Laporan Ilmu Kesehatan Ternak (IKT)

1

LAPORAN PRAKTIKUM

ILMU KESEHATAN TERNAK

Disusun Oleh:

Kelompok VIID

M. Yusuf Eko Santoso 23010112130185

Yulianti Puji Astuti 23010112140209

Latifatul Basiroh 23010112130205

Diky Trizana 23010112130182

Rosalia Greta H. 23010112140208

Muhammad Fahim R. 23010112130186

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

2014

2

LEMBAR PENGESAHAN

Judul : LAPORAN PRAKTIKUM ILMU KESEHATAN

TERNAK

Kelompok : VIID (TUJUH D)

Fakultas : PETERNAKAN DAN PERTANIAN

Tanggal Pengesahan : DESEMBER 2014

Menyetujui,

Asisten Pembimbing

-----Vinda Armalani-----

NIM. 23010111140216

Asisten Koordinator

Praktikum

----Dela Ayu Lestari-----

NIM. 23010111140247

Mengetahui,

Koordinator Umum

---Imam Azis Setiawan---

NIM. 23010111120052

Koordinator Praktikum

Ilmu Kesehatan Ternak

-----drh. Siti Susanti, Ph.D-----

NIP. 19780605 200501 2 003

3

RINGKASAN

KELOMPOK VIID. 2014. Laporan Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak. (Asisten :

VINDA ARMALANI).

Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan materi Anamnesa dilaksanakan

pada hari kamis tanggal 6 November 2014, pukul 09.00 – 11.00 di peternakan

milik Bapak Saryanto Desa Kalisidi, Gunung Pati, Semarang. Materi Pemeriksaan

Parasit dilaksanakan pada hari Senin tanggal 22 November 2014 pukul 11.00 WIB

dan dengan materi Nekropsi yang dilaksanakan pada hari Minggu tanggal 30

November 2014 pukul 09.00-11.00 WIB di Laboratorium Fakultas Peternakan

dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang.

Materi yang digunakan dalam Praktikum Pemeriksaan Kesehatan Ternak

Ruminansia (domba indukan dan anakan, termometer, stetoskop, wearpack dan

sepatu boot). Metode yang digunakan adalah anamnesa dengan cara wawancara

kepada peternak. Praktikum Pemeriksaan Mikroskopis Feses dan Preparat Awetan

Parasit (mortar, tabung sentrifuse, gelas objek, kaca penutup, mikroskop, dan

awetan parasit ektoparasit dan endoparasit). Metode yang digunakan pada

pemeriksaan mikroskopis feses adalah metode natif dan sentrifuse. Praktikum

Pengambilan Serum dan Pengamatan Kesehatan Ternak Unggas (ayam broiler,

spuit, gunting bedah, pisau bedah).

Hasil yang diperoleh dari Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak mengenai

Pemeriksaan Kesehatan Ternak yang menggunakan metode anamnesa adalah

ternak dalam keadaan sehat dengan kondisi kandang yang mendukung.

Pemeriksaan Mikroskopis Feses tidak ditemukan adanya telur cacing pada feses

domba sentrifuse. Pengamatan Awetan Parasit, terdapat jenis/macam ektoparasit

dan endoparasit. Pengambilan Serum dan Kesehatan Ternak Unggas, pengambilan

darah dan memisahkan serumnya. Kesehatan Ternak Unggas kurang baik

dikarenakan pada usus timbul bintik-bintik merah yang disebabkan oleh

peradangan.

Kata Kunci : Anamnesa, parasit, nekropsi

4

KATA PENGANTAR

Puji syukur kita panjatkan kepada Allah SWT karena hanya dengan

rahmat dan hidayahNya kami kelompok VIID dapat menyelesaikan Laporan

Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan baik

Penulis mengucapkan banyak terima kasih atas terselesaikanya Laporan

ini kepada drh. Siti Susanti, Ph.D selaku koordinator praktikum Ilmu Kesehatan

Ternak dan kepada Vinda Armalani selaku asisten pembimbing yang telah banyak

memberikan bimbingan dan pembelajaran yang sangat membantu hingga laporan

ini selesai. Tidak lupa Penulis mengucapkan terima kasih terhadap teman-teman

dan semua pihak yang atas kerjasamanya dalam penyusunan sehingga laporan ini

dapat terselesaikan tepat pada waktunya.

Kami harap, dengan membaca laporan ini dapat memberi manfaat bagi

kita semua, dalam hal ini dapat menambah wawasan kita mengenai mata kuliah

Ilmu kesehatan Ternak. Memang laporan ini masih jauh dari sempurna, maka

kami mengharapkan kritik dan saran dari pembaca demi perbaikan menuju arah

yang lebih baik.

Semarang, Desember 2014

Penulis

5

DAFTAR ISI

RINGKASAN ............................................................................................................ i

KATA PENGANTAR ............................................................................................... ii

DAFTAR ISI .............................................................................................................. iii

DAFTAR ILUSTRASI .............................................................................................. vi

DAFTAR LAMPIRAN .............................................................................................. vii

ACARA 1. ANAMNESA

BAB I PENDAHULUAN .......................................................................................... 2

BAB II MATERI DAN METODE ............................................................................ 3

2.1 Materi ..................................................................................................... 3

2.2 Metode ................................................................................................... 3

2.2.1 Analisis Kondisi Peternakan Rakyat .............................................. 3

2.2.2 Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia ................................. 4

BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN.................................................................... 5

3.1 Analisis Kondisi Peternakan Rakyat ...................................................... 5

3.1.1 Pengamatan Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak ................ 6

3.1.2 Tatalaksana ..................................................................................... 8

3.2 Pemeriksaan Kesehatan Ternak ............................................................. 11

3.2.1 Pemeriksaan Tingkah Laku ............................................................ 11

3.2.2 Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak ................................................... 12

BAB IV SIMPULAN DAN SARAN ......................................................................... 14

4.1 Simpulan ................................................................................................ 14

4.2 Saran ...................................................................................................... 14

DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................ 15

ACARA 2. PEMERIKSAAN PARASIT



2.1 Materi ..................................................................................................... 19

Halaman

6

2.2 Metode ................................................................................................... 19

2.2.1. Pemeriksaan Feses Metode Natif .................................................. 19

2.2.2. Pemeriksaan Feses Metode Sentrifuse .......................................... 20

2.2.3. Pengamatan Preparat Parasit ......................................................... 20


3.1 Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses................................................... 21

3.1.1 Metode Natif .................................................................................. 21

3.1.2 Metode Sentrifuse .......................................................................... 22

3.2 Pengamatan Preparat Parasit .................................................................. 23

3.2.1 Ektoparasit ...................................................................................... 23

3.2.1.1 Boophilus microplus .......................................................... 23

3.2.1.2 Cteno cephalides canis ...................................................... 24

3.2.1.3 Bovicola bovis .................................................................... 26

3.2.2 Endoparasit ..................................................................................... 27

3.2.2.1 Moniezia sp. ....................................................................... 27

3.2.2.2 Fasciola gigantica ............................................................. 28

3.2.2.3 Raillietina sp. ..................................................................... 30


4.1 Simpulan ................................................................................................ 32

4.2 Saran ...................................................................................................... 32

DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................ 33

ACARA 3. NEKROPSI



2.1 Materi ..................................................................................................... 37

2.1 Metode ................................................................................................... 37

2.2.1. Pemeriksaan Kesehatan Unggas (Broiler)..................................... 37

2.2.2. Pengambilan Darah ....................................................................... 38

2.2.3. Nekropsi ........................................................................................ 38


3.1 Pengamatan Perfomans Unggas ............................................................. 39

3.2 Pengambilan Darah ................................................................................ 40

3.3 Nekropsi ................................................................................................. 42

3.3.1 Pemeriksaan Permukaan Kulit Ayam ............................................ 42

3.3.2 Pemeriksaan Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit ............. 43

3.3.3 Pemeriksaan Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut

-------------di buka........................................................................................... 44

3.3.4 Pemeriksaan Saluran Pencernaan ................................................... 45

3.3.5 Pemeriksaan Hati............................................................................ 47

7

3.3.6 Pemeriksaan Jantung ...................................................................... 48

3.3.7 Pemeriksaan Ginjal ........................................................................ 49

3.3.8 Pemeriksaan Pancreas ................................................................... 50

3.3.9 Pemeriksaan Trachea ..................................................................... 51

3.3.10 Pemeriksaan Paru – paru .............................................................. 52

3.3.12 Pemeriksaan Syaraf ...................................................................... 53


4.1 Simpulan ................................................................................................ 54

4.2 Saran ...................................................................................................... 54

DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................ 55

LAMPIRAN ............................................................................................................... 57

8

DAFTAR ILUSTRASI

1. Wawancara dengan peternak.................................................................................. 5

2. Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak ............................................................ 6

3. Kondisi ternak domba ............................................................................................ 8

4. Pengamatan Jarak Jauh dan Jarak Dekat ................................................................ 11

5. Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak........................................................................... 12

6. Boophilus microplus .............................................................................................. 23

7. Cteno cephalides canis ........................................................................................... 24

8. Bovicola bovis ........................................................................................................ 26

9. Moniezia sp. ........................................................................................................... 27

10. Fasciola gigantica ................................................................................................ 28

11. Raillietina sp. ....................................................................................................... 30

12. Pengamatan Perfomans Unggas ........................................................................... 39

13. Sampel Darah Ayam Broiler ................................................................................ 40

14. Kondisi Kulit Ayam Broiler ................................................................................. 42

15. Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit ........................................................ 42

16. Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut Dibuka ................................. 44

17. Saluran Pencernaan .............................................................................................. 45

18. Hati ....................................................................................................................... 47

19. Jantung ................................................................................................................. 48

20. Ginjal .................................................................................................................... 49

Halaman No.

