Laboratorio de Toxicologa
PROGRAMA DE APOYO A PROYECTOS PARA LA INNOVACIN Y MEJORAMIENTO DE LA ENSEANZA 1
Facultad de Qumica, UNAM Mxico, D.F. 2014
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Manual de guiones experimentales para
la enseanza y aprendizaje del laboratorio
de Toxicologa (clave 1614)
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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTNOMA DE MXICO
FACULTAD DE QUMICA
DEPARTAMENTO DE FARMACIA
Manual de guiones experimentales para
la enseanza y aprendizaje del laboratorio
de Toxicologa (clave 1614)
Facultad de Qumica, UNAM Mxico, D.F. 2014
Mara Elena Bravo Gmez Jorge Cornejo Garrido
Francisco Hernndez Luis Juan Francisco Palacios Espinosa
Araceli Prez Vsquez Francisco Snchez Bartez
Perla Carolina Castaeda Lpez Manuel Gutirrez Aguilar
Bernardo Lucas Florentino Carlos Prez Muoz
Alejandra Quijano Mateos
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Primera edicin: 2012 Fecha de edicin: 15 de enero de 2012 Primera reimpresin: 30 de enero de 2014
D. R. 2014 UNIVERSIDAD NACIONAL AUTNOMA DE MXICO Ciudad Universitaria, Delegacin Coyoacn, C.P. 04510, Mxico, Distrito Federal. ISBN: 978-607-02-3094-3 Tamao: 1.75 MB Tipo de impresin: PDF Tiraje: 300 unidades Prohibida la reproduccin total o parcial por cualquier medio, sin la autorizacin escrita del titular de los derechos patrimoniales. Impreso y hecho en Mxico
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NDICE
Prlogo
8
Reglamento de Higiene y Seguridad para los Laboratorios de la Facultad
de Qumica
11
Reglamento Interno de Higiene y Seguridad para los Laboratorios
del Departamento de Farmacia
13
Reporte de Seguridad e Higiene 15
Extraccin y cuantificacin de txicos no voltiles
en una muestra problema
16
Cuantificacin de cianuro de hidrgeno, como txico voltil,
a partir de glucsidos cianognicos
29
Produccion de metahemoglobina por nitritos y efecto protector
del azul de metileno in vivo
40
Determinacin de malatin residual
49
Determinacin de la actividad antioxidante de la quercetina
y el cido nordihidroguayartico
58
Evaluacin de la actividad genotxica de la ciclofosfamida utilizando
la tcnica de microncleos en mdula sea
65
Efectos txicos de la administracin de plomo en ratas
77
Efecto del pH en la liberacin de plomo por utensilios de barro vidriado
90
Determinacin de etanol en una muestra problema
96
Identificacin de alcaloides y barbitricos en muestras problema
104
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PRLOGO En noviembre de 2004, el H. Consejo Tcnico de la Facultad aprob las modificaciones al plan de
estudios de la carrera de Qumica Farmacutico Biolgica (QFB), y en junio de 2005 fue aprobado
por el Consejo Acadmico del rea de las Ciencias Biolgicas y de la Salud (CAABYS). De tal
manera, que a partir del semestre 06-I se inici la implantacin gradual del mapa curricular del plan
de estudios 2005.
En este nuevo mapa curricular, la asignatura terico-experimental de Toxicologa, con clave 1614,
qued ubicada en el 6 semestre para la carrera de QFB. El diseo del actual contenido
programtico de la asignatura fue pensado para revisar los conocimientos bsicos de Toxicologa
como: citotoxicidad, bioactivacin txica, estrs oxidante, mutagnesis, carcinognesis y
teratognesis, para integrarlos a las etapas de estudio sobre el riesgo de exposicin, toxocintica
y toxodinamia de las reacciones adversas ocasionadas por xenobiticos frmacos, metales
pesados y sustancias de abuso. A travs del aprendizaje de esta asignatura, se pretende contribuir al
perfil del egresado en el diseo, evaluacin y produccin de medicamentos, produccin de reactivos
para diagnstico, diagnstico de laboratorio, investigacin biomdica y conservacin del medio
ambiente.
En consecuencia, el grupo de profesores de Toxicologa, en forma colegiada, decidi realizar la
actualizacin y modificacin del curso prctico, incluyendo algunos temas de inters actual en esta
asignatura y rediseando los existentes, de acuerdo con la reforma a la enseanza experimental
(Hernndez y Llano, 1994). Siguiendo estos criterios, se implementaron dos nuevas prcticas con el
apoyo del proyecto PE202006 a travs del Programa de Apoyo a Proyectos para la Innovacin y
Mejoramiento de la Enseanza (PAPIME), lo cual permiti la adquisicin de equipos, materiales
y reactivos para la enseanza experimental de esta asignatura.
Con base en lo anterior, los autores presentamos este Manual de guiones experimentales para la
enseanza y aprendizaje del laboratorio de Toxicologa, el cual est constituido por diez prcticas
que cubren las unidades temticas del curso (Tabla 1) y que permiten integrar, aplicar y relacionar
los conocimientos tericos adquiridos en la asignatura. Asimismo, los guiones propician la
integracin de algunos de los conocimientos adquiridos previamente en asignaturas como
Bioqumica, Farmacologa, Qumica Analtica, y Qumica Orgnica, as como su correspondiente
aplicacin en la resolucin de problemas de esta rea.
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Curso laboratorio
Guin experimental
Curso terico
Unidad temtica
Extraccin y cuantificacin de txicos no
voltiles en una muestra problema Introduccin a la Toxicologa
Cuantificacin de cianuro de hidrgeno, como
txico voltil, a partir de glucsidos cianognicos
La biotransformacin de xenobiticos
y su importancia toxicolgica
Produccin de metahemoglobina por nitritos y
efecto protector del azul de metileno in vivo
La biotransformacin de xenobiticos
y su importancia toxicolgica
Determinacin de malatin residual La biotransformacin de xenobiticos
y su importancia toxicolgica
Determinacin de la actividad antioxidante de la
quercetina y el cido nordihidroguayartico El estrs oxidante
Evaluacin de la actividad genotxica de la
ciclofosfamida utilizando la tcnica de
microncleos en mdula sea
Mutagnesis, carcinognesis y teratognesis
Efectos txicos de plomo en ratas Toxicidad de metales pesados
Efecto del pH en la liberacin de plomo por
utensilios de barro vidriado Toxicidad de metales pesados
Determinacin de etanol en una muestra
problema Toxicidad de sustancias de abuso
Identificacin de alcaloides y barbitricos en
muestras problema Toxicidad de sustancias de abuso
Tabla 1. Relacin entre las unidades temticas del curso terico y los guiones experimentales.
Los guiones experimentales se elaboraron siguiendo los criterios establecidos por la Reforma de la
Enseanza Experimental, donde la adquisicin del conocimiento se da a la luz de las evidencias
observables o medibles de los fenmenos que ocurren en el laboratorio. El estudiante es enfrentado
a los mismos a travs de un problema bien definido, el cual debe ser resuelto encontrando las
relaciones causa-efecto de stos a travs del trabajo experimental.
Cada uno de los guiones est estructurado de la siguiente manera:
OBJETIVO ACADMICO
Se establece para reforzar y enriquecer los conocimientos adquiridos en las clases tericas, as como
el desarrollo de habilidades para el manejo de materiales y tcnicas analticas empleadas
comnmente para determinar y/o identificar la presencia de xenobiticos.
PROBLEMA
Se plantea con la intencin de enfrentar al estudiante con fenmenos relacionados con el rea,
que le permita adquirir los conocimientos planteados en el OBJETIVO ACADMICO a travs
del trabajo experimental; encontrando las relaciones causa-efecto y relacionando estos
hallazgos con el riesgo de intoxicacin y/o el potencial toxicolgico.
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DESARROLLO EXPERIMENTAL
Describe el procedimiento y tcnicas utilizadas para el desarrollo y obtencin de resultados que
permitan resolver el PROBLEMA.
CUESTIONARIO
Se incluye con la intencin de dirigir al estudiante hacia la resolucin del PROBLEMA,
resaltando los aspectos vivenciales de la experiencia en el laboratorio y, de esta forma, reforzar
el proceso cognoscitivo.
APNDICE I
CONOCIMIENTOS PREVIOS
Este apndice contiene un listado de los conceptos indispensables para que el estudiante
comprenda el guin y sea capaz de resolver el PROBLEMA planteado.
APNDICE II
PREPARACIN DE REACTIVOS
En este apndice se indican las cantidades necesarias para la preparacin de los reactivos
a emplear en el DESARROLLO EXPERIMENTAL.
APNDICE III
DISPOSICIN DE RESIDUOS
Considerando que en cada sesin de laboratorio se generan un nmero importante de residuos,
se contempl la necesidad de indicar puntualmente cada uno de ellos, as como la manera en
que debern ser confinados y etiquetados para su posterior tratamiento.
Los autores consideramos importante tambin incluir en el presente material el Reglamento de
Higiene y Seguridad de la Facultad y del Departamento de Farmacia, para concientizar a los
alumnos de la relevancia y carcter obligatorio de ambos, promoviendo de esta forma el desarrollo
de actitudes apropiadas para un profesionista en el rea de las ciencias biolgicas y de la salud.
Finalmente, los autores agradecemos el apoyo brindado a travs del proyecto PAPIME No.
PE202006 de la Direccin General de Asuntos del Personal Acadmico (DGAPA) de la UNAM.
Hernndez Luna, M. y Llano Lomas, M. (1994) Propuesta de Reforma de la Enseanza Experimental en Revista del IMIQ, Ao XXV, vol. 07, pp. 5-7.
