ANALIZADORES HEMATOLÓGICOS AUTOMATIZADOS Casos clínicos SYSMEX CORPORATION XE-2100 Supervi sado por: Depa rtment of Clini c al and Laboratory Medicine, Osaka City University Medi c al School Professor Noriyuki Tatsumi, MD Editado por : Depa rtment of Clini c al Hematolog y, Osaka City University Medi c al School Takahisa Yamane, MD Traducido al español por : Sysmex Latinoamérica Oficina repr esen tativa en Miami Department of Central Clinical Laboratory, Osaka City University Hospital Hiroshi Kubota, MT
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ANALIZADORESHEMATOLÓGICOSAUTOMATIZADOS
Casos clínicos
SYSMEX CORPORATION
XE-2100
Supervisado por:
Department of Clinic al and Laboratory Medicine, Osaka City University Medic al SchoolProfessor Noriyuki Tatsumi, MD
Editado por:
Department of Clinic al Hematology ,Osaka City University Medic al SchoolTakahisa Yamane, MD
Traducido al español por:
Sysmex LatinoaméricaOficina representativa en Miami
Department of Central Clinical Laboratory,Osaka City University HospitalHiroshi Kubota, MT
INDICE
Introducción 3
Parámetros de análisis y esquema del proceso de medición 4
Ejemplo de una muestra normal 5
Patrones anormales 6
Lista de mensajes interpretativos 8
Pantalla de resultados y su interpretación 9
Ejemplos de leucocitosis 11
Casos de células inmaduras de tipo mieloide 17
Casos de células inmaduras de tipo linfoide 31
Cambios de resultados durante la terapia 43
Casos de células de apariencia específica 51
´
3
INTRODUCCION
LA IMPORTANCIA DE OBSERVAR EL MATERIAL CON INTELIGENCIA
La tinción Giemsa se emplea desde hace más de 100 años. Incluso ya podíamos ver impresionesclaras y nítidas de células sanguíneas, incluyendo neutrófilos y eosinófilos, en el Diario de laAcademia de Tokio, Japón (Journal of the Tokio, Japan Academy), del 15 de junio de 1885 (Era deMeiji). En estas impresiones notamos la gran minuciosidad con que nuestros predecesoresrepresentaron células sanguíneas, utilizando al máximo los microscopios de baja resolucióndisponibles en ese tiempo. Eso me lleva a pensar en el gran progreso que han alcanzado en elanálisis de la sangre las clínicas contemporáneas en relación con esa época.
Afortunadamente, la tecnología utilizada en los contadores hematológicos se ha desarrollado atal punto que ahora podemos obtener un diferencial leucocitario en uno o dos minutos con unospocos microlitros de muestra de sangre. Los analizadores actuales no solamente nos ofrecen elconteo del diferencial sino también el conteo absoluto, así como dispersogramas de leucocitosen los cuales las células son distribuidas de acuerdo con sus características ópticas, con la ventajade que los resultados son mostrados al instante. En leucocitos normales, el análisis automatizadosupera ampliamente en precisión y exactitud al análisis manual. En muestras patológicas, eldispersograma aparece con mensajes o avisos de alerta que sugiere el tipo de anormalidadpresente; por lo tanto, el análisis microscópico puede realizarse sobre la base de los mensajes oavisos generados por el dispersograma. Esto genera un gran ahorro de tiempo y costos.
Hace poco estuve en un curso sobre exámenes de sangre. Para mi sorpresa, muchos encargadosdel examen microscópico de muestras están habituados al uso de analizadores automatizados,aunque existe al mismo tiempo una tendencia a realizar una observación más superficial en elanálisis morfológico y una menos confiable técnica manual para PT en los exámenes decoagulación. Esto parece constituir una influencia negativa del análisis automático, pues existe elriesgo de depositar excesiva confianza solamente en la impresión de los resultados del contadorautomático.
A diferencia de la Era de Meiji, con los impresionantes cambios ocurridos en el sistema médicoen general, nosotros nos vemos forzados a obtener y evaluar, en el laboratorio, los valoresnecesarios para el diagnóstico de múltiples muestras y parámetros en un corto lapso de tiempo.Los analizadores actuales, construidos sobre una base de software de alta tecnología, nospermiten no sólo obtener sino también manipular y procesar cantidades enormes de resultados.Sin embargo, es difícil establecer si toda la información generada retorna al médico. Por ejemplo,a pesar de que la información numérica -que incluye el conteo completo de células o hemogramay el diferencial de leucocitos- es transferida por sistema de cómputo a los médicos, pocoslaboratorios transfieren los dispersogramas y los mensajes o señales de avisos a los médicos. Sepresta poca atención a la variedad de información que tienen estos analizadores -que incluyedatos básicos del análisis microscópico-, aun cuando a la luz de su utilidad clínica deberían serusados activamente. Tener la mente y la vista entrenados es indispensable para obtener elmáximo provecho de esta información cuando se examina la sangre.
Espero sinceramente que este compendio les resulte útil, si bien es sólo una mínima parte delesfuerzo diario de los laboratorios de estudio hematológico.
Agosto, 1999
Noriyuki Tatsumi Profesor,Departamento de Clínica y Laboratorio Médico,Escuela de Medicina de la Universidad de Osaka, Osaka (Japón)
´
Parámetros de análisis y esquema del proceso de medición
4
* Las equivalencias figuran en la página 7.
WBC IP Message(s) RBC/ RET IP Message(s) PLT IP Message(s)
(1) Resultados del análisis. (2) Dispersograma del diferencial (DIFF). (3) Dispersograma de leucoci-tos y basófilos (WBC/BASO). (4) Dispersograma de células mieloides inmaduras (IMI). (5) Dis-persograma de eritrocitos nucleados (NRBC). (6) Dispersograma de reticulocitos (RET). (7) Dis-persograma de plaquetas ópticas (PLT-O). (8) Histograma de hematíes o eritrocitos (RBC). (9) His-tograma de plaquetas (PLT). (10) Sistema de avisos interpretativos de leucocitos (WBC). (11) Sistemade avisos interpretativos de hematíes y reticulocitos (RBC, RET). (12) Sistema de avisos interpre-tativos de plaquetas (PLT).
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Patrones anormales
GhostGhost
FragmentFragment
WBC FragmentWBC Fragment
WBC FragmentWBC Fragment
Dispersión lateralFluorescencia
Fluorescencia
Corriente Directa (CD)Dispersión lateral
Dispersión frontal
Dispersión frontal Dispersión frontal
Dispersión frontal
Radiofrecuencia (RF)
Fluorescencia
Fluorescencia
*Las equivalencias figuran en la página 7
7
Blastos (Blasts)En el dispersograma DIFF, los blastos aparecen en el área indicada como Blasts/Atypical Lympho.En el dispersograma IMI, los blastos aparecen en el área indicada como Blasts. Por la acción de los lisantes,los blastos son reducidos a la mitad o a un tercio de su tamaño. Debido a que los blastos poseen un núcleocondensado, desigual y sólo un pequeño número de gránulos inmaduros, son las células de menor densidad.
