-
1CHM 3102
Spectrométrie de masse
Qui etaient les lauréats du prix Nobel de 2002 en chimie?
"for his development of nuclear magnetic resonance spectroscopy
for determining
the three-dimensional structure of biological macromolecules in
solution“
Kurt Wüthrich
1/2 of the prize
Switzerland
"for the development of methods for identification and structure
analyses
of biological macromolecules“
John B. Fenn
1/4 of the prize
USA
"for their development of soft desorptionionisation methods for
mass
spectrometric analyses of biological macromolecules“
Koichi Tanaka
1/4 of the prize
Japan
Importance de la spectrométrie de masse dans l’analyse de
biomolécules
-
Spectrométrie de masse
2CHM 3102
A quoi sert la spectrométrie de masse dans la vie de tous les
jours?
Détection et identification de stéroides anabolisants chezles
athlètesHaleine des patients anesthésies lors de
chirurgieComposition d’espèces moléculaires dans l’espaceMiel
dénaturé avec du sirop de maïsLocalisation d’huile à partir de
précurseurs présents dansles rochesProcédés de fermentation dans
l’industrie biotechnologiqueDioxines dans les poissons
contaminésModification génétique dû à un stress
environnementalComposition élémentaire de matériaux
semi-conducteursExplosifs dans les aéroportsÉtudes
pharmacocinétiques sur les nouveaux composéspharmaceutiques
-
Spectrométrie de masse
3CHM 3102
Composantes d’un spectromètre de masse
Introduction de l’échantillon
Chromato. (GC, HPLC)Injection directe
Electrophorèse capillaire
Ionisation
Neb. Electro. (ESI)Des. Laser (MALDI)Bomb. Atomes rap.
Ion. Chim.Impact elect.
Analyseur
QuadrupoleTrappe ion.
Temps d’envolRes. Ion. Cyclo. Secteurs (B, E)
Détection
Mult. ElectronDynode de conv.
Réseau mult. elect.(MCP)
e-
Sous vide
-
Spectrométrie de masse
4CHM 3102
Technologie du vide
Gamme de pression (Pa)
Gamme de pression (mbar)
Gamme de pression (mtorr)
Vide Débit de gaz
105 -102 1 bar - 1 mbarr 750 torr - 750 mtorr Vide primaire
Débitvisqueux
102 -10-1 100 -10-3 750-0.75 Vide intermédiaire
Débit de Knudsen
10-1 -10-5 10-3 -10-7 0.75 – 7.5 .10-5 Vide élevé
Débitmoléculaire
< 10-5 < 10-7 < 7.5 .10-5 Ultravide
Débitmoléculaire
Vide en deux étapes:
• Pompes rotatives: 4-16 m3/h, assure le vide primaire
nécessaire à l’opération de pompes moléculaires (backing
pumps).
• Ultravide obtenue à partir de pompes turbomoléculaires
(200-500 L/s), pompes àdiffusion (600-2000L/s), pompes
cryogéniques.
-
Spectrométrie de masse
5CHM 3102
Notions de base – mesure de masseSpectre de masse nebulisation
electrostatiqueen mode + et – d’un pesticide
L’espece ionisée correspond à la moléculeavec un proton
supplémentaire ou un proton en moins.Dans la littérature, la masse
moléculairepeut être exprimée de différente façon:
Masse moyenne: 219.67Masse nominale: 219Masse précise:
219.0563
Formule empirique: C11H10N3Cl1
220.06
222.06
218.04
220.05
Pourquoi on observe plus d’une espèce ionique (ie m/z 221.06 et
222.06)?
-
Spectrométrie de masse
6CHM 3102
Notions de base – mesure de masse
Une molécule est representée par sa distribution
atomique(formule empirique).Chaque atome a une distribution
d’isotope naturel. Par exemple le carbone et le chlore:
36.9659u :Cl34.9689u, :Cl
13.0034u :C12.0000u, :C3717
3517
136
126
% 1.08 :C%, 100 :C 136126
22.9984u :Na18.9984u, :F 2311199
Chaque isotope a une abondance naturelle qui lui estpropre. Par
exemple le carbone
Les atomes monoisotopiques tels ceux du fluor ou dusodium sont
identifiéscomme A et les atomes multi-isotopiques (carbone, chlore,
hydrogène, etc…) A+1, A+2, etc…
-
Spectrométrie de masse
7CHM 3102
Notions de base – mesure de masse
Par définition l’atome A du carbone a une masse de
12.00000uL’unité de masse u, est définit comme étant 1/12 de la
masse du nuclide 12C et correspond à:
1u: 1.66055 x 10-27 kg
Certains atomes ont une masse légèrement supérieure(excédent) à
la masse nominale alors que d’autres sontlégèrement inférieures
(déficit). Par exemple:
Comment se traduit cette subtilité pour les masses moléculaires
élevées?