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Reglamento de Higiene y Seguridad para los Laboratorios de la Facultad de Qumica
ARTCULO 1. El presente Reglamento es aplicable en todos aquellos espacios de la Facultad de Qumica en donde se realice trabajo experimental, sea de docencia o de investigacin. Estos sitios, para efectos del presente Reglamento, sern denominados laboratorios. Su observancia es obligatoria para el personal acadmico, alumnos y trabajadores administrativos y no excluye otra reglamentacin que resulte aplicable. Deber exhibirse visiblemente en cada laboratorio de la Facultad de Qumica. ARTCULO 2. Es necesario que el personal que trabaja en cada laboratorio conozca el sistema de alertamiento, las zonas de seguridad, las rutas de evacuacin, el equipo para combatir siniestros y las medidas de seguridad establecidas en cada laboratorio. ARTCULO 3. Los laboratorios debern estar acondicionados, como mnimo, con lo siguiente:
a) Un control maestro para energa elctrica b) Un botiqun de primeros auxilios c) Extintores d) Un sistema de ventilacin adecuado e) Agua corriente f) Drenaje g) Un control maestro para suministro de gas h) Sealamientos de Proteccin Civil i) Regadera j) Lavaojos
ARTCULO 4. Todas las actividades que se realicen en los laboratorios debern estar supervisadas por un responsable, nombrado por los departamentos acadmicos en sus reas correspondientes. ARTCULO 5. Al realizar actividades experimentales, nunca deber estar una persona sola en los laboratorios. El mnimo de personas deber ser, invariablemente, de dos y al menos una de ellas deber ser parte del personal acadmico de la Facultad. ARTCULO 6. Los usuarios debern abstenerse de dejar, en el lugar de trabajo, cosas de valor a la vista; adems debern cerrar las puertas de cubculos y laboratorios, as como cajones y archiveros, siempre que se ausenten del laboratorio. ARTCULO 7. Para trabajar en los laboratorios es obligatorio que los estudiantes usen bata y lentes de seguridad. En el caso del personal acadmico y administrativo, el equipo de proteccin personal, lo dictaminar la Comisin Mixta de Higiene y Seguridad. Este equipo ser de uso obligatorio. El alumno que no tenga proteccin no podr permanecer en el laboratorio; ser su responsabilidad contar con el equipo mencionado. Asimismo, no podr trabajar ni permanecer dentro de los laboratorios, si no se encuentra su profesor o alguien responsable que lo sustituya. ARTCULO 8. En los laboratorios queda prohibido: fumar, consumir alimentos o bebidas, el uso de lentes de contacto y de zapatos abiertos (tipo huarache o sandalia). ARTCULO 9. Para realizar trabajos con material radiactivo es obligatorio aprobar el curso de su manejo, as como la obtencin del dosmetro correspondiente. ARTCULO 10. Todas las sustancias, equipos, materiales, etc., debern ser manejados con el mximo cuidado, atendiendo a las indicaciones de los manuales de uso o de los de seguridad, segn el caso. ARTCULO 11. Las puertas de acceso y salidas de emergencias debern estar siempre libres de obstculos, accesibles y en posibilidad de ser utilizadas ante cualquier eventualidad. El responsable del rea deber verificar esto al menos una vez cada semana. ARTCULO 12. Las regaderas debern contar con el drenaje correspondiente, funcionar correctamente, estar lo ms alejadas que sea posible de instalaciones o controles elctricos y libres de todo obstculo que impida su uso correcto. El responsable del rea deber verificar esto por lo menos una vez cada semana. ARTCULO 13. Los controles maestros de energa elctrica y suministros de gas para cada laboratorio debern estar sealados adecuadamente, de manera tal que sean identificados fcilmente. Las tuberas de cada laboratorio debern estar pintadas de acuerdo con la norma correspondiente.
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ARTCULO 14. En cada laboratorio deber existir un botiqun de primeros auxilios al alcance de todas las personas que en l trabajen. El responsable del rea deber verificar, al menos una vez cada semana, el contenido del botiqun, para reponer los faltantes. ARTCULO 15. Los extintores de incendios debern ser de CO2 y de polvo qumico seco, segn lo determine la Subcomisin Mixta de Higiene y Seguridad y/o el Departamento de Bomberos de la Universidad; debern recargarse cuando sea necesario, de conformidad con los resultados de la revisin o por haber sido utilizados. ARTCULO 16. En caso de emergencias, con incendios, derrames o personas accidentadas, dirigirse a la zona de seguridad establecida y/o activar el servicio de Emergencias 55 (red digital UNAM). Al activarlo:
- Identifquese: Nombre y Puesto. - Ubicacin: D el mayor nmero de referencias fsicas posibles y las vas de acceso. - Tipo de siniestro. - Nmero de lesionados. - Apoyo: Especifique si requiere apoyo adicional de vigilancia. - Avisar de inmediato al encargado de la Seguridad del rea y a la Coordinacin de Seguridad.
ARTCULO 17. Los sistemas de extraccin de gases debern mantenerse siempre sin obstculos que impidan que cumplan con su funcin, evaluarse al menos una vez cada mes y recibir el mantenimiento preventivo o correctivo que los responsables de cada rea soliciten. ARTCULO 18. Tanto los sistemas de suministro de agua corriente como de drenaje, debern recibir el mantenimiento preventivo o correctivo que los responsables de cada rea soliciten. ARTCULO 19. Los lugares en que se almacenen reactivos, disolventes, equipos, materiales, medios de cultivo, y todo aquello relacionado o necesario para que el trabajo en los laboratorios se lleve a cabo, estarn sujetos a este Reglamento en su totalidad; los anaqueles y reas de almacenamiento debern contar con la proteccin adecuada para prevenir accidentes. ARTCULO 20. Queda prohibido desechar sustancias al drenaje o por cualquier otro medio. Los manuales de prcticas correspondientes debern incluir la forma correcta de la disposicin de los residuos. ARTCULO 21. Para transferir lquidos con pipetas, deber utilizarse la llenadora correspondiente. Queda prohibido pipetear con la boca. ARTCULO 22. Al finalizar las actividades en el laboratorio, el responsable del rea deber verificar que queden cerradas las llaves de gas, agua, vaco, tanques de gases y aire, segn sea el caso; apagadas las bombas de vaco, circuitos elctricos, luces, etc. En caso de requerir que algn equipo trabaje de manera continua, deber dejarse, tanto en el interior como en el exterior del laboratorio correspondiente, en forma claramente visible y legible, la informacin acerca del tipo de reaccin o proceso en desarrollo, las posibilidades fuentes de problema, la manera de controlar los eventuales accidentes, y la forma de localizar al responsable del equipo. ARTCULO 23. Cuando se trabaje con sustancias txicas, deber identificarse plenamente el rea respectiva. Adems, se deber trabajar en rea con sistema de extraccin y equipo de proteccin personal (segn el manual correspondiente). ARTCULO 24. En cada laboratorio de la Facultad deber existir, en forma clara, visible y legible, la informacin acerca de los telfonos de emergencia a los cuales llamar en caso de requerirlo. ARTCULO 25. Los anaqueles, libreros, estantes, archiveros, tanques de gas y, en general, accesorios y muebles de oficina y laboratorio, debern estar sujetos a la pared para prevenir accidentes. ARTCULO 26. Queda prohibido que menores de edad permanezcan en el laboratorio sin la autorizacin por escrito del responsable del rea.
ARTCULO 27. El personal (acadmicos, administrativos o estudiantes) que trabaje en los laboratorios debe informar al responsable del rea o a su jefe inmediato, si padece enfermedades que requieran atencin especial y puedan generar incidentes dentro del rea. ARTCULO 28. Todas aquellas cuestiones que no estn especficamente sealadas en el presente Reglamento debern ser resueltas por la Direccin de la Facultad, con la opinin de la Coordinacin de Seguridad, Prevencin de Riesgos y Proteccin Civil. ARTCULO 29. Cualquier alteracin en las condiciones de seguridad, o en el cumplimiento del presente reglamento, deber ser reportado al responsable correspondiente.
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ARTCULO 30. Las personas a quienes se sorprenda haciendo mal uso de equipos, materiales, instalaciones, etc. propias de los laboratorios, de todo aquello mencionado en el Artculo 2 del presente Reglamento, o de las sealizaciones instaladas para Proteccin Civil, sern sancionadas conforme a la Legislacin Universitaria, segn la gravedad de la falta cometida. ARTCULO 31. En el caso de los alumnos, las sanciones aplicables sern las que decida el H. Consejo Tcnico de la Facultad, conforme a las disposiciones de la Legislacin Universitaria. ARTCULO 32. Si se trata de personal acadmico o administrativo, se levantarn las actas correspondientes y se dictarn las sanciones conforme a las disposiciones de la Ley Federal del Trabajo. ARTCULO 33. Cada rea acadmica deber tener un Reglamento Interno de Higiene y Seguridad que ser de observancia obligatoria y complementario al presente Reglamento, en tanto no lo contravengan. ARTCULO TRANSITORIO NICO. El presente Reglamento, una vez aprobado por el Consejo Tcnico, entrar en vigor el da siguiente de su publicacin en la Gaceta de la Facultad de Qumica. Aprobado por el H. Consejo Tcnico en su sesin del 15 de junio de 2006.
Reglamento Interno de Higiene y Seguridad para
los Laboratorios del Departamento de Farmacia
ARTCULO 1. El presente Reglamento es complementario del Reglamento de Higiene y Seguridad para los Laboratorios de la Facultad de Qumica de la UNAM. Es aplicable en todos aquellos lugares del Departamento de Farmacia de la Facultad de Qumica donde se realice trabajo experimental, sea de docencia o de investigacin; estos sitios, para efectos del presente Reglamento, sern denominados laboratorios. Se considerarn tambin como reas de laboratorio aquellos anexos donde se lleven a cabo experimentos. Su observancia es obligatoria para el personal acadmico, alumnos y trabajadores administrativos y no excluye otra reglamentacin que resulte aplicable. ARTCULO 2. Los laboratorios debern estar acondicionados de acuerdo con lo establecido en el ARTCULO 3 del Reglamento de Higiene y Seguridad para los Laboratorios de la Facultad de Qumica de la UNAM. ARTCULO 3. Todas las actividades que se realicen en los laboratorios debern estar supervisadas por un responsable.
a) En los laboratorios de docencia, el o los responsables de cada grupo sern cada uno de los profesores de dicho grupo. b) En los laboratorios de investigacin, los responsables sern los tcnicos acadmicos adscritos a los mismos o el profesor encargado del laboratorio.