9

21. Pancreas ............................................................................................................... 50

22. Trachea ................................................................................................................ 51

23. Paru-paru .............................................................................................................. 52

24. Syaraf ................................................................................................................... 53

10

DAFTAR LAMPIRAN

1. Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia ......................................................... 57

2. Pemeriksaan Feses dan Pengamatan Preparat Parasit ............................................ 60

3. Pemeriksaan Kesehatan Ternak Unggas ................................................................ 65

Halaman No.

11

ACARA 1

ANAMNESA

12

BAB I

PENDAHULUAN

Anamnesa adalah upaya mencari tahu dengan bertanya kepada pemilik

hewan, mengenai segala sesuatu yang berhubungan dengan penyakit yang diderita

oleh hewan yang diperiksa (sejarah hewan sebelum sakit, dan keadaan hewan

pada saat sakit). Kegiatan ini sangat efektif untuk memahami kondisi yang ada

dalam peternakan khususnya peternakan ruminansia terutama dalam hal kesehatan

ternak. Pemeriksaan kesehatan ternak yang dapat dilakukan bisa berupa

pengamatan tingkah laku, kemudian dapat dilanjutkan dengan pemeriksaan fisik.

Pemeriksaan kesehatan yang dilakukan merupakan modal penting untuk

memajukan sebuah usaha peternakan.

Praktikum ini bertujuan untuk menganalisis kondisi peternakan dan

kesehatan ternak yang ada. Adapun manfaat dari praktikum ini adalah untuk

meningkatkan daya analisa mahasiswa khususnya dalam hal kondisi peternakan

dan kesehatan ternak yang terjadi di peternakan secara langsung.

13

BAB II

MATERI DAN METODE

Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan materi Pemeriksaan Kesehatan

Ternak Ruminansia, dilaksanakan pada hari kamis tanggal 6 November 2014,

pukul 09.00 – 11.00 di peternakan milik Bapak Saryanto Desa Kalisidi, Gunung

Pati, Semarang.

2.1. Materi

Alat yang digunakan dalam praktikum ini yaitu termometer untuk mengukur

suhu rektal, stetoskop untuk mendengarkan frekuensi denyut nadi dan gerak

rumen, stopwatch untuk mengukur waktu, catatan dan alat tulis untuk mencatat

hasil wawancara. Bahan yang digunakan dalam praktikum ini yaitu domba induk

dan anakan.

2.2. Metode

2.2.1. Analisis Kondisi Peternakan Rakyat

Untuk analisis kondisi peternakan rakyat, kegiatan wawancara dilakukan

dengan tanya jawab dengan pemilik peternakan seperti pendidikan peternak, asal

mula beternak, pemilik, alamat, tahun berdiri, ilmu otodidak atau belajar, jumlah

ternak, penyakit yang pernah ada, gejala dan cara menangani, pencegahan

penyakit, jenis pakan dan pemberian pakan, dan cara membersihkan kotoran.

14

2.2.2. Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia

Untuk pengamatan kondisi lingkungan, dilakukan pengamatan meliputi

jarak kandang, sumber air, suhu udara, tiupan angin, tempat pakan dan minum,

bangunan kandang dan kebersihan kandang. Sedangkan kegiatan pemeriksaan

kesehatan ternak, dilakukan pemeriksaan seperti aktivitas ternak, nafsu makan,

pemeriksaan fisik (suhu rektal, gerakan pernafasan, kecepatan pulsus, gerak usus,

gerak rumen, kondisi feses dan urin), dan pengambilan sampel feses.

15

BAB III

HASIL DAN PEMBAHASAN

3.1. Analisis Kondisi Peternakan Rakyat

Berdasarkan hasil praktikum didapatkan hasil sebagai berikut.

Sumber: Data Primer Praktikum

Ilmu Kesehatan Ternak, 2014.

Ilustrasi 1. Wawancara dengan peternak

Peternakan domba milik Bapak Suryanto berada di Desa Kalisidi, Gunung

Pati. Beliau mendapat ilmu peternakan dari pendidikannya di D3 MUP.

Peternakan domba ini mulai berdiri pada tahun 2013. Jumlah ternak domba yang

dipelihara sekarang ada 8 ekor jantan, 1 betina dan 1 ekor cempe.

Penyakit yang biasanya menyerang ternak domba adalah pilek. Identifikasi

penyakit dilakukan dengan cara melihat menurunnya nafsu makan ternak dan

keluarnya lendir pada hidung ternak, penanganan dilakukan dengan melakukan

exercise. Ternak terserang pilek kemungkinan dikarenakan suhu udara sekitar

16

yang dingin serta kandang yang kurang tertutup. Menurut Subronto (2003) bahwa

faktor-faktor yang dapat mempengaruhi kesehatan hewan antara lain faktor

mekanis, termis, nutrisi, pengaruh zat kimia, keturunan, dan sebagainya.

Pencegahan penyakit dilakukan dengan cara vaksin, pemberian obat cacing

(Vermi parasol) , obat kutu ( Subkutan ), setiap sebulan sekali. Jenis pakan yang

diberikan pada ternak adalah hijauan berupa rumput lapang dan rumput gajah

serta diberi konsentrat. Bapak Suryanto member pakan dombanya dua kali sehari,

waktu pemberian pakan pada pukul 08.00 dan 22.00 malam. Pagi hari pukul 08.00

domba di beri konsentrat 400 gram/ekor setelah konsentrat habis diberi hijauan

berupa rumput lapang dan rumput gajah. Malam hari pukul 22.00 domba hanya

diberi pakan hijauan.

3.1.1. Pengamatan Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak


Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu

Kesehatan Ternak, 2014.

Ilustrasi 2. Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak

17

Jarak kandang dengan rumah sekitar 50 meter, jarak kandang tersebut sudah

cukup baik karena tidak terlalu dekat dengan rumah atau pemukiman. Selain

ternak domba terdapat ternak kambing dan ayam di area kandang tersebut.

Sumber air didapat dari jet pom, suhu lingkungan kandang 29ᵒC dan kecepatan

angin 7 mphMw. Menurut pendapat Suprijatna,et.al (2008 ) yang menyatakan

bahwa lokasi kandang sebaiknya agak jauh minimal 10 m dari rumah penduduk.

Banyak tanaman yang tumbuh di sekitar kandang seperti sayuran, rempah-

rempah, pohon durian dan rumput lapangan. Sehingga membuat sejuk dan

nyaman pada lingkungan peternakan. Kondisi lingkungan sangatlah mendukung

karena memenuhi syarat. Jahi (2005) yang menambahkan bahwa disekitar

kandang sebaiknya ditanami beberapa pohon-pohon atau hijauan agar mudah

dalam mencari pakan dan menambahkan oksigen untuk ternak.

Sifat bangunan semi permanen, kandang dibuat panggung dengan dinding

setengah terbuat dari bambu, alas dari bilah kayu. Kondisi kandang yang bersih,

tidak lembab dan tidak becek membuat ternak nyaman berada di dalam kandang.

Menurut pendapat Zaida et al (2008) menyatakan bahwa kandang domba ada dua

tipe yaitu tipe permanen dan semi permanen. Sebaiknya dalam pembuatan tempat

pakan dan tempat minum bagi ternak domba adalah permanen. Pada sekitar

kandang domba terdapat kandang kambing dan unggas. Zaida et al (2008)

menambahkan bahwa tidak ada masalah apabila di sekitar peternakan domba ada

peternakan lain asalkan tidak saling menggangu dan tidak membahayakan.

18

3.1.2. Tatalaksana

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diperoleh data sebagai

berikut:



Ilustrasi 3. Kondisi ternak domba

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa

kebersihan ternak domba dan kandang selalu terjaga yaitu ditandai dengan bulu

pada domba bersih, tidak terdapat kutu (ektoparasit), kondisinya sehat, serta

kandang yang cukup bersih ditandai dengan tidak ada timbulnya bau yang tidak

sedap atau menyengat. Hal tersebut dikarenakan ternak domba selalu dimandikan

secara rutin yaitu 1 minggu sekali dan pembersihan kotoran atau feses domba

tersebut yaitu dengan cara disiram menggunakan air yang bertekanan tinggi agar

dapat langsung mengalir ke selokan. Berdasarkan pendapat Rismayanti (2010)

bahwa domba sebaiknya dimandikan secara rutin seminggu sekali agar tubuhnya

19

tidak kotor dan tidak menjadi sarang penyakit. Berdasarkan pendapat Nugroho

(2011) bahwa kebersihan kandang harus terjaga yaitu dengan membersihkan

kandang dua kali sehari pada pagi dan sore hari, kegiatan kebersihan kandang ini

termasuk kegiatan sanitasi yang meliputi sanitasi kandang, sanitasi lingkungan,

sanitasi peralatan, sanitasi lingkungan perkandangan, dan sanitasi pekerja.

Pakan yang diberikan pada ternak domba yaitu konsentrat sebanyak 400

g/ekor/hari yang diberikan pada pukul 08.00 WIB, dan hijuan yaitu rumput

lapangan dan rumput gajah diberikan setelah konsentrat tersebut telah habis,

kemudian pada pukul 22.00 WIB ternak domba diberikan pakan tambahan yaitu

hijauan. Berdasarkan pendapat Rismayanti (2010) bahwa pemberian pakan yang

baik adalah sesuai dengan kebutuhan nutrisi ternak dan jumlahnya disesuaikan

dengan status fisiologis ternaknya, serta domba memerlukan bahan pakan berupa

hijauan dalam jumlah besar yaitu sekitar 90 %. Menurut pendapat Hudallah

(2007) bahwa pemberian konsentrat diberikan 2 jam sebelum pemberian pakan

kasar dengan tujuan untuk meningkatkan kecernaan BK dan bahann organik

ransum, selain itu pola pemberian pakan tersebut dapat merangsang aktivitas

mikroba rumen sehingga dapat meningkatkan daya cerna dan konsumsi hijauan.

