UJI EFEKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK DAUN RANDU (Ceiba pentandra (L) Gaertn.) TERHADAP PERTUMBUHAN BAKTERI Salmonella typhi SECARA IN VITRO SKRIPSI NANA AMALIA 160610024 FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS MALIKUSSALEH LHOKSEUMAWE SEPTEMBER 2020
UJI EFEKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK DAUN RANDU
(Ceiba pentandra (L) Gaertn.) TERHADAP PERTUMBUHAN
BAKTERI Salmonella typhi SECARA IN VITRO
SKRIPSI
NANA AMALIA
160610024
FAKULTAS KEDOKTERAN
UNIVERSITAS MALIKUSSALEH
LHOKSEUMAWE
SEPTEMBER 2020
UJI EFEKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK DAUN RANDU
(Ceiba pentandra (L) Gaertn.) TERHADAP PERTUMBUHAN
BAKTERI Salmonella typhi SECARA IN VITRO
SKRIPSI
Diajukan ke Program Studi Pendidikan Dokter Fakultas Kedokteran Universitas
Malikussaleh sebagai pemenuhan syarat untuk mendapatkan gelar Sarjana Kedokteran
Oleh
NANA AMALIA
160610024
FAKULTAS KEDOKTERAN
UNIVERSITAS MALIKUSSALEH
LHOKSEUMAWE
SEPTEMBER 2020
i
ABSTRAK
Salmonella typhi merupakan bakteri penyebab demam tifoid. World Health
Organization mengemukakan bahwa Salmonella spp merupakan salah satu patogen
prioritas tinggi untuk diteliti dan dikembangkan lebih lanjut guna membuat
antibakteri baru. Daun randu (Ceiba pentandra L. Gaertn) mempunyai berbagai
manfaat dan mengandung senyawa kimia yang beragam. Ceiba pentandra L.
Gaertn mengandung senyawa flavonoid, alkaloid, saponin, dan tanin yang
berfungsi sebagai antibakteri. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui efektivitas
antibakteri ekstrak daun randu terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella typhi
dengan menggunakan desain penelitian eksperimental posttest only control group
design. Uji antibakteri menggunakan metode difusi sumuran dengan variasi
konsentrasi 50%, 75%, dan 100%. Kontrol positif kloramfenikol dan kontrol negatif
dimethyl sulfoxide (DMSO) sebagai pembanding. Setiap perlakuan dilakukan
pengulangan sebanyak lima kali. Zona hambat yang terbentuk diukur diameternya
menggunakan jangka sorong. Analisis data menggunakan uji Kruskal-Wallis dan
uji Post hoc Mann Whitney. Hasil rata-rata diameter zona hambat pada konsentrasi
50%, 75%, dan 100% adalah 0, 12,4 mm, dan 13,2 mm, sedangkan kontrol positif
kloramfenikol sebesar 26,2 mm dan kontrol negatif DMSO adalah 0 mm. Penelitian
ini menyimpulkan bahwa ekstrak daun randu dengan konsentrasi 100% memiliki
efektifitas antibakteri tertinggi.
Kata kunci : Antibakteri, ekstrak daun randu, Salmonella typhi.
ii
ABSTRACT
Salmonella typhi is a bacterium that causes typhoid fever. The World Health
Organization categorized Salmonella spp as one of the high priority pathogens that
need to be researched and developed for new antibiotics. Kapok leaves (Ceiba
pentandra L. Gaertn) has various benefits and contains various chemical
compounds. Ceiba pentandra L. Gaertn contain flavonoids, alkaloids, saponins,
and tannins that used as antibacterial. The purposes of this study was to determine
the effectiveness of antibacterial kapok leaves extract on bacteria Salmonella
typhi’s growth by using an experimental research posttest-only control group
design. The antibacterial test used a well diffusion method with variant
concentration of 50%, 75%, and 100%. Chloramphenicol used as the positive
control and dimethyl sulfoxide (DMSO) used as the negative control for
comparison. Each group was repeated five times. The clear zone diameters are
measured using caliper. Data were analyzed with Kruskal-Wallis and Post hoc
Mann-Whitney test. The results showed that concentrations of 50%, 75%, and 100%
obtain average of clear zone was 0 mm, 12.4 mm, and 13.2 mm, and the positive
control of chloramphenicol was 26.2 mm and the negative control of DMSO was 0
mm. This study concludes that the leaf extract with a concentration of 100% had
the highest antibacterial effectiveness
Keywords: Antibacterial, kapok leaves extract, Salmonella typhi.
iii
KATA PENGANTAR
Puji syukur penulis panjatkan kepada Allah Yang Maha Esa, karena berkat
rahmat dan hidayah-Nya penulis dapat menyelesaikan skripsi yang berjudul “Uji
Efektivitas Antibakteri Ekstrak Daun Randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn)
Terhadap Pertumbuhan Bakteri Salmonella typhi secara in vitro”. Penulisan skripsi
ini dilakukan dalam rangka memenuhi salah satu syarat untuk mencapai gelar
Sarjana Kedokteran pada Program Studi Pendidikan Dokter Fakultas Kedokteran
Universitas Malikussaleh.
Penulis menyadari bahwa tanpa bantuan dan bimbingan dari berbagai pihak,
dari masa perkuliahan sampai pada penyusunan skripsi ini, sangatlah sulit bagi saya
untuk menyelesaikan skripsi ini, oleh karena itu saya mengucapkan terima kasih
kepada:
1. Dr. Baidhawi, S.P., M.P selaku Pelaksana tugas dekan Fakultas Kedokteran
Universitas Malikussaleh;
2. dr. Iskandar Albin, Sp.OG selaku ketua Program Studi Pendidikan Dokter
Universitas Malikussaleh yang menyetujui hal-hal yang diperlukan dalam
kelengkapan penelitian ini;
3. dr.Yuziani, M.Si selaku dosen pembimbing 1 yang telah menyediakan waktu,
tenaga, dan pikiran untuk mengarahkan penulis dalam penyusunan skripsi ini;
4. dr. Rizka Sofia, MKT selaku dosen pembimbing 2 yang telah menyediakan
waktu, tenaga, dan pikiran untuk mengarahkan penulis dalam penyusunan
skripsi ini;
5. dr. Sri Wahyuni, M.Sc selaku dosen penguji 1 dan dosen pembimbing
akademik yang telah memberikan kritik dan saran yang membangun dalam
penyusunan skripsi ini, dan selama dibangku perkuliahan telah memberikan
arahan, motivasi dan perhatian dalam menjalani aktivitas akademik;
6. dr. Juwita Sahputri, MKT selaku penguji 2 yang telah memberikan kritik dan
saran yang membangun dalam penyusunan skripsi ini;
iv
7. Orang tua tercinta Ayahanda H. Kasem, S.Pd.,M.Pd, Ibunda Hj. Nurhayati,
S.Pd serta kakak dan adik penulis yang telah memberikan kasih sayang,
semangat dan dukungan penuh dalam menyelesaikan penelitian ini;
8. Teman-teman mahasiswa Fakultas Kedokteran Universitas Malikussaleh
angkatan 2016 yang bersama-sama berjuang dan saling memberikan dukungan
serta motivasi demi mendapatkan gelar Sarjana Kedokteran;
9. Seluruh pihak yang telah mendukung dan membantu penulis dalam
penyelesaian skripsi ini.
Akhir kata, saya berharap Tuhan Yang Maha Esa berkenan membalas segala
kebaikan semua pihak yang telah membantu. Semoga skripsi ini membawa manfaat
bagi pengembangan ilmu.
Lhokseumawe, September 2020
Nana Amalia
v
DAFTAR ISI
ABSTRAK .............................................................................................................. i
ABSTRACT ........................................................................................................... ii
KATA PENGANTAR .......................................................................................... iii
DAFTAR ISI .......................................................................................................... v
DAFTAR TABEL................................................................................................ vii
DAFTAR GAMBAR .......................................................................................... viii
DAFTAR SINGKATAN ...................................................................................... ix
DAFTAR LAMPIRAN ......................................................................................... x
BAB 1 PENDAHULUAN .................................................................................... 1
1.1 Latar Belakang ................................................................................................. 1
1.2 Rumusan Masalah ............................................................................................ 3
1.3 Pertanyaan Penelitian ....................................................................................... 3
1.4 Tujuan Penelitian ............................................................................................. 3
1.4.1 Tujuan umum ..................................................................................... 3
1.4.2 Tujuan khusus .................................................................................... 4
1.5 Manfaat Penelitian ........................................................................................... 4
1.5.1 Manfaat teoritis .................................................................................. 4
1.5.2 Manfaat praktis .................................................................................. 4
BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA ............................................................................ 5
2.1 Tanaman Randu ............................................................................................... 5
2.1.1 Taksonomi ......................................................................................... 5
2.1.2 Nama daerah ...................................................................................... 5
2.1.3 Nama asing ........................................................................................ 6
2.1.4 Morfologi tanaman randu .................................................................. 6
2.1.5 Kandungan senyawa tanaman randu .................................................. 7
2.1.6 Penggunaan Tanaman Randu ............................................................. 8
2.2 Salmonella typhi .............................................................................................. 9
2.2.1 Taksonomi ......................................................................................... 9
2.2.2 Morfologi Salmonella typhi ............................................................. 10
2.2.3 Patogenesis ....................................................................................... 10
2.2.4 Gambaran klinis ............................................................................... 11
2.2.5 Pengobatan ....................................................................................... 12
2.2.6 Kurva pertumbuhan bakteri ............................................................. 13
2.3 Ekstraksi ......................................................................................................... 15
2.4 Penentuan Kepekaan Antibakteri ................................................................... 16
2.4.1 Metode ............................................................................................. 16
2.4.2 Media ............................................................................................... 18
2.5 Kerangka Teori .............................................................................................. 20
2.6 Kerangka Konsep ........................................................................................... 21
2.4 Hipotesis Penelitian ....................................................................................... 21
2.4.1 Hipotesis null (H0) ........................................................................... 21
vi
2.4.2 Hipotesis alternatif (Ha) ................................................................... 21
BAB 3 METODE PENELITIAN ....................................................................... 23
3.1 Jenis Penelitian ............................................................................................... 23
3.2 Lokasi dan Waktu Penelitian ......................................................................... 23
3.3 Populasi, Sampel, Besar Sampel, dan Teknik Pengambilan Sampel ............. 23
3.3.1 Populasi ............................................................................................ 23
3.3.2 Sampel ............................................................................................. 23
3.3.3 Besar sampel .................................................................................... 23
3.3.4 Teknik pengambilan sampel ............................................................ 25
3.4 Variabel Penelitian dan Definisi Operasional ................................................ 25
3.4.1 Variabel ............................................................................................ 25
3.4.2 Definisi operasional ......................................................................... 25
3.5 Bahan Penelitian ............................................................................................ 26
3.6 Instrumen Penelitian ...................................................................................... 26
3.7 Prosedur Penelitian ........................................................................................ 26
3.7.1 Sterilisasi alat ................................................................................... 27
3.7.2 Pembuatan media Muller Hulton Agar (MHA) ............................... 27
3.7.3 Pembuatan suspensi bakteri ............................................................. 27
3.7.4 Pembuatan ekstrak daun randu ........................................................ 27
3.7.5 Uji fitokimia ..................................................................................... 28
3.7.6 Pembuatan konsetrasi ekstrak daun randu ....................................... 29
3.7.7 Uji efektifitas antibakteri ekstrak daun randu terhadap pertumbuhan
Salmonella typhi ............................................................................................ 30
3.8 Alur Penelitian ............................................................................................... 31
3.9 Cara Pengelolahan dan Analisis Data ............................................................ 32
BAB 4 HASIL PENELITIAN DAN PEMBAHASAN ..................................... 33
4.1 Data Penelitian ............................................................................................... 33
4.1.1 Hasil determinasi tanaman randu ..................................................... 33
4.1.2 Hasil skrining fitokimia ................................................................... 33
4.2.3 Hasil uji efektifitas antibakteri ekstrak daun randu terhadap bakteri
Salmonella typhi ............................................................................................ 34
4.2 Hasil Penelitian .............................................................................................. 35
4.3 Pembahasan penelitian ................................................................................... 37
BAB 5 PENUTUP ................................................................................................ 41
5.1 Kesimpulan .................................................................................................... 41
5.2 Saran .............................................................................................................. 41
DAFTAR PUSTAKA .......................................................................................... 42
LAMPIRAN ......................................................................................................... 47
vii
DAFTAR TABEL
Tabel 2.1 Kandungan fitokimia ekstrak etanol daun randu .................................. 7
Tabel 2.2 Penyakit klinis yang disebabkan oleh Salmonella. ............................... 11
Tabel 2.3 Kategori respon hambatan pertumbuhan bakteri .................................. 14
Tabel 3.1 Definisi operasional .............................................................................. 25
Tabel 4.1 Hasil skrining uji fitokimia ekstrak daun randu .................................... 33
Tabel 4.2 Hasil pengukuran daya hambat pertimbuhan bakteri Salmonella typhi 34
Tabel 4.3 Hasil uji Saphiro-Wilk ........................................................................... 35
Tabel 4.4 Hasil uji Kruskal Wallis ........................................................................ 36
Tabel 4.5 Nilai p pada uji Mann-Whitney ............................................................. 36
viii
DAFTAR GAMBAR
Gambar 2.1 Tanaman randu .................................................................................. 5
Gambar 2.2 Morfologi tanaman randu .................................................................. 7
Gambar 2.3 Salmonella thypi ................................................................................ 10
Gambar 2.4 Kurva pertumbuhan bakteri ............................................................... 14
Gambar 2.5 Kerangka teori ................................................................................... 20
Gambar 2.6 Kerangka konsep ............................................................................... 21
Gambar 3.1 Ilustrasi perlakuan sampel ................................................................. 24
Gambar 3.2 Alur penelitian ................................................................................... 31
Gambar 4.1 Zona hambat ekstrak daun randu terhadap pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi .................................................................................................... 35
Gambar 4.2 Zona hambat kontrol positif kloramfenikol terhadap pertumbuhan
bakteri Salmonella typhi ....................................................................................... 35
ix
DAFTAR SINGKATAN
DMSO : Dimethyl sulfoxide
KBM : Kadar Bunuh Minimum
KHM : Kadar Hambat Minimum
MBC : Minimum Bactericidal Concentration
MHA : Mueller Hinton Agar
MIC : Minimum Inhibitory Concentration
NA : Nutrient Agar
SSA : Salmonella-Shigella Agar
TSA : Tryptic Soy Agar
WHO : World Health Organization
x
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran 1 Hasil uji herbarium tanaman randu ................................................... 47
Lampiran 2 Hasil skrining fitokimia daun randu .................................................. 48
Lampiran 3 Surat keterangan selesai riset ............................................................. 49
Lampiran 4 Pembuatan seri konsentrasi ............................................................... 50
Lampiran 5 Uji normalitas dengan Shapiro-Wilk ................................................. 52
Lampiran 6 Uji beda dengan Kruskal Wallis ........................................................ 53
Lampiran 7 Uji post hoc Mann-Whitney ............................................................... 54
Lampiran 8 Jadwal kegiatan.................................................................................. 59
Lampiran 9 Rincian biaya penelitian .................................................................... 60
Lampiran 10 Dokumentasi .................................................................................... 61
Lampiran 11 Daftar riwayat hidup ........................................................................ 65
1
BAB 1
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Demam tifoid merupakan salah satu penyakit yang menjadi masalah
kesehatan yang cukup penting di beberapa negara (1). Menurut data World Health
Organisation (WHO) memperkirakan angka insidensi di seluruh dunia sekitar 17
juta jiwa per tahun, angka kematian akibat demam tifoid mencapai 600.000 dan
70% nya terjadi di Asia. Penyakit tifoid bersifat endemik di Indonesia dan angka
penderita demam tifoid mencapai 81% per 100.000 (2). Angka prevalensi deman
tifoid di Aceh berdasarkan hasil diagnosa tenaga kesehatan adalah sebesar 6,3%.