Gránulos inmaduros (Immature Gran)En el dispersograma DIFF, los gránulos inmaduros aparecen en el área indicada como Immature Gran.En el dispersograma IMI, los gránulos inmaduros aparecen en el área indicada como Immature Gran. Asícomo los blastos, los gránulos inmaduros son reducidos a la mitad o a un tercio de su tamaño por la acciónde los lisantes. Asi mismo, por su grado de madurez nuclear y su volumen granular, la densidad de los grá-nulos inmaduros es mayor que la de los blastos.
Desvío izquierdo (Left Shift)En el dispersograma DIFF, las bandas aparecen en el área indicada como Left Shift.En el dispersograma IMI, las bandas aparecen en el área indicada como Left Shift.
Linfocitos atípicos (Atypical Lympho)En el dispersograma DIFF, los linfocitos atípicos aparecen en el área indicada como Blasts/Atypical Lympho.En esa área aparecen linfocitos atípicos y blastos.
Linfocitos anormales/L-Blastos (Abn Lympho/L-Blasts)Cuando aparecen linfocitos atípicos o anormales en el área indicada como Blasts/Atypical Lympho en eldisperosograma DIFF, monitorear con la información del dispersograma IMI.
Hematíes nucleados (NRBC) En el dispersograma NRBC, los hematíes nucleados aparecen en el área indicada como NRBC.En el dispersograma DIFF, los hematíes nucleados aparecen en el área indicada como NRBC.
Aglutinación de plaquetas (PLT Clumps) En el dispersograma IMI, la aglutinación de plaquetas aparece en el área indicada como PLT Clumps. Debidoa que las plaquetas mantienen su forma en el reactivo lisante, aparecen entre el área de los fantasmas (ghost)de hematíes y el área de PLT Clumps.Las aglutinaciones plaquetarias aparecen en el área comprendida entre el área de los fantasmas y el área deneutrófilos.En el dispersograma NRBC también aparecen aglutinaciones plaquetarias en el área indicada comoPLT Clumps.
GLOSARIO DE PARÁMETROS
WBC: LeucocitosBaso%: Porcentaje de basófilosBaso#: Número de basófilosNRBC: Hematíes nucleadosLymph: LinfocitosNeut: NeutrófilosMono: MonocitosEo: EosinófilosRET: ReticulocitosPLT-O: Plaquetas ópticasHFR: Porcentaje de fluorescencia altaMFR: Porcentaje de fluorescencia mediaLFR: Porcentaje de fluorescencia bajaIRF: Fracción de reticulocitos inmadurosHPC#: Número absoluto de células
pluripotenciales hematopoyéticasHPC%: Porcentaje de células pluripotenciales
hematopoyéticasRBC: Hematíes o eritrocitos
HCT: HematocritoMCV: Volumen corpuscular medioRDW-SD: Distribución del ancho de la curva de
eritrocitos DSRDW-CV: Distribución del ancho de la curva de
eritrocitos CVPLT-I: Plaqueta obtenida por impedanciaPCT: PlatocritoPDW : Distribución del ancho de la curva de
plaquetasMPV: Volumen plaquetario medioP-LCR: Porcentaje de plaquetas grandesMCH: Hemoglobina corpuscular mediaMCHC: Concentración de hemoglobina
Ítem Canal de análisis Parámetro clave Fórmula o regla para la generación de avisos<Anormal>WBC Abn Scattergram WBC/BASO, DIFF Dispersograma Determinado de los dispersogramas WBC/BASO y DIFFNRBC Abn Scattergram NRBC Dispersograma Determinado del dispersograma NRBCNeutropenia NEUT#, NEUT% NEUT# < 1.00 x 109/L (o % ajustado)Neutrophilia NEUT#, NEUT% NEUT# > 11.00 x 109/L (o % ajustado)Lymphopenia LYMPH#, LYMPH% LYMPH# < 0.80 x 109/L (o % ajustado)Lymphocytosis LYMPH#, LYMPH% LYMPH# > 4.00x 109/L (o % ajustado)Monocytosis MONO#, MONO% MONO# > 1.00 x 109/L (o % ajustado)Eosinophilia EO#, EO% EOS# > 0.70 x 109/L (o % ajustado)Basophilia BASO#, BASO% BASO# > 0.20 x 109/L (o % ajustado)Leukocytopenia WBC WBC < 2.50 x 109/LLeukocytosis WBC WBC >18.00 x 109/LNRBC present NRBC NRBC% NRBC% > 0.02 <Sospecha>Blasts? DIFF/IMI Dispersograma Determinado de los dispersogramas DIFF e IMIImmature Gran? DIFF/IMI Dispersograma Determinado de los dispersogramas DIFF e IMILeft Shift? DIFF/IMI Dispersograma Determinado de los dispersogramas DIFF e IMIAtypical Lympho? DIFF/IMI Dispersograma Determinado de los dispersogramas DIFF e IMIAbn Lympho/L-Blasts? DIFF/IMI Dispersograma Determinado de los dispersogramas DIFF e IMINRBC? DIFF Dispersograma Determinado del dispersograma DIFFRBC Lyse resistance WBC.D vs. WBC Diferencia en el conteo de WBC en los dispersogramas
WBC/BASO y DIFF
<Anormal>RBC Abn Distribution RBC RL, RU, MP, aviso DW Determinación de valores por cómputo y comparación
de los tamaños de ítems Dimorphic Population RBC Aviso MP de valores Evaluación basada en la forma del pico y la diferencia
(histograma) entre el pico y la base del histogramaRET Abn Scattergram RET Dispersograma Determinado del dispersograma RETReticulocytosis RET#, RET% RET% > 0.05 o RET# > 200 x 109/LAnisocytosis RDW-SD, RDW-CV RDW-SD > 65fL o RDW-CV > 0.20Microcytosis MCV MCV < 70 fLMacrocytosis MCV MCV > 110fLHypochromia MCHC MCHC < 290g/LAnemia HGB HGB < 100g/LErythrocytosis RBC RBC > 6.50 x 1012/L
<Sospecha>RBC Agglutination? RBC MCHC,MCH,RBC,RU (%) Determinación de valores por cómputo y comparación
de los tamaños de ítems Turbidity/HGB Interference? MCHC MCHC > 365g/LIron Deficiency? MCHC,MCV, RDW-CV Determinación de valores por cómputo y comparación
de los tamaños de ítems HGB Defect? RDW-CV, MCV Determinación de valores por cómputo y comparación
de los tamaños de ítemsFragments? RET, RBC Dispersograma,RDW-SD, Determinado del dispersograma RET
PU,PU(%),MCV,RL,MCHC Determinación de valores por cómputo y comparaciónde los tamaños de ítems
<Anormal>PLT Abn Scattergram RET Dispersograma Determinado del dispersograma RETPLT Abn Distribution PLT PDW, PL(%), PU(%), PMFV, Determinación de valores por cómputo y comparación
PLT, P-LCR, MPV, PU de los tamaños de ítemsThrombocytopenia PLT PLT < 60 x109/LThrombocytosis PLT PLT > 600 x 109/L
<Sospecha>PLT Clumps? DIFF, IMI, NRBC Dispersograma Determinado de los dispersogramas DIFF, IMI y NRBCPLT Clumps (S)? PLT PDW, PL(%), PU(%), PMFV, Determinación de valores por cómputo y comparación
PLT, P-LCR, MPV, PU de los tamaños de ítems
Lista de mensajes interpretativos
Nota 1) Los límites de los mensajes anormales que están basados en números pueden ser modificados por el usuario.Nota 2) Las reglas y las fórmulas están sujetas a cambios para mejorarlas.RL: Posición del discriminador inferior de los hematíes.RU: Posición del discriminador superior de los hematíes.PL: Posición del discriminador inferior de las plaquetas.PU: Posición del discriminador superior de las plaquetas.PL(%): Porcentaje en el cual el discriminador inferior cruza la curva de las plaquetas, asumiendo que el pico de esta curva es el 100%.PU(%): Porcentaje en el cual el discriminador superior cruza la curva de las plaquetas, asumiendo que el pico de esta curva es el 100%. Aviso MP: Aviso generado cuando el histograma de hematíes tiene múltiples picos.Aviso DW: Aviso generado cuando RDW-SD no puede ser analizado.