15.9949u :O1.0078u, :H 16811
-
Spectrométrie de masse
8CHM 3102
Notions de base – mesure de masse
y = 0.0002x + 7E-15
y = 0.0007x + 2E-14
0
0.5
1
1.5
2
2.5
0 500 1000 1500 2000 2500 3000
Masse (Da)
Exce
dent
(Da)
Poly-Asp
Poly-Leu
Gamme de masse excedentairepour peptides
Poly-aspatate et poly-leucine représentent les polypeptides
ayant respectivement le contenude proton le plus faible et le plus
elevé parmi les acides aminés. La poly-cystéine (plus
faiblecontenue de proton/masse) n’a pas été considerée car le
frequence de l’acide aminé Cys par protéine n’est pas elevée.
-
Spectrométrie de masse
9CHM 3102
Notions de base – abondance
Chaque isotope naturel a une abondance relative
caractéristique.Quel serait la variation du rapport isotopique avec
l’augmentation du nombre d’atome de carbone?
C60 C90 C120
12C monoisotopique 12C monoisotopique
12C monoisotopique
Comment varie la progression du rapport isotopique avec la masse
moléculaire?
-
Spectrométrie de masse
10CHM 3102
Notions de base – abondance
Si un élément A possède deux isotopes naturels dont l’un(A’) est
plus abondant que l’autre (A’’). Le rapport de leurabondance est
donné par:
Par exemple si on a un total de 1000 molécules de CH4, il y aura
11 molécules contenant 13C plutôt que 12C; alors que le reste (989)
aura la composition 12CH4. Leur rapport relatifd’intensité sera
989/11. De façon plus générale, la probabilité de n’avoir que des
isotopes 12C pour unemolécule possédant Z atomes de carbones
est:
)'A'-/(100'A' où: A’ est l’abondance naturelle(%) du constituant
mineur
Z
⎥⎦⎤
⎢⎣⎡=
100'A'-100
P
-
Spectrométrie de masse
11CHM 3102
Notions de base – abondance
De la même façon, pour les éléments C H N O S, la probabilité PM
que tous les atomes ne contiennent aucunisotope lourd est donné
par:
où: 13C, 2H, 17O, 18O, 15N, 33S et 34S sont les abondances
relatives des différents isotopes lourds des éléments
considerés.
a, b, c, d, e représentent le nombre d’atome pour le carbone,
l’hydrogène, l’oxygène, l’azote et le soufre
edcba
⎥⎦
⎤⎢⎣
⎡•⎥
⎦
⎤⎢⎣
⎡•⎥
⎦
⎤⎢⎣
⎡•⎥
⎦
⎤⎢⎣
⎡•⎥
⎦
⎤⎢⎣
⎡=
100SS-100-
100N100-
100OO-100-
100H100-
100C100-
P3433151817213
M
-
Spectrométrie de masse
12CHM 3102
Notions de base – abondance
De la même façon, la probabilité d’avoir un atome 13C pour une
molécule contenant Z atomes est donné par:
Z
⎥⎦
⎤⎢⎣
⎡•⎥
⎦
⎤⎢⎣
⎡•=+
100C100-
C100-C
z P13
13
13
1M
Donc le rapport d’intensité M+1/M correspondantuniquement à une
molécule ne contenant que des atomes de carbone est:
⎥⎦
⎤⎢⎣
⎡•=+
C100-C
z PP
13
13
M
1M
-
Spectrométrie de masse
13CHM 3102
Notions de base – abondance
En tenant compte de chacunes des combinaisons d’isotopesM+1 de
chacune des atomes C, H, N, O et S, on obtient le rapport
d’intensité relative suivant:
( )EeDdCcBbAaM
M•+•+•+•+••=
+100
1
où: a: # atome de carbone
A: 13C/(100-13C): 0.011
b: # atome d’hydrogène
B: 2H/(100-2H): 1.15 x 10-4
c: # atome d’oxygène
C: 17O/(100-17O): 3.80 x 10-4
d: # atome d’azote
D: 15N/(100-15N): 3.70 x 10-3
e: # atome de soufre
E: 33S/(100-33S): 7.89 x 10-3
-
Spectrométrie de masse
14CHM 3102
Notions de base – abondance
Aussi la probabilité d’avoir exactement A atomes 13C (PM+A) sur
un total de z atomes est décrit par la relation:
Z-A13
13
13
AM 100100
100C
)!!(!