Sedangkan di Aceh Utara sendiri berdasarkan laporan jumlah kasus tahun 2018,
suspek demam tifoid menduduki peringkat ke 3 setelah influenza dan diare (3).
Demam tifoid merupakan penyakit demam akut yang disebabkan oleh
infeksi bakteri Salmonella enterica khususnya turunannya, Salmonella typhi (4).
Bakteri Salmonella typhi yang masuk ke dalam tubuh, sebagian dihancurkan oleh
asam lambung, dan sebagian lagi masuk ke usus halus di ileum terminalis.
Salmonella typhi memiliki kemampuan untuk menempel ke lapisan bercak peyer.
Setelah menempel, bakteri ini memproduksi protein yang dapat mengganggu kerja
brush border usus dan selanjutnya menyebabkan demam tifoid (5).
Pengobatan untuk infeksi bakteri Salmonella typhi adalah dengan
pemberian antibakteri yang dapat menghambat pertumbuhan atau mematikan
Salmonella typhi yang menginfeksi. Penggunaan agen antibakteri sebagai andalan
dalam penanganan kasus infeksi menyebabkan pemakaiannya meningkat,
penggunaan antibakteri yang semakin meluas dan tidak rasional tersebut akan
menimbulkan masalah baru (6). World Health Organization mengemukakan bahwa
Salmonella spp merupakan patogen prioritas 2 yang termasuk dalam kategori tinggi
untuk diteliti dan dikembangkan lebih lanjut guna membuat antibakteri baru (7).
Hal ini mendorong perlu ditemukan alternatif bahan obat lain untuk mengendalikan
penyakit infeksi yang disebabkan oleh bakteri Salmonella spp dengan pengobatan
menggunakan senyawa yang berasal dari tumbuhan.
2
Indonesia memiliki lebih dari 30.000 jenis tumbuhan, 1000 jenis
diantaranya dimanfaatkan sebagai tanaman industri, tanaman penghasil buah-
buahan, tanaman rempah-rempah dan tanaman obat-obatan. Beberapa daerah di
Indonesia banyak yang menggunakan obat-obatan tradisional untuk mengatasi
penyakit tersebut. Banyak dari spesies tanaman berpotensi sebagai obat tradisional
yang sampai saat ini belum diteliti khasiat dan kegunaannya secara mendalam (8).
Ceiba pentandra (L.) Gaertn atau dikenal dengan tanaman randu merupakan
salah satu tumbuhan yang mempunyai berbagai manfaat karena telah diselidiki
dalam beberapa penelitian mengandung senyawa kimia yang beragam (9). Kapuk
randu memiliki ketinggian mencapai 8-30 m dan memiliki batang pohon utama
yang cukup besar hingga mencapai diameter 3 m, pada batangnya juga terdapat
duri-duri tempel besar yang berbentuk kerucut. Tumbuhan ini tahan terhadap
kekurangan air sehingga dapat tumbuh di kawasan pinggir pantai serta lahan-lahan
dengan ketinggian 100-800 m di atas permukaan laut dengan curah hujan tahunan
1.000-2.500 mm dan suhu dari 20- 27°C (10).
Penggunaan daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) untuk obat
tradisional diantaranya digunakan sebagai obat luar dan obat dalam seperti untuk
mengatasi demam, diare, diabetes, hipertensi, sakit kepala, obat luka, dan
sebagainya. Selain itu, tanaman kapuk randu juga memiliki banyak kegunaan lain,
diantaranya pada bagian daunnya dapat digunakan untuk makanan ternak dan
minyak bijinya untuk industri. Daun kapuk muda, bunga, dan buah kapuk muda
dapat dikonsumsi sebagai sayuran, sedangkan buah polong kapuk yang masih
sangat muda merupakan favorit banyak orang Jawa (11). Beberapa senyawa kimia
yang terkandung pada daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) yaitu saponin,
tanin, dan alkaloid yang berkhasiat sebagai antibakteri (10). Penelitian Prasanty
pada tahun 2014 mengenai uji aktivitas antibakteri ekstrak etanolik daun randu
terhadap Staphylococcus epidermidis dan Shigella dysentriae menunjukkan bahwa
pada bakteri Shigella dysentriae dengan konsentrasi 50% memiliki aktivitas
antibakteri (12).
3
1.2 Rumusan Masalah
Demam tifoid merupakan salah satu penyakit yang cukup tinggi
insidensinya di Indonesia terutama di Provinsi Aceh. Penggunaan agen antibakteri
sebagai andalan dalam penanganan kasus infeksi menyebabkan pemakaiannya
meningkat, penggunaan antibakteri yang semakin meluas dan tidak rasional
tersebut akan menimbulkan masalah baru, sehingga harus dilakukan pencarian
pengobatan yang baru. Tumbuhan yang memiliki potensi besar untuk
dikembangkan sebagai bahan baku obat adalah tanaman randu (Ceiba pentandra
(L) Gaertn), karena ekstrak daun randu mengandung alkaloid, tanin dan saponin
yang berkhasiat sebagai antibakteri. Berdasarkan uraian di atas, maka peneliti
tertarik untuk melakukan sebuah uji penelitian untuk mengetahui apakah ekstrak
daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) dapat menghambat pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi secara in vitro.
1.3 Pertanyaan Penelitian
1. Apakah terdapat efek antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) dengan konsentrasi 50% terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella
typhi?
2. Apakah terdapat efek antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) dengan konsentrasi 75% terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella
typhi?
3. Apakah terdapat efek antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) dengan konsentrasi 100% terhadap pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi?
4. Apakah terdapat perbedaan efek antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba
pentandra (L) Gaertn) pada konsentrasi 50%, 75%, dan 100% terhadap
pertumbuhan bakteri Salmonella typhi?
1.4 Tujuan Penelitian
1.4.1 Tujuan umum
Tujuan umum penelitian ini untuk mengetahui efektivitas antibakteri
ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) terhadap pertumbuhan
Salmonella typhi secara in vitro.
4
1.4.2 Tujuan khusus
1. Mengetahui pengaruh pemberian ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) dengan konsentrasi 50% terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella
typhi.
2. Mengetahui pengaruh pemberian ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) dengan konsentrasi 75% terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella
typhi.
3. Mengetahui pengaruh pemberian ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) dengan konsentrasi 100% terhadap pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
4. Mengetahui perbedaan efek antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba
pentandra (L) Gaertn) pada konsentrasi 50%, 75%, dan 100% terhadap
pertumbuhan bakteri Salmonella typhi.
1.5 Manfaat Penelitian
1.5.1 Manfaat teoritis
Hasil penelitian ini diharapkan dapat menambah wawasan, pengetahuan,
dan sebagai bahan referensi bagi peneliti selanjutnya mengenai uji efektivitas
ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) terhadap pertumbuhan
Salmonella typhi secara in vitro.
1.5.2 Manfaat praktis
Hasil penelitian ini bagi bidang farmakologi diharapkan dapat memberikan
inovasi tentang manfaat ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) sebagai
salah satu alternatif obat antibakteri yang menggunakan bahan alami setelah
dibuktikan keamanan dan khasiatnya melalui uji fitofarmaka.
5
BAB 2
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Tanaman Randu
2.1.1 Taksonomi
Taksonomi dari tanaman randu adalah sebagai berikut:(13)
Kingdom : Plantae
Divisi : Tracheophyta
Kelas : Magnolopsida
Ordo : Malvales
Family : Malvaceae
Genus : Ceiba
Spesies : Ceiba pentandra L. Gaertn
Gambar 2.1 Tanaman Randu (14).
2.1.2 Nama daerah
Panjoe (Aceh); Kakabu (Gayo); Kabu-kabu, ponji (Batak); Pohon kapok,
kapeh panji, kapuek, panji (Minangkabau); Randu (Sunda); Randu (Jawa); Kapo
(Madura); Landu (Kangean). Bali: Kuthuh. Lombok: Randu. Nusa tenggara: Ringi
6
(Bima); Kambu luka, kamba watu (Sumba); Keweru (Sawu); Bala (Flores);
Kapomaka (Alor); Dene, lene (Rote). Iung bura (Dayak). Pu mahang kapes,
bubuhu, kai marukapes, duyungo (Gorontalo); Kakabu ake (Toraja); Kaukau
(Bugis). Dengen (Kupang). Kapu, kapu huwe, ka’apu (Seram Barat); Kapuro, kapu,
kapu huwin (Seram Selatan); Kailupa (Ternate, Tidore) (15).
2.1.3 Nama asing
Kapok tree, silk cotton tree, white silk cotton tree (Inggris); Capoc,
fromager, kapokier (Perancis); Kapokbaum, weiber kapokbaum (Jerman);
Samauma, samauma-da-várzea (Brazil); Ceiba, árbol capoc, pochote (Spanyol),
Kapok (Swedia) (16).
2.1.4 Morfologi tanaman randu
Tanaman randu memiliki ketinggian mencapai 8-30 m dan memiliki batang
pohon utama yang cukup besar mencapai diameter 3 m, pada batangnya juga
terdapat duri-duri yang menempel besar yang berbentuk kerucut. Tumbuhan ini
tahan terhadap kekurangan air sehingga dapat tumbuh di daerah pinggir pantai serta
lahan-lahan dengan ketinggian 100-800 m di atas permukaan laut dengan curah
hujan tahunan 1.000-2.500 mm dan suhu dari 20-27°C. Selain itu tanaman randu
dapat tumbuh di atas berbagai macam tanah, mulai dari tanah berpasir sampai tanah
liat berdrainase baik, tanah aluvial, sedikit asam sampai netral. Tanaman randu
dapat juga hidup pada daerah kering dan suhu di bawah nol dalam jangka pendek
serta peka terhadap kebakaran (8).
Tanaman randu memiliki daun majemuk sekitar 5 sampai 9, berbentuk
bulat, anak daunnya lanset, pangkalnya tumpul namun ujungnya runcing dan rata
pada bagian tepinya. Bunga menggantung majemuk, bergerombol pada ranting,
hermaprodit, keputih-putihan dan besar. Kelopak bunga berbentuk lonceng,
panjang 1 cm dengan 5–10 tonjolan pendek, mahkota bunga 3–3,5 cm dengan 5
tonjolan. Bunga berwarna putih sampai merah muda, putik dengan bakal buah
menumpang, dekat ujung panjang dan melengkung, kepala putik membesar (11).
Buah randu berbentuk lonjong dan berwarna hijau menyerupai kulit
batangnya, jika buah randu sudah tua maka akan berubah warna menjadi coklat
kehitaman. Di dalam buah randu terdapat serat halus putih yang disebut kapas (11).
7
(a) (b)
Gambar 2.2 Morfologi tanaman randu; (a) Daun tanaman randu, (b) Buah
tanaman randu (17).
2.1.5 Kandungan senyawa tanaman randu
Daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn.) mengandung senyawa saponin,
alkaloid, dan tanin. Hasil pengujian fitokimia ekstrak etanol daun randu dapat
dilihat dalam tabel berikut ini (10).
Tabel 2.1 Kandungan fitokimia ekstrak etanol daun randu.
Unsur Fitokimia Ekstrak etanol daun
Saponin +
Tanin +
Streroid/Triterpenoid Steroid
Flavonoid -
Alkaloid +
Berdasarkan hasil pengujian, dapat diketahui bahwa ekstrak etanol daun
randu memiliki kandungan senyawa seperti alkaloid, tanin, steroid, dan saponin.
Hasil ini diperkuat dengan penelitian Enechi dkk. (2013) yang menyatakan bahwa
daun randu memiliki kandungan saponin dan alkaloid (10).
a. Saponin
Saponin merupakan senyawa dalam bentuk glikosida yang tersebar luas
pada tanaman tingkat tinggi dan merupakan kelompok senyawa yang beragam
dalam struktur, sifat fisikokimia dan efek biologisnya (18). Glikosida golongan ini
memiliki aglikon lipofilik di salah satu ujung molekul dan gula hidrofilik dibagian
ujung yang lain mengakibatkan saponin memiliki kemampuan untuk menurunkan
8
tegangan muka, menghasilkan karakteristik seperti efek sabun atau detergen pada
membran dan kulit. Mekanisme kerja saponin sebagai antibakteri yaitu dapat
menyebabkan kebocoran protein dan enzim dari dalam sel. Saponin dapat menjadi
anti bakteri karena zat aktif permukaannya mirip detergen, akibatnya saponin akan
menurunkan tegangan permukaan dinding sel bakteri dan merusak permeabilitas
membran. Rusaknya membran sel ini sangat mengganggu kelangsungan hidup
bakteri (10).
b. Tanin
Tanin merupakan senyawa aktif metabolit sekunder yang diketahui
mempunyai beberapa khasiat yaitu sebagai antidiare, antibakteri dan antioksidan
(19). Mekanisme kerja tanin sebagai antibakteri adalah menghambat enzim reverse
transkriptase dan DNA topoisomerase sehingga sel bakteri tidak dapat terbentuk.
