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POLITECNICO DI MILANO
Scuola di Ingegneria Industriale e dell’Informazione
Corso di Laurea Magistrale in Ingegneria Chimica
ANNO ACCADEMICO 2015 - 2016
BIOMASSE DI TERZA GENERAZIONE:
CARATTERIZZAZIONE E PIROLISI DELLE ALGHE
Relatore:
Prof. Alessio FRASSOLDATI
Correlatori:
Prof. Eliseo RANZI
Ing. Paulo E.A. DEBIAGI
Tesi di Laurea di:
Martina TRINCHERA
Matricola 823794
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ABSTRACT
Energy plays a key role in everyday life and in the development of the modern world.
Fossil fuels are not renewable energy sources producing relevant environmental impacts.
In the recent years, their intensive consumption created several problems, including their
own availability, paving the way to explore new energy sources. Since third generation
biomasses are still largely unexplored, we first collected available information reporting
their nature and main features. These data allowed us to develop a novel model for algae
characterization and pyrolysis. Every algal species, both macro- and micro-algae, are
constituted by protein, carbohydrates and lipids, present in various amounts depending
on the taxonomy and growing conditions. Noteworthy, algae generate higher levels of
lipids, nitrogen and ashes compared to vegetal biomasses. The developed model made
possible to predict the biochemical composition of each algal species (in terms of protein,
carbohydrate, and lipid amounts) starting from the ultimate analysis and ash content. To
this aim, we first defined the following model molecules as reference: high hydrogen,
high oxygen, and high carbon protein (PROT-H, PROT-O, and PROT-C, respectively),
C7H10O7 representative for carbohydrates (glycosidic bond derived and more oxidized
glucose), and linoleic acid (native) for lipids. Then, we solved simple operations of mass
balance. The model provided results fitting those reported by experimental studies. On
this basis, we then developed a mechanism of alga devolatilization, following the
POLIMI model for lignocellulosic biomasses, but taking into account the higher amounts
of nitrogen-based compounds. The obtained results appeared interesting and encouraging,
and allowed us to focus on critical aspects that are under investigation at present. In
particular, the pyrolysis model requires further work due to the lack of information on
alga accurate composition and thermal degradation.
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SINOSSI
L’energia ricopre un ruolo fondamentale nella vita quotidiana e nello sviluppo della
società moderna. A causa dell’intensivo consumo delle fonti fossili, risorse esauribili e
con un pesante impatto ambientale, si è aperta la strada per la ricerca e lo sviluppo di
nuove fonti energetiche. Il campo delle biomasse di terza generazione è per molti aspetti
inesplorato, dunque in questo lavoro in prima istanza sono state raccolte e rielaborate le
principali informazioni utili a descrivere e comprendere la natura di questa biomassa. Con
i dati raccolti è stato sviluppato il primo modello di caratterizzazione e pirolisi per le
alghe. Tutte le specie, sia macro-alghe che micro-alghe sono costituite seppur in
percentuali variabili in base alla tipologia e alle condizioni di crescita della biomassa da
proteine, lipidi e carboidrati. Inoltre rispetto ad altre biomasse vegetali, si osservano tenori
maggiori di azoto e ceneri che devono essere tenuti in considerazione. Il modello di
caratterizzazione sviluppato ha permesso, nota la sola composizione elementare e il
contenuto di ceneri, di predire la composizione biochimica, ossia le quantità di proteine,
lipidi e carboidrati presenti nella specie algale caratterizzata. Per fare questo, individuate
delle molecole modello di riferimento, PROT-H, PROT-O, PROT-C proteine
rispettivamente ricche in idrogeno, ossigeno e carbonio, una specie mediata C7H10O7 per
i carboidrati e l’acido linoleico per i lipidi, si sono risolti semplici bilanci materiali.
Verificata la validità del modello confrontando i risultati con quelli sperimentali
pubblicati, è stato poi sviluppato un meccanismo di degrado delle alghe. Lo sviluppo dello
schema cinetico si è ispirato al modello sviluppato dal POLIMI per le biomasse
lignocellulosiche con nuove considerazioni sulle specie azotate. I risultati ottenuti sono
interessanti e soddisfacenti, sia per la loro natura, sia perché hanno permesso di
evidenziare aspetti critici che sono già oggetto di ulteriori analisi e sviluppi. Soprattutto
il modello di pirolisi richiede ulteriori analisi rese difficili dalla scarsità di informazioni
precise ed affidabili sulla composizione e sul degrado termico delle alghe.
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INDICE
1. INTRODUZIONE ................................................................................................. 1
2. CLASSIFICAZIONE DELLE BIOMASSE E DEI BIOCOMBUSTIBILI .......... 4
2.1. Biomasse vegetali ........................................................................................... 4
2.1.1. Biomassa lignocellulosica ...................................................................... 4
2.1.2. Biomassa algale ...................................................................................... 4
2.2. Biomasse da rifiuti animali ed industriali ...................................................... 4
2.3. Classificazione dei biocombustibili ............................................................... 5
2.3.1. Biocombustibili solidi ............................................................................. 5
2.3.2. Biocombustibili liquidi ............................................................................ 6
2.3.3. Biocombustibili gassosi .......................................................................... 7
3. BIOMASSA ALGALE COME POTENZIALE BIOCOMBUSTIBILE .............. 9
4. TASSONOMIA E COMPOSIZIONE DELLE ALGHE .................................... 17
4.1. I lipidi ........................................................................................................... 24
4.2. Le proteine.................................................................................................... 26
4.3. I carboidrati .................................................................................................. 30
4.4. Gli acidi nucleici .......................................................................................... 31
4.5. I pigmenti ..................................................................................................... 34
5. SISTEMI DI COLTIVAZIONE DELLE ALGHE .............................................. 36
5.1. Sistemi all’aria aperta ................................................................................... 37
5.2. Sistemi chiusi, fotobioreattori ...................................................................... 38
5.3. Sistemi ibridi ................................................................................................ 40
5.4. Sistemi di coltivazione delle macro-alghe ................................................... 40
5.5. Metodi di raccolta, disidratazione e essiccamento ....................................... 41
6. PROCESSI DI CONVERSIONE DELLE BIOMASSE ..................................... 43
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6.1. Conversione termica ..................................................................................... 43
6.1.1. Pirolisi .................................................................................................. 43
6.1.2. Gassificazione ....................................................................................... 44
6.1.3. Combustone diretta ............................................................................... 45
6.1.4. Liquefazione idrotermica ...................................................................... 46
6.2. Conversione biochimica ............................................................................... 47
6.2.1. Digestione anaerobica .......................................................................... 47
6.2.2. Fermentazione alcolica ......................................................................... 48
6.3. Conversione chimica .................................................................................... 49
6.3.1. Transesterificazione .............................................................................. 49
7. TRATTAMENTI TERMICI DELLA BIOMASSA ALGALE .......................... 50
7.1. Pirolisi delle alghe ........................................................................................ 50
7.2. Liquefazione idrotermica delle alghe ........................................................... 51
7.3. Gassificazione delle alghe ............................................................................ 52
8. MODELLO PER LA CARATTERIZZAZIONE DELLA BIOMASSA ALGALE
53
8.1. Risultati e convalida del modello ................................................................. 60
9. DEVOLATILIZZAZIONE DELLA BIOMASSA ALGALE ............................. 72
9.1. Struttura della biomassa algale per la devolatilizzazione............................. 72
9.1.1. Struttura dei carboidrati ....................................................................... 72
9.1.2. Struttura dei lipidi ................................................................................. 74
9.1.3. Struttura delle proteine ......................................................................... 75
9.2. Meccanismo cinetico di pirolisi ................................................................... 75
9.3. Devolatilizzazione dei carboidrati ................................................................ 76
9.4. Devolatilizzazione dei trigliceridi ................................................................ 78
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9.5. Devolatilizzazione delle proteine ................................................................. 79
9.6. Reazioni secondarie in fase gas .................................................................... 84
10. CONVALIDA DEL MODELLO DI PIROLISI .............................................. 87
10.1. Dati sperimentali dell’IIT Madras ............................................................ 87
10.2. Predizioni del modello di pirolisi ............................................................. 89
11. CONCLUSIONI .............................................................................................. 95
12. BIBLIOGRAFIA ............................................................................................. 96
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INDICE DELLE FIGURE
FIGURA 1 CONSUMI ENERGETICI MONDIALI - STATISTICAL REVIEW OF WORLD ENERGY, JUNE 2015 ................................. 1
FIGURA 2 PRODUZIONE MONDIALE DI BIOCOMBUSTIBILI - STATISTICAL REVIEW OF WORLD ENERGY .................................. 2
FIGURA 3 CLASSIFICAZIONE DEI BIOCOMBUSTIBILI (DRAGONE ET. AL., 2010). ............................................................... 5
FIGURA 4 TIPICI BIOCOMBUSTIBILI SOLIDI ............................................................................................................... 6
FIGURA 5 PRODUZIONE MONDIALE DI BIOCOMBUSTIBILI: BIO-DIESEL E BIO-ETANOLO - STATISTICAL REVIEW OF WORLD
ENERGY, JUNE 2015 ................................................................................................................................ 7
FIGURA 6 EFFETTI DEL TROFISMO SULLA CRESCITA DELLA BIOMASSA E SULL’ACCUMULO DI LIPIDI (CHEIRSILP, B., TORPEE, S.,
2012) ................................................................................................................................................. 11
FIGURA 7 EFFETTO DELL’INTENSITÀ DELLA LUCE SULLA CRESCITA DELLA BIOMASSA E SULL’ACCUMULO DEI LIPIDI IN DUE MICRO-
ALGHE (CHEIRSILP, B., TORPEE, S., 2012) .................................................................................................. 11
FIGURA 8 EFFETTO DELLA CONCENTRAZIONE INIZIALE DEL SUBSTRATO SULLA CRESCITA DELLA BIOMASSA E SULL’ACCUMULO DEI
LIPIDI (CHEIRSILP, B., TORPEE, S., 2012) ................................................................................................... 12
FIGURA 9 SCHEMA DI UNA BIORAFFINERIA PER BIOMASSA ALGALE (CHEN ET AL., 2010) ................................................ 15
FIGURA 10 COMPOSIZIONE ELEMENTARE BIOMASSA ALGALE E ALTRE BIOMASSE .......................................................... 20
FIGURA 11 DIAGRAMMA DI VAN KREVELEN PER BIOMASSA ALGALE E ALTRE BIOMASSE ................................................. 21
FIGURA 12 AMMINOACIDI ESISTENTI IN NATURA ................................................................................................... 26
FIGURA 13 NUCLEOTIDI PRESENTI NELLE ALGHE .................................................................................................... 32
FIGURA 14 STRUTTURA DELLE CLOROFILLE PRESENTI NELLE ALGHE ............................................................................. 35
FIGURA 15 PRINCIPALI CAROTENI E XANTOFILLE NELLE ALGHE ................................................................................... 35
FIGURA 16 DIFFERENTI CONFIGURAZIONI DI SISTEMI APERTI, (CHEN ET AL., 2010). ..................................................... 37
FIGURA 17 ESEMPI DI FOTOBIOREATTORI ............................................................................................................. 38
FIGURA 18 SISTEMI IBRIDI DI COLTIVAZIONE DELLE MICRO-ALGHE ............................................................................. 40
FIGURA 19 COLTIVAZIONE DELLE MACRO-ALGHE ................................................................................................... 41
FIGURA 20 PROCESSI DI CONVERSIONE TERMOCHIMICA (MCKENDRY, P. 2002). ......................................................... 43
FIGURA 21 PROCESSO DI DIGESTIONE ANAEROBICA ................................................................................................ 48
FIGURA 22 PROCESSO DI FERMENTAZIONE ALCOLICA .............................................................................................. 48
FIGURA 23 REAZIONE DI TRANSESTERIFICAZIONE DI UN TRIGLICERIDE CON METANOLO .................................................. 49
FIGURA 24 DISTRIBUZIONE DEI PRINCIPALI ACIDI GRASSI .......................................................................................... 53
FIGURA 25 COMPOSIZIONE E DISTRIBUZIONE DEGLI AMMINO ACIDI PIÙ FREQUENTI NELLE ALGHE .................................... 54
FIGURA 26 CARATTERIZZAZIONE DELLE LE PROTEINE ............................................................................................... 54
FIGURA 27 COMPOSIZIONE DEI PRINCIPALI ZUCCHERI DELLE ALGHE ............................................................................ 56
FIGURA 28 COMPOSIZIONE DEGLI ZUCCHERI DI RIFERIMENTO ................................................................................... 57
FIGURA 29 PROCEDURA PER LA CARATTERIZZAZIONE .............................................................................................. 58
FIGURA 30 CARATTERIZZAZIONE DELLA BIOMASSA ALGALE E DELLA PROTEINA .............................................................. 59
FIGURA 31 SIMULAZIONI PER CONFRONTARE LO ZUCCHERO DI RIFERIMENTO .............................................................. 61
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FIGURA 32 SIMULAZIONI PER CONFRONTARE LA FRAZIONE MASSIVA D’AZOTO NELLA PROTEINA ...................................... 62
FIGURA 33 RISULTATI OTTENUTI PER LE PROTEINE.................................................................................................. 65
FIGURA 34 CARATTERIZZAZIONE DELL’ALGA NANNOCHLOROPSIS GADITANA ............................................................... 66
FIGURA 35 CONFRONTO CONTENUTO % DI PROTEINE ............................................................................................ 69
FIGURA 36 CONFRONTO CONTENUTO % DI CARBOIDRATI ........................................................................................ 69
FIGURA 37 CONFRONTO CONTENUTO % DI LIPIDI .................................................................................................. 69
FIGURA 38 CONFRONTO % DI PROTEINE. ALGHE CONSIDERATE PER COLORE ............................................................... 70
FIGURA 39 CONFRONTO % DI CARBOIDRATI. ALGHE CONSIDERATE PER COLORE .......................................................... 70
FIGURA 40 CONFRONTO % DI LIPIDI. ALGHE CONSIDERATE PER COLORE ..................................................................... 70
FIGURA 41 DISTRIBUZIONE DELLE PROTEINE ......................................................................................................... 71
FIGURA 42 ISOMERI DEL GLUCOSIO (RANZI ET AL., 2017) ....................................................................................... 73
FIGURA 43 CELLULOSA (RANZI ET AL., 2017) ....................................................................................................... 73
FIGURA 44 LEGAMI AD IDROGENO NELLA CELLULOSA (RANZI ET AL., 2017) ................................................................ 74
FIGURA 45 ACIDO GRASSO DI RIFERIMENTO ......................................................................................................... 74
FIGURA 46 TRIGLICERIDE OTTENUTO DALL’ACIDO LINOLEICO .................................................................................... 74
FIGURA 47 STRUTTURA CATENA PROTEICA ........................................................................................................... 75
FIGURA 48 SCHEMA DEVOLATILIZZAZIONE DELLA CELLULOSA (RANZI ET AL., 2017). ..................................................... 76
FIGURA 49 PIROLISI DELLA CELLULOSA. ANALISI TERMOGRAVIMETRICHE (RANZI ET AL., 2017). ..................................... 77
FIGURA 50 PIROLISI DEI TRIGLICERIDI. ANALISI TERMOGRAVIMETRICHE (DEBIAGI ET AL., 2015). .................................... 78