9
Pantalla de resultados y su interpretación
Los mensajes que se muestran en elcuadro son generados cuando apare-cen hallazgos anormales que son in-terpretados por el instrumento comoerror de muestreo (sampling error),error de análisis (analysis error), datosfuera de rango (over range), baja con-fiabilidad (low reliability), etc.
Interpretación
El análisis no puede ser realizado debido a que la separación deldiferencial o la autodiscriminación no es posible.
El límite de los rangos mostrados ha sido excedido.
Cuando se detecta una anormalidad en una muestra, esto indicaque los datos no son confiables. (Los resultados pueden serrevisados en el banco de datos).
Los datos no pueden ser obtenidos debido a una falla mecánica.
Categoría
Imposiblede analizar
Fuera derangoBajaconfiabilidadde datosError deanálisis
En pantalla
[-----]
[++++]
[*]
[----]
• En el caso de WBC<0.10 x 109/L, los datos del diferencial de cinco partes no son emitidos. • En el caso de WBC<1.00 x 109/L, aparece un asterisco (*) a la derecha del resultado del diferencial de cinco partes, lo
Dimorphic Population -- --RET Abn Scattergram *RBC Agglutination? *Turbidity/ HGB Interference? *Iron Deficiency?PLT Abn Scattergram * *PLT Abn Distribution
En el caso de mensajes interpretativosCuando aparece un mensaje interpretativo (IP), los resultados son juzgados como no confiables debido a laanormalidad indicada por el IP. Aparece un asterisco (*) a la derecha del resultado o la marca (--), como se veen la tabla.
Casos en los cuales no aparecen datos en la pantalla
Casos en los cuales no aparecen los mensajes interpretativos (IP)
1. Si los parámetros requeridos para la determinación del mensaje (IP) no pueden ser calculados, aparece la señal (----) o (++++).
2. Cuando el conteo absoluto de leucocitos (WBC#) es menor que 0.50 x 109/L, no se determinan mensajes de sospecha para los leucocitos.
3. Cuando el conteo absoluto de leucocitos (RBC#) es menor que 0.50 x 1012/L, no se determinarán mensajes interpretativos de hematíes, excepto RBC Abn Distribution.
4. En las muestras medidas en modos especiales, tales como control de calidad.
Otros
(&) : Indica que los datos fueron corregidos debido a alguna interferencia, como hematíes nucleados (NRBC) o fragmentos de eritrocitos (RBC).
WBC& : Indica que los resultados fueron corregidos por el conteo de hematíes nucleados (NRBC), detectados en el canal NRBC.
LYMPH#& : Indica que el número de linfocitos (LYMPH#) fue corregido por el número de hematíes nucleados (NRBC#), detectado en el canal NRBC.
LYMPH%& : Indica que el porcentaje de linfocitos (LYMPH%) fue corregido por el número de hematíes nucleados (NRBC#), detectado en el canal NRBC.
PLT& : Indica que los resultados reportados son las plaquetas ópticas PLT-O, debido a que los resultados del método de impedancia no son confiables.
(@) : Indica que los resultados están fuera de los límites de linearidad.
ObservacionesEste es un caso de neutrofilia donde el conteo manual dio un resultado de 94.5% y el XE-2100 de93.2%. En el dispersograma DIFF aparecen muchos puntos azules en el área de neutrófilos (in-dicado por ) típico de neutrofilia. Debido a que el porcentaje de bandas es de 6.5%, pero menorque 0.9 x 109/L, no aparece el mensaje “Left Shift?”. En este caso no se notan agregados de pla-quetas, pero sí plaquetas grandes. En consecuencia, aparece el mensaje “PLT Clumps?”.
ObservacionesEste es un caso de linfocitosis donde el conteo manual dio un resultado de 93.5% y el XE-2100 de94.7%. En el dispersograma DIFF aparecen muchos puntos rosados en el área de linfocitos (indicadopor ), indicativo de linfocitosis.
En este caso se midió una cantidad de monocitos de 17.5% por método manual y 18.7% por elXE-2100. En el dispersograma DIFF aparecen muchos puntos verdes en el área de monocitos (in-dicado por ), indicativo de monocitosis.Los puntos están ubicados por encima del área de neutrófilos (indicado por ) en el disper-sograma DIFF. Esto sugiere la presencia de granulocitos inmaduros (IG), lo cual es corroboradopor la presencia de puntos rojos en el dispersograma IMI. En la pantalla de investigación (re-search) del XE-2100 se obtuvo 3.5% de granulocitos inmaduros, resultado similar a los 3.5% demielocitos y 0.5% de metamielocitos medidos por el método manual.
Banda 0.0 [%]Segmentados 8.5 [%]Linfocitos 11.5 [%]Monocitos 1.0 [%]Eosinófilos 78.5 [%]Basófilos 0.5 [%] Aglutinación de plaquetas (+)
15
Ejemplos de leucocitosis
ObservacionesEn este caso se midió una cantidad de eosinófilos de 78.5% por método manual y 81.8% por elXE-2100. En el dispersograma DIFF aparecen puntos rojos en el área de eosinófilos (indicadopor ), indicativo de eosinofilia.En el canal DIFF del XE-2100, la unión específica de un ácido orgánico presente en elSTROMATOLYSER-4DS con los gránulos de los eosinófilos, aumenta la intensidad de dispersiónde luz lateral, lo cual permite distinguir entre neutrófilos y eosinófilos.
