UNIVERSIDAD DE CALDAS VICERRECTORÍA DE INVESTIGACIONES Y POSTGRADOS 1. Información general Título del proyecto: EVALUACIÓN DE LA INCIDENCIA DE POBLACIONES DE Radopholus similis, Pratylenchus coffeae, Helicotylenchus dihystera y Meloidogyne spp., EN LA PRODUCCIÓN DE PLÁTANO DOMINICO HARTÓN (Musa AAB SIMMONDS) Nombre de los Grupos de Investigación: (registre la información de los grupos que participan) Nombre del Grupo: Fitotecnia Facultad/Departamento: Facultad de Ciencias Agropecuarias, departamento de Producción Agropecuaria Clasificación A1 Nombre: Facultad/Departamento: Clasificación _____ Tipo de proyecto de I&D: Investigación Básica: Investigación Aplicada: Creación: Innovación Tecnológica 1 : Tipo de innovación: Innovación tecnológica de producto Innovación tecnológica de proceso Innovación organizacional Área Estrátegica del Plan de Desarrollo Biotecnología Artes, Cultura y Humanidades Problemática Social Salud Ambiental No corresponde a ninguna de las áreas estratégicas INTEGRANTES DEL EQUIPO DE INVESTIGACIÓN (indicar cuál es el investigador responsable) NOMBRE/TIPO DE VINCULACIÓN EN LA UNIVERSIDAD DE CALDAS DEPARTAMENTO o PROGRAMA ÁREA DE CONOCIMIENTO (según anexo 1) ÓSCAR ADRIÁN GUZMÁN PIEDRAHITA Estudiante de doctorado en Ciencias Agrarias, Universidad de Caldas Producción Agropecuaria Agronomía, veterinaria y afines HORACIO LÓPEZ NICORA Director Tesis Doctorado Ph.D. en Fitopatología Universidad de Ohio Agronomía, veterinaria y afines CAROLINA ZAMORANO MONTAÑEZ Co-Director Tesis Doctorado Ph.D. en Malherbología. Producción Agropecuaria Agronomía, veterinaria y afines JAIRO LEGUIZAMÓN CAYCEDO Ph.D. en Fitopatología Agronomía, 1 Se refiere a aquellos proyectos que tienen como objetivo el desarrollo de nuevos productos o procesos, así como las modificaciones tecnológicas importantes en productos o procesos X X X
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UNIVERSIDAD DE CALDAS VICERRECTORÍA DE … · similis, Pratylenchus coffeae, Helicotylenchus dihystera y Meloidogyne spp., EN LA PRODUCCIÓN DE PLÁTANO DOMINICO HARTÓN (Musa AAB
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UNIVERSIDAD DE CALDAS
VICERRECTORÍA DE INVESTIGACIONES Y POSTGRADOS
1. Información general
Título del proyecto: EVALUACIÓN DE LA INCIDENCIA DE POBLACIONES DE Radopholus similis, Pratylenchus coffeae, Helicotylenchus dihystera y Meloidogyne spp., EN LA PRODUCCIÓN DE PLÁTANO DOMINICO HARTÓN (Musa AAB SIMMONDS)
Nombre de los Grupos de Investigación: (registre la información de los grupos que participan)
Nombre del Grupo: Fitotecnia Facultad/Departamento: Facultad de Ciencias Agropecuarias, departamento de Producción Agropecuaria
Clasificación A1
Nombre: Facultad/Departamento:
Clasificación _____
Tipo de proyecto de I&D: Investigación Básica: Investigación Aplicada: Creación: Innovación Tecnológica1:
Tipo de innovación: Innovación tecnológica de producto Innovación tecnológica de proceso Innovación organizacional
Área Estrátegica del Plan de Desarrollo
Biotecnología
Artes, Cultura y Humanidades Problemática Social
Salud
Ambiental
No corresponde a ninguna de las áreas estratégicas
INTEGRANTES DEL EQUIPO DE INVESTIGACIÓN (indicar cuál es el investigador responsable)
NOMBRE/TIPO DE VINCULACIÓN EN LA UNIVERSIDAD DE CALDAS
DEPARTAMENTO o PROGRAMA
ÁREA DE CONOCIMIENTO (según anexo 1)
ÓSCAR ADRIÁN GUZMÁN PIEDRAHITA Estudiante de doctorado en Ciencias Agrarias,
Tabla 3. Descripción de tratamientos en condiciones de campo. Plántulas de
plátano Dominico Hartón inoculadas con Radopholus similis (R.s), Pratylenchus
coffeae (Pra) y Meloidogyne spp. (Mel), y las tres (3) interacciones de los
fitonematodos que presenten la mayor disminución en la materia seca a partir del
25% de población de nematodo en almácigo.