FIGURA 51 POSSIBILI REAZIONI DELL’AMMINOACIDO .............................................................................................. 81
FIGURA 52 FORMAZIONE DELL’ACIDO CIANIDRICO ................................................................................................. 81
FIGURA 53 PIROLISI DELLE PROTEINE. ANALISI TERMOGRAVIMETRICHE (DEBIAGI ET AL., 2015)...................................... 83
FIGURA 54 DEVOLATILIZZAZIONE DELLE PROTEINE ................................................................................................. 84
FIGURA 55 COSTANTE DI VELOCITÀ DI SPECIE RADICALICHE IN REAZIONI DI SOTTRAZIONE DI H ........................................ 86
FIGURA 56 PERDITA IN PESO % DELL’ALGA SPIRULINA PLATENSIS ............................................................................. 87
FIGURA 57 PERDITA IN PESO % DELL’ALGA CHLORELLA VULGARIS ............................................................................. 88
FIGURA 58 PERDITA IN PESO % DELL’ALGA NANNOCHLOROPSIS OCULATA .................................................................. 88
FIGURA 59 PERDITA IN PESO % DELL’ALGA SCHIZOCYTRIUM LIMACIUM ..................................................................... 88
FIGURA 60 CONFRONTO SOLIDI RESIDUI CHLORELLA VULGARISS ............................................................................... 92
FIGURA 61 CONFRONTO SOLIDI RESIDUI NANNOCHLOROPSIS OCULATA ..................................................................... 92
FIGURA 62 CONFRONTO SOLIDI RESIDUI SPIRULINA PLATENSIS ................................................................................. 92
FIGURA 63 CONFRONTO SOLIDI RESIDUI SCHIZOCHYTRIUM ...................................................................................... 93
FIGURA 64 CONFRONTO TRA TGA ..................................................................................................................... 93
FIGURA 65 ANALISI TERMOGRAVIMETRICA DI MACRO-ALGHE CAMPIONI A, B E BIOMASSE LIGNOCELLULOSICHE CAMPIONI C,
D, E (ROSS ET AL., 2008) ....................................................................................................................... 94
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INDICE DELLE TABELLE
TABELLA 1 PARAMETRI PER LA VALUTAZIONE DI UNA BIOMASSA (SINGH, ET AL., 2011), (ULLAH, ET AL., 2014). ................ 9
TABELLA 2 PARAMETRI CHE INFLUENZANO CRESCITA E PRODUTTIVITÀ DELLA BIOMASSA ALGALE (DRAGONE ET. AL., 2010)
(DEMIRBAS A., DEMIRBAS M. FAITH., 2011) (CHEN ET AL., 2010). ............................................................... 10
TABELLA 3 CONTENUTO LIPIDICO PER BIOMASSA ALGALE (ALAM ET AL., 2012) ........................................................... 13
TABELLA 4 VALORE DI 10KG DI BIOMASSA ALGALE (WIJFFELS, ET AL., 2010).............................................................. 15
TABELLA 5 POTENZIALITÀ DELLA BIOMASSA ALGALE (DEMIRBAS A., DEMIRBAS M. FAITH., 2011) .................................. 16
TABELLA 6 CLASSIFICAZIONE COMUNE DELLE MICRO-ALGHE ..................................................................................... 18
TABELLA 7 CLASSIFICAZIONE DELLE ALGHE IMPIEGATA IN QUESTO LAVORO .................................................................. 19
TABELLA 8 COMPOSIZIONE ELEMENTARE DELLA BIOMASSA ALGALE - MICROALGHE ....................................................... 19
TABELLA 9 COMPOSIZIONE ELEMENTARE BIOMASSA ALGALE - MACROALGHE ............................................................... 20
TABELLA 10 PROXIMATE ANALYSIS ..................................................................................................................... 22
TABELLA 11 COMPOSTI METALLICI NELLE ALGHE VALORI MEDI IN PPM. ...................................................................... 22
TABELLA 12 COMPOSIZIONE BIOCHIMICA ............................................................................................................. 23
TABELLA 13 PRINCIPALI ACIDI GRASSI PRESENTI NELLE ALGHE ................................................................................... 24
TABELLA 14 RANGE DI FREQUENZA DEI PRINCIPALI ACIDI GRASSI DELLE ALGHE ............................................................. 25
TABELLA 15 RANGE DI RIPARTIZIONE DEGLI ACIDI GRASSI ........................................................................................ 25
TABELLA 16 VALORI DI AMMINO ACIDI NELLE ALGHE ............................................................................................. 27
TABELLA 17 FREQUENZA MEDIA AMMINOACIDI NELLE ALGHE ................................................................................... 27
TABELLA 18 RAGGRUPPAMENTO DEGLI AMMINO ACIDI ........................................................................................... 29
TABELLA 19 PRINCIPALI ZUCCHERI ...................................................................................................................... 31
TABELLA 20 COMPOSIZIONE DELLE BASI AZOTATE .................................................................................................. 32
TABELLA 21 COMPOSIZIONE DEGLI ZUCCHERI NEGLI ACIDI NUCLEICI ........................................................................... 33
TABELLA 22 COMPOSIZIONE DEL GRUPPO FOSFATO ............................................................................................... 33
TABELLA 23 COMPOSIZIONE DEI NUCLEOTIDI ........................................................................................................ 33
TABELLA 24 COMPOSIZIONE DEGLI ACIDI NUCLEICI ................................................................................................. 34
TABELLA 25 PRODUTTIVITÀ SISTEMI ALL'ARIA APERTA, (CHEN ET AL., 2010). ............................................................. 38
TABELLA 26 PRODUTTIVITÀ SISTEMI CHIUSI, (CHEN ET AL., 2010) ............................................................................ 39
TABELLA 27 CONFRONTO SISTEMI APERTI – CHIUSI (DRAGONE ET AL., 2010). ............................................................ 39
TABELLA 28 METODI DI ESSICCAMENTO BIOMASSA ALGALE (CHEN ET AL., 2010) ........................................................ 42
TABELLA 29 PROCESSI DI PIROLISI (JAHIRUL ET AL., 2012). ..................................................................................... 44
TABELLA 30 PRINCIPALI REAZIONI DI GASSIFICAZIONE (MCKENDRY, P. 2002)............................................................. 45
TABELLA 31 PROPRIETÀ DELL’ACQUA IN DIVERSE CONDIZIONI (TOOR ET AL., 2011) ..................................................... 46
TABELLA 32 MECCANISMO BASE DI REAZIONE (TOOR ET AL., 2011). ........................................................................ 47
TABELLA 33 COMPOSIZIONE ELEMENTARE DEI PRINCIPALI ACIDI GRASSI PRESENTI NELLE ALGHE ....................................... 53
TABELLA 34 COMPOSIZIONE DELLE TRE PROTEINE DI RIFERIMENTO ............................................................................ 55
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TABELLA 35 COMPOSIZIONE ELEMENTARE DI MONOSACCARIDI E POLISACCARIDI .......................................................... 55
TABELLA 36 RISULTATI DEL MODELLO .................................................................................................................. 64
TABELLA 37 COMPOSIZIONE DELL’ALGA NANNOCHLOROPSIS GADITANA .................................................................... 65
TABELLA 38 COMPOSIZIONE DELL’ALGA SENZA INORGANICI E SENZA PROTEINA ............................................................ 66
TABELLA 39 COMPOSIZIONE DELLA PROTEINA DELL’ALGA NANNOCHLOROPSIS GADITAA ............................................... 66
TABELLA 40 RIPARTIZIONE NELLE TRE PROTEINE DI RIFERIMENTO .............................................................................. 67
TABELLA 41 CARATTERIZZAZIONE DELLA PROTEINA ................................................................................................ 67
TABELLA 42 PREDIZIONE COMPOSIZIONE BIOCHIMICA ALGA NANNOCHLOROPSIS GADITANA .......................................... 67
TABELLA 43 COMPOSIZIONE BIOCHIMICA FINALE DELL’ALGA NANNOCHLOROPSIS G. .................................................... 67
TABELLA 44 RISULTATI OTTENUTI PER IL CONFRONTO MODELLO, DATO SPERIMENTALE .................................................. 68
TABELLA 45 SCHEMA CINETICO DI DEVOLATILIZZAZIONE DELLA CELLULOSA (RANZI ET AL., 2017). ................................... 77
TABELLA 46 SCHEMA CINETICO DI DEVOLATILIZZAZIONE DEI TRIGLICERIDI (RANZI ET AL., 2017)...................................... 78
TABELLA 47 PARAMETRI PRINCIPALI E LORO EFFETTI SSUL DEGRADO DELLE PROTEINE .................................................... 80
TABELLA 48 PRODOTTI GASSOSI DELLA PIROLISI DELLE PROTEINE ............................................................................... 81
TABELLA 49 SCHEMA CINETICO DI DEVOLATILIZZAZIONE DELLA PROTEINA (RANZI ET AL., 2017). .................................... 82
TABELLA 50 SCHEMA CINETICO DI DEVOLATILIZZAZIONE PER LE TRE PROTEINE DI RIFERIMENTO ....................................... 84
TABELLA 51 ENERGIE DI DISSOCIAZIONE DEL LEGAME C-H (RANZI ET AL., 2017) ......................................................... 85
TABELLA 52 COMPOSIZIONE ALGHE PER IL CONFRONTO DEI RISULTATI ....................................................................... 89
TABELLA 53 COMPOSIZIONE ALGHE (RIZZO ET AL., 2013)....................................................................................... 89
TABELLA 54 SCHEMA CINETICO DI PIROLISI DELLE ALGHE ......................................................................................... 90
TABELLA 55 SPECIE COINVOLTE NELLO SCHEMA CINETICO PROPOSTO ......................................................................... 91
TABELLA 56 SPECIE SOLIDE E METAPLASTICHE ....................................................................................................... 91
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1
1. INTRODUZIONE
L’energia ricopre un ruolo di fondamentale importanza nella vita quotidiana e nello
sviluppo della società moderna.
Recentemente l’intensivo consumo delle fonti fossili, in particolar modo del petrolio,
ha sollevato il problema della loro disponibilità, aprendo la strada alla ricerca e allo
sviluppo di nuove fonti energetiche. Oltre alla loro esauribilità, un aspetto assai critico
del petrolio e delle fonti fossili è legato al cattivo impatto ambientale che esse
comportano. In particolare sono le maggior responsabili delle emissioni di gas serra
e di CO2. Si è dunque sviluppato nel tempo un grande interesse per fonti energetiche
nuove, rinnovabili ed a basso impatto ambientale (Brennan, L., & Owende, P., 2010).
Figura 1 Consumi energetici mondiali - Statistical Review of World Energy, June 2015
Secondo i dati pubblicati nella Statistical Review of World Energy (June 2015)
nell’anno 2014 il consumo mondiale di energia primaria è stato di circa 12,928 milioni
di tonnellate di petrolio equivalente. Di questo valore poco più dell’86% è dato da
fonti fossili con il 32,6% da petrolio, il 23,7% da gas naturale e il 30% da carbone. Il
contributo delle fonti rinnovabili è il restante 13,7%, in cui il nucleare conta circa il
4,4%, l’idroelettricità circa il 6,8% e le altre fonti rinnovabili il 2,5%.
0
2000
4000
6000
8000
10000
12000
14000
20042005200620072008200920102011201220132014
Mili
on
i to
nn
eq
uiv
pet
rolio
Anno
CONSUMI MONDIALI DI ENERGIAaltrerinnovabili
Idroelettrico
Nucleare
Carbone
Gas naturale
Petrolio
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2
Già da parecchi anni la ricerca scientifica e le politiche economiche si stanno
muovendo per far fronte al cosiddetto problema energetico. La Commissione Europea
ha stabilito un quadro normativo in materia di cambiamenti climatici ed energia che
attualmente si fonda su tre obbiettivi fondamentali quali la riduzione del 20% delle
emissioni di gas a effetto serra rispetto al livello del 1990, l’impiego del 20% di fonti
energetiche rinnovabili nel totale dell’energia utilizzata e il risparmio del 20% nel
consumo di energia primaria (Böhringer et al., 2009). Si stanno sviluppando e
incrementando così l’utilizzo delle energie rinnovabili e delle biomasse il cui impiego
è volto all’attuamento e al conseguimento dei tre obbiettivi e più in generale ad un
miglioramento delle condizioni dell’inquinamento atmosferico e ad una diminuzione
dello sfruttamento delle risorse esauribili. Anche se c’è ancora una grande
disproporzione tra combustibili fossili e rinnovabili, questi ultimi stanno dando
risultati promettenti e dunque gli investimenti in questa direzione sono più consistenti.
In particolare negli ultimi quattro anni c’è stato un aumento significativo nella
produzione di energia rinnovabile, +18,5% e nel suo utilizzo +12,1% fonti
idroelettriche, +88,6% altre fonti, mentre il trend del consumo di petrolio è aumentato
solo del 4%.
Figura 2 Produzione mondiale di biocombustibili - Statistical Review of World Energy
Lo sviluppo e la ricerca sulle energie rinnovabili è in continua espansione ed è
destinata ad aumentare sempre di più nel prossimo futuro (BP statistical review of
world energy, 2015).
0
10000
20000
30000
40000
50000
60000
70000
80000
2002 2004 2006 2008 2010 2012 2014 2016
Toe
10
3
Anno
Produzione di biocombustibili
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3
Le fonti rinnovabili, sia di materia sia di energia, sono tali da essere per caratteristiche
proprie o per l’intervento dell’uomo, rinnovabili nel tempo e quindi inesauribili.
Vengono considerate fonti energetiche rinnovabili l'irraggiamento solare, il vento,
le biomasse, le maree, le correnti marine in genere e i salti d'acqua.
Secondo la Direttiva Europea 2009/28/CE la biomassa è ‘la frazione biodegradabile
dei prodotti, rifiuti e residui di origine biologica provenienti dall’agricoltura
comprendente sostanze vegetali e animali, dalla silvicoltura e dalle industrie
connesse, comprese la pesca e l’acquacoltura, nonché la parte biodegradabile dei
rifiuti industriali e urbani’.
I biocombustibili di prima generazione che derivano dalla biomassa costituita
principalmente dalle colture agro-alimentari, dai semi oleaginosi e dalle piante da
frutto rappresentano un primo tentativo di risposta al problema energetico.
Il loro potenziale come combustibili rinnovabili è alto, ma i costi in termini di
sfruttamento dei terreni coltivati, deforestazione e competizione con l’agricoltura non
li rendono sostenibili. Di conseguenza sono stati sviluppati i biocombustibili di
seconda generazione: essi includono principalmente bio-etanolo e bio-diesel,
entrambi si basano su biomasse lignocellulosiche o amidacee che non competono con
la produzione alimentare (Dragone et al., 2010). Purtroppo la produzione di questi
biocombustibili richiede un’alta tecnologia e trattamenti specifici che impediscono a
questa tecnologia di sostituire le fonti fossili e avere uno sviluppo su ampia scala
(Brennan, L., & Owende, P., 2010).
Il recente avvento dei biocombustibili di terza generazione che si basano sulla
biomassa algale sembra essere molto promettente. I biocombustibili derivanti dalle
alghe potenzialmente possono essere un buon sostituto del petrolio, poiché presentano
un alto contenuto lipidico e richiedono un piccolo impiego di terreni per la loro
coltivazione e crescita (Brennan, L., & Owende, P., 2010).
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4
2. CLASSIFICAZIONE DELLE BIOMASSE E DEI BIOCOMBUSTIBILI
2.1. Biomasse vegetali
2.1.1. Biomassa lignocellulosica
I materiali lignocellulosici sono una potenziale fonte energetica rinnovabile.
Si tratta principalmente di rifiuti agricoli, residui forestali, piante e scarti legnosi.
Essi sono sostanzialmente composti da tre unità fondamentali: cellulosa,
emicellulosa e lignina. Tipicamente i valori di cellulosa per la biomassa
lignocellulosica sono tra il 40-50%, valori di emicellulosa tra il 20-30% e valori
di lignina tra il 10-25% (Anwar et al., 2014).
2.1.2. Biomassa algale
Le alghe possono essere organismi unicellulari, si parla di micro-alghe e
organismi pluricellulari, le cosiddette macro-alghe definite anche piante marine o
seaweed. Per analogia nella composizione e nel comportamento energetico si
associano alle alghe anche i cianobatteri e le diatomee.
Il loro avvento come biomasse ad uso energetico è molto recente ed ancora oggetto
di studio, conseguentemente si tratta di una tecnologia in via di sviluppo. In
un’ottica puramente descrittiva possiamo dire che i componenti principali delle
alghe sono proteine, carboidrati e lipidi (Chen et al., 2010).
Nei capitoli successivi verranno mostrate ed approfondite le potenzialità, le
caratteristiche e la natura di questa nuova biomassa.
2.2. Biomasse da rifiuti animali ed industriali
Si tratta principalmente di resti di ossa, tessuti e sterco animale, recentemente anche
i rifiuti solidi urbani (RSU) sono stati inseriti tra le biomasse sfruttabili. Tuttavia le
loro caratteristiche non ne hanno ancora permesso la diffusione su larga scala come
nuova fonte energetica.
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5
2.3. Classificazione dei biocombustibili
Vengono definiti biocombustibili tutti i combustibili solidi, liquidi o gassosi derivanti
da materia organica.
Generalmente come mostrato in Figura 3 vengono divisi in biocombustibili primari e
secondari: i biocombustibili primari come la legna da ardere, il cippato, i rifiuti
animali, i residui agronomici e forestali sono impiegati in forma non trasformata e
non processata, primariamente per produzione di calore e elettricità.
I biocombustibili secondari come il bio-diesel e il bio-etanolo, sono prodotti trattando
e trasformando la biomassa. Risultano idonei per l’impiego nei veicoli e in vari
processi industriali. Possono essere a loro volta classificati in tre gruppi: prima,
seconda e terza generazione di biocombustibili.
Figura 3 Classificazione dei biocombustibili (Dragone et. al., 2010).
2.3.1. Biocombustibili solidi
I biocombustibili solidi rappresentano la pxiù importante e sviluppata fonte
rinnovabile nel panorama europeo e italiano.
