КОМПЛЕКСНАЯ ТЕРАПИЯ ГНОЙНЫХ ...

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение

высшего образования «Горский государственный аграрный университет»

На правах рукописи

ПЕРСАЕВА НАДЕЖДА СЕРГЕЕВНА

КОМПЛЕКСНАЯ ТЕРАПИЯ ГНОЙНЫХ

ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ПРОЦЕССОВ И РАН У ЖИВОТНЫХ

06.02.04 – ветеринарная хирургия

Диссертация

на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук

Научный руководитель:

доктор ветеринарных наук, профессор

Чеходариди Федор Николаевич

Владикавказ - 2019

2

СОДЕРЖАНИЕ

1. Общая характеристика работы 4

2. Обзор литературы 11

2.1. Этиология, клинические признаки воспалительных

процессов и ран у животных 11

2.2. Комплексная терапия случайных инфицированных ран и

воспалительных процессов у животных 18

2.3. Характеристика и свойства «Кордицепс-золотой» 33

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ РЕЗУЛЬТАТЫ 37

3.1. Методология и методы исследований 37

3.2. Мониторинг распространения хирургической патологии у

животных за три года (2014-2016 гг). 46

3.2.1. Мониторинг распространения хирургической патологии у

собак за три года (2014-2016 гг) г. Владикавказ 46

3.2.2. Мониторинг хирургической патологии у крупного рогатого

скота за три года (2014-2016 гг) по РСО-Алания 47

3.3. Изучение антимикробного действия «Кордицепс-золотой»

на некоторые штаммы патогенных микробов (in vitro) 49

3.4. Применение комплексной терапии при гнойном абсцессе у

собак 53

3.5. Применение комплексной терапии при флегмонах у собак 59

3.6. Применение комплексной терапии при гнойном абсцессе у

телят 65

3.7. Применение комплексной терапии при случайных

инфицированных ранах у собак 68

3.8. Комплексная терапия случайных инфекционных ран у телят 85

3.9. Комплексная терапия случайных инфицированных,

воспалившихся ран у овец 94

3

4. Экономическая эффективность применения

«Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерной терапии при гнойных

воспалительных процессах и ранах у животных 102

5. Обсуждение результатов собственных исследований 133

Заключение 139

Практические предложения 141

Библиографический список 142

4

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Интенсификация производства в животноводстве

требует совершенствования применяемых и разработку новых, более

эффективных медикаментозных средств лечения животных с учетом их

влияния на человека, как конечной степени существующей при этом

экологической системы.

Несомненно, лечение животных должно вестись с учетом повышения

сопротивляемости организма, охраны нервной системы от перераздражения,

предупреждения развития местной и общей инфекции, а также быстрейшего

очищения воспалительного процесса и ран от мертвых тканей, различных

ядов, токсинов и микроорганизмов, нормализации раневой среды и

стимуляции регенеративных процессов. Лечение должно проходить на фоне

улучшения условий содержания и обеспечения животных полноценным

кормлением, а также с применением средств и методов, направленных на

нормализацию трофики и нарушенных функций внутренних органов,

вызванных ранением или другими заболеваниями.

На сегодняшний день хирургические болезни занимают второе место

среди незаразных болезней. Наиболее часто встречаемыми хирургическими

болезнями животных являются гнойные воспалительные процессы и

случайные инфицированные раны (Э.И. Веремей, В.М. Лакисов, 1992; Е.М.

Козлов, 1997; С.Я. Бережной, 1999; В.Н. Виденин, Е.Ю. Антонен, 2001; В.Н.

Виденин, Е.Ю. Антонен, 2001; И. Карамалак с соавт., 2002; А.М. Наметов,

2003;.И.Н. Никитин, Е.И. Трафимова, 2005; Н.Н. Фисенков, 2005; Т.В.

Ермакова, 2005; Ф.Н. Чеходариди, С.Г. Гадзаонов, 2008, 2009; Ф.Н.

Чеходариди, Т.Т. Бициев, 2010 и др.).

В ветеринарной практике при лечении гнойно-воспалительных

процессов широко применяют антибиотики, сульфаниламидные препараты в

сочетании с местной хирургической обработкой, различные мази, линименты

5

и порошки. Их использование устраняет главный этиологический фактор -

патогенную микрофлору, но не всегда имеет высокую терапевтическую

эффективность. Это связано с отсутствием способности разрушения белков

некротических тканей, которые являются источником образования

эндотоксинов и питательной средой для размножения патогенных

микроорганизмов. Кроме того, гноеродная микрофлора имеет растущую

резистентность и изменяется реактивность организма к длительно

применяемым препаратам, что является сложной проблемой.

Так, изучение чувствительности ассоциаций микроорганизмов,

выделенных с поверхности кожи рук хирурга, ран животных и операционного

поля показывает их низкую чувствительность к антибиотикам, пеницилину,

ристомицину, стрептомицину, левомицетину, эритромицину (В.Н. Веденин,

Е.Б. Нюкольская, В.В. Дорутина и др.,1995). Все это ведет к постояному

совершенствованию и обновлению лекарственных средств, применяемых в

ветеринарии.

Исходя из этого, необходимо проводить исследования по разработке

более эффективных комбинированных лекарственных средств в сочетании с

методами патогенетической терапии, которые обладают комплексным

действием, обезболивающим, антимикробным, противолитическим,

стимулирующим рост грануляционной ткани и повышением

иммунобиологической реактивности организма животных.

Широкое применение в медицинской и ветеринарной практике

антибиотиков и химических антисептиков не решило этой проблемы.

Основным лечением является хирургическое лечение в сочетании с

ультразвуком, лазером, квантовым облучением, электролечением,

инфракрасным и ультрафиолетовым облучением, магнитотерапией,

оксибаротерапией, вакуумтерапией, новокаиновой терапией и др.

Таким образом, изыскание и исследование новых, эффективных,

экологически безопасных, нетоксичных гипоаллергенных,

многофункциональных доступных и недорогих средств сомнений не

6

вызывает.

В связи с вышеизложенным, несмотря на большое количество

экспериментальных, клинических исследований и разработок по

профилактике и лечению воспалительных процессов и открытых

механических повреждений мягких тканей у собак и сельскохозяйственных

животных, этот вопрос остается открытым и актуальным, заключающий в

себе изыскание способов и средств с применением комплексной терапии

(М.В. Плахотин,1966;Хоанг Био Тяд, Ла Куанг Ниеп, 1988; Д.Ф.

Сунагатулина, 2002; В.Ю. Ватнинов, 2002 и др.).

Цель и задачи исследования. Целью настоящей работы явилось –

изучение эффективности применения «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения для лечения

гнойно-воспалительных процессов и случайных инфицированных ран у собак,

телят и овец.

В соответствии с выбранной целью решались следующие задачи:

− провести мониторинг распространения воспалительных процессов,

случайных инфицированных ран и другой хирургической патологии у собак в

г. Владикавказ и крупного рогатого скота в РСО-Алания. Изучить причины

возникновения гнойно-воспалительных процессов и ран у животных;

− установить антимикробную активность «Кордицепс-золотой» на

некоторые штаммы патогенных микроорганизмов (Staphylococcus aureus,

Streptococcus epidermidis, Escherichia coli, Proteus vulgaris);

− изучить влияние «Кордицепс-золотой» при лечении абсцессов, флегмон

и ран у собак, телят и овец на фоне магнитно-лазерного излучения на

коррекцию клинического статуса, клеточного состава и

регенеративно-восстановительных процессов;

− установить влияние комплексной терапии («Кордицепс-золотой» на

фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения) на гематологические,

биохимические и иммунологические показатели крови при абсцессах,

флегмонах и ранах у животных;

7

− установить терапевтическую эффективность применения

«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения

при гнойно-воспалительных процессах и случайных инфицированных ранах у

животных;

− установить экономическую эффективность применения комплексной

терапии при гнойно-воспалительных процессах и ран у животных.

Степень распространенности изучаемой проблемы. В настоящее

время, для повышения эффективности профилактики и лечения

гнойно-воспалительных процессов и открытых механических повреждений

мягких тканей уживотных применяются многообразные методы и средства

терапии.

Традиционно используемые лекарственные препараты для лечения этих

заболеваний у животных не всегда дают высокий терапевтический эффект.

Применение тканевых препаратов («Кордицепс-золотой» и мазь левомиколь)

на фоне магнитно-инфракрасно-лазерной терапии у животных в специальной

литературе оснащены недостаточно.

Перечисленные выше факты и теоретические предпосылки определили

цели и задачи исследования (Б.М. Алухов, 2001; С.А. Веденеев,2005; Э.Ю.

Гуменная, 2005; Ф.Н. Чеходариди, С.Г. Гадзаонов, 2009 и др.).

Предмет и объект исследований. Объектом исследования явились

собаки, телята и овцы, принадлежащие учебно-научной ферме Горского ГАУ,

СК «Радуга», ветеринарной станции по борьбе с болезнями животных г.

Владикавказ, поступившие больные животные на лечение.

Предмет исследования – показатели клинического статуса,

морфологического, биохимического и иммунологического состава крови.

Эффективность применения комплексной терапии при

гнойно-воспалительных процессах и случайных инфицированных ранах у

собак, телят и овец.

Научная новизна результатов исследования. Установлена

распространенность и этиология гнойно-воспалительных процессов и ран у

8

животных. Установленна антимикробная активность применения

«Кордицепс-золотой» на некоторые патогенные штаммы (Staphylococcus

aureus, Streptococcus epidermidis, Escherichia coli, Proteus vulgaris). Изучена

терапевтическая эффективность применения «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-лазерного излучения при абсцессе, флегмоне и ран у собак, телят и

овец. Установлена экономическая эффективность «Кордицепс-золотой» на

фоне магнитно-лазерного излучения при воспалительных процессах и ранах у


Теоретическая и практическая значимость работы. Разработаны

способы и методы комплексной терапии гнойно-воспалительных процессов и

ран (абсцессы, флегмоны, случайные инфицированные раны) у собак, телят и

овец. Изучены морфологические, биохимические и иммунологические

показатели крови у больных животных.

Результаты проведенных исследований используются в учебном

процессе по дисциплине «Ветеринарная хирургия» в Горском

государственном аграрном университете, а также представлены в виде

монографии «Комплексная терапия гнойных воспалительных процессов и ран

у животных» изданная в типографии Горского ГАУ в 2017 году.

Соответствие диссертации паспорту специальности 06.02.04

ветеринарная хирургия.

П 1. Исследование закономерностей и механизмов развития

хирургической патологии (патогенез)

П 2. Изучение общих и специфических признаков хирургических

заболеваний (семиотика).

П.4 Исследование процессов воспаления, регенерации, трансплантации

и выздоровления.

П 5. Выяснение внутренних условий, тормозящих и стимулирующих

выздоровление.

9

П. 9. Разработка теоретических основ и методов комплексного лечения и

профилактики; организационно-хозяйственные мероприятия по

профилактике травматизма животных.

П. 10. Изучение клинических, гематологических, морфологических,

биохимических и физиологических показателей, объективно

характеризующих общее состояние организма и обмена веществ при разных

видах патологии.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы

доложены, обсуждены и одобраны межвузовской и Международной

научно-практической конференции Горского государственного аграрного

университета г. Владикавказ в 2015, 2016, 2017 гг. По результатам

исследований кандидатской диссертации опулковано 11 рабаот в печатных

изданиях.

Основные положения, выносимые защиту:

1. Мониторинг распространения воспалительных процессов и ран у собак

в г. Владикавказ и крупного рогатого скота в РСО-Алания;

2. Установить терапевтическую эффективность применения

«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно- инфракрасно- лазерного

излучения при абсцессах, флегмонах и ранах у собак, телят и овец.

3. Изучить морфологические, биохимические и иммунологические

показатели крови у собак, телят и овец при абсцессах, флегмонах и ран у


Внедрение результатов исследований. Полученные данные

результатов исследований используются в практической деятельности

ветеринарных специалистов в ветеринарной клинике Горского

государственного аграрного университета, ветеринаных станциях по борьбе с

болезнями животных и хозяйствах РСО-Алания.

Объем и структура работы. Текст диссертационной работы изложен

на 163 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора

литературы, методологии и методов исследований, собственных

10

исследований, экономической эффективности, обсуждения полученных

результатов, заключения, практических предложений и библиографического

списка.

Диссертационая работа содержит 18 таблиц, 45 рисунков и 226

источников литературы из которых 58 зарубежных авторов.

Работа представляет собой законченные клинические исследования,

которые выполнены в соответствии с комплексным планом научной работы

кафедры ветеринарно – санитарной экспертизы, хирургии и акушерства

ФГБОУ ВО ГГАУ в 2013-2017 гг. (регистрационный номер 01.200.00.11.255).

11

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1. Этиология, клинические признаки гнойно-воспалительных

процессов и ран у животных

Среди незаразных болезней, наблюдаемых в животноводстве,

хирургические составляют более 40%, травмы различной этиологии (ушибы,

растяжения, вывихи, раны и др.) (Бюрденюк А.Ф., Власенко В.М., 1985;

Чеходариди Ф.Н., Гадзаонов С.Г., 2007, 2008; Чеходариди Ф.Н., Бициев Т.Т.,

2009, 2010). За частую травмы носят характер открытых повреждений и в

большинстве случаев они осложняются раневой инфекцией (Веремей Э.И.,

Власенко В.И., Елисеев А.Н., 2001; Стручков В.И., Беляков В.Д, 1998).

Основной причиной возникновения травм у животных являются

нарушения зоогигиенических норм и требований к условиям содержания

животных, эксплуатации, а так же агрессивный контакт животных. В

результате возникновения травм в организме происходят нарушения обмена

веществ, развитие дистрофических процессов, развитие дистрофических

процессов, что приводит к дистонии и дисфункции органов и систем

организма, снижению сопротивляемости клеток и тканей организма

вредноносными агентами, что приводит к благоприятным условиям для

возникновения травм различной этиологии.

Травмы собак живущих в больших городах встречаются довольно часто

(автомобильные травмы и повреждения от укусов животных, которые

являются случайными ранами) (Веремей Э.И., Лакисов В.М., 1992, 2000;

Веремей Э.И., Лакисов В.М., Кармалак А.И., 2003; Кашин А.С., Левченко

Н.И., 1994; Козлов Е.М., 1997; Никитин И.Н., Трофимов Е.И., 2005 Ф.Н.

Чеходариди, С.Г. Гадзаонов, 2007, 2008; Т.Т. Бициев, 2010, 2011).

Учение о ранах имеет многовековую историю. Еще в глубокой

древности домашние животные получали открытые механические

повреждения, и человек был вынужден их лечить.

Воспалившиеся процессы и раны самые распространенные виды

12

повреждений, как в мире, так и особенно в военное время.

Воспаление это ответная защитно-приспособительная реакция

животного организма на различные повреждения, в результате различных

трвмирующих факторов.

Развитие хирургической инфекции зависит от реакции организма и

характера возбудителя:

1) Аэробная (гнойная) хирургическая инфекция, которая вызывается

стафиллоккоками, стрептококками, диплококками, кишечной

палочкой, синегнойной палочкой и др.

2) Анаэробная хирургическая инфекция – газовая гангрена,

злокачественный и токсический отек и ткани расплавляющие.

3) Гнилостная хирургическая инфекция – анаэробы или

факультативные анаэробы (вульгарный протей, спорообразующий

бацилл, кишечная палочка и др.).

4) Специфическая хирургическая инфекция – столбняк, мыт, бруцеллез,

туберкулез, актиномикоз, некробактериоз, ботриомикоз.

Анаэробная хирургическая инфекция встречается реже, чем аэробная

гнойная инфекция, которая носит экзогенный характер и протекает в

основном местно, в виде острого гнойного воспаления, но иногда принимает

хроническое течение, так же может перерастать в общую инфекцию.

Характерной особенностью является нагноение.

Развитие абсцесса и флегмоны служит в основном аэробная гнойная

инфекция.

Абсцесс – ограниченная патологическая полость, заполненная гноем,

возникающая вследствие пространственно локализованного острого

гнойного, чаще инфекционного воспаления рыхлой клетчатки, реже другх

тканей и органов.

Флегмона – диффузное острогнойное воспаление рыхлой

соединительной ткани, вызывающее некротические явления тканей.

13

Абсцессы и флегмоны возникают в результате внедрения в ткани

гноеродный микроорганизмов, чаще стафилококков, стрептококков, палочек

синегнойной, кишечной, туберкулезной палочки, актиномицет и др. грибков, а

так же под влиянием различных химических веществ – скипидара, керосина, и

пр.

Патогенез развития возбудителя аэробной инфекции в тканях, вызывает

некроз тканей, организм при этом реагирует развитием гнойного воспления,

которое протекает стадийно:

Первая фаза гнойного воспаления (фаза гидратации):

1) Воспаленый отек;

2) Клеточная инфильтрация и фагоцитоз;

3) Барьеризация и абсцедирование

Вторая фаза остро-гнойного воспаления (фаза дегидратации):

1) Созревание абсцесса;

2) Биологическое очищение (рассасывание)

3) Регенерация и рубцевание

Провести грань между процессами, обусловленными

жизнедеятельностью патогенного возбудителя и возникшей в связи с этим

воспалительной реакцией, невозможно.

В каждой фазе развития воспаления происходят

био-физико-колоидно-химические, морфологические и клинические

изменения.

Фаза гидрататции характеризуется альтерацией при остром

инфекционном воспалении. С проявлением разрушительных

нервно-дистрофических процессов в зоне очага воспаления, происходит

снижение тонуса сосудов с повышением проницаемости, экссудации,

клеточной инфильтрации, фагоцитозом, гистолизом тканей с выраженным

био-физико-колоидо-химические нарушением. Нормергическое восплние

протекает направлено на локализацию, нейтрализацию, подавление и

14

ликвидацию инфекта и токсинов, происходит ферментативное расщепление

некротизированных тканей с последующим формированием полноценного

грануляционного барьера.

Гиперрергическое воспаление имеет обостренный характер, который

неблагоприятно влияет на трофику близлижайщих здоровых тканей, в

результате чего едет ухудшение их кровообращения, понижения активности

фагоцитарной реакции и снижается или полностью подавляется

формирование клеточного барьера, это ведет к генерализации инфекта и

расширению зоны некроза.

Асептическая форма воспаления в первой фазе протекает в виде

выраженных расстройствах трофики, кровообращения и лимфиобращения,

умеренно выраженным ацидозом, ферментативным и гистолитическими

процессами, с преобладанием восстановительно-пролиферативных явлений

над разрушительными явлениями (альтернативными). Фаза гидратации при

асептической форме воспаления резко переходит в фазу дегидратации.

В фазе дегидратации при асептической форме восплаения происходят

регенеративные процессы в зоне воспаления, при которых завершается

барьеризация с последующим наступением полного ограничения зоны

повреждения или инфекционного очага. При этом происходит рассасывание и

выведение из организма гнойного экссудатата и токсинов, как следствие

происходит процесс регенерации, нормализация клинических признаков

воспаления, био-физико-колоидо-химических воспалений и функциональных

изменений. Нормализуется обмен веществ, крово- и лимфообращение,

снижение количества токинов и ацидоза с преобладанием макрофагальной

реакции. В патологическом очаге в большом количестве преобладают

гистиоцитарные клетки и соединительные элементы и возникают белее и

менее выраженные пролифераты.

Рана (vulnus) – открытое механическое повреждение кожи, мягких

тканей и слизистой оболочки.

Рана проявляется сильной болью (dolor), в дальнейшем развивается

15

патологическая реакция, а также общими функциональными нарушениями и

токсико-инфекционными явлениями, все это является раневой болезнью

(Morbus venenatimi) (Шахотин М.В. и др., 1981; Лебедев, и др., 2000; Семенов

Б.С. и др., 2013).

На течение раневой болезни и ее исход влияет обширность

повреждения, характер раневой инфекции, величина кровопотери, состояние

организма и его реактивность.

Раневая болезнь - сложный комплекс биологической реакции организма,

которая заканчивается полным выздоровлением. Раневая болезнь

представлена в сочетании местных изменений и многочисленными общими

реакциями, при этом микроорганизмы приводят к нарушению функции

нервной и эндокринной системы, шоком и кровопотерей и др.

Клинические признаки проявления ран складываются из местных и

общих симптомов – кровотечение, зияние, боль, нарушение функций.

Боль возникает вследствие повреждения чувствительных нервных

рецепторов, сплетений и стволов. Продолжительность и интенсивность

первичной раневой боли зависит от места локалтзации, характера, скорости

нанесения раны и состояния макроорганизма животного.

Интенсивность развития болевой реакцией зависит от следующих

факторов:

- Количество нервных окончаний;

- Нервное состояние и реактивность организма;

- Вид травмы.

Усиление раневой боли происходит за счет сдавливания инородными

телами и сгустков крови на нервы и развитии инфекции. Раневая боль

отсутствует при наличии раневого шока животного.

Зияние раны (hiatus) представлена расхождением краев и стенок, что

сильно наблюдается при резанных, рубленных рваных ранах, но зияние раны у

колотых ран наблюдается меньше или полностью не наблюдается. Характер и

вид раны, а также повреждение кровеносных сосудов влияет на интенсивность

16

кровотечения (М.В. Плахотин, с соавт.,1981; А.В. Лебедев с соавт., 2000;

Tsybin, J.N., 2000; Б.С. Семенов с соавт., 2013; Б.М. Оливков, 1950;

М.И.Кузин, 1981; В.И. Стручков, 1982).

Кровотечение – начинается с нарушением целостности кожи и

слизистой оболочки, в результате нарушения целостности сосудов.

Интенсивность кровотечения зависит от характера повреждения кровеносных

сосудов и вида раны, от состояния системной и местной гемодинамики. При

низком артериальном давлении или сдавливании магистрального сосуда

интенсивность кровотечения снижается. Кровотечение бывает наружным и

внутренним; артериальным, венозным, капиллярным; паренхиматозным и

смешанным, аррозионным. По времени происхождения и частоте –

первичным, вторичным или повторным кровотечением, кроме того, выделяют

эрозионное кровотечение.

В зависимости от наличия раневой микрофлоры и степени ее развития,

различают асептические, бактериальные, загрязненные, инфицированные и

гнойные раны. К асептическим ранам отнесятся операционные, которые были

произведены в стерильных условиях, в таких ранах микробы отсутствуют или

присутствуют в очень малом количестве в свежей ране - биологический

контакт их отсутствует. Случайные и огнестрельные раны являются микроб

загрязнёнными. В микробном загрязнении раны различают: микрофлору

раны, состоянию из микроорганизмов присутствующих в процессе

заживления раны (И.В.Давыдовский, 1952). Часто микрофлора раны

отличается от первичного инфекта (Т.Я. Арьев, 1962). От бактериально

загрязненной инфицированную рану отличает проявляющиеся в ней

клинические признаки местной или общей инфекции. Инфицированные раны

заживают по вторичному заживлению, как единый гнойно-грануляционный

процесс.

В зависимости от вида микроба вызывающего инфекционный процесс

зависит специфика течения раны и особенности морфологических изменений

в органах. (В.Д. Тимаков, В.Г. Петровская, 1977; Verravw G., 1995; Johnson

17

J.A., 2003; Е.Ю. Гуменная, К.С. Казакова, 2005).

В настоящее время ведущими среди возбудителей хирургической

инфекции являются стафилококки, стрептококки и граммотрицательные

бактерии семейства энтеробактерий и к обширной малоизученной группе

неферментирующих грамотрицательных бактерий. Важную роль в развитии

раневой инфекции отводитят облигатным неспорообразующим анаэробным

бактериям (В.И. Стручков и др., 1975; В.М. Мельников, 1975; С.М.

Курбангалиев и дп., 1977; С.Понкиров, 1975; М. Finland, 1975; W. Altemeier,

1973; J. Lowbry.1975; Bitar M.S, 1998; Boulard G., 2002).

При нанесении раны происходит первичное загрязнение, что характерно

при огнестрельных и травматических ранах. Вторичное загрязнение раны

происходит при нарушении правил асептики во время перевязки и операции и

часто является следствием нарушений условий содержания и ухода за

животными.

Важным фактором определяющий переход от бактериально

загрязненных ран в инфицированные раны, является функциональное

состояние поврежденных тканей. Развитие инфекции происходит в обширно

бактериально-загрязненных ранах, которые содержат нежизнеспособные и

поврежденные ткани, эта среда становится благоприятной для развития

бактерий. Следовательно, хирургическая обработка тканей бактериально

загрязненной раны делает ее «Чистой».

Развитие инфекционного процесса в ране происходит при нарушении

баланса между загрязняющими рану микробами и защитным потенциалом

организма животного, проявляющегося воспалением. Воспаление служит

основным показателем микробного загрязнения раны от инфекции.

Развитие инфекционного процесса приводит к распространению

микробов вглубь здоровых тканей, а также в лимфатическую и кровеносную

систему, в результате чего бактерии патогенно воздействуют на местное

течение раневого процесса и на весь организм в целом. (А.В.Вишневский,

М.И. Шрайбер, 1975; М. Toug, 1972; К Klein. Et al, 1975; В.Д. Вадиков, В.А.

18

Андреев, 1990; P.N. Basse., M.Lohmann, 1993; В.Н. Анисимов с соавт, 1997; F.

W.Tiller, 1999; В.А. Молоканов с соавт., 2004).

Таким образом, клинико-морфологические признаки

гнойно-воспалительных процессов и раневую инфекцию определяют условия

нанесения раны, механизмы воздействия раневого предмета, физиологические

особенности поврежденных тканей и органов, видовые особенности

организма, состояние нервной системы, а также вирулентность и патогенность

микробов (Б.М. Оливнов, 1950; Н.Н. Анечков с соавт., 1951; Ю.Г.

Шапошников с соавт., 1984; И.И. Долгушин с соавт, 1989; В.С. Новиков, В.С.

Смирнов, А.Н. Березин, 1995; А.Н. Безин, 2000).

2.2. Комплексная терапия случайных инфицированных ран и

воспалительных процессов у животных

Одна из главных целей ветеринарной науки - изыскание и производство

сравнительно недорогих и эффективных лекарственных средств.

На современном этапе при лечении раневой инфекции и

воспалительных процессов используют различные методики, способы и

средства лечения. Несмотря на это, поиск новых препаратов для ускорения

регенерации тканей остается актуальным.

Лечение при острогнойном воспалении должно осуществляться с

учетом стадии развития его и сводится к нормализации воспалительной

реакции средствами этиологической и патогенетической терапии;

локализации и подавлению инфекционного начала; формированию

полноценного клеточного и грануляционного барьеров; предупреждению

обширных некрозов и нагноений; нейтрализации и выведению из организма

продуктов тканевого распада и токсинов микробов; своевременному и

возможно полному выведению экссудата из гнойно-некротического очага во

внешнюю среду; созданию благоприятных условий для регенерации и

предупреждению формирования обширных рубцов, в зоне бывшего

19

гнойно-некротического очага.

При лечении больного животного необходимо учитывать общее

сосояния организма, вида животного, патогенности возбудителя, мест

локализации, характера развития гнойного воспаления. При этом животному

предоставляют покой, улучшают содержание и балансируют кормление

витаминизированными и ощелачивающими кормами.

В фазе гидратации применяют тепловые процедурыв сочетании

новокаиноантибиотиковых блокад. При этом с успехом применяют

ионогольванизацию водного 1 – 2 % раствора новокаина с пенициллином и

стрептомицином по 5000 – 10000 ЕД на 1 мл раствора при плотности тока 0,1 –

0,2 А / см2 экспозиция 20 минут ежедневно. В стадии инфильтрации

ежедневно применяют УВЧ слабой или умеренно теплой дозировки,

приэкспозиции 10 минут.

В стадии абсцедирования и созревающего абсцесса или флегмоны

делают разрез, вскрывают карманы, ниши, удаляют некротизированые ткани,

не затрагивая при этом грануляционный барьер. Промывают полость

подогретыми до 400С растворами: перекиси водорода с фурацилином 1:5000,

5% калия перманганата в 5-10% растворе сульфата магния или хлорида

кальция и 2 % хлорамина. Большое внимание заслуживают внутримышечные

инъекции антибиотиков, сульфаниламидных препаратов, а также

использование средств и методов охранительной терапии

(новокаиноантибиотиковые блокады, внутрисосудистые инъекции),

дезинтоксикация и выведение токсинов (инъекции 40% гексаметилентетрамна

с дозой кофеина, 10% раствора кальция хлорида с 20% раствором глюкозы,

переливание совместной крови, либо 10% раствор полиглюкина, витаминов и

др) (В. Абасов, Д. Н. Годжиев, Р. А. Асланадзе, 1982).

Хорошие результаты при лечении гнойно-гнилостной флегмоны бедра и

голени у животных надплевральной новокаиновой блокадой по В. В. Мосину

получены Н. М. Кашовым (1975), Н. Н. Павловым (1964); Е. Н. Падейской

(1984), Ф. Н. Чеходариди (1981).

20

При комплексном лечении инфицированных ран, в фазе гидратации

необходимо:

1) в зоне раны создать покой;

2) исключить перераздражение нервных центров от болевых

импульсов;

3) в зоне раны удалить мертвые ткани и различные загрязнения;

4) провести профилактику инфицирования раны;

5) улучшить условия содержания и предоставить животноми

сбалансированное кормление.