Tratamiento Nematodo fitoparásito Densidad de población (%) individual y
sus interacciones
1
Radopholus similis
25
2 50
3 75
4 100
5
Pratylenchus spp.
25
6 50
7 75
8 100
9
Meloidogyne spp.
25
10 50
11 75
12 100
13 Interacción entre nematodos por definir de acuerdo a resultados de almácigo
14 Interacción entre nematodos por definir de acuerdo a resultados de almácigo
15 Interacción entre nematodos por definir de acuerdo a resultados de almácigo
16 Testigo absoluto (con agua)
17 Testigo con nematicida
El efecto de los tratamientos se evaluará bajo el diseño experimental bloques
completos al azar, donde el factor de bloqueo será las condiciones edáficas. En la
tabla 4, se ilustra la asignación de las parcelas experimentales de cada tratamiento,
en cada bloque. La información recolectada de las variables de respuesta se
registrará en bases de datos en el programa Excel.
Tabla 4. Sorteo de tratamientos para ser asignados bajo el diseño experimental de bloques completos al azar, en condiciones de campo. El factor de
bloqueo será las condiciones edáficas.
Bloques Tratamientos
I 13 5 11 8 7 16 4 10 9 17 3 2 1 15 6 12 14
II 5 13 12 16 9 17 15 13 14 6 8 10 7 4 2 11 1
III 15 11 9 3 4 17 7 2 1 14 16 8 6 5 13 12 10
IV 1 8 2 10 5 13 4 14 6 7 3 17 9 12 15 16 11
V 8 14 7 17 1 16 15 13 12 16 9 3 10 5 4 2 11
VI 15 9 7 10 13 4 12 5 2 17 11 16 14 3 8 1 6
VII 11 1 13 2 17 7 5 6 10 16 12 9 8 3 4 15 14
VII 4 8 15 2 14 6 12 9 3 17 13 1 10 16 11 7 5
VIII 13 12 11 16 17 15 8 7 1 6 2 9 14 10 5 3 4
IX 16 1 2 9 10 11 13 5 12 15 4 7 13 6 8 14 17
X 11 14 17 15 1 13 16 4 2 9 10 7 5 3 6 8 12
XI 3 7 11 9 2 4 1 15 14 8 6 13 12 5 10 17 16
XII 12 15 17 1 5 16 4 7 10 6 9 8 2 13 3 11 14
Análisis de la información en condiciones de campo
- Promedio y error estándar por tratamiento, tanto con la variable de respuesta
como las complementarias.
- Análisis de varianza al 5%, con la variable de respuesta, de acuerdo con el
modelo de análisis para el diseño bloques completos al azar, en arreglo factorial
3*4+5 (tres géneros de nematodos, 4 poblaciones de nematodos y 4 testigos
relativos y 1 testigo absoluto).
- Si el análisis de varianza muestra efecto de tratamientos: se aplicará la prueba
de Dunnett al 5% para establecer la diferencia entre los promedios de los
tratamientos con el testigo absoluto (cero poblaciones de nematodos). Si todos
los tratamientos difieren del testigo absoluto, se procederá a evaluar la
interacción nematodos por población de nematodos, con respecto a cada uno
de los testigos relativos, es decir, los tratamientos del 1 al 14 vs 13, 14, 15 y 17
(tabla 3), según prueba de contraste al 5%.
Evaluación de las hipótesis de investigación.
La primera hipótesis de investigación será corroborada siempre y cuando,
el análisis de varianza, sin contar con el testigo, no muestre efecto de
tratamientos, con la variable de respuesta peso seco de la planta.
La segunda hipótesis de investigación será corroborada siempre y
cuando el análisis de varianza, indique efecto de las poblaciones del
nematodo en la variable de respuesta peso del racimo y el daño en el
sistema radical de las plantas a partir del 25% de población.
ACTIVIDADES COMPLEMENTARIAS
Multiplicación masiva (producción) de semillas de plátano Dominico
Hartón mediante técnica PIF (Plants Issues de Fragments de tige, por sus
siglas en francés) o plantas cultivadas a partir de fragmentos madre. Esta
técnica de multiplicación rápida de plántulas (cormos) de plátano, desarrollada
en Camerún (África) por Moïse (2003), permite producir de entre 1.500 y 5.000
plantas.m-2 dependiendo de la variedad.