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6
Le motivazioni di tale successo sono riconducibili sostanzialmente a tre aspetti
caratteristici di questi biocombustibili:
- Elevata disponibilità
- Vantaggi ambientali
- Ampia diffusione nelle imprese
I principali biocombustibili solidi sono la legna da ardere, il cippato e il pellet.
Figura 4 Tipici biocombustibili solidi
2.3.2. Biocombustibili liquidi
Sono considerati e definiti biocombustibili liquidi:
- Olio vegetale puro
- Bio-diesel
- Bio-etanolo
- Bio-metanolo
- Bio-dimetiletere
- Bio-ETBE (etil-t-butiletere)
- Bio-MTBE (metil-t-butiletere)
- Biocombustibili sintetici
I biocombustibili di maggiore interesse che hanno trovato maggiore impiego e
sviluppo sono il bio-diesel e il bio-etanolo.
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7
Figura 5 Produzione mondiale di biocombustibili: bio-diesel e bio-etanolo - Statistical
Review of World Energy, June 2015
In Figura 5 sono riportati i trend di produzione negli ultimi dieci anni. Si può
notare subito che c’è una netta distinzione produttiva tra paesi europei e stati
americani. Il bio-diesel è maggiormente presente in Europa, mentre il bio-etanolo
ha maggiore sviluppo in America.
La direttiva 2009/28/CE al fine di creare una stabilità nel mercato e nelle imprese
ha posto come obiettivo al 2020 la sostituzione del 10% dei combustibili fossili
con biocombustibili nel settore dei trasporti.
Sono impiegati sostanzialmente come:
- Biocarburanti utilizzati per autotrazione
- Biocombustibili che alimentano cicli di potenza per produrre elettricità, calore
o entrambi (cogenerazione).
2.3.3. Biocombustibili gassosi
Il principale biocombustibile gassoso è rappresentato dal bio-gas. Esso è prodotto
mediante un trattamento biologico noto come digestione anaerobica. La sostanza
organica viene trasformata in assenza di ossigeno in una miscela gassosa
composta essenzialmente da metano ed anidride carbonica. La percentuale di
metano nel biogas varia dal 50 all’ 80%.
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8
Le materie prime maggiormente impiegate sono effluenti zootecnici, residui
dell’industria agro-alimentare, acque o fanghi reflui e altri materiali di scarto.
Gli impieghi del biogas sono principalmente:
- produzione di energia elettrica e/o termica, sia per autoconsumi sia per
distribuzione, tipicamente in impianti di cogenerazione.
- uso in motori a gas, previa opportuna purificazione.
Un altro prodotto gassoso di interesse è il bio-metano. Esso viene ricavato dal bio-
gas con un processo detto “upgrading” cioè di rimozione della CO2, associato ad
un trattamento di purificazione. Il gas è composto circa per il 95-98% da metano
ed è molto simile al gas naturale. Per questo può essere usato per la rete domestica
e per quella dei trasporti.
Terzo biocombustibile gassoso di grande impiego è il bio-syngas, il prodotto
intermedio della gassificazione delle biomasse. Contiene principalmente idrogeno
H2 e monossido di carbonio CO.
Può essere ottenuto da biomasse oleaginose, da char derivato da biomasse, da
syngas ottenuto tramite gassificazione e reforming o da steam gasification di
biomasse oleaginose.
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9
3. BIOMASSA ALGALE COME POTENZIALE BIOCOMBUSTIBILE
Le condizioni tali per cui una risorsa sia tecnicamente ed economicamente attuabile
come biocombustibile sono sostanzialmente:
- Sostenibilità economica, la biomassa deve essere competitiva o costare meno del
carburante petrolifero.
- Sostenibilità sociale, la biomassa non deve richiedere aumento dell’utilizzo dei
terreni agricoli impiegati nel campo alimentare.
- Sostenibilità ambientale, la biomassa dovrebbe consentire un miglioramento della
qualità dell’aria e richiedere consumi di acqua minimi.
Dunque un’analisi da considerare quando si studiano le potenzialità di una nuova
fonte energetica è la “life cycle analysis” (LCA). Si tratta di un metodo per valutare
l’impatto ambientale dei prodotti monitorando l’emissione dei gas serra, i bilanci
energetici netti ed altri paramenti come la richiesta di azoto e l’utilizzo del suolo
(Miller, S. A., 2010). Altri parametri da considerare nella valutazione della
sostenibilità di una biomassa sono l’impronta idrica o water footprint ossia una
indicazione del consumo d’acqua dolce e la resa in biocombustibile (Singh et al.,
2011).
Tabella 1 Parametri per la valutazione di una biomassa (Singh, et al., 2011), (Ullah, et al.,
2014).
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10
Osservando la Tabella 1 si può notare che le micro-alghe non solo richiedono aree
limitate per la crescita, ma hanno una maggiore resa rispetto alle piante e alle colture
oleaginose. Inoltre rispetto alle altre biomasse coltivate non necessitano di pesticidi o
altri agenti chimici che proteggano l’organismo.
Un aspetto che può essere critico per le specie coltivate in acqua dolce è legato al
consumo d’acqua, che risulta essere molto elevato. Una valida soluzione è stata
trovata utilizzando le acque reflue come fonte d’acqua e dei nutrienti (Bhatnagar et
al., 2011). I terreni utilizzati, i nutrienti necessari e in generale le metodologie di
coltivazione adottate per le alghe fanno sì che la produzione di questa biomassa non
entri in competizione con l’agricoltura e l’industria alimentare, non andando dunque
a modificare equilibri alimentari ed ecosistemi naturali.
Per quanto riguarda le peculiarità della biomassa nello specifico, quella algale si
distingue per il suo veloce tasso di crescita e per la facilità con cui la composizione
biochimica può essere controllata e modificata intervenendo sulle condizioni di
crescita. I principali fattori che influenzano la velocità di crescita, la produttività della
biomassa e la composizione della stessa sono riportati in Tabella 2.
Tabella 2 Parametri che influenzano crescita e produttività della biomassa algale (Dragone
et. al., 2010) (Demirbas A., Demirbas M. Faith., 2011) (Chen et al., 2010).
A titolo esemplificativo vengono riportati andamenti della crescita cellulare e
dell’accumulo lipidico al variare di alcuni di questi fattori.
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11
Figura 6 Effetti del trofismo sulla crescita della biomassa e sull’accumulo di lipidi (Cheirsilp,
B., Torpee, S., 2012)
Figura 7 Effetto dell’intensità della luce sulla crescita della biomassa e sull’accumulo dei
lipidi in due micro-alghe (Cheirsilp, B., Torpee, S., 2012)
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12
Figura 8 Effetto della concentrazione iniziale del substrato sulla crescita della biomassa e
sull’accumulo dei lipidi (Cheirsilp, B., Torpee, S., 2012)
Una caratteristica importante delle micro-alghe è il trofismo, esse infatti possono
essere organismi autotrofi, eterotrofi o mixotrofici. Le alghe autotrofe usano composti
inorganici come fonte di carbonio. Di queste si possono avere alghe fotoautotrofe, che
usano la luce come fonte di energia, cioè convertono la luce solare e la CO2 assorbita
dai cloroplasti in adenosinatrifosfato (ATP) e ossigeno, o chemioautotrofe che usano
l’ossidazione di composti inorganici per ricavare energia (Brennan, L., & Owende,
P., 2010). Le alghe fotoautotrofe contribuiscono così all’eliminazione della CO2, ma
hanno una limitata produttività a causa dei problemi legati alla disponibilità della luce
(Cheirsilp, B., Torpee, S., 2012).
Le alghe eterotrofe usano composti organici per la loro crescita: sono coltivate su un
substrato di carbonio organico come il glucosio in reattori miscelati o fermentatori.
Anche se il sistema utilizza più energia rispetto alla produzione fotosintetica perché
il ciclo del processo comprende la produzione iniziale di carbonio organico tramite la
fotosintesi, i costi rimangono bassi e si ha la possibilità di alterare i parametri di
crescita per ottimizzare la resa. Esistono anche alghe mixotropiche che assumono
nutrienti inorganici, rendendoli direttamente organici. In pratica la crescita cellulare
non dipende strettamente dalla fotosintesi perciò la luce solare non è un fattore
limitante di crescita ma al tempo stesso sia la luce sia i substrati di carbonio organico
possono supportare la crescita (Chen et al., 2010).
Un altro parametro particolarmente incidente e caratterizzante la biomassa algale è
l’esposizione alla luce. E’ un fattore molto influente perché fornisce l’energia per il
metabolismo, tuttavia bisogna valutare bene l’intensità e la durata dell’esposizione
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13
perché se la luce fornita risulta eccessiva, essa può portare alla formazione di specie
ossigenate reattive dannose (Sforza et al., 2012). A tal fine è importante introdurre e
definire il concetto di efficienza fotosintetica, un fattore determinate per le alghe
autotrofe, per le eterotrofe invece si guarda all’impiego di zuccheri. L’efficienza
fotosintetica, PE o PCE, è l’energia ottenuta dal processo di conversione rispetto alla
luce solare disponibile fornita per il processo di conversione. (Brennan, L., &
Owende, P., 2010). Nel caso delle alghe è la frazione di energia luminosa convertita
in energia chimica durante la fotosintesi. Per le alghe questo rapporto è un valore più
alto rispetto a quello delle altre biomasse terrestri ed in condizioni ottimali arriva fino
a valori del 20%. Per incrementare e ottimizzare la produttività si cerca di operare in
condizioni che massimizzino il valore di PE. Si ricerca la giusta alternanza di zone di
luce e zone di buio, si impiegano diverse tipologie di reattore e si calcolano le
inclinazioni ottimali delle radiazioni e della densità di flusso. (Janssen et al., 2003).
L’aspetto più interessante sulla composizione delle alghe è però, come riportato in
Tabella 3, l’alto contenuto lipidico, ossia d’olio (Brennan, L., & Owende, P., 2010).
Tabella 3 Contenuto lipidico per biomassa algale (Alam et al., 2012)
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Per quanto riguarda la presenza lipidica, è fondamentale analizzare come si può
aumentarne la concentrazione ottimizzando i fattori determinanti di crescita, come per
esempio il controllo del livello di azoto, l’intensità della luce, la temperatura, la
salinità e la concentrazione di CO2. Tuttavia incrementando l’accumulo di lipidi non
è scontato ottenere un aumento della produttività lipidica poiché produttività della
biomassa e accumulo di lipidi non sono necessariamente correlati. L’accumulo di
lipidi si riferisce ad un aumento della concentrazione lipidica all’interno della cellula
algale senza considerare la produzione globale di biomassa. La produttività lipidica
tiene conto sia della concentrazione di lipidi all’interno della cellula sia della
biomassa prodotta da queste cellule ed è dunque un indicatore più utile dei potenziali
costi di produzione del biocombustibile liquido. Il metodo più efficace per
implementare l’accumulo di lipidi nelle alghe è operare in limitazione di azoto
(Brennan, L., & Owende, P., 2010).
Un altro aspetto da considerare riguarda l’impatto ambientale dell’intera filiera
produttiva della biomassa, anche qui le alghe si distinguono positivamente.
Esse hanno infatti un’ottima influenza sulla fissazione della CO2, indicativamente 1
kg in peso secco di biomassa usa circa 1,83 kg di CO2, Inoltre i nutrienti impiegati
per la crescita, in particolare azoto e fosforo possono essere presi da acque reflue,
dando un grande contributo alla loro chiarificazione (Dragone et. all., 2010).
Un’altra potenzialità della biomassa algale che contribuisce attivamente all’obbiettivo
di implementare le fonti rinnovabili e le energie pulite è la produzione fotobiologica
di idrogeno che può così essere impiegato come vettore energetico.
Infine per le alghe è molto importante considerare anche i co-prodotti spesso di alto
valore estraibili sfruttando l’intera alga. La biomassa algale ancora una volta si
distingue per la varietà e vastità di prodotti che può fornire.
Oltre all’uso energetico, gli altri campi di applicazione dei prodotti della biomassa
algale sono principalmente quello alimentare sia umano che animale, quello
farmaceutico e della cosmesi. In Tabella 4 viene riportato il valore ricavabile dai
prodotti da 10 kg di biomassa algale.
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Tabella 4 Valore di 10Kg di biomassa algale (Wijffels, et al., 2010)
Risulta dunque estremamente utile per rendere sostenibile a livello economico questa
nuova fonte energetica sfruttare la totalità della biomassa algale, ricorrendo al
cosiddetto “biorefinery approach” (Tibbetts et al., 2015).
Nella bio-raffineria si integrano i processi e le apparecchiature di conversione della
biomassa per la produzione ottimizzata dei prodotti d’interesse. Nel caso delle alghe
è possibile sfruttare tutti i processi di conversione della biomassa a dare prodotti di
interesse commerciale.
Figura 9 Schema di una bioraffineria per biomassa algale (Chen et al., 2010)
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In Tabella 5 vengono riportate le caratteristiche che spiegano il promettente ruolo delle
alghe come fonte energetica alternativa alle fonti fossili e ai biocombustibili di prima
e seconda generazione.
Tabella 5 Potenzialità della biomassa algale (Demirbas A., Demirbas M. Faith., 2011)
Nonostante questi dati positivi ci sono ancora numerosi aspetti su cui lavorare per
rendere questa tecnologia economicamente sostenibile.
In primo luogo come si può osservare in Tabella 1 il dispendio energetico, dovuto
principalmente ai processi di “up-stream”, è molto elevato e dunque risulta ancora
difficile per le specie impiegate ben bilanciare la produzione di biocombustibile con
l’estrazione dei coprodotti. Inoltre bisogna cercare di implementare ancora di più
l’efficienza fotosintetica, sviluppare tecniche di coltivazione per singole specie
riducendo l’evaporazione e le perdite di CO2. Infine ci sono pochi impianti in
operazione e non si hanno dati per impianti in larga scala.
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4. TASSONOMIA E COMPOSIZIONE DELLE ALGHE
Le alghe sono macro e micro organismi che si trovano sostanzialmente in tutti gli
ambienti marini, nei laghi, nelle correnti e nelle zone umide in cui è presente la luce.
Sono occasionalmente presenti anche in alcuni terreni. Sono state maggiormente
analizzate e classificate le specie marine e quelle d’acqua dolce. Queste alghe sono
state suddivise gruppi in base a caratteristiche strutturali come la composizione della
membrana cellulare, il contenuto di pigmenti e la presenza di molecole che
immagazzinano energia. La prima distinzione di cui tenere conto è quella tra alghe
macro e micro: le prime sono elementi multicellulari ed hanno una struttura simile a
quella delle piante, le micro-alghe invece sono organismi unicellulari.
Tuttavia bisogna considerare che le alghe, ad eccezione sostanzialmente di alcune
alghe verdi non appartengono al regno delle piante, infatti esse si distinguono per la
presenza del tallo al posto del cormo, tipico delle piante e non hanno foglie e tessuti.
Le macro-alghe sono suddivise in base al loro aspetto esteriore in alghe verdi, rosse e
brune, comunemente note con i termini inglesi “green algae”, “red algae”, “brown
algae”. Le micro-alghe sono principalmente organismi eucarioti, a cui si aggiungono
organismi procarioti come i cianobatteri in realtà appartenenti al regno dei batteri, ma
assimilabili alle alghe perché molto simili. Le micro-alghe possono essere classificate
in base alle loro caratteristiche strutturali e di conformazione, come la struttura
cellulare o i diversi pigmenti presenti. Data la molteplicità e la varietà delle specie
esistenti, alcune delle quali con tassonomia incerta o ancora in fase di studio, la
classificazione delle micro-alghe risulta molto complessa e ancora oggetto di
dibattimento.
La suddivisione più frequente riportata in Tabella 6 identifica dieci gruppi denominati
“phyla”, ai quali appartengono una o più classi di alghe.
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Tabella 6 Classificazione comune delle micro-alghe
In alcuni studi compare il phylum heterokontophyta che raggruppa le classi delle
phaeophyceae (alghe brune), bacillariophyceae (diatomee), chrysophyceae (alghe
giallo - brune) eustigmatophyceae (alghe giallo - oro) e xantophyceae (alghe giallo -
verdi).
Sono stati individuati inoltre tre gruppi che contengono la maggior parte delle specie:
a) Chlorophyta, circa 6500-20000 specie
b) Bacilliariophyta circa 5000-12000 specie
c) Cyanobacteria, circa 1200-5000 specie
La classificazione più funzionale che sarà impiegata in questa trattazione risulta però
quella che individua il gruppo delle alghe verdi, rosse, brune, azzurre, giallo - oro e
le diatomee.