В фазе дегидратации раневого процесса необходимо:

1) чередовать покой с умеренным движением;

2) предупреждать грануляционную ткань от повреждений,

раздражений и раневого рубцевания;

3) контролировать процессы грануляции, эпителизации и

рубцевания;

4) активизировать эпителизацию и выполнять пересадку аутокожи;

5) предотвращать образование массивного рубца и содействовать

его распаду.

Одним из древнейших способов лечения ран можно считать местную

терапию. Многие столетия для этой цели использовали различные

лекарственные средства (Б.И. Оливков, 1954; М.В. Плахотин с соавт. 1981;

В.И. Стручков, В.К. Гостищев, 1982).

Обоснованным считается такое местное медикаментозное лечение,

которое проводится, учитывая особенности стадий воспалительного процесса

и патогенеза раневого процесса (В.А.Содинов, 1991; В. И. Стручков, 1955; А.

М. Чернук, 1965; И. И. Волотко, 2004; А. Н. Елисеев, 2000, 2004; А. А.

Кирилов, А. А. Стекольников, 2007; Р. А. Усманов, 2002).

Анализируя патогенез воспалительного и раневого процесса в первой

21

фазе, следует применять лекарственные вещества, которые оказывают

антимикробное, дегидратирующее, некролитическое и анальгезирующее

действие. Одновременно с этим рекомендуется обеспечить покой и

ограничить раздражение нервных центров, находящихся в патологическом

очаге, содействовать очищению раны от некротизированных тканей,

инфекции, а также способствовать повышению сопротивляемости организма

(М.Ф. Камаев, 1970; Г.В. Родомин, Н.Ш. Султанов, А.А.. Хрупалов, Д.В.

Ликопатников, 1991; М. М. Громова, 2003; Э.Ю.Гуменная, К.С.Казакова,

2005; D.N. Aron, 1988, F. Annont. 1989; I.H. Ahmed, 1995; A. Ames. 1995; C.M.

Riggs et al, 1995).

Во второй фазе раневого процесса рекомендуется совмещение покоя с

дозированным моционом, при этом необходимо обеспечить защиту

грануляционной ткани от загрязнения, повреждения и преждевременного

рубцевания и содействовать его разрыхлению (Melfsen et al.,1995; П.А.

Тарасенко, 2001; Г.А. Послов, И.Ф. Водопьянов, 2005)

Такое лечение характеризуется высокой терапевтической

эффективностью, это обусловлено тем, что при применении только

комплексной терапии не всегда приводит к ожидаемому результату. Для

повышения эффективности лечения необходимо применять

патогенетическую терапию. К ней относят лечебные мероприятия, они

воздействуют на организм через нервную систему, в свою очередь повышают

защитные функции организма.

Лечебные мероприятия должны быть направлены на защиту коры

головного мозга от различного раздражения. Наряду с патогенетической

терапией необходимо применять хирургические методы лечения.

Новокаиновая терапия. Это комплексное воздействие на

периферическую и центральную нервную систему. Она сочетается с

элементами торможения и блокирования нервной системы, после которой

улучшается обмен веществ в организме.

А.Д. Сперанский обосновал патофизиологическое воздействие

22

новокаина на периферическую и центральную нервную систему. Он

установил, что однообразные повторные воздействия, в зависимости от

состояния нервной системы развивают охранительное торможение или

повышение чувствительности.

На месте воспаления происходит угнетение нервных окончаний или

целого звена нервной системы, для устранения данного процесса необходимо

прекратить действие раздражающих фактов. С этой целью применяют

0,25—0,5% раствор новокаина, который способствует устранению болевых

импульсов в коре головного мозга. Благодаря этому происходит

восстановление рефлекторно-трофической функции нервной системы, что

благоприятно сказывается на течении заболевания.

По мнению С.П. Протопопова для новокаиновых блокад необходимо

применять 0,25-0,5% раствор новокаина, так как более высокие концентрации

ведут к прекращению проводимости и полному, длительному обезболиванию.

Новокаиновая блокада способствует востановлению функциональных

нарушений в системе гипофиз — кора надпочечников. Гормоны коры

надпочечников играют большую роль при регуляции воспалительных

процссов, а их функция контролируется адренокортикотропным гормоном

(АКТГ), который выробатывается в передней доле гипофиза. Все это

способствует улучшению циркуляции крови, внутриклеточного и общего

обмена, уменьшению проницаемости капилляров, приемущественно в очаге

воспаления, активизации фагоцитоза и других иммунологических реакций,

снижению процессов нейродистрофии, нормализации функции внутренних

органов. На этом фоне отмечается улучшение общего состояния организма.

По данным Е.Н. Воротынцевой паранефральная блокада или

внутривенное введение новокаина обнаруживается во всех органах и тканях

через 4 ч., а максимальное содержание наблюдается в спинном мозге и в коре

головного мозга через 72 ч., что приводит к восстановлению

координирующего действия коры головного мозга.

Известно также и антигистаминное действие новокаина. В

23

патологическом очаге при серозном воспалении образуется большое

количество гистаминоподобных веществ и гистамина. Нейтрализующее

действие новокаиновой блокады нейтрализует гистамин, а также устраняет

его действие.

Новокаин также нейтрализует токсическое действие

парааминобензойной кислоты, которая является антагонистом

сульфаниламидных препаратов в культурах микроорганизмов и в организме

инфицированных животных. В свою очередь это происходит за счет

гидролиза в крови парааминобензойной кислотой, которая относится к

витаминам.

Тканевая терапия. Академик М.П. Тушнов. В 1930 г., предложил лизаты

- органотерапевтические препараты (натуральные клеточные яды), которые

возникают в результате распада (лизиса) тканей. Каждый лизат является

специфичным тем сильнее, чем меньше произошел распад белков до

аминокислот. Автором доказана терапевтическая эффективность

гистолизатов при лечении животных с признаками общей и половой слабости,

бесплодия и отсутствия охоты, мышечной атрофии, мышечного ревматизма,

бронхопневмонии и др.

В.П. Филатов (1933) обосновал применение тканевой терапии. В ее

основу легло учение о биогенных стимуляторах, образующихся при

консервировании тканей животного происхождения низкой температурой или

растительных тканей без доступа света. Небелковые вещества,

представленные яблочной, лимонной, молочной, янтарной, карбоновыми

кислотами и двумя аминокислотами: аргинином и глютаминовой кислотой

относят к биогенным стимуляторам. Этот комплекс улучшает действие на

вегетативную нервную систему, тем самым нормализуют обмен веществ.

На сегодняшний день доказано стимулирующее и нормализующее

действие тканевой терапии на большинство функции живого организма:

Установлено, что применение тканевой терапии нормализует и

стимулирует различные функции животного организма (трофическую

24

функцию нервной системы, повышает функцию тироидной ткани,

надпочечников, поджелудочной железы, увеличивается образование

адренокортикотропного гормона, выделяются кортикостероиды, секреторная

и моторная функция желудочно-кишечного тракта, газовый, межуточный и

фосфорный обмены, стимулируются функция ретикулоэндотелиальной

системы (РЭС) и регенеративные процессы).

Квантовую терапию также можно сочетать с добавлением в кровь

антибиотиков и 0,5-1,0 % раствора новокаина.

Иммунокоррегирующая терапия является распространенным методом

лечения иммунодифицита животных. За счет восстановления

функциональной активности звеньев иммунитета. Иммунокоррегирующую

терапию применяют в сочетании с этиологическим и симптоматическим

методом леения, что ведет к благоприятному фону для повышения их

эффективности. Иммунокоррегирующая терапия применяется в комплексном

лечении хирургически больных животных, так как химико- гормонально- и

антибиотиковая терапии, наркозы, хирургические операции снижают

иммунитет животных, что приводит к тяжелым послеоперационным

гнойно-воспалительным осложнениям.

Исследования П.А. Климовича (1995) показали, что инъекции

продигиозана при лечении коров с флегмонами, абсцессами, гнойными

ранами увеличивают количество альбуминов, гамма – глобулинов,

иммуноглобулинов, а также происходит нормализация общего белка. По

клиническим показателям после первого применения наблюдали обильное

выделение гнойного экссудата густой консистенции, а уже на 4 сутки полость

абсцесса очищалась от некротизированной ткани, вместе с тем усиливался

рост грануляционной ткани. Животные выздоравливали после третьей

инъекции продигиозана в дозе 0,5-1,5 мл с интервалом 4 дня в среднем на 12

сутки, а контрольная группа животных на 17 сутки лечения.

Физиотерапевтические методы иммунокоррекции применяют в

ветеринарной практике с 1970 г. Данный вид иммунокоррекциии широко

25

применяется при воспалительных процессах, для этого применяют

ультрафиолетовое, лазерное и магнитное излучение. Физиотерапевтические

методы лечения имеют широкий спектр действия, включающие в себя

иммунокоррегирующий эффект.

И.С. Панько, В.И. Издепский, М.В. Рубленок (1989) установили, что при

лечении гнойного воспаления суставов в начальной стадии болезни с

ежедневным использованием низкоэнергетического терапевтического лазера

при экспозиции 5— 10 мин при режиме облучения 119,4 Вт/см2 в дозе 41,7

Дж/см2 отмечается быстрое купирование и разрешение патологического

процесса с сохранением функции суставов

На II Всесоюзной конференции «Раны и раневая инфекция» (Москва,

1986) был обобщен огромный опыт советских хирургов лечения ран разной

этиологии.

Основным стало утверждение положения единства тактики лечения ран

с разнообразным генезисом в связи с единством биологических законов

заживления. По итогам конференции определили основные принципы

лечения ран и раневой инфекции, которые остаются актуальными и на

сегодняшний день:

− хирургическая санация патологического очага + способы, улучшающие

качество хирургической обработки;

− адекватное дренирование и местное лечение гнойной раны;

− антибиотикотерапия;

− детоксикация;

− иммуномодуляция и иммунокоррекция.

Первостепенным является хирургическая обработка (ХО), с помощью

которой устраняется источник интоксикации (гнойный очаг), затем

необходимо обеспечить оптимальные условия для оттока раневого экссудата,

что обеспечивает очищение раны от некроза, раневой инфекции и

предупреждению дальнейшего развития нагноения и генерализации

инфекции (Ахмаджанов М.М., 1989; Дерябин И.И., Шапошников Ю.Г.,

26

Решетников Е.А. и др, 1973; Мельникова В.М., 1973, Светухин А.М., Карлов

В.А., Жуков А.О.,1992; Graham H.T., Lowry O.H., 1955; S. Rilling, 2000).

Хирургическая обработка (ХО) бывает полной (радикальной) и

частичной. Полная хирургическая обработка (ПХО) гнойно-воспалительного

очага заключается в иссечении всех пораженных тканей до пределов здоровых

тканей. Иногда полная хирургическая обработка не может быть произведена

за счет большого дефекта тканей и опасности повреждения жизненно важных

анатомических образований. При этом проводят частичную хирургическую

обработку, включающую рассечение, вскрытие затеков и иссечение крупных

очагов некроза. В зависимости от места локализации,

топографо-анатомических особенностей и наступивших осложнений зависит

размер и количество разрезов (Коляков Я.Е., 1986, Lamarche M., Demange

J.M., 1956).

Качество хирургической обработки гнойных очагов улучшает

применение протеолитических ферментов, вакумирование раневой

поверхности (Лесков В.П., 1981; Anrep G.K., 1953), пульсирующей струи

антисептиков (Рубленко М.В., 1998; Рычков Ю.Г., 1985), лучей лазера (Хитров

Н.К., 1995; Maskay I., 1987), низкочастотного ультразвука (Колабская JI.C.,

Попова В.Д., 1980; Насыров Х.М., Нигматуллин Т.Г., 1994, Stock K., 1963).

Ряд авторов сообщают о перспективности применения с этой целью

плазменной хирургической установки (Видении В.Н., 1996),

воздушно-плазменного аппарата «Плазон» (Кондрахин И.П., Курилов Н.В.,

1985; Насонов Е.Л., Сура В.В., 1984).

Известно, что самым оптимальным лечением ран является закрытый

метод, при котором, производится активное дренирование в условиях

первичного шва раны (Молоканов В.А., 1992; Петухов В.В., Черванев В.А.,

1999). Но зачастую этот метод не корректен, в таком случае проводят лечение

раны открытым методом под повязкой, с применением всевозможных

химических и антисептических средств (Матюшев П.С., 1994; Чернушенко

Е.Ф., Когосова JI.C., 1985; Austen K.F., 1982, Baller D., 1989; M.S. Bitar, 1998;

27

M. Braun, 2000).

Современные методы местного лечения гнойных ран включают в себя

применение биологически активных перевязочных средств с учетом фазы и

характера раневого процесса (Адо А.Д. , 1967, 1978, 1974; Островский Н.С.,

1974, 1975; Black J.W., 1972; Видении В.Н., Широбокова М.М., 1983).

По данным Авилова В.М., (1994); Бабаева А.Г., (1985), установлено, что

применение водорастворимого коллагена в чистом виде для лечения ран,

ускоряет образование грануляционной ткани (Plaut M., 1973; Авилов В.М.,

1994;, Бабаева А.Г., 1985; Гущин И.О., Сараф Ф.С., 1992; D.B. Horn, 1999; V.

Guzmann, 2003).

Применение консервированной плацентарной оболочки в лечении

гнойных ран и ожогов обладают болеутоляющим и стимулирующим

действием (Альперн Д.Е., 1959; Raekallio J., 1970).

К.Ю. Апосталиди, Л.Г. Зотова (2013) установили, что применение

квантового излучения в сочетании с 5% чистотеловой мазью для лечения

инфицированных, воспалившихся ран ускоряет образование грануляции

тканей на 6,3 сутки, кроме того вызывает коррекцию гематологических

показателей на 5 сутки, а у контрольной группы на 10 сутки после начала

лечения.

По данным Д.В. Машенцевой, Д.Н. Бестаева (2012), Т.З. Сидориной,

А.В. Фарниевой (2012), Д.В. Машенцевой, Т.З. Сидориной (2013) применение

комплексной терапии (квантовое излучение и левомиколь), ускоряет

выздоровление собак с гнойно-воспалительными процессами мягких тканей и

суставов у опытной группы на 4 суток, по сравнению с контролем

(традиционный метод лечения).

Применение новокаино-пунктурной блокады и магнитно-инфракрасно-

лазерной акупунктуры путем воздействия на БАТ способствует повышению

общей неспецифической резистентности организма у животных. При этом

отмечается ускорение заживления гнойного абсцесса (Н.С. Персаева, 2015).

По данным Я.Ю. Чарикиди, А. А. Бугулова (2004) применение 3%

28

чистотелового настоя и 10% чистотеловой мази на фоне короткой

новокаиновой вызывает нормализацию картины крови, ускоряет образование

грануляционной ткани и заживления гнойно-воспалительного процесса у

телят через 10 суток лечения, тогда как у контрольной группы через 14 суток

лечения.

С.Г. Гадзаонов, Ф.Н. Чеходариди, М.С. Гугкаева установили, что

применение 10%-ой чистотеловой мази на фоне физиотерапии ведет к

сокращению сроков образования грануляционной ткани у опытных собак и

составляет 14 суток, тогда как у собак контрольной группы образование

грануляционной ткани произошло 18 сутки лечения.

Искусственная аэрация с применением озонирования физиологического

раствора хлорида натрия и 5% мази из спиртового раствора хлорофиллипта

способствует быстрому заживлению инфицированных ран у животных (Ф.Н.

Чеходариди, Ч.Р. Персаев, 2004).

Применение 30% - ного чистотелового настоя и 10% - ной чистотеловой

мази на фоне короткой новокаиновой блокады, ускоряет нормализацию

картины крови, а также образование грануляционной ткани. Полное

выздоровление у телят опытной группы наступило через 10 суток лечения, у

контрольных через 14 суток (Ф.Н. Чеходариди, А.А. Бугулова, 2008).

По данным М.Ш. Шакурова, Р.А. Устинова (2001, 2002) комплексная

озонотерапия ускоряет заживление экспериментальных гнойно-гнилостных

флегмон у собак и крупного рогатого скота.

Применение раневых покрытий дальцекс-серебро, дальцекс-трипсин и

дальтекс-трипсин-серебро обладают достаточным для перевязочного

материала физико-химическими свойствами, они нетоксичны и могут быть

использованы в лечении гнойной раны у собак (Т.Б. Бициев, Т.Т. Бициев,

2007).

Применение анолита нейтрального (АНК) для лечения ран у собак

вызывает повышение естественной резистентности организма (гематология,

клеточный и гуморальный иммунитет) (Т.Т. Бициев, Т.Б. Бициев, 2012).

29

По данным А.В.Короткова, Ч.Р. Персаева, Ф.Н. Чеходариди (2012)

установлено, что применение квантового излучения в сочетании с

медикаментозным лечением (1% спиртовой раствор хлорофилипта)

способствует ускорению очищения гнойного артрита, нормализует

клинический статус, гематологические, биохимические показатели и

повышает неспецифическую резистентность у собак.

Применение вытяжки «Кордицепс-золотой» на фоне квантовой терапии

при абцессах и флгмонах у собак приводит к полному клиническому

выздоровлению собак первой опытной группы на 16 сутки лечения, второй

опытной на 18 сутки, контрольной на 26 сутки (Н.С. Персаева).

Магнитно-инфракрасно-лазерное излучение в сочетании с препаратом

«Кордицепс-золотой» при лечении ран брюшной стенки и тканей живота у

собак приводит к сокращению сроков заживления ран. Корреция

иммунобиологической активности наблюдается на 14-е сутки лечения, по

сравнению с контролем (Ф.Н. Чеходариди, Н.С. Персаева, М.С. Гугкаева,

2015).

Комплексная терапия (квантовое излучение в сочетании с линиментом

Вишневского) способствует быстрому заживлению ран у собак опытной

группы на 13,2 сутки, тогда как у контрольных собак – на 18 сутки лечения

(Т.З. Сидорина, 2014).

Применение новакаино-пунктурной блокады в сочетании с

магнитно-инфракрасно-лазерным воздействием лазера на биологически

активные точки вызывает коррекцию неспецифической резистентности

организма животных. При этом наблюдается нормализация

гематологических, биохимических показателей и стимуляцию клеточного и

гуморального иммунитета у собак, в результате чего происходит заживление

гнойного абсцесса (Н.С. Персаева, 2015).

Применение настойки софоры японской на фоне квантового излучения

аппаратом «Витязь» способствует ускорению очищения гнойного синовита,

заживлению колотой раны у коров, нормализации клинического статуса на 5

30

сутки, тогда как у контрольной группы (настойка софоры японской) - на 10-15

сутки лечения (Д.В. Машенцева, Т.З. Сидорина, 2013; К.Ю. Апосталиди, А.А.

Валиев, 2013).

Комплексная терапия (квантовая энергия в сочетании с мазью

левомеколь) ускоряет заживление гнойных воспалительных процессов у собак

на 4 суток раньше, чем у контрольной группы (традиционный метод лечения

тетрациклиновой мазью) (Д.В. Машенцева, Д.Н. Бестаев, 2012).

М.К. Павлова, К.А. Душкина (2011) установили, что применение 10%

нафталанской мази на фоне новокаиновой терапии ускоряет заживление раны

у собак в среднем на 5 суток, по сравнению с контрольной группой.

Применение 10% чистотеловой мази с применением вибрационной

терапии с инфракрасным излучением при лечении случайных

инфицированных ран у собак и крупного рогатого скота ускоряет заживление

их (Р.Т. Джикаева, Ф.Н. Чеходариди, 2010).

Применение химического активированного анолита нейтрального

(АНК) ускоряет заживление гнойных воспалительных процессов у собак

(абсцесс и флегмона) на 3 суток раньше, чем у контрольной группы (раствор

фурацилина) (З.Э. Дзандарова, З.С. Бизикова, Ф.Н. Чеходариди, 2010).

По данным В.Н. Байматова, Э.К. Абатурова (2010), применение

биостимуляторов эраконда и керакола и приготовленных на основе клеток

ускоряет процесс эпителизации раневого дефекта кожи и слизистой оболочки

ротовой полости у кроликов.

Использование препаратов солодки уральской и бархата амурского на

гелевой основе с метилцеллюлозой способствует значительному ускорению

заживления ран у свиней (П.С. Зориков, И.П. Короткова, 2009).

Применение тканевых препаратов АСД-3 и БСМ (Биостимулятор из

мозговой ткани) оказывает стимулирующее действие на гемаологические,

биохимические показатели крови и сокращает срок выздоровления у собак.

Применение нейтрального анолита (АНК) ускоряет нормализацию

иммунологических показателей (ФАН, БАСК и ЛАСК) у собак на 10 сутки

31

лечения, в сравнении с контролем (общепринятые методы лечения).

По данным С.Ю. Кощевой, А.В. Ореховой, В.И. Панцуркина, И.В.

Алексеевой (2010) применение мази «Апилкам» при лечении ран у собак не

проявляет побочных эффектов и обладая комплексным действием, подходит

для применения во всех фазах раневого процесса.

По данным Н.Г. Ильинцкого и Р.В. Пидборской (2011) применение

озонотерапии способствует очищению гнойных ран и ускоряет репаративные

процессы, сокращает срок лечения в среднем на 2,6 сутки. Озонотерапия

собак с гнойными ранами сопровождается уменьшением интенсивности

воспалительной реакции, положительно влияет на морфологические

показатели крови и антиоксидантную защиту организма.

А.В. Сапожников (2004), А.В. Сапожников, В.А. Ермалаев (2005, 2006,

2007) установили, что применение фотофереза 10% метилурацилиновой мази

со светодиодным излучением красного диапазона способствует выраженной

грануляции ран и равномерно проходило у животных второй опытной группы

(фотоферез 10%, метилурацилиновая мазь и светодиодное излучение).

Начиная с пятых суток, эпителизация ран происходила у животных первой и

второй опытных групп на одиннадцатые сутки, а у контрольной группы (10%

метилурацилиновая мазь) на 15 сутки лечения, у второй опытной группы

ускоряет нормализацию морфологических показателей крови.

По данным С.Т. Гынку (2007) установлено, что применение

изотонического раствора натрия хлорида (0,9%), обработанного КВЧ на фоне

новокаиновой блокады проявляет антибактериальную активность по

отношению к культурам St.aureus и E.coli, что ведет к нормализации

клинического статуса, гематологических, биохимических и

иммунологических показателей в крови раненых собак. Сроки лечения

сокращаются на 4 суток, по сравнению с контрольной группой.

Применение 0,9% раствора хлорида, обработанного ЭМИ КВЧ, на фоне

новокаиновой блокады звездчатого узла при лечении инфицированных ран у

животных сокращает фазу воспаления, активизирует регенеративно-

32

восстановительные процессы и значительно ускоряет клиническое

выздоровление раненных животных, по сравнению с контрольной группой.

По данным И.Ф. Водянова, В.И. Веканова, А.А. Стекоьникова, Г.А.

Послова (2010) установлено, что при применении повязки «САРЭЛ»

заживление ран происходит в среднем на 5-6 дней быстрее, чем во второй

группе (хлорид натрия - 2,5г, соды пищевой - 2,5 г, фурациллина - 0,025г,

спирт этиловый 96% - 30 мл, воды дистиллированной - до 200 мл). При этом

выздоровление наступает у первой группы - на 28 сутки, у второй группы - на

32 сутки.

Следовательно, использование повязки «САРЭЛ» для закрытия

раневого дефекта при лечении инфицированных кожно-мышечных ран у

собак оказывает более выраженный терапевтический эффект по сравнению с

традиционными схемами лечения.

Н.К. Вайтенок, В.М. Зильберг, В.В. Лобанов, Ю.С. Довгалев (1981)

установили, что облучение монохроматическим красным светом лазера

низкой интенсивности не действует на раневую микрофлору (in vitro).

Применение лазера в комплексе с другими общепринятыми методами лечения

ускоряет эпителизацию поверхностных гнойных ран и трофических язв.

Ускоряет процессы в биологических тканях с высоким уровнем

биохимических и ферментативных реакций, как всего организма, так и

непосредственно в зоне ран и язв (И.Ф. Гамалея, 1972; В.М. Инюшин, П.Р.

Чекуров, 1975; В.В. Щур, Н.С. Макеева, А.А. Аренберг, М.В. Гольц, Ю.А.

Никаноров, 1972).

По данным М.Е. Зельцера Д.Л. Коритного, М.М. Комашко (1967)

установлено, что заживление раневой поверхности под влиянием MRC

геликеонового лазера с мощностью излучения до 20 мвт приводит к

образованию более эластичного рубца и ускоряет заживление ран у собак

(В.М. Инюшин , 1965; М.Ф. Камаев, 1970; Д.Л. Корнтный 1967, 1969; Л.Я.

Мазо, 1967; П.Р.Чекуров, В.М. Июшин, Н.Н. Мардиросян, Н.Н. Шуйский,

1970; Т.М. Шакирова, З.В. Бурнашева, 1970).

33

В.М. Инюшин и соавторы провели ряд эксперементальных

исследований и установили стимулирующее, нормализирующее и

противовоспалительное влияние излучений гелий-неонового лазера в

импульсном и непрерывном режиме. Указывает стимулирующее действие на

эритропоэз (Т.Ф. Инюшина, В.М. Инюшин), заживление кожных ран (В.В.

Шур и соавт.) и ожоговых поверхностей (Г.Х. Махмудова), регенерацию

пересеченного нерва (А.Р. Раххишев и В.П. Цой), костную регенерацию при

переломах трубчатых костей (П.П. Чекуров, У.Я. Богданович и соавт.,

Н.В.Горпинко с соавт.), фагоцитоз (Д.Л. Корытный и Л.Я. Зазулевская) и

другие функции.

Лазер, как стимулятор, максимум стимулирующего действия

отмечается с 3-го по 10-17-й день. После чего происходит закономерный спад

реакции со стороны организма, подвергаются лучевому воздействию (В.М.

Инюшин).

Облучение может быть общим или местным - на очаг поражения, на

рефлексогенные зоны или на так называемые точки акупунктуры (Т.Ф.

Инюшина, Б.З. Шуйская, В.А. Хрущев и Н.А. Воробьев). Длительность

облучения колеблется от 20-30 с до 30 мин., количество сеансов облучения -

от 10 до 30 на курс лечения.

2.3. Характеристика и свойства «Кордицепс-золотой»

«Кордицепс-золотой» (Cordycepssinensis) представляет собой

биологически активный препарат и только в высокогорных районах (на

высоте 3500 метров над уровнем моря) в провинциях Сычуань, Юньнань,

Цинхай и Тибет. Зимой Кордицепс в виде кокона обитает в земле, с приходом

летних дней спора дочерней кисты выходит из-под земли, после чего

поселяется на личинке бабочки и существует на ней как паразит. Пораженная

личинка бабочки зарывается в землю. Зимой личинка Кордицепс

34

превращается в бактерию, разрушая личинку изнутри не разрушая ее

оболочки. Личинка Кордицепс устойчива к воздействию внешних факторов,

питается корневищами высокогорных растений, а так же может выдержать

длительное голодание, холод и недостаток кислорода в течение двух лет

своего развития. Тело грибка Кордицепс богато питательными веществми и

биологическими компонентами, что свойственно высокогорным растениям.

Химический состав. Кордицепс содержит около 7% кордицепсовой

кислоты (С7Н12О6), около 25% белков, около 8,4% жиров. Кроме этого, в его

состав входят значительное количество аминокислот, полипептидов,

D-маннитол, маннитол галактоманнан более 20 микроэлементов и витаминов,

убихинон (коэнзим Q10), офиокордин и др.

Современная медицина доказала, что кордицепс стимулирует

активность и размножение Т-лимфоцитов, естественных киллеров и клеток

системы мононуклеаров-макрофагов, а также стимулирует секрецию

лимфоцитарных факторов, при этом активность естественных киллеров

увеличивается в 1,5 раза; процент фагоцитоза мононуклеарными макрофагами

увеличивается на 73%, фагоцитарное число увеличивается на 130%,

активность кислой фосфатазы увеличивается на 78%.

Применение экстракта кордицепса позволяет организму с

повреждением 40% лейкоцитов в течение 7 дней восстановить их нормальное

количество, и, таким образом, он является отличным средством,

повышающим количество белых кровяных клеток.

Кордицепс обладает выраженным стимулирующим действием на

кроветворную систему организма, в том числе он стимулирует размножение

клеток эритроцитарного и тромбоцитарного ряда кроветворения. Под

воздействием кордицепса становятся более многочисленными различные

клеточные органеллы, активизируются процессы обмена и синтеза веществ.

Кордицепс оказывает защищающее действие на макрофаги, повышает

их активность, защищает от повреждений лимфоциты, усиливают клеточный

иммунитет, улучшает функции печени, повышает кроветворную функцию,

35

стимулирует обмен веществ.

Механизм действия «Кордицепс-золотой» кроме вышеперечисленных

свойств, этот тканевый препарат содержит значительное количество

заминимых и незаминимых аминокислот, полипептидов и более 20

микроэлементов и витаминов, которые при местном применении для лечения

гнойно-воспалительных процессов и ран оболадает ранозаживляющим

действием. Все эти компоненты вызывают нейтрализацию гистамина и

гистаминоподобных веществ с последующим устранением проницаемости

клеточной мембраны и стенок кровеносных сосудов больных животных с

последующим улучшением трофики тканей в патологическом очаге.