ARTCULO 4. Al realizar actividades experimentales, nunca deber estar una persona sola en los laboratorios. En el caso de que una de ellas sea alumno, deber haber siempre un profesor como segunda persona. ARTCULO 5. En general, deber usarse el cabello recogido cuando se utilice mechero; adems, el equipo de proteccin personal que ser usado en los laboratorios y anexos del laboratorio donde se lleven a cabo trabajos de experimentacin ser, para alumnos y profesores: 1. Bata de algodn 100% y zapato cerrado.
2. Lentes de seguridad (durante el tiempo que dure el experimento). En caso de lentes graduados, debern ser de vidrios endurecidos e inastillables, de preferencia. 3. Guantes, en caso de que el experimento lo exija.
Para laboratoristas
1. Bata de algodn 100% y zapato cerrado. 2. Lentes de seguridad (durante el tiempo que estn en contacto con los reactivos). En caso de lentes graduados debern ser de vidrio endurecido e inastillables, de preferencia. 3. Guantes, cuando se encuentre en contacto con los reactivos.
ARTCULO 6. Los residuos slidos generados durante los trabajos experimentales debern colocarse en los contenedores identificados para este fin y mantenerse alejados del rea de trabajo.
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ARTCULO 7. Los restos de desechos biolgicos (animales de laboratorio), generados durante las sesiones experimentales, debern ser colocados en bolsas de plstico y enviados al Bioterio de la Facultad. No debern ser desechados directamente en la basura. ARTCULO 8. Las sustancias txicas, voltiles o inflamables debern ser utilizadas dentro de las campanas de extraccin. ARTCULO 9. Cualquier muestra que se guarde en los refrigeradores deber estar etiquetada con la siguiente informacin:
a) Nombre completo del alumno. b) Fecha y periodo que se mantendr almacenada. c) Tipo de muestra. d) Nombre de la asignatura o proyecto de tesis. e) Profesor responsable de la asignatura o proyecto.
ARTCULO 10. No se admitir a nadie que llegue extraoficialmente de visita. ARTCULO 11. Los sistemas de extraccin de gases y campanas debern mantenerse siempre sin obstculos que impidan el cumplimiento de su funcin. ARTCULO 12. Cuando un extintor est vaco por haber sido utilizado, deber ser removido de su lugar para evitar confusiones en caso de necesitarlo. El responsable del rea deber hacer la solicitud de recarga o reemplazo a la brevedad posible, para que se cumpla con lo establecido en los Artculos 3 y 15 del Reglamento de Higiene y Seguridad para los Laboratorios de la Facultad de Qumica. ARTCULO 13. Al finalizar las actividades en el laboratorio, el responsable del rea, el profesor o el laboratorista (el ltimo en salir del laboratorio), deber verificar que se cumpla el Artculo 22 del Reglamento de Higiene y Seguridad para los Laboratorios de la Facultad de Qumica. ARTCULO 14. Este Reglamento se dar a conocer a todos los alumnos al inicio del semestre lectivo y se recabarn sus firmas de enterados. Asimismo, deber estar en un lugar visible en el laboratorio, al igual que el Reglamento de Higiene y Seguridad para los Laboratorios de la Facultad de Qumica de la UNAM. Artculo Transitorio nico El presente Reglamento, una vez aprobado por el Consejo Tcnico, entrar en vigor el da siguiente de su publicacin en la Gaceta de la Facultad de Qumica. Aprobado por el H. Consejo Tcnico en su sesin del 5 de octubre de 2006.
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REPORTE DE SEGURIDAD E HIGIENE
GRUPO: _____________ FECHA: ___________________
PRCTICA: ______________________________________________________________
INTEGRANTES: __________________________________________________________
UTILIZACIN DE REACTIVOS
Reactivo Cantidad empleada Observaciones
VIGILANCIA DE EQUIPO
Equipo Hora de inicio Hora final Observaciones
MEDIDAS DE SEGURIDAD
Tratamiento de residuos Observaciones
Firma del responsable: ________________________________________
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EXTRACCIN Y CUANTIFICACIN DE TXICOS
NO VOLTILES EN UNA MUESTRA PROBLEMA
OBJETIVO ACADMICO
Que el alumno emplee mtodos de extraccin cida y bsica para obtener eficientemente
txicos no voltiles de naturaleza cida y bsica en una muestra problema, y concluya qu
mtodo de extraccin es el ms eficiente.
PROBLEMA
Establecer las condiciones ms adecuadas para realizar una extraccin mayor o igual al 90%
de los txicos no voltiles cidos y bsicos (cido acetilsaliclico [AAS] y cafena) presentes
en una muestra problema. La muestra deber trabajarla en medio cido y medio bsico.
Reactivos
- cido tartrico - Cafena
- Hidrxido de sodio (NaOH) - Cloroformo (CHCl3)
- Nitrato frrico (Fe(NO3)3) - Salicilato de sodio
- cido clorhdrico (HCl) - Cloruro mercrico (HgCl2)
- Bicarbonato de sodio (NaHCO3) - Sulfato de sodio anhidro (Na2SO4)
Equipo
- Espectrofotmetro - Balanza analtica
- Rotaevaporador - Vrtex
Material
Material por equipo
- Gradilla 1 - Piseta con agua destilada 1
- Tubos de ensayo 13 x 100 4 - Matraz de bola de 50 mL 2
- Matraz aforado de 10 mL 2 - Pipeta Pasteur 2
- Matraz aforado de 25 mL 2 - Probeta de 25 mL 1
- Embudo de separacin de 250 mL 2 - Esptula 1
- Matraz Erlenmeyer de 250 mL 1 - Pipeta graduada de 10 mL 2
- Matraz Erlenmeyer de 50 mL 2 - Pipeta graduada de 5 mL 2
- Anillo metlico 2 - Pipeta graduada de 1 mL 1
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Material para la curva patrn
- Gradilla 1
- Matraz volumtrico de 10 mL 5
- Matraz volumtrico de 25 mL 5
- Tubos de ensayo 10
- Vaso de precipitado de 100 mL 1
- Pipeta graduada de 1 mL 1
- Pipeta graduada de 10 mL 1
NOTA: El profesor proporcionar las celdas a los alumnos.
DESARROLLO EXPERIMENTAL
El profesor proporcionar 30 mL de muestra problema, la cual deber dividirse en dos
porciones de 15 mL para realizar a una de ellas la extraccin en medio cido; y a la otra, la
extraccin en medio bsico. La cuantificacin de cido acetilsaliclico (AAS) y cafena se
determinar siguiendo los apndices correspondientes.
A) Proceso de extraccin en medio cido para txicos no voltiles
1. Agregar cido tartrico hasta un pH = 2.
2. La solucin cida se extrae con 2 porciones de 15 mL de CHCl3, separando las fases
orgnicas y reunindolas en un matraz.
3. La fase acuosa se guarda, etiquetndola como fraccin A.
4. La fase orgnica se extrae con dos porciones de 10 mL de agua destilada y se renen las
fases acuosas con la fraccin A.
5. Tratamiento de la fase orgnica. Esta fase se trata con 5 mL de una solucin saturada de
NaHCO3, se separan las fases. Etiquetar la fase acuosa como fraccin B. Tratar esta
fraccin como se indica en el inciso C.
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5.1. Extraer la fase orgnica con 5 mL de NaOH 0.1 N. La fase acuosa resultante,
etiquetarla como fraccin C y trabajarla como se indica en el inciso C. La fase orgnica
resultante marcarla como R1.
6. Tratamiento de la fraccin A. La fase acuosa obtenida del inciso 4 se alcaliniza hasta pH = 10
con NaOH 2.5 N.
6.1. Extraer con dos porciones de CHCl3 de 10 mL (2 x 10 mL CHCl3) y separar las fases.
Desechar la fase acuosa resultante en el contenedor etiquetado como R2.
6.2. Concentrar la fase orgnica hasta sequedad en el rotaevaporador. Etiquetar como
fraccin D y tratarlo como se indica en el inciso D. El disolvente orgnico resultante que se
encuentra en el matraz de condensacin debe ser desechado en el contenedor etiquetado
como R1.
B) Proceso de extraccin en medio bsico para txicos no voltiles
1. La muestra se ajusta a pH = 10 con NaOH 2.5 N.
2. Realizar la extraccin con dos porciones de CHCl3 de 15 mL, separando las fases.
3. La fase orgnica se concentra hasta sequedad y el residuo se etiqueta como fraccin E y
se trata como se indica en el inciso D.
4. La fase acuosa se etiqueta como fraccin F y se trata segn el inciso C.
C) Cuantificacin de cido acetilsaliclico
Tratamiento de la muestra (fracciones B, C y F)
1. Colocar 1 mL de las fracciones B, C y F en tubos de forma separada y adicionar a cada
una 5 mL del reactivo para desarrollar color (apndice II), agitar, esperar 2 min.
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2. Determinar la absorbancia a 540 nm. Si la lectura de absorbancia no cumple con la ley
de Lambert y Beer, realice las diluciones necesarias, repita el procedimiento y vuelva a
realizar la lectura.
3. Calcular la concentracin de AAS presente en su muestra, interpolando la lectura de
absorbancia en la curva patrn.
4. Despus de haber realizado la lectura y una vez obtenidos los resultados, las fracciones
B, C y F se renen y desechan en el contenedor etiquetado como R3.
Curva patrn del AAS
1. Solucin patrn de salicilato de sodio (1000 g/mL). Pesar 25 mg de salicilato de sodio
y disolverlo. Llevar hasta 25 mL con agua destilada.
2. A partir de la solucin patrn de salicilato de sodio (1000 g/mL), preparar la curva
patrn como se describe a continuacin (realizar dos curvas patrn por grupo).
Alcuota de la
solucin patrn
(mL)
Aforo con agua
destilada
Concentracin
(g/mL)
0.5 10 50
1 10 100
3 10 300
5 10 500
7 10 700
En un tubo de ensaye colocar 1 mL de las soluciones recin preparadas y adicionar 5 mL
del reactivo para desarrollar color (apndice II), agitar la muestra en un vrtex durante
1 min, esperar 2 min y determinar la absorbancia a una longitud de onda de 540 nm,
ajustando a cero con un blanco (1 mL de agua y 5 mL del reactivo para desarrollar color).
