Wochenplan für die Studenten Allgemeines: - Bücher + Telefon ( relevante Nummern auf dem Wochenplan) dürfen benutzt werden; immer wenn das Telefon klingelt ist es für euch - Mikroskop am PC bitte nicht nutzen; die anderen Mikroskope nach Gebrauch mit Alkohol sauber machen - Im Adlerhorst und in der Zyto müssen keine Kittel getragen werden, essen und trinken ist erlaubt - Die Unterlagen, die über die Woche bearbeitet werden müssen ( Fälle Adele + Alfred + Scully, Englische Beschreibung des Vorganges eines Blutausstriches, Blutausstriche H1 – H6, Infos zu den wichtigsten Parasiten ) , befinden sich als Kopievorlagen in den Ordnern - An den Tagen, an denen Nachmittags keine Fortbildung ist, ist bis 13 Uhr Anwesenheitspflicht dann könnt ihr euch eine Unterschrift von uns aus der Zyto holen oder wenn niemand da ist den MTAs Bescheid sagen, dass ihr geht Montag - Selbststudium für die Fälle Alfred, Adele und Scully mit den Unterlagen -> überlegen welches die Haupterkrankungen des Tieres sind, aber auch ein bisschen drum herum lesen. - Zum Beispiel: Ca : Welches Hormon reguliert den Calciumhaushalt? Wo wird dieses Hormon gebildet? Harnstoff: wie kann man die DD einteilen? ( prärenal..) Dienstag - Labor / Zytologie nach der Visite ( siehe Plan) - Selbststudium (..evtl. schon Blutausstriche H1 – H6 bearbeiten + und die Parasiten, die in einem blauen Kasten mit drin sind anschauen) - Vorgehen bei einem Blutausstrich ( siehe englische Anleitung und Zettel zum Ausfüllen): 1. Beurteilung der Leukozyten Zahl in der 100er Vergrößerung im Monolayer 2. in der Fahne gucken ob Thrombozytenaggregate oder Parasiten vorhanden sind 3. Beurteilung der Leukozyten, Erys und Thrombozyten im Monolayer in der 1000er Vergrößerung Mittwoch - Labor/ Zytologie/Selbststudium nach der Visite und Selbststudium - 14.15 Uhr Besprechung der Fälle im Adlerhorst Donnerstag - Labor/ Zytologie; Bearbeitung des Zytoquiz ( mit dem rotem Kasten! ) und Selbststudium - 14.15 Uhr Besprechung der Blutausstriche H1 – H6 Freitag - nach der Visite kommt ihr zu uns in die Zytologie und bekommt 1-2 Blutausstriche und Fälle als „ kleinen Test“. Wenn ihr mit der Bearbeitung fertig seid, sagt ihr uns Bescheid und wir besprechen diese und das Zytoquiz zusammen
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Wochenplan für die Studenten - uni-giessen.degi1853/Dokumente_Rotationsstudenten-Labor-Okt2015... · Bitte für die Blutausstriche diese Vorlage kopieren! Befundauswertung Hämatologie
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Wochenplan für die Studenten
Allgemeines:
- Bücher + Telefon ( relevante Nummern auf dem Wochenplan) dürfen benutzt
werden; immer wenn das Telefon klingelt ist es für euch
- Mikroskop am PC bitte nicht nutzen; die anderen Mikroskope nach Gebrauch mit
Alkohol sauber machen
- Im Adlerhorst und in der Zyto müssen keine Kittel getragen werden, essen und
trinken ist erlaubt
- Die Unterlagen, die über die Woche bearbeitet werden müssen ( Fälle Adele + Alfred
+ Scully, Englische Beschreibung des Vorganges eines Blutausstriches, Blutausstriche
H1 – H6, Infos zu den wichtigsten Parasiten ) , befinden sich als Kopievorlagen in den
Ordnern
- An den Tagen, an denen Nachmittags keine Fortbildung ist, ist bis 13 Uhr
Anwesenheitspflicht dann könnt ihr euch eine Unterschrift von uns aus der Zyto
holen oder wenn niemand da ist den MTAs Bescheid sagen, dass ihr geht
Montag
- Selbststudium für die Fälle Alfred, Adele und Scully mit den Unterlagen -> überlegen
welches die Haupterkrankungen des Tieres sind, aber auch ein bisschen drum herum
lesen.
- Zum Beispiel: Ca : Welches Hormon reguliert den Calciumhaushalt?
Wo wird dieses Hormon gebildet?
Harnstoff: wie kann man die DD einteilen? ( prärenal..)
Dienstag
- Labor / Zytologie nach der Visite ( siehe Plan)
- Selbststudium (..evtl. schon Blutausstriche H1 – H6 bearbeiten + und die Parasiten,
die in einem blauen Kasten mit drin sind anschauen)
- Vorgehen bei einem Blutausstrich ( siehe englische Anleitung und Zettel zum
Ausfüllen): 1. Beurteilung der Leukozyten Zahl in der 100er Vergrößerung im
Monolayer
2. in der Fahne gucken ob Thrombozytenaggregate oder Parasiten
vorhanden sind
3. Beurteilung der Leukozyten, Erys und Thrombozyten im Monolayer in
der 1000er Vergrößerung
Mittwoch
- Labor/ Zytologie/Selbststudium nach der Visite und Selbststudium
- 14.15 Uhr Besprechung der Fälle im Adlerhorst
Donnerstag
- Labor/ Zytologie; Bearbeitung des Zytoquiz ( mit dem rotem Kasten! ) und
Selbststudium
- 14.15 Uhr Besprechung der Blutausstriche H1 – H6
Freitag
- nach der Visite kommt ihr zu uns in die Zytologie und bekommt 1-2 Blutausstriche
und Fälle als „ kleinen Test“. Wenn ihr mit der Bearbeitung fertig seid, sagt ihr uns
Bescheid und wir besprechen diese und das Zytoquiz zusammen
PLAN FÜR LABORWOCHE
Vormittage: (d.h. direkt nach der Frühbesprechung bis Mittagspause)
Name Montag Dienstag Mittwoch Donnerstag Freitag
Student A
Selbststudium
Klin. Fälle Zytologie Labor
Selbststudium
Blutausstriche Evaluation
Student B
Selbststudium
Klin. Fälle Zytologie Labor
Selbststudium
Blutausstriche Evaluation
Student C
Selbststudium
Klin. Fälle Labor
Selbststudium
Blutausstriche Zytologie Evaluation
Student D
Selbststudium
Klin. Fälle Labor
Selbststudium
Blutausstriche Zytologie Evaluation
Student E
Selbststudium
Klin. Fälle Zytologie
Selbststudium
Blutausstriche Labor Evaluation
Nachmittage:
Mittwoch 14:15 Uhr: Klinische Fälle im Adlerhorst
Donnerstag 14:15 Uhr: Blutausstriche im Adlerhorst
Telefonnummern:
Büro Zytologie Diagnostik: 38784
Büro Dr. Bauer: 38608
Büro Assistenten: 38637
Büro Keller: 38645
Bitte für die Blutausstriche diese Vorlage kopieren! Befundauswertung Hämatologie PatientenNr. ____________ Spezies ____________ Alter ____________
1. Erythrozyten (Tipp: Schaue mit der 1000x‐Vergrößerung)
402 In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
Practical assessment of blood smears in dogs and cats
Rand Wilson
doi:10.1136/inp.d5352
Rand Wilson graduated with a
Doctorate of Veterinary Medicine
from Colorado State University
in 1988. After nearly 10 years in
practice, he undertook a combined
residency and PhD studies in
clinical pathology. He currently
works as a diagnostic clinical
pathologist at IDEXX. He is a
diplomate of the American Board
of Veterinary Practitioners and a
member of the RCVS.
Complete blood count (CBC) or haematological analysis is an integral part of
the diagnostic work-up in dogs and cats, and involves assessment of a freshly
prepared blood smear (also known as a blood film). Despite the widespread
availability of automated analysers, the value of a basic blood smear should
not be forgotten and should be incorporated into routine blood testing in
clinical practice. This article describes a step-by-step approach to blood smear
evaluation, which is simple, inexpensive and quick to perform.