Tanin memiliki aktivitas antibakteri yang berhubungan dengan kemampuannya
untuk menginaktifkan adhesin sel mikroba, menginaktifkan enzim, dan menggangu
transport protein pada lapisan dalam sel (20). Senyawa tanin juga merupakan
senyawa yang termasuk golongan senyawa flavonoid, karena dilihat dari
strukturnya yang memiliki 2 cincin aromatik yang diikat oleh tiga atom karbon.
Beberapa tanin terbukti memiliki aktivitas antioksidan, menghambat pertumbuhan
tumor dan menghambat enzim seperti “reverse” transkriptase dan DNA
topoisomerase (21).
c. Alkaloid
Mekanisme kerja alkaloid sebagai antibakteri yaitu dengan cara
mengganggu komponen penyusun peptidoglikan pada sel bakteri, sehingga lapisan
dinding sel tidak terbentuk secara utuh dan menyebabkan kematian sel tersebut.
Mekanisme lain antibakteri alkaloid yaitu komponen alkaloid diketahui sebagai
interkelator DNA dan menghambat enzim topoisomerase sel bakteri (20).
2.1.6 Penggunaan Tanaman Randu
Penggunaan daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) untuk obat
tradisional diantaranya digunakan sebagai obat luar dan obat dalam seperti untuk
mengatasi demam, diare, diabetes, hipertensi, sakit kepala, obat luka, dan
sebagainya (11). Selain itu, tanaman randu juga memiliki banyak kegunaan lain
diantaranya menjadi sumber serat dan kayu. Buah randu memiliki sumber serat
9
yang dapat digunakan sebagai bahan dasar matras, bantal, hiasan dinding dan
pakaian. Kulit buah randu dapat dimanfaatkan sebagai pengganti bahan kertas,
sedangkan kulit kayunya kaya akan potasium dan abunya yang dapat di gunakan
sebagai pupuk (22).
Selain digunakan sebagai tempat peneduh, saat ini penggunaan utama Ceiba
pentandra adalah sebagai sumber kayu. Sebagian besar digunakan dalam
pembuatan kayu lapis, tetapi juga untuk membuat kotak dan peti, dan untuk bengkel
tukang kayu ringan. Secara tradisional, seluruh batang dilubangi sebagai kano, dan
kayunya digunakan untuk perabotan ringan, peralatan, wadah, alat musik, mortir,
ukiran, dan barang-barang serupa. Kayu ini juga cocok digunakan untuk pembuatan
kertas. Kayu tanaman randu juga dapat digunakan untuk mengasapi gubuk atau
pakaian. Abu kayu digunakan sebagai garam dapur dan untuk pembuatan
sabun. Kulitnya digunakan untuk membuat dinding dan pintu pondok dan
menghasilkan permen karet dan pewarna coklat kemerahan (22).
Daun dan pucuk tanaman randu adalah makanan ternak untuk kambing,
domba, dan sapi. Bunganya dikunjungi oleh lebah, menghasilkan madu berwarna
kuning dengan rasa yang khas. Penggunaan yang telah menarik minat komersial
adalah sebagai sumber minyak biji, yang telah digunakan dalam pembuatan sabun,
dan farmasi. Minyak juga dapat digunakan untuk penerangan, pembuatan cat dan
pelumasan, dan untuk tujuan kuliner. Akan tetapi hal tersebut tidak dianjurkan
karena alasan kesehatan (23).
2.2 Salmonella typhi
2.2.1 Taksonomi
Salmonella typhi adalah bakteri yang termasuk ke dalam kelompok
enterobacteriaceae yang merupakan suatu kelompok heterogen basil aerob gram-
negatif (24). Berikut ini merupakan taksonomi dari bakteri Salmonella typhi:(25)
Kingdom : Bacteria
Filum : Proteobacteria
Ordo : Gamma Proteobacteria
Kelas : Enterobacteriaceae
Genus : Salmonella
Spesies : Salmonella typhi.
10
Gambar 2.3 Salmonella typhi (26).
2.2.2 Morfologi Salmonella typhi
Salmonella adalah bakteri berbentuk batang lurus, gram negatif, tidak
berspora, berukuran 1-3,5 µm x 0,5-0,8 µm, besar koloni rata-rata 2-5 mm, dan
bergerak dengan flagel peritrik (25). Salmonella tumbuh cepat dalam media yang
sederhana, hampir tidak pernah memfermentasi laktosa dan sukrosa, membentuk
asam dan kadang gas dari glukosa dan manosa, biasanya memproduksi hidrogen
sulfide atau H2S. Organisme ini dapat bertahan hidup di air yang beku untuk periode
yang lama, Salmonella resisten terhadap zat kimia tertentu (misalnya, brilliant
green, natrium tetrathionat, natrium deoksikolat) yang menghambat bakteri
enteritik lain (27).
2.2.3 Patogenesis
Salmonella typhi merupakan bakteri yang paling umum menyebabkan
tifoid. Sebagian besar penyakit ini disebabkan dari makanan atau minuman yang
terkontaminasi yang kemudian masuk ke dalam tubuh. Sebagian kuman
dihancurkan oleh asam lambung, dan sebagian masuk ke usus halus, mencapai
bercak peyer di ileum terminalis yang hipertrofi (28). Salmonella typhi memiliki
fimbria khusus yang dapat menempel ke lapisan bercak peyer, sehingga bakteri
dapat di fagositosis. Setelah menempel, bakteri memproduksi protein yang
mengganggu brush bonder usus dan memaksa sel usus untuk membentuk kerutan
membrane yang akan melapisi bakteri dalam vesikel. Bakteri dalam vesikel akan
menyeberang melewati sitoplasma sel usus dan di presentasikan ke makrofag (5).
11
Penyebaran organisme dari bercak peyer terjadi melalui sistem limfatik dan
aliran darah (29). Setelah sampai kelenjar getah bening mensenterika, kuman
kemudian masuk ke aliran darah melalui duktus torasikus sehingga terjadi
bakteremia pertama yang asimtomatik. Salmonella typhi juga bersarang dalam
sistem retikuloendotelial terutama hati dan limpa, dimana kuman meninggalkan sel
fagosit berkembang biak dan masuk sirkulasi darah lagi sehingga terjadi bakteremia
kedua dengan gejala sistemik. Salmonella typhi menghasilkan endotoksin yang
berperan dalam inflamasi lokal jaringan tempat kuman berkembang biak
merangsang pelepasan zat pirogen dan leukosit jaringan sehingga muncul demam
dan gejala sistemik lain. Perdarahan saluran cerna dapat terjadi akibat erosi
pembuluh darah sekitar bercak peyer. Apabila proses patologis semakin
berkembang, perforasi dapat terjadi (5).
2.2.4 Gambaran klinis
Gambaran klinis tifoid sangat bervariasi, dari gejala yang ringan sekali,
gejala yang khas, dan dengan gejala klinis yang berat sampai komplikasi.
Gambaran klinis juga bervariasi berdasarkan daerah atau negara, serta menurut
waktu. Salmonella menyebabkan tiga jenis utama penyakit pada manusia, tetapi
sering kali ditemukan dalam bentuk campuran. Penyakit klinis yang disebabkan
oleh Salmonella adalah :(25)
Tabel 2.2 Penyakit klinis yang disebabkan oleh Salmonella.
Demam Tifoid Septikemia Enterokolitis
Periode inkubasi 7-20 hari Bervariasi 8-48 jam
Awitan Lambat Mendadak Mendadak
Demam Meningkat secara
bertahap, kemudian
plato tinggi, dengan
keadaan “tifoidal”
Meningkat dengan
cepat, kemudian
meningkat dengan
tajam mencapai
suhu “septik”
Biasanya rendah
Durasi penyakit Beberapa minggu Bervariasi 2-5 hari
Gejala
gastrointestinal
Sering konstipasi
pada awalnya;
Sering tidak ada Mual, muntah, diare
sejak awal
12
kemudian diare
berdarah
Kultur darah Positif dalam minggu
pertama hingga
kedua penyakit
Positif saat demam
tinggi
Negatif
Kultur feses Positif sejak minggu
kedua; negatif
sebelumnya
Jarang positif Positif segera
setelah awitan
2.2.5 Pengobatan
2.2.5.1 Kloramfenikol
Kloramfenikol merupakan zat yang awalnya dihasilkan dari biakan
Streptomyces venezuelae, dan sekarang telah dapat dibuat secara sintetik di
laboratorium (25). Kloramfenikol sukar larut dalam air dan mudah larut dalam
alkohol (30). Kloramfenikol kristalin merupakan senyawa stabil yang cepat diserap
dari saluran cerna dan didistribusikan luas ke dalam jaringan dan cairan tubuh,
termasuk sistem saraf pusat dan cairan cerebrospinal. Zat tersebut juga dapat masuk
kedalam sel dengan mudah (25).
Kloramfenikol memiliki aktivitas antibakteri berspektrum luas.
Kloramfenikol menghambat sistesis protein pada bakteri dalam jumlah terbatas
pada sel eukariot. Obat tersebut menghambat perlekatan asam amino ke rantai
peptida nasen pada unit 50 S ribosom dengan cara mengganggu kerja peptidil
transferase. Kloramfenikol terutama bersifat bakteriostatik, walaupun dapat bersifat
mempunyai khasiat bakterisid (31). Kloramfenikol telah digunakan untuk
pengobatan banyak jenis infeksi, misalnya yang disebabkan oleh Salmonella,
meningokok, dan H influenza. Mikroorganisme yang resisten terhadap
kloramfenikol menghasilkan enzim kloramfenikol asetiltransferase, yang
menghancurkan aktivitas obat. Resistensi terhadap kloramfenikol terjadi akibat
perusakan obat oleh suatu enzim (kloramfenikol transferase) yang disandi plasmid
(25).
13
Di Indonesia kloramfenikol merupakan obat pilihan untuk mengobati
demam tifoid. Dosis yang diberikan adalah 4 x 500 mg per hari dapat diberikan
secara pe oral atau intravena. Diberikan sampai 7 hari bebas panas (32,33).
2.2.6 Kurva pertumbuhan bakteri
Pertumbuhan bakteri melewati empat fase yang akan membentuk kurva
pertumbuhan. Fase tersebut adalah sebagai beikut:
1. Fase lamban (lag)
Fase lamban merupakan periode saat sel-sel yang kekurangan enzim dan
metabolit akibat kurang menguntungkan pada akhir riwayat kultur sel-sel tersebut
sebelumnya, beradaptasi terhadap lingkungan barunya. Pada fase ini tidak adanya
peningkatan ukuran sel atau jumlah selnya (25).
2. Fase eksponensial
Fase ini sel-sel mulai mengadakan perubahan bentuk dan meningkat
jumlahnya sehingga kurva meningkat dengan tajam. Materi sel yang baru disintesis
dalam laju yang konstan, tetapi materi baru itu sendiri bersifat katalitik, dan
massanya bertambah secara eksponensial. Hal ini berlanjut hingga terjadinya satu
atau lebih nutrien dalam medium telah habis, atau produk metabolik toksik
terkumpul dan menghambat organisme (25).
3. Fase stasioner puncak
Fase ini pada akhirnya, kehabisan nutrien atau akumulasi produk toksik
akan menyebabkan pertumbuhan untuk terhenti sepenuhnya sehingga gambaran
grafik mendatar (25).
4. Fase kematian
Fase kematian merupakan akhir dari suatu kurva, dimana pada kebanyakan kasus,
laju kematian sel lebih lambat dari laju pertumbuhan secara eksponensial. Setelah
sebagian besar sel mati, laju kematian menurun secara drastis sehingga hanya
terdapat sejumlah kecil sel yang masih hidup. Bertahannya sel-sel ini
mencerminkan terjadinya pergantian sel (25).
14
Gambar 2.4 Kurva pertumbuhan bakteri.(25)
2.2.6.1 Zona hambat pertumbuhan bakteri
Zona bening merupakan petunjuk kepekaan bakteri terhadap bahan
antibakteri yang digunakan sebagai bahan uji dan dinyatakan dengan luas zona
hambat. Zona hambat yang terbentuk di sekitar sumur diukur diameter vertikal dan
diameter horizontal dengan satuan milimeter (mm) menggunakan jangka sorong
(34). Pengukuran diameter zona hambat dapat menggunakan rumus:(35)
Keterangan :
d1 : diameter vertikal zona bening pada media
d2 : diameter horizontal zona bening pada media
X : diameter sumuran
Greenwood (1995) menyatakan bahwa zona hambat yang telah diukur dapat
diklasifikasikan berdasarkan klasifikasi respon hambatan pertumbuhan bakteri(36).
Tabel 2.3 Kategori respon hambatan pertumbuhan bakteri.
Daya hambat bakteri Kategori
<10 mm Kurang efektif
10-15 mm Lemah
16-20 mm Sedang
>20 mm Kuat
𝑑1 + 𝑑22
− 𝑋
15
2.3 Ekstraksi
Ekstraksi merupakan proses pemisahan senyawa terlarut ke dalam pelarut.
Senyawa yang bersifat anorganik atau disebut dengan senyawa polar dapat terlarut
oleh pelarut polar, sedangkan senyawa organik atau senyawa non-polar dapat
terlarut oleh pelarut non-polar. Ekstraksi merupakan suatu proses penyarian
senyawa kimia yang terdapat dalam bahan alami atau berasal dari dalam sel dengan
menggunakan pelarut dan metode yang tepat, sedangkan ekstrak merupakan hasil
dari ekstraksi (37). Tujuan dari suatu proses ekstraksi adalah untuk memperoleh
suatu bahan aktif yang tidak diketahui atau yang sudah diketahui, memperoleh
sekelompok senyawa yang struktur sejenis, memperoleh semua metabolit sekunder
dari satu bagian tanaman dengan spesies tertentu, dan mengidentifikasi metabolit
sekunder yang terdapat pada suatu makhluk hidup sebagai penanda kimia atau
kajian metabolisme (38). Metode ekstraksi diantaranya adalah maserasi, infusi,
dekoksi, perlokasi, dan soxhlet.