P ⎥⎦
⎤⎢⎣
⎡ −•⎥
⎦
⎤⎢⎣
⎡−
•−
=+
CCZAZ
AZ
A13
13
13
100100
C100-C
)!!(!
⎥⎦
⎤⎢⎣
⎡ −•⎥
⎦
⎤⎢⎣
⎡•
−=
CZAA
AZ
A13
100100
)!!(!
⎥⎦
⎤⎢⎣
⎡ −•
−=+
CZAA
AP
P
M
AM
-
Spectrométrie de masse
15CHM 3102
Notions de base – abondanceSymbole #atomique Masse nom. Comp.
isoto. Masse isoto. Mass moy.
H 1 12
1000.0115
1.0078252.014101
1.00795
Na 11 23 100 22.989769 22.989769
P 15 31 100 30.973762 30.973762
C 6 1213
1001.08
12.00000013.003355
12.0108
N 7 1415
1000.369
14.00307015.000109
14.00675
O 8 161718
1000.0380.205
15.99491516.99913217.999116
15.9994
S 16 32333436
1000.84.520.02
31.97207132.97145933.96786735.967081
32.067
Cl 17 3537
10031.96
34.96885336.965903
35.4528
Br 35 7981
10097.28
78.91833880.916291
79.904
-
Spectrométrie de masse
16CHM 3102
Notions de base – abondance
Quelle variation de rapport isotopique peux t’on prévoir pour un
peptide moyen?
y = 0 . 0 5 5 6 x - 9 E -1 4
y = 0 . 0 0 0 2 x 1 . 6 9 0 7
y = 2 E -0 7 x 2 . 4 5 1
0
2 0
4 0
6 08 0
1 0 0
1 2 0
1 4 0
0 5 0 0 1 0 0 0 1 5 0 0 2 0 0 0 2 5 0 0
M a ss (D a )
% o
f mon
oiso
topi
c 12
C M + 1 / MM + 2 / MM + 3 / M
Formule empirique pour l’acide aminé “averagine”:
(C4.95H7.8N1.47O1.35S0.039)
-
Spectrométrie de masse
17CHM 3102
Notions de base – abondanceDes-Arg Bradykinine
Angiotensine I
904.46
1296.69
1758.93
2465.20
ACTH clip (18-39)
Renin substrate
• Variation du rapport isotopique avec la masse• Variation de
l’excédent de masse moyen de 0.0005Da/Da
-
Spectrométrie de masse
18CHM 3102
Notions de base – résolution
50 %
5 %
∆M
MM
R∆
=
10 %
R: 500 1u 1u1u
50 51 500 501 1000 1001 m/z
-
Spectrométrie de masse
19CHM 3102
Notions de base – résolution
Comment la distribution isotopique varie avec la résolution
duspectromètre de masse?
-
Spectrométrie de masse
20CHM 3102
Notions de base – résolutionRésolution et son impact sur
l’identification d’espèce ionique
C20H9+
C19H7N+
C19H7N+ C20H9+ C13H19N3O2+C13H19N3O2+
Instrument de grande résolutionR> 10,000
Instrument de faible résolutionR: 1000
249 249.0580 249.0700 249.1479
Analyseurs de masse de plus grande résolution (> 10,000) sont
les appareils à secteurs, temps d’envol, résonance cyclotronique
ionique
-
Spectrométrie de masse
21CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
Impulsion laser de 4 ns (λ 337 nm , N2)
± 30 kV
To MS
Échantillon + matrice m/z1500010000
[M+H]+
Caractéristiques:
Analytes: Biomolecules jusqu’à - 500 kDaSensibilité: 10-100 pg
(-10-100 fmoles)Précision: Avec TOF ± 0.02% (ext.), ± 0.005%
(int.)Résolution: Avec TOF 15,000 (
-
Spectrométrie de masse
22CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
Laser
UV/visible regions λ
Excimer gaz rares: ArF 193 nmKrF 248 nmXeCl 307 nmXeF 351 nm
Azote 337 nm
Infrarouge
Er:YAG fondamentale 2.94 µmCO2 9.6 nm, 10.6 µm
Plus communs
Laser Science Inc. VSL-337ND nitrogen laser. Specifications :
250µJ/impulsion, 3 ns temps d’impulsion. Duree de vie ~ 2-4
ans.