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Tabella 7 Classificazione delle alghe impiegata in questo lavoro
Una prima analisi da effettuare per caratterizzare più dettagliatamente la
composizione delle alghe è l’analisi elementare. La composizione elementare è stata
esaminata tenendo conto della distinzione tra macro e micro alghe: infatti esse
presentano una notevole differenza nella quantità di azoto presente.
Esaminando i dati in Tabella 8 ricavati da dati presenti in letteratura e rielaborati, si
può osservare che le micro-alghe hanno leggermente meno carbonio (C), idrogeno
(H), ossigeno (O) delle biomasse terresti e più alti valori di azoto (N) e zolfo (S).
Tabella 8 Composizione elementare della biomassa algale - microalghe
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La Tabella 9 riporta invece i dati raccolti per le macro-alghe.
Tabella 9 Composizione elementare biomassa algale - macroalghe
Anche per le macro-alghe si osserva un più basso tenore di carbonio (C), ma il dato
più rilevante nel confronto con le alghe unicellulari è la quantità di azoto (N) molto
più bassa e quella di ossigeno (O), leggermente più alta (Ross et al., 2008).
Nonostante queste differenze l’intera biomassa algale, comprendente sia macro che
micro alghe può essere collocata in una range in linea con le altre biomasse.
Figura 10 Composizione elementare biomassa algale e altre biomasse
2
4
6
8
10
12
14
15 35 55 75
% ID
RO
GEN
O
% CARBONIO
Distribuzione in termini di C e H delle alghe
azzurre
brune
diatomee
verdi macro
verdi micro
rosse macro
rosse micro
giallo-oro
altre biomasse
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Figura 11 Diagramma di Van Krevelen per biomassa algale e altre biomasse
Altre informazioni utili per la descrizione e caratterizzazione della biomassa algale
possono essere rintracciate dall’analisi tecnica o immediata, nota con il termine
inglese proximate analysis.
In Tabella 10 viene riportato il contenuto di umidità, ceneri, carbonio fisso e
componente volatile. Anche in questa situazione le alghe mostrano valori in linea con
le altre biomasse impiegate in campo energetico. Il livello di umidità residuo è
accettabile, tuttavia bisogna tenere conto del fatto che lo slurry algale raccolto prima
di essere trattato contiene livelli d’acqua molto alti, fino all’80-90% in peso. Questo
rimane un aspetto molto critico per la sostenibilità ed efficacia della biomassa algale
come biocombustibile.
0,05
0,10
0,15
0,20
0,25
0,30
0 1 2 3
H/C
O/C
Diagramma di Van Krevelenazzurre
brune
diatomee
verdi macro
verdi micro
rosse micro
giallo-oro
rosse macro
altre biomasse
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Tabella 10 Proximate Analysis
Si noti che le alghe verdi sono quelle che mostrano un maggior comportamento
volatile e una minore quantità di ceneri. Un altro dato emergente da questa analisi che
differenzia la biomassa algale è l’alto contenuto di ceneri, specialmente nelle alghe
brune e rosse. Questo è dovuto alla maggiore quantità di metalli presente nelle
struttura cellulare dell’alga, in particolare le alghe brune hanno una cospicua presenza
di silice, (Si). I composti metallici maggiormente presenti sono: Silice (Si), Sodio
(Na), Potassio (K), Calcio (Ca), questi ultimi tre in forma di carbonati (Ross. et al.,
2008).
Tabella 11 Composti metallici nelle alghe valori medi in ppm.
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Un’unica caratterizzazione della biomassa algale è molto difficoltosa da delineare a
causa della molteplicità delle specie esistenti, alcune molto difficili da identificare
con la tecnologia e metodologia tipicamente impiegata nei laboratori sperimentali. Un
altro aspetto critico per la caratterizzazione è legato all’incertezza del dato
sperimentale dovuta alla variabilità dei risultati ottenuti usando differenti metodi
analitici. Tuttavia è possibile mostrare che le alghe sono principalmente costituite,
seppur in percentuali molto variabili, da proteine, carboidrati e lipidi (Laurens et al.,
2012). Una prima differenza con le biomasse terrestri è dunque data dal fatto che non
c’è la stessa struttura ligno-cellulosica.
Attualmente non è presente un database che offra ampie informazioni sulla
composizione comodamente accessibile come per le biomasse ligno-cellulosiche. In
questo lavoro si è cercato di risalire ad una composizione specifica attraverso lo studio
di circa 170 campioni trattati in letteratura. I risultati ottenuti sono riportati in Tabella
12 in forma percentuale.
Tabella 12 Composizione biochimica
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4.1. I lipidi
I lipidi sono lunghe catene idrocarburiche con un gruppo carbossilico come
terminazione, a formare acidi grassi o loro derivati. I lipidi che svolgono una funzione
strutturale sono principalmente i fosfolipidi e i licolipidi i quali costituiscono la
membrana cellulare. I lipidi invece che svolgono una funzione energetica, sono
principalmente i trigliceridi. E’ stato precedentemente detto che il contenuto lipidico
è presente in percentuale che può variare molto da specie a specie da meno del 5%
nelle macro-alghe a oltre il 50% in alcune micro-alghe, tuttavia è stato possibile
identificare degli acidi grassi presenti ricorrentemente con alte percentuali. Per la
maggior parte dei campioni studiati, gli acidi grassi presenti hanno tra i 14 e 20 atomi
di carbonio e sono riportati in Tabella 13.
Tabella 13 Principali acidi grassi presenti nelle alghe
In particolare come riportato in Tabella 14 per tutte le specie considerate l’acido
palmitico è quello presente in percentuali maggiori, insieme all’acido oleico, all’acido
linoleico e all’acido eicosapentaenoico (Zhukova, N. V., & Aizdaicher, N. A., 1995).
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Tabella 14 Range di frequenza dei principali acidi grassi delle alghe
E’ interessante e utile considerare anche la ripartizione degli acidi grassi tra acidi
grassi saturi, monoinsaturi e polinsaturi.
Tabella 15 Range di ripartizione degli acidi grassi
Si può notare una leggera differenza tra micro e macro alghe verdi: le prime mostrano
valori percentuali di acidi grassi saturi, mono-insaturi e poli-insaturi molto simili tra
loro, mentre le macro alghe hanno elevate percentuali di acidi grassi saturi, SFAs e
percentuali ancora più alte di acidi grassi polinsaturi, PUFAs. Le alghe brune
mostrano percentuali di SFAs e PUFAs molto simili a quelle delle macroalghe verdi.
La componente monoinsatura ricopre meno del 10% del totale degli acidi grassi.
In queste specie si ha una significativa presenza di C20 in particolare acido
arachidonico, C20:4 (C20H32O2) e acido eicosapentaenoico, C20:5 (C20H30O2).
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Le alghe rosse mostrano un’alta percentuale di SFAs, e più basse percentuali di
PUFA, tuttavia con numerose eccezioni (Kumari et al., 2013). In conclusione, seppur
alcune specie abbiano un basso contenuto lipidico, le alghe hanno relativamente alte
percentuali di acidi grassi polinsaturi essenziali, n-6 e n-3.
La grande presenza di acidi grassi insaturi prevede un processo di idrogenazione della
biomassa algale per poterla sfruttare meglio come biocombustibile.
4.2. Le proteine
Anche le proteine hanno sia una funzione strutturale, sono l’impalcatura sulla quale
si assemblano le molecole di clorofilla, sia una funzione metabolica in quanto essendo
enzimi facilitano la crescita cellulare. Non sono presenti informazioni dirette sul tipo
di proteine presenti e come è già stato detto spesso le percentuali riportate in
letteratura non sono realistiche a causa dell’inaffidabilità delle misurazioni
sperimentali. Sono invece numerosi gli studi che riportano dati sulla frequenza di
distribuzione degli amminoacidi nella biomassa algale. E’ stato dunque possibile
caratterizzare il contenuto proteico sulla base degli amminoacidi presenti. In Figura
12 sono riportati formula e nome degli amminoacidi esistenti in natura.
Figura 12 Amminoacidi esistenti in natura
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27
Tabella 16 Valori di Ammino Acidi nelle alghe
Tabella 17 Frequenza media amminoacidi nelle alghe
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Osservando i risultati presenti in Tabella 16 e in Tabella 17 si può affermare che le
componenti dei singoli amminoacidi per le varie specie sono molto simili e dunque si
può assumere che le specie abbiano uguale composizione e considerarle come una
sola. Analizzando i dati forniti in letteratura inoltre si nota che in tutte le specie,
indipendentemente dalla percentuale di proteine presenti, è preponderante la presenza
dell’acido glutammico, C5H9NO4, seguita dall’acido aspartico, C4H7NO4 e in alcuni
casi è rilevante anche la presenza di leucina, C6H13NO2 (Boyd, C. E., 1973).
Tuttavia ogni cellula presente nelle alghe produce migliaia di proteine diverse ognuna
delle quali con una differente composizione di amminoacidi, per cui trovare la
composizione di un’unica proteina sarebbe una procedura sbagliata. Dunque ai fini di
caratterizzare la biomassa algale e identificare delle proteine di riferimento, gli
amminoacidi sono stati raggruppati in gruppi. Questa semplificazione è possibile
perché è sperimentato che amminoacidi appartenenti allo stesso gruppo hanno un
comportamento di devolatilizzazione simile. I gruppi individuati sono sette e sono
così composti:
1) Gruppo degli alifatici, composto da alanina, glicina, isoleucina, leucina e valina
2) Gruppo degli acidi, composto da acido aspartico e acido glutammico. A causa
della mancanza di informazioni, aspargina e glutammina sono state considerate
insieme rispettivamente ad acido aspartico e acido glutammico.
3) Gruppo delle basi, composto da arginina, istidina e lisina.
4) Gruppo degli aromatici, composto da fenilanina, tirosina e triptofano.
5) Gruppo degli alcoli, composto da serina e treonina.
6) Gruppo dei ciclici, composto da prolina.
7) Gruppo dei contenenti zolfo, composto da cisteina e metionina.
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Tabella 18 Raggruppamento degli ammino acidi
Come si osserva in Tabella 18 il gruppo alifatico e ammidico insieme costituiscono
oltre il 50% degli amminoacidi, inoltre i valori percentuali riportati sono confrontabili
e paragonabili a quelli riscontrati nelle biomasse ligno-cellulosiche e delle piante.
Nel caratterizzare le proteine presenti nelle alghe è importante ricordare e notare che
non tutto l’azoto presente nella biomassa algale è contenuto nelle proteine: ci sono
altri costituenti delle alghe che contengono azoto, principalmente composti inorganici
NO3, NO2-, NH3
+ e NH4+ che costituiscono dal 6,4% fino al 41,8% dell’azoto totale
presente, acidi nucleici che ne ricoprono dallo 0,3 al 12,3% ed infine le clorofille e
carotenoidi che con lo 0,1-3% sono il contributo minore di azoto non proteico
(Lourenço et al., 2004). In generale e con buona approssimazione si può ricondurre
alle proteine il 70-90% dell’azoto totale presente nelle alghe. Tuttavia questi valori
incontrano numerose eccezioni ed è quindi difficile determinare un unico e
standardizzato valore NTP, detto N-to protein factor che permette di stabilire la
quantità percentuale di proteine conoscendo il valore dell’azoto presente nell’alga,
senza dare luogo ad imprecisioni nella stima della percentuale di proteine presenti
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(Templeton, David W., Laurens, Lieve ML., 2015). Vari studi mostrano che è
preferibile abbassare il tradizionale valore di 6,25 usato per le biomasse vegetali, a
4,5 (Lourenço et al., 2002). Un altro dato da considerare, nella determinazione e
valutazione dell’N-Prot è la, seppur leggera, diversa frequenza di distribuzione degli
amminoacidi nei vari campioni studiati. Per esempio le alghe che hanno maggiori
percentuali di amminoacidi ad alta percentuale di azoto come l’arginina, tendono ad
avere un N-Prot più basso.
4.3. I carboidrati
I carboidrati sono i principali prodotti della fotosintesi e del metabolismo di fissazione
del carbonio. L’interesse per questa categoria nasce dal fatto che l’elevata quantità di
carboidrati può essere positivamente sfruttata come fonte di carbonio per la
fermentazione. I carboidrati sono presenti nella membrana cellulare dell’alga nella
forma di cellulosa e polisaccaridi solubili, e si accumulano nei plastidi principalmente
sotto forma di amido. A differenza delle altre biomasse, in particolare delle
lignocellulosiche, si nota la quasi totale assenza di lignina (Chen et al., 2013).
Un’analisi più dettagliata mostra che sono i polisaccaridi la forma di zuccheri
maggiormente presente nella biomassa algale. Tuttavia risulta difficile individuare
un'unica specie predominante, poiché la composizione e la percentuale di zuccheri
varia molto da specie a specie in quanto sono strettamente dipendenti dalla struttura
e dalle caratteristiche delle membrana cellulare di ogni alga.
Le alghe verdi hanno una membrana cellulare costituita primariamente da cellulosa,
emicellulosa e pectina. Lo zucchero più presente è il glucosio. Esse producono
sostanzialmente amido, costituito da amilosio e amilopectina.
Le membrane cellulari delle alghe brune sono costituite principalmente da silice con
piccole quantità di cellulosa. La presenza delle scaglie di silice comporta un elevato
contenuto di ceneri ed è correlata alla presenza dei carboidrati a base di mannosio.
Per quanto riguarda la caratterizzazione degli zuccheri delle alghe brune, essi sono
principalmente mannitolo e acido alginico e glucani.
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I cianobatteri, (blue-green microalgae) hanno una membrana cellulare composta
prevalentemente da lipopolisaccaridi e peptidoglicano. Anche per questa categoria si
può fare riferimento al glucosio come zucchero principale.
Le alghe rosse hanno la membrana cellulare ricca di agar, carragenina e cellulosa.
Esse inoltre si distinguono per la produzione di una molecola simile all’amilopectina,
ma più ramificata, denominata floridean starch. Gli zuccheri maggiormente presenti
sono dunque glucosio e galattosio (Dawczynski et al., 2007).
In Tabella 19 sono riportati mono e poli saccaridi più presenti nella biomassa algale.
Tabella 19 Principali zuccheri
4.4. Gli acidi nucleici
Gli acidi nucleici sono polimeri lineari dei nucleotidi i quali sono formati da tre unità
specifiche: una base azotata, uno zucchero pentoso il ribosio o il deossiribosio e un
gruppo fosfato. Le basi azotate sono adenina, citosina, guanina, timina e uracile e sono
attaccate allo zucchero tramite un legame N-glicosidico. Il gruppo fosfato invece si
attacca allo zucchero tramite un legame fosfodiestereo, formando il polimero. In
Figura 13 sono mostrate le cinque possibili conformazioni dei nucleotidi.
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Figura 13 Nucleotidi presenti nelle alghe
Per semplicità, ma mantenendo comunque un modello fedele alla realtà è possibile
assumere che i cinque diversi nucleotidi siano presenti con la stessa frequenza, così
da poter definire un'unica specie, che potrebbe rappresentare l’acido nucleico di
riferimento, costituita dai cinque nucleotidi ognuno presente al 20% in rapporto
molare. In Tabella 20, Tabella 21, Tabella 22 sono riportati gli elementi costituenti gli
acidi nucleici, le basi azotate, gli zuccheri e il gruppo fosfato.
Tabella 20 Composizione delle basi azotate
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Tabella 21 Composizione degli zuccheri negli acidi nucleici
Tabella 22 Composizione del gruppo fosfato
In Tabella 23 vengono riportati i cinque diversi nucleotidi, formati unendo la base
azotata con lo zucchero e sottraendo due molecole d’acqua.
Tabella 23 Composizione dei nucleotidi
Aggiungendo ai nucleoidi il gruppo fosfato e sottraendo un'altra molecola d’acqua si
ottengono come riportato in Tabella 24 i vari acidi nucleici.
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Tabella 24 Composizione degli acidi nucleici
L’intento iniziale di definire un’unica specie di riferimento anche per gli acidi nucleici
come combinazione degli acidi nucleici precedentemente individuati non ha avuto
sviluppo poiché nel corso del lavoro di caratterizzazione e creazione del modello, il
ruolo degli acidi nucleici è risultato essere trascurabile e dunque per semplicità non
verrà considerata nel modello di caratterizzazione.
4.5. I pigmenti
I pigmenti presenti nelle alghe sono principalmente clorofille e carotenoidi.
La clorofilla è una clorina, ossia una molecola con una struttura ad anello avente al
centro un atomo di magnesio. Le clorofille sono indicate con diverse lettere
dell’alfabeto a seconda della diversa struttura che la caratterizza. Nelle alghe sono
presenti la clorofilla a, la clorofilla b e la clorofilla c.
