NATURE METHODS CORRECTION NOTICE Nat. Methods 11, 338–346 (2014) Independent optical excitation of distinct neural populations Nathan C Klapoetke, Yasunobu Murata, Sung Soo Kim, Stefan R Pulver, Amanda Birdsey-Benson, Yong Ku Cho, Tania K Morimoto, Amy S Chuong, Eric J Carpenter, Zhijian Tian, Jun Wang, Yinlong Xie, Zhixiang Yan, Yong Zhang, Brian Y Chow, Barbara Surek, Michael Melkonian, Vivek Jayaraman, Martha Constantine-Paton, Gane Ka-Shu Wong & Edward S Boyden In the version of this supplementary file originally posted online, CsChrimson was incorrectly labeled as Chrimson. The error has been corrected in this file as of 28 August 2014.
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NATURE METHODS
CORRECTION NOTICE
Nat. Methods 11, 338–346 (2014)
Independent optical excitation of distinct neural populationsNathan C Klapoetke, Yasunobu Murata, Sung Soo Kim, Stefan R Pulver, Amanda Birdsey-Benson, Yong Ku Cho, Tania K Morimoto, Amy S Chuong, Eric J Carpenter, Zhijian Tian, Jun Wang, Yinlong Xie, Zhixiang Yan, Yong Zhang, Brian Y Chow, Barbara Surek, Michael Melkonian, Vivek Jayaraman, Martha Constantine-Paton, Gane Ka-Shu Wong & Edward S BoydenIn the version of this supplementary file originally posted online, CsChrimson was incorrectly labeled as Chrimson. The error has been corrected in this file as of 28 August 2014.
Independent Optical Excitation of Distinct Neural Populations Nathan C Klapoetke1-5, Yasunobu Murata4-5, Sung Soo Kim6, Stefan R. Pulver6, Amanda Birdsey-Benson4-5, Yong Ku Cho1-5, Tania K Morimoto1-5, Amy S Chuong1-5, Eric J Carpenter7, Zhijian Tian8, Jun Wang8, Yinlong Xie8, Zhixiang Yan8, Yong Zhang8, Brian Y Chow9, Barbara Surek10, Michael Melkonian10, Vivek Jayaraman6, Martha Constantine-Paton4-5, Gane Ka-Shu Wong7,8,11, Edward S Boyden1-5 1 The MIT Media Laboratory, Synthetic Neurobiology Group, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, Massachusetts, USA 2 Department of Biological Engineering, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, Massachusetts, USA 3 MIT Center for Neurobiological Engineering, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, Massachusetts, USA 4 Department of Brain and Cognitive Sciences, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, Massachusetts, USA 5 MIT McGovern Institute for Brain Research, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, Massachusetts, USA 6 Janelia Farm Research Campus, Howard Hughes Medical Institute, Ashburn, Virginia, USA 7 Department of Biological Sciences, University of Alberta, Edmonton, Alberta, Canada 8 Beijing Genomics Institute-Shenzhen, Shenzhen, China 9 Department of Bioengineering, University of Pennsylvania, Philadelphia, Pennsylvania, USA 10 Institute of Botany, Cologne Biocenter, University of Cologne, Cologne, Germany 11 Department of Medicine, University of Alberta, Edmonton, Alberta, Canada Co-corresponding authors, Edward S Boyden ([email protected]), Gane KS Wong ([email protected])
Nature Methods: doi:10.1038/nmeth.2836
Supplementary Figure 1 Phylogenetic relation of algal opsins.
Supplementary Figure 2 Sequence alignment.
Supplementary Figure 3 Characterization of channel kinetics of Chronos and Chrimson in HEK293FT cells.
Supplementary Figure 4 Comparison of ion selectivity of Chronos, Chrimson, and ChR2.
Supplementary Figure 5 Opsin screening in cultured neurons.
Supplementary Figure 6 Opsin trafficking in cultured neurons.
Supplementary Figure 7 Inactivation and recovery kinetics.
Supplementary Figure 8 Chronos full inactivation and recovery kinetics.
Supplementary Figure 9 ReaChR and Chrimson comparison in cultured neurons.
Supplementary Figure 10 Green light driven spiking frequency responses in cultured neurons.
Supplementary Figure 11 Electrical versus green light driven spiking fidelity in cultured neurons.
Supplementary Figure 12 Red light driven spiking in cultured neurons.
Supplementary Figure 13 Red and far-red spiking with ChrimsonR in acute cortical slice.
Supplementary Figure 14 Larval motor axons expressing ChR2 fire in response to blue but not red light pulses.
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Supplementary Figure 2
Nature Methods: doi:10.1038/nmeth.2836
Supplementary Figure 3 – Characterization of channel kinetics of Chronos
and Chrimson in HEK293FT cells.
(a-b) Population data for channel closing rate (tau off) (a) and time to peak (time
to reach 90% of peak photocurrent after the beginning of illumination) (b),
measured with 470 nm illumination and irradiance of 10 mW/mm2, for ChR2,
ChR2 E123A (aka ChETAA), and Chronos, and 590 nm illumination and