ObservacionesEn este caso se midió una cantidad de basófilos de 13.5% por método manual y 13.4% por el XE-2100.En el dispersograma WBC/BASO aparecen grupos de puntos negros en el área de basófilos (indicadopor ), indicativo de basofilia.En el dispersograma DIFF aparece una mancha azul (indicado por ) en el área rodeada de linfocitos,neutrófilos y área de fantasmas. Esto indica el área de basófilos en el dispersograma DIFF.
Información medida por el XE-2100
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
Observaciones En el dispersograma DIFF, los puntos se extienden desde el área de linfocitos y monocitos haciazonas de mayor fluorescencia lateral (indicado por ), lo que sugiere la aparición de blastos.En el dispersograma IMI aparecen muchos puntos rojos en la zona donde la radiofrecuencia (RF)es baja (indicado por ), lo que sugiere la presencia de blastos (77.5% medido por el método ma-nual de conteo diferencial).
En marzo de 1999, un paciente visitó al médico debido a que sufría de fiebre y dolor anal. Alobservarse leucocitosis y presencia de blastos, el paciente fue derivado a nuestrodepartamento. En el momento de la admisión, tenía un valor de proteína C reactiva (PCR) de0.18g/L y una temperatura de 39-40 °C. Los resultados de rayos X y tomografía computarizadade tórax revelaron neumonía y se observó un absceso anal. En consecuencia, se inició unaterapia con antibióticos. Para la leucemia se ordenó una terapia combinada de Idarubicina yCitarabina desde el 26 de mayo hasta el 15 de junio, seguido de Citarabina y Daunorubicina.No se consiguió remisión completa.
Datos (sangre periférica)
Células T Células B Granulocitos/Monocitos Células NK
ObservacionesLos estudios con marcadores desuperficie celular mostraron re-sultados positivos para CD13 yCD33 (marcadores para seriesgranulocítica y monocítica). Seobtuvo resultado negativo paraCD36, expresado en la serie pla-quetaria y monocítica. En conse-cuencia, este caso es considera-do una leucemia mieloide.
Tinción May-Giemsa
ObservacionesEste es un caso diagnosticado comoLMA-M1. En sangre periférica se en-contró un 77.5% de blastos tipo I (tama-ño pequeño, citoplasma angosto, cario-tipo anormal). Se observó una reacciónleve a la peroxidasa.
Hallazgos clínicos
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Tinción peroxidasa
(x 1000)
(x 1000)
20
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M1(2)
ObservacionesEn el dispersograma DIFF, los puntos se extienden desde el área de linfocitos y monocitos haciazonas de mayor fluorescencia lateral (indicado por ). El diferencial de leucocitos no puede serdeterminado.Este es un caso de 95% de blastos medidos por el método manual. Los puntos rojos estánampliamente distribuidos en el dispersograma IMI, lo que sugiere la presencia de gran cantidadde blastos.
Un paciente con malestar general desde mayo de 1999, visitó al médico en junio de ese año.Debido a que los resultados del laboratorio indicaron leucocitos 28.5 x 109/L (blastos 97.0%),hemoglobina 84g/L, plaquetas 10 x 109/L y LDH 1,361 IU/L, el paciente fue derivado a nuestrodepartamento. Se le diagnosticó LMA-M1 por medio de una punción de médula ósearealizada el 30 de junio.
Observaciones La estructura nuclear es fina. Algunascélulas tienen uno o dos nucléolos y lamayoría de ellos son indiferenciados. Elnúcleo posee una hendidura en la partecentral. El citoplasma se coloreó azul conligera turbidez. El porcentaje de blastos ti-po I es del 95%. La reacción a la peroxida-sa fue de nula a moderada.
ObservacionesEn el dispersograma DIFF, los puntos se extienden desde el área de linfocitos y monocitoshacia zonas de intensa fluorescencia lateral (indicado por ). El diferencial de leucocitosno puede ser determinado.En el dispersograma IMI aparecen muchos puntos rojos en el área donde la radiofrecuenciaes muy débil (indicado por ). Esto sugiere que los blastos (90% medido por el diferencialmanual) están distribuidos en esa área.
El 6 de junio de 1999, un paciente presentó dolor en la rodilla derecha y en la articulación dela cadera, lo que le impedía caminar. El paciente visitó al ortopedista el 7 de junio y se le ad-ministraron antibióticos, pero los síntomas persistieron. El 9 de junio, visitó el Departamentode Ortopedia del Hospital T. El hemograma indicó leucocitos 25.7 x 109/L (blastos 95%),hemoglobina 117g/L y plaquetas 70 x 109/L, por lo que el paciente fue derivado a nuestrohospital.
ObservacionesLos marcadores de superficie celular mos-traron resultados positivos para CD13 yCD33. Se obtuvo resultado negativo paraCD14. Debido a que los marcadores lin-foides fueron negativos, el caso se consi-deró como una leucemia mieloide.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
ObservacionesEste es un caso de inicio de una LMA-M1. Losblastos tipo I (coloreados en gris azulado, conestructura nuclear fina y un gran citoplasma)comprenden el 90%. Se observó reacción ala peroxidasa de nula a débil.
Información obtenida del análisis del frotis
(x 1000)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
Tinción peroxidasa
24
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M2
ObservacionesEn el dispersograma DIFF, los puntos en las áreas de los linfocitos y monocitos (indicado por )forman una agrupación amplia. El diferencial de leucocitos no puede ser determinado.En el dispersograma IMI se encuentran muchos puntos rojos (indicado por ). Esto indica queblastos, promielocitos y mielocitos (90%, 3% y 1%, respectivamente, determinados por el métodomanual) están distribuidos en esta área.En el dispersograma NRBC se observan puntos rosados (indicado por ), lo cual sugiere la pre-sencia de hematíes nucleados.
En abril de 1999, un paciente visitó al médico porque tenía algunos nódulos linfáticosinflamados en la región inguinal. La evaluación clínica reveló un conteo de leucocitos de3.9 x 109/L (blastos 32%) hemoglobina 80g/L, plaquetas 73 x 109/L y LDH 622 IU/L. Por lo tan-to, el paciente fue derivado a nuestro departamento.Al paciente se le diagnosticó LMA-(M2) por medio de una punción de médula ósea efectua-da el 27 de mayo.
ObservacionesResultados positivos solamen-te para los marcadores de su-perficie celular CD13 y CD33.Por lo tanto, este caso fue con-siderado como una leucemiamieloide.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Tinción May-Giemsa
(Blastos tipo I)
Observaciones En este caso se encuentran mezclados blastos tipo I (con relación núcleo/citoplasma muyalta y el citoplasma angosto), vistos en la figura de la izquierda, y blastos tipo II (concitoplasma ancho y maduro, con gránulos poco distinguibles o distinguibles), los cualesse ven en las dos primeras figuras. Este es un caso de primera aparición de LMA-M2.En la figura de la derecha vemos una reacción a la tinción o coloración con peroxidasafuerte.