Preparation
Standardisation and homology between anyone pre-
paring a blood smear is a desirable goal. Achieving
uniformity and minimising the inherent variability
associated with making blood smears will result in
greater accuracy in both qualitative and quantitative
assessments and differential counting:
Blood smears should be made soon after collection ■■
of blood into an appropriate anticoagulant tube
(EDTA or other). Use only new, clean slides;
Place a small drop of blood near one end of the ■■
slide. A common mistake is to place too large a
drop/too much blood on the slide – smaller is bet-
ter. A completed smear that covers two-thirds to
three-quarters of the entire slide often creates the
best monolayers for evaluation;
Place a spreading slide on the first slide, with the ■■
edge at an angle of about 30°, and draw back until
gently touching the drop of blood in the acute angle
between the slides;
Allow the blood to spread along the edge of the ■■
slide by smoothly and quickly sliding the spreader
slide across the first slide in one motion;
A well-formed blood smear will have a flame ■■
or thumb print shape (ideally not a rectangular
shape), with a thin feathered edge. The edge should
be smooth, uniform and progressively thinner than
the body of the smear, with a ‘thumb nail’ appear-
ance (thickest end of the smear near the drop site)
(Fig 1). This will minimise distortion of cells and
lead to an even distribution throughout the smear
and monolayer/reading area;
A rule of thumb is to prepare at least two good ■■
smears per patient;
Finally, practice makes perfect.■■
Evaluation
Smears should first be examined at low power (x4) to
determine whether any large atypical structures (eg,
microfilarial worms) are present, after which three
main segments or compartments should be analysed:
Thrombon (platelet line);■■
Leukon (white blood cell line);■■
Erythron (red blood cell line).■■
ThrombonEvaluate the thrombon at low power (x4). Examine the
feathered edge to check for any large cells or clumps
that may have been dragged there during the making
of the smear, and for any platelet clumps (small or
large) (Fig 2). If any clumps are found, it is likely that
the automated platelet count and/or estimated smear
count will be inaccurate. This is more common in cats,
which tend to exhibit platelet clumps and clots more
frequently. If platelet clumps are present, a fresh sample
may be required to obtain an accurate platelet count/
estimate.
Fig 1: Anatomy of the peripheral blood smear. (a) Examination of the feathered edge (F) will identify platelet clumps, large cells and microfilaria. (b) Assessment of the monolayer/reading area (M) allows the number of platelets and leucocytes to be estimated, as well as morphological evaluation
Pa
tie
nt
IDD
ate
Pa
tie
nt
IDD
ate
A
B
F
M
group.bmj.com on June 19, 2014 - Published by inpractice.bmj.comDownloaded from
405In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
Table 1: Characteristics suggestive of regenerative anaemia
Definition
Polychromasia and anisocytosis Polychromatophilic red blood cells are immature red blood cells characterised by a distinctive blue staining on a new methylene blue-stained slide. Reticulocytes are generally larger than the average mature red blood cell; a few of these may be present in normal smears from dogs and cats
In the case of anisocytosis, variations in red blood cell size is often related to the presence of larger polychromatophilic cells, and sometimes also to the presence of spherocytes (small dense red blood cells)
Both polychromasia and anisocytosis may be subjectively graded according to presence and severity as mild, moderate or marked, or 1+, 2+, 3+, 4+
Rubricytosis/nucleated red blood cells The presence of rubricytosis/nucleated red blood cells (nRBCs) is often supportive and related to a regenerative response. Differentiating nRBCs from lymphocytes can be challenging, and will require some previous training. However, in general, nRBCs have a cytoplasm that is similar to red blood cell cytoplasm – that is, a qualitatively different staining characteristic than lymphoid cytoplasm, and more condensed and uniform nuclei, and, often, basophilic nuclei are darker than lymphoid ones. In the smear pictured on the left, a nRBC can be seen at bottom right
Howell-Jolly bodies Howell-Jolly bodies are nuclear remnants from cell division. They are small basophilic, round structures in mature red blood cells, which may take some previous training and practice to identify
Basophilic stippling Basophilic stippling is demonstrated by aggregated ribosomes
Stain for all smears is Wright’s/modified Wright’s
10 µm
10 µm
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406 In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
Table 2: Morphological changes commonly seen on blood smears
Definition
Spherocytes Small, dense red blood cells with a lack of central pallor. They primarily result from antibody-mediated removal/loss of membrane, and generally indicate immune-mediated haemolytic anaemia. They can sometimes be seen in animals with other fragmentation anaemias
Autoagglutination Aggregates and clumping of red blood cells usually occurs due to coating with antibodies, which is generally related to immune-mediated haemolytic anaemia
Autoagglutination needs to be differentiated from increased rouleaux, which can be carried out with the help of a saline agglutination test (Box 1)
Rouleaux Often caused by increased proteins in the blood that do not coat individual red blood cells, and often results in a ‘stack of coins’ appearance, rather than large irregular clumps of cells
Heinz bodies Aggregates of denatured haemoglobin caused by oxidative damage, which appear as slightly pale structures, often near the edge of the red blood cell membrane causing a membrane defect or protrusion (‘nose’). These can be confirmed using new methylene blue-stained slides that are used for reticulocyte evaluation, and will be visible as pale blue, round structures (easier to identify than on regular stained smears). Scattered, low numbers of Heinz bodies can occasionally be seen in normal cats; however, when seen in cases of anaemia, they often indicate a relationship with oxidative damage and toxicity. Examples of Heinz body-inducing agents include acetaminophen, garlic, onion, propylene glycol and phenothiazine toxicity. In cats, Heinz bodies can sometimes be seen in cases of diabetes, hyperthyroidism and lymphoma, but are considered uncommon
10 µm
10 µm
10 µm
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407In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
Table 2 continued
Definition
Eccentrocytes Red blood cells with a fusion of opposed regions of oxidised/damaged membrane that leave a pale region on one side of affected cells. These tend to be more common in cases of oxidative damage in dogs than cats
Keratocytes and schistocytes Keratocytes (helmet cells, blister cells) and schistocytes (red blood cell fragments) are created by the same rigid structures and traumatic forces within the vascular system that damage red blood cells. They are often suggestive of fragmentation anaemias that are seen in cases of disseminated intravascular coagulation, vasculitis, haemangiosarcoma and endocarditis
Acanthocytes Spur cells with typically low numbers of irregular and blunted spikes, ‘arms’ or ‘paddles’ protruding from the edge of the red blood cells. These need to be differentiated from echinocytes (see below), which can be due to artefactual crenation. They are often related to splenic and hepatic disorders and, in particular, haem angiosarcoma
Echinocytes Burr cells with typically larger numbers of more uniform, pointy spikes/spicules protruding from the edge of red blood cells. They are often related to artefacts, but large numbers can be suggestive of pathological conditions when crenation is ruled out. The most classic type is type III echinocytosis, which is seen in cases of rattlesnake bites and envenomation
Stain for all smears is Wright’s/modified Wright’s
10 µm
10 µm
10 µm
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o Längliche Parasiten mit einem Flagellum und einem Kinetoplast
o Darf nicht mit gequetschten aktivierten Thrombozyten verwechselt werden!
‐ Serologie
‐ PCR
‐ Ist eine Impfung verfügbar?
o NEIN, da diese Parasiten eine hochgradige Antigenvariation aufweisen.
Originalarbeiten
Zusammenfassung
Hunde werden von ihren Besitzern zunehmendauf Auslandreisen mitgenommen, so dass die Klein-tier-Reisemedizin an Bedeutung gewinnt. Dazugehören sowohl die Pro- bzw. Metaphylaxe gegenverschiedene Infektionskrankheiten als auch derenDiagnose und Therapie. Insbesondere nach Rück-reise aus Südeuropa, den Subtropen oder Tropenkönnen Hunde mit exotischen Parasiten infiziertsein.Die höchsten Risiken bestehen bei importier-ten Rasse-, Hüte- und vor allem Findelhunden,welche zunehmend organisiert eingeführt werden.Die vorliegende Übersicht soll neue, praxisorien-tierte klinische Aspekte parasitärer Reiseerkran-kungen präsentieren.Zudem wird auf die zoonoti-sche Bedeutung einiger Parasitosen eingegangensowie auf das Etablierungspotenzial für die Schweiz.
Travel medicine of parasitic diseases in the dogSummary
Companion animals are increasingly brought alongby their owners to foreign countries.Thus, small an-imal travel medicine is becoming more important.The field includes both prophylaxis and metaphylaxisagainst various infectious diseases, as well as their di-agnosis and treatment. Dogs returning from South-ern Europe,but also from more tropical regions,maybe infected with exotic pathogens. In addition, im-ported pedigree or working dogs,and especially straydogs imported through welfare organisations, are athigh risk.The present overview summarises the clin-ical and practical aspects of exotic parasitic diseasesthat may affect such dogs,and the risk of such diseasesbecoming autochthonously transmitted in Switzer-land.Furthermore,the zoonotic potential of these in-fections will be considered.