La técnica consiste en separar 50 hijuelos (propágulos) tipo espada de menos
de 40 cm de altura de plantas madre sanas y vigorosas; estos se lavan, se les
cortan las raíces y se les eliminan desde la base de tres a seis de las brácteas
presentes. En seguida, se corta el remanente de pseudotallo para dejarlo 1 a 3
cm por encima del nudo de la última bráctea removida. Los propágulos se
colocan sobre una superficie de cemento, seca y limpia, y sin contacto con suelo,
durante 72 h. Luego, en cada propágulo se elimina el pseudotallo remanente
hasta una altura de 2 a 3 mm por encima del nudo de la última bráctea removida.
En seguida y con un sacabocado, a cada propágulo se le extrae el punto de
crecimiento, para eliminar el efecto de la dominancia apical durante el período
de germinador. Los propágulos así preparados son colocados en un germinador
levantado del suelo y ubicado en una cámara térmica con sistema automático
de nebulización; se disponen verticalmente separados 10 cm, se cubren con una
capa de aserrín fino de madera de 2 – 4 cm de espesor y se tapan con plástico,
el cual se levanta cuando se va a suministrar riego y se quita en definitiva cuando
inicie la brotación. El primer riego del germinador se realiza entre las 24 y 30 h
después de la siembra.
A las 4 semanas después de la siembra, se efectúa un primer registro del
número de brotes por propágulo; 4 semanas después se debe dar inicio al
trasplante de los brotes a bolsas plásticas. En este momento se hace un
segundo registro del número de brotes por propágulo y se extraen
cuidadosamente con un cuchillo los que tengan mínimo tres hojas, se siembran
en bolsas plásticas de 2 Kg de capacidad y llenas con suelo esterilizado
mediante tratamiento químico (basamid, 40 g por 200 dm3 de suelo) y se colocan
en una estructura levantada 1 m del suelo y cubierta con polisombra para su
aclimatación, en donde permanecerán hasta que desarrollen entre 6 y 8 hojas
funcionales.
Incremento de las especies de nematodos fitoparásitos. Éste se realizará
en la granja Montelindo de la Universidad de Caldas, previamente descrita su
ubicación, y la extracción e identificación de los nematodos se hará en el
laboratorio de Nematología de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la
misma Universidad. El procedimiento para la recolección de tejidos parasitados,
aislamiento e incremento de los géneros Radopholus y Meloidogyne se describe
a continuación:
Ubicación de focos de plantas de plátano Dominico Hartón donde
tradicionalmente se han tenido cultivos parasitados por los diferentes
géneros de nematodos.
Recolección de muestras de raíces y cormos de las plantas de plátano
Dominico Hartón.
Transporte de las muestras al laboratorio de Nematología de la Facultad
de Ciencias Agropecuarias de la Universidad de Caldas.
Extracción de nematodos con base en el principio de flotación de los
nematodos en azúcar realizado por Jenkins (1964) y Meredith (1973) e
identificación de las especies con las claves taxonómicas de Mai et al.
(1996), Siddiqi (2000), Castillo y Vovlas (2007), Perry et al. (2009) y
Guzmán (2016).
Incremento individual de los nematodos mediante inoculación de los
géneros en raíces de plántulas de plátano Dominico Hartón sanas
sembradas en las bandejas de multiplicación masiva (producción) de
semillas de plátano mediante técnica PIF, descrita anteriormente.
Aproximadamente 12 semanas.
Finalmente, nuevamente se realizará la extracción de nematodos,
procedimiento descrito anteriormente, para calcular las diferentes
densidades de nematodos y realizar las inoculaciones en los
experimentos en condiciones de campo y almácigo.
Para facilitar el incremento de los géneros Helicotylenchus y Pratylenchus, estos
serán asilados de tejidos de raíces de maíz de la misma granja y de raíces y
cormos de plátano Dominico de la finca El retiro I, vereda El Bosque, municipio
de San José, Caldas. Posteriormente, para su multiplicación se realizará el
mismo procedimiento antes descrito.