(x 1000) (x 1000) (x 1000)
Tinción May-Giemsa
(Blastos tipo II) Tinción peroxidasa
26
Síndrome mielodisplásico (SMD)-AREB-t
Observaciones
En el dispersograma DIFF no puede determinarse el límite entre linfocitos y monocitos (indicadopor ), lo que sugiere la presencia de blastos. Se encuentran puntos por encima de la zona demonocitos (indicado por ), lo cual sugiere la aparición de linfocitos atípicos.Este es un caso de 17.5% de blastos, 3.5% de mielocitos y 1.0% de metamielocitos medidos por elmétodo manual. Estas células están presentes en el área de puntos rojos en el dispersograma IMI(indicado por ).
Un paciente presentó dolor de cuello a fines de enero de 1998. El hemograma reveló pan-citopenia el 24 de febrero, mientras que el 28 de febrero la punción de médula ósea reveló lapresencia de blastos, por lo que fue derivado a nuestro departamento. Debido a que unasegunda punción reveló un 18.2% de blastos y 3 líneas de malformación, el paciente fue diag-nosticado como una osteomielodisplasia. Se le administró en dos oportunidades Citarabinay G-CSF, pero no hubo remisión. Al paciente se le estuvo administrando Etoposida oral y sele puso bajo seguimiento como paciente ambulatorio.
Hallazgos clínicos
Información obtenida del análisis del frotis
Tinción May-Giemsa
(blasto)
ObservacionesEste es un caso de síndrome mielodisplásico con anemia refractaria con excesivos blastosen transformación o SMD (AREB-t), en el cual se encontró un 17.5% de blastos (la relaciónnúcleo/citoplasma es alta, el citoplasma presenta color gris azulado y se encuentran grá-nulos azurófilos). Se observan plaquetas y bandas gigantes.
(x 1000) (x 1000) (x 1000)
Tinción May-Giemsa(linfocito atípico)
Tinción May-Giemsa
(blasto)
28
Observaciones
En el dispersograma DIFF aparecen puntos azules distribuidos por encima del área de neutrófilos(indicado por ). Esto sugiere la presencia de granulocitos inmaduros, lo que es avalado por el hechode que aparecen puntos rojos en el dispersograma IMI.En el dispersograma NRBC aparecen puntos rosados (indicado por ), lo que sugiere la presencia dehematíes nucleados (NRBC). Los hematíes nucleados medidos por el método manual arrojaron unresultado de 5 por cada 200 leucocitos, similar al obtenido por el XE-2100 de 3.6 hematíes nucleadospor cada 100 leucocitos.
WBC Abn ScattergramMonocytosisLeukocytosisNRBC Present
Blasts?Immature Gran?Left Shift?
RBC/RET IP Messages
ReticulocytosisAnisocytosisAnemia
PLT IP Messages
Thrombocytosis
PLT Clumps?
* Parámetros de investigación
IG 13.02 [109/L] 28.2 [%]
29
ObservacionesSe observó un aumento de mie-loblastos y leucocitos segmen-tados en sangre periférica, ade-más de un incremento de basó-filos y plaquetas. Se notó la pre-sencia de micromegacariocitosy eritroblastos.
Hallazgos clínicos
A un paciente se le diagnosticó una mielofibrosis en 1991. El 8 de mayo de 1998, el pacientefue admitido en el Departamento de Radiología con una hipertensión portal complicada porvárices en el esófago y por várices gástricas. Se cree que la razón de las várices fue el au-mento del flujo sanguíneo en la vena lienal a raíz de la esplenomegalia. El 5 de junio de 1998se realizó una embolización de la arteria esplénica.
Tinción May-Giemsa
(blasto)
Información obtenida del análisis del frotis
(x 1000) (x 1000)
Tinción May-Giemsa(micro-megacariocito)
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Principio del XE-2100 (1)
Citometría de flujo por láser semiconductor
El XE-2100 ilumina la muestra mediante un rayo láser semiconductor y clasifica lascélulas por medio de tres señales que estas producen: luz dispersa frontal, luz dispersalateral y fluorescencia lateral. La intensidad de la luz dispersa frontal indica el volumencelular; la luz dispersa lateral, el contenido interno celular, como núcleo y gránulos; y lafluorescencia lateral, la cantidad de ADN y ARN presente.
Tubo fotomultiplicador (fluorescencia de 660nm o más)
En el dispersograma DIFF, los puntos en las áreas de linfocitos y monocitos forman un solo grupo(indicado por ). Esto sugiere que los blastos (93% según el método manual) aparecen en esta área.En el área donde la fluorescencia lateral es más fuerte, se encuentran puntos (indicado por ) quesugieren la presencia de linfocitos atípicos.En el dispersograma IMI aparecen puntos rojos que sugieren la presencia de blastos.En este caso se encontró un eritrocito nucleado por cada 200 leucocitos, según el método manual. Enel dispersograma NRBC aparecen puntos rosados (indicado por ), lo que demuestra que incluso enlas muestras con un pequeño número de hematíes nucleados la detección es sensible.
Un paciente experimentó pérdida de apetito desde fines de julio de 1999 y desarrolló unestado febril a principios de agosto, que duró aproximadamente dos días. El paciente visitóa su médico el 15 de agosto y el examen de sangre reveló leucocitos 101.6 x 109/L,hemoglobina 64g/L y plaquetas 10 x 109/L. Debido a estos hallazgos, el paciente fue remiti-do a nuestro hospital.
Tinción May-Giemsa
Información obtenida por el método de citometría de flujo
ObservacionesEl estudio de marcadores de superficieobtuvo resultados positivos paraCD10, CD19 y HLA-DR; fue negativopara CD20. Por lo tanto, este caso estáconsiderado como una LLA célula tipopre-B.
ObservacionesEste es un caso de diagnóstico nuevode LLA-L1. Los blastos constituyen un93% de las células. Son de tamaño pe-queño, con alto porcentaje denúcleo/citoplasma (N/C), poco cito-plasma y de cariotipo extremadamen-te anormal, pues presenta lobulacióny reacción peroxidasa negativa.
Tinción peroxidasa
(x 1000)
(x 1000)
34
Observaciones
En el dispersograma DIFF, el límite entre las áreas de monocitos y linfocitos es indistinguible (in-dicado por ). Además, en el dispersograma IMI no hay puntos rojos que denotarían la presenciade células inmaduras. Estos resultados sugieren la presencia de linfoblastos.En el dispersograma NRBC hay puntos rosados (indicado por ), que sugieren la presencia dehematíes nucleados.