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D) Cuantificacin de cafena
Tratamiento de la muestra (fracciones D y E)
1. Disolver por separado los residuos de las fracciones D y E en 5 mL de NaOH 0.1 N.
Transferirlo a un matraz volumtrico de 25 mL y aforar con NaOH 0.1 N.
2. Determinar la absorbancia de la solucin anterior a 275 nm utilizando NaOH 0.1 N
como blanco. Si la lectura de absorbancia obtenida no cumple con la ley de Lambert y
Beer, realice las diluciones necesarias con NaOH 0.1N.
3. Calcular la concentracin de cafena presente en su muestra, interpolando la lectura de
absorbancia en la curva patrn.
4. Despus de haber realizado la lectura y una vez obtenidos los resultados, las fracciones
D y E se renen y desechan en el contenedor etiquetado como R2.
Curva patrn
1. Solucin patrn de cafena (100 g/mL). Disolver 10 mg de cafena anhidra en 10 mL
de NaOH 0.1 N y aforar con la misma solucin a 100 mL.
2. A partir de la solucin patrn de cafena (100 g/mL) preparar la curva patrn como se
describe a continuacin. Por grupo realizar dos curvas patrn.
Alcuota de la
solucin patrn
(mL)
Aforo con NaOH
0.1 N
Concentracin
(g/mL)
1 25 4
2 25 8
3 25 12
4 25 16
5 25 20
3. Determinar la absorbancia de la curva patrn a una longitud de 275 nm, ajustando a cero
con un blanco (NaOH 0.1 N).
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CUESTIONARIO
1. En el caso de emplear una muestra biolgica indique cul es el objetivo de adicionar
cido tartrico adems de ajustar el pH.
2. Una vez desarrollado el guin para una eficiente extraccin de un xenobitico, qu
puntos del proceso y propiedades fisicoqumicas considera que son crticos?
3. Complete la siguiente tabla e indique los datos de la regresin lineal de cada curva.
AAS
[g/mL]
Abs*
curva
1
Abs*
curva
2
cafena
[g/mL]
Abs*
curva
1
Abs*
curva
2
50 4
100 8
300 12
500 16
700 20
Pendiente (m) Pendiente (m)
Ordenada al origen (b) Ordenada al origen (b)
Coeficiente de
correlacin lineal (r)
Coeficiente de
correlacin lineal (r)
*Abs: Absorbancia.
Tabla 1. Curva patrn.
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Tabla 2. Lecturas de muestras.
4. Interpole los datos de absorbancia de cada una de sus fracciones y calcule la
concentracin de AAS y/o cafena en su muestra, indicando el procedimiento que sigui
para realizarlo.
5. Es necesario considerar el factor de dilucin para calcular la concentracin inicial de
los xenobiticos en su muestra? Justifique su respuesta.
6. Complete las siguientes tablas y, de acuerdo con los resultados grupales, concluya cul
es el mejor mtodo de extraccin analizado para los xenobiticos.
Equipo
cido acetilsaliclico
Extraccin en medio cido Extraccin en medio bsico
Concentracin
(g/mL)
Rendimiento
(%)
Concentracin
(g/mL)
Rendimiento
(%)
1
2
3
Tabla 3. Resultados grupales AAS.
Equipo Absorbancia de las fracciones
B C F D E
1
2
3
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Tabla 4. Resultados grupales cafena.
7. En caso de no haber obtenido un rendimiento superior al 90%, analice a qu puede
atribuirse el hecho.
Equipo
Cafena
Extraccin en medio cido Extraccin en medio bsico
Concentracin
(g/mL)
Rendimiento
(%)
Concentracin
(g/mL)
Rendimiento
(%)
1
2
3
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Referencias bibliogrficas
Casarett, L.J. Caffeine biotransformation en Casarett & Doulls Toxicology: The basic science of poisons. McGraw Hill, New York, 2001, p. 1071.
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APNDICE I
CONOCIMIENTOS PREVIOS
1. Efectos txicos del cido acetilsaliclico (AAS) y de la cafena.
2. Relacin entre el pKa de una sustancia con el pH del medio en el que se encuentra
disuelto.
3. Estructura de la forma inica y no inica del AAS y de la cafena.
4. Reaccin de hidrlisis del AAS.
5. Valores de pKa del AAS, cido saliclico, cido tartrico, cido actico y de la cafena.
6. Solubilidad de una sustancia inica en medio acuoso y disolvente orgnico.
7. Densidad de los disolventes a emplear.
8. Fundamento de una extraccin mltiple y selectiva.
9. Sustancias que pueden precipitar protenas.
10. Esquema de los procesos de separacin empleados tanto en medio cido como en medio
bsico, especificando qu especies qumicas se encuentran en cada una de las fases.
11. Propsito de lavar la fase orgnica con dos porciones de agua destilada en la extraccin
en medio cido.
12. Propsito de juntar las facciones acuosas obtenidas de la particin con CHCl3 con la
fraccin A en el proceso de extraccin en medio cido.
13. Objetivo de adicionar NaHCO3 y NaOH 0.1N en el proceso de extraccin cida.
14. Naturaleza de los compuestos obtenidos en cada una de las fracciones.
15. Dibujo de la reaccin de identificacin y cuantificacin del AAS.
16. Rango de absorbancia en el cual se cumple la ley de Lambert y Beer.
17. Razn por la cual se determinan la cafena y el AAS a diferentes longitudes de onda.
18. Forma de obtener el rendimiento de la extraccin de una sustancia.
19. El anlisis de una muestra biolgica de 20 mL para determinar la presencia de
salicilatos y/o cafena arroj las siguientes lecturas de absorbancia:
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Absorbancia a
= 540 nm
Volumen
(mL) Absorbancia a
= 275 nm
Volumen
(mL)
fraccin B = 0.613 15 fraccin D = 0.785 6
fraccin C = 0.456 7
Tabla 1. Absorbancia y volumen final de las fracciones B, C y D.
Para la realizacin de los clculos considere el proceso de extraccin en medio cido
descrito en el guin experimental y tome en cuenta las diluciones necesarias.
Las lecturas de absorbancia de las curvas patrn para AAS y cafena son las que se
muestran a continuacin:
AAS Cafena
Concentracin
[g/mL]
A= 540 nm Concentracin
[g/mL]
A = 275 nm
50 0.060 4 0.184
100 0.133 8 0.484
300 0.421 12 0.684
500 0.713 16 0.885
700 0.970 18 1.000
b = 5.8 x 10-3
m = 1.409 x 10-3
r= 0.999
b = 9.2 x 10-3
m = 0.0566
r =0.996
Tabla 2. Curva patrn.
Calcule la concentracin de AAS y cafena en la muestra inicial.
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APNDICE II
PREPARACIN DE REACTIVOS
Reactivo para desarrollar color:
Pesar 4 g de HgCl2 y disolverlo en 12 mL de HCl 1N. Adicionar 4 g de Fe(NO3)3 y agitar
hasta su total disolucin. Diluir con agua destilada a 100 mL (considerar cantidades
adicionales para el blanco y curva patrn).
Solucin de hidrxido de sodio 2.5 N
Disolver 10 g de NaOH en 25 mL de agua destilada y aforar a 100 mL.
Solucin de hidrxido de sodio 0.1 N
Disolver 0.4 g de NaOH en 25 mL de agua destilada y aforar a 100 mL.
Solucin de cido clorhdrico 1 M
Colocar 83 mL de HCl concentrado en un matraz aforado y adicionar agua destilada hasta 1 L.
Solucin de cido tartrico al 10%
Colocar 10 g en 100 mL de agua destilada.
Solucin saturada de bicarbonato de sodio.
Colocar una cantidad aproximada de bicarbonato de sodio R.A., en 10 mL de agua
destilada, hasta que no se pueda disolver en fro.
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APNDICE III
DISPOSICIN DE RESIDUOS
R1: Cloroformo (restos de cido acetilsaliclico y cafena).
R2: Solucin acuosa bsica de NaOH (pH = 10), tartrato de sodio y restos de cafena
ionizada, cido acetilsaliclico y cido saliclico.
R3: Solucin acuosa con HgCl2 y Fe(NO3)3.
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CUANTIFICACIN DE CIANURO DE HIDRGENO, COMO
TXICO VOLTIL, A PARTIR DE GLUCSIDOS CIANOGNICOS
OBJETIVO ACADMICO
Que el alumno determine la cantidad de cianuro de hidrgeno liberado a partir de
glucsidos cianognicos presentes en muestras que forman parte de la dieta de humanos y
animales, y relacione la concentracin con su potencial toxicolgico.
PROBLEMA
Que el alumno cuantifique la concentracin de cianuro de hidrgeno presente en una serie
de 2 muestras de semillas o plantas, y concluya cul de estas muestras presentan riesgo de
toxicidad para el humano, con base en la cantidad de HCN que est presente en el consumo
de 100 g de muestra.
Reactivos
- Reactivo de Guignard *
- Cianuro de potasio * (KCN)
- Carbonato de sodio (Na2CO3)
- cido clorhdrico * (HCl)
- Cloroformo (CHCl3)
- cido pcrico
* Ver apndice II.
Equipo
- Espectrofotmetro
- Termmetro
- Estufa
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Material por equipo
- Tubos de ensaye 20 x 150 con
tapn de hule
3 - Tijeras 1
- Cajas Petri 1 - Pinzas 1
- Mortero con pistilo 1 - Navaja (traer por equipo) 1
- Tiras de papel filtro cualitativo
(filtracin rpida) de 2 x 10 cm
3
- Matraz Erlenmeyer de 250 mL con tapn de
hule
3
- Pipeta volumtrica de 25 mL 1 - Pipeta graduada de 1 mL 1
- Probeta de 50 mL 1 - Embudo de cola corta 3
- Vaso de precipitado de 100 mL 3 - Hielo (proporcionado por laboratorista)
Material para la curva
- Matraces Erlenmeyer de 250 mL con tapn de hule 6
- Matraces volumtricos de 25 mL 6
- Pipeta graduada de 1 mL 1
- Tubos de ensaye 20 x 150 con tapn de hule 6
- Papel filtro (tiras de 2 x 10 cm) 6
NOTA: El profesor proporcionar las celdas para las lecturas.