Reisemedizinische Probleme haben in den letztenJahrzehnten vor allem im Kleintierbereich stark zu-genommen. Die Tierärzteschaft ist nicht nur zuneh-mend mit exotischen Erkrankungen konfrontiert,sie wird auch vermehrt von einer gut informiertenKundschaft in ihrer pro- bzw. metaphylaktischenBeratungsfunktion gefordert. Demzufolge gehörtdas Thema in den zentralen Bereich der kontinuier-lichen Weiterbildung von Tierärztinnen und Tier-ärzten. Einige importierte Reiseerkrankungen, wiezum Beispiel die Tollwut oder die Echinococcose,sind wichtige Zoonosen und somit von grosserseuchenpolizeilicher Bedeutung. Bei einigen Para-siten besteht aufgrund eines relativ grossen Ein-schleppungsrisikos auch die Gefahr der anschlies-senden Etablierung eines Übertragungskreislaufesin der Schweiz. Neue Fortschritte wurden in denletzten Jahren bei der Diagnose und Prophylaxewichtiger Reiseerkrankungen des Hundes erzielt.
Patientengut und Endemiegebiete
Die Beratung, welche am Anfang der Planung einerReise mit Hunden oder Katzen stattfindet, richtetsich nach der Feriendestination sowie der Reisezeitund Reisedauer, und sollte auch die Einreisebestim-mungen in EU-Länder und die Rückreiseformalitä-ten in die Schweiz berücksichtigen (Informationendazu unter www.bvet.admin.ch). Nebst den vorge-schriebenen Impfungen gibt es heute aus parasitolo-gischer Sicht eine grosse Palette von empfehlenswer-ten reiseprophylaktischen Massnahmen für Hunde(siehe Kapitel: «Reisemedizinische Empfehlungen fürHunde» und Tab. 3).
Der organisierte Import zahlreicher Hunde aus Tier-heimen des mediterranen Raumes und der Verkaufdieser Tiere, teilweise ohne genügende Angaben überihre Herkunft und den Krankheits- bzw. Gesund-heitszustand, stellt ein Problem dar (Zahner undBauer, 2004).Einen Einblick in diese Thematik lieferteine nicht randomisierte Untersuchung, in welcher in
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
einem Diskussionsforum im Internet BesitzerInnenvon Hunden im deutschsprachigen Raum (D,A, CH)zur Vorgeschichte ihres Tieres befragt wurden. Von111 Hunden, die im Leishmania-Test seropositivwaren, handelte es sich bei deren 103 um Import-hunde und nur bei 8 um reisebegleitende Hunde.DieMehrzahl der seropositiven Hunde stammte aus Spa-nien (67%), die übrigen aus Italien, Frankreich undGriechenland.Von 95 seropositiven Hunden stamm-ten 47% aus deutschen Tierheimen, 21% aus Tierhei-
men in Südeuropa, 14% wurden im Ausland zuge-kauft, 14% privat aus zweiter Hand und nur 4% vonausländischen Züchtern erworben. Interessant war dieTatsache, dass 28% dieser Hunde beim Erwerb abTierheim bereits an Leishmaniose erkrankt waren(Mettler et al., 2005a). Die geographische Verbreitung
verschiedener Erreger ist leider weltweit noch immerlückenhaft dokumentiert (Tab. 1). Daten aus Europalassen jedoch in einigen Fällen die Erstellung von gro-ben Verbreitungskarten zu (Abb.1:Leishmaniose;Abb.2: Echinococcose, E. granulosus).
Erregerbiologie und Gefahr der Verbreitungeingeschleppter Parasitosen
Eine zentrale Rolle bei der Übertragung vieler reise-medizinisch wichtiger Parasiten spielen Vektoren, vorallem Arthropoden. Daher ist die Biologie dieser Pa-rasiten an die Lebensweise ihrer Überträger gebun-den. Eine mögliche Ausbreitung von vektorübertra-genen Parasitosen in Zentraleuropa ist nicht nur vomgrundsätzlichen Vorkommen der Vektoren abhängig,sondern auch von klimatischen Bedingungen. Dazugehören die durchschnittliche,mittlere Tagestempera-tur in einem Gebiet, welche die Entwicklung vonVektor und Parasit ermöglicht sowie die Luftfeuchtig-keit (Genchi et al., 2005).Für einige parasitäre Reiseerkrankungen haben sichdie epidemiologischen Grundlagen in Zentraleuropastark gewandelt.Vektorübertragene Parasiten wie Di-rofilarien (Genchi et al., 1998), Leishmanien (Capelliet al., 2004) oder Thelazien (Otranto et al., 2003)haben sich zum Beispiel in Italien Richtung Nordenausgebreitet und erreichen zum Teil bereits die Süd-schweiz. Inwieweit sich diese Parasiten auch nördlichder Alpen festsetzen können, ist noch offen. Ein grös-seres Etablierungspotenzial haben sicherlich Band-würmer wie Echinococcus granulosus und Taenia-Artensowie Angiostrongylus vasorum. Letzterer wird bereitsautochthon in verschiedenen Gebieten der Schweizübertragen (Basel, Südtessin,unteres Rhonetal).Dahersollten Hunde, die aus Südeuropa nach Zentraleuropaeinreisen oder importiert werden, unbedingt vorgän-gig auf verschiedene Parasiten – einschliesslich Zecken– untersucht und gegebenenfalls behandelt werden.Bevorzugt sollte man Hunde bereits im Herkunftslandmit hochwirksamen Antiparasitika behandeln. Ent-sprechende Vorschriften gelten bereits für Anthelmin-thika-Behandlungen bei Einfuhr nach Grossbritan-nien,Schweden und Finnland.Derartige Massnahmensind zur Vermeidung des Einschleppens von zum Teilzoonotisch bedeutsamen Bandwürmern wie E. granu-losus und T. multiceps, aber auch bei T. hydatigena undT. ovis wegen ihrer fleischhygienischen und leistungs-vermindernden Aspekten von Bedeutung.
Babesiose
Gemäss heutigem Wissensstand treten in Europa zwei Unterarten von Babesia canis auf: B. canis canisund B. c. vogeli, wobei ersterer als pathogener gilt
Abbildung 1: Nördliche Endemiegrenze der caninen Leishmaniose(L. infantum) (––: dokumentierte Fälle [Trotz-Williams und Trees,2003;Velo et al., 2003;Amusategui et al., 2004; Papadopoulou etal., 2005; Zivicnjak et al., 2005] und persönliche Mitteilungen[Mazedonien: M. Schnyder; Bulgarien: B. Gottstein]); ·······:vermutete Grenze.
Abbildung 2:Approximative Verbreitung von E. granulosus inEuropa (ausgefüllt Felder entsprechen einem endemischen, Punkteeinem sporadisch/punktuellen Vorkommen, modifiziert nach Romiget al. [2006]).
Tabelle 1: Importierte Parasitosen des Hundes:Verbreitung und Klinik.