Un paciente, con malestar general y síntomas de resfrío común, visitó al médico en junio de1999. Se notó la presencia de leucocitosis, anemia y trombocitopenia. Debido a que en eldiferencial de leucocitos se encontraron blastos, el paciente fue remitido a nuestrodepartamento.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
ObservacionesLos marcadores de superficiepositivos fueron CD10, CD19,CD20 y HLA-DR. Por lo tanto,se considera que este caso esuna leucemia linfática de cé-lulas B bastante maduras.
ObservacionesA este paciente se le diagnosticó por primera vez LLA-L1. Los blastos constituyen un96% de las células. Son de tamaño pequeño, alto porcentaje de núcleo/citoplasma (N/C)con un solo nucléolo o con nucléolos indistinguibles y peroxidasa negativa.
Datos (sangre periférica)
Células T Células B Granulocitos/Monocitos Células NK
En el dispersograma DIFF, los puntos en las áreas que ocupan los linfocitos y monocitos formanun solo grupo (indicado por ). El diferencial de leucocitos no pudo ser determinado.En el dispersograma IMI se ven puntos rojos (indicado por ). Esto sugiere la presencia degranulocitos inmaduros en esta área, los cuales fueron observados en el diferencial manual.En este caso se encontró, por el método manual, 6 eritrocitos nucleados por cada 200 leucocitos.En el dispersograma NRBC se observan puntos rosados (indicado por ). El conteo de hematíesnucleados detectados por el XE-2100 es de 0.5 por cada 100 leucocitos.
Un paciente, cuyo principal síntoma era la inflamación de un ganglio linfático cervical, visi-tó nuestro departamento en mayo de 1999. Algunos de los resultados obtenidos fueronleucocitos 40.9 x 109/L (blastos 85%), hematíes 3.71 x 1012/L, hemoglobina 109g/L y plaquetas159 x 109/L. A este paciente se le diagnosticó LLA(L2) mediante una punción de médula ósea.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
ObservacionesEn la sangre periférica, los blastos cons-tituyen el 61.5%. Estos varían de pe-queños a medianos y tienen alto por-centaje núcleo/citoplasma (N/C), pre-sentan formación de lóbulos en elnúcleo y nucléolos no distinguibles. En la médula ósea se encuentran mu-chos blastos (grandes, alto porcentajenúcleo/citoplasma y segregación nu-clear marcada). Coloración con pero-xidasa negativa. Este es un caso quemuestra el comienzo de una LLA-L2.
ObservacionesLos marcadores positivosfueron CD7, CD19, HLA-DR,CD13, CD33 y CD34.Se considera una tumorigé-nesis a nivel muy inmaduro.
Tinción May-Giemsa (sangre periférica)
(x 1000)
(x 1000)
38
ObservacionesEn el dispersograma DIFF, el límite entre las áreas de monocitos y linfocitos es indistinguible (indicadopor ). Esto sugiere que los blastos (observados con el método manual) están presentes en esta área.Los pocos puntos rojos presentes en el dispersograma IMI (indicado por ) sugieren la presencia deunos pocos granulocitos inmaduros.
ObservacionesLos datos del marcador de su-perficie se obtuvieron al co-mienzo de la enfermedad. Huboresultados positivos para CD10,CD19 y HLA-DR, que son mar-cadores para las series células B.Se obtuvo un resultado nega-tivo para CD20. Por lo tanto, es-te caso se considera como LLAtipo célula pre-B.
Hallazgos clínicos
Un paciente que presentaba malestar general visitó al médico en febrero de 1996. Se notó lapresencia de trombocitopenia, leucocitosis y blastos, por lo que fue remitido a nuestrodepartamento. En respuesta a la quimioterapia se produjo una total remisión. En enero de1997 se le realizó un trasplante alogénico de médula ósea, pero el paciente tuvo una recaídaen mayo de 1998. Se obtuvo remisión otra vez en respuesta a la terapia de inducción de re-remisión. Se produjo recurrencia nuevamente en mayo de 1999. Se le dio una dosis mediade Citarabina que no produjo resultado. Desde el 21 de julio se le comenzó a tratar conterapia combinada de Citarabina, Enocitabina, Etoposida, Vindesina y Vinblastina.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
ObservacionesEste es un caso de recurrencia de LLA-L2. Losblastos constituyen el 28.5% (presentan altoporcentaje núcleo/citoplasma, muy pococitoplasma y algunos núcleos lobulados).
(x 1000)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
Datos (sangre periférica)
Células T Células B Granulocitos/Monocitos Células NK
ObservacionesEn el dispersograma DIFF, el límite entre las áreas de linfocitos y monocitos es indistinguible (indicadopor ). Además, ningún granulocito inmaduro aparece en el dispersograma IMI. Estos resultados su-gieren la aparición de linfocitos anormales.
Un paciente visitó el departamento de medicina general de nuestro hospital en abril de 1996,debido a un dolor en el hipocondrio izquierdo y progresivo dolor de espalda. Aunque elconteo de leucocitos fue de 8 x 109/L, se observaron en el conteo diferencial un 55% de lin-focitos y 8% de linfocitos atípicos, por lo que se le realizó una punción de la médula ósea.El porcentaje de linfocitos maduros aumentó notablemente a 91.2% y el marcadorde superficie CD19 también aumentó a 67.4%. Este caso fue diagnosticado como LLC.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Tinción May-Giemsa
Observaciones
Este es un caso de LLC. Los linfocitos maduros son bastante dominantes. Seobservan unos pocos prolinfocitos (alto porcentaje de núcleo/citoplasma ynucléolos distinguibles).
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
(x 1000)
ObservacionesLos marcadores de superficie son CD5-, CD10,CD19+ y CD20+. Proliferan las células maduras B.Análisis morfológicos revelaron que la mayoría delas células son linfocitos maduros. Por lo tanto, estecaso se considera como LLC-B CD5 negativo.
Un surfactante provoca lisis completa de eritrocitos y plaquetas, mientras que los leuco-citos son parcialmente lisados. Un segundo reactivo tiñe los ácidos nucleicos. Este canaldiferencia los leucocitos en cuatro tipos.Un surfactante en el STROMATOLYSER-4DL causa lisis o destrucción de leucocitos y pla-quetas, provocando al mismo tiempo pequeñas aberturas en la membrana de los leuco-citos. Un colorante polimetino en el STROMATOLYSER-4DS migra hacia el leucocito dañadoy se une a los ácidos nucleicos y a los organelos citoplasmáticos. Cuando las células sonexpuestas a la luz del láser de 633nm, la intensidad de la fluorescencia es proporcional alcontenido del ácido nucleico. Un ácido orgánico en el STROMATOLYSER-4DL se une espe-cíficamente a los gránulos de los eosinófilos, lo cual permite diferenciarlos de los neutró-filos mediante una señal más alta de luz lateral dispersa.