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Figura 14 Struttura delle clorofille presenti nelle alghe
I carotenoidi sono a loro volta divisi in due classi, i caroteni, molecole senza ossigeno,
e le xantofille molecole ossigenate. I principali caroteni sono l’α e il β carotene,
mentre le xantofille più importanti sono luteina, zeaxantina e fucoxantina.
Figura 15 Principali caroteni e xantofille nelle alghe
I carotenoidi hanno molteplici funzioni tra cui quella di essere stabilizzatori di
membrana, avere potere antiossidante e raccogliere la luce (Guaratini et al., 2009).
I pigmenti sono presenti in percentuali trascurabili rispetto agli altri composti
precedentemente analizzati, quindi non verrà ricercata una specie di riferimento al
fine della caratterizzazione. Tuttavia l’altro valore commerciale di queste molecole le
rende di grande importanza.
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5. SISTEMI DI COLTIVAZIONE DELLE ALGHE
Attualmente l’unica produzione di biomassa tecnicamente ed economicamente
realizzabile è quella legata alle alghe fotoautotrofe. Nello sviluppare il processo
produttivo è fondamentale considerare due aspetti, l’impatto dell’efficienza
fotosintetica e la produttività lipidica. In questo modo è possibile determinare la
massima quantità di biomassa ottenibile da una certa area o coltura algale e valutare
di conseguenza la miglior tecnica di produzione. La coltivazione delle alghe necessita
di alcuni elementi fondamentali e caratteristici come la luce, l’acqua l’anidride
carbonica, i nutrienti quali l’azoto, il fosforo e altri elementi come silice e ferro.
Inoltre è importante che le coltivazioni abbiano la giusta quantità di ossigeno, anidride
carbonica, una corretta intensità luminosa e un giusto valore di pH. I fattori che
influenzano la crescita si dividono in:
- abiotici (luce, temperatura, concentrazione dei nutrienti, ossigeno, anidride
carbonica, pH, salinità, presenza di sostanze chimiche tossiche)
- biotici (patogeni come batteri, funghi e virus, competizione con altre alghe)
- operativi (profondità, frequenza della raccolta, aggiunta di bicarbonato)
Da un punto di vista commerciale i sistemi devono avere alta produttività volumetrica,
alta produttività per area, bassi costi di investimento e mantenimento, facilità di
realizzazione e controllo, e alta affidabilità. Sebbene la coltivazione delle micro-alghe
possa avvenire anche in acque naturali, al fine di ottimizzare la produttività e la qualità
si preferiscono ambienti controllati. Sono stati sviluppati dunque sistemi all’aria
aperta come le vasche e sistemi chiusi, i fotobioreattori. Con questi sistemi i tempi di
crescita, in condizioni favorevoli, sono assai rapidi, infatti in ventiquattro ore la
percentuale di micro-alghe raddoppia.
La coltivazione delle macro-alghe invece avviene principalmente in ambienti naturali
come oceani, mari e laghi.
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5.1. Sistemi all’aria aperta
I classici sistemi aperti sono i laghi e gli stagni naturali, le vasche “raceway” ossia
sistemi a flusso e le vasche circolari.
Figura 16 Differenti configurazioni di sistemi aperti, (Chen et al., 2010).
Sono molto diffusi poiché, come si può intuire, sono più facili e meno costosi da
costruire ed hanno una maggiore capacità produttiva. Inoltre possono utilizzare
direttamente la luce solare e procurarsi i nutrienti dalle acque di deflusso dei terreni
vicini oppure incanalando l’acqua di impianti di depurazione o di trattamento acque
rendendo così questo sistema di crescita e produzione della biomassa il più economico
(Chen et al., 2010). Anche se sono stati i sistemi più impiegati, diverse criticità tra cui
la grande dipendenza dalle condizioni climatiche che influisce e rende difficile il
controllo della temperatura, dell’evaporazione dell’acqua e dell’illuminazione, la
presenza contaminante di altri microrganismi eterotrofi, il basso consumo di CO2 e la
bassa produttività ne hanno ristretto la produzione commerciale. I sistemi aperti
maggiormente diffusi sono le cosiddette vasche artificiali raceway, costituite da un
anello chiuso con canali di ricircolo ovali, generalmente profonde tra 0,1 e 0,5 metri
(Harun et al., 2010).
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Tabella 25 Produttività sistemi all'aria aperta, (Chen et al., 2010).
In Tabella 25 sono riportati alcune esempi tipici di sistemi all’aperto.
5.2. Sistemi chiusi, fotobioreattori
I fotobioreattori, PBR’s, sono caratterizzati dalla presenza di strumenti che
controllano e regolano la maggior parte dei parametri biotecnologici più importanti.
Hanno dunque un basso rischio di contaminazioni, nessuna perdita di CO2 e pieno
controllo delle condizioni di crescita. Anche questi sistemi possono prendere la luce
direttamente dal sole attraverso l’impiego di membrane trasparenti (Harun et al.,
2010). Sono stati sviluppati diversi design di reattore, i più diffusi sono:
- Fotobioreattori tubolari
- Fotobioreattori piatti
- Fotobioreattori a colonna
Figura 17 Esempi di fotobioreattori
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Tabella 26 Produttività sistemi chiusi, (Chen et al., 2010)
In Tabella 26 sono riportati alcuni tipici esempi di fotobioreattori, mentre in Tabella
27 si evidenziano vantaggi e svantaggi dei due sistemi.
Tabella 27 Confronto sistemi aperti – chiusi (Dragone et al., 2010).
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5.3. Sistemi ibridi
Recentemente sono stati provati sistemi che sfruttano caratteristiche sia dei sistemi
aperti, sia di quelli chiusi. In Figura 18 sono riportati due esempi.
Figura 18 Sistemi ibridi di coltivazione delle micro-alghe
Nel primo caso si tratta di un fotobioreattore ellittico illuminato artificialmente con
un sistema di luci ruotanti che permette l’agitazione della biomassa algale. Il secondo
sistema è costituito da un bioreattore chiuso che però sfrutta le caratteristiche di setup
a basso costo dei sistemi aperti (Chen et al., 2010).
5.4. Sistemi di coltivazione delle macro-alghe
Le macro-alghe sono coltivate principalmente in mare aperto o in grandi laghi. Si
utilizzano piattaforme con un sistema di funi ancorate sul fondo, spesso con l’ausilio
di un semplice sistema di pompaggio, che appunto permetta il prelievo dell’acqua
ricca di nutrienti tipicamente situata in profondità e il suo riversamento nella zona
eufotica, dove c’è abbastanza luce solare da permettere la fotosintesi e la produzione
di biomassa. Le condizioni di crescita sono perlopiù incontrollabili, inoltre moti
ondosi e maree possono danneggiare il sistema di coltivazione. Un altro aspetto molto
critico per la crescita della biomassa è legato alla presenza di patogeni e specie
contaminanti indesiderate.
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Figura 19 Coltivazione delle macro-alghe
5.5. Metodi di raccolta, disidratazione e essiccamento
Una volta concluso il ciclo di crescita della biomassa algale essa deve essere
sottoposta a delle operazioni che la rendano impiegabile nei processi di
trasformazione.
La prima operazione interessa solamente le micro-alghe ed è la raccolta della
biomassa che si presenta in forma di piccolissime particelle dell’ordine di grandezza
di qualche micron, sospese nel mezzo di crescita. Questa operazione seppur non
eccessivamente complessa risulta alquanto costosa, dunque sono stati proposti diversi
metodi sia fisici che chimici per cercare di renderla sempre più efficiente (Chen et al.,
2010). Generalmente si ha una prima separazione della biomassa dalla sospensione
tramite flocculazione o sedimentazione, successivamente si ha la concentrazione della
pasta algale, denominata “slurry”. Per la concentrazione dello slurry si usano filtri a
membrana o centrifughe, entrambe sono strumentazioni in grado sia di raccogliere la
biomassa algale che di rimuovere gran parte dell’acqua (Brennan, L., & Owende, P.,
2010).
La seconda operazione da effettuare sulla biomassa algale è infatti la deidratazione,
cioè la rimozione dell’acqua presente. Essa risulta una delle operazioni
energeticamente più importante ed onerosa, arrivando ad interessare oltre il 30% dei
costi totali di produzione (Dragone et al., 2010). In Tabella 28 sono riportati alcuni
dei sistemi di essiccamento utilizzati.
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Tabella 28 Metodi di essiccamento biomassa algale (Chen et al., 2010)
Nonostante siano state provate varie soluzioni, questa operazione rimane una delle
più costose e critica per la sostenibilità delle alghe come biocombustibili.
Infine si ha la rottura delle cellule mediante frantumazione, omogeneizzazione o
ultrasuoni oppure mediante solventi organici, con reazioni acido-basiche o
enzimatiche volta ad estrarre l’olio o i composti d’interesse.
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6. PROCESSI DI CONVERSIONE DELLE BIOMASSE
6.1. Conversione termica
I processi termochimici comprendono combustione, volatilizzazione e degradazione
termica. A seconda della quantità di aria impiegata si parla di combustione, pirolisi,
carbonizzazione, gasificazione o liquefazione. I principali processi, con i vettori
energetici intermedi e i prodotti energetici finali sono riportati in Figura 20
Figura 20 Processi di conversione termochimica (McKendry, P. 2002).
6.1.1. Pirolisi
La pirolisi è un processo di decomposizione termochimica che prevede
l’applicazione di calore tra i 350 e 1300°C e l’assenza di elementi ossidanti o al
massimo pochissimi tenori di O2. Non è solo dunque una tecnologia indipendente
ma anche il primo step del processo di combustione e di quello di gassificazione.
Il processo di pirolisi è molto complesso e consiste di simultanee e successive
reazioni in presenza di calore. Durante la pirolisi le lunghe catene di carbonio,
idrogeno e ossigeno costituenti la biomassa si spezzano in molecole più corte sotto
forma di gas, vapori condensabili oli, catrami e carbone solido, denominato char.
I prodotti della pirolisi sono sostanzialmente tre e dipendono dalla temperatura
del processo. Maggiore è la temperatura operativa, maggiore sarà la presenza della
frazione gassosa per effetto del prevalere delle reazioni di devolatilizzazione:
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- Frazione gassosa a basso-medio potere calorifico, contenente CO, CO2,
idrocarburi come CH4, C2H4, C3H6, acqua e idrogeno.
- Frazione liquida oleosa, acqua e composti organici a basso peso molecolare.
- Frazione solida, composta da residui ad alto peso molecolare, char, ceneri inerti e
specie metalliche.
A seconda dei parametri operativi si distinguono tre tipi di pirolisi riportati in
Tabella 29 con differenti caratteristiche di processo e diversa distribuzione dei
prodotti.
Tabella 29 Processi di Pirolisi (Jahirul et al., 2012).
6.1.2. Gassificazione
La gasificazione è la trasformazione della biomassa in gas combustibile detto
syngas. A livello chimico si tratta di una ossidazione incompleta operata ad una
temperatura tra gli 800 e i 1000°C. Prevede quattro fasi fondamentali:
1) Essiccazione della biomassa
2) Pirolisi
3) Ossidazione parziale
4) Riduzione
L’essiccazione consiste nell’eliminazione per evaporazione dell’acqua a
temperature superiori ai 100°C. In queste condizioni l’acqua subisce la
decomposizione pirolitica in assenza di ossigeno che per temperature fino ai
600°C comporta la volatilizzazione dei componenti più volatili con formazione
del char. Il char, cioè la parte carbonizzata, a contatto con il mezzo di
gassificazione che può essere aria, ossigeno o vapore, subisce l’ossidazione
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parziale che sviluppa il calore per il processo. Le reazioni che avvengono durante
la gassificazione sono riportate in Tabella 30.
Tabella 30 Principali reazioni di gassificazione (McKendry, P. 2002).
Il prodotto della gassificazione contiene molte impurità come ceneri, catrami,
acidi solforici, metalli pesanti, per cui è necessario attuare un processo di
depurazione.
6.1.3. Combustone diretta
La combustione è l’ossidazione del combustibile nel quale la biomassa può essere
completamente ossidata e trasformata in calore. Si tratta di una reazione
esotermica di ossidazione che avviene secondo i seguenti step:
1) Il riscaldamento della biomassa
2) L’essiccamento
3) La pirolisi e formazione composti volatili
4) Una prima combustione in fase gas
5) Una seconda combustione gas-solido
Influenzano queste fasi la temperatura e il quantitativo di aria comburente
immesso che è usualmente diviso in aria primaria e aria secondaria.
Nella combustione in fase di regime, cioè sostenuta autonomamente, il primo
processo è la disidratazione che avviene fino a circa 200°C. A temperature
maggiori iniziano a formarsi composti volatili, gas di pirolisi, che in presenza
dell’aria primaria, bruciano fornendo calore necessario appunto per il processo di
pirolisi e per la gassificazione del char e dei composti catramosi formatisi
precedentemente. I gas formatisi, principalmente CH4, CO, e H2, vengono
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miscelati con l’aria secondaria e quindi bruciano dando luogo alla combustione
vera e propria che conclude il processo termochimico. L’aria generalmente è in
eccesso sullo stechiometrico di circa uno due volte per rendere l’ossidazione il più
completa possibile ed evitare la presenza di incombusti.
6.1.4. Liquefazione idrotermica
La liquefazione idrotermica è un processo di ossidazione condotto a temperature
medio-alte, in un range tra i 250°C e i 550°C e ad alta pressione, in un range tra i
5MPa e i 25MPa (Akhtar, J., & Amin, N. A. S. 2011). La sostanziale differenza
con la pirolisi sta nel fatto che in questo processo l’acqua agisce simultaneamente
da reagente e da catalizzatore. In particolare si sfrutta il fatto che l’acqua in
condizioni prossime al punto critico abbia proprietà molto interessanti, (Toor et
al., 2011).
Tabella 31 Proprietà dell’acqua in diverse condizioni (Toor et al., 2011)
In Tabella 31 sono riportati i cambiamenti di alcune proprietà che rendono l’acqua
un ottimo mezzo in cui condurre reazioni veloci ed omogenee.
Il processo di liquefazione idrotermica porta alla formazione di un prodotto
liquido, spesso chiamato bio-olio. I sottoprodotti che si formano sono innocui, non
si riscontrano sostanze pericolose come ammoniaca e NOx. Ovviamente la
formazione e la distribuzione dei vari prodotti dipende molto da parametri
operativi quali la temperatura di liquefazione, il tempo di permanenza nel reattore,
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la velocità di riscaldamento della biomassa e la dimensione delle particelle
(Akhtar, J., & Amin, N. A. S. 2011).
Durante il processo le molecole vengono prima idrolizzate e poi degradate in
molecole più piccole. Alcune di queste molecole prodotte però non sono stabili,
ma reattive e dunque possono ricombinare a dare composti più grandi. La maggior
parte dell’ossigeno della biomassa è rimosso con reazioni di deidratazione o
decarbossilazione (Toor et al., 2011).
Tabella 32 Meccanismo base di reazione (Toor et al., 2011).
In Tabella 32 sono riportate le principali reazioni che costituiscono il meccanismo
reattivo del processo di liquefazione idrotermica.
6.2. Conversione biochimica
I processi biochimici consistono nell’ottenere energia dalle reazioni chimiche
prodotte da enzimi, funghi e microrganismi presenti.
Sono impiegati principalmente per le biomasse con un rapporto C/N minore di 30 e
con un’umidità maggiore del 30%. I principali processi biochimici comprendono la
digestione anaerobica, la co-digestione e la fermentazione alcolica.
6.2.1. Digestione anaerobica
La digestione anaerobica è un processo nel quale i microrganismi all’interno di
reattori a temperatura costante e in assenza di ossigeno, convertono la sostanza
organica in biogas costituito principalmente da metano (50-70%) e anidride
carbonica (20-30%). Le fasi del processo sono sostanzialmente tre:
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1) Idrolisi: i batteri idrolitici riducono carboidrati, proteine e lipidi
rispettivamente in monosaccaridi, amminoacidi e acidi grassi.
2) Fermentazione: reazioni di acidogenesi e acetogenesi per formare acetato,
idrogeno e anidride carbonica.
3) Fase metanigena: trasformazione dei prodotti precedenti in metano e
anidride carbonica.
Figura 21 Processo di digestione anaerobica
6.2.2. Fermentazione alcolica
La fermentazione alcolica è il processo di trasformazione biochimica per mezzo
del quale gli zuccheri sono trasformati in alcool etilico secondo la reazione:
C6H12O6 ➝ 2C2H5OH + 2CO2.
