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1 CHM 3102 Spectrométrie de masse Qui etaient les lauréats du prix Nobel de 2002 en chimie? "for his development of nuclear magnetic resonance spectroscopy for determining the three-dimensional structure of biological macromolecules in solution“ Kurt Wüthrich 1/2 of the prize Switzerland "for the development of methods for identification and structure analyses of biological macromolecules“ John B. Fenn 1/4 of the prize USA "for their development of soft desorption ionisation methods for mass spectrometric analyses of biological macromolecules“ Koichi Tanaka 1/4 of the prize Japan Importance de la spectrométrie de masse dans l’analyse de biomolécules
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Spectrométrie de masse - ESIbadiaa/CHM3102_MS1.pdf · 2004. 11. 28. · Notions de base – mesure de masse Une molécule est representée par sa distribution atomique (formule empirique).

Feb 03, 2021

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  • 1CHM 3102

    Spectrométrie de masse

    Qui etaient les lauréats du prix Nobel de 2002 en chimie?

    "for his development of nuclear magnetic resonance spectroscopy for determining

    the three-dimensional structure of biological macromolecules in solution“

    Kurt Wüthrich

    1/2 of the prize

    Switzerland

    "for the development of methods for identification and structure analyses

    of biological macromolecules“

    John B. Fenn

    1/4 of the prize

    USA

    "for their development of soft desorptionionisation methods for mass

    spectrometric analyses of biological macromolecules“

    Koichi Tanaka

    1/4 of the prize

    Japan

    Importance de la spectrométrie de masse dans l’analyse de biomolécules

  • Spectrométrie de masse

    2CHM 3102

    A quoi sert la spectrométrie de masse dans la vie de tous les jours?

    Détection et identification de stéroides anabolisants chezles athlètesHaleine des patients anesthésies lors de chirurgieComposition d’espèces moléculaires dans l’espaceMiel dénaturé avec du sirop de maïsLocalisation d’huile à partir de précurseurs présents dansles rochesProcédés de fermentation dans l’industrie biotechnologiqueDioxines dans les poissons contaminésModification génétique dû à un stress environnementalComposition élémentaire de matériaux semi-conducteursExplosifs dans les aéroportsÉtudes pharmacocinétiques sur les nouveaux composéspharmaceutiques

  • Spectrométrie de masse

    3CHM 3102

    Composantes d’un spectromètre de masse

    Introduction de l’échantillon

    Chromato. (GC, HPLC)Injection directe

    Electrophorèse capillaire

    Ionisation

    Neb. Electro. (ESI)Des. Laser (MALDI)Bomb. Atomes rap.

    Ion. Chim.Impact elect.

    Analyseur

    QuadrupoleTrappe ion.

    Temps d’envolRes. Ion. Cyclo. Secteurs (B, E)

    Détection

    Mult. ElectronDynode de conv.

    Réseau mult. elect.(MCP)

    e-

    Sous vide

  • Spectrométrie de masse

    4CHM 3102

    Technologie du vide

    Gamme de pression (Pa)

    Gamme de pression (mbar)

    Gamme de pression (mtorr)

    Vide Débit de gaz

    105 -102 1 bar - 1 mbarr 750 torr - 750 mtorr Vide primaire Débitvisqueux

    102 -10-1 100 -10-3 750-0.75 Vide intermédiaire

    Débit de Knudsen

    10-1 -10-5 10-3 -10-7 0.75 – 7.5 .10-5 Vide élevé Débitmoléculaire

    < 10-5 < 10-7 < 7.5 .10-5 Ultravide Débitmoléculaire

    Vide en deux étapes:

    • Pompes rotatives: 4-16 m3/h, assure le vide primaire nécessaire à l’opération de pompes moléculaires (backing pumps).

    • Ultravide obtenue à partir de pompes turbomoléculaires (200-500 L/s), pompes àdiffusion (600-2000L/s), pompes cryogéniques.