Заключение по обзору литературы

Воспалительные процессы и открытые механические повреждения

мягких тканей встречаются у животных довольно часто. Наиболее

распространенными среди травм являются воспалительные процессы и раны у


Основными причинами возникновения гнойно-воспалительных

процессов, ран мягких тканей является нарушение зоогигиенических норм и

требований к условиям содержания, эксплуатации животных, правил

кормления, агрессивный контакт животных друг с другом, неисправность

кормушек, имеющих торчащие металлические предметы.

Существующие способы и методы лечения этих заболеваний не всегда

являются высокоэффективными. С этой целью необходимо применять

комплексную терапию, которая заключается в применении методов

физической, химической и биологической антисептики, различные

высокоэффективные линименты, мази и тканевые препараты,

ранозаживляющие повязки на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного

излучения.

36

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ РЕЗУЛЬТАТЫ

3.1. Методология и методы исследований

Экспериментальные исследования и научно-производственные опыты

проводили в 2014-2017 годах на базе ветеринарной клиники,

экспериментально-научной фермы Горского ГАУ, СК «Радуга», а также в

станции по борьбе с болезнями животных г. Владикавказ.

Для постановки опытов проводили мониторинг распространения

хирургической патологии, у собак в г. Владикавказ и крупного рогатого скота

по данным учетной документации ветеринарного управления РСО-Алания,

станции по борьбе с болезнями животных (г. Владикавказ) и ветеринарной

клинике Горского ГАУ.

Научные исследования проводили в двух сериях.

В первой серии опытов проводили 5 опытов.

В первом опыте проводили мониторинг хирургической патологии у

собак и крупного рогатого скота за три года (2014-2016 гг).

Во втором опыте проводили изучение антимикробного действия

«Кордицепс-золотой» на некоторые штаммы патегенных микробов (in vitro).

В третьем опыте проводили изучение влияния «Кордицепс-золотой» на

фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения при абсцессах у собак. За

12 месяцев 2014 г. нами было принято на лечение 18 беспородных собак в

возрасте от 1 года до 3 лет с гнойными абсцессами.

Для этого сформировано три подопытные группы (контрольная группа и

две опытные) по 6 собак в группе.

Собак контрольной группы лечили следующим образом: после

проведения туалета, общего обезболевания 2%-ым роствором рометара,

проводили вскрытие абсцесса, промывание 3%-ым раствором прекиси

водорода с 10 % раствором хлорида натрия, после чего рану высушивали

стерильными ватно-марлевыми тампонами и в полость вводили мазь

левомиколь.

37

Собакам первой опытной группы проводили такое же лечение, но в

полость абсцесса вводили «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения.

Собакам второй опытной группы в полость абсцесса вводили

«Кордицепс-золотой», но уже без магнитно-инфракрасно-лазерного

излучения.

Курс лечения проводили ежедневно до полного выздоровления собак

подопытных групп.

Режим воздействия аппаратом «Витязь» (магнитно – инфракрасно –

лазерное излучение) при абсцессе составляет 3 минуты.

Для подавления патологической микрофлоры при гнойном абсцессе

внутримышечно инъецировали цефотаксим в дозе 500 тыс. ЕД два раза в день

в течение 6 дней.

За процессом заживления гнойного абсцесса вели наблюдение утром и

вечером.

В четвертом опыте изучали влияние комплексной терапии при

флегмонах у собак. Нами были приняты на лечение беспородные собаки в

возрасте от 1 года до 3 лет собаки с флегмонами в области левого и правого

бедра. Всего в опыте было использовано 18 собак (контрольная группа и две

опытные группы) по 6 собак в каждой.

Собакам контрольной группы проводили туалет в области

патологического очага, затем после общего и местного обезболивания

проводили хирургическое вскрытие флегмоны. Полость промывали 3%

раствором перекиси водорода с 10% раствором хлорида натрия и высушивали

ее стерильными ватно-марлевыми тампонами, после чего вставляли дренаж с

этой смесью. Дренаж удаляли на следующий день и в полость вводили мазь

левомиколь в фазе гидротации и дегидротации до полного образования

грануляционной ткани и эпидермизации.

Собакам первой опытной группы проводили такое же лечение, только в

полость флегмоны вводили «Кордицепс-золотой» на фоне

38

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения в фазе гидратации и

дегидратации. Квантовое излучение проводили 2 раза в день до полного

выздоровления.

Собакам второй опытной группы проводили такое же лечение, но в

полость флегмоны вводили «Кордицепс-золотой» без

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения. Всем подопытным животным

внутримышечно инъецировали цефотаксим в дозе 500 тыс. ЕД два раза в день

в течение 6 дней.

В пятом опыте изучали влияние комплексной терапии при абсцессах у

телят. Для этого было сформированы одна контрольная и две опытные

группы, по 6 телят до года черно-пестрой породы в каждой группе.

Телятам контрольной группы проводили туалет, местное обезболивание

0,5 %-ым раствором новокаина и вскрытие абсцесса, вскрытую полость

промывали 3 %-ым раствором перекиси водорода с 10 %-ым раствором

хлорида натрия и высушивали стерильными ватно-марлевыми тампонами,

после чего в полость вводили мазь левомиколь.

Телятам первой опытной группы проводили такое же лечение, только в

полость абсцесса вводили «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения аппаратом «Витязь» 2 раза в

день в течение 3 минут до полного выздоровления.

Телятам второй опытной группы проводили такое же лечение, что и в

первой опытной группе, но уже без магнитно-инфракрасно-лазерного

излучения.

Телятам всех подопытных групп внутримышечно инъецировали

цефотаксим в дозе 500 тыс. ЕД два раза в день в течение 6 дней.

Во второй серии проводили 3 опыта.

В первом опыте мы изучали эффективность применения комплексной

терапии случайных инфицированных ран у собак. Для этого было

сформировано три подопытные группы (контрольная группа и две опытные)

по 6 беспородных собак в каждой в возрасте от 1 года до 3 лет.

39

Собакам контрольной группы после проведения туалета, обшего и

местного обезболивания, хирургического удаления некротизированных

тканей, рану промывали 3%-ным раствором перекиси водорода с 10%-ным

раствором хлорида натрия и высушивали ее стерильными ватно-марлевыми

тампонами, после чего на рану наносили мазь левомиколь и фиксировали

повязкой (традиционный метод лечения).

Собакам первой опытной группы применяли такую же хирургическую

обработку, что и в контрольной группе, но с применением

«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-лазерного излучения аппаратом

«Витязь» 2 раза в день, при экспозиции 3 минуты в фазе гидратации и

дегидратации до полного выздоровления.

Собакам второй опытной группы применяли такое же лечение, что и в


излучения.

Животным всех подопытных групп с целью профилактики действия

патогенных микроорганизмов внутримышечно инъецировали цефотаксим в

дозе 500 тыс. ЕД два раза в день в течение 6 дней.

Во втором опыте изучали комплексную терапию случайных

инфицированных ран у телят. Для этого было сформировано 3 подопытные

группы телят (контрольная и две опытные) черно-пестрой породы до года, по

6 телят в каждой группе.

Телятам контрольной группы после проведения туалета, общего и




тампонами, после чего на рану наносили мазь левомиколь и фиксировали

повязкой (традиционный метод лечения).

Телятам первой опытной группы применяли такую же хирургическую

обработку с наложением на рану «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-лазерного излучения аппаратом «Витязь» 2 раза в день при

40

экспозиции 3 минуты в фазе гидратации и дегидратации до полного

выздоровления.

Телятам второй опытной группы применяли такое же лечение, что и в


излучения.

Телятам всех подопытных групп внутримышечно инъецировали


В третьем опыте изучали комплексную терапию случайных

инфицированных ран у овец. Нами были сформированы три подопытные

группы (контрольная и две опытные) романовской породы, в возрасте от 1

года до 3 лет по 6 голов в каждой группе.

Животным контрольной и двум опытным группам проводили туалет

вокруг раны, короткую новокаиновую блокаду 0,5% раствором новокаина в

дозе 10-20 мл, хирургическое удаление некротизированных тканей. Рану

промывали 0,5% раствором вероцида и 3% раствором перекиси водорода,

высушивали ее стерильными ватно-марлевыми тампонами. Всем подопытным

группам внутримышечно инъецировали цефотаксим в дозе 500 тыс. ЕД два

раза в день в течение 6 дней.

Овец контрольной группы лечили путем нанесения на рану мази

левомиколь (традиционный метод) в фазе гидротации и дегидротации до

полного выздоровления.

Овцам первой опытной группы после хирургической обработки на рану

наносили «Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного

излучения 2 раза в день, при экспозиции 3 минуты в фазе гидротации и

дегидротации до полного выздоровления.

Овцам второй опытной группы после хирургической обработки на рану

наносили «Кордицепс-золотой» в фазе гидротации и дегидротации до полного

выздоровления, но уже без магнитно-инфракрасно-лазерного излучения.

Животным проводили термометрию, подсчитывали изменение частоты

пульса и дыхания. Измеряли раневые дефекты до лечения и конца лечения

41

(планиметрические исследования). Динамику уменьшения площади

оценивали в процентах по формуле:

V = 100 × (S0 - S1 Vs),

где: S0 – начальная площадь раны;

S1 - ее площадь на дни исследования.

На основании полученных значений V, вычислили индекс скорости

заживления раны (I), который отражает поэтапное изменение площади раны в

процентах, по сравнению с предыдущим сроком наблюдения (Васильева Л.С.,

2009).

Измерения площади раны проводили по методике Л.Н. Поповой (1942).

С помощью целлофанограммы и подсчитывали площадь раны.

Измерения проводили до лечения и на 1, 3, 5, 10, 15 сутки после начала

лечения. Вычисляли процент, уменьшенной площади раневой поверхности за

сутки по отношению к предыдущему результату по формуле:

(𝑆 − 𝑆𝑛) × 100

𝑆 × 𝑡 ,

где: S – величина площади раны при предыдущем измерении (см2);

Sn - величина площади раны при данном измерении (см2);

t– число дней между измерениями

При нормальном течении заживления суточное уменьшение площади

составляет 4%. Индекс скорости заживления рассчитывали по формуле:

Iv = V1 – V2 ,

где: V1 – процент уменьшения площади раны от исходного размера в

наблюдаемый срок;

V2 – площадь уменьшения раны от исходного размера в

предыдущий срок наблюдения (Васильева Л.С., 2009).

Изучали антимикробное действие «Кордицепс-золотой» на некоторые

штаммы патогенной микрофлоры, для этого использовали метод диффузии

42

препарата с бумажного диска на мясо-пептонном агаре (МПА).

Проводили гематологические, биохимические, иммунологические,

исследования крови у собак, крупного рогатого скота и овец подопытных

групп.

Изучали содержание гемоглобина, количество эритроцитов,

лейкоцитов, лейкограмму, среднюю емкость эритроцитов и др.

автоматическим гематологическим анализатором РСЕ 90 VET NOTE.

Биохимические исследования проводили на содержание общего белка

сыворотки крови рефраксометрическим методом с помощью

ререфрактометра типа РЛ-2 (И.М. Беликов, 1975) и белковых фракций

нефелометрическим методом (И.А. Калашник, 1987).

Лизоцимную активность сыворотки крови определяли

нефелометрическим методом, описанным В.Г. Дорофейчиком в 1968 году. Он

основан на избирательной лизирующей активности лизоцима в отношении

чувствительной индикаторной культуры Micrococcus lisodeicticus, об

активности лизоцима судили по степени просветления индикаторной

культуры микрококка по сравнению с контролем, установленной с помощью

фотоэлектроколориметром КФК-2. Активность бета-лизина определяли по

методу О.В. Бухарна, В.А. Фролова, А.П. Лиды (1972). Применение этого

метода заключается в изменении оптической плотности среды в результате

способности сыворотки крови лизировать тест культуру Bac. Sultilis в

растворе сахарозы. Активность бета-лидазы выражали в процентах лизиса.

Бактериальную активность сыворотки крови (БАСК) определяли по методу

О.В. Смирновой и Т.А. Кузьминой (1966). Метод основан на измерении

оптической плотности мясо-пептонного бульона при росте в нем E. coli с

добавлением и без добавления исследуемой сыворотки. Выражали в

процентах лизиса.

Содержание иммуноглобулинов в сыворотке крови определяли

цинк-сульфатными тестами (И.П. Кондрахин с соавт., 1985).

Расчет экономической эффективности проводили по методикам

43

принятым в ветеринарии (И.Н. Никитин, 2014). Цифровой материал

подвергался статистической обработке на компьютерной программе

«Statistica 6».

Таблица 1. Объем и характер исследований

Опыт Группа

животных

Количест

во

животны

х

Вид

животн

ого

Диагноз Метод лечения животных

1 2 3 4 5 6

Первая серия опытов

1

опыт

Мониторинг распространения хирургической патологии у собак за три года

(2014-2016 гг) г. Владикавказ

Мониторинг хирургической патологии у крупного рогатого скота за три года

(2014-2016) по РСО-Алания

2

опыт

Изучение антимикробного действия «Кордицепс-золотой» на некоторые штаммы

патогенных микробов (in vitro)

3

опыт

Контрольная 6 Собаки Абсцесс Хирургическая обработка и

мазь Левомиколь

I Опытная 6 Собаки Абсцесс

Хирургическая обработка с

применением


магнитно-инфракрасно-лазерно

го излучения

II Опытная 6 Собак Абсцесс



«Кордицепс-золотой»

4

опыт

Контрольная 6 Собаки Флегмона Хирургическая обработка и


I Опытная 6 Собаки Флегмона






II Опытная 6 Собаки Флегмона




5

опыт

Контрольная 6

Телята Абсцессы Хирургическая обработка и


I Опытная 6

Телята Абсцессы Хирургическая обработка с





II Опытная 6

Телята Абсцессы Хирургическая обработка с



44

Опыт Группа

животных

Количест

во

животны

х

Вид

животн

ого

Диагноз Метод лечения животных

1 2 3 4 5 6

Вторая серия опытов

1

опыт

Контрольная 6 Собаки Раны Хирургическая обработка и


I Опытная 6 Собаки Раны






II Опытная 6 Собаки Раны




2

опыт

Контрольная 6 Телята Раны Хирургическая обработка и


I Опытная 6 Телята Раны






II Опытная 6 Телята Раны




3

опыт

Контрольная 6 Овцы Раны Хирургическая обработка и


I Опытная 6 Овцы Раны






II Опытная 6 Овцы Раны




45

3.2. Мониторинг распространения хирургической патологии у

животных за три года (2014-2016 гг)

3.2.1. Мониторинг распространения хирургической патологии у собак за

три года (2014-2016 гг) г. Владикавказ

В 2014 году после проведения мониторинга хирургической патологии

выявлено 145 собак (100%), из них гнойно-воспалительные процессы – 58

собак (40,0%), открытые механические повреждения (раны) – 57 собак

(39,3%), другие хирургические патологии – 30 собак (20,7%).

В 2015 году – хирургическая патология – 193 собаки (100%), из них

гнойно-воспалительные процессы – 73 собаки (37,8%), открытые

механические повреждения (раны) – 78 собак (40,4%), другие хирургические

патологии – 42 собаки (21,8%).

В 2016 году – хирургическая патология – 217 собак (100%), из них

гнойно-воспалительные процессы – 93 собаки (42,9%), открытые

механические повреждения (раны) – 82 собаки (37,8%), другие хирургические

патологии – 42 собаки (19,3%).

Рисунок 1. Мониторинг распространения хирургической патологии у собак в

2014 г.

40,0%

39,30%

20,7 %

гнойно-воспалительные процессы

открытые механические повреждения

новообразованиядр. хирургическая патология

46


2015г.


2016г.

3.2.2. Мониторинг хирургической патологии у крупного рогатого скота

за три года (2014-2016 гг) по РСО-Алания

За 2014 год в сельскохозяйственных предприятиях всех форм

собственности республики комплексной диспансеризации подвергнуто 9758

голов крупного рогатого скота, при этом выявлено животных с хирургической

37.,8 %

40,4 %

21,8%



новообразования

43%

37,80%

19,30%




др. хирургическая патология


47

патологией – 328 голов, в том числе с гнойно-воспалительными процессами

109 головы (33,2 %), открытыми механическими повреждениями – 116 голов

(35,4%), другими хирургическими патологиями – 103 головы (31,4%).

По всем секторам за 2015 год заболело всего крупного рогатого скота

8774 головы, при этом выявлено животных с хирургической патологией – 303

головы, в том числе с гнойно-воспалительными процессами 102 головы (33,6

%), открытыми механическими повреждениями – 107 голов (35,3%), другими

хирургическими патологиями – 94 головы (31,1%).

По всем секторам за 2016 год заболело крупного рогатого скота 7395

голов, при этом выявлено животных с хирургической патологией – 287

головы, в том числе с гнойно-воспалительными процессами 94 головы

(32,8%), открытыми механическими повреждениями – 102 головы (35,5%),

другими хирургическими патологиями – 91 головы (31,7 %).

Следовательно, животных с хирургической патологией выявлено в 2014

году – 3,36%, 2015 году – 3,45%, 2016 году – 3,88%.

Основными причинами возникновения хирургической патологией

являются недостаточный уход, содержание и кормление.

Рисунок 4. Мониторинг распространения хирургической патологии у

крупного рогатого скота в 2014 г.

33,20%

35,40%

31,40%гнойно-воспалительные процессы


новообразованиядр. хирургическая патология

48





3.3. Изучение антимикробного действия «Кордицепс-золотой» на

некоторые штаммы патогенных микробов (in vitro)

Для определения антимикробной активности «Кордицепс-золотой»

использовали метод диффузии препарата с бумажного диска на

мясо-пептонном агаре (МПА). Концентрация контрольных штаммов бактерий

33,60%

35,30%

31,10%




32,80%

35,50%

31,70%гнойно-воспалительные процессы





49

– 1 млрд КОЭ по стандарту мутности ГКИ. В качестве контрольных были

взяты штаммы Staphylococcus aureus АТСС (F-49), Streptococcus epidermidis A,

Escherichia coli ATCCC 25922 (F-50), Proteus vulgaris. Результаты

исследований учитывали измерением зоны задержки роста на мясопептонном

агаре, определением оптической плотности микробной взвеси и подсчетом

колоний бактерий на мясопептонном агаре.

Таблица 2. Антимикробная активность «Кордицепс-золотой» в различных

водных концентрациях

Вид возбудителя Зона подавления роста, мм

Staphylococcus aureus 24

Streptococcus epidermidis 23

Escherichia coli 24

Proteus vulgaris 20

Из результатов проведенных исследований (табл. 3) видно, что

«Кордицепс-золотой» является эффективным антимикробным средством в

отношении Staphylococcus aureus АТСС (F-49), Streptococcus epidermidis A,

Escherichia coli ATCCC 25922 (F-50), Proteus vulgaris.

Зона роста составила – 24 мм, 23 мм, 24 мм, 20 мм соответственно (Рис

7.).

Рисунок 7. Зона стерильности при 100% концентрации «Кордицепс-золотой»

(Staph.aureus)

50


(Str.epidermidis)


(E.coli)

51


(Pr.vulgaris)

Из рисунков видно, что «Кордицепс-золотой» обладает выраженным

антимикробным действием по отношению к возбудителям хирургической

инфекции: стрептококков (Streptococcus), стафилококков (Staphylococcus),

кишечной палочки (Escherichia coli), протея (Proteus vulgaris).

Изучение контактного бактерицидного действия «Кордицепс-золотой»

показало достаточно выраженное его антимикробное действие в течение 1, 3,

6, 12 и 24 часов с последующим высевом указанных смесей препарата с

микробной культурой, приводил к полному подавлению роста изучаемых

микроорганизмов.

Бактериальные исследования полевого штамма не проводились,

поэтому не было установлено антимикробное действие «Кордицепс-золотой».

3.4. Применение комплексной терапии при абсцессе у собак

Научные исследования проводили на собаках с абсцессами в возрасте от

1 года до 3 лет. В опыте было использовано 18 беспородных собак, которых

52

разделили на 3 подопытные группы (контрольная и две опытные), по 6 собак в

каждой. Клинические признаки у собак подопытных групп до начала лечения

проявлялись угнетением общего состояния организма, повышением

температуры тела до 40 о, учащением пульса до 120 уд/мин и дыхания до 28

дых. дв/мин. На 10 сутки после начала лечения температура тела, частота

пульса и дыхания нормализовались у опытной группы: температура тела на

4%, частота пульса на 5,3%, дыхательные движения 1,8%, по сравнению с

контрольной группой животных (Таблица 3).

По результатам научных исследований более выраженные изменения в

сторону нормализации общего состояния произошли уже на 5 сутки у собак

первой опытной группы, тогда как контрольных собак на 10 сутки лечения.

Наблюдали восстановление аппетита, уменьшение воспалительного оттека,

незначительная болезненность при пальпации. Выздоровление у собак первой

опытной группы наступило на 16 сутки лечения, второй опытной группы – 18

сутки, тогда как у контрольной группы на 21 сутки лечения.

В таблице 4 приведены исследования гематологических показателей

крови подопытных групп собак.

55

Таблица 3. Динамика клинических показателей у собак подопытных групп при гнойно-воспалительном процессе,

(n=6; M±m)

Показатели Сроки исследования (сут.) Норма

До лечения 1 3 5 10 Контрольная группа

Температура, оС 40,0±1,00 39,8± 1,14 39,5±0,88 39,2±0,96 39,0±0,84 37,5-39,0

Пульс, уд/мин 120,0±3,16 118,0±4,00 116,0±2,00 114,0±2,16 112,0±2,44 70-120

Дыхание, дв/мин 30,0±1,12 30,0±1,44 29,0±0,84 26,5±0,46 21,2±0,66 14-20

I Опытная группа

Температура, оС 40,5±1,28 40,0±1,38 39,5±0,88* 39,0±0,66* 38,0±0,42** 37,5-39,0

Пульс, уд/мин 122,0±4,00 120,0±3,12 114,0±3,24* 110,0±2,18* 106,0±2,14** 70-120

Дыхание, дв/мин 30,0±1,34 28,5±0,98 26,0±0,64 22,2±0,32* 18,4±0,48** 14-20

II опытная группа

Температура, оС 40,2±1,06 40,0±0,8 39,5±1,02 39,1±0,80* 38,2±0,80* 37,5-39,0

Пульс, уд/мин 122,0±3,60 120,8±3,00 116,0±1,24 112,0±2,00* 108,4±1,06* 70-120

Дыхание, дв/мин 30,0±1,08 29,0±0,68 27,6±0,52 24,2±0,45* 18,8±0,23* 14-20

Примечание: *р≤0,05

** ≤ 0,001

56

Таблица 4. Гематологические показатели собак подопытных групп,

(n=6; M±m)

Сроки исследования (сут.) Гемоглобин, г/л Эритроциты, 1012/л Лейкоциты, 109/л СОЭ, мм/ч

Норма 120-180 5,2-8,5 6,0-17,0 0-13

Контрольная группа

До лечения 98,9±2,12 5,1±0,92 19,1±0,64 14,8±0,09

1 100,0±2,12 5,1±0,26 19,0±0,56 14,5±0,04

3 104,2±4,00 5,4±0,94 17,8±0,42 13,2±0,09

5 110,2±0,64 5,8±0,48* 17,0±0,36 12,6±0,04

10 121,0±3,00 6,0±0,46* 14,5±0,28 7,4±0,02


До лечения 98,8±2,14 5,1±0,84 19,0±0,72 14,7±0,06

1 101,4±3,12 5,1±0,24 18,9±0,62 14,2±0,02

3 116,8±3,20 5,9±0,24* 17,0±0,62* 12,6±0,04*

5 128,4±2,84* 6,3±0,12* 14,2±0,38** 9,4±0,08**

10 138,0±2,18* 7,4±0,16** 10,4±0,16** 4,3±0,05**

II Опытная группа

До лечения 98,8±2,00 5,1±0,92 19,0±0,48 14,8±0,05

1 101,0,0±1,12 5,1±0,30 18,9±0,51 14,3±0,04

3 113,8±2,10 5,6±0,28 17,6±0,40 12,8±0,03

5 120,2±2,00* 6,1±0,10* 15,0±0,25** 9,8±0,05**

10 134,0±1,28** 7,0±0,12* 11,3±0,44** 5,0±0,06**


** ≤ 0,001

Анализ таблицы 4 показывает, что применение «Кордицепс-золотой» на

фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения ускоряет нормализацию

гематологических показателей у собак опытных групп, однако более

выраженные показатели наблюдались у собак первой опытной группы, где

уже на 5 сутки содержание гемоглобина повысилось и составило 128,4±2,84

г/л, у собак второй опытной группы 120,2±2,00 г/л, против контрольной

группы 110,2±0,64 г/л; количество эритроцитов у первой опытной группы до

6,3±0,12×1012/л, второй опытной группы 6,1±0,10×1012/л, против

5,8±0,48×1012/л; число лейкоцитов снизилось у первой опытной группы до

14,2±0,38×109/л, второй оытной группы 15,0±0,25×109/л, против собак

контрольной группы 17,0±0,36×109/л; СОЭ снизилась у собак опытной группы

до 9,4±0,08 мм/ч, второй опытной группы ,8±0,05 мм/ч,против контроля –

12,6±0,04 мм/ч.

Следовательно, более выраженные изменения в отношении

гематологических показателей крови в сторону нормализации наблюдались у

собак первой опытной группы по сравнению со второй опытной группой и

контролем.

Установлено, что применение «Кордицепс-золотой» ускоряет

нормализацию процентного отношения лейкоцитов у собак второй опытной

группы на 40,5%, но более выраженное понижение лейкоцитов наблюдалось у

собак первой опытной группы на - 45,2% (применение «Кордицепс-золотой»

на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения), тогда как собак

контрольной группы – 24,0 %.

Биохимические показатели у собак подопытных групп приведены в

таблице 5.

58

Таблица 5. Биохимические показатели крови собак подопытных групп

(n=6; M±m)

Сроки

исследования

(сут.)

Общий белок,

г/л

Альбумины,

%

α-глобулины,

%

β-глобулины,

%

γ-глобулины,

%

Норма 54-78 42-54 10-19 8-10 15-19


До лечения 86,8±2,33 54,2±1,11 19,3±0,86 7,2±0,83 19,3±0,17

1 86,4±2,07 54,1±1,13 19,3±0,78 7,3±0,80 19,3±0,71

3 82,2±2,28 54,0±1,10 19,1±0,87 7,6±0,37 19,3±0,47

5 78,2±4,10 53,9±2,10 19,1±0,78 8,0±0,48 19,0±0,84

10 73,1±3,20** 53,9±2,48* 19,0±0,71* 8,3±0,26* 18,8±0,86


До лечения 86,7±2,05 54,2±0,76 19,4±0,18 7,3±0,79 19,1±0,28

1 86,1±2,07 54,1±088 19,4±0,09 7,4±0,86 19,1±0,19

3 81,4±2,28 53,7±0,79 19,2±0,90 8,1±0,40 19,0±0,40

5 74,5±2,40* 53,5±1,12* 19,0±0,56* 8,7±0,30* 18,8±0,50*

10 63,8±3,41** 53,1±1,07* 18,9±0,89* 9,5±0,42** 18,5±0,29*


До лечения 86,7±2,46 54,2±0,96 19,4±0,31 7,3±0,60 19,2±0,10

1 86,3±2,12 54,2±0,83 19,4±0,16 7,3±0,78 19,2±0,16

3 82,8±2,04 53,8±0,79 19,2±0,40 7,9±0,51 19,1±0,37**

5 76,7±3,02* 53,7±1,00* 19,1±0,35* 8,3±0,53* 18,9±0,42*

10 68,1±2,50* 53,3±1,07* 18,9±0,89* 9,2±0,42** 18,6±0,54*


** ≤ 0,001

Из таблицы 5 видно, что у собак первой опытной группы содержание

общего белка на 10 сутки после начала лечения снизилось с 86,7±2,05 г/л до

63,8±3,41 г/л; второй опытной группы с 86,7±2,46 г/л до 68,1±2,50 г/л, тогда

как у собак контрольной группы - с 86,8±2,33 г/л до 73,1±3,20 г/л; процент

альбуминов у собак первой опытной группы с 54,2±0,76 % до 53,1±1,07 %,

второй опытной группы с 54,2±0,96 % до 53,3±1,07 %; тогда как у

контрольных собак с 54,2±1,11 % до 53,9±2,48 %, также отмечали повышение

β-глобулинов у собак первой опытной группы с 7,3±0,79 % до 9,5±0,42 %,

второй опытной группы с 7,3±0,60 % до 9,2±0,42 %, у собак контрольной

группы с 7,2±0,83 % до 8,3±0,26%; и понижение γ-глобулинов у собак первой

опытной группы с 19,1±0,28% до 18,5±0,29 %, у собак второй опытной группы

с 19,2±0,10 % до 18,6±0,54 %, по сравнению с контролем с 19,3±0,17% до

18,8±0,86 %.

59

Таким образом, применение комплексной терапии

(«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения)

вызывает нормализациюклинического статуса, гематологических и

биохимических показателей в крови у собак первой опытной группы по

сранению с контролем.