Penyakit yang sering terjadi pada ternak domba yaitu influenza (flu)

ditandai dengan adanya lendir yang sering keluar pada hidung domba dan nafsu

makan juga menurun. Cara penanganan penyakit influenza (pilek) pada ternak

domba yang terkena penyakit tersebut yaitu ternak domba dijemur dengan cara

diumbarkan (exercise) agar ternak domba dapat memperoleh sinar matahari secara

langsung dan aktif untuk bergerak. Pencegahan penyakit pada ternak domba yaitu

20

setiap bulan domba diberikan vaksin, obat cacing (vermin prazoi), obat kutu

dengan metode subkutan, dan selalu diberikan vitamin. Berdasarkan pendapat

Rismayanti (2010) bahwa kesehatan menentukan tingkat keberhasilan usaha

ternak domba, oleh karena itu ternak domba harus sehat, kandang harus bersih, air

minum diberikan teratur dan bersih, dan penyakit yang sering terjadi pada ternak

domba yaitu bloat (kembung), cacing, dan kudis (kurap, scabies). Darmono dan

Hardiman (2011) menyatakan bahwa faktor yang menyebabkan terjadinya

penyakit pada ternak domba yaitu a). manajemen pemeliharaan meliputi sistem

perkandangan, pakan, dan kontrol kesehatan ternak, b). kualitas lingkungan

meliputi kebersihan, dan c). wabah (outbreak), selain itu pencegahan yang dapat

dilakukan yaitu manajemen pemeliharaan yang baik, sistem perkandangan yang

selalu dibersihkan, cukup ventilasi, tidak lembab dan populasinya tidak terlalu

padat.

21

3.2. Pemeriksaan Kesehatan Ternak

3.2.1. Pemeriksaan Tingkah Laku




Ilustrasi 4. Pengamatan Jarak Jauh dan Jarak Dekat

Pengamatan jarak jauh dapat dilihat bahwa ternak domba baik induk

maupun anakan memiliki kondisi tubuh yang sehat dan bobot badan yang

memenuhi, hal ini dapat diketahui dengan melihat bentuk kaki yang simetris

antara depan dan belakang, bulu yang halus dan bersih, nafsu makan yang tinggi,

punggung lurus dan memiliki proporsi tubuh yang baik. Menurut pendapat

Bambang (1990) yang menyatakan bahwa domba yang baik memiliki punggung

lurus, dada dalam dan lebar serta tidak cacat, kaki lurus dan alat kelamin normal.

Dijelaskan lebih lanjut oleh pendapat Mulyono (2011) yang menyatakan bahwa

domba yang baik memiliki ciri-ciri yaitu ukuran badan besar, perut normal, dada

dalam dan lebar, kaki kokoh dan alat kelamin simetris.

22

Pengamatan jarak dekat dapat diketahui dengan melihat ternak memiliki

kesehatan yang baik, hal ini ditunjukkan dari ternak yang memiliki sikap tanggap

yang cepat ketika peternak datang, ternak tidak memiliki kelainan tubuh, kondisi

lubang tubuh seperti mulut, telinga, mata, anus, alat kelamin, dan putting bersih.

Hal ini sesuai dengan pendapat Bambang (1998) yang menyatakan bahwa ternak

yang memiliki kesehatan yang baik ditandai dengan bagian mulutya tidak

mengeluarkan lendir, kaki simetris, dan mata besinar. Ditambahkan oleh Santosa

(2010) menyatakan bahwa struktur kaki yang lurus dan simetris akan lebih kuat

menopang berat badan ternak daripada kaki yang tidak lurus dan simetris, karena

beban berat tubuh akan ditahan dengan seimbang oleh kedua kaki.

3.2.2. Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak




Ilustrasi 5. Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak

23

Berdasarkan hasil praktikum menunjukkan bahwa kondisi domba secara

umum dalam keadaan sehat. Untuk domba induk, frekuensi nafas 40/menit, suhu

rektal 38,10C, denyut nadi 72/menit, dan gerak rumen 1/menit. Sedangkan domba

anakan, frekuensi nafas 60/menit, suhu rektal 38,20C, denyut nadi 75/menit, dan

gerak rumen 2/menit. Kondisi ini menunjukkan domba dalam kondisi normal

karena pemeliharaan domba dari peternak maupun kondisi lingkungan yang

dilakukan secara umum sudah baik. Hal ini sesuai dengan hasil penelitian

Tajiddudin (2006) bahwa rata-rata frekuensi nafas domba antara 20,00 - 43,96,

rata-rata suhu rektal 38,35-40,68, dan rata-rata denyut nadi 60,58-89,42.

Sedangkan untuk gerak rumen menurut (Widiyono et al., 2003) mulai dapat

terdeteksi pada umur 4 minggu (28-33) dengan frekuensi sebesar 0,63 kali/menit

dan cenderung meningkat seiring bertabahnya umur menjadi 1,75 kali/menit

(umur 84-90 hari). peningkatan aktivitas gerak rumen berkaitan dengan aktivitas

konsumsi pakan padat (rumput/hijauan) dan peningkatan aktivitas metabolik

rumen yang telah dimulai dan semakin meningkat sejak umur 4 minggu.

24

BAB IV

SIMPULAN DAN SARAN

4.1. Simpulan

Secara umum kondisi peternakan dan kesehatan ternak dalam kondisi yang

baik, hal ini karena memang peternak sangat memperhatikan kesehatan ternaknya.

Ini terlihat dari pemberian obat cacing dan kutu yang diberikan setiap sebulan

sekali.

4.2. Saran

Praktikum sebaiknya dilakukan di peternakan yang sudah besar, agar lebih

memahami penanganan kesehatan ternak.

25

DAFTAR PUSTAKA

Bambang, A.M. 1990. Ternak Potong Seri Budidaya. Kanisius, Yogyakarta.

Bambang, C. 1998. Beternak Domba dan Kambing. Penerbit Kanisius.

Yogyakarta.

Darmono dan Hardiman. 2011. Penyakit Utama yang Sering Ditemukan pada

Ruminansia Kecil (Kambing dan Domba). Workshop Nasional, Bogor.

Hudallah, C. M. S. Lestari dan E. Purbowati. 2007. Persentase Karkas dan Non

Karkas Domba Lokal Jantan dengan Metode Pemberian Pakan yang

Berbeda. Seminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner,

Semarang.

Jahi, A. (2005). Bagaimana Respon Petani Miskin di dua Desa Tepi Hutan, di

Kecamatan Ujung Jaya Kabupaten Sumedang, Sumedang.

Ludgate, P. J. 2006. Sukses Beternak Kambing dan Domba. Agro Inovasi, Jakarta.

Mulyono. 2011. Penggemukan Kambing Potong. Penebar Swadaya, Jakarta.

Nugroho, H. 2011. Manajemen Pemeliharaan Kambing Peranakan Etawa di

Peternakan Bumiku Hijau Yogyakarta. Tugas Akhir : Universitas Sebelas

Maret, Surakarta.

Rismayanti, Y. 2010. Petunjuk Teknis Budidaya Ternak Domba. Balai Pengkajian

Teknologi Pertanian (BPTP), Bandung.

Santosa, U. 2010. Mengelola Peternakan Sapi secara Profesional. Penebar

Swadaya, Jakarta.

Subronto. 2003. Ilmu Penyakit Ternak (Mammalia) I. Gadjah Mada University

Press, Yogyakarta.

Supriajatna, E., U. Atmarsono, dan Ruhyat K. 2008. Ilmu Dasar Ternak Unggas.

Penebar Swadaya. Jakarta.

Tajiddudin Mukhamad. 2006. Pengaruh Pemberian Anti Stres terhadap Pemulihan

Konsumsi Pakan dan Kondisi Fisiologis Domba Lokal Setelah

Pengangkutan. Fakultas Petemakan Universitas Diponegoro Semarang.

26

Widiyono I., H. Wuryastuti, S. Indarjulianto, dan H. Purnamaningsih. 2003.

Frekuensi Nafas, Pulsus, dan Gerak Rumen serta Suhu Tubuh pada

Kambing Peranakan Ettawa Selama 3 Bulan Pertama Kehidupan Pasca

Lahir. Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Gajah Mada.

Zaida, Handarto dan Natari. 2008. Analisis Pengubahan Iklim Mikro didalam

Kandang Domba Garut dengan Metode Pengendalian Pasif. Garut.

27

ACARA 2

PEMERIKSAAN

PARASIT

28

BAB I

PENDAHULUAN

Parasit adalah hewan renik yang dapat menurunkan produktivitas hewan

yang ditumpanginya. Parasit dapat menyerang manusia dan hewan, seperti

menyerang kulit manusia. Jenis parasit dibagi menjadi 2 yaitu ektoparasit dan

endoparasit. Ektoparasit adalah parasit yang hidup di permukaan tubuh dari suatu

organismel. Sedangkan endoparasit adalah Parasit yang hidup di dalam tubuh

organisme atau inang. Maka dari itu sangat penting untuk memahami tentang

parasit mengingat sangat pentingnya kesehatan bagi ternak. Pemeriksaan parasit

salah satunya dapat dilakukan dengan pemeriksaan mikroskopis pada feses.

Praktikum ini bertujuan untuk mengetahui secara ternis pemeriksaan

mikroskopis pada feses dan lebih memahami karakteristik dari ektoparasit dan

endoparasit. Adapun manfaat yang diperoleh dari praktikum ini adalah untuk

menambah pengetahuan mengenai parasit dan ternis pemeriksaanya dalam

laboratorium.