Maserasi berasal dari bahasa Latin macerare, artinya mengairi,
melunakkan. Maserasi adalah proses pengekstrakan simplisia dengan
menggunakan pelarut dengan beberapa kali pengocokan atau pengadukan pada
temperatur ruangan (kamar). Maserasi bertujuan untuk menarik zat-zat berkhasiat
yang tahan pemanasan maupun yang tidak tahan pemanasan. Secara teknologi
maserasi termasuk ekstraksi dengan prinsip metode pencapaian konsentrasi pada
keseimbangan (39).
Maserasi merupakan cara ekstraksi yang paling sederhana. Maserasi
dilakukan dengan cara melakukan perendaman bagian tanaman secara utuh atau
yang sudah digiling kasar dengan pelarut dalam bejana tertutup pada suhu kamar
selama sekurang-kurangnya 3 hari dengan pengadukan berkali-kali sampai semua
bagian tanaman yang dapat larut melarut dalam cairan pelarut. Pelarut yang
digunakan adalah etanol 96%. Pelarut merupakan salah satu faktor yang
menentukan dalam proses ekstraksi, sehingga pada pemilihan pelarut untuk
ekstraksi harus mempertimbangkan berbagai faktor. Terdapat dua pertimbangan
utama dalam memilih jenis pelarut, yaitu pelarut harus mempunyai daya larut yang
tinggi dan pelarut tidak berbahaya atau tidak beracun. Pelarut yang digunakan
16
dalam ekstraksi harus dapat melarutkan ekstrak yang diinginkan saja, mempunyai
kelarutan yang besar, tidak menyebabkan perubahan secara kimia pada komponen
ekstrak, dan titik didih kedua bahan tidak boleh terlalu dekat (40). Kemudian
campuran ini disaring dan ampas yang diperoleh diperas untuk memperoleh bagian
cairnya saja. Cairan yang diperoleh kemudian dijernihkan dengan penyaringan atau
dekantasi setelah dibiarkan selama waktu tertentu (38).
Proses maserasi sangat menguntungkan karena dengan perendaman maka
pada sampel tumbuhan terjadi pemecahan dinding sel sehingga metabolit sekunder
yang ada dalam sitoplasma akan terlarut dalam pelarut organik dan ekstraksi
senyawa akan sempurna karena dapat diatur lama perendaman yang dilakukan (12).
Keuntungan lainnya dari metode ini adalah efektif untuk senyawa yang tidak tahan
panas (terdegradasi karena panas), peralatan yang digunakan relatif sederhana,
murah, dan mudah diperoleh serta pengerjaannya yang mudah (27). Sedangkan
kerugiannya adalah proses pengerjaanya lama, perlunya dilakukan pengadukan,
perasan dan penyaringan, terbentuknya residu pelarut di dalam ampas, serta mutu
produk akhir yang tidak konsisten (38).
2.4 Penentuan Kepekaan Antibakteri
2.4.1 Metode
Uji efektivitas bakteri patogen terhadap antibakteri dapat dilakukan dengan
salah satu dari dua metode dasar, yaitu difusi atau dilusi.
1. Difusi
Metode difusi merupakan teknik secara kualitatif yang akan menunjukkan
ada atau tidaknya senyawa dengan aktivitas antibakteri. Metode difusi dipengaruhi
oleh banyak faktor fisik dan kimia selain interaksi sederhana antara obat dan
organisme (misal, sifat medium dan kemampuan difusi, ukuran molekuler dan
stabilitas obat) (41). Metode difusi dibagi menjadi beberapa cara, yaitu:(42)
a. Metode Sumuran
Metode sumuran yaitu membuat lubang pada agar yang telah diinokulasi
bakteri. Letak dan jumlah lubang disesuaikan dengan penelitian, lalu lubang diisi
dengan larutan yang akan diuji. Setelah diinkubasi, pertumbuhan bakteri diamati
dengan melihat ada tidaknya daerah hambatan disekeliling lubang (42). Metode ini
17
memiliki kelebihan yaitu lebih mudah mengukur luas zona hambat yang terbentuk
karena isolat beraktivitas tidak hanya dibagian atas permukaan medium agar tetapi
juga sampai ke bawah (43).
b. Metode Kertas Cakram Disc Diffusion
Metode ini dilakukan dengan meletakkan kertas cakram yang telah telah
direndam larutan uji di atas media yang telah diinokulasi dengan bakteri. Setelah
diinkubasi, pertumbuhan bakteri diamati dan melihat ada tidaknya daerah hambatan
disekeliling cakram (42).
c. Metode Silinder Gelas
Pada metode ini, diletakkan beberapa silinder di atas media yang telah
diinokulasi dengan bakteri. Tiap silinder ditempatkan hingga berdiri di atas media
agar, diisi dengan larutan uji dan diinkubasi. Setelah itu, pertumbuhan bakteri
diamati untuk melihat ada tidaknya daerah hambatan di sekeliling silinder (42).
2. Dilusi
Metode dilusi digunakan untuk kuantitatif yang akan menunjukkan jumlah
obat tertentu yang diperlukan untuk menghambat (atau membunuh)
mikroorganisme yang diuji. Uji kerentanan dilusi membutuhkan waktu yang
banyak, dan kegunaannya terbatas pada keadaan-keadaan tertentu. Sejumlah zat
antibakteri dimasukkan ke dalam medium bakteriologi padat atau cair. Biasanya
digunakan pengenceran dua kali lipat zat antibakteri. Medium akhirnya diinokulasi
dengan bakteri uji lalu diinkubasi (41). Keuntungan metode ini adalah satu
konsentrasi agen antibakteri yang di uji dapat digunakan untuk menguji beberapa
mikroba uji (44). Metode dilusi dibedakan menjadi dua yaitu dilusi cair (broth
dilution) dan dilusi padat (solid dilution) (45).
a. Metode dilusi cair/broth dilution test
Metode ini mengukur MIC (minimum inhibitory concentration) atau KHM
(kadar hambat minumum) dan MBC (minimum bactericidal concentration) atau
KBM (kadar bunuh minimum). Cara yang dilakukan adalah dengan membuat seri
pengenceran agen antibakteri pada medium cair yang ditambahkan dengan mikroba
uji. Larutan uji agen antibakteri pada kadar terkecil yang terlihat jernih tanpa
adanya pertumbuhan mikroba uji ditetapkan sebagai KHM. Larutan yang
18
ditetapkan sebagai KHM tersebut selanjutnya dikultur ulang pada media cair tanpa
penambahan mikroba uji ataupun agen antibakteri, dan diinkubasi selama 18-24
jam. Media cair yang tetap jernih setelah inkubasi ditetapkan sebagai KBM (45).
b. Metode dilusi padat (solid dilution)
Metode ini serupa dengan metode dilusi cair namun menggunakan media
padat (solid). Keuntungan metode ini adalah satu konsentrasi agen antibakteri yag
diuji dapat digunakan untuk menguji beberapa mikroba uji.
2.4.2 Media
Media adalah campuran nutrien atau zat makanan yang dibutuhkan oleh
mikroorganisme untuk pertumbuhan. Media selain untuk menumbuhkan mikroba
juga dibutuhkan untuk isolasi dan inokulasi mikroba serta untuk uji fisiologi dan
biokimia mikroba (46).
1. Mueller Hinton Agar (MHA)
Media Mueller Hinton Agar adalah media terbaik untuk pemeriksaan
sensibilitas tes pada bakteri non-fastidious, baik aerob dan anaerob fakultatif.
Media ini ditemukan oleh Mueller dan Hinton pada tahun 1941, pada awalnya
media MHA digunakan untuk mengisolasi bakteri Neisseria sp (47). Media MHA
digunakan untuk uji kepekaan bakteri karena semua bakteri dapat tumbuh karena
media ini bukan merupakan media selektif dan media differensial. MHA juga
mengandung tepung pati yang berfungsi untuk menyerap racun yang dikeluarkan
bakteri, sehingga tidak mengganggu antibakteri, dan rendah sulfonamide,
trimethoprim dan tetracycline inhibitors (48).
2. Nutrient Agar (NA)
Media Nutrient Agar (NA) merupakan media universal yang berwarna
coklat muda, memiliki konsistensi yang padat dimana media ini berasal dari sintetik
dan memiliki kegunaan sebagai media menumbuhkan bakteri. NA digunakan untuk
budidaya bakteri dan perhitungan mikroorganisme dalam air, limbah, kotoran dan
bahan lainnya. NA merupakan suatu media kultur yang direkomendasikan untuk
budidaya mikroorganisme non-fastidious (48).
19
3. Salmonella-Shigella Agar (SSA)
Salmonella-Shigella Agar adalah media selektif dan diferensial. Media ini
digunakan untuk isolasi, pembiakan dan diferensiasi mikroorganisme enterik gram
negatif yang diisolasi dari spesimen klinis dan non-klinis seperti dari kotoran, urin,
dan bahan makanan yang dicurigai seperti makanan kalengan. Media ini tidak
direkomendasikan untuk isolasi primer Shigella karena beberapa strain Shigella
mungkin tidak tumbuh pada agar Salmonella-Shigella karena tingkat selektivitas
yang relatif tinggi. SSA mengandung sodium tiosulfat dan sodium sitrat yang
berfungsi sebagai agen selektif yang memberikan pH basa untuk menghambat
organisme gram-positif dan menekan koliform (49).
4. Tryptic Soy Agar (TSA)
Tryptic Soy Agar terutama digunakan sebagai media pertumbuhan awal
untuk keperluan mengamati morfologi koloni, mengembangkan kultur murni dan
mencapai pertumbuhan yang cukup untuk pengujian biokimia lebih lanjut dan
penyimpanan kultur. Tryptic Soy Agar direkomendasikan untuk digunakan sebagai
media pertumbuhan umum untuk isolasi dan biakan mikroorganisme. Tryptic Soy
Agar mendukung pertumbuhan mikroorganisme non-fastidious dan fastidious
sedang. Tryptic Soy Agar tidak digunakan untuk isolasi patogen dari spesimen
klinis tetapi dapat digunakan untuk mempertahankan atau mensubkultur strain
bakteri misalnya Enterobacteriaceae dan Staphylococci (50).
5. MacConkey Agar
Media MacConkey Agar adalah media selektif dan media diferensial yang
digunakan untuk mengisolasi bakteri batang gram negatif berdasarkan kemampuan
bakteri memfermentasi laktosa atau tidak. Media MacConkey Agar dikembangkan
oleh seorang bacteriologist yang bernama Alfred Theodore MacConkey. Media
MacConkey Agar digunakan terutama untuk famili Enterobacteriaceae dan
genus Pseudomonas. Strain fermentasi laktosa tumbuh berwarna merah atau merah
muda dan dapat dikelilingi oleh zona empedu asam yang diendapkan. Warna merah
disebabkan oleh produksi asam dari laktosa, penyerapan merah netral dan ketika
pH medium turun. Strain non-fermentasi laktosa seperti Shigella dan Salmonella
20
tidakn berwarna dan transparan, dan biasanya juga tidak mengubah penampilan
medium (51).
2.5 Kerangka Teori
Gambar 2.5 Kerangka teori
Infeksi
Salmonella typhi
Sintetik
Antibakteri
Alami
Kloramfenikol
Alkaloid, Saponin, dan
Tanin
Daun randu
Uji Efektivitas Antibakteri
21
2.6 Kerangka Konsep
Kerangka konseptual dalam penelitian ini adalah:
Variabel independen Variabel dependen
Gambar 2.6 Kerangka konsep
2.4 Hipotesis Penelitian
Berdasarkan kerangka konsep penelitian di atas, maka dapat dirumuskan
hipotesis dari penelitian ini adalah sebagai berikut:
2.4.1 Hipotesis null (H0)
1. Antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) pada
konsentrasi 50% tidak efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
2. Antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) pada
konsentrasi 75% tidak efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
3. Antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) pada
konsentrasi 100% tidak efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
4. Tidak terdapat perbedaan antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra
(L) Gaertn) pada konsentrasi 50%, 75%, dan 100% terhadap pertumbuhan
bakteri Salmonella typhi.
2.4.2 Hipotesis alternatif (Ha)
1. Antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) pada
konsentrasi 50% efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
Ekstrak daun randu dengan
berbagai konsentrasi
Daya hambat pertumbuhan
Salmonella typhi
22
2. Antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) pada
konsentrasi 75% efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
3. Antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) pada
konsentrasi 100% efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
4. Terdapat perbedaan antibakteri ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) pada konsentrasi 50%, 75%, dan 100% terhadap pertumbuhan
bakteri Salmonella typhi.
23
BAB 3
METODE PENELITIAN
3.1 Jenis Penelitian
Penelitian ini menggunakan desain penelitian uji eksperimental secara in
vitro dengan menggunakan teknik posttest only control group design.
3.2 Lokasi dan Waktu Penelitian
Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Herbarium Medanense Universitas
Sumatera Utara untuk uji herbarium tanaman randu, uji fitokimia di Laboratorium
FMIPA Kimia Universias Sumatera Utara dan uji efektifitas antibakteri di
Laboratorium Mikrobiologi FK Universitas Sumatera Utara. Penelitian ini
dilaksanakan pada bulan Juli - Desember 2019.
3.3 Populasi, Sampel, Besar Sampel, dan Teknik Pengambilan Sampel
3.3.1 Populasi
Populasi pada penelitian ini adalah isolat bakteri Salmonella typhi.
3.3.2 Sampel
Sampel penelitian ini adalah bakteri Salmonella typhi yang didapatkan dari
Laboratorium Mikrobiologi FK Universitas Sumatera Utara. Sedangkan daun randu
(Ceiba pentandra (L) Gaertn) diperoleh dari Kecamatan Syamtalira Bayu,
Kabupaten Aceh Utara.