CH:Westschweiz, vereinzelt imMittellandVermehrt auch in Zentraleuropa(Deutschland, Österreich,Frankreich) und weit verbreitetim ganzen Mittelmeerraum; inosteuropäischen Staaten
Im Mittelmeerraum bis zum 46.Grad (Höhe Bordeaux,Vald’Aosta und Arco; nördlicheGrenze siehe Abb. 1) undKüstengebiete Nordafrikas
Tropisches und subtropischesAfrika
Mittelmeerraum (Portugal,Italien, Frankreich Griechenland,gehäuft in Nordafrika)
CH: Einzelfälle im Tessin!Im ganzen Mittelmeerraum mitHochendemiegebieten inNorditalien und Toskana (Po-ebene!). In Frankreich bisnördlich von Paris
Mit verschiedener Prävalenzähnlich wie bei D. immitis
CH: Nordwestschweiz, Südtessinund unteres RhonetalSporadisch in Mitteleuropa,Italien, Südwestfrankreich, Irland,Südwestengland, Dänemark
Perakute oder akute Infektion: Ab 7.–21.Tag p.i.Fieber, Mattigkeit,Appetitlosigkeit,Anämie, Ikterus,Haemoglobulinurie: «Notfall»Chronische Infektion: Geschwächte, abgemagerteTiere mit intermittierendem Fieber,Apathie undAnämie während Monaten
Inkubationszeit: Monate bis JahreSymptomatik beginnend mit Lymphadenopathie,Fieber, reduzierter Belastbarkeit und MattigkeitChronische Infektion: Gewichtsverlust, schuppi-gen nicht juckenden Hautveränderungen (Ohrrän-der, Nasenspiegel und Augen), Krallenhypertrophie,Keratokonjunktivitis, Niereninsuffizienz
Fieber,Anämie, Leukopenie,Thromzytopenie,Korneatrübung, Meningoencephalitis; oft akuteletale Verläufe
Akute Infektion: Fieber, Lymphadenopathie,Anorexie, gefolgt von MyositisChronische Infektion: Intermittierendes Fieber,Lymphadenopathie,Anämie, Durchfall, Erbrechen,Hyperästhesie, Muskelschmerzen und muskuläreNacken- und Rumpfversteifung
Sehr variabel; meistens Husten, respiratorische undcardiovaskuläre Symptome,Verbrauchs-koagulopa-thie (Hämatome,Anämie), selten zentralnervöseStörungen
Epiphora, Konjunktivitis, Keratitis
Asymptomatisch, Präpatenz ca. 45 Tage, Lebensdauerintestinaler Stadien ca. 1 Jahr
Asymptomatisch, Präpatenz 5–6 WochenLebensdauer intestinaler Stadien: mehrere Jahre
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
(Hauschild und Schein, 1996) (Abb. 3). Kleine Piro-plasmen werden als B. gibsoni klassifiziert, aber es fehltnoch eine genaue molekulargenetische Absicherungder entsprechenden europäischen Isolate (Zahler etal., 2000). Die canine Babesiose war früher eine typi-sche Reiseerkrankung im Zusammenhang mit einemAufenthalt im Mittelmeerraum, sie tritt jedoch zu-nehmend autochthon auch in der Schweiz, Deutsch-land und Österreich auf (Sager et al., 2005).Tierärzteaus der Praxis berichten, dass die Anzahl von Babe-siose-Fällen zum Beispiel in der Umgebung des Gen-fersees stark zugenommen hat. In letzter Zeit wurdenauch Fälle in den Kantonen Solothurn (Sager et al.,2005) und Aargau sowie dem Bodenseegebiet undRheintal gefunden, welche nicht auf Reisetätigkeitzurückgeführt werden konnten.Die wichtigsten Überträgerzecken – Dermacentor reti-culatus in der Westschweiz und Rhipicephalus sanguineusim Tessin – sind weit verbreitet. Da die Babesien auchleicht mittels Bluttransfusionen übertragen werdenkönnen, ist bei Blutspendern, die aus den besagtenRegionen stammen, eine vorgängige serologischeUntersuchung zu empfehlen.Andere Infektionsmög-lichkeiten, wie pränatale diaplazentare Transmission(insbesondere bei B. gibsoni), sind ebenfalls möglichund müssen epidemiologisch mitberücksichtigt wer-den. Die Babesiose des Hundes ist eine der ganz we-nigen Parasitosen, bei denen im Handel erhältlicheVakzinen zur Verfügung stehen.Verbunden mit einerVektorbekämpfung sollte damit die klinisch manifesteBabesiose heutzutage gut zu kontrollieren bzw. zuverhindern sein.
Leishmaniose
Die Verbreitung der Leishmaniose (Abb. 1) ist eng mitdem Vorkommen ihrer Überträgermücken, denSchmetterlingsmücken (Phlebotomen), verknüpft. In
Italien wurde kürzlich die Ausbreitung der Leishma-niose Richtung Norden dokumentiert. Im Jahre 1983galt der Norden Italiens (ausser Ligurien) als frei vonLeishmaniose. Im Verlaufe der 90er–Jahre etabliertensich stabile Leishmaniose-Herde in der Emilia Ro-magna, der Toskana, Umbrien, Marken und denAbruzzen, mit zwei zusätzlichen Herden in Venetienund Piemont. Durch die Überwachung mittels«LeishMap» konnten im Jahre 2003 neue Herde in derLombardei (Brescia) sowie im Südtirol (Arco) aufge-funden werden. Zusätzlich hatten sich bereits be-kannte Herde ausgeweitet (Aostatal, Piemont,Vene-tien und Emilia Romgana) (Capelli et al., 2004). DieÜberträgermücke Phlebotomus pernicosus liess sich infast allen Regionen ebenfalls nachweisen. Der Vektorkommt auch in weiten Gebieten Europas nördlich derEndemiegrenze der Leishmaniose (Abb. 1) vor, wennauch in geringen Populationsdichten. So wurde Phle-botomus perniciosus in der Südschweiz (Knechtli undJenni, 1989), in Nordfrankreich (Lewis, 1982) undkürzlich in Deutschland (Rheinland-Pfalz) (Nauckeund Schmitt, 2004) gefunden. P. mascittii, eine eben-falls am Menschen und Hund blutsaugende Art,wurde in Süddeutschland im Raum Baden-Würt-temberg nachgewiesen (Naucke und Pesson, 2000).Allerdings ist die Vektorkompetenz dieser Art nochnicht belegt.Die Leishmaniose kann beim Hund auchnicht-vektoriell übertragen werden. Beschriebenwurden diaplazentare Übertragung auf Welpen (Mo-ritz und Steuber, 1999;Masucci et al., 2003) sowie dieexperimentelle Infektion von Hunden durch Blut-transfusion (Owens et al., 2001). Beides dürfte jedochvon sehr geringer epidemiologischer Bedeutung sein.Auch eine direkte, mechanische Übertragung vonHund zu Hund (durch Bisse) wurde diskutiert. Siewird insbesondere bei Hunden in den USA, welchefür die Fuchsjagd eingesetzt werden, vermutet (Du-prey et al., 2006). Seit den 70er-Jahren gibt es in derSchweiz und Deutschland Berichte über vermutlichautochthone Leishmaniose-Fälle nicht nur beimHund, sondern auch beim Pferd und beim Menschen(Mettler et al., 2005a).
Durch den andauernden Import zahlreicherLeishmania-infizierter Hunde, die auch nach kli-nisch erfolgreicher Chemotherapie Parasitenträgerbleiben, wird unter anderem in der Schweiz ein Ri-siko aufgebaut, indem bei geeigneten Sommertem-peraturen lokale Schmetterlingsmücken Leishma-nien auf andere Hunde oder sogar auf denMenschen übertragen könnten. Der bereits erho-bene Vorwurf, dass die Tierärzteschaft an der Aus-breitung der Leishmaniose in endemiefreie Gebietebeiträgt, muss ernst genommen werden. Abklärun-gen über das Vorkommen von Leishmania-übertra-genden Phlebotomen in unseren Breitengradensind dringend notwendig. Werden solche Gebiete
Abbildung 3: Babesia canis in Erythrozyt im Blutausstrich, Giemsa-Färbung.
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
bekannt, so gilt es, eine Übertragung der Erreger –ausgehend von infizierten Hunden – z.B. durch dasAnlegen eines Deltamethrin-Halsbandes (Maroli etal., 2001) während der Mückensaison zu verrin-gern. Ebenso weist Permethrin in verschiedenenApplikationen und Dosierungen eine hohe Repel-lent- sowie eine insektizide Wirkung auf (Molina etal., 2001).Auch wenn diese Massnahme für Leishma-nia-infizierte Hunde wissenschaftlich noch nichterhärtet ist, könnte sie die Tierärzteschaft von denoben aufgeführten Vorwürfen entlasten, bis fundier-tere epidemiologische Daten vorliegen.
Hepatozoonose
Über die gegenwärtige Epidemiologie von Hepato-zoon canis in Europa ist nur wenig bekannt. Hundeinfizieren sich durch die perorale Aufnahme vonSchildzecken (hauptsächlich R. sanguineus, eventuellauch Ixodes hexagonus). Bei Hunden mit chroni-schen, oft subklinischen Infektionen persistieren dieGamonten über Monate bis Jahre in Blut-Leukozy-ten und stellen somit eine Infektionsquelle für dieZecken dar (Abb. 4). R. sanguineus kommt autoch-thon im Tessin vor und wird immer wieder fokalauch nördlich der Alpen nachgewiesen. Die Igel-zecke I. hexagonus hingegen ist in Zentraleuropa,besonders in Siedlungsräumen, weit verbreitet. Die limitierenden epidemiologischen Faktoren, wiedurchschnittliche Tagestemperaturen, sind für H. canis leider nicht bekannt. Einige anekdotischeInformationen aus der Praxis lassen jedoch vermu-ten, dass es nördlich der Alpen, wenn auch selten, zueiner Parasitenübertragung kommen kann.