Material de estudio
Traer por equipo aproximadamente 1g de una de las siguientes muestras: almendra de
durazno, semillas de manzana roja, almendra de ciruela pasa, semillas de lima, almendra
de capuln, almendra de cereza.
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DESARROLLO EXPERIMENTAL
Cada equipo trabajar con 2 muestras problema de plantas o semillas segn la lista
mencionada, una de las cuales ser proporcionada por el profesor.
NOTA: La solucin patrn de cianuro de potasio, el cido clorhdrico 0.5 N y el agua destilada
deben estar en bao de hielo antes de realizar la parte experimental.
Preparacin de la tira reactiva
1. Cortar 2 tiras de papel filtro de 2 x 10 cm. El equipo que prepare curva patrn de HCN
deber preparar 6 tiras adicionales.
2. Sumergir las tiras de papel filtro en el reactivo de Guignard y escurrirlas, colocndolas
para su secado sobre una caja de Petri.
3. Introducir las tiras en una estufa que se encuentre estable a una temperatura entre 50 y
55oC, dejndolas aproximadamente 10 min, cuidando que estn humedecidas.
Preparacin de las muestras
NOTA: Antes de comenzar a triturar y pesar su muestra debern tener todos los reactivos
necesarios dentro del matraz, as como lista la tira reactiva, tanto para su muestra como para la
curva patrn.
A cada una de las muestras se le realizar el siguiente procedimiento:
1. Medir 25 mL de agua destilada con pipeta volumtrica y agregarlos a un matraz
Erlenmeyer de 250 mL, colocar el matraz en bao de hielo.
2. Adicionar al matraz del inciso anterior 1 mL de solucin de HCl 0.5N y dos gotas de CHCl3.
3. Poner con cuidado la tira reactiva de papel en el matraz como se indica en la Figura 1.
4. Tapar inmediatamente cada uno de los matraces Erlenmeyer con su tapn despus de
concluir este procedimiento.
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5. Pesar la cantidad de cada muestra de acuerdo con el siguiente cuadro y colocarla en el
mortero, cortarla con la ayuda de las pinzas de diseccin y navaja, y macerarla lo ms
rpido posible.
Semilla o almendra Peso en mg
Manzana 250
Durazno 200
Pern 150
Capuln y cereza 30
Mamey 200
Tabla 1. Pesos recomendados para la determinacin de cianuro en semilla o almendra.
6. Colocar rpidamente la muestra fragmentada en el matraz Erlenmeyer de 250 mL y
tapar de inmediato.
7. Introducir simultneamente en la estufa a 40C los matraces con las muestras problema y
con los correspondientes de la curva estndar de HCN durante 1 hr.
Figura 1. Preparacin de la muestra en el matraz y colocacin de la tira reactiva.
TAPN DE HULE
PAPEL FILTRO
(TIRA ACTIVA)
MUESTRA
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Preparacin de la curva patrn de cido cianhdrico
La curva patrn de HCN se prepara colocando en matraces volumtricos de 25 mL los
volmenes de la solucin patrn de KCN indicados en la siguiente tabla y llevando al aforo
con agua destilada:
Alcuota de la solucin
patrn de KCN (mL)
Concentracin de HCN
(g/mL)
0.0 Blanco
0.1 0.4
0.2 0.8
0.3 1.2
0.4 1.6
0.5 2
Tabla 2. Curva patrn de HCN.
1. Preparar 6 matraces Erlenmeyer de 250 mL agregando 1 mL de la solucin de HCl 0.5 N
y dos gotas de CHCl3. Posteriormente, colocar con cuidado la tira reactiva en el interior
del matraz, cuidando de no mojarla con el contenido, y sujetarla en la boca del matraz
con un tapn, como se indica en la Figura 1.
2. Una vez preparadas las soluciones de la curva patrn, pasarlas de inmediato a los matraces
Erlenmeyer, debidamente etiquetados, y taparlos inmediatamente con su tapn despus de
concluir este procedimiento. Finalmente, colocar los matraces en bao de hielo.
3. Introducir simultneamente en la estufa a 40C los matraces con las muestras problema y
con los correspondientes de la curva estndar de HCN durante 1 h.
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Tratamiento de las muestras problema, curva patrn y blanco
1. Transcurrido el tiempo de incubacin, los matraces se sacan de la estufa y se dejan
enfriar. Decantar el contenido del matraz y colocar el residuo lquido en un contenedor
etiquetado como R1. El material vegetal se deja secar en la campana sobre papel
peridico para ser desechado posteriormente.
2. Introducir en un tubo de ensaye la tira reactiva positiva (procedente de muestra
problema, curva estndar o blanco), adicionar al tubo 20 mL de agua destilada, tapar el
tubo y agitar vigorosamente. Filtrar la solucin con papel filtro para eliminar residuos de
la tira de papel.
3. Determinar la absorbancia de la muestra y de la curva patrn en el espectrofotmetro a
520 nm, utilizando como blanco el primer punto de la curva.
4. Despus de haber realizado la lectura y una vez obtenido resultados, la mezcla se coloca
en un contenedor etiquetado como R2.
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CUESTIONARIO
1. Reporte, en la siguiente tabla, los valores de absorbancia obtenidos e indique los valores
de la regresin lineal.
HCN
[g/mL] Absorbancia
0.4
0.8
1.2
1.6
2
Pendiente (m)
Ordenada al origen (b)
Coeficiente de correlacin lineal (r)
Tabla 1. Absorbancias de la curva patrn.
2. Interpole sus valores de absorbancia en la curva y calcule la concentracin de HCN en
mg/100g de muestra, indicando el procedimiento realizado para esta determinacin.
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3. Reporte los resultados obtenidos en su grupo y llene la siguiente tabla:
Equipo Material
vegetal
Concentracin de HCN
(g/mL)
mg HCN/100 g
de muestra
Riesgo de
toxicidad*
1
2
3
* alto 10 mg/100g de muestra; bajo < 10 mg/100g de muestra.
Tabla 2. Resultados grupales.
4. Indique cules muestras representan un riesgo potencial en caso de su consumo.
5. Cmo podra eliminar la presencia de glucsidos cianognicos de sus muestras?
6. Proponga un mtodo para extraer txicos voltiles a partir de una muestra.
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Referencias bibliogrficas
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Fabre, R. y Truhaht, R. Tratado de toxicologa. Vol. I. Paraninfo, S.A., Madrid, 1976,
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Speijers, G.J. y Egmoad, H.P. Natural Toxins III. Inherent Plant Toxins en International Food Safety Handbook: Science, International Regulation, and Control. Younes,
M., Fishbein, L., Miller, S., (Eds.). Marcel Dekker, Inc, New York, 1999, pp. 368-
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Vetter, J. (2000). Plant cyanogenic glycosides en Toxicon 38, 11-36.
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APNDICE I
CONOCIMIENTOS PREVIOS
1. Estructura de un glucsido cianognico.
2. Hidrlisis enzimtica de un glucsido cianognico.
3. Importancia toxicolgica de los glucsidos cianognicos.
4. Reaccin de Guignard para la deteccin de HCN.
5. Importancia que tiene que, durante la prctica, la trituracin de la muestra se realice
rpidamente y sea colocada en bao de hielo.
6. Argumento por el cual la tira reactiva no debe tocar la solucin en que se encuentra la
muestra.
7. Razn por la que se da una reaccin positiva sin que la tira reactiva est en contacto
con la muestra.
8. Causa por la cual es necesario colocar en bao de hielo las soluciones de cianuro de
potasio y el HCl 0.5N empleadas en la preparacin de la curva patrn.
9. Finalidad de agregar HCl y CHCl3 a la muestra y a la curva patrn.
10. Propsito de calentar la muestra a 40C en la estufa.
APNDICE II
PREPARACIN DE REACTIVOS
Reactivo de Guignard
Colocar 2.5 g de cido pcrico en un matraz Erlenmeyer de 250 mL y disolver con 200 mL
de agua destilada. Enseguida agregar 12.5 g de carbonato de sodio (Na2CO3) y agitar
cuidadosamente para disolverlo. Llevar la solucin a un volumen de 500 mL con agua
destilada.
NOTA: Manejar con cuidado el cido pcrico, ya que esta sustancia es cancergena y se absorbe
fcilmente por la piel.
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Solucin patrn de cianuro de potasio (KCN)
Se pesan exactamente 12.05 mg de KCN. Transferir la pesada cuidadosamente a un matraz
aforado de 50 mL, disolver y aforar con agua destilada.
NOTA: A pesar de que la concentracin utilizada de KCN en este guin es de aproximadamente
0.24 mg/mL y esta concentracin est por debajo de la DL50 en ratones, no deber descuidar las
medidas de seguridad para su trabajo.
Solucin cido clorhdrico 0.5 N (HCl)
Medir 42.5 mL de HCl concentrado (densidad: 36.46g/100mL) y vaciar a un matraz
volumtrico de 1000 mL que contiene aproximadamente 500 mL de agua destilada, aforar
enseguida con agua destilada.
APNDICE III
DISPOSICIN DE RESIDUOS
R1: Solucin acuosa de HCl (0.5 N), KCl, KCN.
R2: Solucin de cido pcrico, Na2CO3, restos de isopurpurina.
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PRODUCCIN DE METAHEMOGLOBINA POR NITRITOS Y
EFECTO PROTECTOR DEL AZUL DE METILENO IN VIVO
OBJETIVO ACADMICO
Que el alumno observe la formacin de metahemoglobina (MHb) como consecuencia de la
administracin de nitrito de sodio y el efecto protector del azul de metileno.
PROBLEMA
Determinar cuantitativamente, en ratas tratadas con NaNO2, la reduccin en el porcentaje
de MHb debida a la administracin de azul de metileno.
Reactivos
- Heparina 1000 UI o EDTA al 10% - Solucin amortiguadora de fosfatos*
- Cianuro de potasio* (KCN) - Ferricianuro de potasio* (K3[Fe(CN)6])
- Solucin salina isotnica (SSI) - Nuevo azul de metileno*
- cido actico glacial (CH3COOH) - Nitrito de sodio* (NaNO2)
- Hidrxido de amonio (NH4OH) - ter dietlico
*Ver apndice II.