3.3.3 Besar sampel
Pada penelitian ini, sampel yang akan digunakan adalah ekstrak daun randu
(Ceiba pentandra (L) Gaertn), masing-masing dibuat 3 seri konsentrasi (50%, 75%,
100%), Kloramfenikol digunakan sebagai kontrol positif, dan DMSO sebagai
kontrol negatif yang akan diberikan untuk mempengaruhi pertumbuhan Salmonella
typhi. Untuk menentukan besar sampel, digunakan rumus Federer dengan
perhitungan sampel sebagai berikut:
Keterangan: k = jumlah kelompok perlakuan
n = jumlah sampel dalam tiap kelompok
Rumus Federer : (k-1) (n-1) ≥ 15
24
(k-1) (n-1) ≥ 15
(5-1) (n-1) ≥ 15
(4)(n-1) ≥ 15
4n - 4 ≥ 15
4n ≥ 19
n ≥ 4,75
n ≥ 5
Berdasarkan hasil perhitungan di atas, maka besar sampel yang digunakan
adalah 5 pada tiap kelompok dan penelitian ini menggunakan 5 perlakuan. Maka,
total sampel pada penelitian adalah 25 sampel.
Kelompok 1 : Ekstrak daun randu konsentrasi 50% = 5 sampel
Kelompok 2 : Ekstrak daun randu konsentrasi 75% = 5 sampel
Kelompok 3 : Ekstrak daun randu konsentrasi 100% = 5 sampel
Kelompok 4 : Kloramfenikol sebagai kontrol positif = 5 sampel
Kelompok 5 : DMSO sebagai kontrol negatif = 5 sampel
Gambar 3.1 Ilustrasi perlakuan sampel*
*Kontrol positif dibuat dalam cawan petri yang berbeda
50% 75%
K(-)
100%
25
3.3.4 Teknik pengambilan sampel
Teknik pengambilan sampel yang digunakan pada penelitian ini adalah
simple random sampling.
3.4 Variabel Penelitian dan Definisi Operasional
3.4.1 Variabel
Variabel bebas atau independen dalam penelitian ini adalah ekstrak daun
randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) dengan konsentrasi 50%, 75%, 100%.
Sedangkan variabel terikat atau dependen dalam penelitian ini adalah diameter zona
hambat pertumbuhan bakteri Salmonella typhi.
3.4.2 Definisi operasional
Berdasarkan variabel dependen dan independen di atas, maka definisi
operasional penelitian ini adalah:
Tabel 3.1 Definisi operasional
Variabel Definisi operasional Cara Ukur Hasil Ukur Skala
Ukur
Ekstrak daun
randu (Ceiba
pentandra (L)
Gaertn)
Zat yang diperoleh dari
ekstraksi daun randu
menjadi cairan yang
mengandung senyawa
kimia melalui proses
maserasi dengan
menggunakan etanol 96%.
Pada penelitian ini dipakai
ekstrak daun randu dengan
konsentrasi 50%, 75%, dan
100%.
Menghitung
konsentrasi
dengan
rumus :
C1V1=C2V2
Mililiter (ml)
Rasio
Daya hambat
pertumbuhan
Salmonella
typhi
Daya hambat pertumbuhan
dari bakteri Salmonella
typhi adalah diameter zona
bening yang terlihat di
sekitar media pertumbuhan
bakteri.
Diukur
menggunakan
jangka sorong
1. Kurang
efektif =
<10 mm
2. Lemah =
10-15 mm
3. Sedang =
16-20 mm
4. Kuat = >20
mm
Ordinal
26
Kontrol
positif
Kontrol positif adalah
diameter zona hambat yang
dibentuk oleh
kloramfenikol di media
Mueller Hinton Agar
setelah diinokulasikan
dengan bakteri Salmonella
typhi dan diinkubasi selama
24 jam
Diukur
menggunakan
jangka sorong
1. Kurang
efektif =
<10 mm
2. Lemah =
10-15 mm
3. Sedang =
16-20 mm
4. Kuat = >20
mm
Ordinal
Kontrol
negatif
Kontrol negatif agen yang
tidak memiliki aktivitas
antibakteri yang digunakan
sebagai pembanding dengan
ekstrak daun randu. Kontrol
negatif yang digunakan
adalah DMSO.
Diukur
menggunakan
jangka sorong
Diameter
zona hambat
(mm)
Rasio
3.5 Bahan Penelitian
Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah ekstrak daun
randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn), isolat Salmonella typhi yang didapatkan dari
Laboratorium Mikrobiologi Sumatera Utara, kloramfenikol, larutan etanol 96%,
Mueller Hinton Agar, Mac Conkey Agar, aquades, klorofom, amoniak, pereaksi
Wagner, Meyer, Bouchardart dan Dragendorf, FeCl3 1%, H2SO4 2M, dan DMSO.
3.6 Instrumen Penelitian
Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah handschoon dan masker,
Inkubator, rak dan tabung reaksi, penjepit tabung reaksi, tabung erlenmeyer, cawan
petri, kertas cakram, gelas beker, pipet, mikropipet, jarum ose/lidi pengaduk,
milling machine atau blender, timbangan analitik, pelubang gabus, autoklaf, ayakan
43 mesh, rotary evaporator, waterbath, pinset steril, lampu bunsen, object glass,
jangka sorong.
3.7 Prosedur Penelitian
Jenis data yang dikumpulkan dalam penelitian ini adalah data primer, yaitu
data yang dikumpulkan oleh peneliti sendiri dari hasil pengukuran berupa diameter
zona hambat ekstrak daun randu terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella thypi
yang diukur menggunakan jangka sorong.
27
3.7.1 Sterilisasi alat
Sebelum memulai prosedur kerja terlebih dahulu alat dan bahan yang
digunakan disterilkan. Alat yang terbuat dari gelas seperti petridish, tabung reaksi,
erlenmeyer dan seluruh alat yang perlu disterilkan pada oven selama 60 menit pada
suhu 180˚C. Bahan seperti MHA dipanaskan pada hotplate setelah tercampur
dengan larutan aquades dan disterilkan didalam autoklaf dengan suhu 121˚C selama
15 menit untuk menghindari adanya kontaminasi dengan yang lain.
3.7.2 Pembuatan media Mueller Hinton Agar (MHA)
Serbuk Mueller Hinton Agar sebanyak 38 gram dimasukkan ke dalam
tabung erlenmeyer dan dilarutkan dengan 1000 mL akuades. Suspensi yang
dihasilkan dipanaskan hingga mendidih. Selanjutnya, tabung dimasukkan ke dalam
autoklaf dengan suhu 121°C selama 15 menit.
3.7.3 Pembuatan suspensi bakteri
Bakteri Salmonella typhi diambil sebanyak satu ose dari kultur, kemudian
diinokulasikan ke dalam media Mac Conkey Agar dan diinkubasi pada suhu 37 °C
selama 24 jam. Setelah dibiakkan, suspensi bakteri yang telah diinkubasi
disesuaikan dengan standar kekeruhan larutan McFarland 0,5 sehingga jumlah
bakteri yang didapatkan setara dengan 1×108 CFU/mL atau hingga tingkat
kekeruhannya sama. Penyesuaian kekeruhan dengan standar McFarland dilakukan
dengan cara memasukkan aquades kedalam tabung reaksi kemudian masukkan
bakteri Salmonella typhi yang telah diinokulasi dalam media Mac Conkey Agar
menggunakan ose. Kemudian dibandingkan sampai tingkat kekeruhannya sama
dengan standar McFarland.
3.7.4 Pembuatan ekstrak daun randu
1. Determinasi tanaman
Pada proses awal pada penelitian ini adalah dilakukan determinasi tanaman
randu (Ceiba petandra,Gaertn). Determinasi tanaman dilakukan dengan cara
menunjukkan batang, daun, bunga, dan buah randu yang kemudian ditetapkan
kebenarannya sesuai dengan ciri-ciri morfologi tanaman randu. Determinasi
tanaman dilakukan di Laboratorium Herbarium Medanense (MEDA) Universitas
Sumatera Utara.
28
2. Preparasi sampel uji
Ekstrak daun randu dibuat dengan metode maserasi menggunakan pelarut
etanol 96%. Daun randu yang digunakan adalah daun randu yang berwarna hijau
gelap yang masih segar. Daun randu sebanyak 3 kg dicuci dengan menggunakan air
mengalir dan bersih. Setelah dicuci, daun dijemur selama 1 hari kemudian dirajang
atau dipotong kecil-kecil. Tahap selanjutnya adalah pengeringan daun dengan
menggunakan oven dengan suhu 45°C. Daun randu yang telah kering kemudian
dibuat menjadi serbuk dengan cara diblender hingga halus. Seluruh serbuk randu
didapatkan sebanyak ±670 g lalu dimasukkan ke dalam toples kaca. Selanjutnya
ditambahkan 6700 mL etanol 96% dan direndam selama 6 jam sambil sesekali
diaduk, kemudian didiamkan selama 18 jam. Kemudian untuk memisahkan filtrat
dengan cara disaring dengan kertas penyaring. Residu yang diperoleh dari hasil
penyaringan dimaserasi kembali dengan dengan jenis pelarut yang sama dan jumlah
volume pelarut sebanyak setengah kali jumlah volume pelarut pada pencairan
pertama. Kemudian dikumpulkan semua filtrat yang telah diperoleh dan diuapkan
dengan rotary evaporator hingga diperoleh ekstrak pekat. Setelah itu ekstrak pekat
akan dikentalkan hingga berbentuk pasta dengan menggunakan waterbath. Hasil
akhir ekstrak kental daun randu adalah sebanyak 84 gram.
3.7.5 Uji fitokimia
1. Uji alkaloid
Ekstrak daun randu dimasukkan kedalam 4 tabung reaksi. Tabung I ditetesi
pereaksi Wagner, jika terbentuk endapan jingga, maka positif mengandung
alkaloid. Tabung II ditetesi pereaksi Meyer, jika terbentuk endapan putih, maka
positif mengandung alkaloid. Tabung III ditetesi pereaksi Dragendorf, jika
terbentuk endapan merah, maka positif mengandung alkaloid. Tabung IV ditetesi
pereaksi Boucharda, jika terbentuk endapan coklat maka hasilnya positif
mengandung alkaloid.
2. Uji tanin
Ekstrak daun randu dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian
ditambahkan larutan FeCl3 1% sebanyak 2 tetes. Reaksi positif uji tanin ditandai
dengan terlihatnya warna hijau kebiruan pada sampel.
29
3. Uji saponin
Ekstrak daun randu dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian
ditambahkan aquades sebanyak 10 ml, lalu dikocok dengan kuat selama kurang
lebih 30 detik. Reaksi positif ditandai oleh terbentuknya buih yang stabil kurang
lebih 1-3 cm menandakan adanya kandungan saponin.
4. Uji flavonoid
Ekstrak daun randu dimasukkan ke dalam 3 tabung reaksi. Tabung I ditetsi
NaOH 10%, hasil positif jika berubah menjadi merah. Tabung II ditetesi FeCl3 5%,
hasil positif jika berubah menjadi kuning. Tabung III ditetesi H2SO4, jika terjadi
perubahan warna kuning, coklat, atau merah menandakan positif mengandung
flavonoid.
5. Steroid
Ekstrak daun randu dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian
ditambahkan reagen Lieberman-Buchad. Jika terjadi perubahan warna menjadi biru
atau hijau dikatakan positif mengandung steroid.
3.7.6 Pembuatan konsetrasi ekstrak daun randu
Hasil ekstraksi murni yang telah didapatkan dengan metode maserasi
kemudian masing-masing diencerkan dengan DMSO hingga mencapai konsentrasi
50%, 75% , dan 100%. Selanjutnya hasil pengenceran dihomogenkan dengan
vortex. Pembuatan konsentrasi ekstrak daun randu menggunakan rumus :
Sedangkan untuk mencari volume pengenceran digunakan rumus:
Keterangan :
C1 : Konsetrasi ekstrak etanol yang diambil (%)
V1 : Volume larutan ekstrak etanol yang diambil (ml)
C2 : Konsentrasi larutan yang akan dibuat (%)
V2 : Volume larutan yang akan dibuat (ml)
C1xV1 = C2xV2
Vpengencer = V2-V1
30
Hasil pengenceran ekstrak daun randu didapatkan pada konsentrasi 50%
adalah 5 ml dengan volume pengenceran 5 ml, konsentrasi 75% sebesar 7,5 ml
dengan volume pengenceran 2,5 ml, dan pada konsentrasi 100% sebesar 10 ml
tanpa pengenceran.
3.7.7 Uji efektifitas antibakteri ekstrak daun randu terhadap pertumbuhan
Salmonella typhi
Pada pengujian efektifitas antibakteri digunakan metode difusi. Media
Mueller Hinton Agar diambil dari tabung erlenmeyer sebanyak 15 mL dan
dimasukkan kedalam cawan petri. Cawan petri diletakkan pada tempat yang datar
dan ditunggu hingga MHA memadat. Kemudian masukkan suspensi bakteri
Salmonella typhi yang sudah sesuai dengan larutan standar Mc Farland
menggunakan lidi kapas dan dihomogenkan ke dalam cawan petri yang berisi
MHA. Metode ini menggunakan sumur sebagai tempat meletakkan zat antibakteri
yang akan diuji. Media MHA tersebut kemudian dilubangi menggunakan alat
pelubang dengan diameter 6 mm. Kemudian masing-masing ekstrak etanol daun
randu dengan konsentrasi 50%, 75%, dan 100% dimasukkan ke dalam lubang
tersebut sampai memenuhi lubang. Media Mueller Hinton Agar yang telah
dilakukan perlakuan tersebut diinkubasikan selama 24 jam pada suhu 37°C tanpa
dibalik.
Penelitian ini menggunakan kloramfenikol sebagai kontrol positif,
sedangkan sebagai kontrol negatif menggunakan DMSO. Hasil aktivitas antibakteri
ekstrak etanol daun randu diamati secara visual dengan mengukur diameter zona
hambat menggunakan jangka sorong sebanyak 2 kali yaitu secara horizontal dan
vertikal.
31
3.8 Alur Penelitian
Gambar 3.2 Alur penelitian
Identifikasi daun randu (Ceiba
pentandra L. Gaertn)
Pembiakan bakteri Salmonella typhi
DMSO sebagai
kontrol negatif
Kloramfenikol
sebagai kontrol
positif
Ekstrak daun randu
dengan konsentrasi 50%,
75%, dan 100%.