  • Spectrométrie de masse

    5CHM 3102

    Notions de base – mesure de masseSpectre de masse nebulisation electrostatiqueen mode + et – d’un pesticide

    L’espece ionisée correspond à la moléculeavec un proton supplémentaire ou un proton en moins.Dans la littérature, la masse moléculairepeut être exprimée de différente façon:

    Masse moyenne: 219.67Masse nominale: 219Masse précise: 219.0563

    Formule empirique: C11H10N3Cl1

    220.06

    222.06

    218.04

    220.05

    Pourquoi on observe plus d’une espèce ionique (ie m/z 221.06 et 222.06)?

  • Spectrométrie de masse

    6CHM 3102

    Notions de base – mesure de masse

    Une molécule est representée par sa distribution atomique(formule empirique).Chaque atome a une distribution d’isotope naturel. Par exemple le carbone et le chlore:

    36.9659u :Cl34.9689u, :Cl

    13.0034u :C12.0000u, :C3717

    3517

    136

    126

    % 1.08 :C%, 100 :C 136126

    22.9984u :Na18.9984u, :F 2311199

    Chaque isotope a une abondance naturelle qui lui estpropre. Par exemple le carbone

    Les atomes monoisotopiques tels ceux du fluor ou dusodium sont identifiéscomme A et les atomes multi-isotopiques (carbone, chlore, hydrogène, etc…) A+1, A+2, etc…

  • Spectrométrie de masse

    7CHM 3102

    Notions de base – mesure de masse

    Par définition l’atome A du carbone a une masse de 12.00000uL’unité de masse u, est définit comme étant 1/12 de la masse du nuclide 12C et correspond à:

    1u: 1.66055 x 10-27 kg

    Certains atomes ont une masse légèrement supérieure(excédent) à la masse nominale alors que d’autres sontlégèrement inférieures (déficit). Par exemple:

    Comment se traduit cette subtilité pour les masses moléculaires élevées?

    15.9949u :O1.0078u, :H 16811

  • Spectrométrie de masse

    8CHM 3102

    Notions de base – mesure de masse

    y = 0.0002x + 7E-15

    y = 0.0007x + 2E-14

    0

    0.5

    1

    1.5

    2

    2.5

    0 500 1000 1500 2000 2500 3000

    Masse (Da)

    Exce

    dent

    (Da)

    Poly-Asp

    Poly-Leu

    Gamme de masse excedentairepour peptides

    Poly-aspatate et poly-leucine représentent les polypeptides ayant respectivement le contenude proton le plus faible et le plus elevé parmi les acides aminés. La poly-cystéine (plus faiblecontenue de proton/masse) n’a pas été considerée car le frequence de l’acide aminé Cys par protéine n’est pas elevée.

  • Spectrométrie de masse

    9CHM 3102

    Notions de base – abondance

    Chaque isotope naturel a une abondance relative caractéristique.Quel serait la variation du rapport isotopique avec l’augmentation du nombre d’atome de carbone?

    C60 C90 C120

    12C monoisotopique 12C monoisotopique

    12C monoisotopique

    Comment varie la progression du rapport isotopique avec la masse moléculaire?

  • Spectrométrie de masse

    10CHM 3102

    Notions de base – abondance

    Si un élément A possède deux isotopes naturels dont l’un(A’) est plus abondant que l’autre (A’’). Le rapport de leurabondance est donné par:

    Par exemple si on a un total de 1000 molécules de CH4, il y aura 11 molécules contenant 13C plutôt que 12C; alors que le reste (989) aura la composition 12CH4. Leur rapport relatifd’intensité sera 989/11. De façon plus générale, la probabilité de n’avoir que des isotopes 12C pour unemolécule possédant Z atomes de carbones est:

    )'A'-/(100'A' où: A’ est l’abondance naturelle(%) du constituant mineur

    Z

    ⎥⎦⎤

    ⎢⎣⎡=

    100'A'-100

    P

  • Spectrométrie de masse

    11CHM 3102

    Notions de base – abondance

    De la même façon, pour les éléments C H N O S, la probabilité PM que tous les atomes ne contiennent aucunisotope lourd est donné par:

    où: 13C, 2H, 17O, 18O, 15N, 33S et 34S sont les abondances relatives des différents isotopes lourds des éléments considerés.

