Informe citología

INFORME DE CITOLOGÍA

Por Lilia Delgado y Lucas de Lorenzo

ÍNDICE● MICROSCOPIO Y SUS PARTES● TÉCNICAS DE EXPERIMENTACIÓN

CITOLÓGICA● CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES● CÉLULAS Y TEJIDOS ANIMALES● DIBUJOS ROTULADOS DE DOS

CÉLULAS O ESTRUCTURAS

NUESTRO MICROSCOPIOOCULAR

REVÓLVER

PLATINA

OBJETIVO

TORNILLO (MACROMÉTRICO Y MICROMÉTRICO )

FOCO

BRAZO

PIE

Imagen 1: De Lorenzo, L. (2014). Microscopio óptico.

TÉCNICAS DE EXPERIMENTACIÓN CITOLÓGICA

● CORTE● TINCIÓN● FIJACIÓN● CUBRIMIENTO

●

CORTE Se realiza con un microtomo o, en nuestro caso con un bisturí. Se trata de realizar un corte del tejido lo más fino posible para obtener una lámina que posteriormente se pueda observar en el microscopio tras colocar esta lámina en un portaobjetos, conviene procurar que no haya un exceso de agua que dificulte la observación del tejido. Imagen 2: nombre desconocido. Recuperada de: http:

//www.barbacena.ifsudestemg.edu.br/destaques/estudante-iniciacao-cientifica-realiza-

parte-pesquisa-ufv

http://www.barbacena.ifsudestemg.edu.br/destaques/estudante-iniciacao-cientifica-realiza-parte-pesquisa-ufv





TINCIÓNPara observar ciertos elementos de la célula de manera más clara es recomendable teñir las preparaciones. En nuestro caso hemos empleado verde de metilo para la epidermis de cebolla, lugol para los amiloplastos de la patata y azul de metileno para la epidermis bucal. Tras aplicar unas gotas de colorante y dejar esperar cinco minutos se retira el exceso de colorante con agua destilada.

AZUL DE METILENO, VERDE DE METILO Y LUGOL

● El azul de metileno es una sustancia soluble en el agua y en el alcohol. Aparte de que es un buen colorante nuclear tiene la propiedad de teñir selectivamente el tejido nervioso e impregnar muchos elementos en vivo.

● El verde de metilo es un tinte soluble en el agua y en el alcohol y colorante nuclear.

● El lugol es un colorante que determina si una sustancia tiene una estructura helicoidal o no, de manera que si esta finalmente queda de color azul-violeta, significa que es positiva por lo que es una sustancia helicoidal, y si por el contrario queda de color amarillo, es negativa por lo que la sustancia no es helicoidal.

FIJACIÓNPara observar determinadas preparaciones, sobre todo algunas que se encuentran en estado líquido o semilíquido es necesario fijar las preparaciones. Esto se realiza mediante calor, se sujeta con unas pinzas de madera el portaobjetos y se calienta en la llama de un mechero bunsen. En nuestro caso requerimos de este proceso en la preparación de la muestra de plátano y de células epiteliales de la boca.

CUBRIMIENTOEs recomendable colocar un cubreobjetos (una pequeña lámina de cristal) sobre la muestra. Esta ayuda a que que las lentes del microscopio al acercarse a la muestra no la contaminen o dañen.

CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES

Nº aumentos de Imagen 3: 15 ocular x 10 objetivo x 2 (ampliada al doble)= 300 aumentos

Imagen 3: García, F. (2014). Lápiz de cedro.

Tamaño medido = 3.5 cm 3.5cm

Tamaño real (diámetro de la muestra)= 300

Tamaño real = 0.117 mm (117 µm) aprox.

Floema

Xilema

Nº aumentos de Imagen 4 y 5: 15 ocular x 10 objetivo = 150 aumentos.

Imagen 4 y 5: García, F. (2014). Epidermis de cebolla.


Núcleo

Pared celular


Imagen 6: De Lorenzo, Lucas. (2014). Patata.

Nº aumentos de Imagen 6: 15 ocular x 10 objetivo = 150 aumentos.

Tamaño real = 0.53 mm

Amiloplastos (morado): su color se debe al efecto del tinte utilizado (Lugol) sobre el almidón.

Tamaño medido = 8cm 8cm

Tamaño real de la muestra= 150


Nº aumentos de Imagen 7: 15 ocular x 4 objetivo / 2 (reducida al doble)= 30 aumentos

Imagen 7: García, F. (2014). Pétalo de adelfa.

Tamaño medido = 6.7cm 6.7cm

Tamaño real de la muestra= 30

Tamaño real = 2.233 mm aprox.

Epidermis

Células del pétalo, con cromoplastos en su interior que aportan a las células (y por tanto a la flor) su color característico.


Nº aumentos de Imagen 9: 15 ocular x 10 objetivo x 2 (ampliada al doble) = 300 aumentos.

Imagen 8: García, F. (2014). Enves de lirio.Imagen 9: de Lorenzo, L. (2014). Envés de lirio 2


Estomas con sus partes diferenciadas (el ostiolo y las células oclusivas) distintas del resto de las células epidérmicas.



Vacuolas

Imagen 10: García, F. (2014). Tomate.


Nº aumentos de Imagen 11: 15 ocular x 10 objetivo x 2 (ampliada al doble)= 300 aumentos

Imagen 11: Delgado, L. (2014). Plátano.

Se pueden observar las células del plátano

Cavidad secretora

Piel de la naranja

Nº aumentos de Imagen 12: 15 ocular x 10 objetivo = 150 aumentos

Imagen 12: García, F. (2014). Naranja.


AMILOPLASTOS

CÉLULAS EPITELIALES MUERTAS (EPIDERMIS DE PATATA)

Imagen 13: de Lorenzo, L. (2014). Patata

En la foto (150x) se puede observar la diferencia entre los dos tipos de tejido que están presentes en la patata: la zona epitelial, que no contiene amiloplastos, y que tiene un color y textura diferente, debido posiblemente a las diferencias fisiológicas entre las células; y la zona interna, cuyos amiloplastos presentes en sus células se tiñen por el efecto del lugol.

CÉLULAS Y TEJIDOS ANIMALES

Tamaño real = 0.067mm (67µm)

Imagen 13: García, F. (2014). Saliva.


Membranas de una célula teñidas por el azul de metileno.

Núcleo

Tamaño medido = 1 cm 1cm

Tamaño real= 150

DIBUJO ROTULADO DE LA NARANJA

E 1 : 0.01

2cm

Imagen 14: Delgado, L. (2014). Dibujo de la naranja.

Cavidad secretora

Piel de la naranja

DIBUJO ROTULADO DE CÉLULAS EPITELIALES

BUCALES

Imagen 13: de Lorenzo L.. (2014). Saliva. Imagen 16: de Lorenzo, L. (2014). Células bucales.

Escala 1:150

BIBLIOGRAFÍA● http://www.barbacena.ifsudestemg.edu.

br/sites/default/files/microtomo_foto_1.jpg● http://www.barbacena.ifsudestemg.edu.br/destaques/estudante-iniciacao-

cientifica-realiza-parte-pesquisa-ufv● http://diposit.ub.edu/dspace/handle/2445/13195?locale=es● https://books.google.es/books?id=KjwNmqIz5-

YC&pg=PA28&dq=LUGOL&hl=es&sa=X&ei=97CyVMulJ8a0Ua7igJAI&ved=0CE0Q6AEwCA#v=onepage&q=LUGOL&f=false

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