procedimiento de control de documentos · Web viewResponsable del laboratorio Aprobó MsC. Francisco Aranda Cirerol Responsable del laboratorio Author maria.ortega Created Date 02/24/2016

Instructivo para la toma, conservación y envío de muestras del laboratorio de Análisis Clínicos

Código: I-CCBA-LAC-01 Revisión: 02 Página: 1 de 14Fecha de emisión: 06 de mayo de 2009

Fecha de modificación: 24 de febrero de 2016

1.- OBJETIVO

Conocer las metodologías para la toma, conservación y envío de muestras de sangre, orina y tejido (hepático y renal) para su recepción en el laboratorio y su posterior procesamiento

2.- ALCANCE

Aplica para todos los usuarios que envían muestras al laboratorio de Análisis Clínicos

3.- DESCRIPCIÓN DE LA OPERACIÓN

Instructivo para la toma, conservación y envío de muestras

INTRODUCCIÓN:En los últimos años ha aumentado considerablemente el interés de la aplicación de los

F-DGPLANEI-CC/GA-39/REV:01




análisis clínicos veterinarios en el diagnóstico de patologías en animales

El laboratorio de análisis clínicos tiene gran importancia en esta aplicación porque

ofrece información adicional al veterinario para realizar un diagnóstico más preciso, que al

final, conducirá al tratamiento específico, es decir, al tratamiento de la causa determinante de

la enfermedad, en lugar de un tratamiento exclusivamente de los síntomas de la enfermedad

presente. Por lo tanto, una recolección de muestra (sangre, orina y tejido hepático o renal)

mal realizada, inadecuadamente conservada o mal transportada pueden afectar las

determinaciones de los análisis para realizar el diagnostico

En este instructivo encontrará las diferentes vías de obtención de la muestra

requerida, así como el transporte y envío al laboratorio de análisis clínicos.

TOMA DE MUESTRAMATERIAL REQUERIDO

Torundas de algodón con alcohol (etílico desnaturalizado).

Jeringas, agujas, camiseta para vacutainer.

Tijeras, bisturí.

Tubos con anticoagulante (E. D. T. A.) y sin anticoagulante.

Recipientes plástico estériles para orina, bolsas de plástico para tejido (hígado,

riñón).

Alcohol Torundas Jeringas Agujas





Cámara Vacutainer Tijeras y Bisturí Tubos con E.D.T.A.

Tubo sin anticoagulante Recipientes para orina Bolsas para tejido

PUNCION Y SITIOS DE PUNCIONLa sangre venosa es la muestra más común obtenida de los animales. Las técnicas

varían de una especie a otra según la localización de los vasos sanguíneos convenientes y el

espesor, dureza y capa de la piel


Especie Sitio de punción (Vena):Bovino Yugular, mamaria, coccígeaOveja y cabra YugularPorcino Cava anteriorEquino YugularCanino Cefálica, yugular, femoral, sublingualFelinos Cefálica, yugular, tibial, femoral.Aves Ala, corazón




Extracción de sangre OVINO Extracción de sangre BOVINO

Extracción de sangre de PORCINO

Extracción de sangre de AVE Extracción de sangre de PERRO





Muestra con E.D.T.A. Muestra sin anticoagulante

La muestra de orina puede obtenerse mediante:

Punción supra-púbica.- Está indicada en pequeños animales y aquellos bajo

anestesia. Se hace exploración y palpación de la vejiga, se extrae orina con jeringa estéril y

métodos de asepsia –antisepsia

Sonda estéril.- Es el método más apropiado para animales, conlleva trabajo y gastos

en sondas y equipos

Micción espontánea.- La orina de micción espontánea limpia es la muestra indicada

en condiciones ideales

Micción espontanea BOVINO Micción espontanea EQUINO





Micción por sonda PERRO

OBTENCIÓN DE HIGADO Y RIÑON (COBRE)

Muestras de cadáveres: Hígado y Riñón OVINO

IDENTIFICACION, CONSERVACIÓN Y TRASPORTE DE LAS MUESTRASEs importante que la muestra sea correctamente rotulada y conservada.

