop. P 213- 267
CHADBAN S, HOWELL M, TWIGG S, THOMAS M, JERUMS G et CASS A. 2010-Nephrology.3 Ed. Broughton Publishing. Australia. P 221.
CHARLET P, MIGUERES ML et PRIEL M.2003-La métrologie peut être utile en médecin. Laboratoire internationale de métrologie. Codex. P 3-9
Chevenne F, Koskas T, Hattchoue J, Poisson F et Vaugelade C. 2010- Dosage de la créatinine, état des lieux, notices et traçabilité. Agence français de sécurité sanitaire de produit de sante. France. Vol : 13
COHEN JA et KPAPLAN MM.1997-The SGOT/SGPT ratio – An indicator of alcoholic liver disease. Dig Dis.P 835-838.
Combe C. 2012- Service de néphrologie transplantation dialyse du Centre Hospitalier. Presse Med. Universitaire de Bordeaux .P 4
COOPER G.2009-Leçons de base de contrôle de qualité au laboratoire. Bio-Rad Laboratoires. P 14-28.
CORESH J, ASTOR BC, GREENE T, EKNOYAN G et LEVEY AS.2003- Prevalence of chronic kidney disease and decreased kidney function in the adult U.S. population Third National Health and Nutrition Examination Survey. The Journal of American Medical Association.
CORESH J, SELVIN E, STEVENS LA, MANZI J, KUSEK JWEGGERS P, VAN LENTE F et LEVEY AS. 2007- Prevalence of chronic kidney disease in the United States. The Journal of American Médical Association.
Courtebras B.2006- A l'école des probabilités: une histoire de l'enseignement français du calcul de les probabilité.3 Ed. Presses universitaires de french. P 257 -260
DELANAYE P, CHAPELLE JP, FERIR AM, GIELEN J, KRZESINSKI JM et RORIVE. Juin 2004- La mesure du débit de filtration glomérulaire en clinique quotidienne. USA .P 96-100
DELATOUR V, LALERE B, DUMONT G, HATTCHOUEL JM, FROISSART M, GRAEVE J et VASLIN-REIMANN S. Juillet 2011- Développement d’une méthode de référence pour le dosage de la créatinine pour améliorer le diagnostic et le suivi de l’insuffisance rénale. Revue français de métrologie no 26.France.P 21-25.
DIALLO F. mars 1998- Intérêt du dosage de la micro albumine chez le diabétique. Doctorat. Université cheikh anta diop de Dakar. Congo
DURAND G et BEAUDEUX JL.2010- Biochimie médicale Marqueurs actuels et perspectives.2 Ed. Lavoisier. Vol : 244-319
61
Références bibliographiques
DUSSOL B. 2010- Méthodes d’explorations de la fonction rénale Intérêt et limites des formules permettant d’estimer la fonction rénale. Doctorat. Faculté de Médecine Marseille. P 8-10
EARLY A, MISKULIN D, LAMB EJ, LEVEY AS et UHLIQ K. 2012. Estimating equations for glomerular filtration rate in the era of creatinine standardization. Ed. Springer. USA. P 50.
GEORGES HENNEN. 1996. Biochimie humaine: introduction biochimique à la médecine interne. 2 Ed. boeck et Larcier, France. P 521.
GHERLI M, BETTAYEB MA, TAHRI M et CHERF KHODJA M.2008-Dosage de l’urée plasmatique.TP 05.Université DJILALI LIABES. Algérie. P 1-6
GODIN M. 2013- Adaptation posologique des médicaments à la fonction rénale. Observation du médicament du dispositif médical et de l’innovation thérapeutique. Suisse. P 3-4
GOPAL DV et ROSSENT HR. 2000-Abnormal findings on liver function tests, Interpreting results to narrow the diagnosis and establish a prognosis.4 Ed.ABS .P107.
GUIMONT MC.1998-La lipoprotéine (lp) son intérêt dans l’interprétation de bilan lipidique. Doctorat .Université Paris. France. Vol : 24
HEUILLET M. 2015- Développement de méthodes de référence pour Clinique. les biomarqueurs du bilan lipidique : Application au contrôle qualité en biologie Doctorat. Université de Bourgogne. France. Vol 35
HOARAU M. 2011- Traitements de l’insuffisance rénale. . Haute autorité de santé. France. P 10-18
HORDE P. 2013- Clairance de la créatinine . Définition. Le Journal des Femmes avec sante médecine.
HORNYCH A, MARRE M, MIMRAN A, CHAIGNON M et ASMAR R.2000-Micro-albuminerie dans hypertension artérielle. Archive des maladies de cœur et des vaisseaux, France. P 1304 – 1308
HOUSSET P, LEVY A et ESTOURNET C.2012-Néphrologie .4 Ed. Elsevier Masson .Vol : 10 -17
JUNGERS P, KHOA MAN N, JOLY D et LEGENDERE C.2011- L'insuffisance rénale chronique prévention et traitement.4 Ed. Lavoisier. P 270-310
KAPLAN A et TENG LL WR Faulkner et S Meites. 1982 - In Selected Methods of Clinical Chemistry. Ed.. Ringo Deathstarr. USA. P 357-363.