43
Cambios en los resultados durante la terapia
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M1 44
Leucemia mieloide crónica (LMC) 47
44
Estos datos se obtuvieron 6 días después de la administración de 150 mg de Citarabina. El conteo deleucocitos fue de 0.64 x 109/L y se encontró un pequeño número de puntos en el dispersograma delXE-2100. En el dispersograma IMI se notan puntos rojos en el área donde la radiofrecuencia es másbaja (indicado por ), lo que podría sugerir la presencia de células hematopoyéticas pluripotenciales.
Hallazgos clínicosEn marzo de 1999, un paciente visitó al médico a causa de fiebre y dolor anal. En el frotis se observóleucocitosis y blastos, por lo que el paciente fue remitido a nuestro departamento. En el momento de laadmisión, el paciente tenía un valor proteína C reactiva (PCR) de 0.18g/L y una temperatura de 39-40 ºC.Los resultados de las radiografías y un TC de tórax revelaron neumonía, y se observó un absceso anal.Consecuentemente, se inició una terapia con antibióticos. Para la leucemia, se le administró una terapiacombinada de Idarubicina y Citarabina desde el 26 de mayo hasta el 15 de junio, seguida por Dauno-rubicina y Citarabina. No se obtuvo una remisión completa.
En el dispersograma DIFF, los puntos en el área de linfocitos y en el área en la cual la fluorescencialateral es fuerte forman un solo grupo (indicado ). Esto sugiere la presencia de blastos, lo que esrespaldado por el hallazgo de puntos rojos en el área donde la radiofrecuencia es más baja (indica-do por ) en el dispersograma IMI.
El conteo de leucocitos es de 0.32 x 109/L y está en su nadir.
(3) Julio 5, 1999
WBC IP Messages
NeutropeniaMonocytosis
Blasts?Immature Gran?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
Thrombocytopenia
WBC IP Messages
NeutropeniaLymphopeniaLeukocytopenia
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
Thrombocytopenia
46
Cambios en los resultados durante la terapia
En el dispersograma DIFF, los puntos en el área de linfocitos y en el área en que la fluorescencia laterales fuerte forman un solo grupo (indicado por ). Esto sugiere la presencia de blastos, lo que esrespaldado por el hallazgo de puntos rojos en el área donde la radiofrecuencia es más baja (indicadopor ) en el dispersograma IMI. Estos datos son similares a los obtenidos el 14 de junio.
El conteo de leucocitos disminuye nuevamente a 0.81 x 109/L en respuesta a la terapia combinadade Mitixantrona, Enocitabina, Etoposida, Vindesina, Vincristina y Predonisolona iniciada el 12 dejulio.
Este es un caso de LMC en el que el conteo leucocitario es más de 200 x 109 /L. En el dispersogramaDIFF no se pueden clasificar los leucocitos. En el dispersograma IMI, numerosos puntos rojos estándistribuidos a través de todo el gráfico, lo que sugiere la presencia de muchos granulocitos inmaduros.
Una mujer de 57 años presentó distensión abdominal el 26 de abril de 1999. Al mismo tiempo, ex-perimentaba pérdida del apetito y de peso. Ella visitó el Departamento de Medicina Interna en nuestrohospital el 31 de mayo. Los hallazgos en los exámenes incluyeron leucocitos 180.3 x 109/L, LDH 1,530 IU/L,los cuales eran mucho más altos que lo normal; por lo tanto, la paciente fue remitida al Departamento deHematología. Mediante punción en la médula ósea y examen de cromosomas (ph1 positivo) se lediagnosticó LMC.
α
Junio Junio Junio Julio Julio Julio Julio
LEUCOCITOS
LEUCOCITOS
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
(x 109/L)
* WBC IP Messages
WBC Abn ScattergramEosinophiliaLeukocytosis
Blasts?Immature Gran?Left Shift?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
PLT Clumps?
* Parámetros de investigación
IG 22.50 [109/L] 11.0 [%]
48
Cambios en los resultados durante la terapia
El conteo de leucocitos disminuye a la mitad de los datos medidos el 11 de junio como respuestaa la terapia con Hidroxi Carbamida, Ranimustine y otras. Pero aún es más de 100 x 109/L.
El conteo de leucocitos ha aumentado nuevamente. Los puntos rojos en el dispersograma IMI hanaumentado también. Estos resultados sugieren una recurrencia.
(4) Julio 19, 1999
El conteo de leucocitos finalmente ha descendido a menos de 10 x 109/L y el diferencial de leucocitospuede ser determinado por el XE-2100. En el dispersograma DIFF, los puntos azules se extiendendesde el área de los neutrófilos hasta el área por encima de éstos (indicado por ), lo que sugierela aparición de granulocitos inmaduros.
(5) Julio 26, 1999
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
*
*WBC IP Messages
WBC Abn ScattergramMonocytosisLeukocytosis
Blasts?Immature Gran?Left Shift?
RBC/RET IP MessagesAnisocytosis
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
PLT Clumps?
WBC IP Messages
Basophilia
Blasts?Immature Gran?Left Shift?
RBC/RET IP MessagesAnisocytosis
PLT IP Messages
* Parámetros de investigación
IG 6.63 [109/L] 14.6 [%]
* Parámetros de investigación
IG 0.76 [109/L] 8.3 [%]
50
PRINCIPIO DEL XE-2100 (3)
Canal de leucocitos y basófilos (WBC/BASO)
En este canal, el XE-2100 usa señales frontales y laterales de luz dispersa. Un reactivoacídico produce lisis y reducción del tamaño de los hematíes y las plaquetas. Este reac-tivo reduce también los leucocitos, dejando solamente los núcleos. Los basófilos perma-necen casi en su estado original. El conteo total de leucocitos y de basófilos son obteni-dos a través de este canal.El surfactante STROMATOLYSER-FB produce, por su acción lisante, fantasmas de hema-tíes y de plaquetas reduciendo los leucocitos sólo a sus núcleos, con excepción de losbasófilos. Las diferencias volumétricas resultantes entre los basófilos y otras células sonanalizadas usando la información de señales de luz dispersa lateral y luz dispersafrontal.La intensidad de la luz dispersa frontal indica el volumen de las células, mientras que laluz dispersa lateral representa la complejidad de los residuos celulares. Los basófilosaparecen como una población separada. Los núcleos también están separados de losfantasmas. El conteo total de leucocitos es la suma de los núcleos y basófilos. Loshematíes nucleados están incluidos en este conteo.
51
Casos de células de apariencia específica
Caso de linfocitos de apariencia atípica 52
Caso de hematíes de apariencia falciforme 54
Muestra infantil 56
Linfoma blástico NK 58
52
ObservacionesEn el dispersograma DIFF aparecen puntos rosados en el área donde la fluorescencia es fuerte(indicado por ), lo que sugiere la presencia de linfocitos atípicos. Se observaron linfocitos atípicos(6%) en el frotis, lo que concuerda con los mensajes de sospecha generados por el XE-2100.