29

BAB II

MATERI DAN METODE

Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan materi Pemeriksaan Feses dan

Pengamatan Preparat Parasit dilaksanakan pada hari Senin tanggal 22 November

2014 pukul 11.00 WIB di Laboratorium Ilmu Kesehatan Ternak, Fakultas

Peternakan dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang.

2.1. Materi

Bahan yang digunakan adalah feses domba ekor gemuk induk dan anakan.

Alat-alat yang digunakan yaitu mortar untuk menghaluskan feses, pipet tetes

untuk mengambil bahan cair, mikroskop untuk mengamati objek, tabung sentifuse

untuk wadah feses, larutan gula jenuh untuk memisahkan pertikel padat dan cair,

preparat awetan parasit untuk pengamatan karakteristik fisik parasit, dan gelas

objek untuk menaruh sampel mikroskop.

2.2. Metode

2.2.1. Pemeriksaan Feses Metode Natif

Mengambil feses induk sebanyak 1-2 gram, meletakkan kedalam mortal dan

menambahkan air sampai cair kemudian mengaduk hingga rata. Mengambil

larutan feses tersebut dengan pipet tetes dan meletakkan di gelas objek lalu

menutup menggunakan kaca penutup. Mengamati preparat dibawah mikroskop

30

dengan perbesaran 10 x 10. Kemudian mencatat hasil dalam lembar yang tersedia.

Melakukan hal tersebut juga pada feses anakan.

2.2.2. Pemeriksaan Feses Metode Sentrifuse

Mengambil sebanyak 2 gram feses, masukkan kedalam mortar,

menambahkan sedikit air, mengaduk hingga homogen. Menuangkan ke dalam

tabung sentrifuse hingga tiga per empat bagian tabung. Putar tabung sentrifuse

selama 5 menit. Menuangkan air pada bagian atas, kemudian tambahkan air gula

jenuh sampai ¾ tabung, mengaduk secara homogen. Memutar sentrifuse selama 5

menit. Setelah itu meletakkan tabung tegak lurus pada rak tabung reaksi. Menetesi

kembali dengan cairan gulan jenuh sampai penuh dan permukaan tabung menjadi

cembung karena zat dalam tabung reaksi penuh hampir luber. Menempelkan gelas

objek pada permukaan tabung tersebut secara rapat. Lalu membalik tabung

dengan cepat dan balik lagi ke posisi semula secara hati-hati. menutup bagian

gelas objek yang terkena zat dalam tabung dengan menggunakan kaca penutup.

Melakukan pengambilan data secara duplo. Setelah itu mengamati gelas objek

menggunakan mikroskop dengan perbesaran 10x10.

2.2.3. Pengamatan Preparat Parasit

Mengamati parasit awetan yang ada kemudian mencatat ciri-ciri parasit

awetan tersebut, menggolongkan parasit awetan yang ada menjadi dua yaitu

endoparasit dan ektoparasit, lalu mencatat dan menggambarnya pada lembaran

yang telah tersedia.

31

BAB III


3.1. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses

3.1.1. Metode Natif

Berdasarkan hasil praktikum didapatkan hasil bahwa pengamatan pada

feses domba induk dan anakan dengan metode natif tidak ditemukan adanya telur

cacing. Hal ini dapat disimpulkan bahwa ternak tersebut sehat dan tidak terserang

penyakit cacingan. Ternak yang sehat tidak terlepas dari manajemen kesehatan

ternak yang diterapkan oleh peternak, misalnya kebersihan kandang, pakan, dan

pemberian obat cacing setiap periode tertentu. Menurut pendapat Soejoto dan

Soebari (1996) menyatakan bahwa tidak ditemukannya telur cacing karena feses

diperoleh dari ternak sehat. Ternak yang sehat biasanya dipelihara dengan

manajemen yang baik seperti perkandangan yang selalu bersih dan kepadatan

dalam kandang yang ideal serta diberi pakan yang cukup dan berkualitas. Selain

itu juga dilakukan pencegahan penyaki cacing secara rutin sehingga ternak tidak

terserang penyakit cacingan. Menurut Darmono dan Hardiman (2011) bahwa

penyakit parasit saluran pencernaan atau cacingan dapat dicegah dengan

pemberian obat cacing pada ternak secara rutin.

32

3.1.2. Metode Sentrifuse

Berdasarkan hasil praktikum pengamatan pemeriksaan feses domba

indukan dan anakan dengan metode sentrifus dapat diketahui bahwa kedua ternak

domba tersebut sehat. Hal ini ditunjukkan dengan tidak ditemukannya telur cacing

pada kedua sampel feses domba tersebut. Faktor utama tidak adanya telur cacing

pada feses yaitu lingkungan yang bersih, pakan, dan iklim. Lingkungan yang

bersih dapat dilakukan misalnya dengan sanitasi kandang dan lingkungan sekitar

kandang, dan memandikan ternak. Pakan juga harus dibebaskan dari parasit,

misalnya dengan melayukan dahulu pakan hijauan yang akan diberikan pada

ternak. Iklim juga sangat berpengaruh dalam fluktuasi suhu dan kelembapan yang

mana akan berpengaruh pada perkembangbiakan cacing. Menurut pendapat

Akhira et al. (2013) yang menyatakan bahwa kesesuaian suhu dan kelembaban

serta ketersedian oksigen memungkinkan telur-telur cacing yang keluar bersama

feses menetas dan menjadi larva infektif yang akan menginfestasi inang, hal ini

menujukkan bahwa semakin ideal kondisi lingkungan semakin banyak munculnya

kasus cacingan pada ternak. Ditambahkan oleh Reinecke (1983) yang menyatakan

bahwa sanitasi yang buruk, khususnya jika feses tidak dibersihkan secara teratur,

dapat menjadikan sumber infeksi ulang yang berkelanjutan dan cacingan pada

ternak. Penyakit cacingan dapat diobati atau dicegah dengan pemberian obat

cacing sesuai parasit atau cacing yang tumbuh. Menurut pendapat Tan dan

Rahardja (2007) yang menyatakan bahwa pengobatan infeksi parasit dapat

diantisipasi dengan pemberian obat cacing. Pengobatan dilakukan apabila ternak

menujukkan gejala klinis terinfeksi parasit dan pengobatan diberikan dengan cara

33

interval berkelajutan serta menjaga lingkungan yang bersih. Ditambahkan oleh

Harjopranjoto et al. (1998) yang menyatakan bahwa proses penularan cacing

dapat melalui tanah dan pakan berupa hijauan yang terkontaminasi.

3.2. Pengamatan Preparat Parasit

3.2.1. Ektoparasit

Berdasarkan preparat yang diamati didapatkan hasil pengamatan dari

ektoparasit yaitu Boophilus microplus, Cteno cephalides canis, dan Bovicola

bovis.

3.2.1.1. Boophilus microplus, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil

sebagai berikut.



Sumber: http://parasite.org.au

Ilustrasi 6. Boophilus microplus

Berdasarkan hasil pengamatan dapat diketahui bahwa Boophilus microplus

yaitu memiliki bentuk yang sama seperti caplak karena bentuknya seperti

34

serangga kecil berwarna hitam dan bersifat parasit yang biasa hidup pada ternak

yaitu berkaki empat seperti kutu pada umumnya. Berdasarkan pendapat Ahmad

(2004) menyatakan bahwa boophilus microplus atau caplak memiliki kulit yang

keras dan berumah satu (hidup pada satu ekor hewan. Selain itu, daur hidupnya

Boophilus microplus terdiri dari telur, larva, nimfa, dan dewasa. Daur hidup

Boophilus microplus dari larva sampai dewasa dapat menempel pada satu individu

induk semang yang sepanjang waktu terus menghisap darah. Selain itu gejala

klinis yang nampak pada ternak yaitu kerusakan pada kulit, ternak menjadi tidak

tenang karena gatal, berat badan menurun, penurunan kondisi umum dan

produksi. Manurung dan Ahmad (2003) menambahkan bahwa cara

penanggulangan sementara yang dapat dilakukan yaitu dengan akarisidam

ivermectin, dan yang masih dalam taraf penelitian ialah obat yang berasal dari

tanaman tradisional.

3.2.1.2 Cteno cephalides canis, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh

hasil sebagai berikut.



Sumber : www.agefotostock.com

Ilustrasi 7. Cteno cephalides canis

35

Berdasarkan praktikum dapat diperoleh bahwa hasil pengamatan yang

telah dilakukan yaitu, Cteno cephalides canis mempunyai ciri-ciri fisik berbentuk

seperti lebah, memiliki warna kuning kecoklatan, dan mempunyai sayap. Priyanto

et al (2006) menyatakan bahwa morfologi Cteno cephalides canis berkepala

bundar, gigi satu dan dua tidak mempunyai panjang yang sama. Menurut Dobler

dan Peffer (2011) bahwa Cteno cephalides canis termasuk serangga

holometabolaus atau metamorphosis sempurna karena daur hidupnya melalui 4

stadium yaitu telur, larva, pupa, dewasa. Cteno cephalides canis betina bertelur

diantara rambut inang. Jumlah telur yang dikeluarkan pinjal betina berkisar antara

3-18 butir. Cteno cephalides canis betina dapat bertelur 2-6 kali sebanyak 400-

500 butir selama hidupnya Menurut Wall (1997) Cteno cephalides canis

berkembangbiak dengan cara bertelur, telur tersebut kemudian menetas yang

menjadi larva dan tumbuh menjadi dewasa. Parasit ini ditualarkan melalui

sentuhan antara hewan.

36

3.2.1.3. Bovicola bovis, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil

sebagai berikut.