Salmonella typhi
Uji kepekaan terhadap bakteri Salmonella
typhi menggunakan media MHA
Inkubasi selama 24 jam pada suhu 37◦C
Difusi
Menilai daya hambat dengan
mengukur zona bening
Uji statistik
Ekstrak dengan metode maserasi
Uji fitokimia
32
3.9 Cara Pengelolahan dan Analisis Data
Data yang telah dikumpulkan setelah semua tahapan penelitian selesai akan
diolah dan dianalisis dengan menggunakan Statistical Product and Service
Solutions (SPSS). Data pada penelitian ini merupakan komparatif numerik tidak
berpasangan. Data yang telah didapat dilakukan uji normalitas dengan
menggunakan uji Shapiro-Wilk. Uji ini digunakan untuk melihat normalitas
distribusi data. Data yang berdistribusi normal memiliki nilai p>0,05; sedangkan
data yang tidak berdistribusi normal memiliki nilai p<0,05. Hasilnya didapatkan
data tidak berdistribusi normal, sehingga dilanjutkan dengan uji statistik non-
parametrik Kruskal-Wallis dengan uji Post hoc Mann-Whitney.
33
BAB 4
HASIL PENELITIAN DAN PEMBAHASAN
4.1 Data Penelitian
4.1.1 Hasil determinasi tanaman randu
Hasil determinasi tanaman yang dilakukan di Laboratorium Herbarium
Medanense (MEDA) Universitas Sumatera Utara menunjukkan bahwa tanaman
yang digunakan dalam penelitian ini merupakan tanaman randu dengan kelompok
famili Malvaceae, dan spesies Ceiba petandra (L) Gaertn.
4.1.2 Hasil skrining fitokimia
Ekstrak daun randu dilakukan uji skrining fitokimia untuk mengetahui dan
memastikan senyawa kimia yang terkandung dalam ekstrak daun randu. Hasil uji
skrining fitokimia ekstrak daun randu adalah sebagai berikut.
Table 4.1 Hasil skrining uji fitokimia ekstrak daun randu
Unsur fitokimia Reagen Ekstrak daun randu
Alkaloid Bouchardart
Maeyer
Wagner
Dragendrof
+
+
+
−
Steroid dan Triterpenoid Salkowsky
Lieberman-Burchad
−
−
Saponin Aquadest
Aquadest + Alkohol 96%
+
−
Flavonoid FeCl3 5%
NaOH 10%
H2SO4
Mg + HCl
+
−
+
−
Tanin FeCl3 1% +
34
4.2.3 Hasil uji efektifitas antibakteri ekstrak daun randu terhadap bakteri
Salmonella typhi
Hasil ukur efektifitas antibakteri ekstrak daun randu terhadap bakteri
Salmonella typhi didapatkan hasil sebagai berikut.
Tabel 4.2 Hasil pengukuran daya hambat pertumbuhan bakteri Salmonella typhi
Hasil pemberian ekstrak daun randu dengan konsentrasi 75% dan 100%
menunjukkan adanya zona hambat, sedangkan pada konsentrasi 50% tidak
ditemukan zona hambat. Rata-rata daya hambat tertinggi didapatkan pada
konsentrasi 100% yaitu sebesar 13,2 mm, sedangkan pada konsentrasi 75%
membentuk zona hambat dengan diameter rata-rata 12,4 mm. Kloramfenikol
sebagai kontrol positif memiliki daya hambat sebesar 26,2 mm yang menunjukkan
bahwa kloramfenikol lebih baik daripada ekstrak daun randu. Tabel 4.2
menunjukkan bahwa besarnya diameter zona hambat yang terbentuk seiring dengan
peningkatan konsentrasi.
Pengulangan
Diameter daya hambat pertumbuhan bakteri
Ekstrak daun randu dengan
konsentrasi Kloramfenikol DMSO
50 % 75 % 100 %
I 0 12 mm 13 mm 31 mm 0
II 0 13 mm 14 mm 25 mm 0
III 0 12 mm 12 mm 25 mm 0
IV 0 12 mm 13 mm 25 mm 0
V 0 13 mm 14 mm 25 mm 0
Mean 0 12,4 mm 13,2 mm 26,2 mm 0
35
Gambar 4.1 Zona hambat ekstrak daun randu terhadap pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
Gambar 4.2 Zona hambat kontrol positif kloramfenikol terhadap pertumbuhan
bakteri Salmonella typhi.
4.2 Hasil Penelitian
Data yang diperoleh dari dari hasil penelitian kemudian dianalisa melalui
uji normalitas Shapiro-Wilk untuk melihat apakah data berdistribusi normal atau
tidak. Hasil uji dapat dilihat pada tabel 4.3.
Tabel 4.3 Hasil uji Saphiro-Wilk
Perlakuan Nilai signifikasi (p)
Ekstrak 75% 0,006*
Ekstrak 100% 0,314
Kloramfenikol 0,000*
*tidak signifikan (p <0,05)
36
Dari hasil uji normalitas didapatkan bahwa data tidak berdistribusi normal.
Oleh karena itu, uji yang tepat dilakukan pada penelitian ini adalah uji alternatif
non parametrik yaitu Kruskal Wallis, untuk melihat apakah terdapat perbedaan
diameter zona hambat yang signifikan antar semua kelompok perlakuan.
Tabel 4.4 Hasil uji Kruskal Wallis
Asymp. Sig. 0,00
Hasil uji beda dengan menggunakan uji statistik Kruskal Wallis didapatkan
nilai p=0,00 (p<0,05) yang artinya terdapat perbedaan antara konsentrasi antar
kelompok perlakuan. Untuk melihat perbedaan yang bermakna antar kelompok,
maka data selanjutnya dianalisa menggunakan uji Post hoc Mann Whitney. Hasil
uji Post hoc Mann Whitney adalah sebagai berikut.
Tabel 4.5 Nilai p pada uji Mann-Whitney
Konsentrasi 50 % 75 % 100 % Kloramfenikol DMSO
Konsentrasi 50% - 0,005* 0,005* 0,004* 1,000
Konsentrasi 75% - 0,118 0,006* 0,005*
Konsentrasi 100% - 0,007* 0,005*
Kloramfenikol - 0,004*
DMSO -
* Signifikan (p<0,05)
Tabel 4.5 didapatkan bahwa hasil konsentrasi yang menghambat pada
konsentrasi 50% dan 75%, konsentrasi 50% dan 100%, konsentrasi 50% dan
kloramfenikol, konsentrasi 75% dan kloramfenikol, konsentrasi 75% dan DMSO,
konsentrasi 100% dan kloramfenikol, konsentrasi 100% dan DMSO, kloramfenikol
dan DMSO yaitu signifikan (p<0,05). Sedangkan pada konsentrasi 50% dan
DMSO, konsentrasi 75% dan 100% yaitu tidak signifikan. Kelompok yang tidak
signifikan tersebut menandakan bahwa tidak terdapat perbedaan yang bermakna
yaitu p=1,000 dan p=0,118 (p>0,05).
37
4.3 Pembahasan penelitian
Pengujian efektifitas antibakteri ekstrak daun randu pada bakteri gram
negatif Salmonella typhi dengan metode difusi sumuran (well diffusion)
menunjukkan bahwa hanya pada konsentrasi 75% dan 100% yang terdapat daya
hambat dan termasuk dalam kategori lemah, sedangkan pada konsentrasi 50% tidak
memiliki daya hambat terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella typhi.
Hasil uji pada ekstrak daun randu konsentrasi 50% jika dibandingkan
dengan konsentrasi yang lain merupakan bahan uji dengan konsentrasi yang paling
encer, sehingga memiliki kandungan zat aktif yang paling sedikit. Penelitian Dewi
yang dikutip dari penelitian Vinenthy, et al (2019) menyatakan bahwa semakin
sedikit kandungan zat aktif yang terdapat dalam bahan uji akan menghasilkan
diameter zona hambat terhadap pertumbuhan bakteri yang semakin kecil juga. Hal
ini terjadi karena zat aktif yang sedikit tidak mampu merusak dan mengganggu
proses fisiologis sel, sehingga mengakibatkan tidak terbentuknya zona hambat pada
konsentrasi 50% (52).
Terdapat perbedaan daya hambat yang signifikan pada konsentrasi 75% dan
100% terhadap kontrol positif kloramfenikol sebesar 26,2 mm. Kloramfenikol
membentuk zona hambat terbesar dari seluruh kelompok perlakuan. Hal ini
dikarenakan kandungan aktif dalam antibakteri kloramfenikol ini mampu
menghambat pertumbuhan bakteri dengan kemampuan daya hambat yang kuat.
Mekanismenya yaitu dengan cara menghambat sintesis protein dan mencegah ujung
aminoasil t-RNA bergabung dengan peptidil tranferase. DMSO sebagai kontrol
negatif tidak memiliki daya hambat yaitu 0 mm. Hal ini membuktikan bahwa
DMSO tidak memiliki aktivitas antibakteri sehingga tidak berpengaruh terhadap
pertumbuhan bakteri (53–55).
Peningkatan diameter zona hambat pada penelitian ini seiring dengan
peningkatan konsentrasi ekstrak yang diberikan. Penelitian Rastina yang dikutip
dari penelitian Azzahra, et al (2019) menyatakan bahwa kemampuan antibakteri
dalam menghambat pertumbuhan mikroorganisme tergantung pada besaran
konsentrasi dan jenis antibakterinya. Semakin tinggi konsentrasi antibakteri yang
berikan, maka zat aktif yang terkandung didalamnya semakin banyak, sehingga
38
efektivitas dalam menghambat bakteri akan semakin meningkat dan juga akan
membentuk zona hambat yang semakin besar pula (56). Penelitian yang dilakukan
oleh Osuntokun (2017) menunjukkan bahwa ekstrak daun etil asetat Ceiba
pentandra mempunyai daya hambat terhadap pertumbuhan bakteri Escherichia
coli, Salmonella typhi, Bacillus subtillis, Kleibsiella pneumonia dan
Staphylococcus aureus dengan luas zona hambat yang terbentuk semakin besar
sesuai dengan peningkatan konsentrasi (57).
Hasil penelitian ini sejalan dengan penelitian Rikomah (2015) tentang uji
daya hambat antibakteri ekstrak etanol daun randu (Ceiba pentandra L. Gaertn)
terhadap pertumbuhan bakteri Pseudomonas aeruginosa. Penelitian tersebut
menggunakan 5 seri konsentrasi yaitu 10 mg/mL, 30 mg/mL, 60 mg/mL, 75 mg/mL
dan 95 mg/mL dengan diameter zona hambat berturut-turut adalah 1,5 mm, 8 mm,
8,8 mm, 9,5 mm, dan 11,4 mm. luas zona hambat terbesar ditemukan pada
konsentrasi tertinggi (58). Penelitian yang dilakukan oleh Busman (2015) tentang
uji aktivitas antibakteri ekstrak daun kapuk randu terhadap bakteri Streptococcus
mutans dengan variasi konsentrasi 20%, 30%, 40%, 50%, 60% dan 80% juga
menunjukkan bahwa ekstrak daun kapuk randu mempunyai kemampuan aktivitas
antibakteri dengan diameter zona hambat tertinggi dijumpai pada konsentrasi yang
paling tinggi yaitu pada konsentrasi 80% sebesar 26 mm (59). Kedua penelitian
diatas menunjukkan bahwa ekstrak daun randu memberikan daya hambat seiring
dengan peningkatan konsentrasi ekstrak yang diberikan. Penelitan diatas juga
menunjukkan bahwa ekstrak daun randu mempunyai kemampuan yang berbeda
dalam menghambat pertumbuhan bakteri gram positif maupun gram negatif. Hal
tersebut dipengaruhi oleh kandungan zat aktif yang terdapat didalamnya.
Skrining fitokimia pada penelitian ini dilakukan secara kualitatif, dan
menunjukkan bahwa zat aktif yang terdapat dalam ekstrak daun randu berupa tanin,
alkaloid, flavonoid dan saponin. Njinga (2015) dalam penelitiannya menyatakan
bahwa senyawa tannin dan saponin hanya menunjukkan aktivitas melawan bakteri
gram negatif, sedangkan senyawa flavonoid mampu melawan bakteri gram negatif
dan gram positif. Ekstrak daun randu secara kuantitatif memiliki kandungan
39
flavonoid tertinggi dibandingkan dengan senyawa aktif lainnya yaitu saponin,
alkaloid, dan tanin (57,60).
Tanin memiliki kemampuan sebagai antibakteri. Tanin bekerja sebagai
antibakteri dengan menghambat enzim reverse transkriptase dan DNA
topoisomerase. Efek antibakteri tanin melalui reaksi dengan membran sel,
inaktivasi enzim dan inaktivasi fungsi materi genetik sehingga sel bakteri tidak
terbentuk. Selain itu, tannin juga mempunyai target pada polipeptida dinding sel
yang mengganggu pembentukan dinding sel menjadi sempurna, sehingga
menyebabkan sel bakteri menjadi lisis (61,62).
Alkaloid menghambat pertumbuhan bakteri dengan cara merusak
komponen penyusun peptidoglikan pada sel bakteri, sehingga lapisan dinding sel
tidak dapat terbentuk secara utuh dan menyebabkan kematian sel (63). Flavonoid
merupakan golongan senyawa fenol. Senyawa fenol dapat bersifat sebagai
koagulator protein. Protein yang menggumpal ini akan mengakibatkan proses
pembentukan dinding sel bakteri terganggu, sehingga bisa menghambat
pertumbuhan bakteri (64). Mekanisme kerja flavonoid sebagai antibakteri dapat
dibagi menjadi tiga yaitu menghambat sintesis asam nukleat, menghambat fungsi
membran sel dan menghambat metabolisme energi. Mekanisme antibakteri
flavonoid dalam menghambat sintesis asam nukleat adalah dengan merusak
permeabilitas dinding sel bakteri dan lisosom. Kedua, mekanisme antibakteri
flavonoid dengan cara menghambat fungsi membran sel yaitu dengan membentuk
senyawa kompleks dengan protein ekstraseluler sehingga dapat merusak membran
sel dan diikuti dengan keluarnya senyawa intraselular. Ketiga, mekanisme
antibakteri flavonoid dengan cara menghambat metabolisme energi yaitu dengan
menghambat penggunaan oksigen oleh bakteri (65,66).