En el caso de las muestras con anticoagulante (plasma) estas deben ser refrigeradas

para su envío.

Las muestras pueden ser enviadas al laboratorio a temperatura ambiente si esto se

realiza dentro de los primeros 20 minutos de haber sido tomada la muestra. Las muestras de

sangre y orina no deben ser conservadas en refrigeración más de 24 horas, porque esto trae

como consecuencia alteraciones en los diferentes metabolitos a determinar y por lo tanto





errores en los resultados. El tejido (hepático y renal) puede conservarse en refrigeración o

congelación hasta 48 horas.

Para las muestras sin anticoagulante (suero) se espera la retracción del coágulo

aproximadamente entre 20-30 minutos, tiempo en el que la sangre de los animales se

coagula, posteriormente esta debe ser refrigerada para su envío. Se deberá tener especial

cuidado con la muestra si es destinada para la determinación de glucosa, ya que no deberá

exceder de 40 minutos entre la toma y entrega al laboratorio.

Para las muestras de orina en frasco hermético estéril y en refrigeración (no congelar),

la cantidad de orina no deberá ser menor a los 2 ml.

El envío de los órganos (tejido hepático y renal), deber ser en recipientes o bolsas

guardando las mayores condiciones de asepsia posible y en neveras con refrigerante o hielo.

REQUISITOS BÁSICOS PARA LA RECEPCIÓN Y EL ANÁLISIS DE MUESTRAS1. Calidad de la muestra En la medida de lo posible no tratar a los animales con síntomas clínicos previo a la

toma de muestra.

Tome la muestra con la mayor asepsia posible.

Identifique cada muestra.

Remita la muestra al laboratorio a la brevedad posible.

Proporcione información de los signos clínicos del animal.

2. Cantidad de la muestra





De 2ml-5ml de sangre en pequeñas especies y de 5 ml-10 ml para grandes

especies.

Para la muestra de orina el volumen recomendado a recolectar es de 25 ml-50 ml.

En el tejido (hepático o renal) con 30 gr es suficiente para realizar el análisis.

3. Datos a proporcionar Identificación del animal.

Especie.

Raza.

Genero.

Edad.

Signos.

Lesiones observadas.

Tiempo de obtención o conservación de la muestra.

Tipo de conservación.

Tratamiento con productos farmacéuticos.

Análisis solicitado.

Nombre y teléfono del Remitente.

PRUEBAS QUE SE REALIZAN EN EL LABORATORIO DE ANÁLISIS CLÍNICOS DEL CCBA - UADY

Prueba Analitos Tubo de obtención

recomendado

Tubo de obtención opcional

Biometría

hemática

Conteo de

eritrocitos y

leucocitos,

Tapón morado Tapón azul





hemoglobina,

hematocrito,

VCM, CMHG y

conteo

diferencial de

leucocitos.

Conteo plaquetario Conteo de

plaquetas.

Tapón morado Ninguno

Fibrinógeno Fibrinógeno. Tapón azul Ninguno

Química

sanguínea

Glucosa,

Creatinina, Urea

y Nitrógeno

Ureico.

Tapón rojo Tapón morado

Perfil renal Creatinina, Urea

y Nitrógeno

Ureico.


Perfil hepático

AST (GOT),

ALT (GPT),

proteínas

totales (séricas

o plasmáticas),

albumina,

globulina,

relación A/G,

bilirrubina

directa,

bilirrubina






indirecta y

bilirrubina total

Fosfatasa alcalina Fosfatasa

alcalina

Tapón rojo Tapón verde

Detección de

cobre

Cobre No aplica No aplica

General de orina Examen físico,

examen químico

y sedimento

urinario.

No aplica No aplica

RECEPCIÓN DE LAS MUESTRASLas muestras son recibidas de lunes a viernes en un horario de 8:30 – 14:30 hrs.

en la Unidad de Diagnóstico del CCBA - UADY.