    a, b, c, d, e représentent le nombre d’atome pour le carbone, l’hydrogène, l’oxygène, l’azote et le soufre

    edcba

    ⎥⎦

    ⎤⎢⎣

    ⎡•⎥

    ⎤⎢⎣

    ⎡•⎥

    ⎤⎢⎣

    ⎡•⎥

    ⎤⎢⎣

    ⎡•⎥

    ⎤⎢⎣

    ⎡=

    100SS-100-

    100N100-

    100OO-100-

    100H100-

    100C100-

    P3433151817213

    M

  • Spectrométrie de masse

    12CHM 3102

    Notions de base – abondance

    De la même façon, la probabilité d’avoir un atome 13C pour une molécule contenant Z atomes est donné par:

    Z

    ⎥⎦

    ⎤⎢⎣

    ⎡•⎥

    ⎤⎢⎣

    ⎡•=+

    100C100-

    C100-C

    z P13

    13

    13

    1M

    Donc le rapport d’intensité M+1/M correspondantuniquement à une molécule ne contenant que des atomes de carbone est:

    ⎥⎦

    ⎤⎢⎣

    ⎡•=+

    C100-C

    z PP

    13

    13

    M

    1M

  • Spectrométrie de masse

    13CHM 3102

    Notions de base – abondance

    En tenant compte de chacunes des combinaisons d’isotopesM+1 de chacune des atomes C, H, N, O et S, on obtient le rapport d’intensité relative suivant:

    ( )EeDdCcBbAaM

    M•+•+•+•+••=

    +100

    1

    où: a: # atome de carbone

    A: 13C/(100-13C): 0.011

    b: # atome d’hydrogène

    B: 2H/(100-2H): 1.15 x 10-4

    c: # atome d’oxygène

    C: 17O/(100-17O): 3.80 x 10-4

    d: # atome d’azote

    D: 15N/(100-15N): 3.70 x 10-3

    e: # atome de soufre

    E: 33S/(100-33S): 7.89 x 10-3

  • Spectrométrie de masse

    14CHM 3102

    Notions de base – abondance

    Aussi la probabilité d’avoir exactement A atomes 13C (PM+A) sur un total de z atomes est décrit par la relation:

    Z-A13

    13

    13

    AM 100100

    100C

    )!!(!

    P ⎥⎦

    ⎤⎢⎣

    ⎡ −•⎥

    ⎤⎢⎣

    ⎡−

    •−

    =+

    CCZAZ

    AZ

    A13

    13

    13

    100100

    C100-C

    )!!(!

    ⎥⎦

    ⎤⎢⎣

    ⎡ −•⎥

    ⎤⎢⎣

    ⎡•

    −=

    CZAA

    AZ

    A13

    100100

    )!!(!

    ⎥⎦

    ⎤⎢⎣

    ⎡ −•

    −=+

    CZAA

    AP

    P

    M

    AM

  • Spectrométrie de masse

    15CHM 3102

    Notions de base – abondanceSymbole #atomique Masse nom. Comp. isoto. Masse isoto. Mass moy.

    H 1 12

    1000.0115

    1.0078252.014101

    1.00795

    Na 11 23 100 22.989769 22.989769

    P 15 31 100 30.973762 30.973762

    C 6 1213

    1001.08

    12.00000013.003355

    12.0108

    N 7 1415

    1000.369

    14.00307015.000109

    14.00675

    O 8 161718

    1000.0380.205

    15.99491516.99913217.999116

    15.9994

    S 16 32333436

    1000.84.520.02

    31.97207132.97145933.96786735.967081

    32.067

    Cl 17 3537

    10031.96

    34.96885336.965903

    35.4528

    Br 35 7981

    10097.28

    78.91833880.916291

    79.904

  • Spectrométrie de masse

    16CHM 3102

    Notions de base – abondance

    Quelle variation de rapport isotopique peux t’on prévoir pour un peptide moyen?