Dirofilariose
Die mittleren Temperaturen in den Sommermonatenreichen in verschiedenen Teilen des Tessins aus, umeine autochthone Übertragung von Dirofilariendurch Stechmücken zu ermöglichen (Genchi et al.,1998; Genchi et al., 2005). Tatsächlich konnten imTessin vereinzelt sowohl Dirofilaria immitis als auch D.repens bei Hunden nachgewiesen werden. Bei einigendieser Fälle wurden auch autochthon erfolgte Über-tragungen vermutet (Bucklar et al., 1998; Petruschkeet al.,2001). Interessanterweise liess sich jedoch in denletzten Jahren keine Häufung von autochthonen Fäl-len im Tessin oder dem angrenzenden Norditalien do-kumentieren (C. Genchi und F. Naegeli, persönliche
Mitteilung). Auch wenn erst kürzlich der erste au-tochthone Fall mit einer D. repens-Infektion inDeutschland beschrieben wurde (Hermosilla et al.,2006), gibt es bisher keine Anzeichen einer Ausbrei-tung der Dirofilariose nördlich der Alpen. In Nord-amerika hingegen fand eine langsame Ausbreitungvon D. immitis vom Süden der USA bis nach Kanadastatt, wobei vermutet wird, dass sich sowohl Parasit alsauch Vektor an die kühleren Temperaturen langsamadaptiert haben (Eckert, 2000). Aus epidemiologi-schen Überlegungen empfehlen wir, Hunde mit Di-rofilarien-Befall auch gegen Mikrofilarien zu thera-pieren (Tab. 5,Abb. 5).
Angiostrongylose
Angiostrongylus vasorum weist einen heteroxenen Zy-klus zwischen Fuchs und Hund als Endwirte undWegschnecken verschiedener Gattungen als Zwi-schenwirte auf. Mehrere endemische Gebiete sind inItalien, Südwestfrankreich, Irland, Südwestenglandund Dänemark bekannt mit Prävalenzen bis zu 39 %
Abbildung 4: Gamont von Hepatozoon canis in einem Granulozytim Blutausstrich, Giemsa-Färbung.
Abbildung 5: Mikrofilarie von Dirofilaria spp. im Blutausstrich,Giemsa-Färbung.
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
bei Füchsen (Deplazes, 2006). Sporadische autoch-thone Fälle wurden in diversen europäischen Ländernunter anderem in der Schweiz bereits früher beschrie-ben (Eckert und Lämmler, 1972), und vereinzelt wer-den infizierte Hunde in die Schweiz importiert (Ri-bière et al., 2001). Erst kürzlich scheint jedoch eineHäufung von Fällen in der Nordschweiz und dem an-grenzenden Süddeutschland, im Tessin und im unte-ren Rhonetal aufzutreten (Staebler et al., 2005).Zudem konnte A. vasorum bei zwei Füchsen in derRegion Basel nachgewiesen werden, was das autoch-thone Vorkommen in der Wildtierpopulation bestätigt(Gottstein, 2001). Ob diese Infektionen von impor-tierten Fällen ausgingen oder ob der Parasit schonendemisch vorkam und in der stark gewachsenenFuchspopulation bessere Voraussetzungen für eineAusbreitung fand, ist nicht bekannt.Ein anschaulichesBeispiel für die Ausbreitungsmöglichkeit des Parasitenliefert Dänemark:Vermutlich von infizierten Hundenausgehend, welche wahrscheinlich aus Frankreich indie Region Kopenhagen importiert wurden, verbrei-tete sich A. vasorum über weite Teile von Dänemarkinnerhalb von weniger als 20 Jahren. Bedingt durchdie hohe Fuchsdichte in Mitteleuropa ist davon aus-zugehen, dass sich der Erreger in naher Zukunft stär-ker ausbreiten könnte, womit auch mehr Fälle beimHund zu erwarten wären.
Thelaziose
Der Augenwurm Thelazia callipaeda (Abb. 6), ein Ne-matode, befällt in der Regel Hunde, gelegentlich aberauch andere Caniden, Katzen, Kaninchen und seltenauch den Menschen. Dieser Parasit ist vor allem imFernen Osten verbreitet (Russland, China, Japan, In-dien u.a.). Er wurde aber kürzlich mit hoher Präva-lenz bei Hunden in Süditalien (bis zu 42%) undNorditalien (23%) sowie bei Füchsen (5%) nachge-
wiesen (Deplazes, 2006). Einige T. callipaeda-Fällewurden auch in Zürich in der Abteilung für Ophthal-mologie diagnostiziert (Spiess, persönliche Mittei-lung), und erst kürzlich berichteten Hermosilla et al.(2004) über den ersten,wahrscheinlich aus Italien im-portierten Fall in Deutschland. In einer laufendenDoktorarbeit konnte das autochthone Vorkommenvon T. callipaeda bei Hunden und Füchsen in ver-schiedenen Regionen des Tessins dokumentiert wer-den (Malacrida et al., 2006). Dabei handelt es sichwahrscheinlich um eine Expansion des norditalieni-schen Endemiegebietes. Inwieweit sich dieser Parasitauch nördlich der Alpen ausbreiten könnte, ist nochnicht bekannt, da erst kürzlich die Fruchtfliege (Phor-tica variegata) als Zwischenwirt in Süditalien identifi-ziert wurde (D. Otranto, persönliche Mitteilung).Hingegen erwies sich die normale Stubenfliege(Musca domestica) als nicht empfänglich (Otranto et al.,2005). Für eine weiterführende Risikoabschätzungfehlen aber noch viele biologische Grundlagen zudiesem Parasiten.
Bandwürmer (E. granulosus, T. ovis, T. multi-ceps u.a.)