Kesehatan Ternak, 2014. Sumber: http://zoodoc.blogspot.com

Ilustrasi 8. Bovicola bovis

Berdasarkan hasil pengamatan praktikum Bovicola bovis memiliki bentuk

tubuh pipih. Bovicola bovis sering disebut juga kutu penggigit sapi yang

menyebabkan flek atau bercak pada kulit sapi. Hal ini sesuai dengan pendapat

Ako (2011) selain Haematopinus eurysternus dan Lignognathus vituli, parasit luar

seperti Bovicola bovis termasuk caplak yang sering menyerang pada ternak perah

yang menyebabkan penyakit kulit. Johnson (2010) menambahkan bahwa kutu

Bovicola bovis memiliki 4 tahapan siklus hidup mulai dari telur, larva, nimfa dan

dewasa dan salah satu spesies yang paling umum ditemukan pada sapi di

Montana. Bovicola bovis memiliki kepala kemerahan dan perut cokelat pucat

dengan garis-garis cokelat agak gelap. Betina dewasa panjangnya sekitar 1-16

inci. Spesies ini memperoleh makanan untuk energi dan produksi telur dengan

makan pada kulit, ketombe dan rambut hewan. Kutu menggigit sering ditemukan

37

di bagian atas belakang, terutama daerah layu dan akan menyebar ke tubuh bagian

belakang seperti pangkal ekor.

3.2.2 Endoparasit

Berdasarkan preparat yang diamati didapatkan hasil pengamatan dari

ektoparasit yaitu Moniezia sp., Fasciola gigantica, dan Raillietina sp.

3.2.2.1 Moniezia sp. berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil sebagai

berikut.



Sumber: http://cal.vet.upenn.edu

Ilustrasi 9. Moniezia sp.

Berdasarkan hasil pengamatan praktikum Moniezia sp. memiliki bentuk

yang pipih memanjang, strukturnya elastis, dan berwarna putih. Menurut Suwandi

(2001) Moniezia sp. termasuk dalam cacing kelas cestoda (cacing pita) yang

mempunyai ciri-ciri tubuh bersegmen, mempunyai scolex leher, proglotida (telur

berembrio), hermaprodit, reproduksi ovipar dan kadang-kadang berbiak dalam

38

bentuk larva, infeksi umumnya oleh larva dalam kista yang hidup dalam usus

kecil pada sapi dan kerbau. Menurut Adiwinata dan Sukarsih (1992) siklus hidup

Moniezia sp. dimulai dari telur atau proglotid akan keluar bersama feses dan akan

mencemari rumput yang ada pada lapangan, telur yang berada pada feses akan

termakan oleh tungau dari jenis galumna, orbatid. Didalam tubuh tungau telur

yang ermakan akan berkembang menjadi L4 dan tungau akan termakan bersama

rumput pada saat sapi atau domba, kambing merumput dan pada usus halus ternak

cacing akan berkembang menjadi cacing dewasa yang akan menempel pada

mukosa usus ternak. Menurut Anyaegbunam et al. (2013) Moniezia sp. meskipun

sedikit, tetapi rentan ditemukan pada kambing. Tempat kegemaran yang lebih dari

daerah perut, dada, kaki dan punggung, yang mungkin yang memiliki lebih sedikit

bulu yang menutupi dan kulit.

3.2.2.2. Fasciola gigantica, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil

sebagai berikut.



Sumber: http://id.wikipedia.org

Ilustrasi 10. Fasciola gigantica

39

Berdasarkan hasil pengamatan praktikum, Fasciola gigantica memiliki

bentuk pipih menyerupai daun dan berwarna abu-abu serta di tengahnya terdapat

warna kekuningan atau lebih terang. Hal ini sesuai dengan pendapat Tabbu (2002)

yang menyatakan bahwa Fasciola gigantica memiliki bentuk tubuh menyerupai

daun, pipih dorsoventral, tidak memiliki bentuk bahu yang jelas, tidak bersegmen,

dan tidak memiliki rongga badan. Menurut Budianto et al., (2005) Siklus hidup

cacing Fasciola gigantica terdiri atas 2 fase, yaitu aseksual dan seksual. Daur

hidup aseksual berlangsung pada dua hospes, yaitu siput dan tanaman air,

sedangkan daur hidup seksual terjadi dalam hospes definitif. Hospes definitif

berupa ternak ruminansia akan terinfeksi oleh metaserkaria apabila menelan

makanan atau minuman yang mengandung metaserkaria. Metaserkaria akan

mengalami ekskistasi dan segera menembus mukosa usus untuk menuju ke hati.

Peristiwa ini akan menyebabkan haemorrhagi dan fibrosis pada jaringan hospes

yang selanjutnya akan memicu pengerahan sel-sel leukosit, termasuk eosinofil,

pada jaringan terluka. Ditambahkan oleh Guntoro (2012) yang menyatakan bentuk

tubuh Fasciola gigantica adalah segi tiga, pipih dan terlihat seperti daun,

berwarna abu-abu kehijau-hijauan sampai kecokelat-cokelatan,panjangnya dapat

mencapai 2-3 cm.

40

3.2.2.3. Raillietina sp., berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil

sebagai berikut.



Sumber: 3.bp.blogspot.com

Ilustrasi 11. Raillietina sp.

Berdasarkan hasil dari pengamatan bahwa Raillietina sp memiliki tubuh

pipih, memanjang seperti pita, dan bersegmen-segmen. Parasit ini sering

menyerang ayam maupun unggas lainnya. Biasanya parasit ini menyebar melalui

kotoran ayam. Hal ini Sesuai dengan pendapat Levine dan Norman (2001) yang

menyatakan bahwa Cestodosis menyerang ayam pada semua umur dan

penyebarannya melalui kotoran ayam yang sakit atau alat-alat yang digunakan.

Hadi (2004) menyatakan siklus hidup cacing pita umumnya melewati inang antara

seperti serangga (lalat dan kumbang), serta cacing tanah. Peran inang antara itu

pula yang menjadikan cacing pita mudah tersebar luas. Telur yang keluar bersama

feses akan bersifat aktif di lingkungan, sehingga kemudian dapat termakan dan

berkembang di dalam tubuh inang. Cacing Raillietina spp tergolong dalam

41

phylum Platyhelmintes, Class Cestoidea, Sub Class Cestoda, Ordo

Cyclophyllidea, Genus Railietina dan Spesies Raillietina sp.

42

BAB IV

SIMPULAN DAN SARAN

4.1. Simpulan

Pemeriksaan parasit pada sampel feses tidak ditemukan adanya cacing, hal

ini menunjukkan ternak dalam kondisi sehat. Pengamatan parasit pada preparat

ektoparasit dan endoparasit berguna untuk lebih memahami karakteristik dari

masing-masing dari parasit tersebut.

4.2. Saran

Sebaiknya dalam praktikum perlu dijelaskan lebih detail mengenai parasit-

parasit yang menyerang pada ternak supaya praktikan lebih paham.

43

DAFTAR PUSTAKA

Adiwinata, G Dan Sukarsih. 1992. Gambaran Darah Domba yang Terinfeksi

Cacing Nematoda Saluran Pencemaan Secara Alami di Kab. Bogor (Kec.

Cijeruk, Jasinga dan Rumpin) . Penyakit Hewan 24 (43) : 13-16.

Ahmad, R. Z. 2004. Cendawan Metarhizium anisopliae sebagai pengendalian

hayati ektoparasit caplak dan tungau pada ternak. Wartazoa. Vol. 14 (2).

73-78.

Akhira, D., Yudha, F., dan Hasan, M. 2013. Indentifikasi parasit nematoda saluran

pencernaan anjing pemburu (Canis familiaris) Di Kecamatan Lareh Sago

Halaban Provinsi Sumatra Barat. Jurnal Medika Veterinaria. Vol 7 No (1).

Ako Ambo. 2011. Buku Ajar Produksi Ternak Perah. Fakultas Peternakan

Universitas Hasanuddin, Makassar.

Anyaegbunam, Lucy C., Obi, Zita. C., dan Ezeoke Chinasa M. 2013.

Ectoparasitosis and Endoparasites in Local Goats (Capra hircus) In

Onitsha, Anambra State, Nigeria. International Journal of Fauna and

Biological Studies; 1 (2): 1-3

Budianto, B., Subadrah S, Riwidiharso E, Kusmintarsih E. 2005. Kemampuan

Metaserkaria Fasciola gigantica yang Diiradiasi Ultra Violet (254 NM)

dalam Reinfeksinya terhadap Mencit (Mus musculus). Fakultas Biologi

Unsoed. Purwokerto.

Darmono Dan Hardiman. 2011. Penyakit Utama Yang Sering Ditemukan Pada

Ruminansia Kecil (Kambing Dan Domba). Workshop Nasional

Diversifikasi Pangan Daging Ruminansia Kecil Balai. Besar Penelitian

Veteriner, Bogor.

Dobler, G., dan Peffer. 2011. Fleas as Parasites of The Family Canidae. Biomed

Central. 4 : 139

Guntoro, S. 2012. Membudidayakan Sapi Bali. Kanisius, Yogyakarta.

Hadi, U. K dan Saviana, S. 2000. Ektoparasit: Pengenalan, Diagnosis, dan

Pengendaliannya. Institute Pertanian Bogor, Bogor.

Harjopranjoto, S., R.S. Sasmita, Partosoewignjo, M. Hariadi, R.B. Soejoko, dan

Sarmanu.1988. Prosiding Simposium Nasional Penyakit Satwa Liar.

Fakultas Kedokteran Hewan Airlangga dan Kabun Binatang Surabaya.

Johnson Gregor. 2010. Management of Lice on Livestock. Montana State

University. MSU Extention.

44

Levine, D. N. dan W. Norman. 2001. Veteriner. Gadjah Mada University Press,

Yogyakarta.