    y = 0 . 0 5 5 6 x - 9 E -1 4

    y = 0 . 0 0 0 2 x 1 . 6 9 0 7

    y = 2 E -0 7 x 2 . 4 5 1

    0

    2 0

    4 0

    6 08 0

    1 0 0

    1 2 0

    1 4 0

    0 5 0 0 1 0 0 0 1 5 0 0 2 0 0 0 2 5 0 0

    M a ss (D a )

    % o

    f mon

    oiso

    topi

    c 12

    C M + 1 / MM + 2 / MM + 3 / M

    Formule empirique pour l’acide aminé “averagine”: (C4.95H7.8N1.47O1.35S0.039)

  • Spectrométrie de masse

    17CHM 3102

    Notions de base – abondanceDes-Arg Bradykinine

    Angiotensine I

    904.46

    1296.69

    1758.93

    2465.20

    ACTH clip (18-39)

    Renin substrate

    • Variation du rapport isotopique avec la masse• Variation de l’excédent de masse moyen de 0.0005Da/Da

  • Spectrométrie de masse

    18CHM 3102

    Notions de base – résolution

    50 %

    5 %

    ∆M

    MM

    R∆

    =

    10 %

    R: 500 1u 1u1u

    50 51 500 501 1000 1001 m/z

  • Spectrométrie de masse

    19CHM 3102

    Notions de base – résolution

    Comment la distribution isotopique varie avec la résolution duspectromètre de masse?

  • Spectrométrie de masse

    20CHM 3102

    Notions de base – résolutionRésolution et son impact sur l’identification d’espèce ionique

    C20H9+

    C19H7N+

    C19H7N+ C20H9+ C13H19N3O2+C13H19N3O2+

    Instrument de grande résolutionR> 10,000

    Instrument de faible résolutionR: 1000

    249 249.0580 249.0700 249.1479

    Analyseurs de masse de plus grande résolution (> 10,000) sont les appareils à secteurs, temps d’envol, résonance cyclotronique ionique

  • Spectrométrie de masse

    21CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    Impulsion laser de 4 ns (λ 337 nm , N2)

    ± 30 kV

    To MS

    Échantillon + matrice m/z1500010000

    [M+H]+

    Caractéristiques:

    Analytes: Biomolecules jusqu’à - 500 kDaSensibilité: 10-100 pg (-10-100 fmoles)Précision: Avec TOF ± 0.02% (ext.), ± 0.005% (int.)Résolution: Avec TOF 15,000 (

  • Spectrométrie de masse

    22CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    Laser

    UV/visible regions λ

    Excimer gaz rares: ArF 193 nmKrF 248 nmXeCl 307 nmXeF 351 nm

    Azote 337 nm

    Infrarouge

    Er:YAG fondamentale 2.94 µmCO2 9.6 nm, 10.6 µm

    Plus communs

    Laser Science Inc. VSL-337ND nitrogen laser. Specifications : 250µJ/impulsion, 3 ns temps d’impulsion. Duree de vie ~ 2-4 ans.

  • Spectrométrie de masse

    23CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    OH

    COOH

    OH

    HO

    CH=CCN

    COOH

    N=N OH

    COOH

    N

    OH

    COOH

    N

    NN

    CH 3

    S

    H

    H

    OH O OH

    N

    CH=CH COOH

    H CH 3 O

    HO

    O CH 3

    CH=C H

    COOH

    OH

    HO

    HO

    C CH 3

    O

    Matrices pour laser à l’azote

    • 2,5-dihydroxy benzoic acid (DHB) 1, 2, 3, 4, 5

    • α-cyano-4-hydroxycinnaminic acid (CHCA) 1, 2

    • 3-hydroxypiconilic acid (HPA) 4

    • HABA 2

    • 6-aza-2-thiothymine (non acide) 1, 4

    • Dithranol (non acide) 5

    • Trans-indoleacrylic acid 5

    • Sinnapinic acid 2

    • 2’,4’,6’-trihydroxyacetophenone 2, 3

    (non acide)

    (1: peptides, 2: protéines, 3: oligosaccharides, 4: acides nucléiques, 5: polymères)

  • Spectrométrie de masse

    24CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    A. Evaporation

    • Désaler l’échantillon (Zip tip). Utiliser au besoin des billes échangeuse d’ions pour réduire la formation d’adduits alcalins.