Saponin yang terkandung didalam ekstrak daun randu merupakan zat aktif
yang dapat meningkatkan permeabilitas membran sehingga dapat terjadi hemolisis
pada sel (67). Mekanisme kerja saponin sebagai antibakteri yaitu dengan cara
menurunkan tegangan permukaan sehingga mengakibatkan naiknya permeabilitas
atau kebocoran sel dan mengakibatkan senyawa intraseluler akan keluar yang
40
mengakibatkan kematian sel. Apabila saponin berinteraksi dengan sel bakteri,
bakteri tersebut akan pecah atau lisis (68).
Perbedaan zona hambat yang terbentuk pada berbagai konsentrasi ekstrak
daun randu dipengaruhi oleh banyaknya zat metabolit sekunder yang terkandung
didalamnya. Tanaman randu yang digunakan pada penelitian ini berasal dari
tanaman yang tumbuh di pinggir sawah, sehingga tanaman randu yang digunakan
dapat dipengaruhi oleh faktor-faktor yang tidak terkontrol baik yang berasal dari
lingkungan maupun dari tumbuhan randu itu sendiri. Faktor lingkungan yang dapat
mempengaruhi stabilitas bahan aktif yaitu suhu, radiasi cahaya, udara, dan
kekeringan. Selain itu, paparan sinar matahari yang berlebihan serta kecukupan
unsur hara dalam tanah juga dapat mempengaruhi tingkat metabolit sekunder.
Tingkat usia kematangan tanaman randu sewaktu panen dan waktu saat panen juga
sangat berhubungan dengan pembentukan metabolit sekundernya (69,70).
Pada penelitian ini daun randu dipanen di pagi hari dan kemudian daun
randu dikirim ke laboratorium pada sore harinya, sehingga daun randu tidak
langsung diolah dan memungkinkan dapat hilangnya aktivitas biologis pada daun
tersebut. Sampel daun randu yang digunakan pada penelitian ini merupakan daun
segar yang sudah matang dan berwarna hijau. Daun randu pada saat pengambilan
sampel adalah ketika tanaman randu dalam keadaan tidak berbuah, dan usia
tanaman randu yang dijadikan sampel serta faktor lingkungan tertentu yang
mempengaruhinya tidak diketahui secara pasti.
41
BAB 5
PENUTUP
5.1 Kesimpulan
Berdasarkan hasil penelitian dapat ditarik kesimpulan sebagai berikut:
1. Ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) dengan konsentrasi 50%
tidak memiliki pengaruh antibakteri terhadap bakteri Salmonella typhi.
2. Ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) dengan konsentrasi 75%
memiliki pengaruh antibakteri terhadap bakteri Salmonella typhi sebesar
12,4 mm.
3. Ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) dengan konsentrasi 100%
memiliki pengaruh antibakteri terhadap pertumbuhan bakteri Salmonella
typhi sebesar 13,2 mm. Konsentrasi ini yang paling menghambat diantara
semua konsentrasi.
4. Terdapat perbedaan ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn) pada
konsentrasi konsentrasi 50%, 75% dan 100% dalam menghambat
pertumbuhan bakteri Salmonella typhi. Peningkatan zona hambat pada
penelitian ini seiring dengan peningkatan konsentrasi ekstrak.
5.2 Saran
1. Perlu dilakukan uji secara kuantitatif terhadap ekstrak daun randu untuk
mengetahui besaran kandungan yang terdapat didalam ekstrak daun randu.
2. Perlu dilakukan penelitian efektivitas ekstrak tanaman lainnya terhadap
bakteri Salmonella typhi.
3. Perlu dilakukan penelitian lanjut mengenai ekstrak daun randu (Ceiba
pentandra (L) Gaertn) dengan metode dilusi.
42
DAFTAR PUSTAKA
1. Lailiyah SH, Athiroh N, Santoso H. Identifikasi Perilaku Pasien Pasca
Penderita Tifoid Tahun 2016 Di Kelurahan Lowokwaru Kecamatan
Lowokwaru Kota Malang. e-Jurnal Ilm Biosaintropis. 2018;4(1):1–7.
2. Kementrian Kesehatan RI. Sistematika Pedoman Pengendalian Penyakit
Demam Tifoid. 2013.
3. Kementrian Kesehatan Republik Indonesia. Direktorat Jenderal Pencegahan
dan Pengendalian Penyakit. Aceh; 2018.
4. Rahmasari V, Lestari K. Review: Manajemen Terapi Demam Tifoid: Kajian
Terapi Farmakologis dan Non Farmakologis. Farmaka. 2018;16(1):184–95.
5. Wibisono E, Susilo A, Nanggolan L. Kapita Selekta kedokteran. 4th ed.
Jakarta: Media Aesculapius; 2014. 721–723 p.
6. Rahmawati M. Uji Aktivitas Antimikroba Ekstrak Etanol dan Air Rimpang
Pacing (Costus spiralis) terhadap Bakteri Escherichia coli, Shigella
dysenteriae, Salmonella typhimurium, Bacillus subtilis, Staphylococcus
aureus Serta Fungi Candida albicans. [Skripsi]. UIN Syarif Hidayatullah
Jakarta; 2015.
7. World Health Organization. Global Priority List of Antibiotic-Resistant
Bacteria to Guide Research, Discovery, and Development of New
Antibiotics. JMS - J Med Soc. 2018;32(1).
8. Pratiwi RH. Potensi Kapuk Randu (Ceiba Pentandra Gaertn.) Dalam
Penyediaan Obat Herbal. WIDYA Kesehat Dan Lingkung. 2014;1.
9. Mukasifah. Uji Aktivitas Antibakteri Daun Randu (Ceiba Pentandra L)
terhadap Bakteri Penyebab Diare dengan Menggunakan Metode Difusi Agar
[Skripsi]. UIN Alauddin Makassar; 2016.
10. Ninulia PP. Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Daun Randu (Ceiba
pentandra (L). Gaertn) terhadap Methicillin Resistant Staphylococcus
aureus (MRSA). [Skripsi]. Universitas Atma Jaya Yogyakarta; 2016.
11. Cahyono AD, Fatonah AS, Faturrochman A, Andriani YY. Aktivitas
Antidiare Ekstrak Daun randu (ceiba petandra L. gaern.) terhadap Mencit
Jantan Galur Swiss Webster. 2014;(31111052):1–11.
12. Prasanty A. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanolik Daun Randu (Ceiba
Pentandra. Gaertn.) terhadap Stapylococcus Epidermidis dan Shigella
Disentriae. [Skripsi]. Universitas Sebelas Maret; 2014.
13. The Integrated Taxonomic Information System. Catalogue of Life: 2015
Annual Checklist [Internet]. Species 2000 ITIS.
14. Fern K. Ceiba pentandra - (L.) Gaertn. [Internet]. Plants For a Future. 2012.
15. Muhgni AI. Uji Aktivitas Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Kapuk Randu
43
(Ceiba pentandra (L.) Gaertn) Sebagai Penghambat Pembentukan Batu
Ginjal PadaTikus Putih Jantan. [Skripsi]. UIN Syarif Hidayatullah Jakarta;
2013.
16. United States Department of Agriculture (USDA). U.S. National Plant
Germplasm System [Internet]. 2017.
17. Gordon BB. Yucatan’s Flora: Kapok or Ceiba Tree Sacred Mayan Tree and
Wild Medicinal Plant [Internet]. 2016.
18. Yanuartono, Purnamaningsih H, Nururrozi A, Indarjulianto S. Saponin :
Impact on Livestock (a Review). J Perternakan Sriwij. 2017;6(2):79–90.
19. Malangngia LP, Sangia MS, Paendonga JJE. Penentuan Kandungan Tanin
dan Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Biji Buah Alpukat (Persea americana
Mill.). J MIPA Unsrat Online. 2018;1(1):37–44.
20. Rijayanti RP. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Daun Mangga
Bacang (Mangifera foetida L.) terhadap Staphylococcus aureus Secara in
Vitro. Naskah Publ Univ Tanjungpura. 2014;
21. Mabruroh AI. Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Tanin dari Daun Rumput
Bambu (Lophatherum gracile Brongn) dan Identifikasinya. [Skripsi].
Universitas Islam Negeri Maulana Malik Ibrahim Malang; 2015.
22. Maulina I. Uji Toksisitas Ekstrak Air Daun Kapuk Randu Ceiba pentandra
Gaertn. terhadap Hama Ulat Api Pada Kelapa Sawit Setora nitens Eeck.
(Lepidoptera:Limacodidae). Vol. 62. Universitas Lampung; 2016.
23. Nkouam GB, Adjoh G, Leudeu CBT, Kouebou C, Tchiegang C, Kapseu C.
Local Uses of Kapok (Ceiba pentandra Gaertn.) Tree From The Northern
Part of Cameroon. Int J Environ Agric Biotechnol. 2017;2(4):2214–9.
24. Irianto K. Bakteriologi Medis, Mikologi Medis, dan Virologi Medis.
Bandung: Alfabeta, cv; 2014.
25. Brooks GF, Carroll KC, Butel JS, Morse SA, Mietzner TA. Jawetz, Melnick,
& Adelberg Mikrobiologi kedokteran. 25th ed. Jakarta: EGC; 2012.
26. Tawab DHA, Horesh L. Enteric Fever-Typhoid Fever (Salmonella typhi)
[Internet]. 2017.
27. Iqbal M. Identifikasi Kandungan Bakteri Salmonella sp. pada Bakso Tusuk
yang Dijual Pedagang Kaki Lima di Kecamatan Banda Sakti Kota
Lhokseumawe Tahun 2017. [Skripsi]. Universitas Malikussaleh; 2017.
28. Ashurst J V., Truong J, Woodbury B. Salmonella Typhi [Internet]. NCBI.
2019.
29. Crump JA, Sjölund-Karlsson M, Gordon MA, Parry CM. Epidemiology,
Clinical Presentation, Laboratory Diagnosis, Antimicrobial Resistance, and
Antimicrobial Management of Invasive Salmonella Infections. Clin
Microbiol Rev. 2015;28(4):901–37.
30. Katzung BG. Farmakologi Dasar & Klinik. 10th ed. Jakarta: EGC; 2010.
44
775–776 p.
31. Hardman JG, Limbird LE. Goodman & Gilman Dasar Farmakologi Terapi.
10th ed. Jakarta: EGC; 2012. 1221–1225 p.
32. Citra AA. Evaluasi Penggunaan Antibiotik Pada Pasien Dengan Demam
Tifoid di Instalasi Rawat Inap RSUD Jombang Tahun 2015 [Skripsi].
Universitas Setia Budi Surakarta; 2017.
33. Widodo D. Ilmu Penyakit Dalam. VI. Setiati S, Alwi I, Sudoyono AW,
Simadibrata M, Setiyohadi B, Syam AF, editors. Jakarta: Interna Publishing;
2014. 549–557 p.
34. Warbung YY, Wowor VNS, Posangi J. Daya Hambat Ekstrak Spons Laut
Callyspongia sp terhadap Pertubuhan Bakteri Staphylococcus aureus.
2014;1(2):1–12.
35. Surjowardojo P, Susilorini TE, Benarivo V. Daya Hambat Dekok Kulit Apel
Manalagi (Malus sylvestris Mill) terhadap Pertumbuhan Escherichia coli dan
Streptococcus agalactiae Penyebab Mastitis pada Sapi Perah.
2016;17(1):11–21.
36. David Greenwood. Antimicrobial Chemotherapy. 3rd ed. Oxford: Oxford
University Press; 1995. 1–452 p.
37. Chandra RA. Daya Antibakteri Ekstrak Buah Belimbing Wuluh (Averrhoa
bilimbi Linn) terhadap Pertumbuhan Bakteri Methicillin Resistant
Staphylococcus aureus (MRSA) secara In Vitro. [Skripsi]. Universitas
Sumatera Utara; 2017.
38. Endarini LH. Farmakognisi dan Fitokimia. jakarta Selatan: Kementrian
Kesehatan Republik Indonesia; 2016. 145–149 p.
39. Istiqomah. Perbandingan Metode Ekstraksi Maserasi dan Sokletasi terhadap
Kadar Piperin Buah cabe jawa (Piperis retrofracti fructus). [Skripsi].
Universitas Islam negeri Syarif Hidayatullah; 2013.
40. Safitri L. Uji Efektivitas Antibiotik Ekstrak Daun Kayu Manis
(Cinnamomum burmannii) terhadap Pertumbuhan Salmonella typhi Secara
In Vitro. [Skripsi]. Universitas Muhammadiyah Sumatera Utara; 2018.
41. Purba YP. Pengaruh Pemberian Ekstrak Etanol Tomat (Solanum
lycopersicum) dan Mentimun (Cucumis sativus L.) terhadap Pertumbuhan
Salmonella typhi [Skripsi]. Universitas Lampung; 2018.
42. Nuraina. Uji Aktivitas Antimikroba Ekstrak Daun Garcinia benthami Pierre
dengan Metode Dilusi. [Skripsi]. UIN Syarif Hidayatullah Jakarta; 2015.
43. Haryati SD, Darmnawati S, Wilson W. Perbandingan Efek Ekstrak Buah
Alpukat (Persea americana Mill) terhadap Pertumbuhan Bakteri
Pseudomonas aeruginosa Dengan Metode Disk dan Sumuran.
2017;1(1):348–9.
44. Harisa D. Uji Efektivitas Ekstrak Kayu Manis (Cinnamomuum burmanii)
45
dalam Menghambat dan Membunuh Bakteri Salmonella typhii. [Skripsi].
Universitas Malikussaleh; 2018.
45. Pratiwi ST. Mikrobiologi Farmasi. Astikawati R, Safitri A, editors. Erlangga
Medical Series; 2008.
46. Yusmaniar, Wardiyah, Nida K. Mikrobiologi dan Parasitologi. Kementrian
Kesehatan Republik Indonesia. Kementrian Kesehatan Republik Indonesia;
2017. 1–78 p.