Manurung, J. dan R. Z. Ahmad. 2003. Pengobatan Caplak Boophilus microplus

pada Sapi Peranakan Ongole (PO) di Ciracap Sukabumi dengan Ekstrak

Biji Srikaya (Annona squamosa). Pros. Seminar Nasional Teknologi

Peternakan dan Veteriner. Puslitbangnak Bogor 29-30 Sept 2003. Hlm.

205-210.

Prianto, J. L. A., P. U. Tjahaya., dan Darwanto. 2006. Atlas Parasitologi Kedok

Cetakan ke-9. PT Gramedia Pustaka Utama, Jakarta.

Reinecke, R.K. 1983. Veterinary Heminthology. Butterworths. Durban.

Soejoto dan Soebari. 1996. Parasitologi Medik Jilid 3 Protozoologi dan

Helmintologi. EGC, Solo.

Suwandi. 2001. Mengenal Berbagai Penyakit Parasitik Pada Ternak. Balai

Penelitian Ternak. PO BOX 221 Bogor 16002.

Tabbu, C. R. 2002. Penyakit Ayam dan Penanggulangannya.Penerbit Kanisius,

Yogyakarta.

Tan, H.T. dan K. Rahardja. 2007. Obat-Obat Penting: Khasiat Penggunaan dan

Efek Sampingnya. Edisi ke-6. PT. Elex Media Komputindo, Jakarta.

Wall, R., Shaw S.E., Penaliggon J. 1997. The Prevalence Of Flea Species On Cats

And Dogs In Ireland. Medical And Veterinary Entomology 11: 404-406.

45

ACARA 3

NEKROPSI

46

BAB I

PENDAHULUAN

Nekropsi merupakan pemeriksaan kondisi jaringan tubuh ternak yang

dilakukan dengan cara membedah atau membuka rongga tubuh sehingga fisik

organ dalam ternak dapat diamati. Dalam penggunaanya, nekropsi banyak

digunakan dalam hal pemeriksaan unggas yang diduga telah terjangkit penyakit.

Hal ini dilakukan agar dapat diketahui penyakit yang diderita oleh unggas

sehingga dapat ditentukan penanganan yang tepat untuk menanggulangi penyakit

tersebut agar peternakan terhindar dari kerugian finansial yang lebih besar. Maka

dari itu nekropsi sangat penting untuk dipelajari, mengingat pentingnya menjaga

kesehatan unggas dalam keberlangsungan usaha peternakan.

Tujuan dari praktikum ini adalah agar praktikan lebih terlatih dalam

melakukan nekropsi pada unggas dan mampu menganalisa penyakit yang diderita

oleh unggas. Manfaat dari praktikum ini adalah agar praktikan lebih memahami

secara mendalam mengenai karakteristik penampilan luar dan organ dalam unggas

yang terkena penyakit.

47

BAB II

MATERI DAN METODE

Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan Materi Pemeriksaan Kesehatan

Unggas yang dilaksanakan pada hari Minggu tanggal 30 November 2014 pukul

09.00-11.00 WIB di Laboratorium Fakultas Peternakan dan Pertanian, Universitas

Diponegoro, Semarang.

2.1. Materi

Alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah pisau dan untuk

mematikan serta membedah ayam, gunting untuk membedah organ dalam ayam,

plastik untuk alas mengamati organ dalam ayam, spuit untuk mengambil darah

ayam, alat tulis untuk mencatat hasil pengamatan. Sedangkan bahan yang

digunakan adalah ternak ayam broiler (pedaging) serta darah sebanyak 3 cc.

2.2. Metode

2.2.1. Pemeriksaan Kesehatan Unggas (Broiler)

Melakukan pengamatan meliputi penampilan luar ayam seperti jenis

unggas, jenis kelamin, umur, kepala, kaki, bulu, dan organ-organ dalam ayam

seperti jantung, paru-paru, hati, organ pencernaan, dan lain-lain.

48

2.2.2. Pengambilan Darah

Mengambil darah unggas ayam broiler melalui vena bracialis (vena di

bagian sayap sebelah dalam) menggunakan spuit sebanyak 3 cc, darah

dimasukkan dalam tabung gelas secara hati-hati, darah dialirkan lambat melalui

dinding tabung. Tabung penampung tanpa antikoagulan, biarkan selama 30 menit,

amati perubahan tersebut. Mencatat perubahan yang terjadi apakah terbentuk

serum atau hanya menggumpal.

2.2.3. Nekropsi

Mematikan ayam dengan cara disembelih dengan pisau tajam. Kemudian

ayam tersebut terus direst-in hingga sampai benar-benar sudah mati. Meletakkan

ayam tersebut pada alas plastik dengan posisi punggung di atas. Memaksakan

tekan kedua paha kearah bawah (arah lateral) agar lebih leluasa dalam melakukan

nekropsi.

49

BAB III


3.1. Pengamatan Perfomans Unggas

Sumber : Data Primer Praktikum


Sumber:

muhammadeko58.wordpress.com

Ilustrasi 12. Pengamatan Perfomans Unggas

Berdasarkan pengamatan yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa

ayam broiler dalam kondisi lemah, mata tidak cerah, warna jengger merah muda,

dubur bersih dan bulu ayam bersih. Menurut Fadilah dan Agustin (2004) ciri

ayam broiler yang sehat yaitu ayam aktif, lincah, mata dan muka cerah (tidak

mengantuk), bulu cerah berminyak, tidak kusam, kaki kokoh, berdiri tegak, dan

bentuk tubuh proporsional. Krista dan Bagus (2010) menambahkan bahwa ayam

yang sehat memiliki anus yang bulat, lebar dan basah, kulit terlihat tegar dan

mengkilap, sayap terlihat kokoh, tidak nampak lemah dan menggantung.

50

3.2. Pengambilan Darah


berikut :

Sumber : Data Primer Praktikum Ilmu


Sumber: http://article.wn.com

Ilustrasi 13. Sampel Darah Ayam Broiler

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa

pengambilan darah pada resimen ayam pedaging sebagai objek pengamatan, yaitu

pengambilan darah dilakukan pada saluran darah vena brachialis yang terdapat

pada bagian bawah sayap menggunakan spuit (alat suntik). Pengambilan darah

tersebut dilakukan untuk menguji adanya antibodi yang terkandung dalam darah

tersebut dengan cara darah tersebut dijadikan serum. Berdasarkan pengamatan

hasil serum yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa darah pada ayam

pedaging tersebut memiliki antibodi, yaitu ditandai dengan adanya cairan

berwarna kekuningan yang dihasilkan pada bagian atas darah yang telah

mengendap pada bagian bawah. Hal ini sesuai dengan pendapat Sianita et al.

(2011) yang menyatakan bahwa cara pengambilan serum, yaitu dengan cara

pengambilan darah menggunakan spuit secara aseptik melalui pembuluh darah

51

yang ada di sayap (vena brachialis), lalu darah yang ada didalam spuit tersebut

didiamkan hingga terjadi pemisahan serum (diberikan sedikit ruangan udara pada

spuit). Ernawati et al. (2008) yang menyatakan bahwa pengambilan darah ayam

dilakukan untuk mengetahui titer antibodi yang ditimbulkan, selain itu semakin

tingginya titer antibodi yang dihasilkan maka menunjukan bahwa semakin tinggi

tingkat kekebalan suatu individu terhadap antigen.

Pengambilan darah pada resimen ayam sebagai objek pengamatan

memiliki fungsi yang sangat banyak salah satunya yaitu untuk mendekteksi

adanya antibody yang terkandung didalamnya. Hal ini sesuai dengan pendapat

Sianita et al. (2011) yang menyatakan bahwa gambaran darah merupakan salah

satu parameter dari status kesehatan hewan karena darah mempunyai fungsi

penting dalam pengaturan fisiologis tubuh. Satyaningtijas et al. (2010)

menambahkan bahwa fungsi darah secara umum berkaitan dengan transportasi

komponen di dalam tubuh seperti nutrisim oksigen, karbondioksida, metabolit,

hormon, panas, dan imun tubuh maupun berkaitan dengan keseimbangan cairan

dan pH tubuh.

52

3.3. Nekropsi

Nekropsi yang dilakukan terlebih dahulu dengan melakukan pemeriksaan

kulit ayam, kemudian jaringan dibawah kulit dan dilanjutkan dengan pembedahan

ayam untuk dilakukan pemeriksaan organ-organ dalam pada ayam.

3.3.1. Pemeriksaan Permukaan Kulit Ayam


berikut :

Sumber : Data Primer

Praktikum Ilmu Kesehatan

Ternak, 2014.

Sumber:

http://alwitech.wordpress.com

Ilustrasi 14. Kondisi Kulit Ayam Broiler

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diketahui pemerikaan

permukaan kulit ayam yaitu permukaan kulit normal ditandai dengan kulit

berwana putih atau kuning cerah, bersih, dan tidak terdapat perubahan atau gejala

penyakit yang timbul pada permukaan kulit ayam. Hal ini sesuai dengan pendapat

Yulistiani (2010) yang menyatakan bahwa hasil pemeriksaan organoleptik pada

53

ayam segar (sehat) dan ayam bangkai yang disebabkan sakit yaitu memiliki

perbedaan warna, terutama pada ayam segar (sehat) memiliki warna kulit kuning

terang, sedangkan pada ayam bangkai (sakit) memiliki warna kulit yaitu kuning

pucat kemerahan. Huminto (2000) menambahkan bahwa pada ayam yang sakit

biasanya terdapat kerusakan pada kulit dengan ditandai timbulnya benjolan pada

kulit, seperti halnya penyakit marek dengan gejala klinisnya yaitu timbulnya

benjolan pada kulit.