    • Préparer solution ~ 10 µM de l’échantillon dans une solution aqueuse d’acétonitrile.• Préparer une solution de 0.1 M solution de matrice (DHB ou CHCA) in 1:1 Acétonitrile:eau.• Mélanger la solution de matrice et l’echantillon 1:1 (v:v).• Appliquer 0.5 µL de l’echantillon/matrice sur la plaque et sécher.

    S.L. Cohen, B.T. Chait, Anal. Chem. 68, 31-37 (1996)

    B. Couche mince

    • Dissoudre la matrice dans l’acétone avec 1-2% eau et appliquer sur la plaque. • Rinser la plaque légerement avec l’eau pour enlever les sels. • Appliquer l’échantillon.

    O. Volm, P. Roepstorff, M. Mann, Anal. Chem. 66, 3281-3287 (1994)

    C. Sandwich

    • Préparer une couche mince comme decrit en B.• Appliquer analyte/matrice sur la couche mince celle-ci formant de cristaux de germination.

    F. Xiang, R.C. Beavis, Rapid Commun. Mass Spectrom. 8, 199-204 (1994)

    Préparation de l’échantillon

  • Spectrométrie de masse

    25CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    Impulsion laser

    ± 30 kV

    Analyte + matrice

    Un faisceau moléculairesupersonique occasionne la sublimation de l’analyte/matrice

    Modèle de desorption avec matrice

    La matrice absorbe la radiation dans la gamme d’émission du laser.L’énergie absorbée occasionne la dissociation de la matrice. La zone irradiée s’etend sur une zone de 300 µm x 600 µm, 25 Å profondeur, et déplèteenviron 4.5 x 10-10 cm3 de solide.La dissociation rapide de la matrice libère des molécules neutres et des analytes en phase gazeuse et produit une région de plus haute pression dans le voisinage de la surface irradiée. Cette haute pression se traduit par une expansion supersonique amenant avec elle les analytes desorbés.

  • Spectrométrie de masse

    26CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    Modèle d’ionisation avec matrice

    La matrice joue un rôle important dans l’ionisation en plus du processus de désorption.

    La photoionisation de la matrice est suivie par une multitude de réactionsimpliquant à la fois des transferts radicalaires et de protons.

    Les molécules de matrice ne doivent pas former de radicaux ou espèces protonéesstables afin de favoriser l’ionisation de l’analyte.

    H. Ehring, M. Karas, F. Hillenkamp, Org. Mass Spectrom., 27, 472-480 (1992).

    CH3 O

    HO

    O CH3

    CH=C H

    COOH

    Moins acide lorsde l’excitation

    Plus acide lorsde l’excitation

    Réaction photochimique:

    H-DHB* + P (H+P)+ + DHB

    H-DHB* H+ + DHB- P + H+ (P-H)+

  • Spectrométrie de masse

    27CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    Distribution de velocité de l’acide sinnapinique

    Distribution de velocité de l’acidesinnapinique calculée selon le déplacement du temps d’envol

    Distribution d’intensité de l’acidesinnapinique selon le délai après

    l’impulsion laser

    Inte

    nsi

    te(u

    nite

    arb.)

    200

    400

    600

    800

    Velocite (m/sec) Delai (µsec)

    10 20In

    tensi

    te(u

    nite

    arb.)

    L’impulsion laser occasionne une large distribution d’énergie cinétique des analytesCette distribution est plus étroite suite a un délai après l’impulsion bien quel’intensité diminue.