Figura 22 Processo di fermentazione alcolica
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6.3. Conversione chimica
6.3.1. Transesterificazione
La transesterificazione dei trigliceridi, costituiti tipicamente da oli o grassi
vegetali, con un alcool, per esempio il metanolo, porta alla produzioni di esteri
monoalchilici. La reazione vede l’impiego di un catalizzatore, generalmente
NaOH. La reazione non è irreversibile, dunque si opera in eccesso di alcool per
spostare l’equilibrio verso i prodotti. L’alcool in eccesso al termine del processo
viene separato e reimpiegato. Gli esteri monoalchilici e la glicerina che è il co-
prodotto della reazione, costituiscono due fasi liquide immiscibili, facilmente
separabili. La valorizzazione della glicerina rappresenta uno dei problemi da
risolvere per rendere economicamente vantaggioso il processo.
Figura 23 Reazione di transesterificazione di un trigliceride con metanolo
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7. TRATTAMENTI TERMICI DELLA BIOMASSA ALGALE
7.1. Pirolisi delle alghe
Nella pirolisi la a biomassa viene degradata termicamente in assenza di ossigeno ad
una temperatura compresa tra i 350-700°C a dare prodotti liquidi, gassosi e solidi.
Questo processo oltre che per scopi energetici può essere usato anche per la
caratterizzazione biochimica della biomassa. La pirolisi delle alghe può essere
suddivisa in tre fasi:
- Prima fase in cui si ha l’eliminazione dell’acqua, la progressiva rottura della
struttura cellulare e la rottura dei legami con formazione di radicali carbonilici e
carbossilici. In questa fase la temperatura va da dalla temperatura del reattore,
mediamente attorno ai 40°C, a circa 200°C.
- Seconda fase in cui si ha la decomposizione dei polisaccaridi, delle proteine ed
infine dei lipidi con formazione dei prodotti di pirolisi. Questa fase va da una
temperatura di circa 200°C fino a circa 500°C, è lo step principale in cui si ha la
maggiore perdita di peso ed avviene ad alta velocità.
- Terza fase in cui avviene molto lentamente la decomposizione del char, si ha
l’ossidazione delle componenti organiche con formazione di solidi ricchi in
carbonio. Quest’ultima fase inizia ad una temperatura di circa 500°C fino a circa
750°C.
I prodotti della pirolisi come già detto variano a seconda della velocità con cui viene
svolto il processo (Marcill et al., 2013). Nel caso della biomassa algale il prodotto di
maggiore interesse è il bio-olio che previo “upgrading” può essere usato come
combustibile per autotrazione (Chen et al., 2010). Pur tenendo conto infatti della
grande variabilità delle rese ottenibili e della qualità dei prodotti a seconda delle
specie trattate e delle condizioni di lavoro adottate, il bio-olio che viene prodotto dalla
pirolisi contiene alte percentuali di idrocarburi alifatici e aromatici. Esso tuttavia
necessita come la maggior parte dei bio-olii ottenuti dai trattamenti termici, di
successivi trattamenti volti a migliorarne la qualità andando a ridurre i tenori
generalmente troppo alti di ossigeno, azoto e zolfo (Chow et al., 2013).
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Nonostante siano state proposte nuove tecnologie come la pirolisi con microonde
(MAP) che offre un minor contenuto di ceneri nell’olio, una minor percentuale di
ossigeno e un più alto potere calorifico, il processo della pirolisi ha una pesante
limitazione economica data dalla necessità di pretrattare la biomassa per togliere
l’acqua.
7.2. Liquefazione idrotermica delle alghe
La biomassa viene trattata in acqua dove avvengono delle reazioni di decomposizione.
Il vincolo fondamentale è quello di operare con acqua in condizioni supercritiche,
ossia sopra il punto critico che per l’acqua si trova ad una temperatura di 374°C e ad
una pressione di 22,1MPa. Il meccanismo del processo non è ancora ben chiaro,
sicuramente esso è influenzato dai parametri operativi come temperatura, tempo di
reazione e dal tipo di catalizzatore usato e consta sostanzialmente di due reazioni.
Infatti operando in condizioni supercritiche si ha una prima fase in cui si hanno
reazioni di idrolisi che decompongono la biomassa algale in composti più piccoli i
quali possono essere molto reattivi e polimerizzare formando i prodotti di interesse,
il bio-olio, e altri composti solidi e gassosi. Incrementando il tempo di reazione o la
temperatura iniziano ad avere luogo reazioni di ri-polimerizzazione, condensazione e
decomposizione dei composti nelle varie fasi. Si ha dunque una diminuzione del bio-
olio prodotto e un incremento della fase solida e acquosa (Barreiro et al., 2013).
Il bo-olio, che è il prodotto di interesse non può essere usato direttamente come
combustibile per autotrazione poiché non è di alta qualità nonostante gran parte
dell’azoto venga rimosso con la fase acquosa. Esso infatti a causa della grande
presenza di ossigeno ha un più basso potere calorifico e deve subire comunque un
processo di upgrading. Il bio-olio prodotto però ha un promettete ruolo come
alimentazione rinnovabile in raffinerie fossili. Il grande vantaggio della liquefazione
idrotermica, che la rende una interessante e promettente via energetica, è dato dal fatto
che la biomassa non ha bisogno di essere essiccata e subire un dispendioso trattamento
di rimozione dell’acqua. Al contrario l’acqua può assumere un ruolo positivo, poiché
può essere recuperata e utilizzata come nutriente per la crescita della biomassa algale
(Marcilla et al., 2013).
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7.3. Gassificazione delle alghe
La biomassa subisce un’ossidazione parziale a temperature più alte della pirolisi, tra
i 700 e 1200°C. Il processo applicato alla biomassa algale è ancora poco sviluppato e
molti aspetti sono ancora sconosciuti o in via di studio. I gas prodotti sono
principalmente CO2, pochissima CO a causa delle reazioni di water gas shift e
metanazione, H2 e piccoli idrocarburi come CH4, C2H4 o C2H6. Questi gas possono
essere trasformati in alcani con la sintesi di Fischer-Tropsch (Chow et al., 2013).
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8. MODELLO PER LA CARATTERIZZAZIONE DELLA BIOMASSA
ALGALE
Le informazioni sulla composizione della biomassa algale permettono di individuare
delle specie di riferimento in grado di caratterizzare in modo corretto la maggior parte
delle alghe usate per scopi energetici.
Per l’identificazione di una specie lipidica di riferimento si analizza la composizione
dei vari acidi grassi presenti riportata in Tabella 33.
Tabella 33 Composizione elementare dei principali acidi grassi presenti nelle alghe
Si riporta in Figura 24 la distribuzione in termini di carbonio ed idrogeno. Si può
notare che i valori sono molto simili. Inoltre sono state effettuate delle simulazioni
variando il lipide di riferimento ed i risultati ottenuti, molto simili tra loro confermano
che la scelta del lipide non influenza i risultati del modello. Dunque si è scelta come
specie di riferimento l’acido linoleico, C18:2.
Figura 24 Distribuzione dei principali acidi grassi
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Per l’identificazione della specie proteica di riferimento, come precedentemente detto
si analizzano gli amminoacidi. In Figura 25 sono riportati i gruppi amminoacidici più
frequenti. Si può notare che il gruppo basico è, in termini di composizione, tra il
gruppo degli aromatici e quello degli alifatici.
Figura 25 Composizione e distribuzione degli ammino acidi più frequenti nelle alghe
Al fine di ampliare il più possibile il range di caratterizzazione delle proteine presenti
è stato deciso di determinare tre componenti di riferimento che ricoprissero il più
possibile la distribuzione amminoacidica.
Figura 26 Caratterizzazione delle le proteine
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Per semplicità le tre specie di riferimento sono state assunte con una composizione di
azoto fissa al 13% come mostrato in Tabella 34 mentre il resto è distribuito tra
carbonio C, ossigeno O ed idrogeno H. Ciascuna delle tre specie di riferimento
denominate PROT-C, PROT-H e PROT-O è ricca rispettivamente in carbonio,
idrogeno e ossigeno.
Tabella 34 Composizione delle tre proteine di riferimento
Tabella 35 Composizione elementare di monosaccaridi e polisaccaridi
Per la scelta dello zucchero di riferimento, ancora una volta guardiamo i tenori di
carbonio (C) ed idrogeno (H) dei principali zuccheri, riportati in Tabella 35 e Figura
27. Si può subito notare che essi hanno una composizione variabile dal 4.5 al 7.5% di
H e dal 40 al 45% di C o in altri casi addirittura identica.
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Figura 27 Composizione dei principali zuccheri delle alghe
Per la caratterizzazione della biomassa algale con una prima buona approssimazione
possiamo scegliere lo zucchero che è sia uno dei più presenti, sia quello con una
composizione abbastanza intermedia tra le varie specie, cioè il glucosio C6H12O6.
Tuttavia, come è già stato detto, le alghe brune sono caratterizzate da grandi quantità
di mannitolo e acido alginico, dunque è opportuno fare ulteriori considerazioni sulla
scelta dello zucchero di riferimento. Per tenere conto della presenza di questi altri
zuccheri più ramificati e più ricchi in ossigeno si considera una molecola composta
dalla somma dei tre zuccheri presenti in frazioni differenti tra loro. Un altro aspetto
da considerare quando si effettuano i calcoli per l’identificazione dello zucchero di
riferimento, è la rimozione di una molecola d’acqua H2O nel passaggio da monomero
a polimero, dunque per il glucosio va considerata una forma deidratata C6H10O5.
Purtroppo non è possibile identificare con precisione le singole quantità di
monosaccaridi e polisaccaridi presenti nella biomassa algale, quindi ci limitiamo ad
effettuare delle approssimazioni che però permettano di tenere in considerazione tutte
le specie algali. Si assume dunque per lo zucchero una molecola con formula C7H10O7.
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Figura 28 Composizione degli zuccheri di riferimento
Definite dunque le specie di riferimento si procede con la creazione di un modello
descrittivo della composizione biochimica della biomassa algale. Per comodità
l’acido linoleico e il derivante dal glucosio verranno rinominate rispettivamente lipidi
e zuccheri.
La procedura utilizzata impiega semplici operazioni di bilanci materiali e passaggi
sequenziali.
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Figura 29 Procedura per la caratterizzazione
In primo luogo è necessario conoscere la composizione elementare cioè la percentuale
massiva di C, H, O, e N, della specie algale che si vuole caratterizzare nella condizione
DAF, ossia secca e priva di ceneri. Un altro dato che bisogna conoscere è il contenuto
di ceneri nell’alga.
Il secondo passaggio prevede la sottrazione degli inorganici. Dalle informazioni
presenti in letteratura è stato possibile stabilire che circa un terzo delle ceneri è
costituito da carbonati e dunque quando si riscalda il materiale, viene rilasciata una
non trascurabile quantità di CO2. Inoltre come già detto in precedenza bisogna
considerare che non tutto l’azoto presente nelle alghe è riconducibile alle proteine.
Per considerare l’azoto non proteico dunque si fa riferimento ad un 10% di materiale
inorganico costituito principalmente da sali nitriti e nitrati. Nel modello verrà
considerata una quantità di NO rilasciata riscaldando i sali.
La terza operazione prevede la sottrazione delle proteine presenti. Come è già stato
detto la caratterizzazione delle proteine nelle alghe risulta molto complessa e
problematica e dunque non c’è una specie di riferimento nota a priori. Per trovare la
proteina ci si basa sul presupposto che una volta sottratti gli inorganici e le proteine
la massa algale residua è costituita solamente da lipidi e carboidrati.
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Il metodo utilizzato permette di identificare la composizione elementare della proteina
priva di azoto, in modo tale che la composizione senza di essa ricada esattamente sulla
retta congiungente lo zucchero e il lipide di riferimento. Ci sono varie possibilità per
fare questa trasformazione e riportare quindi la composizione della specie algale
finale sulla linea congiungente le due specie di riferimento. Qui lo spostamento viene
fatto muovendoci sulla perpendicolare alla retta d’interesse. In tal modo, per
differenza, viene caratterizzata la composizione H/C/O della proteina.
Figura 30 Caratterizzazione della biomassa algale e della proteina
Una volta individuata la composizione della proteina, essa viene caratterizzata in
termini di PROT-H, PROT-O e PROT-C, si risolvono i bilanci massivi esplicitati nel
seguente sistema di equazioni lineari.
α ∙ ωCPROT−C + β ∙ ωC
PROT−H + γ ∙ ωCPROT−O = ωC
Proteine
α ∙ ωHPROT−C + β ∙ ωH
PROT−H + γ ∙ ωHPROT−O = ωH
Proteine
α ∙ ωOPROT−C + β ∙ ωO
PROT−H + γ ∙ ωOPROT−O = ωO
Proteine
Sapendo che la frazione massiva dell’azoto nella proteina è fissata al 13% si può
ricavare la composizione massiva finale della proteina.
0,00
0,05
0,10
0,15
0,20
0,25
0,3 0,4 0,5 0,6 0,7 0,8
% H
% C
Caratterizzazione delle alghe e della proteina
PROTEINA
alga senza inorganici
alga senza
LIPIDI
ZUCCHERI
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Per ricavare invece la percentuale totale di proteine presenti si somma la percentuale
di PROT-H, PROT-O e PROT-C ricavata durante la caratterizzazione.
Il contenuto di inorganici è dato dalla somma dalle percentuali di CO2 e NO calcolate
per i singoli campioni.
La percentuale di lipidi è ottenuta, ripartendo la composizione restante tra quella dello
zucchero di riferimento e quella del lipide di riferimento, mentre quella degli zuccheri
è ottenuta per sottrazione della percentuale di lipidi, poiché come abbiamo già detto
ci baseremo sull’assunzione che la biomassa algale, tolti inorganici e proteine è
descrivibile in termini di lipidi e zuccheri.
8.1. Risultati e convalida del modello
Preliminari simulazioni hanno permesso di individuare i parametri che incidono
maggiormente sul modello e facendo dei confronti tra i risultati ottenuti è stato
possibile individuare i valori di tali parametri che ottimizzano il modello. In
particolare si è voluto verificare l’impatto dello zucchero e del lipide scelti come
riferimento. Analizzando i risultati si può notare che la scelta del lipide di riferimento
non ha grande influenza sul modello. Più rilevante è invece lo zucchero che se
modificato nella composizione porta ad alterazione dei risultati. Sono state fatte
numerose prove con diversi tipi e percentuali di zuccheri, in Figura 31 è riportato
l’esempio con la specie C6H10O6 e la specie C7H10O7. Si può osservare che con il
secondo zucchero si ottengono risultati migliori.
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Figura 31 Simulazioni per confrontare lo zucchero di riferimento
Ulteriori ragionamenti hanno portato ad effettuare un confronto sul tenore d’azoto
proteico da fissare nel modello. In Figura 32 sono riportati i risultati considerando per
la proteina una frazione massiva di azoto del 15% o del 13%. Come si può notare i
risultati migliori si ottengono con il valore del 13%.
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Figura 32 Simulazioni per confrontare la frazione massiva d’azoto nella proteina
Stabiliti i parametri ottimali, la procedura di caratterizzazione è stata effettuata
singolarmente per 70 campioni di alghe di cui si conosceva la composizione
elementare DAF ed il contenuto di ceneri.
In Tabella 36 sono riportati i risultati ottenuti.
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Tabella 36 Risultati del modello
Come è stato spiegato precedentemente il modello di caratterizzazione è stato creato
senza identificare una proteina specifica di riferimento, poiché la proteina stessa è
funzionale per il modello. E’ infatti in funzione della sua composizione che si ricava
la composizione della biomassa algale in termini di zuccheri e lipidi. L’unico vincolo
che la proteina deve rispettare è quello di avere una composizione che sia nell’intorno
delle tre proteine fittizie, PROT-H, PROT-O e PROT-C prese come riferimento.
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Figura 33 Risultati ottenuti per le proteine
Possiamo notare dalla Figura 33 che il vincolo è con buona approssimazione
rispettato. Sono riportati anche alcune proteine presenti nelle alghe per mostrare come
i risultati sulle proteine sono in linea con i dati ottenuti sperimentalmente.
A titolo esemplificativo, è stata selezionata la specie algale Nannochloropsis
Gaditana, un’alga giallo-oro, con composizione elementare DAF e contenuto di ceneri
riportati in Tabella 37
Tabella 37 Composizione dell’alga Nannochloropsis Gaditana
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Figura 34 Caratterizzazione dell’alga Nannochloropsis Gaditana
In Figura 34 è illustrata parte della procedura di caratterizzazione per l’alga in esame.
Come spiegato precedentemente, il modello prevede la risoluzione sequenziale di
semplici bilanci massivi, impostati e risolti in un foglio di calcolo excel.
In particolare come riportato in Tabella 38 si ricavano le varie composizioni
elementari dell’alga prima senza carbonati e nitriti, poi anche senza proteina.