3.3.2. Pemeriksaan Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit



Sumber: www.wikimedia.org

Ilustrasi 15. Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit

Berdasarkan hasil praktikum didapatkan bahwa pada jaringan subkutan

dalam keadaan bersih, basah mengkilat dan cerah. Sedangkan pada jaringan

daging terlihat bersih dan berwarna cerah. Hal ini menunjukkan jaringan dibawah

kulit dalam kondisi baik. Hal ini sesuai dengan pendapat Afrianti et al (2013)

yang menyatakan bahwa daging ayam sehat berwarna cerah putih kekuningan.

54

Jaringan subkutan juga berwarna bersih tidak terdapat bercak-bercak. Ini

menandakan ayam sedang tidak terserang penyakit. Menurut Tarmudji (2005)

bahwa salah satu ciri ayam terkena penyakit AI (Avian Influenza) yaitu terdapat

ptekhiae subkutan pada kaki dan paha. Menurut Fadilah dan Agustin (2011)

apabila terjadi peradangan bawah kulit (Cellulitis) maka akan terlihat tanda pada

jaringan kulit penutup tampak kering dan tidak berwarna. Menurut Tabbu (2000)

menambahkan bahwa pada ayam yang terkena penyakit dematitis ganggrenosa,

jaringan subkutan dari kulit akan mengalami kerusakan biasanya berwarna kelabu

atau kecokatan dan diantara bendel otot dapat ditemukan adanya gas.

3.3.3. Pemeriksaan Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut Dibuka

Berdasarkan hasil pratikum didapatkan hasil sebagai berikut :



Sumber:

http://hasnahanifah.blogspot.com

Ilustrasi 16. Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut Dibuka

55

Kondisi yang teramati bahwa isi rongga dadadan rongga perut dalam

kondisi bersih, tidak ada banyak air yang menggenangi organ dalam dan tidak ada

timbunan lemak, kantong udara bersih dan tidak keruh. Kondisi ayam seperti ini

dpat dikatakan ayam dalam keadaan sehat. Hal ini sesuai dengan pendapat Salim

et al., (2010) bahwa ciri-ciri ayam sakit yaitu organ hati, ginjal, jantung, dan

limpa bengkak, warna merah kehitaman,dan terlihat jelas bintik-bintik hemoragi.

Keadaan isi rongga dada dan perut tidak terdapat timbunan lemak, hal ini

dipengaruhi oleh pakan atau ransum yang diberikan oleh ayam. Hal ini sesuai

dengan pendapat Leclereq dan Whitehead (1998) bahwa pertumbuhan dan

penimbunan lemak dipengaruhi oleh terutama energi dalam ransum dan

perbandingan antara protein kasar dan energi ransum.

3.3.4. Pemeriksaan Saluran Pencernaan




Sumber:

http://dawi4purnama.blogspot.com

Ilustrasi 17. Saluran Pencernaan

56

Berdasarkan hasil praktikum bahwa dinding saluran pencernaan terdapat

kelainan, pada dinding usus halus terdapat bercak merah atau peradangan.

Menurut Ardana (2011) hampir semua jenis penyakit pada ayam menunjukkan

adanya peradangan pada usus baik ringan maupun berat. Bahkan pada ayam yang

tidak mau makan atau ukuran pakan yang terlalu besar juga dapat menyebabkan

peradangan di usus. Ciri spesifik ND adalah adanya peradangan pada peyer

patches yang disertai peradangan pada proventrikulus. Terjadinya peradangan di

usus memang agak relatif sulit dibedakan antara ND, AI ataupun dengan penyakit

bakterial. Isi saluran pencernaan tidak terdapat cacing. Tidak adanya cacing

dalam saluran pencernaan dapat dikatakan pemeliharaan ayam dilakukan dengan

baik sehingga ayam sehat dan tidak cacingan. Hal ini sesuai dengan pendapat

Ashenafi dan Eshetu (2004) bahwa penyebab ayam terserang cacingan yaitu

manajemen pemeliharaan yang kurang baik atau buruk. Menurut Retnani et al

(2009) ciri ayam yang terkena cacing yaitu mendadak lesu, diare, radang usus

disertai diare jika terinfeksi berat. Pada pengamatan saluran percernaan bertujuan

untuk memeriksa keadaan organ pencernaan apakah ayam terserang penyakit atau

tidak. Hal in sesuai dengan pendapat Suprijatna et al., (2005) menambahkan

bahwa penyakit pada ternak dapat dilihat dari keadaan organ pencernaannya.

57

3.3.5. Pemeriksaan Hati




Sumber: http://kumpulan-

gizi.blogspot.com

Ilustrasi 18. Hati

Kondisi yang teramati bahwa hati berukuran 6 cm atau normal, berwarna

merah kecoklatan, konsistensi kenyal dan kanton empedu berukuran 2 cm dan

berwarna hijau tua. Kondisiini dapat dikatakan hati dalam keadaan baik. Hal ini

sesuai dengan pendapat Nickel et al., (1997) bahwa hati yang normal yaitu

memiliki warna merah cerah, konsistensi normal dan ukuran yang pas sesuai umur

dan jenis ayamnya. Menurut Mc Lelland (1990) bahwa hati yang normal berwarna

coklat kemerahan atau coklat terang dan bila pakan yang diberikan berlemak

tinggi maka warna dari hati akan menjadi kuning.

58

3.3.6. Pemeriksaan Jantung



Sumber:

http://www.shutterstock.com

Ilustrasi 19. Jantung

Hasil pengamatan pada pemeriksaan jantung unggas merupakan pusat

sistem peredaran darah, karena jantung terdiri dari otot yang mampu memompa

darah untuk dialirkan ke seluruh tubuh. Hal ini sesuai dengan pendapat Akoso

(2000) yang menyatakan bahwa jantung terdiri atas sekumpulan otot berfungsi

memompa darah kesemua bagian tubuh dan merupakan pusat sistem peredaran

darah. Pada jantung ayam broiler yang diamati mempunyai ukuran 4 cm, warna

merah, selaput jantung berwarna putih dan tipis, dan jantung kenyal dan tidak

mudah hancur. Hal ini menandakan bahwa jantung paada unggas tersebut dalam

keadaan sehat, karena tidak ada kelainan yang nampak. Kelainan pada jantung

biasanya dapat dilihat dari warna, bentuk, serta ukuran. Hal ini sesuai dengan

pendapat Hermana et al. (2005) yang menyatakan bahwa jantung merupakan

organ vital yang berperan dalam sirkulasi darah, dan jantung yang terinfeksi

penyakit maupun racun bisanya akan menglami perubahan pada ukuran jantung.

59

3.3.7. Pemeriksaan Ginjal



Sumber:

http://www.poultrydisease.ir

Ilustrasi 20. Ginjal

Hasil pengamatan pada pemeriksaan ginjal unggas merupakan salah satu

organ yang mempunyai fungsi dalam pembentukan dan pengeluaran kencing. Hal

ini sesuai dengan pendapat Akoso (2000) yang menyatakan bahwa ginjal

bertanggung jawab terhadap produksi air seni yang dikeluarkan lewat salurannya

menuju ureter, menampungnya dalam kandung kemih, dan mengeluarkannya

melalui uretra. Selain itu ginjal juga berfungsi pada proses penyerapan dalam

metabolisme dalam tubuh unggas. Ukuran ginjal unggas yang diamati yaitu 5,5

cm, dengan warna merah muda, pada ginjal tidak menampakkan kelainan. Hal ini

menandakan bahwa ginjal dalam keadaan sehat. Hal ini sesuai dengan pendapat

Sugita et al. (2006) yang menyatakan bahwa adanya kerusakan pada ginjal ni

adanya sel yang mengalami nekrosa menyebabkan proses filtrasi dan

60

keseimbangan asam basa akan terganggu. Akibatnya metabolisme dalam tubuh

menjadi menurun dan hal ini dapat menyebabkan terganggunya pertumbuhan.

3.3.8. Pemeriksaan Pancreas



Sumber:


Ilustrasi 21. Pancreas

Hasil pengamatan pada pemeriksaan pankreas unggas yaitu berwarna

putih, ukuran 10 cm, ini menandakan bahwa pankreas pada unggas tersebut sehat.

Karena tidak ada kelainan yang nampak pada pankreas ayam broiler yang diamati.

Hal ini sesuai dengan Akoso (2000) yang menyatakan bahwa pankreas adalah

jaringan kelenjar yang teletak di belakang lambung dan bagian yang besar terletak

di bawah ginjal sebelah kanan. Pertumbuhan bobot badan yang meningkat

merupakan salah satu faktor penyebab kerusakan pankreas pada ternak, karena

semakin tinggi bobot badan maka kerja pankreas untuk mengubah glikogen

menjadi energi dengan bantuan hormon insulin semakin besar, sehingga kerja

pankreas semakin menjadi lebih berat dan menyebabkan terjadinya

pembengkakan. Hal ini sesuai denga pendapat Wahyuwardhani et al (2000) yang

61

menyatakan bahwa kerusakan pada pankreas dan saluran pencernaan ayam

memberikan indikasi terjadinya gangguan pada proses pencernaan ayam penderita

sehingga terjadi gangguan pertumbuhan bobot badan ayam.

3.3.9. Pemeriksaan Trachea



Sumber:

http://www.agriculture.gov.ie

Ilustrasi 22. Trachea

Berdasarkan hasil praktikum pengamatan pemeriksaan kesehatan ternak

unggas pada pemeriksaan trachea diketahui bahwa ayam broiler sehat. Hal ini

ditandai dengan warna trachea putih bersih dan tidak memiliki isi pada

percabangan trachea. Hal ini sesuai dengan pendapat Damayanti et al., (2012)

yang menyatakan bahwa ternak unggas yang tidak sehat ditandai dengan selaput

lendir trakea dan laring mengalami nekrosa, pendarahan, dan terdapat lendir

serous sampai kaseus. Pendapat tersebut diperkuat oleh Rasyaf (2008) yang

menyatakan bahwa salah satu ciri - ciri kelainan atau penyakit pada ternak unggas

dapat dilihat dengan kesehatan dan kebersihan kantong udaranya.