  • Spectrométrie de masse

    28CHM 3102

    Techniques d’ionisation - Désorption laser avec matrice

    Influence du délai sur la résolution

    Extraction region

    Acceleration region

    UeSourceplate

    UaIntermediate

    grid

    UfFinalgrid

    Ue

    Ua

    Uf

    18 kV, constant

    20 kV, pulse

    ground, constant

    16 kV

    Delay Time

    Pulsing scheme PerSeptive

    0

    0

    da d0

    Adapte de R. Cotter, Anal. Chem. 445A, 1999

  • Spectrométrie de masse

    29CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    ESI voltage (5 kV)

    Air

    Echantillon/phase mobile

    Nébulisation desgouttelettes

    Evaporation du solvant

    ⇑ Champ électrique

    Ejection des ions

    ↓ ↓

    ↓ ↓

    ↓ ↓

    ↓ ↓

    Caractéristiques:

    Analytes: Biomolécules jusqu’à - 500 kDaSensibilité: 1-10 pg (-1-10 fmoles pour 1000 Da)Précision: ± 0.02% (ext.), ± 0.005% (int.)Résolution: Avec TOF 15,000, >100,000 avec FTMSHybride: Couplage en ligne avec EC, CLHP, infusion

  • Spectrométrie de masse

    30CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    m/z

    Apparition d’ions multiplement chargés ie [M-nH]n- ou [M+nH]n+Espacement entre deux série d’ion multiplement chargés correspond a l’ajout ou l’abstraction d’un proton de la molécule.Comment peux t’on determiner la masse moléculaire?

    + H

    10+

    9+

    8+

    7+

    6+

    1000 1500

    Caractéristiques du spectre de masse ESI

    Protéine de 10,000 Da

    1001.0

    1112.1

    1251.0

    1429.6

    1667.7

    1221 //1

    ]1[/

    ][/ zmzmet

    znHM

    zmetznHM

    zm <+

    ++=

    +=

  • Spectrométrie de masse

    31CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Ions multiplement chargés et charge

    M: 1000.5 Da

    1 m/z

    0.5 m/z

    0.33 m/z

    Simplement chargé1001.5

    501.3 Doublement chargé

    Triplement chargé334.5

    m/z

  • Spectrométrie de masse

    32CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Aspect mécanistique

    Production de gouttelettes chargées à partir de l’analytedissout en solution

    Evaporation du solvant, diminution de la taille des gouttelettes, desintégration de celles-ci donnant lieu à des micro-gouttelettes plus chargées.

    Production d’ions en phase gazeuse.

    Phénomènes secondaires tels oxidation de l’analyte.

  • Spectrométrie de masse

    33CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Gouttelettes chargées. La solution à l’extrémité du nébuliseurélectrostatique est soumis à une tension électrique elevée. Lorsque le capillaire de diametre rc est situé à une distance d de la contre-électrode (MS), le champ électrique est donné par:

    Ec = 2 Vc/rc ln(4d/rc)

    Anal. Chem. 65, 972A (1993)

    +-

    - ++

    ++++

    +++

    +

    ++++

    +++

    +

    +

    ++

    +

    ++

    ++

    +

    +

    ++

    ++

    ++

    +

    +

    ++

    ++

    +

    +

    +

    +

    +

    +

    +

    +

    +

    +

    +

    Reduction

    Oxydation

    High-voltagepower supply

    e-

    e-

    Taylor cone

  • Spectrométrie de masse

    34CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    L’évaporation du solvant et la collision avec les moléculesenvironnantes a pression atmospherique occasionne uneréduction de la taille des gouttelettes. Une explosion Coulombique (fission) survient lorsque la micro-goutteletteatteint la limite de Rayleigh ou l’ampleur du champ électrostatique est plus grand que la tension de surface maintenant l’integrité de la gouttelette.

    Q2 = 64 π2 ε0 γ R3

    ou Q correspond a la charge, ε0 la constante de permittivité, γla tension de surface, R le rayon de la gouttelette. Pour unesolution aqueuse ou R=1.5 µm nous obtiendrons une charge Q de 10-14 C (ou 50,000 ions simplement chargés).

  • Spectrométrie de masse

    35CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Ionisation de l’analyte. La diminution de la gouttelette suite aux fissions successives peut donner lieu a un résidu ioniquedésolvaté de ~ 1nm (single ion in droplet theory, SIDT, proposépar Dole et al., J. Phys. Chem.49, 2240 (1968)). Un autremécanisme assume une évaporation ionique successive (émission) a partir de micro-gouttelettes de plus en plus chargées (Iribarne and Thomson, J. Phys. Chem., 64, 2287 (1976)). Ces gouttelettes compétitionnent avec les phénomènesde fission lorsque celles-ci atteignent un diametre de 8 nm comprenant ~ N=70 charges élsmentaires. Dans ces conditions, les micro-gouttelettes ne donnent pas lieu à une fission maisémettent des ions directement. Lorsque N décroit, l’émission peutêtre maintenue suite à la diminution du diamètre de la gouttelette. Ce modèle peut survenir même en présenced’analytes formant des paires d’ions.