3.5. Применение комплексной терапии при флегмонах у собак

Оценку лечебной эффективности применения комплексной терапии


при флегмонах у собак проводили в сравнении с общепринятыми методами

лечения. Для этого были отобраны беспородные собаки в возрасте от 1 года до

3 лет с флегмонами в проксимальном отделе конечностей.

В наших опытах флегмона у собак перешла во вторичную стадию, где

вокруг флегмоны при пальпации наблюдали плотную припухлость,

выраженный воспалительный отек. Клинические признаки у собак

подопытных групп протекали тяжело. Общее состояние у них было

угнетенное, температура тела повышены на 1-2 оС (40-41 оС), частота пульса

до 120 уд /мин, дыхание учащено до 32 дых. дв /мин. Местная температура

была повышена, при пальпации наблюдали беспокойство животных и

болезненность.

Флегмона протекала стадийно в двух фазах, гидратации, которая

протекала в трех стадиях, в первой фазе гидратации: воспалительного отека,

клеточной инфильтрации и фагоцитоза и абсцедирования; во второй фазе

дегидротации: созревание абсцесса, самоочищение и улучшение общего

стояния и грануляции, эпидермизация и рубцевание.

Динамика клинического статуса подопытных собак приведена в

таблице 6.

60

Таблица 6. Динамика клинического статуса у подопытных групп собак,

(n=6; M±m)

Показатели До лечения Сроки лечения (сут.)

1 3 5 10 Норма


Температура 40,2±1,14 40,0±1,0 39,8±1,0 39,6±0,8 39,4±1,1 37,5-39,0

Пульс 130,0±3,18 130,5±2,0* 118,0±1,0* 108,0±2,0 108,0±2,0 70-120

Дыхание 26,0±2,34 26,6±0,48 29,0± 1,40 28,7±1,80 22,2±1,5 14-20

I опытная группа

Температура 40,0±1,18 40,1±1,20 38,8±1,60 38,3±1,1 38,0±1,0 37,5-39,0

Пульс 130,0±2,00 130,0±1,6* 106,0±1,4** 102,0±1,8 102,0±1,6* 70-120

Дыхание 27,5±1,00 31,2±1,4 20,0±1,6** 19,8±2,0* 17,0±1,8* 14-20


Температура 40,2±0,96 40,1±0,90* 39,0±1,0* 39,0±0,8* 38,6±0,6* 37,5-39,0

Пульс 131,5±2,0 132,0±2,0* 110,0±1,8* 106,0±1,9 105±1,6 70-120

Дыхание 26,5± 1,00 32,0±1,0 21,6±0,8* 21,0±1,0** 18,8±0,8 14-20


** ≤ 0,001

Из таблицы видно, что у подопытных собак до начала лечения

наблюдалось повышение температуры тела, пульса, дыхания. На 3 сутки

лечения эти показатели достигли физиологической величины у собак первой и

второй опытных групп, тогда как у собак контрольной группы наблюдали

повышение их на 5 сутки лечения и только на 10 сутки лечения достигли

нормы.

Установлено, что более выраженные изменения в сторону

благоприятного течения воспалительных процессов выявлено у собак первой

опытной группы, по сравнению с животными второй опытной и контрольной

групп.

На 10 сутки у собак опытных групп было отмечено улучшение общего

состояния, нормализация аппетита, температуры тела, частоты пульса и

дыхания. В контрольной группе аналогичные изменения наблюдались на 12

сутки.

Полное клиническое выздоровление у собак первой опытной группы

произошло на 21 сутки; второй опытной – на 25 сутки, тогда как у

61

контрольной группы на 29 сутки после начала лечения.

Таким образом, применение «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения сокращает сроки заживления

флегмоны у собак первой опытной группы на 5 суток, второй опытной на 3

суток по сравнению с контрольной группой собак.

Анализ таблицы 7 показывает, что у собак контрольной группы

содержание гемоглобина было увеличено незначительно, начиная с 5 суток и

до конца исследования, количество лейкоцитов до конца исследования (10

суток) не достигло физиологической нормы.

Таблица 7. Динамика гематологических показателей у собак подопытных

групп (n=6; M±m)

Сроки исследования

(сут.) Гемоглобин, г/л Эритроциты, 1012/л Лейкоциты, 109/л

Норма 120-180 5,2-8,5 6,0-17,0


До лечения 78,2±0,89 5,1±0,51 19,3±0,59 1 78,8±2,12 5,0±0,38 19,3±0,90 3 80,0±1,78 5,1±0,29 18,7±0,38 5 85,2±3,09 5,5±0,71 16,4±0,42 10 88,4±2,37 5,9±0,76 12,0±0,31


До лечения 80,5±1,88 5,1±0,28 19,2±0,79 1 78,5±2,10 5,0±0,20 19,2±0,48 3 90,5±2,01* 5,8±0,07 17,8±0,27* 5 95,6±3,11** 6,3±0,18* 12,2±0,08** 10 110,2±1,08** 7,0±0,13* 8,0±0,13**

II Опытная группа До лечения 82,6±2,11 5,0±0,39 19,3±0,79

1 82,2± 1,05* 5,0±0,18 19,2±0,87 3 88,0±0,47* 5,2±0,08 18,1±0,40* 5 92,6±0,76* 6,0±0,07 13,5±0,21* 10 105,6±3,07* 6,6±0,11* 10,0±0,21*


** ≤ 0,001

У собак первой и второй опытных групп содержание гемоглобина

увеличилось с 80,5±1,88 г/л до 110,2±1,08 г/л и с 82,6±2,11 г/л до 105,6 г/л.

Количество лейкоцитов снизилось с 19,2±0,79 ×109/л до 8,0±0,13 ×109/л и с

62

19,3±0,79 ×109/л до 10,0±0,21 ×109/л.

Следовательно, применение «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения при флегмонах у собак ускоряет

нормализацию гематологических показателей у опытных групп собак.

Наиболее быстрая нормализация данных показателей наблюдалась у собак

первой опытной группы, по сранению с собаками второй опытной и

контрольной групп.

Биохимические исследования крови показывают, что у собак опытных

групп содержание общего белка пришло в норму на 5-10 сутки: у первой

опытной группы составило 76,1±1,01 г/л, второй опытной группы 76,8±1,23

г/л, при р≤0,05. Процентное отношение альбуминов при этом составило у

первой опытной группы 53,7±1,07 %, второй опытной группы 53,8±1,21%,

против 54,3±1,48 % у контрольной группы.

Таблица 8. Динамика биохимических показателей у собак подопытных групп,

(n=6; M±m)

Сроки


(сут.)

Общий белок,

г/л

Альбумины,

%

α-глобулины,

%

β-глобулины,

%

γ-глобулины,

%

Норма 54-78 42-54 10-19 8-10 15-19


До лечения 83,0±1,20 55,0±0,68 19,0±0,94 6,9±0,33 19,1±0,87

1 83,0±1,04 55,0±0,98 19,0±0,98 6,9±0,20 19,1±0,81

3 82,1±1,28 54,9±1,30 18,9±0,97 7,2±0,58 19,0±0,87

5 80,1±2,06 54,5±1,10 19,0±1,08 7,7±0,39 18,8±0,84

10 77,6±2,01* 54,2±1,48* 18,9±1,16* 8,0±0,36* 18,9±0,89


До лечения 83,2±0,80 54,9±0,76 19,1±0,18 7,0±0,79 19,0±0,78

1 83,1±1,03 54,8±088 19,0±0,09 7,1±0,86 19,1±0,99

3 81,2±0,98 54,2±0,79 18,8±0,90 8,1±0,40** 18,9±0,90*

5 78,0±1,06* 54,0±1,12* 18,6±0,56** 8,7±0,30** 18,7±0,60*

10 76,1±1,01* 53,7±1,07* 18,6±0,89** 9,0±0,42** 18,7±0,69*


До лечения 83,1±1,05 54,7±0,76 19,2±0,38 7,1±0,79 19,0±0,28

1 83,0±1,10 54,6±088 19,3±0,39 7,2±0,86 18,9±0,59

3 81,8±1,12 54,2±0,79 19,0±0,91 7,9±0,40 18,9±0,80

5 79,6±1,04 53,9±1,12* 18,9±0,55* 8,4±0,30* 18,8±0,60*

10 76,8±1,23* 53,8±1,21* 18,8±0,89* 8,8±0,42* 18,6±0,54*

Примечание: *р≤0,05; ** р ≤ 0,001

Количество β-глобулинов у первой опытной группы

63

(«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракраснолазерного излучения)

увеличилось и находилось в пределах нормы уже на 3 сутки после начала

лечения и на 10 сутки составило 9,0±0,42 %, у второй опытной группы

8,8±0,42 %, против контроля 8,0±0,36 %.

Количество γ-глобулинов пришло в норму у собак первой и второй

опытных групп на 3 сутки и на 10 сутки составило: у первой опытной группы

18,7±0,69 %, у второй опутной группы 18,6±0,54 % против контроля 18,9±0,89

%, разница по сравнению с контрольной группой является достоверной при

р≤0,05.

Иммунологические показатели у подопытных групп собак приведены в

таблице 9.

Таблица 9. Динамика клеточного и гуморального иммунитета сыворотки

крови у подопытных групп собак, (n=6; M±m)


1 3 5 10


БАСК 41,5±3,22 42,0±2,18 42,5±1,00 47,6±3,00 48,8±2,12

ЛАСК 4,85±0,64 5,28±0,26 5,4±0,82 6,82±0,94 7,5±0,82

ФАН 21,0±0,14 21,4±0,62 22,0±0,16 22,5±0,12 23,0±1,00

ФИ 1,38±0,06 1,42±0,04 1,5±0,06 1,6±0,04 l,8±0,02

ФЧ 2,62±0,06 2,14±0,08 2,24±0,02 2,6±0,08 2,8±0,05


БАСК 41,8±4,00 42,8± 1,82 43,5±1,12* 46,6±3,18** 52,4±2,82**

ЛАСК 5,00±0,46* 5,24±0,64 6,0±0,82* 7,5±0,64** 8,0±0,68**

ФАН 20,8±0,68 22,5±1,00 23,0±l,5* 25,0±1,64** 25,4±1,82**

ФИ 1,8±0,05 1,50±0,08 1,68±0,09* 1,88±0,04** 2,00±0,06*

ФЧ 2,0±0,04 2,4±0,06 2,56±0,64 3,0±0,12** 3,7±0,44*


БАСК 42,0±2,12 42,5±1,84 43,0±1,22* 44,8±2,00* 48,5±3,00*

ЛАСК 5,12±0,56 5,85±0,44 5,5±0,28 6,8±0,92 7,8±0,94

ФАН 21,5±0,27 21,8±0,78 22,6±1,46* 24,6±0,87* 25,0±0,78*

ФИ 1,40±0,12 1,55±0,12 1,60±0,12* 1,76±0,12* l,85±0,12*

ФЧ 2,10±0,16 2,30±0,02 2,4±0,04 2,8±0,06* 3,2±0,12*


** ≤ 0,001

Анализ таблицы 9 показывает, что у собак подопытных групп до

лечения БАСК, ЛАСК, ФАН, ФИ, ФЧ были низкими.

64

У собак первой опытной группы уже на 3 сутки после начала лечения

БАСК, ЛАСК, ФАН, ФИ и ФЧ увеличились до 43,5± 1,12%; 6,0±0,82; 23,0±

1,5; 1,68±0,09 и 2,56±0,64 %, против контрольной группы 42,5±1,00%;

5,4±0,82%; 22,0±0,16%; 1,5±0,06% и 2,24±0,02 % соответственно. Эти

показатели были повышены до конца исследования.

У животных второй опытной группы имелась тенденция к повышению

этих показателей, однако более выраженное повышение БАСК, ЛАСК, ФАН,

ФИ и ФЧ наблюдались у собак первой опытной группы (на 7,8%, 6,6%, 10,4%,

11,0 % соответственно).

Следовательно, применение «Кордицепс-золотой» в сочетании

магнитно-инфракрасно-лазерным излучением ускоряет нормализацию

клеточного и гуморального иммунитета у собак первой опытной группы по

сравнению с контролем.

Показатели изменения иммуноглобулинов в сыворотки крови у собак

подопытных групп приведены в таблице 10.

Таблица 10. Динамика иммуноглобулинов в сыворотки крови у подопытных

групп собак, (n=6; M±m)


3 5 10 норма


IgG, мг/л 6,3±0,12 6,5±0,34 7,0±0,82 9,2±0,64 10-20

IgM, мг/л 2,5±0,14 2,8±0,28 3,2±0,09 3,8±0,44 5-10

IgA, мг/л 8,0±0,26 8,5±0,16 9,0±0,18 9,2±0,18 10-15


IgG, мг/л 6,4±0,18 8,5±0,12* 9,4±0,64** 12,8±0,92** 10-20

IgM, мг/л 2,5±0,06 3,4±0,04* 4,8±0,02** 6,5±0,16** 5-10

IgA, мг/л 5,4±0,09 6,8±0,12* 8,2±0,18** 10,8±1,00** 10-15


IgG, мг/л 6,3±0,12 7,6±0,18* 8,8±0,24* 10,5±0,28** 10-20

IgM, мг/л 2,4±0,08 3,0±0,09 4,2±0,18* 5,6±0,24** 5-10

IgA, мг/л 5,2±0,04 5,8±0,14* 7,6±0,28* 10,0±0,94** 10-15


** ≤ 0,001

Анализ таблицы показывает, что до начала лечения у собак всех

65

подопытных групп содержание иммуноглобулинов было низким. Начиная с 3

суток и до конца исследования у собак первой и второй опытных групп

содержание IgG повысилось: у первой опытной группы на 6,4%, у второй

опытной группы - 3,6%, тогда как у контрольной группы - 2,5%; IgM - на 5,8 и

6,6%; IgA - 8,5% и 7,6% соответственно по сравнению с контролем.

Следовательно, применение комплексной терапии


при лечении флегмоны у собак вызывает нормализацию

иммунобиологической реактивности у собак первой опытной группы по

сравнению со второй опытной группой и контролем.

3.6. Применение комплексной терапии при абсцессе у телят

Научные исследования проводили в ветеринарной клинике Горского

ГАУ и СК «Радуга» РСО-Алания. Экспериментальные исследования

проводили на телятах с гнойными абсцессами. Для лечения из подопытных

телят было сформировано три группы (контрольная и две опытные) по 6 голов

в каждой.

Телят контрольной группы лечили следующим образом: после

проведения туалета, общей и местной анестезии, проводили хирургическое

вмешательство с целью удаления гнойного экссудата и некротизированных

тканей. Вскрытую полость промывали антисептическими растворами (3%

раствор перекиси водорода с 10% раствором хлорида натрия) и ставили

марлевый дренаж с этой смесью. Дренаж удаляли на следующий день и в

полость вводили левомиколь.

Телятам опытных групп проводили такое же лечение, только в первой

опытной группе в полость абсцесса вводили «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно лазерного излучения аппаратом «Витязь» 2 раза в день

до выздоровления. Телятам второй опытной группы вводили

66

«Кордицепс-золотой», но уже без магнитно-инфракрасно лазерного

излучения.

Всем подопытным телятам внутримышечно инъецировали цефотаксим

по 500 тыс. ЕД 2 раза в день в течение 6 суток.

Оценку лечебной эффективности применения «Кордицепс-золотой» на

фоне магнитно-инфракрасно лазерного излучения при абсцессах у телят

проводили в сравнении с общепринятыми методами терапии.

Изучением клинического статуса у телят подопытных групп было

установлено угнетение общего состояния, повышение температуры тела до 40

- 41°С, учащение пульса и дыхательных движений, местная температура была

повышена, при пальпации наблюдали беспокойство животного и

болезненность.

Клинический абсцесс протекал стадийно, первая фаза (гидратации)

протекала в 3 стадии: воспалительного отека, клеточной инфильтрации и

фагоцитоза, абсцедирования. Вторая фаза (дегидратации) также протекала в 3

стадии: созревание абсцесса, самоочищение и улучшение общего состояния и

грануляция, эпителизация и рубцевание.

Клиническими исследованиями установлено, что температура тела,

частота пульса и дыхательных движений у телят подопытных групп до начала

лечения были повышены по сравнению фоном. На 3 сутки после начала

лечения у телят опытных групп эти показатели снизились до физиологической

величины, тогда как у телят контрольной группы они проявлялись до 5 суток и

только на 10 сутки после начала лечения они пришли в норму.

Установлено, что более выраженные изменения в сторону

благоприятного течения воспалительных процессов наблюдалось у телят

первой опытной группы («Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения) по сравнению с контролем

(традиционный метод лечения).

Полное клиническое выздоровление произошло у телятпервой опытной

группы на 15 сутки, второй опытной группы – на 17 сутки контрольной – на 22

67

сутки после начала лечения.


магнитно-инфракрасно лазерного излучения ускоряет заживление

гнойно-воспалительных процессов у животных первой опытной группы на 7

суток, по сравнению с телятами контрольной группы.

Гематологическими исследованиями установлено, что у телят первой

опытной группы с первых суток и до конца исследования содержание

гемоглобина повышалось с 3,96% до 8,10%, количество лейкоцитов и СОЭ

снизилось с 9,8% до 3%. Гемотокритное число снизилось с 1,36% до 2,81%.

Биохимическими исследованиями сыворотки крови установлено, что

содержание общего белка у первой опытной группы животных начиная с

первых суток и до конца исследований повышалось с 2,6% до 6,0%,

альбуминов - с 2,3% до 13,0%, альфа-, бета- и гамма глобулинов - с 1,2%, 2,8%

до 0,3% соответственно, по сравнению с контрольной группой, содержание

церулоплазмина снизилось у телят опытной группы до конца исследования на

1,4% по сравнению с контрольной группой.

Иммунологическими исследованиями установлено, что у телят

подопытных групп до лечения БАСК, ЛАСК, ФИ, ФЧ были низкими. У

опытной группы телят уже на 3 сутки после начала лечения эти показатели

увеличились до 43,5%, 6,0%, 23,0%, 1,68% и 2,56% по сравнению с

контрольной группой – 42,5%, 5,4%, 22,0%, 1,5% и 2,24%. Показатели БАСК,

ЛАСК, ФИ, ФЧ были повышены у телят опытной группы до конца

исследования.

Следовательно, лечение абсцессов Кордицепсом-золотым на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения ускоряет нормализацию

гематологических, биохимических и иммунологических показателей у телят

первой опытной группы.

68

3.7. Применение комплексной терапии при случайных

инфицированных ранах у собак

Открытые механические повреждения у собак возникли в результате

травматических повреждений. Раны были локализованы в области плеча и

бедра.

Изучение ранозаживляющего действия препарата «Кордицепс-золотой»

на фоне магнитно-лазерного излучения проводили на 18 беспородных собаках

в возрасте от 1 года до 3 лет с инфицированными ранами. Для этого было

сформировано три подопытные группы (контрольная и две опытные) по 6

собак в каждой.

Собакам контрольной группы после проведения туалета, обшего и




тампонами, после чего на рану наносили мазь левомиколь в фазе гидратации и

фиксировали повязкой (традиционный метод лечения).

Собакам первой опытной группы применяли такую же хирургическую

обработку, что и в контрольной группе, но с применением в фазе гидратации и

дегидратации «Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-лазерного излучения

аппаратом «Витязь» 2 раза в день при экспозиции 3 минуты в фазе гидратации

и дегидратации до полного выздоровления.

Собакам второй опытной группы применяли такое же лечение, что и в


излучения.

Животным всех подопытных групп внутримышечно инъецировали


Динамика заживления ран у собак привидены на рисунках.

Наши исследования показали, что процесс регенерации проходил у

собак по-разному. Установлено, что уже на 5 день после начала лечения раны

69

динамика заживления проявлялась ярче в опытных группах на фоне с

контролем.

Клиническими исследованиями установлено, что у всех собак отмечали

угнетение общего состояния, общую реакцию на раневую травму, повышение

температуры тела, учащение пульса и дыхания, понижение аппетита. Раны

были отечными, болезненными, неровными с нишами и карманами, развитием

секвестрального отторжения фибринозно-тканевой массы, наличием гнойного

экссудата.

На третьи сутки наложения на рану салфетки с «Кордицепс-золотой» в

сочетании с магнитно-инфракрасно-лазерного излучения наблюдали

умеренный отек тканей у животных опытной группы (Рисунок 11), тогда как у

контрольной эти показатели проявились на пятые сутки после начала лечения

(Рисунок 12). При этом болезненность и местная температура еще

сохранялись.

Рисунок 11. Опытная группа на 3 сутки после начала лечения

На поверхности раны – рыхлый фибринозно-лейкоцитарный слой с уменьшенным

содержанием клеток. Под ним – грануляционная ткань, состоящая из многочисленных

капилляров и фибробластов. Сохраняются островки жировой ткани

Окраска гематоксилином и эозином, увеличение ×200.

70

Рисунок 12. Контрольная группа на 5 сутки после начала лечения

А – толстый слой лейкоцитарно-фибринозного экссудата

Б – рыхлый слой фибрина с умеренным количеством нейтрофилов и макрофагов

В – узкий слой незрелой грануляционной ткани и признаками нарушения

микроциркуляции

Г – жировая клетчатка с умеренной воспалительной инфильтрацией


У собак первой опытной группы, начиная с 5 суток после начала

лечения ран, отмечали постепенное исчезновение воспалительного отека

(Рисунок 13). Тогда как у контрольных животных на 7 сутки после начала

лечения раневая поверхность была покрыта лейкоцитарно-фиброзным

экссудатом, под которым находилась грануляционная ткань с выраженной

воспалительной инфильтрацией (Рисунок 14).

71


Созревающая грануляционная ткань, содержащая вертикальные капиллярные петли,

многочисленные фибробласты, формирующие горизонтальные пласты. Сосуды

полнокровны.



Раневая поверхность покрыта лейкоцитарно-фибринозным экссудатом, под ним –

грануляционная ткань с выраженной воспалительной инфильтрацией


На 12 сутки заканчивался процесс очищения раны от

некротизированных тканей, и начиналось формирование грануляционного

72

барьера (Рисунок 15). Тогда как у собак контрольной группы наблюдалась

незрелая грануляционная ткань рыхлой консистенции (Рисунок 16).


Тонкий фибринозно-лейкоцитарный слой на раневой поверхности. Под ним – зрелая

фиброзирующая ткань. Воспалительная инфильтрация минимальна.



Незрелая грануляционная ткань имеет рыхлый характер, инфильтрирована лимфоцитами и

73

макрофагами. Часть сосудов начинает приобретать вертикальную ориентацию. В ткани

относительно мало фибробластов.


Полное заживление ран у собак первой опытной группы произошло на

15 сутки (Рисунок 17). У второй опытной группы процесс очищения раны от

некротизированных тканей и формирование грануляционного барьера

произошло на 18 сутки, тогда как у контрольной группы полное клиническое

выздоровление – на 22 сутки после начала лечения (Рисунок 18).


Эпителизация раневого дефекта.


74


На краю раневого дефекта отмечается резкая гиперплазия эпидермиса и рост

регенерирующего эпителия на фиброзирующуюся грануляционную ткань


Гистологические исследования показали, что применение


для лечения инфицированных ран у собак ускоряет очищение раны от

мертвого субстрата и образование грануляции, эпителизации и рубцевания.

Планиметрические показатели ран у собак подопытных групп измеряли

с рисунков-контуров и измеряли в сантиметрах, после чего подсчитывали по

формуле Л.Н. Поповой.

В наших эксперементах во всех группах на третьи сутки наблюдали

незначительное уменьшение площади раневой поверхности по отношению к

первым суткам лечения, на 5 сутки площадь раны уменьшилась, самый

высокий результат был у собак первой опытной группы.

У контрольной группы собак площадь раны составляла – 24,18 см2

(6,2×3,9 см), на 3 сутки – 22,2 см2 (6,0 × 3,7 см), на 5 сутки лечения – 17,1 см2

(5,7 × 3,0 см), на 10 сутки лечения – 9,24 см2 (4,4 см × 2,1см), на 15 сутки – 5,61

75

см2 (3,3 × 1,7 см), на 20 сутки длина – 2,42 см2 (2,2 ×1,1 см). На 22 сутки после

начала лечения наблюдали заживлениие раны с образованием

грануляционной ткани и рубциванием.

У собак второй опытной группы до лечения площадь раны составляла –

21,24 см2 (5,9 × 3,6 см), на 3 сутки – 19,72 см2 (5,8 × 3,4 см), на 5 сутки – 14,5

см2 (5,0 с 2,9 см), на 10 сутки – 7,41 см2 (3,9 ×1,9 см), на 15 сутки – 2,6 см2 (2,0

×1,3 см), на 18 сутки после начала лечения наблюдали грануляцию,

эпидермизацию и рубцивание патологического очага.

У собак первой опытной группы до лечения площадь раны составляла –

23,52 см2 (5,6 × 4,2 см), на 3 сутки – 22,0 см2 (5,5 × 4,0 см), на 5 сутки – 15,12

см2 (4,2 с 3,6 см), на 10 сутки – 5,22 см2 (2,9 ×1,8 см), на 15 сутки – 1,53 см2 (1,7

×0,9 см), на 16 сутки после начала лечения наблюдали грануляцию,

эпидермизацию и рубцивание патологического очага.

Индекс Поповой на третьи сутки у собак всех опытных групп был

отрицательным. Затем, на 5 сутки наблюдается скочкообразный рост

процентного показателя у собак первой опытной группы и состаивило 7,1 %, у

собак второй опытной группы 6,3 %, тогда как у собак контрольной группы

этот показатель составлял 5,7 %. На 5 сутки после начала лечения у собак

первой опытной группы общее состояние было хорошим, аппетит

восстановился, гнойный экссудат отсутствовал, рана сухая.

У собак контрольной группы процент уменьшения площади раны на 10

сутки лечения составил 6,1 %, второй опытной группы – 6,5 %, первой

опытной группы – 7,7 %. У собак опытной группы, по краям раны появилась

молодая грануляционная ткань.

На 15 сутки лечения собак процент уменьшения площади раны составил

в контрольной группе – 5,1 %, второй опытной группы – 5,8 %, первой

опытной группы – 6,3 %. На 15 сутки лечения рана у собак первой и второй

опытной группы покрылась молодой грануляционной тканью, тогда как у

собак контрольной группы эти симптомы начали появляться на 19 сутки после

начала лечения.

76

Полное клиническое выздоровление с появлением грануляции и

эпидермизации наступило у первой опытной группы на 15 сутки, второй

опытной группы на 18 сутки, тогда как у контрольной группы на 22 сутки

после начала лечения.

Собака контрольной группы

Рисунок 19. Рана в области бедра до лечения

(зияние раны, воспалительный отек, гнойный экссудат)

Рисунок 20. Состояние раны на 10 сутки после начала лечения

(зияние раны, воспалительный отек, гнойный экссудат отсутствует)

77


(рана сухая)


(образование грануляционной ткани)


(эпителизация и рубцевание раны)

78

Собака первой оытной группы

Рисунок 24. Состояние раны до лечения



(выделение экссудата отсутствует, рана сухая)

79


(образование молодой грануляционной ткани)



80


(эпителизация и рубцевание раны)

Собака второй оытной группы



81




(гнойный экссудат отсутствует, рана сухая)



82


(образование грануляционной ткани с эпителизацией)


магнитно-инфракрасно-лазерного излучения приводит к коротким срокам

заживления случайных инфицированных ран у овец. У собак первой опытной

группы заживление произошло на 7 суток раньше по сравнению с контролем,

а во второй опытной группе на 4 суток.

Таблица 11. Гематологические показатели у собак подопытных групп,

(n=6; M±m)

Сроки


(сут)

Гемоглобин, г/л Эритроциты, 10 |2/л Лейкоциты, 109/л СОЭ, мм/час

Норма 120-180 5,2-8,5 6,0-17,0 0-13


До лечения 93,4±3,12 4,3±0,30 18,3±1,10 5,4±0,32

На 3 день 110,2±4,26 5,2±0,86 17,5±0,96 5,1±0,64

На 10 день 115,4±4,34 5,4±0,45 11,0±0,32 4,1±0,62


До лечения 93,6±4,10 5,2±0,62 18,2±1,60 5,6±0,64

На 3 день 125,0±5,10** 6,0±0,82* 16,8±0,44* 4,2±0,12*

На 10 день 130,0±4,62** 6,2±0,48** 9,2±0,46** 3,0±0,38**


До лечения 93,3±2,70 5,0±0,32 18,4±1,34 5,6±0,64

На 3 день 117,0±3,30* 5,5 ±0,73* 17,0±0,654* 4,2±0,12

На 10 день 124,0±3,72* 5,9±0,27* 10,0±0,46* 3,0±0,38*


** ≤ 0,001

83

Гематологическими исследованими (таблица 11) установлено,

достоверное ускорение СОЭ, снижение уровня гемоглобина и эритроцитов,

увеличение количества лейкоцитов и ускорение скорости оседания

эритроцитов в крови. Исследование крови собак опытной группы (лечение

«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лезерного излучения)

на 5 – х сутках лечения наблюдалась тенденция к нормализации этих

показателей. На 10 сутках лечения гемоглобин у первой опытной группы

нормализовался и составлял 130,0±4,62 г/л, а у контрольной группы

115,6±4,36 г/л, эритроциты составляли 6,2±0,48×1012/л. Лейкоциты снизились

у первой опытной группы от 18,2±1,60×109/л до 9,2±1,60×109/л, против

контрольых животных от 18,3±1,10×109/л до 11,0±0,32×109/л.