Extracción e identificación de nematodos fitoparásitos. La extracción de
nematodos se realizará con base en el principio de flotación de los nematodos
en azúcar realizado por Jenkins (1964) y Meredith (1973); para lo cual se
procede de la siguiente manera: las raíces se lavan con agua corriente, después
de dejarlas secar a temperatura ambiente, se pesan 30 g de ellas en una
balanza Analytical Plus, y con la ayuda de tijeras se cortan transversalmente en
trozos de 1 cm, que luego se homogenizan*. Estos trozos se colocan en un vaso
de licuadora Osterizer, modelo 565-15, con 500 mL de agua y luego se licuan,
realizando prendido y apagó 3 veces por un período de 10 segundos y entre
cada lapso de tiempo se deja reposar 5 segundos. El licuado se deposita en un
tamiz de 250 µm colocado sobre un tamiz de 150 µm, y éste sobre otro de 25
µm. La muestra se lava con agua a presión para que ocurra el desprendimiento
de los nematodos; y el material que queda en el tamiz de 25 µm se deposita
todo el contenido en tubos de centrifugación de 50 mL de capacidad y se
centrifuga a 3800g durante 5 minutos. Luego se elimina el sobrenadante.
Seguidamente, los tubos se llenan nuevamente con solución de sacarosa al
50% (solución de azúcar) y de nuevo se someten a centrifugación a 3800g
durante 5 minutos. El sobrenadante se deposita en el tamiz de 25 µm para lavar
la sacarosa con agua corriente a presión baja, evitando que el azúcar los afecte.
Finalmente, se recogen 20 mL en una caja de Petri para realizar los conteos e
identificación.
De acuerdo con el objetivo del trabajo se separan las raíces necróticas de las
funcionales y se realiza la extracción de fitonematodos de éstas según el
propósito.
En cada muestra se contabiliza el número de nematodos fitoparásitos en 100 g
de raíces. La identificación de fitonemátodos se realizará recolectando 30
nematodos de cada caja de Petri, los cuales se colocan en un porta-objetos con
una gota de agua que se cubre con un cubre-objetos; las observaciones se
realizan con un microscopio compuesto de luz marca Nikon a través del objetivo
40X. La identificaron de nematodos fitoparásitos se realizará con claves
taxonómicas antes descritas.
Índices de severidad del daño por R. similis. Cuando se realice el muestreo
destructivo en almácigo y al final del experimento en condiciones de campo, se
evaluará el porcentaje de necrosis en raíces con la escala realizada por Carlier
et al. (2003). Para lo cual se seleccionará al azar cinco raíces funcionales por
plántula, cada raíz deberá tener al menos 10 cm de longitud; se cortará
longitudinalmente cada raíz por la mitad y se descartará una de las mitades, el
daño de la otra mitad de la raíz se estimará de acuerdo con el porcentaje que
muestra necrosis. Cada raíz contribuirá un 20% al total de la muestra, que
sumándolas se obtendrá el 100% para las cinco raíces. Así, si la mitad de la raíz
muestra necrosis, se registrará como 10%, si la raíz no muestra necrosis, se
registrará como 0% (Figura 1). Una vez se realice el registro de cada una de las
cinco raíces, se sumarán los 5 índices para obtener la necrosis radical total de
la muestra n porcentaje.
Figura 1. Escalas para la evaluación del porcentaje de necrosis en raíces según Speijer y De Waele (1997).
Índice de nudos radicales o agallas para Meloidogyne spp. Se tomarán al
azar ocho muestras de raíces por cada tratamiento para evaluar visualmente el
índice de los nudos radicales, para lo cual se utilizará la escala de evaluación
de infección de raíces con nudos causadas por Meloidogyne spp., propuesta por
Bridge y Page (1980) (Figura 2 y Tabla 5).
Figura 2. Diagrama del índice de los nudos radicales o agallas causadas por
Meloidogyne spp., propuesto por Bridge y Page (1980).
Tabla 5. Escala para evaluación de índice de nódulos radicales o agallas
causadas por Meloidogyne spp., propuesto por Bridge y Page (1980).
Escala Observación
0 No se observa agallas en las raíces.
1 Pocas agallas pequeñas difíciles de encontrar.
2 Solo agallas pequeñas, claramente visibles, raíces principales limpias.
3 Algunas agallas visibles y grandes
4 Predominan las agallas grandes, pero las agallas principalmente están limpias
5 50% de las raíces afectadas. Agallas en algunas raíces principales y sistema radical reducido.