Un paciente que tenía un poco de fiebre y crecimiento sistemático de los nódulos linfáticos,visitó al médico en octubre de 1999. Debido a que el conteo de linfocitos, la proteína total yla γ globulina habían aumentado, el paciente fue remitido a nuestro departamento. Elresultado de los exámenes reveló leucocitos 12.6 x 109/L (linfocitos atípicos 10%), hematíes3.70 x1012/L,hemoglobina 106g/L, plaquetas177 x 109 /L, proteína total 96g/L y porcentaje de γglobulina del 48.9%. A este paciente se le diagnosticó un linfoma célula T angioinmu-noblástico mediante una biopsia en el nódulo linfático derecho, la que se efectuó el 4 denoviembre de ese año.
Hallazgos clínicos
Información obtenida del análisis del frotis
ObservacionesSe encontraron linfocitos atípicos de Downey tipo I (con citoplasma teñido de azuloscuro). La estructura nuclear es áspera y algunos linfocitos atípicos presentan lo-bulación nuclear. Los hematíes se presentan en forma de rollos.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
54
Observaciones
En el dispersograma NRBC aparecen puntos rosados (indicado por ), lo que sugiere la presencia dehematíes nucleados. El resultado obtenido por el XE-2100 es 9.1 hematíes nucleados por cada 100leucocitos, similar a los datos obtenidos con el método manual.En el dispersograma RET, puntos en el área de fluorescencia baja y hematíes maduros forman un gruporedondo (indicado por ). Este tipo de dispersograma se presenta muy pocas veces.
ObservacionesEste es un caso de enfermedad de células fal-ciformes. Se encontraron numerosos eritro-blastos y poiquilocitos con forma falciforme, losque se confirmaron como células falciformes enla prueba para la determinación de anemiafalciforme.
Hallazgos clínicos
A una paciente se le diagnosticó una enfermedad de células falciformes cuando tenía tresaños de edad. En su segundo parto fue internada en el Departamento de Obstetricia y Gi-necología de nuestro hospital. Los exámenes del 26 de octubre de 1999 revelaron leucocitos11.1 x 109/L, hematíes 1.78 x 1012/L, hemoglobina 86g/L, Hematocrito 18.6%, plaquetas379 x 109/L, T-Bil 27 µ mol/L, LDH 1,197 IU/L, AST 75 IU/L y ALT 24 IU/L.
Información obtenida del análisis del frotis
Tinción May-Giemsa
(x 2000)
(x 1000) (x 400)
Fotografía de microscopía
electrónica
Fotografía de microscopía de fase de
contraste
(Análisis de anemia falciforme)
56
ObservacionesEn el dispersograma DIFF, todas las células se agrupan generalmente en la región donde la sensibilidada la fluorescencia es menor. Este patrón se considera característico de la sangre de los niños.Los puntos rojos difusos en el dispersograma IMI (indicado por ) sugiere la presencia de granulocitosinmaduros. Se considera que los mielocitos (0.5% según el método manual) están distribuidos en estaárea.Este caso presenta 4 hematíes nucleados por cada 200 leucocitos, según el método manual. En el dis-persograma NRBC, los puntos rosados (indicado por ) sugieren la aparición de hematíes nucleados.
ObservacionesEsta es una muestra de unniño en la que no se ob-servó anormalidad, excep-to que hay eritroblastos enla sangre periférica.
Tinción May-Giemsa Tinción May-Giemsa
(x 1000)
(x 1000)
Información obtenida del análisis del frotis
58
Observaciones En el dispersograma DIFF, hay puntos que se extienden incluso por encima del área de neutrófilos(indicado por ). Esto sugiere la presencia de granulocitos inmaduros. Los datos obtenidos según elmétodo de conteo manual (2.5% de mielocitos + 0.5% de metamielocitos) son similares a los datos de2.2% de granulocitos inmaduros obtenidos en la pantalla de investigación del XE-2100. Linfocitosatípicos (28.5% según el método de conteo manual) se ubican entre las áreas de linfocitos y monocitos(indicado por ). Por lo tanto, estos dos tipos de células no pueden ser clasificadas.En el dispersograma IMI aparecen puntos rojos (indicado por ). Esto indica la presencia de mielocitosy metamielocitos (observados en el método manual) en esta área.
Un paciente visitó el Departamento de Dermatología de nuestro hospital a causa de un tumorsistémico múltiple (diámetro de 1-5 cm) en abril de 1999. A este paciente se le diagnosticó unlinfoma maligno mediante una biopsia del tumor. Los resultados del examen realizado el 10de junio revelaron leucocitos 11.2 x 109/L (linfoma atípico 23%), LDH 691 IU/L y sIL 2R 3.625U/L. El análisis del frotis de sangre periférica mostró que este caso era un linfoma blástico delinfocitos tipo NK.
Hallazgos clínicos
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
ObservacionesSe observan linfocitos atípicos grandes cuyaestructura nuclear es áspera. También seobservan células (con baja lobulizaciónnuclear) que son clasificadas como linfocitosanormales.
ObservacionesPor la información del marcador dedatos de superficie, se consideraque un 30% de linfocitos normalesestán incluidos en los portales. Seobserva la presencia de linfocitos enlos cuales se expresan marcadoresde superficie anormal: CD2+, sCD3-,CD4+dull (es imposible la contami-nación de monocitos porque CD14es negativo), CD5-, CD7-, CD8-,CD16-, CD19-, CD20-, CD25-, CD56+y HLA-DR+.
Datos (sangre periférica)
Células T Células B Granulocitos/Monocitos Células NK
Los números en paréntesis muestran un porcentajepositivo con sensibilidad de fluorescencia normal. Seobservan dos picos para CD4.
Principio del XE-2100 (4)
Canal de hematíes nucleados o eritroblastos (NRBC)
En el canal de hematíes nucleados o eritroblastos (NRBC), un surfactante causa que loshematíes y plaquetas se contraigan y al mismo tiempo tiñe los ácidos nucleicos deleucocitos y de hematíes nucleados. El XE-2100 cuenta los hematíes nucleados usandofluorescencia lateral y la información de luz dispersa frontal, la que es obtenida aliluminar la muestra con un rayo láser semiconductor. El surfactante en el STROMATOLYSER-NR causa lisis en las membranas de hematíes,dejando que sólo el núcleo de los hematíes nucleados estén presentes. Las membranasleucocitarias no son lisadas y su citoplasma es retenido. La tintura de polimetina fluo-rescente en el STROMATOLYSER-NR penetra la membrana de la célula de leucocitos y ti-ñe los organelos citoplasmáticos. De este modo, dos poblaciones claras emergen debi-do a diferencias en la intensidad de la fluorescencia. Usando las señales de la luz disper-sa frontal, se pueden distinguir las diferencias volumétricas entre las células nucleadasy las fantasmas.
60
Hematíes
Tinción
La intención de los mensajes generados por este instrumento se limitaa la identificación de muestras que contengan células anormales,sujetas a revisión por personal de laboratorio calificado.