магнитно-инфракрксно-лезерного излучения при лечении случайных

инфицированных ран у собак первой опытной группы ведет к ускорению

нормализации гематологических показателей.

В таблице 12 приведены исследования гуморального иммунитета у

подопытных собак с инфицированными ранами. Данные исследования

показали, что у собак бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки

крови до начала лечения была понижена. Данные исследования показали, что

на 10 сутки лечения первой опытной группы, где применяли


наблюдали повышение БАСК до 50,6±2,60%, ЛАСК до 8,6±0,80%. Разница

является достоверной при *р<0,05, **р<0,001.

84

Таблица 12. Динамика гуморального иммунитета у собак подопытных групп,

(n=6; M±m)

Группа Показатели, %

БАСК ЛАСК

Норма 50,5 8,2


До лечения 40,6±2,2 4,8±0,26

На 3 день 41,2±1,64 5,8±0,80

На 10 день 46,2±2,1 6,2±0,60


До лечения 40,7±2,92 4,8±0,28

На 3 день 43,2±2,40* 7,2±0,60**

На 10 день 50,6±2,60** 8,6±0,80**


До лечения 40,5±2,46 4,9±0,25

На 3 день 42,8±2,41* 6,8±0,32*

На 10 день 50,0±2,50 7,7±0,41*


** ≤ 0,001

Динамика клеточного иммунитета собак подопытных групп приведена в

таблице 13.

Таблица 13. Динамика клеточного иммунитета собак подопытных групп,

(n=6; M±m)

Группа Показатели, %

ФАН ФИ ФЧ


До начала опыта 21,4±1,54 1,1±0,18 2,1±0,82

На 3 день после лечения 24,2±1,52 1,4±0,20 2,3±0,67



До начала опыта 21,4±1,38 1,2±0,16 2,2±0,44


На 10 день после лечения 31,5±3,00** 1,8±0,06* 3,8±0,54*


До начала опыта 21,4±1,27 1,2±0,16 2,2±0,44


На 10 день после лечения 30,2±1,72* 1,8±0,12 3,3±0,54*


** ≤ 0,001

85

У всех подопытных собак наблюдали достоверное снижение ФАН и ФИ

до опыта, но уже на 3 сутки лечения у опытной группы наблюдается

увеличение этих показателей по сравнению с контролем. Разница является

достоверной при *р<0,05, **р<0,001.

Таким образом, применяя «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения для лечения случайных

инфицированных ран у собак происходит повышение иммунобиологической

резистентности организма.

3.8. Комплексная терапия случайных инфекционных ран у телят

При проведении научных исследований нами выявлены причины,

которые вызывают случайные инфицированные раны у телят – это плохой

уход и содержание телят, большая скученность скота, удары рогами,

неисправность клеток, наличие торчащих колющих и режущих предметов на

выгульных площадках, в клетках и тд.

Локализация ран приходилась на область конечностей, крупа, шеи и

живота. Размер, величина и локализация раны влияет на функциональные

изменения организма. У подопытных телят наблюдали угнетение общего

состояния, уменьшение привесов, понижение пищевой возбудимости,

повышение температуры тела, частота пульса и дыхания в пределах нормы.

Раны у телят характеризовались наличием воспалительного отека, гиперемии,

болезненностью, данные проявления соответствуют стадии гидротации. В

этой стадии наблюдаются состудистые изменения в патологическом очаге,

наблюдается четкая деморкация пораженных тканей, после чего происходит

стадия отторжения и расплавления некротизированных тканей и накоплением

экссудата гнойно-фибринозного характера.

Планометрические показатели ран у телят подопытных групп измеряли

с рисунков-контуров и измеряли в сантиметрах.

86

У контрольной группы телят площадь раны до лечения составляла – 32,3

см2 (8,5 × 3,8 см), на 5 сутки лечения – 25,9 см2 (7,6 ×3,4 см), на 10 сутки – 13,3

см2 (6,6 ×2,1 см), на 15 сутки – 5,1 см2 (3,4 × 1,5 см), при этом наблюдали

заживлениие раны с образованием молодой грануляционной ткани.

У первой опытной группы телят до лечения площадь раны составляла в

среднем – 30 см2 (7,5 ×4 см), на 5 сутки лечения – 19,5 см2 (6,5 × 3,0 см), на 10

сутки – 5,9 см2 (3,1 ×1,9 см), на 15 сутки – 1,4 см2 (1,6 × 0,9 см), при этом

наблюдали грануляцию, эпидермизацию и рубцивание патологического очага.

У второй опытной группы собак до лечения площадь раны составляла в

среднем – 25,7 см2 (8,3 ×3,1 см), на 5 сутки лечения – 18,2 см2 (7,0 × 2,6 см), на

10 сутки – 7,0 см2 (3,7 ×1,9 см), на 15 сутки – 2,2 см2 (2,2 × 1,0 см), при этом

наблюдали грануляцию и эпидермизацию патологического очага.

Индекс Поповой на третьи сутки у телят всех опытных групп был

отрицательным (менее 4%). На 5 сутки наблюдается скочкообразный рост

процентного показателя у телят первой опытной группы, что состаивило 7 %,

тогда как у телят второй опытной группы этот показатель составлял 5,8 %,

против контроля 3,9 %.

На 10 сутки лечения у телят контрольной группы процент уменьшения

площади раны составил – 5,6 %, второй опытной группы – 7,2 %, первой

опытной группы – 8,0 %.

На 15 сутки лечения телят процент уменьшения площади раны составил

в контрольной группе – 5,6 %, во второй опытной группе – 6,0 %, в первой

опытной группе – 6,3 %.

На 3 сутки лечения испытуемым препаратом «Кордицепс-золотой» на

фоне магнитно-лазерного излучения наблюдался умеренный воспалительный

отёк тканей у животных первой опытной группы, второй опытной

(«Кордицепс-золотой» без магнитно-инфракрасно-лазерного излучения) — на

5 сутки, тогда как контрольной группы (традиционный метод лечения) — на 8

сутки после начала лечения. При проведении пальпации у животных

наблюдалось беспокойство и болезненность.

87

На 6 сутки лечения телят первой опытной группы отмечалась

нормализация аппетита, отсутствие воспалительного отека, наблюдалось

полное очищение раны. У телят второй опытной группы данные улучшения

наблюдались на 8 сутки лечения, тогда как у контрольной группы на 12 сутки

лечения.

У телят первой опытной группы наблюдалось появление молодой

грануляционной ткани на 10 сутки лечения, второй опытной группы на 14

сутки, контрольной на 16 сутки.

Цитологическими исследованиями установлено, что до лечения у

животных всех подопытных групп в мазках-отпечатках были обнаружены

нити фибрина, кокки и полуразрушенные лейкоциты. На 10 сутки в маз-

ках-отпечатках у первой опытной группы в поле зрения микроскопа были

обнаружены фибробласты и полибласты, второй опытной— на 14 сутки, в то

время как контрольной— на 16 сутки после начала лечения.

Из полости раны проводили посевы раневого содержимого на

мясопептонном агаре (МПА). Динамика заживления ран подопытных групп

животных приведена в таблице 14.

Таблица 14. Динамика заживления ран подопытных групп животных

(n=6; M±m)

Группа телят % Сроки исследования (сутки)

3 5 10 15 18 22 Контрольная

(мазь левомеколь) 100 85,4±4,3 80,2±6,4 56,0±2,8 34,6±1,5 19,2±0,96 0

Первая опытная

(«Кордицепс-золотой»

на фоне

магнитно-лазерного

излучения)

100 64,8±6,0 48,0±2,6** 32,6±2,4** 0 0 0

Вторая опытная

(«Кордицепс-золотой») 100 78,2±5,0 70,4±4,0 48,0±2,4* 22,4±1,8* 0 0

Примечание: *- отмечено с контрольной группы (р<0,05);

** - отмечено с контрольной группы (р<0,001)

Анализ таблицы 17 показывает, что у телят первой подопытной группы

заживление раны произошло на 15 сутки, второй опытной – на 18 сутки, тогда

как контрольной – на 22 сутки после начала лечения.

88

Гематологическими исследованиями установлено, что до лечения у

животных подопытных групп гематологические показатели изменялись в

зависимости от общего состояния организма от видовой реактивности, вида,

характера и места локализации раны. Так, например, до лечения наблюдалось

повышение количества лейкоцитов, скорости оседания эритроцитов (СОЭ) и

снижение концентрации гемоглобина.

На 5 сутки после начала лечения у телят первой опытной группы

концентрация гемоглобина повысилась до 105,0 г/л против 86,0 г/л. У второй

опытной группы до 99,2 г/л против 84,5 г/л, тогда как у контрольной группы

— до 88,0 г/л против 84,0 г/л (р<0,05). Число лейкоцитов у животных первой

опытной группы — до 8,8·109/л против 11,8·109/л, второй опытной группы —

9,2·109/л против 12,0·109/л, тогда как у контрольной — до 10,0·109/л против

12,5·109/л. СОЭ у животных опытных групп — 1,0 мм/ч против 1,8 мм/ч; а у

животных контрольной группы 1,4 мм/ч против 1,8 мм/ч.

На 10 сутки после начала лечения произошла нормализация

гематологических показателей у животных первой и второй опытных групп по

сравнению с контрольной группой животных.

Теленок контрольной группы


89

Рисунок 35. Состояние раны на 10 сутки лечения

(рана влажная, поверхность покрыта гнойным экссудатом)


(рана сухая, образование молодой грануляционной ткани)



90

Теленок первой опытной группы


Рисунок 39. Состояние раны на 5 сутки лечения раны

(на поверхности раны экссудат отсутствует, рана сухая)



91



Теленок второй опытной группы




(отсутствие экссудата, рана сухая)

92





Бактерицидная и лизоцимная активности сыворотки крови (БАСК и

ЛАСК) являются интегрированными выражениями противомикробных

средств гуморальных факторов естественной резистентности:

иммуноглобулинов, лизоцима, бетализина, комплемента. Они могут служить

критерием общей резистентности организма и состояния его адаптивной

системы.

Устойчивость организма к заболеваниям зависит от состояния есте-

ственной резистентности и иммунной реактивности.

Результаты гуморального иммунитета приведены в таблице 18

93

Таблица 15. Динамика гуморального иммунитета у телят подопытных групп,

(n=6; M±m)

Сроки исследования Показатели

БАСК, % ЛАСК, %

Здоровые животные 52,3±2,46 22,4±1,82


До лечения 48,4±3,02 13,4±1,82

На 3 сутки. 48,2±2,08 15,4±1,47

На 5 сутки. 46,8±1,62 14,0±1,15

На 10 сутки. 51,2±2,04 16,5±1,26

На 15 сутки. 51,8±2,20 18,4±0,95

Первая опытная группа

До лечения 48,4±3,10 14,4±1,40

На 3 сутки. 48,6±2,20* 15,6±1,20

На 5 сутки. 49,0±4,10** 18,4±2,50**

На 10 сутки. 51,8±3,12** 21,5±2,40**

На 15 сутки. 52,2±3,60** 22,6±1,52**

Вторая опытная группа

До лечения 48,6±2,04 14,0±1,30

На 3 сутки. 50,0±2,10 15,2±1,24

На 5 сутки. 52,4±2,13* 18,0±1,12*

На 10 сутки. 54,4±2,60 21,6±1,14*

На 15 сутки. 56,8±3,50* 22,8±1,13*

Примечание: *- отмечено с контрольной группы (р<0,05)

** - отмечено с контрольной группы (р<0,001)

Исследованиями гуморального иммунитета установлено, что до лечения

у телят подопытных группы БАСК и ЛАСК были низкими. На пятые сутки

после начала лечения процентное отношение БАСК и ЛАСК у телят

контрольной группы составили 46,8% и 14,0%, у первой и второй опытных

групп – 49,0%, 18,4%; и 52,4 % , 18,0% соответственно.

На 10 сутки у телят первой опытной группы эти показатели состовляли

51,8% и 21,5%, у второй опытной группы – 54,4% и 21,6%. На 15 сутки —

52,2% и 22,6%; 56,8% и 22,8% соответственно.

Следовательно, более выраженные изменения гуморального

иммунитета наблюдались у телят первой опытной группы, по сравнению со

второй опытной и контрольной группами животных.

Исследованиями клеточного иммунитета установлено, что до лечения

ФАН, ФИ, и ФЧ у телят всех подопытных групп были низкими. На пятые

94

сутки после начала лечения у телят подопытных групп эти показатели

повысились. ФАН у телят контрольной группы — на 3,0%, первой опытной

группы — на 7,0 %; второй опытной группы — на 4,0%; ФИ — на 0,6%; 8,0% и

4,0%, и ФЧ — на 0,4%, 1,0% и 0,6% соответственно.

На 15 сутки показатели ФАН повысились на 5,6%, 11,6% и 7,0%

соответственно, ФИ – на 0,8 %, 1,2% и 0,9% и ФЧ – на 0,8%, 1,4%, 1,1%

соответственно.

Следовательно, применение комплексной терапии вызывает повышение

неспецифической резистентности у телят первой опытной группы по

сравнению со второй опытной группой и контрольной группой.

3.9. Комплексная терапия случайных инфицированных,

воспалившихся ран у овец

Клиническим осмотром было установлено, что общее состояние овец

угнетенное, температура тела у животных была повышена на 0,2ºС. частота

пульса и дыхания учащенны, аппетит понижен. Рана была воспалена,

отмечали воспалительный отек в области бедра, средней трети шеи и

локтевого сустава овец. Местная температура повышена, при движении

наблюдали хромоту средней степени.

Планиметрические показатели ран у овец подопытных групп измеряли с

рисунков-контуров и измерялив сантиметрах, после чего подсчитывали по

формуле Л.Н. Поповой.

У овец контрольной группы до лечения площадь раны составляла – 29,5

см2 (8,2 × 3,6 см), на 5 сутки лечения – 23,9 см2 (7,7 × 3,1 см), на 10 сутки – 14,0

см2 (6,1 × 2,3 см), на 15 сутки – 8,6 см2 (4,8 × 1,8 см), на 20 сутки – 3,6 см2 (3,0

× 1,2 см), наблюдали заживлениие раны с образованием грануляционной

ткани и рубциванием.

У овец первой опытной группы до лечения площадь раны составляла –

26,7 см2 (8,1 × 3,3 см), на 5 сутки – 17 см2 (6,8 × 2,5 см), на 10 сутки – 8,9 см2

95

(4,9 × 1,8 см), на 15 сутки – 1,8 см2 (1,8 × 1 см), при этом наблюдалась

грануляция, эпидермизация и рубцивание раны.

У овец второй опытной группы до лечения площадь раны составляла –

30,1 см2 (7,3 × 4,2 см), на 5 сутки – 21,7 см2 (6,4 × 3,4 см), на 10 сутки – 11,2 см2

(5,1 × 2,2 см), на 15 сутки – 3,0 см2 (2,7 × 1,1 см). Грануляция, эпидермизация и

рубцивание раны наблюдалась на 17 сутки.

На 5 сутки измерение заживления раны по Поповой показал, что у овец

контрольной группы заживление происходило ниже нормы (4 %) и составлял

3,8 %, тогда как у овец первой опытной группы наблюдается скочкообразный

рост процентного показателя - 7,3 %, у собак второй опытной группы – 5,6 %.

На 10 сутки лечения у овец контрольной группы индекс уменьшения

площади раны составил 5,2 %, второй опытной группы – 6,2 %, первой

опытной группы – 6,8 %.

На 15 сутки лечения овец индекс уменьшения площади раны составил в

контрольной группе – 4,8 %, второй опытной группы – 6,0 %, первой опытной

группы – 6,2 %.

Таким образом, планиметрическими исследованиями заживления

площади раны установлено значительное уменьшение площади ран у овец

первой опытной группы, что связано с применением «Кордицепс-золотой» на

фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения.

Таблица 16. Динамика показателей заживления ран подопытных групп овец,

(n=6; M±m)

Клинические показатели,

сут

Группы животных

Контрольная

группа

Первая опытная

группа

Вторая опытная

группа

Очищение раны, 4,5±0,20 3,0±0,30 4,0±0,3

Прекращение экссудации 5,2±0,40 4,0±0,10* 5,0±0,2

Образование

грануляционной ткани. 5,6±0,52 4,6±0,34* 4,8±0,35

Появление эпителиальной

ткани 6,5±0,84 5,2±0,12* 5,0±0,18

Полное клиническое

выздоровление 20,0±0,94 15,0±1,1* 16±1,5

Примечание: p ≤0,05

96

Анализ таблицы показывает, что у овец опытной группы очищение раны

от гнойного экссудата произошло на 3 сутки после начала лечения, тогда как

контрольной группы – на 4,5 суток. Образование молодой грануляционной

ткани и эпителизации наступило у опытной группы на 4,6 суток и 5,2 суток

соответственно, тогда как у контрольной группы – на 5,6 и 6,5 суток.

Полное клиническое выздоровление у первой опытной группы

наступило на 14 сутки, у второй опытной группы на 16 стки, тогда как у

контрольной группы – 20 сутки после начала лечения.

Овца контрольной группы




((зияние раны, воспалительный отек, гнойный экссудат)

97





98

Овца опытной группы





99


(образование молодой грануляционной ткани с эпителизацией)

Таблица 17. Гематологические показатели крови у овец контрольной и

опытной группы, (n=6; M±m)

Сроки

исследования (сут)

Сроки исследования (сут)

до лечения 3 6 10 здоровые

овцы


Гемоглобин, г/л 94,0±2,72 98,3±2,0 96,1±3,03 110,3±4,50 79-119

Эритроциты, 1012/л 5,6±0,40 6,2±0,30 6,4±0,40 6,7±0,90 7,0-12,0

Лейкоциты, 109/л 9,4±0,60 9,2±0,80 8,9±0,16 8,3±0,30 6,0-14,0

СОЭ, мм/ч 2,1±0,12 1,9±0,08 1,7±0,05 1,4±0,05 0,5-1,5


Гемоглобин, г/л 94,6±3,00 101,2±3,2* 106,0±4,00* 117,0±5,1* 79-119

Эритроциты, 1012/л 5,8±0,30 6,0±0,12* 6,4±0,15* 7,1±0,30* 7,0-12,0

Лейкоциты, 109/л 9,2±0,82 8,6±0,14* 8,5±0,15 7,9±0,30* 6,0-14,0

СОЭ, мм/ч 2,1±0,10 1,5±0,04* 1,3±0,03* 0,9±0,07* 0,5-1,5


Гемоглобин, г/л 94,2±3,00 99,6±2.5* 103,1±3.56 115,3±4.3* 79-119

Эритроциты, 1012/л 5,6±0,30 6.0±0,23 6,4±0,17 6,9±0,29* 7,0-12,0

Лейкоциты, 109/л 9,4±0,82 9,0±0,17 8,7±0,15 8,1±0,30* 6,0-14,0

СОЭ, мм/ч 2,1±0,14 1,7±0,07* 1,5±0,05* 1,1±0,05* 0,5-1,5

Примечание: * р≤0,05,

Из таблицы видно, что до лечения содержание гемоглобина, количество

эритроцитов и лейкоцитов были низкими. СОЭ повышалось на 3 сутки и до

конца исследования. У овец контрольной группы содержание гемоглобина

100

повысилось от 94,0±2,72 г/л до 110,3±4,50 г/л., число лейкоцитов снизилось от

9,4±0,60 109/л до 8,3±0,30·109/л. СОЭ снизилось от 2,1±0,12 мм/час до

1,4±0,05 мм/час.

У овец первой опытной группы содержание гемоглобина повысилось от

94,6±3,00 г/л до 117,0±5,1 г/л; число лейкоцитов - от 9,2±0,82 109/л до

7,9±0,30·109/л, СОЭ – от 2,1±0,10 до 0,9±0,07 мм/час.

У овец второй опытной группы содержание гемоглобина повысилось от

94,2±3,00 г/л до 115,3±4.3 г/л; число лейкоцитов - от 9,4±0,82 109/л до

8,1±0,30·109/л, СОЭ – от 2,1±0,14 мм/час до 1,1±0,05 мм/час.


магнитно-инфракрасно-лазерного излучения ускоряет нормализацию

гематологических показателей у овец первой опытной группы, по сравнению с

контрольной группой (традиционный метод лечения).

Таблица 18. Биохимические показатели сыворотки крови овец подопытных

групп, (n=6; M±m)

Показатели

Сроки исследования (сут) Здоровые

животные До

лечения 3 5 10


Общий белок, г/л 82,2±2,30 81,6±4,10 80,5±4,11 79,6±3,12 65-75

Белковые фракции, г/л

альбумины 48,6±1,15 48,5±1,15 48,2±1,15* 47,8±1,15* 40-55

α-глобулины 17,0±1,11 16,9±1,11 16,7±1,11* 16,4±1,11* 13-20

β-глобулины 5,2±0,80 5,7±0,80 6,1±0,80* 7,0±0,80* 7-11

γ-глобулины 29,2±2,1 28,9±2,1 29,0±2,1* 28,8±2,1* 20-46


Общий белок, г/л 82,3±2,20 82,0±2,11 80,3±2,0* 79,3±4,2* 65-75


альбумины 48,7±1,15 48,2±1,15 47,9±1,15* 47,1±1,15* 40-55

α-глобулины 17,0±1,11 16,7±1,11 16,4±1,11* 16,2±1,11* 13-20

β-глобулины 5,1±0,80 6,2±0,80 7,1±0,80* 8,4±0,80* 7-11

α-глобулины 29,2±2,1 28,9±2,1 28,6±2,1* 28,3±2,1* 20-46


Общий белок, г/л 82,3±2,20 82,0±2,11 80,3±2,0* 79,3±4,2* 65-75


альбумины 48,7±1,15 48,3±1,15 48,1±1,15* 47,1±1,15* 40-55

α-глобулины 16,9±1,11 16,8±1,11 16,5±1,11* 16,2±1,11* 13-20

β-глобулины 5,2±0,80 6,0±0,80 6,7±0,80* 8,5±0,80* 7-11

α-глобулины 29,2±2,1 28,9±2,1 28,7±2,1* 28,2±2,1* 20-46

Примечание: * р≤0,05

101

Анализ таблицы показывает, что применение комплексной терапии

(первая опытная группа) ускоряет нормализацию биохимических показателей

у овец на 5 суток, тем самым повышает неспецифическую резистентность

организма у животных, по сравнению с контрольной группой овец. Разница

между группами является достоверной (р<0,05).

Таким образом, «Кордицепс-золотой» в сочетании с

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения ускоряет заживление

инфицированных ран у животных.

102

4. ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ

«КОРДИЦЕПС-ЗОЛОТОЙ» НА ФОНЕ

МАГНИТНО-ИНФРАКРАСНО-ЛАЗЕРНОЙ ТЕРАПИИ ПРИ

ГНОЙНЫХ ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ПРОЦЕССАХ И РАНАХ У

ЖИВОТНЫХ

4.1. Экономическая эффективность комплексной терапии при

гнойном абсцессе у собак

1. Материальные затраты на ветеринарные мероприятия:

1.1. Затраты на курс лечения собак контрольной группы (мазь

левомеколь) составили:

Стоимость 40 гр левомеколя – 98 рублей (1 гр – 2,45 руб). На одну

обработку собаки требуется 6 гр мази левомиколь.

6 гр × 16 обр = 96 гр

96 гр × 2,45 руб = 235 руб

235 руб × 6 соб = 1410 руб

Стоимость 200 мл 0,5% -ного раствора новокаина – 30 рублей (1 мл- 0,15

руб), на одну процедуру - 10 мл.

10 мл × 16 обр = 160 мл

160 руб × 0,15 руб = 24 руб

24 руб × 6 соб = 144 руб

0,5% раствор вероцида – 10 мл = 0,054 руб. на одну обработку

необходимо 20 мл средства:

20 мл × 16 обр = 320 мл

320 мл × 0,054 = 17,3 руб

17,3 руб × 6 соб = 104 руб

Итоги затраты на курс лечения контрольной группы собак:

1410 + 144 + 104 = 1658руб

103

1.2. Затраты на курс лечения собак первой опытной группы


составили:

Стоимость препарата «Кордицепс-золотой» 100 мл – 1100 руб (1 мл –

11руб) на одну обработку необходимо 1,5 мл, применяли 11 обработок:

1,5 мл × 11 обр = 16,5 мл

16,5 мл × 11 руб = 181,5 руб

181,5 руб × 6 соб = 1089 руб



10 мл × 11 обр = 110 мл

110 мл × 0,15 руб = 16,5 руб

16,5 руб × 6 соб = 99 руб

Магнитно-инфракрасно-лазерная обработка – 11 обработок –

израсходовано 1,5 кВт электроэнергии = 5 рублей.



20 мл × 11 обр = 220 мл

220 мл × 0,054 = 12 руб

12 руб × 6 соб = 72 руб

Итоги затраты на курс лечения первой опытной группы собак:

1089 + 99 + 72 + 5 = 1265 руб

1.3. Затраты на курс лечения собак второй опытной группы

(«Кордицепс-золотой») составили:



1,5 мл × 13 обр = 19,5 мл

104

19,5 мл × 11 руб = 214,5 руб

214,5 руб × 6 соб = 1287 руб



10 мл × 13 обр = 130 мл

130 мл × 0,15 руб = 19,5 руб

19,5 руб × 6 соб = 117 руб



20 мл × 13 обр = 260 мл

260 мл × 0,054 = 14 руб

14 руб × 6 соб = 84 руб

Итоги затраты на курс лечения первой опытной группы собак:

1287 + 117 + 84 = 1265 руб

Следовательно, стоимость затрат на курс лечения собак первой опытной

группы составили - 1265 руб., второй опытной группы – 1488 руб, в

контрольной группе – 1658 руб.

2.1. Стоимость трудозатрат на курс лечения собак контрольной группы. На

одну обработку ветеринарный врач затрачивает 10 минут, курс лечения

включает 16 обработок:

10 мин × 16 обр = 160 мин = 2 час 40 мин (2,7 ч)

2,7 × 64 = 173 руб (1 гол)

173 руб × 6 соб = 1038 руб

2.2. Стоимость трудозатрат на курс лечения собак первой опытной группы.

На одну обработку ветеринарный врач затрачивает 10 минут, курс

лечения включает 11 обработок:

105

10 мин × 11 обр = 110 мин = 2 час (1,8 ч)

1,8 × 64 = 115 руб (1 гол)

115 руб × 6 соб = 690 руб

2.3. Стоимость трудозатрат на курс лечения собак второй опытной группы.



10 мин × 13 обр = 130 мин = 2,1 час (2,3 ч)

2,1 × 64 = 134 руб (1 гол)

134 руб × 6 соб = 804 руб

3. Экономический эффект получаемый в результате проведения лечебных

мероприятий:

Э = Пу + Эз + Зв, где:

Пу – экономический ущерб, предотвращённый в результате проведения

лечебных мероприятий;

Эз – экономия материальных затрат в результате применения более

эффективных средств и методов лечения;

Зв – затраты на проведение ветеринарных мероприятий

Экономический эффект получаемый в результате проведения лечебных

мероприятий контрольной группы собак:

Э = 0+1658 руб + 1038 руб = 2696 руб


мероприятий первой опытной группы собак:

Э = 0+1265 руб + 690 руб = 1955 руб


мероприятий второй опытной группы собак:

Э = 0+1488 руб + 804 руб = 2292 руб

106

4. Экономическая эффективность на один рубль затрат:

Контрольная группа: Ээ =2696 : 1038 = 2,6 руб

Первая опытная группа: Ээ =1955 : 690 = 2,9 руб

Вторая опытная группа: Ээ =2292 : 804 = 2,9 руб

Следовательно, экономическая эффективность на 1 рубль затрат в

первой и второй опытных группах составила – 2,9 руб., в контрольной группе -

2,6 руб.


флегмонах у собак

1. Материальные затраты на ветеринарные мероприятия

1.1. Затраты на курс лечения собак контрольной группы (мазь

левомеколь) составили:


обработку флегмоны у собак требуется 6 гр мази левомиколь.

6 гр × 20 обр = 120 гр

120 гр × 2,45 руб = 294 руб

294 руб × 6 соб = 1764 руб

На одну обработку израсходовано 30 мл 10 % раствора хлорида натрия

(Na Cl), стоимость 400 мл Na Cl составляет 40 рублей (1 мл – 0,1 руб), провели

20 обработок и в течение 5 дней ставили дренаж в полость флегмоны:

30 мл × 20 обр = 600 мл Na Cl

600 мл × 0,1 руб = 60 руб

60 × 6 соб = 360 руб

Перекиси водорода на одну обработку израсходовано 20 мл. Стоимость

100 мл 3% раствора перекиси водорода составляет 8 рублей (1 мл – 0,08 руб).

20 мл × 20 обр = 400 мл

107

400 мл × 0,08 руб = 32 руб

32 руб × 6 соб = 192 руб

Цефотаксим 500 тыс Ед – 17 руб - 2 раза в день в течение 6 дней.