Equipo
- Espectrofotmetros UV-Vis
- Centrfugas
- Balanza para pesar animales
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Material
- Jeringa de insulina (traer por equipo) 3 - Jeringa de 3 mL (traer por equipo) 3
- Tubos de ensaye 13x100 1 - Tijeras de diseccin 1
- Pinzas de diseccin 1 - Tabla de diseccin 1
- Caja de contencin 1 - Rejilla 1
- Pipeta graduada de 5 mL 2 - Pipeta graduada de 1 mL 1
- Pipeta graduada de 0.1 mL 1 - Tubos de ensaye 16 x 150 3
Animales de experimentacin
3 Ratas Wistar macho de 200-250 g (por equipo).
DESARROLLO EXPERIMENTAL
1. Pesar a cada uno de los animales e identificarlos como I, II y III.
2. Administrar a la rata III, por va intraperitoneal (i.p.) una dosis de 2 mg/Kg de la
solucin de azul de metileno y, 15 minutos despus, administrar por la misma va, 50
mg/Kg de la solucin de nitrito de sodio.
3. Administrar a la rata I, por va i.p., 1 mL/Kg de SSI.
4. Administrar a la rata II, por va i.p., 50 mg/Kg de la solucin de nitrito de sodio.
5. Dejar transcurrir 30 min despus de la administracin.
6. Preparar 3 jeringas con 0.1 mL de solucin de heparina o EDTA y 3 tubos de ensaye
con 0.3 mL del mismo anticoagulante e identificarlos de acuerdo con el nmero de rata
correspondiente.
7. Anestesiar a cada rata con ter, colocarla en la tabla de diseccin y extraer de cada una,
por puncin cardiaca, 1 mL de sangre.
8. Colocar la muestra sangunea en el tubo correspondiente. Quitar la aguja de la
jeringa para evitar hemolizar la muestra sangunea. Mezclar los tubos
perfectamente por inversin, para evitar la coagulacin de las muestras.
9. Depositar las jeringas y las agujas en el contenedor para residuos peligrosos biolgico-
infecciosos (RPBI). Envolver los restos de los animales de experimentacin en una
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hoja de papel peridico y colocarlos en la caja de contencin para su posterior
incineracin.
10. Determinar el contenido de metahemoglobina y hemoglobina total de cada muestra
como se indica a continuacin:
a) Colocar 4.9 mL de solucin amortiguadora de fosfatos pH 6.6 en un tubo de ensaye.
b) Agregar 0.1 mL de sangre. Conservar el resto de la muestra hasta el final de la
determinacin y despus desactivar con hipoclorito de sodio (NaClO).
c) Mezclar y dejar reposar durante 5 minutos.
d) Centrifugar a 2500 rpm durante 10 minutos.
e) Separar el sobrenadante.
f) Medir la absorbancia del sobrenadante a 630 nm (lectura A1), contra un blanco de
solucin amortiguadora de fosfatos.
g) Pasar la solucin a un tubo limpio.
h) Agregar una gota de la solucin neutralizada de KCN al sobrenadante y al blanco.
i) Mezclar y dejar reposar 2 minutos.
j) Determinar nuevamente la absorbancia a 630 nm (lectura A2). Recuperar la
solucin en el mismo tubo.
k) Agregar una gota de NH4OH concentrado al tubo del inciso i, y mezclar.
l) Transferir 2 mL de la solucin del tubo del inciso k, a otro tubo y agregar 8 mL de
la solucin amortiguadora y 0.1 mL de la solucin de K3[Fe(CN)6] al 20% en
solucin acuosa. Desechar el sobrante de la solucin proveniente del inciso k en el
contenedor etiquetado como R1.
m) Preparar un blanco empleando 2 mL de agua destilada, 8 mL de solucin
amortiguadora y 0.1 mL de la solucin de K3[Fe(CN)6] al 20% en solucin acuosa.
n) Despus de 2 minutos agregar una gota de la solucin neutralizada de KCN a cada
tubo (blanco y problema).
o) Mezclar, esperar 10 minutos y determinar la absorbancia a 540 nm, contra su
respectivo blanco (lectura A3). Despus de haber realizado la lectura y, una vez
obtenidos los clculos, desechar el contenido de la celda y el resto de la solucin
del inciso n en el contenedor etiquetado como R1.
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NOTA: Todo material de vidrio que estuvo en contacto con muestras sanguneas deber ser
inactivado con NaClO previamente a su lavado.
11. Clculos:
Hemoglobina total (Hbt) en g/100 mL = A3 x 37.4
Metahemoglobina total (MHbt) en g/100 mL = (A1 - A2) 23.4
Porcentaje de MHb en sangre total (%MHbt) = (MHbt) x 100/Hbt
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CUESTIONARIO
1. Reporte los resultados grupales en las siguientes tablas:
Equipo SSI NaNO2
Azul de metileno
+ NaNO2
A1 A2 A3 A1 A2 A3 A1 A2 A3
1
2
3
Tabla 1. Lecturas espectrofotomtricas.
Eq
SSI NaNO2 Azul de metileno +
NaNO2
Hbt
(g/100 mL)
MHbt
(g/100mL)
Hbt
(g/100 mL)
MHbt
(g/100mL)
Hbt
(g/100 mL)
MHbt
(g/100mL)
1
2
3
Prom
SD
%CV
Tabla 2. Determinaciones de Hb y MHb totales.
Equipo SSI NaNO2 Azul de metileno + NaNO2
%MHbt %MHbt %MHbt
1
2
3
Prom
SD
%CV
Tabla 3. Comparacin del porcentaje de MHb en los diferentes tratamientos.
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2. Graficar los resultados promedio de Hbt y MHbt para cada tratamiento.
3. Graficar los resultados porcentuales de MHbt para cada tratamiento.
4. Qu efecto observ en el %MHbt en la rata II? A qu lo atribuye?
5. Qu efecto observ en el %MHbt en la rata III? A qu lo atribuye?
6. Observ algn cambio en la cantidad de Hbt en funcin de los xenobiticos
administrados? Por qu?
7. Por qu es necesario comparar la cantidad de MHbt en valores porcentuales?
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Referencias bibliogrficas
Dreisbach, R.H. y Robertson, W.O. Tratamiento de los envenenamientos en Manual de toxicologa clnica, prevencin diagnstico y tratamiento, Editorial El Manual
Moderno (6 ed.), Mxico, D.F., 1988, pp. 68-70.
Hall, R.; Malia, R.G. Investigation of hemolitic anaemias en Medical Laboratory Hematology. Ed. Butterworths, Gran Bretaa, 1984, pp. 327-333.
Klassen, C.D.; Watkins, J.B; Casarett & Doull, Manual de Toxicologa. Ed. McGraw-Hill
Interamericana (5 ed.), Mxico, 2001, pp. 394 y 395.
Stahr, H.M. Inorganic and other Analisis en Analitical Methods in toxicology. Ed. John Wiley and sons, inc., USA, 1991, pp. 5-7.
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APNDICE I
CONOCIMIENTOS PREVIOS
1. Efectos txicos de una intoxicacin por nitritos.
2. Efectos txicos de una intoxicacin con azul de metileno.
3. Esquema que explique el efecto protector del azul de metileno en una intoxicacin por
nitritos.
4. Fundamento de los mtodos analticos para determinar hemoglobina total y
metahemoglobina en sangre.
5. Especies que se determinan en A1, A2 y A3.
6. Propsito de agregar la solucin amortiguadora de fosfatos pH 6.6, NH4OH en el paso
k de su tcnica, K3[Fe(CN)6] y KCN.
APNDICE II
PREPARACIN DE REACTIVOS
Solucin amortiguadora de fosfatos pH = 6.6.
Realizar una primera solucin amortiguadora de fosfatos, disolviendo 3.8 g de fosfato
disdico anhidro (Na2HPO4) y 5.44 g de fosfato monopotsico anhidro (KH2PO4) en 1000 mL
de agua destilada. Mezclar una parte de la solucin anterior con tres partes de agua
destilada y ajustar el pH a 6.6.
Solucin de cianuro de potasio neutralizada. (KCN)
Mezclar una parte de una solucin de cianuro al 10% y otra parte de cido actico glacial al
12% (v/v).
NOTA: Tanto el cianuro de hidrgeno como los cianuros slidos o en disolucin son txicos por
absorcin por la piel, ingestin e inhalacin.
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Solucin de ferricianuro de potasio al 20%. (K3[Fe(CN)6])
Preparar 10 mL de esta solucin.
Solucin Salina Isotnica (SSI)
Preparar 50 mL de esta solucin o comprar una presentacin comercial.
EDTA al 10%. (Preparar slo en caso de no haber heparina, consultar con el laboratorista
o el profesor)
Pesar 1 g de EDTA y disolver en agua destilada, aforar a 10 mL.
Solucin de nuevo azul de metileno en SSI (4 mg/mL)
Preparar 10 mL de esta solucin, pesando 40 mg de nuevo azul de metileno y disolviendo
en 10 mL de SSI.
Solucin de nitrito de sodio (NaNO2) en SSI (100 mg/mL)
Preparar 10 mL de esta solucin, pesando 1 g de NaNO2 y disolvindolos en 10 mL de
solucin salina isotnica.
APNDICE III
DISPOSICIN DE RESIDUOS
R1: Solucin amortiguadora de fosfatos pH 6.6, KCN, NH4OH, K3[Fe(CN)6] y residuos de
sangre.
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DETERMINACIN DE MALATIN RESIDUAL
OBJETIVO ACADMICO
Que el alumno sea capaz de extraer y cuantificar un xenobitico empleando sus
propiedades cido-base y reacciones de degradacin.
PROBLEMA
Cuantificar malatin residual en la superficie de vegetales comestibles y reportar un
porcentaje de recuperacin mayor o igual al 75% en la muestra control. Relacionar la
cantidad de insecticida presente en ambas muestras con el riesgo toxicolgico de su
consumo.
Material
Material vegetal
Traer por equipo 50 g de cscara de limn, calabaza o chayote; o bien 50 g de hojas
externas de col o coliflor.