KERSCHER L et TIEQENHORN J.1985- Methods of enzymatic Analysis, 3rd Ed. Verlagsgesellschaft. Allemagne. P 453.
62
Références bibliographiques
KRUPP MA, TIERNY LM et JAWETZ E. 1988- Current Medical Diagnosis and Treatment. Ed. Prentice hall. Australie. P 605.
LABORATOIRE ALLIANCE ANABIO. Novembre 2014- Le point sur la créatinémie et l’estimation du débit de filtration glomérulaire. France. P 14 -20
LASSEUR C et LAVERSIN S. Septembre 2002- Diagnostic de l’insuffisance rénale chronique chez l’adulte. France. P 8
les biomarqueurs du bilan lipidique : Application au contrôle qualité en biologie
LEVALLOIS P, AUGER P, DIONNE M et RHAINDS M. 2003-Évaluation du risque de transmission et d’une exposition significative au plomb associé à la transfusion de sang, institut national de sante publique du Québec, Canada. p 25-26
MARSHAL EK JR et BIOL JC. 1913- Renal physiology. Ed. Springer. USA. P 85-86.
MARSHALL WJ et BANGERT SK. 2005. Clinical Biochemistry Metabolic and Clinical Aspects. 2eme Ed. Churchill Livingstone Elsevier L, USA. P 329.
MESMOUDI A. Juin 2014. Contribution à l’étude de quelques paramètres biochimiques et du stress oxydatif chez des diabétiques de type 2 dans la région de Tlemcen. Master. Université Abou BekrBelkaïd Tlemcen. 25
Miller WG, BRUNS DE, HORTIN GL, SANDBERG S, AAKRE KM, MCQUEEN MJ, ITOH Y, LIESKE JC, SECCOMBE DW, JONES G,
MILLER WG, BRUNS DE, HORTTIN GL, SANDBERG S , AAKRE KM, MCQUEEN MJ , ITOH Y, J.C. LIESKE JC , D.W. SECCOMBE DW, JONESG ,. BUNK DM, CURHAN GC, NARVA AS, CASTONGUAY S, BELIVEAU M, DION R, MARTEL A et JULIE S. Août 2013- Guide de collecte de transport de conservation et d’analyse des urines. Ordre des chimistes des Québec. Canada .P 8-12.
MINJARD L et BASTIEN L. 1998- La réglementation des laboratoires d'analyses biologiques et le rôle de l'ingénieur biomédical au sein de ces laboratoires. Rapport de stage .DESS Technologies Biomédicales Hospitalières. France .P 30
MINUK GY. 1998- Canadian Association of Gastroenterology Practice Guidelines: Evaluation of abnormal liver enzyme tests.2 Ed. springer. P 416-422.
MOORE KL et DALLEYAF. 2003- Anatomie médicale aspects fondamentaux et applications cliniques.2 Ed. Boeck Supérieur .P 679- 781
NADAUD C. 2014- Évaluation d4une nouvelle méthode de mesure du RPCU CANIN à partir d’urine recueillies sur papier absorbant.Doctorat.Universite de Toulouse. France. P 40- 46
63
Références bibliographiques
NATHALIE J.2000-Contribution à la mise au point d’une technique simplifiée de mesura de la clairance endogène pour l’évaluation de la fonction glomérulaire chez le chien. Doctorat. Ecole nationale vétérinaire de LYON. France. P: 31-53
ODOU MF. Octobre 2013- Clairance de la créatinine. Doctissimo Sant. http://www.doctissimo.fr/html/sante/analyses/ana_equil_ions25.htm.
OFFENSTADT G, Ait-Oufella A, AMSTUT Z, DAS V et VINSONNEAU C.2006 - Le milieu intérieur en pratique clinique Désordres hydro électrolytiques désordres acide basique et insuffisance rénal aigue.4 Ed. Elsevier Masson. P 130- 145
OUEDRAOGO NR.2008-Controle de la qualité des analyses de huit paramètres bio chimiques dans les laboratoires des centres médicaux avec antenne chirurgicale de BURKINA FASO. Doctorat. Université d’OUAGADOUGOU. BURKINA FASO. Vol : 12.
PERRONE RD, MADIAS NE et LEVEY AS. 1992- Serum creatinine as an index of renal function. Ed. Clin Chem. USA. P21.
PRATT DS et KAPLANMM.1968- Evaluation of abnormal liver-enzyme results in Basymptomatic patients. .P 1266-1271.
PREYNAT O et KESSELER D. 2010-Serum ou Plasma, centre suisse de contrôle de qualité, Suisse. P 1-2
PUISIEUX F.2012- Le livre de l'interne en gériatrie.2 Ed. Lavoisier. Vol : 502-689
RAGEAU JB .2014- Clairance de la créatinine .Médise . http://www.medisite.fr/examens-et-interventions-chirurgicales-clairance-de-la-creatinine.