-
Spectrométrie de masse
23CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
OH
COOH
OH
HO
CH=CCN
COOH
N=N OH
COOH
N
OH
COOH
N
NN
CH 3
S
H
H
OH O OH
N
CH=CH COOH
H CH 3 O
HO
O CH 3
CH=C H
COOH
OH
HO
HO
C CH 3
O
Matrices pour laser à l’azote
• 2,5-dihydroxy benzoic acid (DHB) 1, 2, 3, 4, 5
• α-cyano-4-hydroxycinnaminic acid (CHCA) 1, 2
• 3-hydroxypiconilic acid (HPA) 4
• HABA 2
• 6-aza-2-thiothymine (non acide) 1, 4
• Dithranol (non acide) 5
• Trans-indoleacrylic acid 5
• Sinnapinic acid 2
• 2’,4’,6’-trihydroxyacetophenone 2, 3
(non acide)
(1: peptides, 2: protéines, 3: oligosaccharides, 4: acides
nucléiques, 5: polymères)
-
Spectrométrie de masse
24CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
A. Evaporation
• Désaler l’échantillon (Zip tip). Utiliser au besoin des billes
échangeuse d’ions pour réduire la formation d’adduits alcalins.
• Préparer solution ~ 10 µM de l’échantillon dans une solution
aqueuse d’acétonitrile.• Préparer une solution de 0.1 M solution de
matrice (DHB ou CHCA) in 1:1 Acétonitrile:eau.• Mélanger la
solution de matrice et l’echantillon 1:1 (v:v).• Appliquer 0.5 µL
de l’echantillon/matrice sur la plaque et sécher.
S.L. Cohen, B.T. Chait, Anal. Chem. 68, 31-37 (1996)
B. Couche mince
• Dissoudre la matrice dans l’acétone avec 1-2% eau et appliquer
sur la plaque. • Rinser la plaque légerement avec l’eau pour
enlever les sels. • Appliquer l’échantillon.
O. Volm, P. Roepstorff, M. Mann, Anal. Chem. 66, 3281-3287
(1994)
C. Sandwich
• Préparer une couche mince comme decrit en B.• Appliquer
analyte/matrice sur la couche mince celle-ci formant de cristaux de
germination.
F. Xiang, R.C. Beavis, Rapid Commun. Mass Spectrom. 8, 199-204
(1994)
Préparation de l’échantillon
-
Spectrométrie de masse
25CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
Impulsion laser
± 30 kV
Analyte + matrice
Un faisceau moléculairesupersonique occasionne la sublimation de
l’analyte/matrice
Modèle de desorption avec matrice
La matrice absorbe la radiation dans la gamme d’émission du
laser.L’énergie absorbée occasionne la dissociation de la matrice.
La zone irradiée s’etend sur une zone de 300 µm x 600 µm, 25 Å
profondeur, et déplèteenviron 4.5 x 10-10 cm3 de solide.La
dissociation rapide de la matrice libère des molécules neutres et
des analytes en phase gazeuse et produit une région de plus haute
pression dans le voisinage de la surface irradiée. Cette haute
pression se traduit par une expansion supersonique amenant avec
elle les analytes desorbés.
-
Spectrométrie de masse
26CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
Modèle d’ionisation avec matrice
La matrice joue un rôle important dans l’ionisation en plus du
processus de désorption.
La photoionisation de la matrice est suivie par une multitude de
réactionsimpliquant à la fois des transferts radicalaires et de
protons.
Les molécules de matrice ne doivent pas former de radicaux ou
espèces protonéesstables afin de favoriser l’ionisation de
l’analyte.
H. Ehring, M. Karas, F. Hillenkamp, Org. Mass Spectrom., 27,
472-480 (1992).
CH3 O
HO
O CH3
CH=C H
COOH
Moins acide lorsde l’excitation
Plus acide lorsde l’excitation
Réaction photochimique:
H-DHB* + P (H+P)+ + DHB
H-DHB* H+ + DHB- P + H+ (P-H)+
-
Spectrométrie de masse
27CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
Distribution de velocité de l’acide sinnapinique
Distribution de velocité de l’acidesinnapinique calculée selon
le déplacement du temps d’envol
Distribution d’intensité de l’acidesinnapinique selon le délai
après
l’impulsion laser
Inte
nsi
te(u
nite
arb.)