Tabella 38 Composizione dell’alga senza inorganici e senza proteina
Questa composizione finale permette di identificare la percentuale di zuccheri e lipidi
presenti nell’alga. Contestualmente si ottiene anche la composizione elementare della
proteina senza azoto e sapendo che l’azoto è stato fissato al 13% è possibile ottenere
la composizione effettiva della proteina riportata in Tabella 39.
Tabella 39 Composizione della proteina dell’alga Nannochloropsis Gaditaa
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Si può così dunque calcolare la frazione massiva delle tre proteine scelte come
riferimenti e vedere come la proteina è ripartita in termini di PROT-H, PROT-O e
PROT-C come riportato in Tabella 40.
Tabella 40 Ripartizione nelle tre proteine di riferimento
Infine si ricava la percentuale totale di proteine presenti sommando la percentuale di
PROT-H, PROT-O e PROT-C anch’esse ricavate con semplici calcoli che tengano in
considerazione la quantità di azoto proteico in ogni alga.
Tabella 41 Caratterizzazione della proteina
In Tabella 42 sono riportate le quantità di proteine, carboidrati, lipidi e inorganici che
caratterizzano l’alga.
Tabella 42 Predizione composizione biochimica alga Nannochloropsis Gaditana
Tuttavia questi non possono essere considerati i risultati definitivi poiché passando ad
una composizione DAF, ossia priva di ceneri, è necessario apportare una correzione
al contenuto totale di inorganici Nel modello infatti è stato assunto che circa un terzo
delle ceneri sia costituito da carbonati. Bisogna dunque aumentare di tale quantità la
frazione inorganica.
In Tabella 43 si riportano i risultati definitivi.
Tabella 43 Composizione biochimica finale dell’alga Nannochloropsis G.
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Per verificare la validità e la precisione del modello sono stati considerati 34 dei
precedenti campioni di cui si conosceva oltre alla composizione DAF e alle ceneri
anche la composizione biochimica, così da poter effettuare un confronto tra il dato
trovato in letteratura, sperimentale, e quello predetto dal modello sviluppato. Come
riportato in dettaglio nella Tabella 44 sono stati ottenuti buoni risultati.
Tabella 44 Risultati ottenuti per il confronto modello, dato sperimentale
Nella Figura 35, Figura 36, Figura 37 si riporta un primo confronto tra la composizione
sperimentale trovata in letteratura e la composizione predetta dal modello sviluppato,
considerando tutte le alghe appartenenti ad un unico generico gruppo.
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Figura 35 Confronto contenuto % di proteine
Figura 36 Confronto contenuto % di carboidrati
Figura 37 Confronto contenuto % di lipidi
Più dettagliatamente come riportato nella Figura 38, Figura 39, Figura 40 sono stati
analizzati i risultati considerando la divisione per colore della biomassa algale per
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verificare che non ci fossero grandi differenze tra i vari gruppi o particolarità da tenere in
considerazione.
Figura 38 Confronto % di proteine. Alghe considerate per colore
Figura 39 Confronto % di carboidrati. Alghe considerate per colore
Figura 40 Confronto % di lipidi. Alghe considerate per colore
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Si riporta infine ancora la distribuzione delle proteine trovate nella simulazione di
confronto. Si può notare dalla Figura 41 che il vincolo è pienamente rispettato.
Figura 41 Distribuzione delle proteine
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9. DEVOLATILIZZAZIONE DELLA BIOMASSA ALGALE
La modellazione cinetica dei processi di conversione termochimica delle biomasse e
delle biomasse algali come la pirolisi, la gassificazione e la combustione, è un
problema molto complesso poiché si tratta di affrontare un modello multicomponente,
multifase, e multiscala. Le forti interazioni tra cinetica chimica e processi di
trasferimento sia di calore che di massa durante i processi di degradazione termica,
rendono la modellazione matematica un operazione difficile e complessa. Dunque per
semplificare l’operazione, il modello deve focalizzarsi su quattro aspetti
fondamentali: a) caratterizzazione della biomassa, b) schema cinetico della pirolisi o
della devolatilizzazione della fase solida, c) schema cinetico gas-solido della
gassificazione e combustione del char, d) schema cinetico delle reazioni in fase gas
secondarie delle specie gassose e del tar (Ranzi et al., 2017). Avendo già discusso il
primo punto sulla caratterizzazione adesso ci limiteremo al secondo aspetto. Per le
reazioni successive in fase gas si farà riferimento allo schema cinetico 500 specie
20000 reazioni, sviluppato dal POLIMI (http://creckmodeling.chem.polimi.it )
L’interesse per la pirolisi nasce dal fatto che essa è una delle principali vie di
conversione della biomassa in biocombustibile non solo come vettore energetico
liquido, ma anche come fonte di composti di interesse chimico. Inoltre la pirolisi
costituisce il primo passaggio nel processo sia di gassificazione che di combustione,
per questo i prodotti della pirolisi destano grande interesse.
Le analisi “proximate” e “ultimate” non forniscono informazioni sufficienti per
descrivere il processo di devolatilizzazione. E’ necessario avere delle informazioni
affidabili sulla struttura della biomassa e in particolare sul contenuto dei principali
componenti, carboidrati, lipidi, proteine e ceneri.
9.1. Struttura della biomassa algale per la devolatilizzazione
9.1.1. Struttura dei carboidrati
I carboidrati sono glucidi, composti organici costituiti da atomi di carbonio (C),
idrogeno (H) e ossigeno (O). Dal punto di vista chimico si tratta di aldeidi o
chetoni poli-idrossilati, ossia sono stati aggiunti diversi gruppi ossidrile –OH. I
carboidrati detti anche saccaridi, esistono in natura in forma polimerica e possono
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essere costituiti da unità ripetute di monosaccaridi, in tal caso si parla di
carboidrati semplici o da polisaccaridi, si parla di carboidrati complessi.
Il monosaccaride più presente nelle alghe è il glucosio. Si tratta di uno zucchero
ciclico a sei anelli aromatici appartenente al gruppo dei piranosi, mentre gli
zuccheri ciclici con cinque anelli aromatici sono detti furanosi.
Figura 42 Isomeri del glucosio (Ranzi et al., 2017)
Ci sono due diversi isomeri del glucosio, poiché il carbonio emiacetale nell’anello
può avere due configurazioni (anomeri), con il gruppo ossidrilico nel piano
assiale, isomero β o ortogonale all’anello, isomero α. Questi due anomeri danno
origine a due diversi legami glicosidici, legame α-1,4 e β-1,4 come riportato in
Figura 42.
In questa trattazione abbiamo considerato un composto di formula C7H10O7 che
però può essere facilmente ricondotto alla cellulosa C6H10O5. La cellulosa infatti
è costituita da unità di glucosio successive, legate tra loro da un legame β-1,4
glicosidico.
Figura 43 Cellulosa (Ranzi et al., 2017)
Il grado di polimerizzazione (DP) delle catene di cellulosa è di circa dieci-quindici
mila unità di glucosio. Le catene sono tenute insieme da legami idrogeno, che
conferiscono al polimero una struttura quasi completamente cristallina con poche
zone amorfe e rendendola un composto molto resistente.
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Figura 44 Legami ad idrogeno nella cellulosa (Ranzi et al., 2017)
9.1.2. Struttura dei lipidi
I lipidi sono composti organici costituiti principalmente da atomi di carbonio (C),
e idrogeno (H), uniti tra loro da legami covalenti. La caratteristica distintiva dei
lipidi è l’insolubilità in acqua. Da un punto di vista chimico si tratta di esteri e di
idrocarburi, in base alla struttura dunque possono essere distinti in acidi grassi,
grassi neutri o trigliceridi, fosfolipidi o fosfatidi, glicolipidi, alcoli alifatici e cere,
terpeni e steroidi. Nelle alghe i lipidi sono maggiormente presenti nella forma di
trigliceridi. Come illustrato in precedenza, l’acido grasso di riferimento è l’acido
linoleico C18H32O2, da cui deriva il trigliceride di formula C57H98O6.
Considerando per semplicità di risoluzione del modello cinetico l’aggiunta di una
molecola d’acqua, come riferimento viene dunque scelto il trigliceride di formula
C57H100O7 (Ranzi et al., 2017).
Figura 45 Acido grasso di riferimento
Figura 46 Trigliceride ottenuto dall’acido linoleico
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9.1.3. Struttura delle proteine
Le proteine sono macro-molecole costituite da catene di amminoacidi legati tra
loro da un legame peptidico, ossia legame tra gruppo amminico di un
amminoacido e gruppo carbossilico dell’amminoacido successivo creato per
condensazione con conseguente perdita di una molecola d’acqua. Gli
amminoacidi sono composti organici costituiti da molecole di carbonio (C),
idrogeno (H), ossigeno (O, azoto (N) e in alcuni casi anche zolfo (S). Sono
caratterizzate da una struttura che presenta sia il gruppo amminico -NH2 che
quello carbossilico -COOH. Abbiamo già riportato in Figura 12 i venti
amminoacidi esistenti in natura che compongono le proteine.
Figura 47 Struttura catena proteica
9.2. Meccanismo cinetico di pirolisi
Il modello cinetico di pirolisi richiede, dal momento che la biomassa algale è stata
caratterizzata mediante specie di riferimento, la descrizione dei differenti meccanismi
di decomposizione delle stesse. La prima assunzione e semplificazione che viene fatta
è che le varie specie di riferimento decompongano indipendentemente attraverso un
meccanismo a catena e a più stadi, di reazioni del primo ordine. Le reazioni che
compongono il modello cinetico, sono reazioni apparenti o globali con forti
semplificazioni e ‘lumping’ di specie. Una reazione apparente o ‘lumped’ è
considerata come media o approssimazione di quell’insieme di reazioni elementari
che hanno realmente luogo. Inoltre la semplificazione del ‘lumping’ corrisponde al
raggruppare in un’unica specie più specie chimiche dal comportamento similare. In
questa fase, per ragioni di tempo, vengono utilizzati in buona misura e ove disponibili
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quei modelli di devolatilizzazione già sviluppati per le biomasse. La peculiarità di
questi modelli è data dal fatto che si ha una dettagliata caratterizzazione dei prodotti
rilasciati durante la pirolisi, non solo del vapore d’acqua e dei gas non liquefacibili
come H2, CO, CO2, CH4 e C2H4, delle specie alcoliche e delle aldeidi, ma anche di
diversi zuccheri, composti fenolici ed eterociclici. Il presupposto comune è che i
prodotti della pirolisi della biomassa algale siano ottenuti come combinazione lineare
dei prodotti della pirolisi delle specie prese come riferimento. Ovviamente si tratta di
un’assunzione che semplifica la realtà e dunque limita la correttezza e accuratezza del
modello, ma fornendo comunque risultati validi, si tratta di un buon compromesso
(Ranzi et al., 2017).
La caratterizzazione della biomassa e la pirolisi delle specie di riferimento è solo un
primo passo per la descrizione dell’intero modello di pirolisi. E’ importante anche
analizzare le reazioni di gassificazione del char residuo e le reazioni secondarie in
fase gas dei prodotti di pirolisi.
9.3. Devolatilizzazione dei carboidrati
Per definire il meccanismo di degrado della specie scelta come riferimento per i
carboidrati è vantaggioso ricondursi alla cellulosa, la cui devolatilizzazione è stata
ampliamente investigata e descritta.
Basandosi su analisi termogravimetriche, Broido e Shafizadeh hanno sviluppato il
primo meccanismo cinetico globale di pirolisi della cellulosa, considerando una
specie attiva e due reazioni parallele formanti del tar e del char, unitamente a delle
specie gassose. Questo schema prevede la formazione di un intermedio denominato
cellulosa attiva che decompone in gas, tar e char come mostrato in Figura 48.
Figura 48 Schema devolatilizzazione della cellulosa (Ranzi et al., 2017).
Il meccanismo di pirolisi della cellulosa è caratterizzato da un primo step di
depolimerizzazione che produce la cellulosa attiva (energia apparente di attivazione
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47kcal/mol). Questa reazione riduce il grado di polimerizzazione della cellulosa,
senza il rilascio di sostanze volatili. Successivamente la cellulosa attiva decompone
attraverso due reazioni competitive: la principale produce levoglucosano, l’altra è una
decomposizione più lenta a dare char e gas non liquefacibili. Solo ad elevate
temperature, oltre i 750K, le reazioni di decomposizione prevalgono su quelle che
rilasciano tar. Viene considerata anche una reazione secondaria di carbonizzazione,
esotermica (Ranzi. et al., 2017).
Tabella 45 Schema cinetico di devolatilizzazione della cellulosa (Ranzi et al., 2017).
Tale schema cinetico, riportato in Tabella 45 è un’approssimazione e semplificazione
della molto più complessa natura della devolatilizzazione della cellulosa. Vari autori
hanno dedicato studi ed esperimenti sulla pirolisi della cellulosa per poter spiegare e
giustificare i meccanismi proposti. Tutti riportano l’endotermicità del processo di
rilascio del tar e l’esotermicità del processo di formazione del char. In Figura 49 sono
riportate le TGA effettuate con diverse velocità di riscaldamento. Sono state fatte più
comparazioni tra predizioni del modello e dati sperimentali, ottenendo risultati
soddisfacenti. (Ranzi et al., 2017).
Figura 49 Pirolisi della cellulosa. Analisi termogravimetriche (Ranzi et al., 2017).
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9.4. Devolatilizzazione dei trigliceridi
La devolatilizzazione dei trigliceridi viene considerata in un unico step cinetico dove
viene rilasciata acroleina C2H3CHO insieme a due acidi grassi e ad una aldeide, senza
quantità significative di residui.
Tabella 46 Schema cinetico di devolatilizzazione dei trigliceridi (Ranzi et al., 2017).
In Tabella 46 viene riportata la reazione considerata per lo schema cinetico e in Figura
50 e è riportato un valido confronto tra predizione del modello e dati sperimentali.
Utilizzando una miscela invece di un composto puro, il modello cinetico dei
trigliceridi è più vicino al comportamento reale. Con l'aggiunta di una molecola
d'acqua al trigliceride di riferimento è possibile semplificare il modello cinetico e si
ha il rilascio dell’acroleina e di tre acidi grassi libri.
Figura 50 Pirolisi dei trigliceridi. Analisi termogravimetriche (Debiagi et al., 2015).
Le reazioni secondarie in fase gas dell’acido grasso libero, qui è considerato l’acido
linoleico, sono già considerate nello schema cinetico complessivo delle reazioni di
pirolisi in fase gas e delle reazioni di ossidazione degli idrocarburi e dei combustibili
ossigenati (Ranzi et al., 2017).
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9.5. Devolatilizzazione delle proteine
I modelli che descrivono il rilascio dell’azoto si focalizzano sulla produzione di NOx
in presenza di ossigeno, tralasciando i dettagli della fase iniziale di devolatilizzazione.
E’ prioritario dunque definire un modello predittivo del rilascio dell’azoto presente
nella biomassa algale. Nelle biomasse l’azoto organico è presente principalmente
come amminoacidi costituenti le proteine. Una frazione di questo azoto, insieme ad
una frazione del carbonio rimane nella matrice solida, mentre ossigeno e idrogeno
sono quasi interamente rilasciati come specie volatili.
La frazione di azoto nel combustibile, (fuel-N) rilasciata come azoto volatile si
presume possa essere proporzionale al contenuto di specie volatili nel combustibile,
ossia nella biomassa di partenza. L’azoto nel tar, l’ammoniaca NH3, l’acido cianidrico
HCN, l’acido isocianico HNCO e l’azoto elementare N2 sono le principali specie
volatili che si formano durante il processo di pirolisi. Tuttavia solo una frazione delle
specie primarie azotate sono rilevate a causa delle reazioni secondarie che avvengono
prima che si effettui l’analisi delle specie.
Per poter sviluppare un modello predittivo di pirolisi delle proteine, bisogna
comprendere il comportamento termico degli amminoacidi che costituiscono le
proteine presenti nella biomassa algale. Gli amminoacidi presentano un complesso
percorso reattivo in atmosfera che porta al rilascio di una miscela di gas leggeri, tar,
lasciando alcuni residui solidi. In particolare gli amminoacidi alifatici, alanina,
isoleucina, leucina, prolina e valina mostrano un unico step di perdita di peso senza
residui solidi. Questo comportamento è dovuto alla sublimazione che avviene ad una
temperatura di circa 295°C, prima che inizi la decomposizione, a circa 305°C. Con le
reazioni di decarbossilazione, deaminazione e deidratazione si ha il rilascio
sostanzialmente di CO2, CO, NH3 e specie organiche volatili come esteri, aldeidi e
ammine acide.