(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения флегмоны у собак контрольной группы

израсходовано:

1764 + 360 руб + 192 руб + 204 руб = 2520 руб

1.2. Первая опытная группа («Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения).



1,5 мл × 14 обр = 21 мл

21 мл × 11 руб = 231 руб

231 руб × 6 соб = 1386 руб



14 обработок:

30 мл × 14 обр = 420 мл Na Cl

420 мл × 0,1 руб = 42 руб

42 руб × 6 соб = 252 руб



20 мл × 14 обр = 280 мл

280 мл × 0,08 руб = 22 руб

22 руб × 6 соб = 132 руб

Квантовое облучение – 12 процедур – затрачено 1,5 кВт электроэнергии

= 5 рублей.

108


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения первой опытной группы затрачено:

1386 + 252 руб + 132 руб + 5 руб + 204 руб =1979 руб

1.3. Вторая опытная группа («Кордицепс-золотой»).



1,5 мл × 16 обр = 24 мл

21 мл × 11 руб = 264 руб

264 руб × 6 соб = 1584 руб




30 мл × 16 обр = 480 мл Na Cl

480 мл × 0,1 руб = 48 руб

48 руб × 6 соб = 288 руб



20 мл × 16 обр = 320 мл

320 мл × 0,08 руб = 26 руб

26 руб × 6 соб = 156 руб


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения второй опытной группы затрачено:

1584 руб + 288 руб + 156 руб + 204 руб =2232 руб

109

2. Стоимость трудозатрат на курс лечения собак контрольной группы.

На одну обработку ветеринарный врач затрачивает 10 минут, курс лечения



3,3 × 64 = 211 руб (1 соб)

211 руб × 6 соб = 1266 руб

Стоимость трудозатрат на курс лечения собак первой опытной группы.




2,3 × 64 = 147 руб (1 гол)

147 руб × 6 соб = 882 руб

Стоимость трудозатрат на курс лечения собак второй опытной группы.




2,6 × 64 = 166 руб (1 гол)

166 руб × 6 соб = 996 руб

3. Экономический эффект получаемый в результате проведения лечебных

мероприятий:








мероприятий контрольной группы собак (6 гол):

Э = 0+2520 руб + 1266 руб = 3786 руб

110


мероприятий первой опытной группы собак (6 гол):

Э = 0+1979 руб + 882 руб = 2861 руб


мероприятий второй опытной группы собак (6 гол):

Э = 0+2232 руб + 996 руб = 3228 руб

4. Экономическая эффективность на один рубль затрат





контрольной группе составила 2,9 руб, в первой опытной группе – 3,3 руб, во

второй опытной группе – 3,2 руб.

1.4. Экономическая эффективность применения комплексной

терапии случайных инфицированных ран у собак

1. Материальные затраты на ветеринарные мероприятия

1.1. Затраты на курс лечения собак контрольной группы

(традиционный метод) составили:


обработку флегмоны у собак требуется 6 гр мази левомиколь.

8 гр × 20 обр = 160 гр

160 гр × 2,45 руб = 392 руб

392 руб × 6 соб = 2352 руб



20 мл × 20 обр = 400 мл

400 мл × 0,08 руб = 32 руб

111

32 руб × 6 соб = 192 руб


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения контрольной группы собак израсходовано:

2352 руб + 192 руб + 204 руб = 2748 руб

1.2. Затраты на курс лечения собак первой опытной группы

(«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрсно-лазерного излучения).



2 мл × 12 обр = 24 мл

24 мл × 11 руб = 264 руб

264 руб × 6 соб = 1584 руб



15 мл × 12 обр = 180 мл

180 мл × 0,08 руб = 14 руб

14 руб × 6 соб = 84 руб

Квантовая акупунктура в БАТ – 9 обработок – израсходовано 1,2 кВт

электроэнергии = 5 рублей.


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения первой опытной группы собак израсходовано:

1584 руб + 84 руб + 5 руб + 204 руб = 1877 руб

1.3. Затраты на курс лечения собак второй опытной группы

(«Кордицепс-золотой»)



2 мл × 15 обр = 30 мл

112

30 мл × 11 руб = 330 руб

330 руб × 6 соб = 1980 руб



15 мл × 15 обр = 225 мл

225 мл × 0,08 руб = 18 руб

16 руб × 6 соб = 108 руб


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения второй опытной группы собак израсходовано:

1980 руб + 108 руб + 204 руб = 2292 руб

2. Стоимость трудозатрат ветеринарного врача на курс лечения

собак опытных групп:

1) Стоимость трудозатрат ветеринарного врача на курс лечения

собак контрольной группы:

На одну обработку ветеринарный врач затрачивает 15 мин, курс лечения

включает 20 обработок.

15 мин × 20 обр = 300 мин (5 ч)

Оклад ветеринарного врача составляет 10 000 рублей в месяц

10 000 руб : 26 раб.дн. = 384 руб/ день

384 руб : 6 ч р.д. = 64 руб / 1 час

64 руб × 5 ч = 320 руб ( 1 соб)

176 руб × 6 соб = 1920 руб (6 соб)


собак первой опытной группы



15 мин × 12 обр = 180 мин = 3 ч.


113


384 руб : 6 ч р.д. = 64 руб / 1 час

64 руб × 3 ч =192 руб ( 1 гол)

192 руб × 6 соб = 1152 руб


собак второй опытной группы






384 руб : 6 ч р.д. = 64 руб / 1 час

64 руб × 3,75 ч =240 руб ( 1 гол)

240 руб × 6 соб = 1440 руб

3. Экономический эффект получаемый в результате проведения

лечебных мероприятий:








мероприятий контрольной группы собак:

Э = 0+2748 руб + 1920 руб = 4668 руб


мероприятий первой опытной группы собак:

Э = 0+1877 руб + 1152 руб = 3029 руб


мероприятий второй опытной группы собак:

114

Э = 0+2292 руб + 1440 руб = 3732 руб

5. Экономическая эффективность на один рубль затрат:





контрольной группе составила 2,4 руб, первой опытной группе – 2,7 руб,



гнойном абсцессе у телят

1. Материальные затраты на ветеринарные мероприятия:

1.1 Затраты на курс лечения телят контрольной группы (традиционный

метод лечения).

Стоимость 40 гр левомеколя – 98 рублей (1 гр – 2,45 руб). На одно

применение теленку в среднем требуется 7 гр мази левомеколь.

7 гр × 21 обр = 147 гр

147 гр × 2,45 руб = 360 руб

360 руб × 6 тел = 2160 руб


руб), на одну процедуру необходимо - 10 мл.

10 мл × 21 обр = 210 мл

210 руб × 0,15 руб = 31,5 руб

31,5 руб × 6 тел = 189 руб



21 обработку:

20 мл × 21 обр = 420 мл Na Cl

420 мл × 0,1 руб = 42 руб

115

42 руб × 6 соб = 252 руб


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения телят контрольной группы затрачено:

2160 руб +189 руб + 252 руб + 204 руб = 2805 руб

2.2. Затраты на курс лечения телят первой опытной группы


составили:

Стоимость препарата «Кордицепс-золотой» 100 мл – 1100 руб (1 мл – 11

руб) на одну обработку необходимо 1,5 мл:

1,5 мл × 14 обр = 21 мл

21 мл × 11 руб = 231 руб

231 руб × 6 тел = 1386 руб

Магнитно-инфракрасно-лазерная обработка – 14 обработок –

израсходовано 1,8 кВт электроэнергии = 6 рублей.



10 мл × 14 обр = 140 мл

140 руб × 0,15 руб = 21 руб

21 руб × 6 тел = 126 руб




20 мл × 14 обр = 280 мл Na Cl

280 мл × 0,1 руб = 28 руб

28 руб × 6 соб = 168 руб


(17×2) 6 = 204 руб

116

Итого на курс лечения 6 голов первой опытной группы израсходованно:

1386 руб + 6 руб+ 126 руб + 168 руб + 204 руб = 1890 руб

2.3. Затраты на курс лечения телят второй опытной группы

(«Кордицепс-золотой»):

Стоимость препарата «Кордицепс-золотой» 100 мл – 1100 руб (1 мл – 11

руб) на одну обработку необходимо 1,5 мл:

1,5 мл × 16 обр = 24 мл

24 мл × 11 руб = 264 руб

264 руб × 6 тел = 1584 руб



10 мл × 16 обр = 160 мл

160 руб × 0,15 руб = 24 руб

24 руб × 6 тел = 144 руб




20 мл × 16 обр = 320 мл Na Cl

320 мл × 0,1 руб = 32 руб

32 руб × 6 соб = 192 руб


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на курс лечения 6 телят второй опытной группы израсходованно:

1584 руб + 144 руб + 192 руб + 204 руб = 2124 руб

3. Расчет затрат на оплату труда ветеринарного врача и подсобного рабочего:

а) на лечение одного теленка было затрачено времени:

в контрольной группе 520 минут, в первой опытной группе 456 минут,

второй опытной группе 472 мин.

117

б) зарплата ветеринарного врача в среднем составляет 10000 в месяц



384 руб : 8 ч р.д. = 48 руб / 1 час

48 руб : 60 мин = 0,8 руб

Следовательно затраты на оплату труда ветеринарного врача при

лечении одного животного составляет

в контрольной группе:

0,8 руб × 520 мин = 416 руб

416 руб × 6 гол = 2496 руб

в первой опытной группе:

0,8 руб × 456 мин = 364 руб

364 руб × 6 гол = 2184 руб

во второй опытной группе:

0,8 руб × 472 мин = 377 руб

377 руб × 6 гол = 2262 руб

в) зарплата скотника в среднем составляет 5000 руб в месяц

5000 руб : 26 раб. дней=192,3 руб./сутки

192,3 руб : 8 часов=24,04 руб./час

24,04 руб : 60 мин.=0,4 руб./мин.


0,4 руб × 520 мин = 208 руб

208 × 6 гол = 1248 руб


0,4 руб × 456 мин = 182 руб

182 × 6 гол = 1092 руб

Во второй опытной группе:

0,4 руб × 472 мин = 188 руб

182 × 6 гол = 1128 руб

118

d) Суммарные затраты на лечение, работу ветеринарного врача и скотника

при лечении животных составляют:


2805 + 2496 + 1248 = 6549 руб


1890+2184 + 1092 = 5166 руб

во второй опытной группе:

2124+2262 + 1128 = 5514 руб

1) Экономический ущерб (У):

У=Мзаб×(Вз-Вб)×Т×Ц, где:

Мзаб – количество заболевших животных, (гол.).

В3 – среднесуточное количество молока, полученная от здоровых

животных (кг).

Вб – среднесуточное количество молока, полученное от больных животных

(кг).

Т – средняя продолжительность лечения (сут.).

Ц – закупочная цена 1 л молока (руб.).

Отсюда экономический ущерб в контрольной группе составил:

У=6×(12-6)×24×40 = 34560,

в первой опытной группе составил:

У=6×(16-11)×15×40 = 18000,

во второй опытной группе составил:

У=6×(16-11)×18×40 = 25920,

2) Предотвращенный экономический ущерб (Пу) от снижения молочной

продуктивности животных:

Пу=Мо×Кз×Кп×Ц-У, где:

Мо – поголовье восприимчивых животных в хозяйстве;

Кз – коэффициент заболеваемости (0,17);

119

Кп – удельная величина потерь основной продукции (17,1);

Ц – цена реализации единицы продукции;

У – экономический ущерб.

Отсюда предотвращенный экономический ущерб в контрольной группе

составил:

Пу=384×0,17×17,1×40-34560=10 091 руб.

в первой опытной группе составил:

Пу=384×0,17×17,1×40-18000=26 651 руб.

Во второй опытной группе составил:

Пу=384×0,17×17,1×40-25920=18 731 руб.

2. Экономический эффект лечебных мероприятий:

Эв=Пу-Зв, где:

Пу – предотвращенный ущерб;

Зв – затраты ветеринарии (цена лекарственных препаратов + зарплата

ветеринарных работников).

Экономический эффект лечебных мероприятий

В контрольной группе составил:

Эв=10091 – 6549=3542 руб.

В первой опытной группе:

Эв=26651 – 5166=21485 руб.


Эв=18731 – 5514=13217 руб.

3. Экономическая эффективность на 1 рубль затрат:

Эр= , где:

Эв – экономический эффект;

Зв – затраты ветеринарии.

120

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат в контрольной группе

составила:

Эр= 3542

6549 = 0,5 руб

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат в первой опытной

группе составила:

Эр= 21485

5166 = 4,1 руб

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат во второй опытной

группе составила:

Эр= 13217

5514 = 2,4 руб

Следовательно, экономическая эффективность на один рубль затрат

составила в контрольной группе 0,5 руб, в первой опытной группе – 4,1 руб, во


1.6. Экономическая эффективность применения комплексной

терапии случайных инфицированных ран у телят

1. Экономический ущерб от недополучения привесов больных телят

I = M3×(B-D,)×T×Ц, где,

Мз – количество заболевших животных;

Вб – среднесуточная продуктивность заболевших животных (кг)

Т – время переболевания (дни)

Ц – цена единицы продукции (руб)

Первая опытная группа («Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения)

I = 6×(0,3-0,18)×15×160 = 1728 руб

Вторая опытная группа («Кордицепс-золотой»)

I = 6×(0,3-0,18)×18×160 = 2074 руб

Контрольная группа (традиционный метод лечения)

121

I = 6×(0,3-0,18)×22×160 = 2534 руб

Следовательно, наименьший экономический ущерб оказался в первой

опытной группе – 1728 рубля, во второй опытной группе - 2074 рубля, тогда

как в контрольной группе – 2534 рублей.

2. Предотвращенный ущерб

Пу=Мо×Кз×Кп×Ц-У, где:

Мо – поголовье восприимчивых животных в хозяйстве;

Кз – коэффициент заболеваемости (0,17);

Кп – удельная величина потерь основной продукции (17,1);

Ц – цена реализации единицы продукции;

У – экономический ущерб.


Пу = 10×1,0×12×160-1728 = 17 472 руб


Пу = 10×1,0×12×160-2074 = 17 126 руб


Пу = 10+1,0+12×160-2534 = 16 666 руб

3. Затраты на ветеринарные мероприятия

3.1. Стоимость затрат на курс лечения контрольной группы

(традиционный метод лечения) на курс лечения:

Стоимость 40 гр Левомеколя – 98 рублей (1 гр – 2,45 руб). На одну

обработку теленка требуется 6 гр линимента Вишневского.

6 гр × 22 обр = 132 гр

132 гр × 2,45 руб = 323 руб (1 гол)

323 руб × 6 тел = 1938 руб



10 мл × 22 обр = 220 мл

220 мл × 0,15 руб = 33 руб

122

33 руб × 6 гол = 198 руб



20 мл × 22 обр = 440 мл

440 мл × 0,054 = 24 руб

24 руб × 6 гол = 144 руб


(17×2) 6 = 204 руб

204 × 6 гол = 1224 руб

Итого на лечение первой опытной группы:

1938 руб + 198 руб + 144 руб + 1224 руб= 3504 руб

3.2. Стоимость затрат на курс лечения первой опытной группы


на курс лечения 1 теленка.



1,5 мл × 15 обр = 22,5 мл

22,5 мл × 15 руб = 337 руб

337 руб × 6 гол = 2022 руб

Квантовая акупунктура в БАТ – 3 обработки – израсходовано 1,5 кВт

электроэнергии = 6 рублей

6 руб ×6 гол = 12 руб



10 мл × 15 обр = 150 мл

150 мл × 0,15 руб = 22,5 руб

22,5 руб × 6 гол = 135 руб



123

20 мл × 15 обр = 230 мл

230 мл × 0,054 = 12 руб

12 руб × 6 гол = 72 руб


(17×2) 6 = 204 руб


2022руб + 12 руб +135 руб + 72 руб + 204 руб= 581 руб

3.3. Стоимость затрат на курс лечения второй опытной группы

(«Кордицепс-золотой») на курс лечения 1 теленка.



1,5 мл × 18 обр = 27 мл

27 мл × 15 руб = 405 руб

405 руб × 6 гол = 2430 руб



10 мл × 18 обр = 180 мл

180 мл × 0,15 руб = 27 руб

27 руб × 6 гол = 162 руб



20 мл × 18 обр = 360 мл

360 мл × 0,054 = 19 руб

19 руб × 6 гол = 114 руб


(17×2) 6 = 204 руб

Итого на лечение второй опытной группы:

2430 руб + 162 руб + 114 руб + 204 руб= 2910 руб

124

3.2. Стоимость трудозатрат на курс лечения

3.2.1. Стоимость трудозатрат на курс лечения 1 теленка первой опытной

группы. На одну обработку ветеринарный врач затрачивает 10 минут, курс





384 руб : 6 ч р.д. = 64 руб / 1 час

64 руб × 2,5 ч = 160 руб (1 гол)

160 руб × 6 гол = 960 руб (6 гол)

3.2.2. Стоимость трудозатрат на курс лечения 1 теленка второй опытной


лечения включает 9 обработок по 15 мин:

15 мин × 18 обр = 270 мин = 4,5 ч.

4,5 × 64 = 288 руб (1 гол)

288 × 6 гол = 1728 руб (6 гол)

3.2.2. Стоимость трудозатрат на курс лечения 1 теленка контрольной


лечения включает 22 обработки по 15 мин:

15 мин × 22 обр = 330 мин = 5,5 ч

5,5 × 64 = 352 руб (1 гол)

352 руб × 6 гол = 2112 руб (6 гол)

Следовательно, стоимость трудозатрат на курс лечения телят первой

опытной группы на 6 телят составила 960 руб, второй опытной группы 1728

руб., тогда как в контрольной группе – 2112 руб.






125

Экономический эффект лечебных мероприятий в первой опытной группе

составил:

Эв = 17472 – (2445+1728) = 13299 руб

Экономический эффект лечебных мероприятий во второй опытной группе

составил:

Эв = 17126 – (2910+960) = 13252 руб

Экономический эффект лечебных мероприятий контрольной группе

составил:

Эв = 16666 – (3504+2112) = 11050 руб

5. Экономическая эффективность на 1 рубль затрат

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат в первой опытной группе

составила:

Эр= 13299

4173 = 3.1 руб

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат во второй опытной группе

составила:

Эр= 13252

3870 = 3,4 руб


составила:

Эр= 11050

5616 = 1,9 руб

Следовательно, экономическая эффективность на один рубль затрат

составила в контрольной группе 1,9 руб, в первой опытной группе – 3,1 руб, во


1.7. Экономическая эффективность комплексной терапии случайных

инфицированных ран у овец

1. Экономический ущерб от недополучения привесов больных овец

I = M3×(B-D,)×T×Ц, где,

Мз – количество заболевших животных;

126

Вб – среднесуточная продуктивность заболевших животных (кг)

Т – время переболевания (дни)

Ц – цена единицы продукции (руб)

Контрольная группа (традиционный метод лечения) овец

I = 6×(0,1-0,04)×20×160 = 1152 руб

Первая опытная группа овец («Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения).

I = 6×(0,1-0,04)×14×160 = 806 руб

Вторая опытная группа (мазь Вишневского на фоне квантовой терапии)

I = 6×(0,1-0,04)×16×160 = 921 руб

Следовательно, наименьший экономический ущерб оказался в первой

опытной группе – 806 руб, во второй – 921 руб,тогда как в контрольной группе

– 1152 руб.

2. Предотвращенный ущерб

Пу=Мо×Кз×Кп×Ц-У,

М – поголовье восприимчивых животных в хозяйстве

К1 – коэффициент возможно заболевших животных

К2 – доля потери основной продукции

Ц – цена реализуемой единицы продукции

У1 – экономический ущерб


Пу = 60×1,0×2,0×160-1152 = 18048 руб


Пу = 60×1,0×2,0×160-806 = 18394 руб


Пу = 60×1,0×2,0×160-921 = 18279 руб

3. Затраты на ветеринарные мероприятия

3.1.1 Контрольная группа овец:

127

Затраты на курс лечения овец контрольной группы (традиционный

метод лечения). Стоимость 40 гр Левомеколя – 98 рублей (1 гр – 2,45 руб). На

одну обработку теленка требуется 6 гр линимента Вишневского.

6 гр × 20 обр = 120 гр

120 гр × 2,45 руб = 294 руб (1 гол)

294 руб × 6 гол = 1764 руб



10 мл × 20 обр = 200 мл

200 мл × 0,15 руб = 30 руб

30 руб × 6 гол = 180 руб



20 мл × 20 обр = 400 мл

400 мл × 0,08 руб = 32 руб

32 руб × 6 гол = 192 руб



20 мл × 20 обр = 400 мл

400 мл × 0,054 = 21 руб

21 руб × 6 гол = 126 руб


(17×2) 6 гол = 204 руб

Итого на курс лечения на 6 овец контрольной группы израсходовано:

1764 руб + 180 руб + 192 руб + 126 руб + 204 руб = 2460 руб

3.1.2 Затраты на курс лечения овец первой опытной группы

(«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения):



128

1,5 мл × 14обр = 21 мл

21 мл × 15 руб = 315 руб

315 руб × 6 гол = 1890 руб

Квантовая акупунктура в БАТ – 3 обработки – израсходовано 1,5 кВт

электроэнергии = 6 рублей

6 руб ×6 гол = 12 руб



10 мл × 14 обр = 140 мл

140 мл × 0,15 руб = 21 руб

21 руб × 6 гол = 126 руб



20 мл × 14 обр = 280 мл

280 мл × 0,08 руб = 22 руб

22 руб × 6 гол = 132 руб



20 мл × 14 обр = 280 мл

280 мл × 0,054 = 15 руб

15 руб × 6 гол = 90 руб


(17×2) 6 = 204 руб


1890 + 12 руб +126 руб +132 руб + 90 руб + 204 руб= 2454 руб

3.1.3 Затраты на курс лечения овец второй опытной группы

(«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения):


129


1,5 мл × 16 обр = 24 мл

24 мл × 15 руб = 360 руб

360 руб × 6 гол = 2160 руб



10 мл × 16 обр = 160 мл

160 мл × 0,15 руб = 24 руб

24 руб × 6 гол = 144 руб



10 мл × 16 обр = 160 мл

160 мл × 0,08 руб = 12 руб

12 руб × 6 гол = 72 руб



10 мл × 16 обр = 160 мл

160 мл × 0,054 = 9 руб

9 руб × 6 гол = 54 руб


(17×2) 6 = 204 руб


2160 + 144 руб +72 руб + 54 руб + 204 руб= 2634 руб

3.2.1. Стоимость трудозатрат на курс лечения овец первой опытной

группы. На одну обработку ветеринарный врач затрачивает 10 минут,

курс лечения включает 14 обработок:



130


384 руб : 6 ч р.д. = 64 руб / 1 час

64 руб × 2,3 ч = 147 руб (1 гол)

147 руб × 3 гол = 882 руб

3.2.1. Стоимость трудозатрат на курс лечения овец второй опытной

группы. На одну обработку ветеринарный врач затрачивает 10 минут,

курс лечения включает 16 обработок:




384 руб : 6 ч р.д. = 64 руб / 1 час

64 руб × 2,6 ч = 166 руб (1 гол)

166 руб × 6 гол = 996 руб

3.2.2. Стоимость трудозатрат на курс лечения овец контрольной группы.






384 руб : 6 ч р.д. = 64 руб / 1 час

64 руб × 3,3 ч = 211 руб (1 гол)

211 руб × 6 гол = 1266 руб

Итого на курс лечения затрачено лекарственных препаратов и

трудозатраты на оплату ветеринарного врача у контрольной группы

составила:

2460 руб + 1266 руб = 3726 руб

В первой опытной группе:

2454 руб + 882 руб = 3336 руб


2634 руб + 996 руб = 3630 руб

131






Контрольная группа:

Эв = 18048 – 3726 = 14322 руб

Первая опытная группа:

Эв = 18394 – 3336 = 15058 руб

Вторая опытная группа:

Эв = 18279 – 3630 = 14649 руб

5. Экономическая эффективность на 1 рубль затрат:

Эр= , где:

Эв – экономический эффект;

Зв – затраты ветеринарии.


составила:

Эр= 14322

3726 = 3.8 руб

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат в первой опытной группе

составила:

Эр= 15058

3336 = 4,5 руб

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат во второй опытной группе

составила:

Эр= 14649

3630 = 4,1 руб

132

Следовательно, экономическая эффективность на один рубль затрат в

контрольной группе составила – 3,8 руб, в первой опытной группе – 4,5 руб, во


133

5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННЫХ

ИССЛЕДОВАНИЙ

Служебные собаки помогают пограничникам в охране рубежей нашей

Родины, оказывают неоценимую помощь работникам полиции и сторожевой

охране в борьбе с расхитителями народного имущества, а также ведут борьбу

с распространением наркотиков в кинологической службе. Велико значение

собак для охраны отар овец от нападения хищников, в жизни народностей

Северного Кавказа, где они широко используются, как сторожевые и для

охоты.

Однако одновременно при все более широком применении собак в

различных отраслях хозяйства и в быту возрастает опасность распространения

болезней, среди которых много общих с болезнями сельскохозяйственных

животных и людей (инфекционных, инвазионных и хирургических).

Среди хирургической патологии особое место занимают ушибы,

воспалительные процессы и открытые механические повреждения мягких

тканей у собак.

Несмотря на большое количество экспериментальных, клинических

исследований и разработок по профилактике и лечению этих заболеваний у

собак, этот вопрос остается открытым и является актуальным, заключающим в

себе изыскание способов и средств с применением этиопатогенетической

терапии.

Проведение мониторинга распространения хирургической патологии у

собак г. Владикавказ установлено, что в 2013 г было выявлено 145 собак

(35,0%); в 2014 г – 167 собак (32,74%), в 2015г – 182 собаки (35,19%).

Следовательно, хирургические заболевания из года в год увеличиваются, в

результате неудовлетворительного содержания и ухода за животными.

Среди крупного рогатого скота с травмами, ушибами, воспалительными

процессами и ранами было выявлено в 2013 году - 328 голов (3,36%), в 2014 –

134

265 голов (3,23%), в 2015 г – 120 голов (2,43%) от общего поголовья

животных. Анализ полученных данных показывает, что хирургическая

патология у животных за последние три года уменьшается.

В первой серии опытов проводили пять опытов.

В первом опыте проводили изучение мониторинга распространения

хирургической патологии у собак, при этом установлено, что в 2014 г. было

выявлено с гнойными воспалительными процессами 58 собак (40%), с

открытыми механическими повреждениями 57 собак (39,3%). В 2015 г -73

(37,8%) и 78 собак (40,5%). В 2016 году – 93 (42,9%) и 82 собаки (37,8%)

соответственно. По результатам мониторинга установлено, что у собак

гнойно-воспалительные процессы и раны из года в год увеличиваются.

Мониторинг распространения крупного рогатого скота с хирургической

патологией. Установлено, что 2014 году с гнойными воспалительными

процессами выявлено 109 голов (33,2%). В 2015 году 102 головы (33,6%) и 107

голов (35,3%). В 2016 году – 34 гловы (32,8%) и 102 головы (35,5%)

соответственно.

Следовательно, за все три года гнойные воспалительные процессы и

раны проявлялись в одинаковом количестве.

Во втором опыте мы изучали антимикробную активность

«Кордицепс-золотой» на некоторые штаммы микроорганизмов. Установлено,

что «Кордицепс-золотой» обладает достаточно высокой антимикробной

активностью по отношению к Staphylococcus aureus, Streptococcus epidermidis,

Escherichia coli, Proteus vulgaris. Зона прекращения роста Staphylococcus aureus

составила 24 мм, Streptococcus epidermidis – 23 мм, Escherichia coli – 24 мм и

Proteus vulgaris – 20 мм. Следовательно, по результатам полученных данных

«Кордицепс-золотой» обладает достаточно выраженным антимикробным

действиям к патогенным микроорганизмам.

Полученные нами исследования согласуются с данными Чеходариди

Ф.Н. и Бициева Т.Т. (2010).

В третьем опыте мы изучали применение комплексной терапии при

135

гнойном абсцессе у собак. Установлено, что применение


(квантовая терапия) ускоряет нормализацию клинического статуса,

гематологических и биохимических показателей сыворотки крови у собак

первой опытной группы по сравнению со второй опытной группой и

контролем.

Полное клиническое выздоровление у собак первой опытной группы

произошло на 16 сутки, второй опытной группы – 18 сутки, тогда как у

контрольной группы – 21 сутки после начала лечения.

Полученные научные исследования согласуются с научными данными

И.С. Издипецкого, М.В. Рубленок (1989); Ф.Н. Чеходариди, С.Г. Гадзаонова,

(2007, 2008); Т.Т. Бициева (2010); Д.В. Машенцева, Д.Н. Бестаева (2012), Н.С.

Персаевой (2015) и др.

В четвертом опыте мы проводили изучение комплексной терапии

флегмоны у собак. Нами установлено, что флегмона у собак протекала

стадийно. Клиническими исследованиями установлено, что до начала лечения

у всех подопытных групп собак температура, пульс и дыхание были

повышенными. На 10 сутки после начала лечения клинические признаки

нормализовались у первой опытной группы («Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лезерной терапии) – на 10 сутки, у второй опытной

группы («Кордицепс-золотой») – на 10 сутки, тогда как у контрольной группы

(мазь левомеколь) – на 12 сутки после начала лечения. Полное клиническое

выздоровление у собак с флегмонами в первой опытной группы произошло–

на 24 сутки, у второй опытной группы – на 26 сутки, тогда как у контрольной

группы – на 29 сутки после начала лечения.