47. Aryal S. Mueller Hinton Agar (MHA) – Composition, Principle, Uses and
Preparation [Internet]. Microbiology Info. 2018
48. Sari WP. Perbedaan Hasil Uji Kepekaan Salmonella typhi Menggunakan
Mueller Hinton Agar dan Nutrient Agar dengan Antibiotik Ampicillin,
Ciprofloxacin danTrimethoprim-Sulfamethoxazole [Skripsi]. Universitas
Muhammadiyah Semarang; 2014.
49. Tankeshwar. Salmonella-Shigella (SS) Agar - Composition, Principle,
Procedure and Results [Internet]. Mikrobeonline. 2016
50. Tankeshwar. Tryptic Soy Agar (TSA)- Composition, Preparation and Uses
[Internet]. Microbeonline. 2018 [cited 2019 Jul 14].
51. Aryal S. MacConkey Agar- Composition, Principle, Uses, Preparation and
Colony Morphology [Internet]. Microbiology Info. 2018.
52. Vinenthy LPIV, Habibah N, Dhyanaputri IGAS. Uji Daya Hambat Perasan
Bawang Putih terhadap Pertumbuhan Salmonella typhi. J Kesehat.
2019;10(3):354.
53. Kusumawati E, Supriningrum R, Rozadi R. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak
Etanol Daun Kecombrang Etlingera elatior (Jack) R. M. Sm Terhadap
Salmonella typhi. J Ilm Manuntung. 2015;1(1):1–7.
54. Artaningsih NLB, Habibah N, Nyoman M. Aktivitas Antibakteri Ekstrak
Etanol Daun Gamal (Gliricidia sepium) pada Berbagai Konsentrasi terhadap
Pertumbuhan Bakteri Streptococcus mutans Secara In-Vitro. J Kesehat.
2018;9(3):336.
55. Trisia A, Philyria R, Toemon AN. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol
Daun Kalanduyung (Guazuma ulmifolia Lam.) terhadap Pertumbuhan
Staphylococcus aureus dengan Metode Difusi Cakram (Kirby-Bauer).
Anterior J. 2018;17(2):136–43.
56. Azzahra F, Almalik EA, Sari AA. Uji Aktivitas Antibakteri dari Ekstrak
Etanol Daun Alpukat (Persea americana Mill.) terhadap Bakteri Salmonella
typhi dan Staphylococcus aureus. 2019;4(2):1–10.
57. OT O. Assessment of Antimicrobial and Phytochemical Properties of Crude
Leaf and Bark Extracts of Ceiba Pentandra on Selected Clinical Isolates
Found in Nigerian Teaching Hospital. J Bacteriol Mycol Open Access.
2017;4(1).
46
58. Rikomah SE, Karolina M. Uji Daya Hambat Antibakteri Ekstrak Etanol
Daun Randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn ) pada Bakteri Pseudomonas
aeruginosa. 2015;1–9.
59. Busman, Edrizal, Saputra danu eko. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Daun
Kapuk Randu (Ceiba pentandra (L.) Gaertn) terhadap Bakteri Streptococcus
mutans. 2015;2(1):10–5.
60. S. NN, I. SM, U. PU, S. HH, N. AR, T. AS, et al. Comparative Study on The
Antimicrobial Activity of Partitioned Fractions of The Stem-bark of Ceiba
pentandra (bombacaceae). J Heal Allied Sci NU. 2015;05(04):004–8.
61. Astridwiyanti AAB, Mahendra AN, Dewi NWS. Uji Efektivitas Ekstrak
Etanol Kulit Buah Naga Merah (Hylocereus polyrhizus) terhadap
Staphylococcus aureus ATCC 25923 Secara In Vitro. 2019;10(3):482–6.
62. Edi DO. Perbedaan Daya Antibakteri Ekstrak Etanol Kulit dan Daging Buah
Naga Merah (Hylocereus polyrhizus) terhadap Pertumbuhan Salmonella
typhi. [Skripsi]. Universitas Lampung; 2019.
63. Munfaati PN, Ratnasari E, Trimulyono G. Aktivitas Senyawa Antibakteri
Ekstrak Herba Meniran (Phyllanthus niruri) terhadap Pertumbuhan Bakteri
Shigella dysenteriae Secara in Vitro. LenteraBio. 2015;4:64–71.
64. Solichah AI, Nuria MC, Sumantri. Aktivitas Antibakteri Fraksi n-Heksan
Ekstrak Metanol Daun Sosor Bebek (Kalanchoe pinnata Pers.) serta
Identifikasi Senyawa Aktifnya. J Farm Sains Indones. 2018;1(1):8–14.
65. Taufiq S, Yuniarni U, Hazar S. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Biji
Buah Pepaya (Carica Papaya L.) terhadap Escherichia Coli dan Salmonella
Typhi. 2015;654–61.
66. Yaqin A. Potensi Antibakteri Ekstrak Etanol, Fraksi Etanol-Air dan Fraksi
N-Heksan Ekstrak Etanol Daun Anggur (Vitis vinifera L) terhadap
Staphylococcus aureus dan Pseudomonas aeruginosa Multiresisten. 2014;1–
14.
67. Sapara TU, Waworuntu O. Efektivitas Antibakteri Ekstrak Daun Pacar Air
(Impatiens balsamina L.) terhadap Pertumbuhan Porphyromonas gingivalis.
Pharmacon J Ilm Farm. 2016;5(4):10–7.
68. Abbas AH. Uji Aktivitas Antioksidan dan Antibakteri Ekstrak Etil Asetat
Kapang Endofit dari Akar Tanaman Kayu Jawa (Lannea coromandelica
(Houtt.).Merr.). [Skripsi]. Universitas Islam Negri Syarif Hidayatullah
Jakarta; 2017.
69. Febrianasari F. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Daun Kirinyu
(Chomolaena odorata) terhadap Staphylococcus aureus. Universitas Sanata
Dharma; 2018.
70. Suryani GE, Biworo A, Yulia L. Aktivitas Antibakteri Ekstrak Akar Binjai
(Mangifera caesia Jack.) terhadap Shigella dysenteriae dan Salmonella typhi
In Vitro. 2019;2(1):192–202.
50
Lampiran 4 : Pembuatan Seri Konsentrasi
Pada penelitian ini ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L) Gaertn)
diencerkan menggunakan DMSO dengan variasi konsentrasi 50%, 75%, dan 100%.
Konsentrasi awal dari masing-masing ekstrak daun randu (Ceiba pentandra (L)
Gaertn) adalah 100%. Perhitungan untuk masing-masing konsentrasi adalah:
Sedangkan untuk mencari volume pengenceran digunakan rumus:
Keterangan :
C1 : Konsetrasi ekstrak etanol yang diambil (%)
V1 : Volume larutan ekstrak etanol yang diambil (ml)
C2 : Konsentrasi larutan yang akan dibuat (%)
V2 : Volume larutan yang akan dibuat (ml)
Konsentasi 50%
C1 x V1 = C2 x V2 Vpengencer = V2 – V1
100% x V1 = 50% x 10 ml = 10 ml – 5 ml
V1 = 500 % ml / 100% = 5 ml
V1 = 5 ml
Untuk konsentrasi 50% digunakan ekstrak etanol 100% sebanyak 5 ml dan DMSO
sebanyak 5 ml
C1 x V1 = C2 x V2
Vpengencer = V2 − V1
51
Konsentrasi 75%
C1 x V1 = C2 x V2 Vpengencer = V2 – V1
100% x V1 = 75% x 10 ml = 10 ml – 7,5 ml
V1 = 750 % ml / 100% = 2,5 ml
V1 = 7,5 ml
Untuk konsentrasi 75% digunakan ekstrak etanol 100% sebanyak 7,5 ml dan
DMSO sebanyak 2,5 ml
Konsentrasi 100%
C1 x V1 = C2 x V2 Vpengencer = V2 – V1
100% x V1 = 100% x 10 ml = 10 ml – 10 ml
V1 = 1000 % ml / 100% = 0 ml
V1 = 10 ml
Untuk konsentrasi 100% digunakan ekstrak etanol 100% sebanyak 10 ml dan
DMSO sebanyak 0 ml
52
Lampiran 5 : Uji Normalitas dengan Shapiro-Wilk
Tests of Normalitya,d
Perlakuan
Kolmogorov-Smirnovb Shapiro-Wilk
Statistic df Sig. Statistic df Sig.
Zona hambat Ekstrak 75% .367 5 .026 .684 5 .006
Ekstrak 100% .231 5 .200* .881 5 .314
Kloramfenikol .473 5 .001 .552 5 .000
*. This is a lower bound of the true significance.
a. Zona hambat is constant when Perlakuan = Ekstrak 50%. It has been omitted.
b. Lilliefors Significance Correction
d. Zona hambat is constant when Perlakuan = DMSO. It has been omitted.
53
Lampiran 6 : Uji beda dengan Kruskal Wallis
Kruskal-Wallis Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank
Zona hambat Ekstrak 50% 5 5.50
Ekstrak 75% 5 14.10
Ekstrak 100% 5 16.90
Kloramfenikol 5 23.00
DMSO 5 5.50
Total 25
Test Statisticsa,b
Zona hambat
Chi-Square 22.854
df 4
Asymp. Sig. .000
a. Kruskal Wallis Test
b. Grouping Variable: Perlakuan
54
Lampiran 7 : Uji Post hoc Mann-Whitney
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 50% 5 3.00 15.00
Ekstrak 75% 5 8.00 40.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.835
Asymp. Sig. (2-tailed) .005
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 50% 5 3.00 15.00
Ekstrak 100% 5 8.00 40.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.805
Asymp. Sig. (2-tailed) .005
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
55
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 50% 5 3.00 15.00
Kloramfenikol 5 8.00 40.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.887
Asymp. Sig. (2-tailed) .004
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 50% 5 5.50 27.50
DMSO 5 5.50 27.50
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U 12.500
Wilcoxon W 27.500
Z .000
Asymp. Sig. (2-tailed) 1.000
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] 1.000b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
56
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 75% 5 4.10 20.50
Ekstrak 100% 5 6.90 34.50
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U 5.500
Wilcoxon W 20.500
Z -1.565
Asymp. Sig. (2-tailed) .118
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .151b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 75% 5 3.00 15.00
Kloramfenikol 5 8.00 40.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.739
Asymp. Sig. (2-tailed) .006
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
57
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 75% 5 8.00 40.00
DMSO 5 3.00 15.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.835
Asymp. Sig. (2-tailed) .005
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 100% 5 3.00 15.00
Kloramfenikol 5 8.00 40.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.712
Asymp. Sig. (2-tailed) .007
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
58
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Ekstrak 100% 5 8.00 40.00
DMSO 5 3.00 15.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.805
Asymp. Sig. (2-tailed) .005
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
Mann-Whitney Test
Ranks
Perlakuan N Mean Rank Sum of Ranks
Zona hambat Kloramfenikol 5 8.00 40.00
DMSO 5 3.00 15.00
Total 10
Test Statisticsa
Zona hambat
Mann-Whitney U .000
Wilcoxon W 15.000
Z -2.887
Asymp. Sig. (2-tailed) .004
Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b
a. Grouping Variable: Perlakuan
b. Not corrected for ties.
59
Lampiran 8 : Jadwal Kegiatan
Kegiatan Mei
2019
Juni
2019
Juli
2019
Agust
2019
Sept
2019
Okt
2019
Des
2019
Jan
2020
Feb
2020
Judul
Bab 1-3
Seminar
Proposal
Revisi
Penelitian
Bab 4-5
60
Lampiran 9 : Rincian Biaya Penelitian
BIAYA PENELITIAN
1. Uji herbarium
a. Pengiriman sampel : Rp. 10.000
b. Uji herbarium : Rp. 20.000
2. Ekstraksi
a. Pengiriman sampel daun : Rp. 20.000
b. Etanol 96% 10 L : Rp. 220.000
c. Pengeringan : Rp. 45.000
d. Maserasi : Rp. 150.000
e. Rotary evaporator : Rp. 250.000
f. Jar hasil ekstraksi : Rp. 8.000
3. Skrining fitokimia : Rp. 50.000
4. Biaya uji antibakteri
a. Bakteri : Rp. 300.000
b. Uji antibakteri : Rp. 1.000.000
Total : Rp. 2.073.000
62
Lampiran 10 : Dokumentasi
Gambar 1: Tanaman randu Gambar 2: Daun randu segar
Gambar 3: Pengentalan Gambar 4: Penyaringan
menggunakan evaporator dengan kertas whatman
64
Gambar 8: Pembuatan seri Gambar 9: Pengadukan
Konsentrasi ekstrak menggunakan vortex
Gambar 10: Variasi Konsentrasi Gambar 11: Isolat bakteri
Ekstrak daun randu Salmonella typhi
Gambar 12 : MHA yang dipadatkan Gambar 13: Penyesuaian bakteri
dengan standar Mc Farland
65
Gambar 14: Menggoreskan bakteri Gambar 15: Memasukkan ekstrak ke
dengan cotton buth steril di MHA dalam media yang sudah dilubangi
Gambar 17: Zona hambat ekstrak daun randu terhadap pertumbuhan bakteri
Salmonella typhi.
Gambar 17: Zona hambat kontrol positif kloramfenikol terhadap pertumbuhan
bakteri Salmonella typhi.
66
Lampiran 11 : Daftar Riwayat Hidup
DAFTAR RIWAYAT HIDUP
Nama : Nana Amalia
NIM : 160610024
Tempat/ Tgl lahir : Bayu, 20 November 1996
Jenis Kelamin : Perempuan
Agama : Islam
Email : [email protected]
No. HP : 0822 7312 3993
Anak ke : 3 dari 6 bersaudara
Nama Orang Tua
a. Ayah : H. Kasem, S.Pd.,M.Pd
b. Ibu : Hj. Nurhayati, S.Pd
Alamat : Jalan SMAN 1 Syamtalira Bayu, Dusun Cot plieng, Mns.
Beunot, Kec. Syamtalira Bayu, Kab. Aceh Utara, Aceh.
Riwayat Pendidikan
1. SD : SD Negeri 6 Syamtalira Bayu, 2003 s/d 2009
2. SMP : SMP Negeri 1 Lhokseumawe, 2009 s/d 2012
3. SMA : SMA Negeri 1 Lhokseumawe, 2012 s/d 2015
4. S1 : FK Universitas Malikussaleh, 2016 s/d sekarang