Material por equipo
- Frasco de vidrio de boca ancha
con tapa (traer por equipo)
2
- Probeta graduada de 25 mL
1
- Pipeta volumtrica de 10 mL 1 - Tubo de ensaye de 16 x 150 2
- Pipeta graduada de 1 mL 3 - Vasos de precipitado de 100 mL 2
- Pipeta graduada de 5 mL 2 - Propipeta 1
- Pipeta graduada de 10 mL 2 - Soporte universal c on anillos de fierro 2
- Embudo de filtracin rpida 2 - Embudo de separacin de 125 mL 2
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Material para la curva
- Embudo de separacin de 125 mL 3 - Pipeta graduada de 5 mL 1
- Tubo de ensaye de 16 x 150 3 - Vasos de precipitado de 100 mL 3
- Embudo de filtracin rpida 3
Reactivos
- Sulfato de sodio* (Na2SO4) - Malatin al 50%
- Hidrxido de sodio* (NaOH) - Fenolftalena*
- Cloruro frrico* (FeCl3) - Etanol (EtOH)
- Sulfato cprico* (CuSO4) - Tetracloruro de carbono (CCl4)
- Acetona - Disulfuro de carbono (CS2)
* Ver apndice II.
DESARROLLO EXPERIMENTAL
1. Colocar 25 g del material de estudio (nicamente la cscara o superficie del vegetal) en
un frasco de vidrio de boca ancha y aadir 30 mL de CCl4, tapar y agitar
vigorosamente durante 5 minutos.
2. Filtrar y recolectar cuando menos 20 mL. Medir el volumen exacto con una probeta.
3. Desechar el material vegetal tratado con CCl4 colocndolo sobre un papel peridico,
identificar como R1 y colocar en la campana. Al finalizar la sesin, los responsables de
seguridad e higiene debern colocar R1 en una bolsa de plstico y cerrarla.
4. Preparar un tubo problema con 10 mL del extracto filtrado, midiendo con pipeta
volumtrica. Adicionar a cada tubo 0.2 mL de solucin de CS2 al 0.5% y 5 mL de
etanol. Pasar esta mezcla a un embudo de separacin y agitar suavemente.
5. Adicionar 15 mL de solucin cida de Na2SO4 al 9% y agitar cuidadosamente el
embudo por 1 minuto.
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6. Colectar la fase orgnica en un vaso de precipitado y filtrarla, transfirindola nuevamente al
embudo de separacin enjuagado previamente con acetona. Etiquetar la fase acuosa como R2.
7. Aadir 5 mL de etanol, agitar y aadir 0.2 mL de NaOH 6N. Agitar nuevamente por 5
minutos, dejar reposar durante 1 minuto y adicionar 15 mL de solucin de Na2SO4 al 9%.
Mezclar, separar las fases, recolectar la fase acuosa y desechar la fase orgnica
etiquetndola como R3.
8. Aadir 5 mL de CCl4 a la fase acuosa y una gota de indicador fenolftalena al 1%.
Neutralizar gota a gota con HCl 6N con agitacin continua hasta la desaparicin del
color azul violeta.
9. Agregar 0.2 mL de solucin de FeCl3, agitar y desechar la fase orgnica en el
recipiente etiquetado como R3.
10. Aadir a la fase acuosa 5 mL de CCl4 y 0.3 mL de solucin de CuSO4 al 3.5% y agitar.
Colectar la fase orgnica y desechar la fase acuosa etiquetndola como R4.
11. Leer la fase orgnica en el espectrofotmetro a 416 nm, ajustando previamente a 100%
de transmitancia con CCl4.
12. Una vez que se obtengan los resultados finales, desechar la fase orgnica, etiquetndola
como R5.
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Procedimiento para la curva patrn
Preparar la curva patrn de la siguiente forma:
Tubo Reactivos Concentracin
1 1 mL de solucin patrn de malatin + 4 mL de etanol 8 g/mL
2 2.5 mL de solucin patrn de malatin + 2.5 mL de etanol 20 g/mL
3 5.0 mL de solucin patrn de malatin 40 g/mL
Tabla 1. Procedimiento para la curva patrn de malatin.
Colocar el contenido de cada tubo en un embudo de separacin. Adicionar 10 mL de CCl4 y
0.2 mL de solucin de CS2 al 0.5%. Agitar suavemente y continuar el procedimiento como
en la muestra a partir del inciso 5.
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Referencias bibliogrficas
Adrien, A. Selective Toxicity: the physicochemical basis of therapy. Ed. Chapman and Hall
(6a ed.), London, 1979, pp. 455-463.
CremLyn, C. Pesticides and mode of action, John Wiley & Sons, New York, 1978.
Katzung, B. Farmacologa Bsica y Clnica. Ed. El Manual Moderno (7 ed.), Mxico,
1999, pp. 119-121.
Klassen, C.D.; Watkins, J.B. Casarette & Doull, Manual de Toxicologa. Ed. McGraw-Hill
Interamericana, Mxico, 2001, pp. 615-618, 624-634, 937.
Morifusa, E. Organophosphorus pesticides: Organic and Biological Chemistry. CRC Press,
Cleveland, 1979, pp. 62-77, 103, 196-199.
Negherban, O.W. Handbook of toxicology: Insecticides. W.B. Saunders Comp., E.U.A.,
1959, pp. 451-464.
Norris, M.V.; Voil, W.A.; Averall, P.R. Colorimetric estimation of malation residues en Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1954, 2, p. 570.
Robertson, W.O., Dreishbad, R.H. Manual de Toxicologa Clnica. Prevencin,
Diagnstico y Tratamiento. El Manual Moderno (6 ed.), Mxico, 1987, pp. 95-104.
White-Stevens, R. Pesticides in the Environment, Part I and II, Marcel Dekker, Inc., New
York, 1971.
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CUESTIONARIO
1. Reporte sus resultados en la siguiente tabla:
Malatin (g/mL) %Transmitancia Absorbancia
8
20
40
Muestra 1
Muestra 2
Pendiente (m)
Ordenada al origen (b)
Coeficiente de correlacin lineal (r)
Tabla 1. Resultados.
2. Explique por qu se determinan las lecturas en transmitancia.
3. Indique el procedimiento que sigui para realizar los clculos de concentracin de
malatin en sus muestras.
4. Reporte los resultados grupales en la siguiente tabla:
Equipo Material
vegetal
Malatin
(g/mL)
Rendimiento Malatin en la
muestra (ppm)
Riesgo
txico*
1
---
2
---
3
---
* Alto 8 ppm; bajo < 8 ppm
Tabla 2. Resultados grupales.
5. De acuerdo con los resultados obtenidos, concluya si existe un riesgo toxicolgico por el
consumo del material vegetal analizado.
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6. En caso de encontrar una baja concentracin en alguna de las muestras, comente cmo
influira cada uno de estos factores en el resultado del anlisis: A) estabilidad del
compuesto, B) el desarrollo experimental realizado, C) cumplimiento de las normas de
aplicacin del pesticida en cuestin.
APNDICE I
CONOCIMIENTOS PREVIOS
1. Usos y propiedades biolgicas del malatin.
2. Ventajas que presentan los pesticidas organofosforados con relacin a los
organoclorados.
3. Mecanismo de toxicidad del malatin en el insecto.
4. Mecanismo de potenciacin del efecto txico del malatin en insectos.
5. Enzimas involucradas en la destoxificacin del malatin en insectos y en mamferos.
6. Comparacin de los valores de DL50 para mamferos y para insectos.
7. Propsito de adicionar los siguientes reactivos: CCl4, CS2, EtOH, solucin cida Na2SO4
al 9%, NaOH, solucin Na2SO4 al 9%, fenolftalena, HCl, FeCl3 y CuSO4.
8. Dibuje la reaccin que se lleva a cabo con el malatin en medio bsico y presencia de
etanol.
9. Estructura del compuesto de coordinacin que se forma durante la prctica con los
productos de la reaccin anterior y el catin Cu2+
. Relacin matemtica entre
absorbancia y transmitancia.
10. Lmites permitidos de acuerdo con la NOM vigente para el malatin.
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APNDICE II
PREPARACIN DE REACTIVOS
Solucin patrn de malatin 40 g/mL
Medir 0.1 mL de malatin al 50% y aforar con etanol a 100 mL. De esta solucin medir
8 mL y aforar a 100 mL con etanol.
Nota: El malatin es inhibidor de la colinesterasa y se absorbe fcilmente por piel y vas
respiratorias, se debe extremar cuidado con su contacto directo. Sus efectos agudos incluyen
convulsiones, coma y fallo respiratorio.
Disulfuro de carbono al 0.5% (CS2)
Para preparar 100 mL, medir 0.5 mL de CS2 y aforar a 100 mL con CCl4.
Nota: El CS2 es altamente txico, se absorbe por piel y vas respiratorias. Sus efectos txicos incluyen irritacin de membranas, nusea, vmito, prdida de conocimiento y convulsiones.
Sulfato de sodio al 9% (Na2SO4)
Para preparar 100 mL, pesar 9 g de Na2SO4 y aforar a 100 mL con agua destilada.
Solucin cida de sulfato de sodio
A 100 mL de solucin de Na2SO4 al 9% adicionar 3 mL de HCl concentrado.
Hidrxido de sodio 6N (NaOH)
Para preparar 100 mL, pesar 24 g de NaOH y aforar a 100 mL con agua destilada.
cido clorhdrico 6N (HCl)
Para preparar 100 mL, medir 48.5 mL de HCl concentrado y aforar a 100 mL con agua
destilada.
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Cloruro frrico al 5% (FeCl3)
Para preparar 100 mL, pesar 5 g de FeCl3 y disolver en 1 mL de HCl 6N, aforar a 100 mL
con agua destilada.
Sulfato cprico al 3.5% (CuSO4)
Para preparar 100 mL, pesar 3.5 g de CuSO4 y aforar a 100 mL con agua destilada.
Fenolftalena al 1%
Para preparar 100 mL, pesar 1 g y aforar a 100 mL con EtOH.
APNDICE III
DISPOSICIN DE RESIDUOS
R1: Material vegetal con CCl4.
R2: Solucin cida de Na2SO4 al 9% y EtOH.
R3: CCl4 y subproductos orgnicos de hidrlisis cida.
R4: CuSO4, FeCl3, Na2SO4, fenolftalena, H2O.
R5: CCl4 y compuesto de coordinacin de cobre.