Установлено, что применение «Кордицепс-золотой» на фоне квантовой

терапии ускоряет нормализацию гематологических, биохимических и

иммунологических показателей сыворотки крови у собак первой опытной

группы, по сравнению с контролем.

В пятом опыте изучали применение комплексной терапии при гнойном

136

абсцессе у телят. Оценку лечебной эффективности применения


при абсцессе у телят проводили в сравнении с общепринятыми методами

терапии. При изучении клинического статуса у подопытных групп телят было

установлено угнетение общего состояния, повышение температуры тела до

41оС, учащение пульса и дыхательных движений. Все признаки воспаления

были явно выражены: припухлость, повышение местной температуры,

болезненность и нарушение функции. На 3 сутки после начала лечения у телят

первой опытной группы произошло улучшение всех симптомов заболевания,

по сравнению с контролем. Установлено, что применение

«Кордицепс-золотой» на фоне квантовой терапии вызывает повышение

неспецифической резистентности организма у телят первой опытной группы,

по сравнению со второй опытной группой и контролем. Проведенные научные

исследования согласуются с данными Т.Т. Бициева (2009), С.Г. Гадзаонова

(2007)

Во второй серии проводили 3 опыта.

В первом опыте мы изучали эффективность комплексной терапии

случайных инфицированных ран у собак. Для этого было сформировано три

подопытные группы собак (контрольная и две опытные) по 6 собак в каждой.

Собак контрольной группы лечили мазью левомеколь. Собак первой

опытной группы – «Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-лазерного

излучения. Собак второй опытной группы - «Кордицепс-золотой» без

магнитно-лазерного излучения.

Установлено, что уже на 10 сутки после начала лечения у первой и

второй опытных групп собак появилась молодая грануляционная ткань, на 15

сутки лечения рана покрылась молодая грануляционная тканью, тогда как у

контрольной группы – на 19 сутки после начала лечения. Полное клиническое

выздоровление у собак первой опытной группы наступило – на 18 сутки, тогда

как у контрольной группы – на 22 сутки после начала лечения.

Установлено, что комплексная терапия ран ускоряет нормализацию

137

морфологических, биохимических и иммунологических показателей в крови у

собак.

Во втором опыте изучали комплексную терапию случайных

инфицированных ран у телят. Для этого было сформировано 3 подопытные

группы телят (контрольная и две опытные) по 6 телят в каждой группе.

Контрольную группу телят лечили мазью левомеколь. Животных

первой опытной группы – на рану накладывали «Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-лазерного излучения. Телятам второй опытной группы на рану

накладывали «Кордицепс-золотой», но уже без магнитно-лазерного

излучения.

Нами установлены причины вызывающие случайные инфицированные

раны у телят, они возникли в результате неправильного ухода, содержания,

грубого обращения с животными, наличие торчащих металлических

предметов в кормушках, на выгульных площадках, неисправность их. Удары

друг друга.

Установлено, что у первой опытной группы телят


заживление раны произошло на 15 сутки, у второй опытной группы

(«Кордицепс-золотой») – на 18 сутки, тогда как у контрольной группы (мазь

левомеколь) – на 22 сутки после начала лечения. Наши данные согласуются с

исследованиями Ф.Н. Чеходариди, С.Г. Гадзаонова (2008), Т.Т. Бициева, Ф.Н.

Чеходариди (2010). Более выраженные изменения в сторону повышения

неспецифической резистентности произошло у телят первой опытной группы

по сравнению со второй опытной группой и контрольной группой.

В третьем опыте изучали комплексную терапию случайных

инфицированных воспалившихся ран у овец. Для этого было сформировано

три группы (контрольная и две опытные) по 6 овец каждой. Контрольной и

опытным группам овец проводили туалет вокруг раны, короткую

новокаиновую блокаду 0,5% -ным раствором новокаина в дозе 10-20 мл, затем

хирургическое удаление некротизированных тканей. Рану промывали 0,5% -

138

ным раствором вероцида и 3% - ным раствором перекиси водорода,

высушивали ее стерильными ватно-марлевыми стерильными тампонами.

Контрольную группу овец лечили путем нанесения на рану мази

левомеколь (традиционный метод).

Овцам первой опытной группы на рану наносили «Кордицепс-золотой»

на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения. Всем группам

животных для профилактики патогенного действия хирургической инфекции

внутримышечно вводили цефотоксим в дозе по 500 тыс. ЕД. два раза в день, в

течение 6 дней.

Полное клиническое выздоровление у овец опытной группы произошло

на 14 сутки, у второй опытной группы на 16 сутки, тогда как у контрольной

группы на 20 сутки после начала лечения. Применение комплексной терапии

ускоряет нормализацию гематологических и биохимических сыворотки крови

у овец, тем самым повышает неспецифицескую резистентность организма у

первой опытной группы овец.

139

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

1. Мониторингом распространения хирургической патологии у

собак за 2014-2016 гг. установлено, что в 2014 г с хирургической патологией –

145 собак; в 2015 г –193 собаки, в 2016 г – 217 собак. Крупный рогатый скот в

2014 г – 328 голов (3,36%), в 2015 г.– 303 головы (3,45%), в 2016 г – 287 голов

(3,88%) от общего поголовья животных. Основными причинами

возникновения гнойно-воспалительных процессов и ран у собак были

нарушения условий ухода и содержания.

2. Антимикробная активность «Кордицепс-золотой» (in vitro)

вызывает подавление роста некоторых патогенных штаммов: Staphylococcus

aureus составила 24 мм, Streptococcus epidermidis – 23 мм, Escherichia coli – 24

мм и Proteus vulgaris – 20 мм.

3. Применение «Кордицепс-золотой» на фоне

магнтно-инфракрасно-лазерного излучения ускоряет процесс заживления

абсцесса у собак первой опытной группы на 3 суток, флегмоны на 8 суток, а

также вызывает нормализацию гематологических, биохимических и

иммунологических показателей крови у опытной группы по сравнению с

контрольной группой животных.

4. «Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного

излучения вызывает заживление абсцесса у телят на 15 сутки, тогда как у

контрольной группы (мазь левомеколь) – на 22 сутки после начала лечения, а

также ускоряет нормализацию гематологических, биохимических и

иммунологических показателей крови у животных первой опытной группы по

сравнению с контролем.

5. «Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного

излучения обладает ранозаживляющим действием и ускоряет процесс

дегенерации ран у собак. Полное клиническое выздоровление наступило у

собак на 16 сутки, тогда как у контрольной группы на 20 сутки после начала

140

лечения (левомеколь), а также повышает неспецифицескую резистентность

организма собак.

6. Комплексная терапия случайных инфицированных ран у телят


обладает ранозаживляющим действием и вызывает ускорение образования

грануляционной ткани на 15 сутки, тогда как у контрольной группы (мазь

левомеколь) – на 22 сутки после начала лечения, а также вызывает повышение

неспецифической резистентности организма телят.

7. Комплексная терапия обладает ранозаживляющим действием и

ускоряет процесс дегенерации случайных инфицированных ран у овец - на 6

суток, по сравнению с контролем, а также вызывает нормализацию

содержания гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов и СОЭ,

содержания общего белка и γ-глобулинов по сравнению с контрольной

группой овец.

8. Экономическая эффективность на один рубль затрат при

этиопатогенетической терапии абсцессов у собак составляет 2,9 рублей, тогда

как у контрольной 2,6 рублей, флегмон – 3,3 рубля, контрольной – 2,9 рубля. У

телят с абсцессами 4,1 рубля и 0,5 рублей.

9. Экономическая эффективность на один рубль при лечении ран

«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения у

телят составила - 3,1 руб, тогда как в контрольной группе - 1,9 руб. У овец –

4,5 руб, в контрольнй группе – 3,8 руб.

141

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Для ускорения заживления гнойных воспалительных процессов у

животных необходимо применять комплексную терапию

(«Кордицепс-золотой» на фоне магнитно-инфракрасно-лазерного излучения);

2. Для лечения случайных инфицированных ран у животных

необходимо применять комплексную терапию («Кордицепс-золотой» на фоне

магнитно-инфракрасно-лазерного излучения);

142

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

1. Авилов, В.М. Временное наставление по применению препарата

эраконд в ветеринарии (в порядке широкого производственного испытания до

1997 г.). -М.: Минсельхоз России, 1994,- 20 с.

2. Адо, А.Д. К проблеме заживления ран / А.Д. Адо, В.М. Абросимов //

Экспериментальная хирургия и анестезиология. - 1967. - №6.- с.3-10.

3. Адо, А.Д. Общая аллергология. / А.Д. Адо // -М.: Медицина,1978.- 460 с.

4. Адо, А.Д. Патофизиология фагоцитов / А.Д. Адо //. М.: Медгиз, 1961.-

485с.

5. Альперн, Д.Е. Воспаление (вопросы патогенеза). - М.: Медгиз,

1959.-286с.

6. Амирова, Л.О. Иммунотропные свойства антигистаминной сыворотки

при раневом процессе у крупного рогатого скота // Автореферат на соискание

ученой степени кандидата ветеринарных наук - Троицк, 1999.

7. Анисимов, В.Н. Лечение ран мягких тканей: достижения и перспективы

/ В.Н Анисимов А.Г. Ботяков А.В. Воробьев и др. // Вест. Нижегородского

отдела РАЕН. - Нижний Новгород, 1997.-Вып. 1.-С. 10-15.

8. Аничков, H.H., Волкова, К.Г., Гаршин, В.Г. Морфология заживления

ран. – Москва: Медгиз, 1951. - 13с.

9. Апостолиди, К.Ю., Валиев, А.А. Опыт лечения колотой гнойной раны у

коров / К.Ю. Апостолиди, А.А. Валиев // Материалы студенческой

конференции Горского ГАУ «Студенческая наука агропромышленному

комплексу». Владикавказ – 2013. – С. 120-123.

10. Аръев, Т.Я. Раны и их лечение / Т.Я. Аръев // Руководство по хирургии.

М., 1962.-Т.1.-С.428.

11. Бабаева, А.Г. Регенерация и система иммунитета. -М.: Медицина, 1985,-

С. 15 - 18.

143

12. Байматов, В.Н., Абатурова, Э.К. Влияние биостимуляторов на

заживление ран у кроликов / В.Н. Байматов, Э.К. Абатурова // ж. Ветеринария

- № 1. – Москва. – 2010. – С.44-48.

13. Безин, А.Н. Клинико-иммунологический статус и иммунокоррекция при

травмах у животных: Автореферат докторской диссертации ветерирнарных

наук / А.Н. Безин – Санкт-Петербург, 2000. – 32 с.

14. Бестаев, Д.Н., Валиев А.А. Патогенетическая терапия дерматита у собак

/ Д.Н. Бестаев, А.А. Валиев // Научные труды студентов Горского ГАУ

«Студенческая наука агропромышленному комплексу». Владикавказ – 2014. –

С. 109-121.

15. Бициев, Т.Б., Бициев, Т.Т. Влияние анолита нейтрального (АНК) на

клинический статус, морфологические и иммуно-биохимические показатели

крови у собак с инфицированными ранами // Известия Горского

государственного университета - Т.49, ч.3, Владикавказ, 2012. – С. 212-215.

16. Бициев, Т.Б. Применение современных раневых покрытий в

ветеринарной хирургии / Т.Б. Бициев, Т.Т.Бициев // Известия Горского

государственного университета - Т.44, ч.1, Владикавказ, 2007. – С. 91-95.

17. Бициев, Т.Т., Чеходариди, Ф.Н. Лечение инфицированных ран у собак

комплексным методом / Т.Т. Бициев, Ф.Н. Чеходариди / журнал Известия

Горского государственного аграрного университета. – Т. 46., Ч. 3.

Владикавказ, 2009. – С. 54-56.

18. Бициев, Т.Т. Лечение случайных инфицированных ран у собак с

применением нейтрального анолита АНК / Т.Т. Бициев, Ф.Н. Чеходариди, Т.Б.

Бициев // Известия Горского государственного университета - Т.46, ч.2,

Владикавказ, 2009. – С. 53-55.

19. Бышевский, А.Ш., Терсенов, O.A. Биохимия для врача. - Екатеринбург:

Уральский рабочий, 1994.- С.328-329.

20. Веремей, Э.И. и др. Квантовое излучение при лечении собак с

гнилостными ранами / Э.И. Веремей, А.И. Карамалак // ж. Ветеринария. –

Москва. – 2003. - № 5 – С. 53-55.

144

21. Веремей, Э.И. Общая хирургия ветеринарной медицины / Э.И. Веремей,

М.В. Лакисов, В.А. Лукъяновский // Минск: Уражай – 2000. – 526 с.

22. Веремей, Э.И. Справочник по применению лекарственных средств

ветеринарной хирургии / Э.И. Веремей, А.Н. Елисеев, В.А. Лукъяновский //

Минск: Уражай. – 1989. – 263 с.

23. Веремей, Э.И. и др. Травматическая помощь в собаководстве / Э.И.

Веремей, В.М. Лакисов // ж. Ветеринария. – Москва. - 1992. -№1. –С.57-58.

24. Веремей, Э.И., Климович, П.А., Рахманов, И.В. Придигиозан в

комплексном лечении крупного к.р.с. при абсцессах // ж. Ветеринария. –

Москва. – 1996. - № 11. – С. 36-38.

25. Веремей, Э.И. и др. Оксидант торфа при септических воспалительных

процессах / Э.И. Веремей, В.Н. Ходас // ж. Ветеринария. – Москва. – 1993. -

№.2. – 43 с.

26. Виденин, В.Н. Послеоперационные гнойно-воспалительные

осложнения у животных / В.Н. Виденин // ж. Ветеринария. – Москва. - 1996,-

№2. - С.43-46.

27. Виденин, В.Н., Широбокова, М.М. Прменение поверхностно-активных

антисептиков для профилактики раневой инфекции у к.р.с. / В.Н. Виденин,

М.М. Широбокова // Современ. Проблемы проф. и терапии незаразн. бол. с/х

животных и птиц в Нечерноземной зоне РСФСР / ЛВИ: Сборник научных

трудов. – 1983. – Выпуск 76. – С. 19-23.

28. Вишневский, А.Н. Наш метод лечения гнойных ран / А.В. Вишневский //

М.: Совет. мед. – 1939. - №11. -С. 3-4.

29. Вишневский, А.В. Нервная трофика в хирургии / А.В. Вишневский // М.:

Сборник работ под редакцией профессора Вишневского А.В. – ВИЭМ. – 1936.

– С. 5-21.

30. Вишневский, А.В. Новокаиновая блокада и масляно-бальзамические

антисептики, как особый вид патогенетической терапии / А.В. Вишневский //

Москва. Академия медицинских наук СССР. – 1952. – 220 с.

145

31. Вишневский, А.В. Путь к нашей системе воспалительного процесса и

ран / А.В. Вишневский // Архив биологии. -1938. - Вып. 3. -Т. 52. -С: 5-10.

32. Вишневский, А.В., Шрейбер, М.Н. Военно-полевая хирургия / А.В.

Вишневский, М.Н. Шрейбер // - Москва., Медицина - 1975. – 332 с.

33. Водопьянов, И.Ф. и др. Лечение инфицированных кожно-мышечных

ран у собак с помощью повязки «Сэрэл» / И.Ф. Водопьянов, В.И. Великанов,

А.А. Стекольников, Г.А. Послов // Ж. Ветеринарный врач №5. – 2008. -

С.30-33.

34. Войтенок, Н.К. и др. Действие лазерного излучения на микрофлору ран /

Н.К. Войтенок, В.М. Зильберг, В.В. Лобанов, Ю.С. Довгалев // Ж. Вестник

хирургии им. И.И. Грекова. – Ленинград «Медицина». – 1981. – Т.126. - №4.

С.76-79.

35. Гамелея, Н.Ф. Лазеры в эксперементе и клинике / Н.Ф. Гамелея /

Москва. – 1972. – 78 с.

36. Гамко, Л.Н. соавт. Мазь на коллагеновой основе при лечении ран у

кроликов / Л.Н. Гамко, В.В. Чернок / журнал Ветеринария – Москва – 2. - №3.

– С. 45-47.

37. Гирголав, С.С. Огнестрельная рана.- Л. ,1956.-331с.

38. Гогичаев, А.Э., Бициев, Т.Б. Применение мази аникол для лечения ран в

фазе дегидротации / А.Э. Гогичаев, Т.Б. Бициев // Материалы студенческой

конференции Горского ГАУ «Студенческая наука агропромышленному


39. Гостищев, В.К. и др., Тайная рана и пластическая операция / В.К.

Гостищев, В.И. Струков // I Всесоюзная конференция по ранам и раневой

инфекции. – Москва. Медицина. – 1977. – С. 108-110.

40. Громова, М.М. Применение адаптогенов при лечении хир. патологии у

мелких домашних ж-х / М.М. Громова // Акт. вопр. вет. мед.: матер. Всесоюзн.

н-пр. конфер. – Новосибирск. – 2003. - С. 14-16.

41. Гуменная, Е.Ю. и др. Лечение ран / Е.Ю. Гуменная, К.С. Кадонова // М.:

Практический ветеринарный врач. – 2005. - № 9-10. – С. 80-83.

146

42. Гуменная, Е.Ю. и др. Эффективность коллахита при лечении ран у

мелких дом. ж-х / Е.Ю. Гуменная, К.С. Казакова // Практический

ветеринарный врач. – 2005. - № 7-8. – С. 79-83.

43. Гущин, И.О. и др. О состоянии и перспективах развития

антиаллергических средств / И.О. Гынку, Ф.С. Сараф // М.: Хим.-

фармакология животных. – 1992. – Т.26. - №4. – С. 4-20.

44. Гынку, С.П. Информационные технологии в исследованиях воздействия

энергии КВЧ диапазона в вет. мед. / С.П. Гынку // Материалы всероссийской

научной конференции посвящен. 75 – летию КГТУ им. А.Н. Туполева

«Информационные технологии в науке, образовании и производстве». Казань.

– 2007. – С. 236-238.

45. Гынку, С.П. Информационные технологии в исследованиях воздействия

энергии КВЧ диапазона на водные растворы и их применение в вет. мед. / С.П.

Гынку, М.Ш. Шакуров, Г.А. Морозов // Физика волновых процессов и

радиотехнологические системы. – 2007. - №4. – Т. 10. – С. 56-58.

46. Гынку, С.П. и др. Исследование воздействия энергии КВЧ диапазона на

водные растворы и их применение в хирургической патологии // С.П. Гынку,

М.Ш. Шакуров, Г.А. Морозов // ж. Ветеринарный врач. – Казань. – 2007. - №1.

– С. 30-32.

47. Давыдовский, И. В. Общая патология человека.-2-е изд. -М.: Медицина,

1969.-64 с.

48. Дерябин, И.И. и др. Значение сенсибилизации организма в патогенезе и

клинике инфицированной раны. / И.И. Дерябин, Ю.Г. Шапошников, Е.А.

Решетников // Раневая инфекция в травматологии и ортопедии. Материалы

пленума Всесоюз. науч. общества травматологов ортопедов совмест. С

Всесоюзн. Пробл. комис.) Москва: Медицина. – 1973. – С. 30-35.

49. Джикаева, Р.Т., Чеходариди, Ф.Н. Изучение влияния чистотела на

клинико-гематологический статус и процесс заживления ран у собак / Р.Т.

Джикаева, Ф.Н. Чеходариди // Материалы студенческой конференции

147

Горского ГАУ «Студенческая наука агропромышленному комплексу».

Владикавказ – 2010. – С. 45-46.

50. Долгушин, И.И. Иммунология травмы / И.И. Долгушин, Л.Я. Эберт,

Р.И. Лифишиц // Изд. Уральского университета – Свердловск. – 1989. – 187 с.

51. Зельцера, М.Е., Корытного, Д.Л., Комашко, М.М. // Сб.: Биологическое

действие монохроматического красного света / Алма-Ата – 1967. – 53 с.

52. Зориков П.С. Влияние бархата амурского и солодки уральской на

заживление ран у свиней / П.С. Зориков // ж. Ветеринария. – Москва - 2009. -

№4. - С.47-49.

53. Ивановский, А.А. Влияние гистогена на показатели крови у животных //

ж. Ветеринария – Москва. – 1998. - № 6. – С. 47-49.

54. Ильина Т.М. Особенности роста грануляционной ткани в кожных ранах

леченных коллагеном / Т.М. Ильина // Экспериментально-клинические

аспекты применения биологических полимеров в медицине. – Москва. – 1984.

– С. 11-13.

55. Ильинцкий, Н.Г., Пидборская, Р.В. Эффективность озона при лечении

собак с гнойными ранами / Н.Г. Ильинцкий, Р.В. Пидборская // Ветеринария. –

Москва - 2011. - №12. - С.50-53.

56. Инюшин, В.М., Чекуров, П.Р. Биостимуляция лучом лазера и биоплазма

/ В.М. Инюшин, П.Р. Чекуров // Алма-Ата. – 1975. – 25 с.

57. Калашник, И.А. и др. Практикум по общей и частной хирургии / И.А.

Калашник, Б.Я. Передера, А.Ф. Русинов, И.С. Панько, Л.И. Юрченко //

Агропромиздат. – Москва. – 1988. – 303 с.

58. Калинин, А.П., Левит, А.Д. Современные проблемы аутоиммунного

тиреоидита. // Тез. арх. -1985.-№ 9.-С.137-142.

59. Камаев, М.Ф. Инфицированная рана и её лечение. -М.: Медицина,

1970.-159 с.

60. Кашин, А.С. и др. Оказание хир.помощи собакам / А.С. Кашин, Н.И.

Левченко // ж. Ветеринария – Москва. – 1994. - №3. – С. 50-54.

148

61. Кашин А.С. Хирургические болезни собак, их лечение / А.С. Кашин //

ж. Ветеринария. – Москва. – 1989. - №6. – 57 с.

62. Клемпарская, H.H., Львицина, Г.М., Шальнова, Г.А. Аллергия и

радиация. - М.: Медицина.- 1968.-248с.

63. Климович, П.А. Влияние продигнозана на клинико-иммунологический

статус крс при гнойных воспалениях / Авт. на соиск. уч. степ. к.в.н. – Витебск.

– 1995. – 19 с.

64. Козлов, В.А. Уровни регуляции пролиферативными и

дифференцированными потенциями стволовых кроветворных клеток / В.А.

Козлов // Механизмы регуляции в системе крови. – Красноярск. – 1978. – С.

39-40.

65. Колабская, Л.С. и др. Рекомендации по определению показателей

естественной резистентности / Л.С. Колабская, В.Д. Попова, Е.А.

Макавейская, Т.Д. Колупаева, А.Л. Шорникова // Ленинград. – 1980. – 33 с.

66. Коляков, Я.Е. Ветеринарная иммунология - М.: Агропромиз- дат,

1986-272с.

67. Кондрахин, И.П., Курилов Н.В., Малахов А.Г., Архипов A.B., Белов

А.Д., Беляков И.М., Блинов Н.И., Коробов A.B., Фролова Л.А., Севастьянова

H.A. Клиническая лабораторная диагностика ветеринарии.

-М.:Агропромиздат, 1985.-287с.

68. Концевая, С.Ю.и др. Адаптация мази «Анилкам» к биологии раневого

процесса / С.Ю. Концевая, А.В. Орехова // ж. Ветеринария - № 12. – Москва. –

2010. – С.46-49.

69. Корытный, Д.Л. Биологическое действие лазеров / Д.Л. Коытный //

Киев.- 1969. – 32 с.

70. Корытный, Д.Л. в сб.: О биологическом действии монохроматического

красного света. Алма-Ата, 1967.

71. Кузин, М.И. и др. Иммунология раневой инфекции. Рана и раневая

инфекция / М.И. Кузин, С.М. Белоцкий, В.А. Карлов // Москва: Медицина. –

1981. – 687 с.

149

72. Кузин, М.И. и др. Иммунология раневой инфекции. Рана и раневая

инфекция / М.И. Кузин, С.М. Белоцкий, В.А. Карлов // Под. Редакцией М.И.

Кузина, Б.М. Костюченка. Москва: Медицина. – 1981. – С. 214-236.

73. Кузин, М.И. и др. Принципы активного хирургического лечения

гнойных ран / М.И. Кузин, Б.М. Костюченок // Тезисы Всесоюз. конференции

по ранам и раневой инф. – Москва. – 1977. – С. 96-98.

74. Кузин, М.И. и др. Патогенез раневого процесса / М.И. Кузин, Л.Л.

Шимкевич // 2-е издание. Под редакцией М.И. Кузина. – Москва: Медицина. –

1990. – 592 с.

75. Кузин, М.И. Патогенез раневого процесса / М.И. Кузин, Л.Л. Шимкевич

// М.: Медицина. 2-е издание. Под редакцией М.И. Кузина.– 1990. – 592 с.

76. Курбангалеев, С.Н. и др. Актуальные вопросы гнойной хирургии / С.Н.

Курбангалеев, О.И. Елецкая, А.А. Зыков // Ленинград: Медицина. – 1977. –

311 с.

77. Курбангалеев, С.Н., Елдецкая, О.И и др. Актуальные вопросы гнойной

хирургии / С.Н. Курбангалеев, О.И. Елецкая, А.А. Зыков // Ленинград:

Медицина. – 1977. – С. 311.

78. Ладанова, М. А., Стекольников, А. А. Содержание цинка в сыворотке

крови при специфической язве подошвы. // Вопросы нормативноправового

регулирования в ветеринарии. - 2015. - №2. - С. 405-408.

79. Лебедев, А.В. Незаразные болезни собак и кошек / А.В. Лебедев, С.В.

Страченков, С.Н. Хохрин, Г.Г.Щербаков // СПб: «ГИОРД» 2000. – С.177-178.

80. Лесков, В.П. Структура и функция рецептора для Fс – фермента / В.П.

Лесков // М.: Иммунология – 1981. - № 2. – С. 17-26.

81. Линдер, Д.П. и др. Регуляторы тканевого гомеостаза и их место в ряду

биологических регуляторов // Архангельск. – 1976. - № 8. – С. 3-14.

82. Лозовой, В.П. и др. Структурно-функциональная организация

иммунной системы / В.П. Лозовой, С.М. Щергин // Новосибирск: Наука. –

1981. – 225 с.

150

83. Лукьяновский, В.А. О классификации травматизма с/х животных //

Ветеринария.-1987.-№ 10.-С.47.

84. М.: Медицина, 1975.-31 Ос.

85. Матюшев, П.С. Эффективность гистосероглобина при профилактике

диспепсии и бронхопневмонии телят // Ветеринария.--№ 11.-С.11-13.

86. Машенцева, Д.В. Комплексная терапия экземы у собак // Научные

труды студентов Горского ГАУ «Студенческая наука агропромышленному


87. Мединцев, А.Е., Мещеряков, Ф.А. Действие биостимулятора из

мозговой ткани на регенерацию тканей при открытых повреждениях / А.Е.

Мединцев, Ф.А. Мещеряков // Ветеринария. – Москва - 2009. - №7. - С.48-50.

88. Мельникова, В.М. Основные принципы профилактики и химиотерапии

раневой инфекции у травматологических и ортопедических больных / В.М.

Мельникова // Мат. Пленума Всесоюзно-научного о-ва

травматологов-ортопедов совместно с Всесоюз. Пробл. комис. Москва:

Медицина. – 1973. – С.6-10.

89. Мельникова, В.М. Основные принципы профилактики и химиотерапии

раневой инфекции у травматологических и ортопедических больных / В.М.

Мельникова // Мат. Пленума Всесоюзно-научного о-ва

травматологов-ортопедов совместно с Всесоюз. Пробл. комис. Москва:

Медицина. – 1973. – С.6-10.

90. Молоканов, В.А. Иммунобиологический статус здоровых коров в

разные периоды до и после отела. Актуальные проблемы ветеринарии и

животноводства, подготовки кадров на Южном Урале. / В.А. Молоканов //

Материалы научной конференции. – Челябинск. – 1993 - С.3 7-40.

91. Молоканов В.А., и др. Особенности раневого процесса у крупного

рогатого скота / В.А. Молоканов, М.И. Борашкин, А.Н. Безин // Троицк. - 2004.

260 с.

151

92. Насонов, Е.Л., Сура, В.В. Взаимосвязь аутоиммунной и имму-

нокомплексной патологии: современное состояние, проблемы. // Тер.

арх.-1984.-№ 10-С. 4-10.

93. Насыров, Х.М., Нигматуллин, Т.Г., Мухамадеева, М.Х., Лукманова,

К.А., Слободенюк В.К., Сунагатуллин, Ф.А. Ранозаживляющее действие

эраконда // Загрязненность экологических систем токсикантами и

фармакоклиническая характеристика эраконда / Материалы 1 конференции

Троицкого научного общества фармакологов. – Троицк. - 1994. - С. 44-45.

94. Никитин, В.М. Справочник методов иммунологии / В.М. Никитин //

Кишинев: Штиница. - 1982. - 304 с.