6 Agallas en las raíces principales.
7 La mayoría de las raíces principales con agallas
8 Todas las raíces principales con agallas y se observan pocas raíces limpias.
9 Todas las raíces gravemente agalladas.
10 Todas las raíces gravemente agalladas, ya no hay sistema radical, plantas generalmente muertas.
4.5 Resultados esperados2
Los resultados esperados serán la generación de nuevo conocimiento sobre el
efecto de diferentes poblaciones de nematodos fitoparásitos en la materia seca
del plátano Dominico Hartón mediante la realización de un almácigo donde
serán sembradas de 1.445 plántulas de plátano inoculadas con Radopholus
similis (R.s), Pratylenchus coffeae (Pra), Meloidogyne spp. (Mel), y
Helicotylenchus dihystera (Hel) y sus interacciones (los tratamientos están
descritos en la tabla 1), a los ocho (8) días después de sembradas las plántulas.
La investigación también permitirá conocer el efecto de las diferentes
poblaciones de los nematodos fitoparásitos antes mencionados en el
rendimiento del plátano Dominico Hartón. Los resultados obtenidos son un
prerrequisito para la aplicación de tratamientos y para escoger medidas
apropiadas de manejo de estos fitonematodos.
Esta investigación permitirá la formación de un nuevo investigador con título de
doctorado en Ciencias Agrarias, área de la Nematología Vegetal de Colombia,
escasa en Colombia, al involucrar un estudiante de doctorado, permitiendo el
fortalecimiento de la comunidad científica del país. Así mismo, el fortalecimiento
y consolidación de la línea de investigación en biología, hábitos y manejo
integrado de nematodos fitoparásitos, del grupo Fitotecnia, escalafonado en
Categoría A1 ante COLCIENCIAS.
2 Serán reportados en los informes técnicos de avance (anual) o final, de acuerdo al formato para tal fin,
disponible en la página web de la Universidad en el link de investigaciones
4.6 Impactos esperados a partir del uso de los resultados (máximo 1 página)
Los resultados de esta investigación permitirán generar conocimiento sobre el
efecto de diferentes poblaciones de nematodos fitoparásitos en el crecimiento y
desarrollo de las plántulas de plátano Dominico Hartón en condiciones de
almácigo y su efecto en la producción de éste cultivo en condiciones de campo,
los cuales son elementos fundamentales en la aplicación de tratamientos y para
escoger medidas apropiadas de manejo. Adicionalmente, una vez que los
agricultores colombianos conozcan las pérdidas y los daños ocasionados por
los nematodos fitoparásitos en el cultivo del plátano Dominico Hartón, los
resultados de esta investigación permitirán mejorar el rendimiento de los cultivos
al sembrar material vegetal sano, permitiendo un mayor crecimiento de las
plantas con mayor peso de los racimos y aumentando la vida útil de la
plantación, optimizando los indicadores productivos del cultivo de plátano del
país, al igual que los ingresos del agricultor y la calidad de vida de las familias
que sustentan ingresos con éste cultivo. Adicionalmente, la implementación de
la técnica de producción de colinos de plátano sanos a gran escala será otro
logro importante.
Impacto social: Los resultados del proyecto permitirán incrementar el número
de agricultores vinculados al cultivos del plátano o la ampliación de las áreas
sembradas con dicho cultivo; esto en razón del conocimiento generado sobre el
efecto de diferentes poblaciones de nematodos fitoparásitos en el crecimiento y
desarrollo de las plántulas de plátano Dominico Hartón en condiciones de
almácigo y su efecto en la producción de éste cultivo en condiciones de campo,
los cuales son elementos fundamentales en la aplicación de tratamientos y para
escoger medidas apropiadas de manejo. Esto último, tiene un efecto positivo
sobre aquellas comunidades relacionadas con este sector ya que constituye la
principal fuente de empleo en el sector agrícola, después del café en el eje
cafetero debido principalmente al aumento de las exportaciones de plátano del
departamento de Caldas.
Impacto académico: El principal aporte que este proyecto hace a la educación
es a nivel profesional, ya que servirá de base para la formación de un estudiante
de posgrado (Doctorado en Ciencias Agrarias) de la Facultad de Ciencias
Agropecuarias de la Universidad. Adicionalmente, los agricultores, técnicos,
investigadores y profesionales del sector agrícola tendrán acceso al
conocimiento del efecto de los nematodos fitoparásitos en el cultivo de plátano
Dominico Hartón, a través de las publicaciones (artículos científicos) que se
realicen con los resultados del presente proyecto.