Die Prävalenz der beim Hund vorkommenden gros-sen «Taenien» hat innerhalb der letzten beiden Jahr-zehnten in der Schweiz stark abgenommen, wahr-scheinlich bedingt durch den erhöhten Standard derFleischkontrolle und den Einsatz wirksamer Anthel-minthika.Ausdruck dafür ist auch die sinkende Präva-lenz des Cysticercenbefalles beim Schaf.Autochthonkommt bei Schafen und selten bei Schweinen diedurch T. hydatigena verursachte Cysticercus tenuicollis-Cysticercose vor.Von noch grösserer fleischhygieni-scher Bedeutung ist die Taenia ovis-Cysticercose desSchafes.Selten können ganze Herden massiv mit Mus-kelfinnen dieser Bandwurmart durchseucht sein.Über die Epidemiologie von T. ovis in Europa ist sehrwenig bekannt. Denkbar ist, dass die sporadischenEpidemien in Einzelherden durch importierte Hüte-hunde erfolgten. Noch seltener konnte bisher der Er-reger der so genannten «Drehkrankheit» des Schafes,der Coenurose, diagnostiziert werden. Nach jahr-zehntelangem Fehlen dieser Erkrankung tauchte dieCoenurose in einem bündnerischen Milchschafbe-stand bei mehreren Auen im Mai 2003 auf (Schwei-zer et al., 2006).Die Diagnose wurde durch den mor-phologischen Nachweis der eigrossen Coenurus-Zysten im Hirn mehrerer Schafe bestätigt. Aus derAnamnese ging hervor, dass der innovative Bauer an-fangs März 2003 zwei Hunde der Rasse «PastoreAbruzzese» aus Italien (Abruzzen) importiert undzum Schutz vor Wölfen zusammen mit der Herdegehalten hatte. Bei beiden Tieren erfolgte noch inItalien eine dokumentierte zweimalige Entwurmung
Blutmahlzeit der Schmetterlingsmücken(Phlebotomus-Arten)Zoonose im Endemiegebiet, besonders beiImmungeschwächten; direkte Übertragungvom Hund wenig wahrscheinlich, iatrogeneÜbertragung möglich
Verzehr von infizierten Zecken: Rhipicephalussanguineus (Ixodes hexagonus)Keine Zoonose
Vektorielle Übertragung bei Blutmahlzeitdurch Stechmücken (Culex,Aedes,Anopheles)Zoonose: meistens rel. harmlose, kleineHerde in der Lunge
Vektorielle Übertragung wie bei D. immitisZoonose: Augenfilariose, subkutane Knoten(meistens rel. harmlos)
Bei Verzehr von infizierten Schnecken (Arionrufus, u.a.)Keine Zoonose
Genauer Vektor in Europa unbekannt, wahr-scheinlich DipteraZoonose: Einzelfälle in Asien beschrieben
Endwirte (EW):Verzehr von finnenhaltigenInnereien von SchafenZwischenwirte (ZW): p.o.Aufnahme vonEiern aus dem Kot der EWZoonose: Zystische Echinococcose
EW:Verzehr von finnenhaltigem Nervenge-webe (Schafhirn)ZW: p.o.Aufnahme von Eiern aus dem Kotder EWZoonose: Einzelfälle vonT. multiceps(Coenurose) beim Menschen beschrieben(sehr selten)
EW:Verzehr von finnenhaltiger MuskulaturZW: p.o.Aufnahme von Eiern aus dem Kotder EWKeine Zoonose
Hoch; ist ans Zeckenvorkommen gebunden:R. sanguineus ist im Tessin etabliert und kommtvereinzelt nördlich der Alpen vor, kann inRäumen und im Auto über Monate überle-ben. D. reticulatus: besonders in der West-schweiz (Genf) weit verbreitet
Gering: zeitlich limitiert, fokal beim Auftretenvon Schmetterlingsmücken möglich
Ist ans Zeckenvorkommen gebunden, imTessin hoch
Hoch im Tessin, nördlich der Alpen gering
Hoch im Tessin, nördlich der Alpen gering
Hoch: Zwischenwirt und Füchse als Endwirteubiquitär vorhanden. Im Südtessin, RegionBasel und unterem Rhonetal bereits etabliert
Hoch: im Tessin bereits autochthonnördlich der Alpen noch unbekannt
Hoch: besonders für die Schafpopulation
Mittelgradig: besonders für die Schafpopulation
Hoch: besonders für die Schafpopulation
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
mit einem Febantelhaltigen Präparat, was den Bauernbewog, die Hunde nicht sofort nochmals zu entwur-men.Bei der Abklärung dieses Falles gelang der Nach-weis von Taeniiden-Eiern in Kotproben aus der Um-gebung. Nach der diagnostischen Entwurmung derHunde schied ein einjähriger Rüde unter anderemdie Bandwürmer T. multiceps und einige hundertgravide E. granulosus aus.
Der beim Rind noch vor 20 Jahren regelmässigvorkommende E. granulosus-Befall, verursacht durchden so genannten «Rinderstamm» von E. granulosus(neulich E. ortleppi genannt), kommt in der Schweizautochthon faktisch nicht mehr vor. Zudem gilt auchdie schweizerische Schafpopulation als frei vom so ge-nannten «Schafstamm» von E. granulosus. Da die epi-demiologischen und biologischen Voraussetzungenfür die Verbreitung des «Schafstammes» auch nördlichder Alpen durchaus noch gegeben sind und dieserStamm ein besonders grosses zoonotisches Potenzialaufweist (Eckert und Deplazes, 2004), sollte eine Ein-schleppung dieser Parasitose aus dem Mittelmeer-raum durch eine konsequente anthelminthische Behandlung importierter Hunde unbedingt unter-bunden werden. Bewiesenes oder vermutetes Ein-schleppen von E. granulosus durch importierte, infi-zierte Hunde wurde wiederholt nachgewiesen. Beider Untersuchung von Findelhunden zum Beispielim Tessin zeigte ein Hütehund massiven Befall mit E.granulosus («Schafstamm») sowie mit D. immitis. Mitgrösster Wahrscheinlichkeit stammte dieser Hund ausItalien (Deplazes et al., 1995). Ein gut dokumentier-ter anderer Fall von einem kleinen E. granulosus-Aus-bruch bei Schafen basierte auf dem Zukauf des mit E.granulosus befallenen «Pastore Abruzzese» aus Italienmit gleichzeitigem T. multiceps-Befall (Schweizer etal., 2006). Bei der Untersuchung der an Coenuroseverendeten Schafe fielen wenige Millimeter grosseLäsionen in der Leber auf, die molekular als kleine E.granulosus-Zysten des «Schafstammes» identifiziertwurden.E. granulosus, jedoch besonders die oben erwähntenTaenia-Arten des Hundes (T. hydatigena,T. ovis und T.multiceps) haben ein sehr grosses Reproduktionspo-tenzial. So scheiden zum Beispiel Hunde mit T. hyda-tigena-Befall über 5 Jahre lang sehr regelmässig tau-sende von Proglottiden aus (Deplazes und Eckert,1988). Daher können Einzelhunde über sehr langeZeit riesige Flächen kontaminieren und so den Zy-klus dieser Parasiten aufrechterhalten. WiederholteEinzelbeobachtungen sprechen dafür, dass immerwieder mit Taenien oder Echinococcen infizierteHunde in die Schweiz importiert werden, welche soeine Wiederansiedlung oder Neuausbreitung dieserCestoden nördlich der Alpen ermöglichen.
Bedeutung der zoonotischen Übertragung
Einen Überblick über das zoonotische Potenzial deraufgeführten Erreger liefert Tabelle 2. Eine besondereBedeutung kommt sicherlich E. granulosus zu, bedingtdurch den meist engen Kontakt zwischen Hund undMensch sowie der gleichzeitigen Ausscheidung voninfektiösen Eiern im Kot der Hunde, welche auchhäufig im Fell der Tiere haften bleiben. Leishmania in-fantum und Dirofilaria immitis hingegen haben einediesbezüglich etwas geringere Bedeutung, da zusätz-lich eine Klima-abhängige Entwicklung in den Vek-toren notwendig ist. Zudem ist der Mensch wenigempfänglich für diese im Mittelmeerraum vorherr-schenden Parasitenarten.
Reisemedizinische Empfehlungen für Hunde(modifiziert nach [Deplazes, 1998])
Prophylaxe bei Hunden mit Aufenthalt im Mittel-meerraum, Tropen und Subtropen
In der Tabelle 3 sind die wichtigsten pro- und meta-phylaktischen Möglichkeiten zusammengefasst.
• Babesiose: Die seit vielen Jahren bekannte und gutverträgliche Pirodog®-Impfung schützt vor schwe-ren klinischen Erkrankungen, jedoch nicht sichervor Infektionen.Die Impfung ist nicht gegen alle B.canis-Stämme gleich wirksam, insbesondere auchnicht gegen die seltener vorkommende B. gibsoni-Art. Ein im Januar 2006 eingeführter neuer Impf-stoff (Nobivac® Piro, Intervet) verwendet löslicheAntigene von sowohl B. canis canis als auch B. canisrossi, so dass das Schutzspektrum nun verschiedeneStämme oder Genotypen erfassen sollte. Unabhän-gige klinische und epidemiologische Erfahrungenmit dieser Impfung stehen noch aus.Hunde,welchemit der früheren Vakzine bereits geimpft wordenwaren, müssen mit der neuen Vakzine von Grundauf neu geimpft werden.Chemoprophylaxe: Imidocarb-diproprionat: Imi-zol® und Carbesia® können gemäss Literatur zurChemoprohylaxe eingesetzt werden, praktisch fin-det dieser Ansatz jedoch kaum Verwendung. DieSchutzwirkung beträgt 2–6 Wochen bei einer Dosierung von 3–6 mg/kg Kgw. s.c. Tetrazykline(Doxycyclin): Nach täglicher Gabe von 20 mg/kgKgw p.o. traten keine klinischen Symptome der Ba-besiose nach Infektion mit einem europäischen Iso-lat auf (Vercammen et al., 1996a), praktische Erfah-rungen mit diesem Wirkstoff fehlen jedoch, so dassdieser Ansatz noch nicht empfohlen werden kann.
• Leishmaniose: Ein mit Pyrethroiden (Deltame-thrin) imprägniertes Halsband (Scalibor®) schütztHunde in Hochendemiegebieten während Mona-
ten vor Schmetterlingsmückenstichen (96% Re-duktion),nicht immer jedoch vor Infektion (Maroliet al., 2001; Nogueira et al., 2005). Permethrin inunterschiedlichen Dosierungen und Applikationenist ein gutes Repellent und besitzt eine insektizideWirkung (Molina et al., 2001). Diese Möglichkeitist als Beitrag zur Expositionsprophylaxe empfeh-lenswert. Eine Impfung (Leishmune®; in derSchweiz nicht registriert) wurde kürzlich in Süd-amerika entwickelt. Die präliminären Resultateeiner ersten klinischen Studie waren vielverspre-chend (Nogueira et al., 2005). Allerdings baucht esnoch weitere, unabhängige Studien, um die Wirk-samkeit dieser Impfung zu bestätigen, insbesondereauch im Hinblick auf europäische Leishmania-Arten.