95. Никитин, И.Н. Рыночный спрос на лечение собак, больных незаразными

болезнями / И.Н. Никитин, Е.И. Трофимова // Актуальные проблемы

патологии животных: мат. межд. съезда терапевтов и диагностов. – Барнаул:

Изд. АХАУ. - 2005. – С. 122-124.

96. Новиков, В.С. и др. Иммунофизиология энтеральных состояний / В.С.

Новиков, В.С. Смирнов, А.Н. Березин // Москва: Сельхозиздат. - 1995, - 232с.

97. Новиков, Д.К. Справочник по клинической иммунологии и

аллергологии / Д.К. Новиков // Минск: Беларусь. - 1987. - 223 с.

98. Оливков, Б.М. Лечение инфицированных ран у животных / Б.М.

Оливков // Москва: Сельхозгиз. - 1950. - 232 с.

99. Оливков, Б.М. Лечение инфицированных ран у животных / Б.М.

Оливков // Москва: Сельхозиздат. 1954.- 116 с.

100. Оливков, Б.М. Общая хирургия домашних животных - М.:

Сельхозиздат, 1954.-455с.

101. Островский, Н.С., Мажуга, Е.П. О качестве хирургической обработки

ран конечностей // Ветеринария-1974.-№ lO.-c.l 10.

102. Павлова, М.К., Душкина, К.А. Лечение инфицированных

воспалившихся ран у собак / М.К. Павлова, К.А. Душкина // Материалы

студенческой конференции Горского ГАУ «Студенческая наука

агропромышленному комплексу». Владикавказ – 2011. – С. 100-101.

152

103. Персаева, Н.С. Этиопатогенетическая терапия воспалительных

процессов у собак // Известия Горского государственного университета. Т.52,

ч.1, Владикавказ, 2015. – С. 101-107.

104. Петров, Р.В. Иммунология.-М.:Медицина,1983.-368с.

105. Петров, Р.В., Орадовская И.В. Эпидемиология иммунодефицитов. /

ВНИИМИ. Сер. Мед. генетика и иммунология.- М., 1988.-С.3.

106. Петухов, В.В. и др. Качество мяса свиней с хирургической патологией /

В.В. Петухов, В.А. Черванев, Л.П. Трояновская, Н.М. Алтухов // Акт.проб.

вет.хир. / Мат. межд.конф., посв. 70-летию каф. хирургии. – Воронеж. - 1999. -

С.24- 25.

107. Плахотин, М.В. и др. Общая ветеринарная хирургия / М.В. Плахотин

А.В. Есютин А.Д. Белов // Москва: Колос, 1981. - 415 с.

108. Плахотин, М.В. и др. Открытые механические повреждения (раны).

Общая ветеринарная хирургия / А.Д. Белов, М.В. Плахотин, Б.А. Башкиров //

под ред. А.Д.Белова, В.А. Лукьяновского. Москва: Агропромиздат. - 1990. -

592с.

109. Плахотин, М.В. Справочник по ветеринарной хирургии / М.В. Плахотин

// - Москва: Колос. - 1977.-256 с.

110. Плахотин, М.В. Общая ветеринарная хирургия / М.В. Плахотин, А.Д.,

Белов, A.B. Есютин, П.Ф. Терехов, С.Т. Шитов, В.А. Лукьяновский, К.А.

Липовский // М.: Колос, 1981. - 415с.

111. Плахотин, М.В. Эффективность ультрозвуковой терапии и фонофареза

гидрокортизона / М.В. Плахотин, М.С. Борисов, В.Б. Акопян // Москва. Ж.

Ветеринария № 10. – 1980. – С.52-53.

112. Плахотин, М.В. и др. Ультразвук и перспективы его применения в

ветеринарии / М.В. Плахотин, Т.С. Борисов, В.А. Лукьяновский // ж.

Ветеринария. – Москва. - 1977. - №5. – 32 с.

113. Плахотин, М.В и др. Современное состояние вопроса о лечении ран у

сельскохозяйственных животных / М.В. Плахотин, А.Н. Голиков // журнал

Ветеринария. – Москва - 1959. – №2. – С.21-22.

153

114. Пол, У. (Poul E.) Иммунология: Пер. с англ.-М.: Мир, 1987.- Т.1,2.

115. Полянцев, Н.И. Пастбищный травматизм пальцев и лечебная помощь

при травмах, осложненных панарицием / Н.И. Полянцев // Ветеринария. –

Москва - 2009. - №11. - С.41-45.

116. Попова, Л.Н. Как изменяются границы вновь образующегося

эпидермиса при заживлении ран. / Автореферат диссертации на соискание

ученой степени канд. вет. наук. – Воронеж - 1942.-18 с.

117. Послов, Г.А. Новое в вопросах десмургии при лечении ран / Г.А.

Послов, И.Ф. Водопьянов // Предпосылки и эксперименты в науке. Материалы

III научно-практической конференции аспирантов и соискателей. – СПБ, 2005.

–С.47-48.

118. Послов, Г.А. и др. Применение пенополиуретановых композиций для

лечения ран у животных (в эксперименте) / Г.А. Послов, И.Ф. Водопьянов //

XIII Межд. конф. по бол. мел. дом. ж-х. - 2003 – С. 31-33

119. Родомин, Г.В. и др. Профилактика нагноения операционных ран в

эксперименте / Г.В. Родомин, Н.Ш. Султанов, А.А. Хрупалов, Д.В.

Ликопатников // М.: Клиническая хирургия. -1991. -№1. –С.16-18.

120. Рубленко, М.В. Применение изатизона в хирургии // Ветеринария.

-1998.-№ 5.-С.42-45.

121. Рычков, Ю.Г. Физиологическая генетика человека в проблеме

заживления ран / Ю.Г. Рычков, Ю.Г.Шапошников, Е.А. Решетников, И.Е.

Кондратьева, О.В. Шупова // Москва: Наука.- 1985.-184с.

122. Сапожников, А.В. Актуальность применения светодиодного излучения

красного диапазона в ветеринарии / А.В. Сапожников // Акт. проб. вет. и

зоотех. в XXI веке. Сб. науч. тр. - Самара, 2004.-С. 106-107.

123. Сапожников, А.В. и др. Алгоритм цитологического исследования при

лечении кожно-мышечных ран у собак / А.В. Сапожников, В.А. Ермолаев //

Акт. проб. диаг., тер. и проф. бол. дом. ж-х: Мат. Межд. науч.-практ. Конф.,

посв. 80-летию ф-та вет. мед. ФГОУ ВПО «Воронежский ГАУ им. К.Д.

Глинки». – Воронеж. - 2006. - С. 253-255.

154

124. Сапожников, А.В. и др. Изучение влияния светодиодного излучения

красного диапазона на морфологические показатели крови, при лечении

кожно-мышечных ран у собак / А.В. Сапожников, В.А. Ермолаев // Сов. разв.

АПК: рег-ный опыт, пробл., перспективы: мат. Всерос. н-пр.. конф. –

Ульяновск. - 2005. – Ч. 4-5. -С. 304-306.

125. Сапожников, А.В. и др. Клинико-морфологические показатели крови

при лечении ран светодиодным излучением красного диапазона /А.В.

Сапожников, И.С. Сухина, В.А. Ермолаев // Молод и наука XXI в.: мат. II-й

открытой Всерос н-пр конф. мол. уч. - Ульяновск. – 2007, Ч. 1. - С. 148-151.

126. Сапожников, А.В. и др. Светодиодное излучение красного диапазона

как первостепенный физиотерапевтический метод лечения в ветеринарии /

А.В. Сапожников // Наука сельскому производству и оборудованию. Мат.

межд. н.-пр. конф., посв. 30-летию со дня основ. ФГОУ ВПО "Смоленский

сельскохозяйственный институт". – Смоленск, 2004. –Т. 1. –С.288-289.

127. Сапожников, А.В. и др. Эффективность применения светодиодного

излучения красного диапазона при лечении ран у собак / А.В. Сапожников,

В.А. Ермолаев // Молодёжь и наука XXI в. мат. II-й открытой Всерос. н.-пр.

конф. и мол. уч.. — Ульяновск, 2007. -Ч.1.-С. 151-152

128. Сапожников, А.В. и др. Морфофункциональная характеристика

раневого процесса у собак при лечении инфицированных кожно-мышечных

ран светодиодным излучением красного диапазона / А.П. Сапожников, В.А.

Ермолаев // Уч.записки КГАВМ им. Н.Э. Баумана - Казань, 2006. –Т. 187. – С.

129-135.

129. Саркисов, Д.С. Синтез РНК при активации нейтрофила / Д.С. Саркисов,

A.A. Пальцин, И.И.Колкер // Арх. пат.-1986.-№ 12.-С.6-13.

130. Световидова, В.М. Раневая микрофлора и ее чувствительность к

антибиотикам. // Хирургия - 1959.-N« 4.-С.39-46.

131. Светухин, А.М. Внутриартериальная инфузия лекарственных веществ в

комплексном лечении больных хроническим остеомиелитом. Диссертация

кандидатская мед. наук. М.: 1974.- С.82-115.

155

132. Светухин, А.М. Внутриартериальная инфузия лекарственных веществ в

комплексном лечении больных хроническим остеомиелитом. Диссертация

кандидатская мед. наук. М.: 1974.- С.82-115.

133. Светухин, А.М. Ключевые вопросы патогенеза сепсиса / А.М. Светухин,

В.А. Карлов, А.О. Жуков, Е.В. Гуцу, Е.С. Диковская // Хирургия. -1992.-№

7-8.-С.8-13.

134. Семенов, Б.С. и др. Активность системы гемостаза при

стафилококковой инфекции у крупного рогатого скота / Б.С. Семенов, В.А.

Ермолаев // Мат. н.-произ.. конф.. – СПБ, 1998. –Ч.1. –С.75.

135. Семенов, Б.С. и др. Показатели фибринолитической активности у

крупного рогатого скота / Б.С. Семенов, А.Т. Вашевоз // Сб. н. тр. ЯВИ. -1990.

-№105. –С.139-141

136. Семенов, Б.С. и др. Применение ферментных препаратов в хирургии /

Б.С Семенов B.C. Пономарев В.М. Прошкин // Проблемы хир. пат. с/х ж.: тез.

докл. Всесоюз. науч. конф. - Белая Церковь, 1991.-С. 22-23.

137. Семенов, Б.С. и др. Профилактика травматизма бычков в условиях

откормочных и фермерских хозяйств / Б.С. Семенов, A.B. Лебедев, И.А.

Подмогин // Акт. проб. вет. хир. / Мат. межд. конф., посв.. 70-летию каф.

хирургии.- Воронеж, 1999-С. 119-121.

138. Серов, В.В. Иммунопатология. //Общая патология человека

(руководство для врачей) /Под ред. А.И.Струкова, В.В. Серова, Д.С.

Саркисова. - 2-е изд.- М.: Медицина, 1990.-Т.2.-С.74- 107.

139. Сидорина, Т.З. Патогенетическая терапия инфицированных

воспалившихся ран у животных / Т.З. Сидорина // Научные труды студентов

Горского ГАУ «Студенческая наука агропромышленному комплексу».

Владикавказ – 2014. – С. 108-109.

140. Стекольников, А. А. Анализ основных статистических параметров при

изучении динамики тиреоидных гормонов у коров продуктивного стада / А.А.

Стекольников, С.В.Васильева, М.А Ладанова. // Вопросы

156

нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2015. - №3. - С.

238-240.

141. Струков, А.И. Механизмы иммунного воспаления. // Вест. АМН

СССР.-1979.-№ 11.-С.76-85.

142. Струков, А.И. Некоторые современные аспекты учения о воспалении /

А.И. Стручков // В кн.: XXIV конгр. Межд. о-ва хир-в. М.: 1971,Т.1-С.40-50.

143. Струков, А.И. О процессах заживления ран / А.И. Стручков // В кн.:

XXIX Всесоюз. съезд хирургов (Тез. докл.). Киев. - 1974.-С.4-7.

144. Струков, А.И., Грицман, А.Ю. Иммунное воспаление // Итоги науки и

техники.-М., ВИНИТИ.-1978.-Т. 1 .-С.6-54.

145. Струков, А.И., Кауфман, О.Я. Гранулематозное воспаление и

гранулематозные болезни / А.И. Струков, О.Я. Кауфман // Москва: Медицина.

– 1989. - С.25-42.

146. Стручков, В.И. Гнойная инфекция в хирургии (Состояние вопроса и

очередные задачи) / В.И. Стручков // Хирургия.-1981.-№ 12.-С.12-16.

147. Стручков, В.И. и др. Основные проблемы лечения ран.-В кн.: Тр. XXIX

Всесоюз. съезда хирургов,- Киев: Здоровье, 1975.-С.59-

148. Стручков, В.И. Иммунология в профилактике и лечении гнойных

хирургических заболеваний / В.И. Стручков, К.Н. Прозоровская, Л.М.

Недвецкая // Москва., 1987.-270с.

149. Сунагатуллин, Ф.А. Влияние эраконда на иммунологический статус

коров / Ф.А. Сунагатуллин // Ветеринария,-1996.-№ 11.-С.43-45.

150. Тарасенко, П.А Морфология заживления операционных ран у собак

ушитых разным шовным материалом / П.А. Тарасенко В.А. Черванев Л.П.

Трояновская // Здоровье разведение и защита мел. дом. ж-х: Сб. н. тр. по мат.

2-й межд. конф. – Уфа, 2001. - С. 113-116.

151. Тимофеев, С.В. Применение мази «Анилкам» при лечении ран у

животных / С.В. Тимофеев, Ю.И. Филиппов, А.Н. Концевая // Ветеринария. –

Москва - 2009. - №10. - С.48-49.

157

152. Уколов, П.И. Анализ роли наследственности в предрасположенности к

образованию язвы Рустергольца у черно-пестрых коров в ЗАО «Племхоз им.

Тельмана». / П.И. Уколов, О. Г. Шараськина, М. А. Ладанова // Вопросы

нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2015. - №3,-С. 204-206.

153. Хитров, Н.К. Нервная трофика и воспаление,- В кн.: Воспаление.

Руководство для врачей. - М.: Медицина, 1995.-С.278.

154. Хромов, Б.М., Короткевич, Н.С. Новые данные о применении лазеров в

хирургии / Б.М. Хромов, Н.С. Короткевич // М. Медицина. Ж. Хирургия им.

Н.И. Пирогова. – 1974. -№ 9. – С.134-139.

155. Чекуров, П.Р., Июшин, В.М., Мардиросян, Н.Н., Шуйский Н.Н . Свет

гелий-неоновых лазеров в биологии и медицине / П.Р. Чекуров, В.М. Июшин,

Н.Н. Мардиросян, Н.Н.Шуйский // Алма-Ата, 1970 – 44 с.

156. Чернушенко, Е.Ф. Механизмы формирования и биологическая роль

аутоиммунизации / Чернушенко, Е.Ф., Когосова, JI.C. // В кн.: Аутоиммунные

процессы и их роль в клинике внут. бол. - Киев.: Здоровье,1985.-С. 87-92.

157. Чеходариди, Ф.Н. Патогенетическая терапия инфицированных

воспалившихся ран у крупного рогатого скота / Ф.Н. Чеходариди, С.Г.

Гадзаонов, М.С. Гугкаева // Вестник ветеринарии. – Ставрополь. - 2008. - №46.

– 2006. – С.45-48.

158. Чеходариди, Ф.Н., Бициев, Т.Т. Комплексная терапия случайных

инфицированных ран у телят / Ф.Н. Чеходариди, Т.Т. Бициев // Ж. Вестник

научных трудов молодых ученных ФГБОУ ВПО «Горский ГАУ». Выпуск 48.

– 2011. – С.28-30.

159. Чеходариди, Ф.Н. Сравнительная эффективность лечения случайных

инфицированных ран у собак / Ф.Н. Чеходариди, Т.Т. Бициев // Перспективы

развития АПК в современных условиях. 1-я межд. науч.-практ. конф. 20-22

мая 2010 г. ФГБОУ ВПО «Горский ГАУ» - Владикавказ. – 2010. – С.12-16.

160. Чеходариди, Ф.Н. Патогенетическая терапия у собак / Ф.Н. Чеходариди,

С.Г. Гадзаонов, М.С. Гугкаева // Мат. межд. н.-практ. конф. «Научное

обеспечение устойчивого развития агропромышленного комплекса горных и

158

предгорных территорий» посвящен. 90-летию ГГАУ 21-22 октября 2008 г. –

Владикавказ. - С. 332-334.

161. Чеходариди, Ф.Н., Коротков, А.В., Персаев, Ч.Р. Квантовая терапия

гнойного артрита у собак // ж. Известия Горского государственного

университета – Владикавказ - Т.49, ч.3, Владикавказ, 2012. – С. 227-231.

162. Чеходариди, Ф.Н., Персаева, Н.С., Гугкаева, М.С. Применение

магнитно-инфрактасно-лазерного излучения при травмах брюшной стенки и

тканей живота у собак // Известия Горского государственного университета -

Т.52, ч.2, Владикавказ, 2015. – С. 107-110.

163. Шакирова, Т.М., Бурнашева, З.В. // Сб.: Свет гелий-неоновых лазеров в

биологии и медицине. - Алма-Ата - 1970 – 44 с.

164. Шакуров, М.Ш. Новокаиновые блокады при лечении ран у животных /

М.Ш. Шакуров // Респуб.научн. конф. по проблемам ветеринарии. – Казань,

-1978. –С.139-140.

165. Шапошников, Ю.Г., Кондратьева, И.Е. Иммунобиологические факторы

заживления ран // Хирургия.-1981-№ 5-С.25-28.

166. Шапошников, Ю.Г. Клинико-биологические аспекты течения раневого

процесса / Ю.Г. Шапошников, Е.А. Решетников, И.Е. Кондратьева // В кн:

Труды XXIX Всесоюз. съезда хирургов. Киев: Здоровье. - 1975. С.23-28.

167. Шлапоберский, В.Я. Побочные действия и осложнения при применении

антибиотиков //Хирургия.-1957.-№ 12.-С.93-106.

168. Щур, В.В. Применение квантового генератора (лазера) при лечении ран /

В.В. Щур, Н.С.Макеева, А.А.Аренберг, М.В. Гольц // Ж. Вестник хирургии

им. И.И. Грекова. – Ленинград «Медицина». – 1972. – № 6. – Т. 108. - С.85-90.

169. Ahmed, I Н. The effect of some medicinal plant extracts on wound healing in

farm animals / I.H. Ahmed, M.A. Awad, M. el-Mahdy et al. // Assiut veter Med J

-1995.- Vol. 32, N64. -P. 236-244.

170. Ames, A. Asessment of equine wounds. Pt. 1. / A. Ames et al // Equine veter

Educat. - 1995. - Vol. 7, N 3. - P. 145-151.

159

171. Amyes S.G.B. The incidence of antibiotic resistance in aerobicfaecal flora in

South Jndia. // J. Antimicrob. Chemother. 1999.- N29.- P. 415-425.

172. Annont, F. Bacterial growth in ulcers at the lower extremity and its sensitivity

to antibiotics / F. Annont, M. Rosina, F. Perroni et al. // Vase. Surg - 1989. - Vol 23,

N 3. - P. 161-167.

173. Anrep, G.K., Barsoum, G., Talaat, M.J. Physiol. (Lond.), 1953, 120,3,419.

174. Anstead G. M. Steroids, retinoids and Wound healing // Advances in Wound

Care.-2001.-Vol. 11, №6.-P.277-285

175. Appelbaum P.C. Comparative susceptibility profile of piperacillin /

tazobactam aganist anaerobic bacteria / P.C. Appelbaum // J. Antimicrob

Chemother. -1999. - Vol. 31, Suppl. A. -P. 29-38.

176. Argenta L.C. Morykwas M.S. Vacuum assisted closure: a new methodfor

wound control and treatment: clinical experience // Annals of-PlasticSurg.

1997,-Vol. 38, №6. - P. 563- 576.

177. Aron, D.N. Management of open musculoskeletal injuries / D.N. Aron //

Seminars in veter. Med. Surg, (small anim.). - 1988. - Vol. 3, N 4. - P 290-301.

178. Basse P.N., Lohmann M., Alsbjom B.F. Splif skin grafting of defects from

fasciotomy after compartment syndrome // Acta orthopaed. belg. -1993.-Vol 59, N1.

P. 55-59.

179. Bitar M.S. Glucocorticoid dynamics and impaired wound healing in diabetes

mellitis. // J. Pathol.- 1998.-Vol. 152,№2.-P.547-554.

180. Bitar M.S. Glucocorticoid dynamics and impaired wound healing in diabetes

mellitis. // J. Pathol.- 1998.-Vol. 152,№2.-P.547-554.

181. Boulard G. Les infections nosocomiales en reanimation. // Ann. franc.

Anesth. Reanim.-2002.-Vol.8, N3.-P.155-157.

182. Boulard G. Les infections nosocomiales en reanimation. // Ann. franc.

Anesth. Reanim.-2002.-Vol.8, N3.-P.155-157.

183. Brasseur T. Proprietees anti in flammatoires de flavonoids // J. Pharm, belg. -

1999. Vol.44, N3.-235-241.

160

184. Braun M. Fünf Jahre Infektions statistik an einer Orthopadishen Klinik

-Keimspektrum, Resistenz läge, thrapentische Kousequenzen // Z. Orthopäd. 2000.-

Bd. 127, N4. - S. 471-473.

185. Cottrup F. Management of severe incisional abscesses following laparotomy//

Areh. Surg. 2003.-Vol. 124, N 6. - P. 702-704.

186. Craps, L. Inderbitzin beiges dermatol et syphiligr., 1957.-13, 2. 113

187. Czuwaj, M. Brzezinka-Blaszczyk E., Wyczolkovska J. Histaminereleasing

properties of guinea pig cardiac mast cells. //Arch, immunol. et ther.

exp.-1988.-V.36.-№ 5.-P.639 -644.

188. Czuwaj, M. Brzezinka-Blaszczyk E., Wyczolkovska J. Histaminereleasing

properties of guinea pig cardiac mast cells. //Arch, immunol. et ther.

exp.-1988.-V.36.-№ 5.-P.639 -644.

189. Davis, I. D: An overview of cancer immunotherapy / I. D. Davis //

Immunology and Cell Biology. 2000. - V. 78. - № 3. - P. 179-195.

190. Di Rosa M. Prostaglandins as modulators of the inflammatory response. //

Atti Fondaz G.Ronchi.-1978.-V.33.-№ 6.-P.938-

191. Fidalgo S. Bacteremia due to Staphylococcus epidermidis ¡Microbiologic,

epidemiologic, clinical, and prognosis features // Rev. infect. Dis. 1999. - Vol. 12, N

3.- P. 520-528.

192. Goshi, V.R., Sigueira, R.D. Antinualear antibodies.-Y.Christ. Med. Assoc.

India, 1985,-V.63.-№ u3.- P.214-217.

193. Graham, H.T., Lowry, O.H., WahlN., Priebat M.K.J. exp. Med.,

1955.-102.-3.-207

194. Guzmann Valdivia Gomez G. Effectiveness of collagen gen-tamicin implant

for treatment of1 dirty "abdominal wounds // Wid. J. Surg. -2003. - Vol. 23,№2. - P

. 123-126.

195. Hebert, J., Beaudoin, R., Aubin, M. The regulatory effect of histamine on the

immune response: characterization of the cells involved. II Cell.Immunol.-1980.-№

1.-V.54.-P.49-57.

161

196. Horn D.B. Choosing the optimal wound dressing irradiated soft tissue

wounds// Otolaryngol. Hedd Neck. Surg. 1999.- Vol. 121. №5.-P. 591-598.

197. Ito Takeo, Kavaai Masao. Nihon Univ.J.Med.,1959.-1.-2.-185

198. Jchikawa, T., Shimada, T., Kessoku, N., Kluoi, M. Inhibition of rat mast cell

decranulation and histamine release by hista- minerat gammaglobulin conjugate //

Int. Arch. Allergy and Appl. Jmmunol.-1979.-59.4-P.403-407.

199. Johnson J.A. Delayed primary closure after sternal wound infection// Ann.

thorac. Med.- 2003.- Vol. 47,№2 -P. 270-273.

200. Laabs W.A., Kommerling E., Hau T. The effect of povidone-iodine (PVP 1)

and adhesive plastic drapes (APD) on the skin flora before and after clean

orthopedic procedure//The 33-d Wold Congres of surgery.1. V.I 1999. -P. 109-109.

201. Lamarche, M., Demange, J.M. Compt. Rend. Soc. Biol.,1956.- 150.-7.-1427.

202. Limón L. Ciprofloxacin: A fluoroquinolone antimicrobial. Part 2 / L. Limon

//Amer. Pharm. 2003.- Vol. 29, N 7. - P. 60-30.

203. Maskay, I. The nature of autoimmune disease.-In.: Autoimmunity and

autoimmune disease/Ed.by Evered P.,Whelan J.Chiejester etc., 1987.-P.177-193.

204. Mendez Eastman S. Negative Pressure Wound Therapy // Plastic Surg.

Nursing. - 1998.- Vol.18,N1. - P. 27-29; 33-37.

205. Olsou M. Surgical wound infections A 5 year prospective study of 20, 193

wound at the Minneapolis VA medical center //Ann. Surg. -1999.-VoL 199, N3.-P.

253-259.

206. Parwaresch, M.R., Homy, H.P., Lennert, K. Tissue mast cells in health and

diseasa. // Path. Res.Pract.-1985.-V.179.-P.439-461.

207. Patzakis M. J., Wilkins J. Factors influencing infection rate in open fracture

wounds I I Clin. Orthopaed. 2003. - Vol. 243, N6.-P. 36-40.

208. Peacock, E.E. Biological frontiers in the control of nealing. //

Amer.J.Sung.-1973.-Vol. 126.-№ 6.-P.708-713.

209. Plaut, M., Lichtenstein L.M., Henney C.S. Increase in histamine receptors on

thymus-derived effector lymphocytes during the primary immune responce

alloantiges //"Nature.-1973.-№ 244.- P.284-287.

162

210. Postlethwaite, A.E., Kang A.H. Fibroblast. // Inflammation basic principles

and clinical correlates./ Ed.J.Gallin.-N.Y.:Raven Press,1988.-P.577-597.

211. Raekallio, J. Enzyme histochemistry of wound healig. - Stuttgart:

Fischer,1970.-187 p.

212. Rilling S. 30 years of ozone-oxygen therapy a historical perspective. Ozone in

medicine. Proceedings Eleventh Ozone World Congress. San Francisco. 2000; 1-14.

213. Rodolico G. Short term antimicrobial prophylaxis in surgery // Eur. Surg. Res.

- 2001. -Vol. 21, N Suppl. 1.-P.1-5.

214. Rose, N.R. The autoimmune diseases. // Reticuloendotel. Syst.: Compr.

Treatise.: Immunopathol., New York, London, 1983.- V.4.- P.353-369.

215. Rosengard, B.R., Mahalik, C., Cochrane, D.E. Mast cell secretion:

Differences between immunologic and non- immunologic stimulation. // Agens and

Actions.-1986.-V. 19.-№ 3-4.-P.133-140.

216. Stadelmann W.K. Impediments to wound healing // Am. J. Sury. -1998.- Vol.

176 (2A Suppl). P. 395-475.

217. Stock, K., Westermann T.O.J. Lipid Res., 1963.-4.-3.-297.

218. Tasaka, K., Chung G.H., Sawada K.,M:oM Excitatory effect of histamine on

the arousal system and its inhibition by Eh blockers. //Brain. Bes.

Bull.-1989.-V.22.-№ 2.-P.271-275.

219. Tasaka, K., Chung G.H., Sawada K.,M:oM Excitatory effect of histamine on

the arousal system and its inhibition by Eh blockers. //Brain. Bes.

Bull.-1989.-V.22.-№ 2.-P.271-275.

220. Theofilopolos, A.N., Dixon F.D. The biology and detection of immune

complexes. // Advances in immunologoy. / Ed.F.D.Dixon, New

York,1979.-V.28.-P.89-220.

221. Tiller F. W. Microbiologische Früh - und Schnelldiagnostik -Perspektiven

und Probleme // Z. Klin. Med.-1999.-Bd. 44, N12. - S.1055-1057.

222. Tsybin, J.N. Immunoreabilitation in severe trauma and surgery sepsis with the

Roncoleukin (human interleukin-2 from yeast) / J.N.Tsybin, M.N.Tarelkina, M.I.

Gromov // Intern. J. Immunorehabilitation. 2000. - № 1, suppl. - P. 359-360.

163

223. Verravw G., Coppola L., Luongo C. et al. Hyperbaric oxygen, oxygen-ozone

therapy and rheologic parameters of blood in patients with peripheral occlusive

arterial disease. Undersea and Hyperbaric Medicine 1995:22:1: 17-22.

224. Weber, H.G. – Arch. Klin. Chir., 1969, Bd 325, S/ 740-746.

225. Асаг J.E. Susceptibility survey of piperacillin alone and in the presence of

tazobactam. // J. Antimicrob. Chemother. 2003.- Vol. 31, Suppl. A. - P. 23-28.

226. Векетеіег, H., Hirscheimann, R. Systemievhe Modulation der Entzündung //

Z. klin. Med.-1987.-Bd.42, № 10-S.839-846.

КОМПЛЕКСНАЯ ТЕРАПИЯ ГНОЙНЫХ ...

Documents