Impacto ambiental. Los resultados de esta investigación permitirán que se
incentive la producción en los viveros de material de plátano libre de problemas
fitosanitarios como los nematodos fitoparásitos. Partir de material de
propagación libre de nematodos garantiza que los productores obtengan
mayores rendimientos y tengan que emplear menos productos agroquímicos de
alta toxicidad.
4.7 Cronograma de actividades: Cronograma de actividades de campo y laboratorio para el manejo integrado de nematodos fitoparásitos en plátano Dominico Hartón.
Multiplicación masiva (producción) de semillas de plátano Dominico Hartón mediante técnica PIF e Incremento de nematodos fitoparásitos.
X X X X X X X X X X
Adecuación y montaje de experimento en Granja Montelindo.
X X X X X X X
Seguimiento de experimento y medición de variables
X X X X X X X
Análisis de laboratorio X X X X X
Análisis estadístico X X X X X
Elaboración de artículo científico X X X X X X X
Objetivo 2.
Multiplicación masiva (producción) de semillas de plátano Dominico Hartón mediante técnica PIF e Incremento de nematodos fitoparásitos.
X X X X
Adecuación y montaje de experimento en Granja Montelindo
X X X
Seguimiento de experimento y medición de variables
X X X X X X X X X X X X X X X X X X
Análisis de laboratorio X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X
Análisis estadístico X X X X X X X X X
Elaboración de artículo científico y tesis
X X X X X X
5. Compromisos
Graduación de un estudiante de doctorado y dos estudiantes de pregrado
del programa Ingeniería Agronómica.
Publicación de dos artículos científicos en revistas indexadas Categoría
A2.
Informes técnicos semestrales y un informe técnico final.
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7. Presupuesto
Completar el anexo 2, sólo en los recuadros claros, los sombreados representan
que los rubros no son permitidos.
4. Finalización del proyecto La finalización del proyecto, está determinada por los requisitos de cada convocatoria.
5. Documentación complementaria para inscripción del proyecto
Si el proyecto es aprobado, los proponentes deberán diligenciar la ficha de
inscripción del proyecto, la ficha de inscripción de cada integrante y la carta de
BOLSAS DE PLÁSTICO COLOR NEGRO Bolsas para almácigo color negro (16” largo X 14” ancho) de 6 kg de capacidad Unidad (1.000) 4 400.000 1.600.000
BOLSAS DE PLÁSTICO COLOR NEGRO Bolsas para almácigo color negro (17 X 23) de 62 kg de capacidad Unidad (1.000) 2 350.000 700.000
BOLSAS DE PAPEL PARA SECAR MUESTRAS EN ESTUFA
Bolsas de papel para estufa Unidad (100) 30 15 450.000
TOTAL 5.575.000
MATERIALES E INSUMOS DE OFICINA
ELEMENTO Y/O SERVICIO
DESCRIPCIÓN TÉCNICA UNIDAD DE
MEDIDA CANTIDAD
PRECIO UNITARIO ESTIMADO INCLUIDO
IVA 16% 2010 TOTAL DINERO
Memoria USB 4GB Und. 1 $ 45.000 $ 45.000
Cinta transparente Cinta ancha transparente tipo 3m ref:301 o su equivalente
Und. 5 $ 3.134 $ 15.671
Cinta de enmascarar cinta de enmascarar de 1" de ancho 40mm envueltos en tubo de cartón (cinta adhesiva de color beige)
Und. 10 $ 1.850 $ 18.499
Cosedora de escritorio
Cosedora para grapa No. 26/6, con capacidad máxima de 200 grapas, con profundidad de entrada horizontal en el papel de 0-65 mm, con capacidad de cosido para 25 hojas. Parte de cargador metálica niquelado metalico negro
Und. 1 $ 13.394 $ 13.394
Cuaderno argollado Cuaderno Argollado de 100 hojas Cuadriculado grande 20x 27.5 hojas en papel bond, y tapadura plastificada
Und. 5 $ 2.963 $ 14.813
Fólder AZ
Fólder AZ tamaño carta, color azul , pasta de cartón duro, plastificado con sistema de sujeción interno remachado a cuatro partes con dos ganchos de apertura y cierre por medio de palanca.
Und. 5 $5.426 $ 17.129
Guías clasificadoras Guías Clasificadoras Plásticas de la A-Z tamaño carta con pestaña impresa con letra de A a la Z
Und. 1 $ 9.707 $ 9.707
Papel higiénico Doble hoja Rollo 5 $ 1.000 $ 5.000
Papeleras plásticas Para escritorio Und. 1 $ 10.000 $ 10.000