• Dirofilariose: Die sehr einfach zu verabreichende,risikolose und hochwirksame Dirofilaria-Prophylaxemit makrozyklischen Laktonen (ML), sollte wäh-rend der Mückensaison durchgeführt werden (einebestehende Dirofilaria-Infektion bzw. Mikrofilarä-mie ist jedoch vorher auszuschliessen!). Einige MLschützen in prophylaktischer Dosierung zusätzlichgegen intestinale Nematoden, nicht jedoch gegenBandwürmer. Diese Lücke wird durch neue Kom-binationspräparate gefüllt, welche Praziquantel ent-halten (s.Tab. 3).
• Prophylaxe gegen Zeckenbefall: Applikationvon Akarizid-Spray, Puder oder Spot-on und Anle-gen von Akarizid-Halsbändern.Nicht alle Halsbänder,
Parasitose Möglichkeiten der Prophylaxe (Auswahl an Medikamenten)
Babesiose
Leishmaniose
Hepatozoonose
Dirofilariose
EchinococcoseTaeniose
Zecken:(auch Prophylaxe gegen Babesioseund Hepatozoonose)
Angiostrongylose
Thelaziose
Tabelle 3: Prophylaxe bei Hunden für Reisen in den Mittelmeerraum.
• Impfprophylaxe (Pirodog®, Nobivac® Piro). 2 Injektionen im Abstand von 3–6 Wochen,Immunität 3–4 Wochen nach Grundimmunisierung. Impfschutz vor klinischer Erkrankungca. 6 Monate, danach Booster empfohlen 1),2)
• Chemoprophylaxe: Imidocarb-diproprionat (Imizol®*, Carbesia®*) 3–6 mg/kg Kgw. s.c.Verabreicherung bei Reiseantritt. Schutzwirkung ca. 4 Wochen. 3)
Tetrazykline (Doxycyclin): tägliche Gabe von 20 mg/kg Kgw p.o. 4)
• Prophylaxe gegen Zecken (siehe unten)
• Repellentien gegen Insekten bzw. rasch wirkende Insektizide vermindern das Infektionsri-siko. Deltamethrin (Scalibor-Protectorband®) und Permethrin (Exspot®,Advantix®)reduzieren Phlebotomen-Exposition und vermindern daher Leishmania-Übertragung 5),6).
• Meiden von Endemiegebieten (Risikoabschätzung bei Kurzaufenthalten!)• Impfung (Leishmune®*):Wirkung für Europa noch nicht erprobt 7),8)
• Spezifische Prophylaxe nicht vorhanden; Prophylaxe gegen Zeckenbefall (siehe unten)
• Chemoprophylaxe mit makrozyklischen Laktonen: Ivermectin (Heartgard®*), Milbemyci-noxim (Milbemax®, Interceptor®, Sentinel Spectrum®, Program plus®), Selamectin (Strong-hold®) und Moxidectin (Advocate®) 9)
Für alle gilt: Erste Applikation innerhalb von 30 Tagen nach Einreise in ein Endemiegebiet,alle 30 Tage während Mückenexposition, letzte Applikation 30 Tage nach letzter Exposition
• keine rohen Innereien (E. granulosus) resp. Nervengewebe (Schafhirn; T. multiceps) füttern• alle 6 Wochen Praziquantel (z.B. Droncit®, Caniquantel®) verabreichen 9)
Diverse Akarizid-Halsbänder (Auswahl) mit Wirkung auf Zecken (Dauer nach Firmenangaben):• Bendiocarb: Parasitex®,Wirkung gegen Zecken ca. 5 Monate• Amitraz: Preventic®,Wirkung gegen Zecken ca. 4 Monate• Deltamethrin: Scalibor®,Wirkung gegen Zecken ca. 5–6 Monate
Spot-on mit:• Permethrin: exspot®,Wirkung gegen Zecken ca. 3–4 Wochen• Fipronil: Frontline®,Wirkung gegen Zecken ca. 1 Monat
Schneckenverzehr unterbinden. Bisher keine bewiesene Prophylaxe bekannt.
Noch keine bekannt.
1) (Schetters et al., 2006), 2) (Eckert und Deplazes, 1996), 3) (Vercammen et al., 1996b), 4) (Vercammen et al., 1996a),5) (Maroli et al., 2001), 6) (Molina et al., 2001), 7) (Saraiva et al., 2006), 8) (Nogueira et al., 2005), 9) (Lit., Deplazes, 2006).* In der Schweiz nicht zugelassen.
Parasitennachweis in in-vitro-Kulturenaus Lymphknoten- oder Knochen-markspunktaten (erlaubt biochemischeCharakterisierung)PCR aus Lymph- und Knochenmarks-punktarten oder Hautbiopsien (Sensiti-vität aus Blut erniedrigt) 2),3)
Serologie mit verfeinertem Test (ELISA,Westernblot) auch für die sensitiveDiagnose asymptomatischer Infektionen 4),5)
Serologie mit Nachweis von Antikör-pern oder Antigenen (in Europa kaumangeboten) 6)
Artdiagnose anhand der Morphologiemit der «sauren Phosphatasefärbung»(aufwändig) oder PCR 7)
Relativ spezifischer Antigennachweis imSerum für Infektionen mit adulten D. immitis (ab 5. Monat p.i.) 7)
Morphologische Diagnose aller Stadien(Larven im Gewebe nach Verdauung,isolierte Adulte) 8)
Morphologische Diagnose der adultenStadien oder PCR für alle Stadien
Gattungsspezifischer Nachweis vonKoproantigenen z.B. von Echinococcus-ArtenPCR und Sequenzierung erlaubt eineartspezifische und bei Echinococcusgranulosus eine stammesspezifischeDiagnose 9)
4g frischer oder bei -20°C gefrorener,unfixierter Kot
1) (Sager et al., 2005), 2) (Mathis und Deplazes, 1995), 3) (Muller et al., 2003), 4) (Gottstein et al., 1988), 5) (Mettler et al., 2005b),6) (Lit.,Tenter und Deplazes, 2006), 7) (Lit., Deplazes, 2006), 8) (Staebler et al., 2005), 9) (Mathis und Deplazes, 2006).
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
die zur Flohbekämpfung eingesetzt werden (insek-tizid), haben eine ausreichende Wirksamkeit gegenZecken (akarizid)! Auch sind nicht alle Präparategleich wasserbeständig! Achtung, die meisten Prä-parate mit guter Wirksamkeit gegen Zecken sind fürKatzen nicht geeignet (s.Tab. 3).
Tierärztliche Untersuchung nach Kurzaufenthalt inEndemiegebieten
Für Kontrolluntersuchungen nach Kurzaufenthalt inpotenziellen Endemiegebieten sollten bei «gesunden»Hunden folgende Punkte berücksichtigt werden:Anamnestische Angaben:• Zeitraum des Aufenthaltes, Berücksichtigung der
Mückensaison (Zecken können das ganze Jahr aktivsein!)
• Wurde eine Pro- oder Metaphylaxe durchgeführt?• Aufenthaltsort in städtischen oder ländlichen Ge-
genden?• Zeigte der Hund während des Aufenthaltes Krank-
heitssymptome?• Wurde Zeckenbefall beobachtet?• Besteht zurzeit Zeckenbefall? Wenn ja, Zecken so-
fort entfernen und eventuell bestimmen lassen!• Wurde rohes Fleisch oder Schlachtabfälle verfüt-
tert?Liegt bei Hunden nach Auslandaufenthalt und ohneProphylaxe ein Verdacht auf Dirofilaria-Exposition vor,empfiehlt sich eine zweimalige Behandlung miteinem ML in der prophylaktischen Dosierung (Tab.5).Wenn nach der klinischen Untersuchung (Hämatolo-gie/Blutchemie) keine Anhaltspunkte für das Vorlie-gen einer Parasitose gefunden werden, erübrigen sichsofortige Massnahmen.Wichtig: Die Inkubationszeit der verschiedenenParasitosen schwankt zwischen einigen Tagen undJahren (s. Tab. 1). Für den Ausschluss einer Dirofila-riose oder Leishmaniose muss daher eine Zweitunter-suchung nach ca. 6–8 Monaten (vorausgesetzt, dassvorher keine Krankheitserscheinungen auftreten) ver-einbart werden (konkretes zur Diagnostik siehe Tab.4).