200
400
600
800
Velocite (m/sec) Delai (µsec)
10 20In
tensi
te(u
nite
arb.)
L’impulsion laser occasionne une large distribution d’énergie
cinétique des analytesCette distribution est plus étroite suite a
un délai après l’impulsion bien quel’intensité diminue.
-
Spectrométrie de masse
28CHM 3102
Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice
Influence du délai sur la résolution
Extraction region
Acceleration region
UeSourceplate
UaIntermediate
grid
UfFinalgrid
Ue
Ua
Uf
18 kV, constant
20 kV, pulse
ground, constant
16 kV
Delay Time
Pulsing scheme PerSeptive
0
0
da d0
Adapte de R. Cotter, Anal. Chem. 445A, 1999
-
Spectrométrie de masse
29CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
ESI voltage (5 kV)
Air
Echantillon/phase mobile
Nébulisation desgouttelettes
Evaporation du solvant
⇑ Champ électrique
Ejection des ions
↓
↓ ↓
↓ ↓
↓
↓ ↓
↓ ↓
Caractéristiques:
Analytes: Biomolécules jusqu’à - 500 kDaSensibilité: 1-10 pg
(-1-10 fmoles pour 1000 Da)Précision: ± 0.02% (ext.), ± 0.005%
(int.)Résolution: Avec TOF 15,000, >100,000 avec FTMSHybride:
Couplage en ligne avec EC, CLHP, infusion
-
Spectrométrie de masse
30CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
m/z
Apparition d’ions multiplement chargés ie [M-nH]n- ou
[M+nH]n+Espacement entre deux série d’ion multiplement chargés
correspond a l’ajout ou l’abstraction d’un proton de la
molécule.Comment peux t’on determiner la masse moléculaire?
+ H
10+
9+
8+
7+
6+
1000 1500
Caractéristiques du spectre de masse ESI
Protéine de 10,000 Da
1001.0
1112.1
1251.0
1429.6
1667.7
1221 //1
]1[/
][/ zmzmet
znHM
zmetznHM
zm <+
++=
+=
-
Spectrométrie de masse
31CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Ions multiplement chargés et charge
M: 1000.5 Da
1 m/z
0.5 m/z
0.33 m/z
Simplement chargé1001.5
501.3 Doublement chargé
Triplement chargé334.5
m/z
-
Spectrométrie de masse
32CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Aspect mécanistique
Production de gouttelettes chargées à partir de l’analytedissout
en solution
Evaporation du solvant, diminution de la taille des
gouttelettes, desintégration de celles-ci donnant lieu à des
micro-gouttelettes plus chargées.
Production d’ions en phase gazeuse.
Phénomènes secondaires tels oxidation de l’analyte.
-
Spectrométrie de masse
33CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Gouttelettes chargées. La solution à l’extrémité du
nébuliseurélectrostatique est soumis à une tension électrique
elevée. Lorsque le capillaire de diametre rc est situé à une
distance d de la contre-électrode (MS), le champ électrique est
donné par:
Ec = 2 Vc/rc ln(4d/rc)
Anal. Chem. 65, 972A (1993)
+-
- ++
++++
+++
+
++++
+++
+
+
++
+
++
++
+
+
++
++
++
+
+
++
++
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
Reduction
Oxydation
High-voltagepower supply
e-
e-
Taylor cone
-
Spectrométrie de masse
34CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
L’évaporation du solvant et la collision avec les
moléculesenvironnantes a pression atmospherique occasionne
uneréduction de la taille des gouttelettes. Une explosion
Coulombique (fission) survient lorsque la micro-goutteletteatteint
la limite de Rayleigh ou l’ampleur du champ électrostatique est
plus grand que la tension de surface maintenant l’integrité de la
gouttelette.
Q2 = 64 π2 ε0 γ R3
ou Q correspond a la charge, ε0 la constante de permittivité,
γla tension de surface, R le rayon de la gouttelette. Pour
unesolution aqueuse ou R=1.5 µm nous obtiendrons une charge Q de
10-14 C (ou 50,000 ions simplement chargés).