ROUAS C .octobre 2010- Etude des mécanismes mis en jeu lors d’une exposition à l’uranium appauvri sur le système de détoxification in vivo et in vitro. Doctorat. Université PARIS. France .P 59-67
SAIZONOU M et ELOISE M. Juin 2003- Profil biologique de l'insuffisance rénale chronique (IRC) au service de Médecine interne du Centre Hospitalier National Yalgado OUEDRAOGO (CHN-YO) d’Ouagadougou. Doctorat. Université d’Ouagadougou. Vol 34 MORO C. Mars 2010- Place de la bandelette urinaire en médecine générale dans le cadre du dépistage de la protéinurie chez le sujet a risque a repos de 128 cas. Doctorat. Université Henri Poincaré. Vol 27
SCHERRER F, BOISSON RC, EYNARD JC, CHAMARD D et POGG B, GRAFMEYE D.2008-État de l’art et validation de techniques : application aux performances de fidélité. Eurotext. France .vol 66
64
Références bibliographiques
SEGUÈS R.2015. Mise en place de la norme NF en ISO 15189 au laboratoire application à la gestion des contrôles de qualité et à un de méthode de dosage. Doctorat. Université de Bordeaux. France. P 12-45
SHERWOOD L. 2008- Physiologies humaine: A Human Perspective. 3 Ed. Boeck Supérieur .P 412-450
SILLY Y. Février 2012- L’insuffisance rénale aiguë .Sante Magazine. http://www.santemagazine.fr/maladie-insuffisance-renale-aigue-245.html.
SIMOON P,SENG ANG K,BOUGEARD D,BOULAKROUZ R,BOURBIGOT B, CHARASSE C,CAHEUX P,MIGNARD JP, NOUEL O et STANEXU C. 2007-L'insuffisance rénale: Prévention et traitements.2 Ed. Elsevier Masson. P 268-314
SOCIETE CANNADIENNE DE CANCER. 2011- analyses biochimiques sanguines, Canada. http://www.cancer.ca/fr-ca/cancer-information/diagnosis-and-treatment/tests-and-procedures/blood-chemistry-tests/?region=bc#Titre.
STEVENS A, Lowe J et YOUNG B.2002-Anatomie pathologique. 4 Ed. Boeck Supérieur. P 179-210
THI QUYNH HUONG NGUYEN.2009. Insuffisance rénale chronique. Ed. Medecine Sciences Publication, France. P 70-72.
TIETZ . 2014- Clinical guide to laboratory test. 4eme Ed. Elsevier . USA. P 244-249
VALDIGUIE P. 2012- biochimie clinique. 2eme Ed. EMI, France. P 180.
VAUTRIN PO.2009- Pleurésies d’origine sous diaphragmatique a proposé d’un cas. Doctorat. Université Henri Poincaré-NANCY 1.France.Vol 43
WYSS M et KADDURAHDAOUK R. 2000- Créatine and créatinine métabolisme.2 Ed. APS. USA. P 80-87
ZAGAURY G et BRUYERE F.1998- Médie Chiffres les 8000 chiffres clés de la médecine clinique. 3 Ed. Boeck Secundair.P 213- 345
ZAGAURY G et BRUYERE F.1998- Médie Chiffres les 8000 chiffres clés de la médecine clinique. 3 Ed. Boeck Secundair.P 213- 345
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AnnexesANNEX 01: (UREE-BUN) Biosystems
ANNEX 02: (UREE-UV) Biosystems
ANNEX 03: (créatinine- Jaffé) SPINREACT
RESUME
Les analyses biochimiques médicales sont très importantes et indispensable pour le
diagnostic de plusieurs pathologies. Le dosage de l’urée et la créatinine permet
l’évaluation de ces métabolites à partir d’un prélèvement sanguine ou urinaire, le
taux élevé de ces derniers indique une (IRA ou IRC). L’obtention des résultats
précise et fiable nécessite d’utilisation d’une méthode reproductible, le dosage de la
créatinine est réalisé par la méthode de Jaffée, par ailleurs le dosage de l’urée et
réalisée par deux méthode (UV ou COLOR). A cause de la justesse la méthode de
Jaffée et UV sont les plus utiliser au niveau des laboratoires médicales.
Mots clés : urée, UV, COLOR, créatinine, dosage.
ABSTRACTا
Medical biochemical analyzes are very important and essential for the diagnosis of
several diseases. The determination of urea and creatinine allows assessment of these
metabolites from a blood or urine sample, the high rate of these indicates a (IRA
IRC). Obtaining accurate and reliable results requires use of a reproducible method,
the determination of creatinine is produced by the method of Jaffé, otherwise the
determination of urea and created by two method (UV or COLOR). Because of the
accuracy of the method Jaffé and UV are most used in medical laboratories.