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DETERMINACIN DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE
DE LA QUERCETINA Y EL CIDO NORDIHIDROGUAYARTICO
OBJETIVO ACADMICO
Que el alumno sea capaz de determinar la capacidad antioxidante de sustancias qumicas.
PROBLEMA
Determinar la capacidad antioxidante de la quercetina y el cido nordihidroguayartico
mediante la reduccin en la produccin de anin superxido, utilizando el sistema xantina-
xantina oxidasa-nitroazul de tetrazolio.
Reactivos
- Xantina (Xan) - Carbonato de sodio (Na2CO3)
- Xantina oxidasa (XO) - Bicarbonato de sodio (NaHCO3)
- Nitroazul de tetrazolio (NAT) - EDTA
- Quercetina - Nitrato de cobre (Cu(NO3)2)
- cido nordihidroguayartico (ANDG)
Equipo
- Balanza analtica - Potencimetro
- Espectrofotmetro
Material por equipo
- Tubos Eppendorf 1.5 mL 4 - Gradilla 1
- Micropipeta de 100-1000 l 1 - Esptula de cromo nquel 1
- Micropipeta de 10-100 l 1 - Nave de pesado 1
- Celda 1 - Matraces de 250 mL 2
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DESARROLLO EXPERIMENTAL
1. Todo el material de vidrio deber ser enjuagado previamente con EDTA.
2. Marcar 4 tubos Eppendorf como control positivo (C+), control negativo (C-), quercetina
y ANDG.
3. Preparar los tubos de acuerdo con la siguiente tabla, siguiendo el orden de adicin
indicado en la columna reactivo.
Tubo
Reactivo
Control
positivo
(L)
Control
negativo
(L)
Antioxidante 0.25 M
quercetina (L) ANDG (L)
a. Xantina 100 100 100 100
b. EDTA 100 100 100 100
c. Solucin amortiguadora
300 600 200 200
d. NBT 300 300 300 300
e. Antioxidante - - 100 100
f. XO* 300 - 300 300
g. Agitar e Incubar ** 1h 1h 1h 1h
h. Cu(NO3)2 200 200 200 200
* Una vez adicionada, se empieza a contar el tiempo.
** Cerrar el tubo, agitar la mezcla por inversin e incubar a 24-30C.
Tabla 1. Preparacin de los tubos problema y control.
4. Transcurrido el tiempo de incubacin, leer las diferentes muestras a 560 nm, empleando
como blanco una solucin amortiguadora de carbonatos pH 10.2.
5. Interpretar los resultados obtenidos considerando que el control positivo representa el
100% de formazn en el sistema Xan-XO-NAT de acuerdo con la siguiente frmula.
% atrapamiento= 100 - [(AM) x100/A C+]
En donde:
AM= absorbancia de la quercetina y/o ANDG
AC+= absorbancia del control positivo
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6. Una vez obtenidos los resultados, desechar el contenido de los tubos en un frasco
etiquetado como R1.
7. Depositar las puntas y los tubos Eppendorf en un contenedor proporcionado por el profesor.
CUESTIONARIO
1. Reporte sus resultados en la siguiente tabla:
Control positivo (C+) Quercetina ANDG
Absorbancia
% Atrapamiento 0 %
Tabla 1. Resultados por equipo.
2. Cul de los dos antioxidantes muestra una mayor capacidad atrapadora del radical O2-?
3. Considera que el consumo habitual de estos antioxidantes contribuira a disminuir el
estrs oxidante? Justifique su respuesta.
4. Reporte los resultados grupales en la siguiente tabla:
Equipo % de Atrapamiento
Quercetina ANDG
1
2
3
4
Promedio
Desviacin estndar
Tabla 2. Resultados grupales.
5. En caso de que los resultados grupales muestren una elevada variabilidad, discutan a qu
factores se podra atribuir dicho comportamiento.
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Referencias bibliogrficas
Cadenas, E.; Packer, L. Handbook of Antioxidants. Marcel Dekker, Inc., New York, 2002.
Klaassen, C.D., Watkins, J.B. Manual de Toxicologa de Casarett & Doull: la ciencia
bsica de los txicos, (5 ed.), McGraw-Hill, Mxico, 2001.
Klassen, C.D. Casarett and Doulls Toxicologa: la ciencia de los venenos, (6a ed.), Ed. Mc Graw-Hill, Interamericana, 2001.
Martnez-Flrez, S.; Gonzlez-Gallego, J.; Culebras, J.M., y Tun, M.J. (2002). Los flavonoides: propiedades y acciones antioxidantes en Nutricin Hospitalaria. XVII, 271-278.
Owena, P.L.; Johns, T. (1999). Xanthine oxidase inhibitory activity of northeastern north American plant remedies used for gout en Journal of Ethnopharmacology 64, 149-160.
Tsutomu, K.; Susumu, T.; Hidetaka, N., et al. (2003). A novel and potent biological antioxidant, kinobeon A, from cell culture off sunflower en Life Sciences 74, 87-97.
Wardman, P., (2007). Fluorescent and luminescent probes for measurement of oxidative and nitrosactive species in cells and tissues: Progress, pitfalls, and prospects en Free Radical Biology & Medicine 43, 995-1022.
World Health Organization monographs on selected medicinal plants, Volume 1, 1999,
Geneva, pp. 16-32.
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APNDICE I
CONOCIMIENTOS PREVIOS
1. Definicin del proceso de estrs oxidante.
2. Reaccin catalizada por la XO.
3. Nocin de radical libre y especies reactivas.
4. Concepto de antioxidante.
5. Reaccin de Fenton.
6. Propsito de la adicin secuencial de: xantina, EDTA, solucin amortiguadora de
carbonatos pH 10.2, nitroazul de tetrazolio, XO y Cu(NO3)2.
7. Completar los productos en el siguiente diagrama.
+
8. Especie qumica que absorbe a 560 nm.
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APNDICE II
PREPARACIN DE REACTIVOS
Xantina 1.5 mM
Pesar 22.7 mg de xantina, agregar Na2CO3 0.4 M hasta solubilizar y aforar a 50 mL con
solucin amortiguadora de carbonatos.
Solucin amortiguadora de bicarbonato de sodio-carbonato de sodio 84 mM, pH 10.2
Pesar 970 mg de NaHCO3 y 1.01 g de Na2CO3, disolverlos con agua destilada. Ajustar pH a
10.2 y aforar a 250 mL.
Nitroazul de tetrazolio 0.1 M
Pesar 41 mg de nitroazul de tetrazolio y aforar a 50 mL con agua destilada. Guardar la
solucin en un frasco mbar en el refrigerador.
EDTA 0.1 mM
Pesar 33.6 mg de EDTA, disolver con agua destilada, aforar a 1 L.
Xantina oxidasa
La enzima se preparar durante la sesin de laboratorio de acuerdo con la indicacin de los
profesores.
Nitrato de cobre 0.2 mM (Cu(NO3)2)
Pesar 4 mg de Cu(NO3)2 y aforar a 100 mL con agua destilada.
Quercetina 0.25 M
Pesar 1.4 mg de quercetina y aforar a 250 mL con solucin amortiguadora de carbonatos
pH 10.2 (solucin stock).
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PROGRAMA DE APOYO A PROYECTOS PARA LA INNOVACIN Y MEJORAMIENTO DE LA ENSEANZA 64
ANDG 0.25 M
Pesar 1.3 mg de ANDG y aforar a 250 mL con solucin amortiguadora de carbonatos pH
10.2 (solucin stock).
APNDICE III
DISPOSICIN DE RESIDUOS
R1: xantina, xantina oxidasa, EDTA, solucin amortiguadora de carbonatos pH 10.2,
nitroazul de tetrazolio, quercetina, cido nordihidroguayartico, Cu(NO3)2, formazn, cido
rico, H2O2.
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EVALUACIN DE LA ACTIVIDAD GENOTXICA DE LA
CICLOFOSFAMIDA UTILIZANDO LA TCNICA DE
MICRONCLEOS EN MDULA SEA
OBJETIVO ACADMICO
Que el alumno sea capaz de determinar la actividad genotxica de un xenobitico
empleando la tcnica de cuantificacin de microncleos en mdula sea de ratn.
PROBLEMA
Identificar la presencia de microncleos, inducidos por ciclofosfamida, en eritrocitos
policromticos de mdula sea murina.
Animales de experimentacin
Un ratn ICR por equipo, administrado 24 horas antes con ciclofosfamida con una dosis de
40 mg/Kg i.p. o un ratn ICR control negativo no tratado.
Material por equipo
- Tijeras de diseccin 2 - Portaobjetos 6
- Pinzas de diseccin 2 - Pipeta Pasteur 4
- Bulbo para pipeta Pasteur 4 - Contador de clulas 1
- Microscopio ptico 2
Reactivos
- Solucin salina isotnica (SSI) - Colorante de Giemsa 2 %
- Aceite de inmersin. - Etanol (EtOH)
- Solucin amortiguadora de fosfatos pH=6.8
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DESARROLLO EXPERIMENTAL
NOTA: El siguiente protocolo requiere que no pasen ms de 30 minutos entre los pasos 1 y 9.
1. Sacrificar al ratn por dislocacin cervical.
2. Una vez muerto el animal de experimentacin, fijarlo a la mesa de trabajo.
3. Dislocar la articulacin del fmur con la cadera, estirando las patas traseras del animal.
4. Diseccionar y extraer el fmur cortando por arriba de la cresta iliaca (en la cadera) y por
debajo de la rodilla.
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5. Limpiar cuidadosamente cada fmur con papel hasta eliminar totalmente todo el tejido
muscular. Para facilitar la eliminacin del tejido muscular, tomar la parte que queda
debajo de la rodilla y rotarla al lado contrario del movimiento natural de la articulacin
de la rodilla y el fmur.
6. Una vez limpio, cortar cuidadosamente ambas epfisis y lavar el interior del fmur con 3
mL de SSI empleando una jeringa de 3 mL con aguja del nmero 21. Recolectar y reunir
en un mismo tubo de 13 x 100, la mdula de cada fmur.
7. Envolver los restos del animal de experimentacin en una hoja de papel peridico,
colocarlos en la caja de