NOTA: si requiere enviar muestras los días viernes, se recomienda que el envío sea

antes de las 11.00 hrs.

NUESTRAS INSTALACIONES PERMANECEN CERRADAS EL FIN DE SEMANA, DÍAS FESTIVOS Y PERIODOS VACACIONALES DE PRIMAVERA, VERANO E INVIERNO.





4.- DOCUMENTOS DE REFERENCIA

Código Nombre del documento Lugar de almacenamiento

N/A

MAXI M. BENJAMINNE Compendio de

Patología Veterinaria Ed. IOWA State

University press, 1962N/A

N/A

BUSH, B. (1975) Veterinary laboratory

Manual. Ed. William Heinemann Medical

Books LTD. Great Britain. P. 70-75N/A

N/A

KELLY, W. (1980) Diagnostico clínico

veterinario. 3ª Ed. C.EC.S.A. México. p. 305-

333.N/A

N/ACOFFIN, D. (1981) Laboratorio clínico en

medicina veterinaria. Ed. LIMUSA, México.N/A

N/A

LEAVELL, B. Y THORUP, O. (1984)

Hematología clínica. Ed. Interamericana.

México.N/A

N/A

MCCURNIN, D. (1987) Técnicas veterinarias.

Ed. El Manual Moderno, S.A. de C.V.

México.

FARIAS, G. (1988) Química clínica. 9ª Ed. El

Manual Moderno. México. p.278-282

N/A

N/A

BALCELL, A. (1989) La clínica y el

laboratorio. Interpretación de análisis y

pruebas funcionales. Exploración

N/A





de los síndromes. Cuadro biológico de las

enfermedades. 15a Ed. Salvat. Barcelona,

España.

N/A

BENNINGTON (1991) Diccionario

enciclopédico del laboratorio clínico. Ed.

Panamericana. México.N/A

N/A

GRACIA E. CHACON G. MORENO B.

FERNANDEZ A. ALBIZU I. BALSAGA R.

BALSAGA R. Toma de muestras en

rumiantes 2006

N/A

5.- CONTROL DE REGISTROS

Identificación Nombre del registro

Lugar de almacenamiento

Responsable de su protección

Tiempo de retención

Disposición de los registros

N/A N/A N/A N/A N/A N/A

6.- GLOSARIO

6.1 .- SIGLAS

I .- InstructivoCCBA.- Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias.LAC.- Laboratorio de análisis clínicos.E.D.T.A.- Ácido etildiaminotetraacético.ml .- Mililitros.VCM .- Volumen Corpuscular Medio.CMHG.- Concentració Media de Hemoglobina.AST (GOT).- Aspartato Aminotransferasa.





ALT (GPT).- Alanina Aminotransferasa.Relación A/G.- Relación Albúmina/Globulina.UADY.- Universidad Autónoma de Yucatán.

6.2 .- DEFINICIONESNinguna.





7.- CONTROL DE REVISIONES

Nivel de revisión

Sección y/o página Descripción de la modificación y mejora Fecha de modificación

01 Pág. 1 Se cambió el nombre del coordinador de la unidad, por el nombre del responsable del laboratorio.

11/06/2012

02 Pág. 1Pág. 13Todo el

documento

Se cambió del nombre del documento de guía a instructivo.Se eliminaron las políticas.Se cambió el nombre de la persona que elabora.Se cambió el formato del documento.

24/02/2016

Nota: Ésta sección será utilizada a partir de la primera modificación a este documento. La revisión 00, se mantendrá en blanco.

Elaboró

QFB. Ana Ma. S. Rejón MagañaQFB. Vanesa Gpe. Evia Pech

Técnico académico

Revisó

MsC. Francisco Aranda CirerolResponsable del laboratorio

Aprobó

MsC. Francisco Aranda CirerolResponsable del laboratorio

Las firmas avalan la responsabilidad de las personas que: elaboran el documento, revisan su adecuación y aprueban para su implementación dentro del Sistema de Gestión de la Universidad Autónoma de Yucatán.


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