-
Spectrométrie de masse
35CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Ionisation de l’analyte. La diminution de la gouttelette suite
aux fissions successives peut donner lieu a un résidu
ioniquedésolvaté de ~ 1nm (single ion in droplet theory, SIDT,
proposépar Dole et al., J. Phys. Chem.49, 2240 (1968)). Un
autremécanisme assume une évaporation ionique successive (émission)
a partir de micro-gouttelettes de plus en plus chargées (Iribarne
and Thomson, J. Phys. Chem., 64, 2287 (1976)). Ces gouttelettes
compétitionnent avec les phénomènesde fission lorsque celles-ci
atteignent un diametre de 8 nm comprenant ~ N=70 charges
élsmentaires. Dans ces conditions, les micro-gouttelettes ne
donnent pas lieu à une fission maisémettent des ions directement.
Lorsque N décroit, l’émission peutêtre maintenue suite à la
diminution du diamètre de la gouttelette. Ce modèle peut survenir
même en présenced’analytes formant des paires d’ions.
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Spectrométrie de masse
36CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Taille de l’émetteur, débit et efficacité d’émission. Les
progrèsrécents dans la fabrication d’émetteurs de petits diamètres
et la disponibilité de pompes CLHP à faible débit ont permis
d’obtenirdes gains importants de sensibilité (Dale, D.C., Smith,
R.D., Rapid Commun. Mass Spectrom., 7, 1017, (1993), Emmett, M.R.,
Caprioli, R.M., J. Am. Soc. Mass Spectrom., 5, 605, (1994), Andren,
P.E., Emmett, M.R., Caprioli, R.M., J. Am. Soc. Mass Spectrom., 5,
867, (1994) and Wilm, M.S., Mann, M., Int. J. Mass Spectrom. Ion
Proc., 136, 167, (1994)]. Dans ces conditions un cône de Taylor est
obtenu pour des debits de 25-100 nL/min avec une émetteur de
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Spectrométrie de masse
37CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
1/ 3
r e =
ρ
4π 2 γ tanπ
2− α
⎛ ⎝
⎞ ⎠
U aU t
⎛
⎝ ⎜
⎞
⎠ ⎟
2
− 1⎡
⎣
⎢
⎢
⎤
⎦
⎥
⎥
⎛
⎝
⎜
⎜ ⎜
⎞
⎠
⎟ ⎟ ⎟
xdVdt
⎛ ⎝
⎞ ⎠
2 / 3
où γ est la tension de surface du liquide, α l’angle de cone
liquide, ρ sadensité, Ut et Ua le seuil du voltage d’émission et le
voltage appliqué, et dV/dt le débit. Pour un capillaire de
dimension donné, le diamètre estproportionnel au débit (DV/dt)2/3 .
Pour une solution aqueuse dont le débit est de 25 nL/min, re est 88
nm. L’efficacité d’ionisation/ transmission à ce débit est
d’environ 8 x 10-4. Cette réduction de la taillede l’émitteur
permet des gains significatifs de sensibilité et ce pour des
diamètre de < 5 µm et des gouttelettes de < 200 nm, ce qui
permetégalement la réduction du voltage appliqué.
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Spectrométrie de masse
38CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Comparaison de la sensibilité et du débit en LC-MS
Diamètre (mm) Débit (µL/min) Qté inj. (pmol) Facteur de conc.
Rel.
4.6 500-1000 102-105 1
2.1 100-400 50-104 5
1.0 40-100 5-103 20
0.32 1-10 0.5-500 200
0.075 0.05-0.5 0.001-1 3700
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Spectrométrie de masse
39CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Comparaison de la sensibilité et du débit en LC-MS
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Spectrométrie de masse
40CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
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Spectrométrie de masse
41CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
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Spectrométrie de masse
42CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Résolution accrue pour l’analyse de protéines en mode ESI.MALDI
permet par contre une mesure de masse avec une plus grande
sensibilitépour l’analyse de glycoprotéines, ce qui n’est pas
possible avec ESI car la protonation de l’analyte ne permet pas
d’obtenir des m/z dans la gammeaccessible du MS.
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Spectrométrie de masse
43CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Analyse de peptides et protéines par ESI
Smith et al. Anal. Chem., 62, 882 (1990)
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Spectrométrie de masse
44CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Analyse LC-MS de digestat trypsique de lectin (PNA)
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Spectrométrie de masse
45CHM 3102
Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)
Spectre de masse d’oligonucléotide dT10 en présenced’imidazole
et piperidine (échange H/Na)
GreigM., Griffey. R.H., Rapid Commun. Mass Spectrom., 9, 97
(1995)
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