Tutti gli altri amminoacidi hanno una perdita in peso caratterizzata da più step, con
una resa circa del 25% di solido e con prodotti come ammidi cicliche, composti
fenolici, dichetopiperazine DKPs, composti solforati e altri composti risultanti da
condensazione, rotture casuali dei legami, cracking termico delle ammidi cicliche,
reazioni di addizione, sostituzione, ricombinazione, riarrangiamento e idrogenazione.
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I peptidi invece hanno un comportamento intermedio tra proteine e amminoacidi
poiché non sublimano. Presentano anch’essi una perdita in peso caratterizzata da più
step, ma producono più residui solidi degli amminoacidi liberi poiché sono maggiori
le reazioni di condensazione, mentre le reazioni di deidratazioni portano alla
formazione delle dichetopiperazine producendo ad alte temperature acido isocianico
HNCO e acido cianidrico HCN, con un rapporto HNCO/HCN che aumenta al
decrescere della temperatura. Le proteine iniziano a perdere peso ad una temperatura
tra i 295-300°C e raggiungono il picco massimo a circa 329-339°C. La loro
composizione non incide significativamente sul profilo di temperatura, ma influenza
insieme con le condizioni in cui si svolge il processo di pirolisi, le rese di tar, gas e
solido residuo. Gli estratti di proteine analizzati presentano rese di residuo solido che
variano in un range tra il 15 e 40% a causa delle reazioni di cross-linking. Una
formazione di char più consistente è stata individuata a basse velocità di
riscaldamento, rivelando la possibile presenza di reazioni in competizione.
Ammoniaca NH3, e anidride carbonica CO2 sono rilasciate durante il primo step,
mentre gli step successivi producono tar, CO, CH4, C2H4, C2H2 e HCH. Questo
evidenzia il fatto che il processo di devolatilizzazione è innescato dai legami C-N,
C(O)-NH, C(O)-NH2, NH2 e C(O)-OH delle proteine.
Una riduzione della perdita di massa è riscontrata dopo gli 800°C probabilmente a
causa del rilascio delle specie metaplastiche e azotate-metaplastiche, riducendo così
il contenuto di azoto nel char. A causa della formazione della dichetopiperazina, le
proteine producono più acido cianidrico HCN rispetto alle loro corrispondenti miscele
di amminoacidi. La Tabella 47 riassume i dati trovati in letteratura riguardanti i diversi
aspetti osservati impiegando condizioni diverse.
Tabella 47 Parametri principali e loro effetti ssul degrado delle proteine
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81
In Figura 51 è illustrato un esempio di come un amminoacido lumped può reagire a
formare una struttura proteica e subire ulteriori deidratazioni che portano alla
formazione della dichetopiperazina.
Figura 51 Possibili reazioni dell’amminoacido
In Figura 52 è mostrato un possibile meccanismo di pirolisi che prevede la formazione
dell’acido cianidrico HCN.
Figura 52 Formazione dell’acido cianidrico
In Tabella 48 sono riportati i prodotti gassosi rilasciati durante il processo a differenti
temperature.
Tabella 48 Prodotti gassosi della pirolisi delle proteine
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82
La dichetopiperazina DKP insieme con altre ammine cicliche come piridine, pirroli,
indoli e i loro sostituenti metilici, metossilici, carbossilici, carbonilici, idrossilici sono
i maggiori prodotti condensabili riscontrati nel processo di pirolisi di amminoacidi e
proteine della biomassa algale. Per semplificare il modello è necessario determinare
alcune lumped species. Per questo per caratterizzare il tar derivante dalla pirolisi delle
proteine vengono scelte tre molecole azotate di cui si conosce il comportamento
pirolitico. In Tabella 49 sono riportate le possibili reazioni che descrivono il processo
di pirolisi delle proteine con uno schema semi dettagliato. I parametri cinetici sono
ottenuti dalle cinetiche apparenti, mentre la distribuzione dei prodotti è ricavata dai
dati presenti in letteratura.
Tabella 49 Schema cinetico di devolatilizzazione della proteina (Ranzi et al., 2017).
La reazione 1 descrive il meccanismo principale di pirolisi delle proteine in cui
prevalgono temperature medio-alte. La reazione è caratterizzata dalla rottura del
legame e di una specie solida intermedia, definita IPROT.
La reazione 2 invece descrive la reazione competitiva che ha luogo soprattutto a basse
temperature, permettendo ai gruppi di amminoacidi liberi di essere rilasciati come
ammoniaca NH3 prima del cross-linking con la proteina stessa, insieme al rilascio di
acqua pirolitica e monossido di carbonio CO.
La reazione 3 descrive il secondo step della pirolisi in cui ha luogo la
devolatilizzazione della specie solida intermedia IPROT. Questa reazione rilascia
grandi quantità di tar insieme alle specie gassose azotate HCN e HNCO e specie
metaplastiche.
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83
La reazione 4 e la reazione 5 descrivono la successiva devolatilizzazione del solido
residuo caratterizzata dall’addizione di NH3 e rilascio in fase gas di HCN, andando
ad aumentare il contenuto globale di carbonio nel solido residuo.
Per valutare meglio il comportamento del modello cinetico, bisogna tener conto di
alcuni parametri caratteristici, quali la temperatura, velocità di riscaldamento delle
particelle, tempo di residenza delle specie volatili e di quelle solide, dimensione e tipo
di reattore. Sono dunque stati condotti degli esperimenti dividendo le particelle in
base alla loro velocità di riscaldamento, alto o bassa. A basse velocità di riscaldamento
gli effetti della variazione di temperatura possono essere riscontrati in dettaglio
osservando quando i componenti iniziano a reagire e a che velocità.
Figura 53 Pirolisi delle proteine. Analisi termogravimetriche (Debiagi et al., 2015).
Osservando in Figura 53 un’analisi termogravimetrica di diverse proteine contenute
in differenti biomasse è molto interessante notare che ogni proteina seppur costituita
da una diversa sequenza amminoacidica ed estratta da diverse materie prime, presenta
un comportamento termico simile. Ciò indica che il percorso pirolitico di questi
polimeri è sostanzialmente lo stesso e le differenze sono dovute probabilmente ai
diversi gruppi presenti negli amminoacidi.
Come già evidenziato nella caratterizzazione, per la biomassa algale è opportuno
usare tre proteine di riferimento. Dunque l’aspetto da considerare è che se fino ad ora
erano stati sviluppati e usati meccanismi cinetici con una sola proteina di riferimento,
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84
in questo modello invece sono presenti tre proteine. E’ stato ipotizzato dunque un
cammino reattivo per le tre specie proteiche, riportato in Tabella 50 ed è stato
necessario analizzare l’andamento del degrado separatamente per verificare che non
ci siano andamenti indesiderati.
Tabella 50 Schema cinetico di devolatilizzazione per le tre proteine di riferimento
Figura 54 Devolatilizzazione delle proteine
Come si può osservare in Figura 54 il degrado per le tre specie proteiche è molto
simile.
9.6. Reazioni secondarie in fase gas
Per dare una più approfondita descrizione delle fasi di modellazione del processo di
pirolisi sarebbe necessario considerare nel dettaglio anche le reazioni eterogenee del
char residuo e soprattutto le successive reazioni in fase gas dei prodotti della pirolisi.
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85
Inoltre i fenomeni chimici e di trasporto devono essere considerati sia alla scala della
particella che a quella macroscopica del reattore.
Non rientra però tra gli scopi di questa trattazione analizzare nello specifico i
fenomeni secondari e più complessi della pirolisi. Per cui verranno solamente
accennati questi aspetti e saranno fatte considerazioni di ordine generale, maggiori
informazioni sul tema si possono ritrovare in Ranzi et al. (2017).
Sono dunque solo riportate le reazioni secondarie in fase gas delle specie volatili
rilasciate durante la pirolisi della biomassa. Si tratta sostanzialmente di tre classi di
reazioni: 1) reazioni radicaliche a catena 2) reazioni di deidratazione molecolare, 3)
reazioni di specie aromatiche a formare idrocarburi policiclici aromatici pesanti
(PAH) e particolato (nerofumo o soot).
A causa del gran numero di reazioni secondarie che interessano le specie volatili
ottenute durante la pirolisi, non è possibile effettuare dei calcoli sulle costanti di
velocità iniziali di tutte le reazioni. Questa informazione viene stimata usando regole
generali applicabili a reazioni della stessa classe che comunque forniscono risultati
ben approssimate. Un classico esempio riguarda le reazioni radicaliche a catena
d’iniziazione che implicano la rottura dei legami più deboli. Per ricavare le costanti
di velocità di queste reazioni ci si riconduce all’energia di dissociazione di legame
(BDE), che così rappresenta l’energia di attivazione delle reazioni di dissociazione.
Tabella 51 Energie di dissociazione del legame C-H (Ranzi et al., 2017)
In Tabella 51 vengono riportati vari valori di energia di dissociazione di legame BDE,
per differenti legami carbonio-idrogeno, C-H, in specie idrocarburiche e ossigenate. I
valori sottolineano che tutti i radicali possono facilmente sottrarre un atomo di
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idrogeno nell’allile e nell’acile a causa delle basse energie di dissociazione di legame,
mentre la rimozione dell’idrogeno nel vinile è più difficile.
Figura 55 Costante di velocità di specie radicaliche in reazioni di sottrazione di H
I prodotti volatili rilasciati durante la pirolisi sono spesso esposti alle alte temperature,
situazione in cui le reazioni in fase gas hanno un ruolo significativo. Dunque, poiché
queste reazioni secondarie sono responsabili della riduzione del bio-olio a vantaggio
delle specie gassose è possibile trovare le condizioni operative ottimali per le quali si
ha la massima resa in bio-olio.
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87
10. CONVALIDA DEL MODELLO DI PIROLISI
Per verificare la validità del modello di devolatilizzazione proposto, sono state effettuate
delle simulazioni che confrontassero i risultati ottenuti sperimentalmente con quelli
predetti dal modello. In particolare una collaborazione con l’Ing. R. Vinu dell’Indian
Institute of Technology di Madras, distretto di Chennai in India, ha permesso di avere
l’analisi termogravimetrica di quattro campioni di micro-alghe. Gli esperimenti dell’Ing.
R. Vinu riguardano una fast pirolisi dell’alga Chlorella Vulgaris, dell’alga
Nannochloropsis Oculata, dell’alga Schizocytrium Limancium e dell’alga Spirulina
Platensis. Ulteriori dati per il confronto sono stati presi da esperimenti presenti in
letteratura. Faremo riferimento a Rizzo et al., (2013)
10.1. Dati sperimentali dell’IIT Madras
Le analisi termometriche condotte dall’ Ing. R. Vinu fanno riferimento ad un
pirolizzatore Pyroprobe caricato con circa 8mg di campione in un micro-tubo di
quarzo e con una velocità di riscaldamento di circa 20000 K/s, ottenuta con una
resistenza al Platino.
Figura 56 Perdita in peso % dell’alga Spirulina Platensis
0 10 20 30 40 50 60
30
40
50
60
70
80
90
100
Wei
gh
t (%
)
Time (seconds)
4000 C
4500 C
5000 C
5500 C
6000 C
6500 C
7000 C
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88
Figura 57 Perdita in peso % dell’alga Chlorella Vulgaris
Figura 58 Perdita in peso % dell’alga Nannochloropsis Oculata
Figura 59 Perdita in peso % dell’alga Schizocytrium Limacium
In Figura 56, Figura 57, Figura 58, Figura 59, sono riportati i profili di materiale solido
residuo ottenuti sperimentalmente per le quattro alghe analizzate. Purtroppo per questi
campioni di alghe non sono fornite dettagliate indicazioni sulla composizione
elementare né su quella biochimica e questo rende più difficile e meno rappresentativo
il confronto tra modello e dati sperimentali. Tuttavia, utilizzando il database è
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89
possibile ricavare le informazioni necessarie per svolgere le simulazioni di confronto
e convalida del modello sviluppato.
10.2. Predizioni del modello di pirolisi
Per poter fare una predizione della devolatilizzazione e confrontarla con i dati
sperimentali precedentemente discussi sono state utilizzate alghe della stessa specie.
Tutte le simulazioni sono state effettuate con il programma open-smoke++ (Cuoci et
al., 2015) e con lo schema cinetico riportato in Tabella 54
Sono state quindi considerate le seguenti specie con le relative composizioni riportate
in Tabella 52 e come già accennato, una prima causa di incertezza nelle predizioni
risiede nella possibile variabilità di questi dati.
Tabella 52 Composizione alghe per il confronto dei risultati
La composizione delle specie analizzate nel lavoro di Rizzo et al., (2013) sono
riportate in Tabella 53.
Tabella 53 Composizione alghe (Rizzo et al., 2013)
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90
Tabella 54 Schema cinetico di pirolisi delle alghe
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Tabella 55 Specie coinvolte nello schema cinetico proposto
In Tabella 55 sono elencate le specie impiegate nello schema cinetico. In particolare
risulta utile identificare le specie solide e metaplastiche che andranno a costituire il
residuo solido, sono riportate in Tabella 56.
Tabella 56 Specie solide e metaplastiche
Inoltre in figure sono riportati nel dettaglio i comportamenti di degrado delle specie
prese come riferimento. Possiamo subito notare che i profili di degrado sono in linea
con quelli che avevamo già precedentemente analizzato.
Per effettuare il confronto e testare l’attendibilità del modello sono dunque state
effettuate delle simulazioni dalle quali considerando tutte le specie solide e
metaplastiche sommate alle cenerei sono stati ottenuti i risultati riportati in Figura 60,
Figura 61, Figura 62, Figura 63e Figura 64.
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92
Figura 60 Confronto solidi residui Chlorella Vulgariss
Figura 61 Confronto solidi residui Nannochloropsis Oculata
Figura 62 Confronto solidi residui Spirulina Platensis
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Figura 63 Confronto solidi residui Schizochytrium
Figura 64 Confronto tra TGA
L’insieme di questi confronti tra predizioni del modello e dati sperimentali, sia nel
pirolizzatore Pyroprobe che nella termobilancia mostrano chiaramente che la
biomassa algale mostra una più difficile devolatilizzazione rispetto a quanto predetto
dal modello. Questo fatto può essere spiegato con una devolatilizzazione più lenta
delle specie di riferimento delle proteine, ma questo sembra in contraddizione con
quanto osservato nella Figura 54. Si deve quindi ipotizzare una diversa velocità di
devolatilizzazione delle specie lipidiche e dei carboidrati caratteristici delle
biomasse algali. Questo è quindi un ulteriore risultato dell’attività di ricerca
condotto in questa tesi. Ulteriori ricerche bibliografiche hanno permesso di
evidenziare ulteriormente queste differenze. A titolo esemplificativo si riporta in
Figura 65 un confronto termogravimetrico da cui si possono osservare alcune
differenze nel degrado termico tra la biomassa algale, nello specifico macro-alghe e
la biomassa lignocellulosica.
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Figura 65 Analisi termogravimetrica di macro-alghe campioni A, B e biomasse
lignocellulosiche campioni C, D, E (Ross et al., 2008)
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11. CONCLUSIONI
In questo elaborato è illustrato lo sviluppo del primo modello di caratterizzazione e
pirolisi della biomassa algale. Si tratta dunque di un lavoro nuovo che trova come
ispirazione e punto dipartenza il modello sviluppato negli ultimi anni all’interno del
POLIMI per le biomasse lignocellulosiche, poiché sono state riscontrate analogie, ma
anche differenze, tra queste diverse classi di biomasse.
Sicuramente poter stabilire con buona approssimazione la composizione biochimica
servendosi solamente della composizione elementare costituisce un primo grande
vantaggio nello studio della biomassa algale. Infatti l’informazione sulle specie
biochimiche spesso non è facile da reperire data sia l’alterazione che subiscono i campioni
sia la dispendiosità degli esperimenti da condurre, mentre la misurazione della
composizione elementare risulta molto meno dispendiosa e dunque è un’informazione
più largamente accessibile e reperibile.
I risultati ottenuti sono sicuramente interessanti e soddisfacenti, sia per la loro natura, sia
perché hanno permesso di evidenziare degli aspetti critici che sono già oggetto di ulteriori
analisi e sviluppi. Soprattutto il modello di pirolisi richiede ulteriori sviluppi e confronti
resi difficili a causa della scarsità di informazioni precise ed affidabili sulla composizione
e sul degrado termico delle alghe.
Il campo delle biomasse di terza generazione è per molti aspetti ancora inesplorato,
dunque questo lavoro può essere considerato un primo approccio al problema e una base
per successivi studi, dato il sempre maggiore interesse per la biomassa algale.
Page 106
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12. BIBLIOGRAFIA
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