Vorgehen bei importierten Hunden
Anamnestische Angaben:• Aus welcher Region stammt der Hund (Nation;
Stadt oder Land)• Handelt es sich um einen Findel-, Zucht- oder Ar-
beitshund• Wurde das Tier einzeln durch den neuen Halter
oder durch eine Organisation importiert mit demZweck, die Tiere weiter zu platzieren?
• Impfausweis kritisch beurteilen!(zusätzliche Bestätigungen über Parasitenstatus sindnicht immer zuverlässig!)
• Besteht zurzeit Zeckenbefall? Wenn ja, Zecken so-fort entfernen und eventuell bestimmen lassen!
Wichtig ist die Aufklärung der neuen Tierhalter, weilsich gewisse Infektionen, wie zum Beispiel dieLeishmaniose, erst nach Jahren manifestieren und dieBehandlungen langwierig und teuer sein können.
Parasitologische Untersuchungen
(Diagnostik und Material siehe Tab. 4):• Parasitologische Kotuntersuchung (inklusive Baer-
mann-Trichter); eventuell sofort auch gegen Band-würmer wirksame anthelminthische Behandlunganordnen (Achtung:Bei möglicher Infektion mit E.granulosus muss der Kot bis 3 Tage nach Behandlungvon den Besitzern fachgerecht eingesammelt undentsorgt werden).
• Blutuntersuchung:Blutausstriche auf Babesien,He-patozoon, Mikrofilarien und Trypanosomen unter-suchen.
• Serologie auf Leishmaniose und Babesiose; Anti-gennachweis im Serum/Plasma auf Dirofilariose.Grund dafür ist, dass bei allen drei Parasitosen auchasymptomatische Infektionen vorliegen können.
• Phenamidin: Oxopirvedine®* 15mg/kg Kgw. s.c.Wiederholung nach 48h bei persistieren-der Symptomatik
• Erste Wahl: Allopurinol:Allopur®*, Mephanol®*, Zyloric®* (u.a.) in einer Dosierung von 1x täglich 20mg/Kg Kgw. für Monate bis Jahre
• Zweite Wahl: N-Methylglucaminantimonat: Glucantime®*
1. und 2.Tag: 100mg/kg Kgw. s.c. oder langsam i.v.3. bis 10.Tag: 200–300mg/kg Kgw. s.c. oder langsam i.v.11.bis 25.Tag: Therapiefreies Intervall von 14 Tagen26.bis 33.Tag: Wiederholung der Therapie wie an Tagen 3–10.
• Dritte Wahl: Stibogluconat-Natrium: Pentostam®* 10–20mg/kg Kgw. 1x täglich während10 Tagen streng i.v. Behandlung in Intervallen von 10 Tagen einmal bis mehrfach wieder-holen 1)
Mit allen erwähnten Präparaten gelingt eine Elimination der Infektion i.d.R. nicht,die Hunde bleiben daher Infektionsquellen für Schmetterlingsmücken, früher oderspäter treten i.d.R. Rezidive auf.
Gegen adulte und 5. Stadien: Melarsamin: Immiticide®*, tief i. m..(1) Subklinische Form: 2.2mg/kg Kgw. 2x im Abstand von 3h;(2) Milde Form: 2.5mg/kg Kgw. 2x im Abstand von 24 h, zusätzlich Aspirin für 2 Wochen(3) Schwere Form: Symptomatische Vorbehandlung, dann 2.5mg/kg Kgw. unterstützt von
symptomatischer Therapie, ca. 2 Monate später wie bei (2) vorgehen 2)
Gegen Mikrofilarien: Makrozyklische Laktone: z.B. Stronghold®, Milbemax® und andere 2)
• Fenbendazol (Panacur®) 50mg/kg Kgw über 5 Tage oder 20mg/kg Kgw 2 x täglich für 2–3 Wochen
Die einmalige Chemotherapie ist der mechanischen Entfernung der Adulten vorzuziehen.
• Praziquantel: z.B. Droncit®, Caniquantel®, 5mg/kg Kgw. (bei nachgewiesener E. granulosusInfektion aus Sicherheitsgründen nach 2–4 Tagen wiederholen).Achtung Infektionsgefahr� bis 3 Tage nach Therapie ausgeschiedenen Kot entsorgen! 2)
Akute Infektion:Trimethoprim/Sulfonamid (Borgal®) täglich über 6 TageChronische Infektion: Imidocarb-diproprionat: Carbesia®* 6mg/kg Kgw. s.c. 2x im Abstandvon 14 Tagen in Kombination mit Tetrazyklinen (5mg/kg Kgw., 2 x täglich über 7 Tage) oderTetracyclinhydrochlorid (3x täglich 22mg/kg Kgw.) 1)
Für H. americanum wird auch eine Kombinationstherapie mit Trimethoprim/Sulfonamid,Clindamycin und Pyrimethamin über 14 Tage eingesetzt.
1) (Lit.,Tenter und Deplazes, 2006), 2) (Lit., Deplazes, 2006), 3) (Lit., Staebler et al., 2005), 4) (Lia et al., 2004),5) (Bianciardi und Otranto, 2005).* In der Schweiz für Hunde nicht zugelassen.
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
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Les propriétaires emmènent de plus en plus souventleur chien à l’étranger de sorte que la médecine desvoyages chez les petits animaux gagne d’impor-tance. Cela concerne aussi bien la prophylaxie et lamétaphylaxie contre diverses maladies infectieusesque leur diagnostique et leur traitement. Les chienspeuvent, en particuliers au retour d`un voyage ausud de l’Europe ou aux zones subtropicales outropicales, être infectés par des parasites exotiques.Le risque est particulièrement élevé chez des racesimportées et principalement chez les chiens trou-vés qui sont de plus en plus introduits en Suisse defaçon organisée. Le présent travail documente desnouveaux aspects cliniques des maladies parasitairesexotiques axés sur la pratique. En outre, l’impor-tance en tant que zoonose de quelques parasitosesest évoquée ainsi que les possibilités de leur établis-sement en Suisse.
Malattie parassitarie dei cani nella medicinadei viaggi
I cani vengono sempre più frequentemente portatiin viaggi all’estero dai loro proprietari. Questocomporta un aumento dell’importanza della medi-cina dei viaggi.Una pro e metafilassi contro diversemalattie infettive diventa quindi di rigore comepure la diagnosi e la terapia. Bisogna tener presenteche di ritorno da viaggi in Europa meridionale, neisubtropici o tropici i cani possono essere stati infet-tati da parassiti esotici. I rischi maggiori in Svizzeraesistono nel caso importazioni di cani di razza e inparticolare di trovatelli. Il riassunto qui riportatopresenta aspetti nuovi, di malattie parassitarie deiviaggi orientati alla prassi clinica. Inoltre vieneapprofondito il significato zooonotico di alcuneparassitosi e il potenziale di un loro insediamentoin Svizzera.
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
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GerinnungaPTT STA 9,85-14,22 sec + 16,8PT STA 6,52-8,16 sec + 11,20
Urin-Sediment und StickSpezifisches Gewicht m> 1035 - 1021Erythrozyten 0-5 /400x Vergr. >5Leukozyten 0-5 /400x Vergr. >5Epithelzellen nicht vorhandenKristalle variabel /100x Vergr. nicht vorhandenZylinder nicht vorhandenBakterien /100x Vergr. vorhandenBakterien im Urin gefärb s. b.
Thrombozyten qualitative Beurteilung: KEINE THROMBOZYTENAGGREGATE
Harnstoff: 1.Messung: 25,55
Gesamteiweiss: 1.Messung: 92,3
23.08.2011-90095472
Spezifisches Gewicht manuell: Zytologie Urin Sediment (May Grünwald Giemsa gefärbt):-hochgradige septisch purulente Entzündung mit massenhaft extrazellulären und intrazellulären monomorphenStäbchen (Rat zur BU mit Resistenztest und antibiotische Therapie)
-keine epithelialen Zellverbände vorhanden
Erythrozyten: vereinzelt Erythrozyten
Leukozyten: massenhaft Leukozyten
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)