  • Spectrométrie de masse

    36CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Taille de l’émetteur, débit et efficacité d’émission. Les progrèsrécents dans la fabrication d’émetteurs de petits diamètres et la disponibilité de pompes CLHP à faible débit ont permis d’obtenirdes gains importants de sensibilité (Dale, D.C., Smith, R.D., Rapid Commun. Mass Spectrom., 7, 1017, (1993), Emmett, M.R., Caprioli, R.M., J. Am. Soc. Mass Spectrom., 5, 605, (1994), Andren, P.E., Emmett, M.R., Caprioli, R.M., J. Am. Soc. Mass Spectrom., 5, 867, (1994) and Wilm, M.S., Mann, M., Int. J. Mass Spectrom. Ion Proc., 136, 167, (1994)]. Dans ces conditions un cône de Taylor est obtenu pour des debits de 25-100 nL/min avec une émetteur de

  • Spectrométrie de masse

    37CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    1/ 3

    r e =

    ρ

    4π 2 γ tanπ

    2− α

    ⎛ ⎝

    ⎞ ⎠

    U aU t

    ⎝ ⎜

    ⎠ ⎟

    2

    − 1⎡

    ⎜ ⎜

    ⎟ ⎟ ⎟

    xdVdt

    ⎛ ⎝

    ⎞ ⎠

    2 / 3

    où γ est la tension de surface du liquide, α l’angle de cone liquide, ρ sadensité, Ut et Ua le seuil du voltage d’émission et le voltage appliqué, et dV/dt le débit. Pour un capillaire de dimension donné, le diamètre estproportionnel au débit (DV/dt)2/3 . Pour une solution aqueuse dont le débit est de 25 nL/min, re est 88 nm. L’efficacité d’ionisation/ transmission à ce débit est d’environ 8 x 10-4. Cette réduction de la taillede l’émitteur permet des gains significatifs de sensibilité et ce pour des diamètre de < 5 µm et des gouttelettes de < 200 nm, ce qui permetégalement la réduction du voltage appliqué.

  • Spectrométrie de masse

    38CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Comparaison de la sensibilité et du débit en LC-MS

    Diamètre (mm) Débit (µL/min) Qté inj. (pmol) Facteur de conc. Rel.

    4.6 500-1000 102-105 1

    2.1 100-400 50-104 5

    1.0 40-100 5-103 20

    0.32 1-10 0.5-500 200

    0.075 0.05-0.5 0.001-1 3700

  • Spectrométrie de masse

    39CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Comparaison de la sensibilité et du débit en LC-MS

  • Spectrométrie de masse

    40CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

  • Spectrométrie de masse

    41CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

  • Spectrométrie de masse

    42CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Résolution accrue pour l’analyse de protéines en mode ESI.MALDI permet par contre une mesure de masse avec une plus grande sensibilitépour l’analyse de glycoprotéines, ce qui n’est pas possible avec ESI car la protonation de l’analyte ne permet pas d’obtenir des m/z dans la gammeaccessible du MS.

  • Spectrométrie de masse

    43CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Analyse de peptides et protéines par ESI

    Smith et al. Anal. Chem., 62, 882 (1990)

  • Spectrométrie de masse

    44CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Analyse LC-MS de digestat trypsique de lectin (PNA)

  • Spectrométrie de masse

    45CHM 3102

    Techniques d’ionisation – Nébulisation électrostatique (ESI)

    Spectre de masse d’oligonucléotide dT10 en présenced’imidazole et piperidine (échange H/Na)

    GreigM., Griffey. R.H., Rapid Commun. Mass Spectrom., 9, 97 (1995)

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