62

3.3.10. Pemeriksaan Paru–paru



Sumber:


Ilustrasi 23. Paru-paru


unggas pada pemeriksaan paru - paru ternak unggas ayam broiler diperoleh hasil

warna merah, konsistensi normal, kenyal, tidak mudah hancur. Pada uji apung,

paru - paru mengapung yang menunjukkan bahwa paru - paru tersebut masih

terdapat oksigen dan memiliki kesehatan yang cukup baik. Hal ini sesuai dengan

pendapat Damayanti et al., (2012) yang menyatakan bahwa paru – paru yang

sehat tidak mengalami peradangan, kantung udara tidak menebal dan suram.

Ditambahkan oleh Supartono et al., (2009) yang menyatakan bahwa Newcastle

disease merupakan penyakit pada pada unggas yang di tandai dengan limpa

membesar dan kongesti, pendarahan pada proventiculus dan usus halus, dan paru–

paru meradang disertai kantung udara menebal.

http://www.google.com/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB0&url=http%3A%2F%2Fwww.poultrydisease.ir%2FAtlases%2Favian-atlas%2Fsearch%2Flesion%2F386.html&ei=7g2FVP-_FY6wuATYyoDYAw&bvm=bv.80642063,d.c2E&psig=AFQjCNFAzCgvIc8YujFTxMI13cCvRzKXdg&ust=1418092370075759

63

3.3.12. Pemeriksaan Syaraf



Sumber: https://sites.google.com

Ilustrasi 24. Syaraf


unggas pada pemeriksaan syaraf diperoleh hasil warna syaraf putih, ukuran 5 cm,

dan keadaan normal serta tidak terjadi pembengkakan. Hal ini menunjukkan

bahwa ternak unggas tersebut tidak sehat. Hal ini sesuai dengan pendapat Akoso

(2000) yang menyatakan bahwa dalam tubuh hewan terdapat tiga macam sistem

syaraf yaitu sistem syaraf pusat, sistem syaraf tepi, dan sistem syaraf simpatetik.

Salah satu penyakit yang disebabkan oleh kerusakan pada syaraf yaitu Marek.

Kelainan pada Marek merupakan kerusakan syaraf dan tumor limfoid. Kerusakan

syaraf pada Marek dapat terjadi pada susunan syaraf pusat maupun perifer (tepi).

Ditambahkan oleh Hungerford yang disitasikan oleh Damayanti dan Wiyono

(2003) menyatakan bahwa kerusakan pada otak, batang otak, dan syaraf perifer

masing-masing ditandai dengan ensefalitis, myelitis, dan neuritis yang ketiganya

bersifat non superatif.

64

BAB IV

SIMPULAN DAN SARAN

4.1. Simpulan

Dari hasil nekropsi menunjukkan secara umum kondisi ayam broiler

dalam kondisi baik karena tidak ditemukanya parasit seperti cacing pada

pencernaan ayam. Namun ditemukan bintik-bintik merah pada usus ayam yang

menunjukkan usus ayam mengalami indikasi peradangan. Namun belum diketahui

pasti penyakit apa yang diderita ayam. Hal ini karena peradangan di usus agak

relatif sulit dibedakan antara ND, AI ataupun dengan penyakit bakterial lainya.

4.2. Saran

Praktikum nekropsi sebaiknya menggunakan lebih dari 1 ayam, hal ini

berguna sebagai pembanding.

65

DAFTAR PUSTAKA

Afrianti, M., Bambang D. dan Bhakti E. S. 2013. Perubahan Warna, Profil

Protein, dan Mutu Organoleptik Daging Ayam Broiler Setelah Direndam

Dengan Ekstrak Daun Senduduk. Jurnal Aplikasi Teknologi Pangan 2 (3) :

116 – 120

Akoso, B.T. 2000. Kesehatan Sapi. Kanisius, Yogyakarta.

Ardana, I. B. K. 2011. Strategi Pencegahan Penyakit Inefeksius pada Peternakan

Broiler Berbasis Laboratorium. Buletin Veteriner Udayana. 3 (1) : 51-59

Ashenafi H ,Eshetu Y. 2004. Study On Gastro Intestinal Helminths Of Local

Chickens In Central Ethiopia. Revue Med Vet 155(10): 504-507.

Damayanti, R., dan A. Wibowo.2003. Gambaran Histopatologi kasus Marek pada

ayam pedaging di Kabupaten Tasikmalaya dan Ciamis.8 (4) : 247-255.

Damayanti, Y., I. Bagus., dan M. Djoko. 2012. Evaluasi Penyakit Virus Pada

Kadaver Broiler Berdasarkan Pengamatan Patologi Anatomi di Rumah

Pemotongan Unggas. Fakultas kedokteran. Universitas Udayana.

Indonesia Medicus 2012 1 (3) : 417-4127. ISSN : 2301-7848.

Ernawati, R., A. P. Raharjo, N. Sianita, J. Rahmahani, F. A. Rantam dan Suwarno.

2008. Petunjuk Praktikum Pemeriksaan Virologik dan Serologik.

Laboratorimum Virologi dan Imunologi. Fakultas Kedokteran Hewan.

Universitas Airlangga, Surabaya.

Fadilah, R., dan Agustin P. 2004. Aneka Penyakit pada Ayam dan Cara

Mengatasinya. Agromedia, Jakarta.

Fadilah, R., dan Agustin P. 2011. Mengatasi 71 Penyakit pada Ayam. Agromedia,

Jakarta.

Hermana, W., D.I. Puspitasari,.K.G. Wiryawan., dan S. Suharti. 2005. Pemberian

tepung daun salam (Syzgium polyanthum (weight) walp.) dalam ransum

sebagai bahan antibakteri Eschericia coli terhadap organ dalam ayam

broiler. Media Peternakan.31.(1): 63-70.

Huminto, H., B. P. Priosoeryanto, I. W. T. Wibawan, D. R. Agungpriyono, E.

Harlina, dan S. Fatimah. 2000. Kasus Diagnostik Penyakit Marek pada

Ayam. Seminar Nasional Peternakan dan Veteriner. Hal : 543-546.

Krista, B., dan Bagus B. 2010. Buku Pintar Beternak dan Bisnis Ayam

Kapung.Agromedia, Jakarta.

Leclercq, B and C. C. Whitehead. 1998. Leannes in Domestuc Birds. Butterworth

dan Co. Ltd-INRA.

66

Mc lelland, J. 1990. A. Colour Atlas of Avian Anatomy. Walfe Publishing Ltd.,

London, England.

Nickel, R. A., A. Schummer, E. Seiferie, W. G. Siller and R. A. L. Wight. 1997.

Anatomy of The Domestic Birds. Verlap Paul Parey, Berlin.

Rasyaf, M. 2008. Panduan Beternak Ayam Pedaging. Penebar Swadaya, Jakarta.

Retnani, E. B., Fadjar S., Upik K. H., dan Singgih H. S. 2009. Analisis factor-

faktor resiko infeksi cacing pita pada ayam ras petelur komersial di Bogor.

Jurnal Veteriner 10 (3) : 165 - 172.

Salim, M. N. dan Dian M. 2010. Pengaruh Sulfaqu Inoxalin Pada Ayam Broiler :

Gejala Klinis Dan Patologi Anatomi. Jurnal Kedokteran Hewan 4 (2) : 65 -

68

Satyaningtijas, A. S., S. D. Widhyari, dan R. Delima Natalia. 2010. Jumlah

Eritrosit, Nilai Hematokrit, dan Kadar Hemoglobin Ayam Pedaging Umur

6 Minggu dengan Pakan Tambahan. Jurnal Kedokteran Hewan. Vol. 4 (2):

69 - 73.

Sianita, N., Z. Hasan, dan Kusriningrum R. 2011. Respon Antiodi dan

Protektivitas pada Ayam Pasca Vaksinasi Menggunakan Vaksin ND Aktif

Lv12. Veterinaria Medika. Vol. 4 (2) : 129-134.

Sugito., W. Manalu., D.A. Astuti., E. Handhrayani., dan Chairul. 2006.

Hitopatologi hati dan ginjal pada ayam broiler yang di papar cekaman

panas dan diberi ekstrak kulit Batang Jaloh (Salix tetrasperma roxb).

Seminar Nasional. Teknologi Peternakan dan Veteriner Bogor: 728-734.

Supartono, W., S. Raharjo dan S. Iskandar. 2009. Evaluasi Karkas dan Rumah

Potong Ayam Lokal Di Beberapa Kabupaten Di Daerah Istimewa

Yogyakarta dan Jawa Tengah. Fakultas Teknologi Pertanian. Universitas

Gajah Mada. Yogyakarta.

Suprijatna, E., U. Atmomarsono dan R. Kartasudjana. 2005. Ilmu Dasar Ternak

Unggas. Penebar Swadaya, Jakarta.

Tabbu, C. R. 2000. Penyakit Ayam dan Penanggulanganya. Kanisius, Yogyakarta.

Tarmudji. 2005. Penyakit Pernafasan Pada Ayam, Ditinjau Dari Aspek Klinik

Dan Patologik Serta Kejadiannya Di Indonesia. Jurnal Wartozoa 15 (2) :

72 – 82.

Wahyuwardhani, S., Y.Sani., L. Parede., dan M. Poeloengan.2000. Sindroma

kekerdilan pada ayam pedaging dan gambaran patologinya. 5(2):125-131.

Yulistiani, R. Studi Daging Ayam Bangkai: Perubahan Organoleptik dan Pola

Pertumbuhan Bakteri. Jurnal Teknologi Pertanian. Vol. 11 (1) : 27-36.

Laporan Ilmu Kesehatan Ternak (IKT)

Documents