UNIVERSIDAD DE SAN MARTÍN DE PORRES FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE CIENCIAS BÁSICAS FISIOLOGÍA GUÍA DE PRÁCTICAS PROFESOR FUNDADOR: Dr. Frank Lizaraso Caparó RESPONSABLE DE LA ASIGNATURA: Dr. Enrique Ruiz Mori COORDINADOR DE ASIGNATURA: Mg. José Torres Solís PERSONAL DOCENTE Dr. Víctor Avalo Chávez Mg. Hernán Ruiz Mori Dra. Vilma Santiváñez García Dr Luna Ordoñez Geisen Dr Chipana Ramos Anthony Dr Sanchez Huasipoma Cesar Dr Cano Navarro Jose Dr, Cruz Pasos Roberto Dr Fuentes Rivera Jose Dra Rivara Castro Alda Dr. Jorge Rodriguez Montes de Oca Mg. Juan Carlos Villanes Cárdenas 2016
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UNIVERSIDAD DE
SAN MARTÍN DE PORRES
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE
CIENCIAS BÁSICAS
FISIOLOGÍA
GUÍA DE PRÁCTICAS PROFESOR FUNDADOR: Dr. Frank Lizaraso Caparó RESPONSABLE DE LA ASIGNATURA: Dr. Enrique Ruiz Mori COORDINADOR DE ASIGNATURA: Mg. José Torres Solís
PERSONAL DOCENTE
Dr. Víctor Avalo Chávez Mg. Hernán Ruiz Mori
Dra. Vilma Santiváñez García Dr Luna Ordoñez Geisen
Dr Chipana Ramos Anthony Dr Sanchez Huasipoma Cesar
Dr Cano Navarro Jose Dr, Cruz Pasos Roberto
Dr Fuentes Rivera Jose Dra Rivara Castro Alda
Dr. Jorge Rodriguez Montes de Oca Mg. Juan Carlos Villanes Cárdenas
2016
PRACTICA DE LA MEMBRANA CELULAR
VIDEO FORUM
La membrana celular es una estructura fundamental y primordial de todas y cada una de las
células. La membrana está compuesta por una bicapa de lípidos anfifática (cabeza polar
hidrofílica y cola hidrofóbica) que la hace impermeable a los solutos, incluyendo iones,
pequeñas moléculas inorgánicas y proteínas.
OBJETIVO:
Destacar la importancia en la fisiología celular de los sistemas de membrana.
Conocer las funciones que cumple la membrana celular.
Establecer el rol que cumplen los radicales libres.
MATERIAL: Video: La Membrana Celular
SEGUN EL VIDEO DISCUTA Y COMENTE EL SIGUIENTE CUESTIONARIO:
1. ¿Cómo aparece la vida?
2. ¿Por qué se debe utilizar el término de Sistemas Membranales?
3. ¿Cómo está constituida la Membrana Celular?
4. ¿Qué tipo de proteínas hay en la membrana celular?
5. ¿Cuáles son los 5 roles de la Membrana Celular?
6. ¿Cómo se puede explicar el proceso de envejecimiento celular?
7. ¿Qué genera la diferencia de cargas a través de la membrana?
8. ¿En qué consiste la hiperpolarización de la Célula?
9. Explique la cascada del Acido Araquidónico
10. ¿Dónde se produce el Tromboxano A2 y qué función cumple?
11. ¿Dónde se produce la Prostaciclina y qué función cumple?
12. ¿Qué procesos sufren los Acidos Grasos membranales insaturados?
13. ¿Qué es un radical libre?
14. Mencione 3 procesos ocasionados por los Radicales Libres
15. ¿Cuál es la función de los antioxidantes y dónde se encuentran?
PREGUNTAS:
1. Mencione cómo se producen los radicales libres en el organismo
2. Mencione ejemplos de Antioxidantes de membrana, intracelular y extracelular.
3. ¿En qué consiste el estrés oxidativo?
4. ¿En qué alimentos se encuentran los antioxidantes?
5. Se puede agregar antioxidantes a los alimentos, y ¿para qué serviría?
PRACTICA DE NEUROFISIOLOGIA
REFLEJOS
El reflejo no es más que la respuesta motriz o secretoria, independiente de la voluntad,
provocada inmediatamente después de la aplicación de un estímulo sensitivo o sensorial,
que puede ser o no consciente.
El arco reflejo contiene 5 componentes fundamentales
1- Un receptor
2- Una neurona sensorial
3- Una o más sinapsis dentro del SNC
4- Una neurona motora
5- Un órgano efector que usualmente es un músculo
Los Reflejos se clasifican en 4 categorías:
• 1. Reflejos osteotendinosos o profundos.
• 2. Reflejos cutáneomucosos o superficiales.
• 3. Reflejos de automatismo medular.
• 4. Reflejos de postura y actitud.
OBJETIVO:
1. Analizar el arco reflejo
2. Estudiar algunos reflejos en el hombre.
MATERIAL:
- Martillo
- Algodón
- Baja lengua
- Linterna
PROCEDIMIENTO:
1. Reflejos osteotendinosos o profundos: Son aquéllos en los que la respuesta se obtiene
por la aplicación de un estímulo mecánico (golpe con el martillo de reflejos) sobre los
tendones y ocasionalmente, sobre el hueso o el periostio. Deben ser considerados como
reflejos propioceptivos. El mecanismo es generado por estiramiento muscular.
1.A. Reflejos del orbicular de los párpados: Percutiendo la arcada superciliar o la raíz de la
nariz estando el enfermo con los párpados entornados, se produce la contracción del
orbicular de los párpados y por lo tanto, la oclusión palpebral bilateral Es recomendable
realizarlos con los ojos cerrados.
1.B. Reflejo maseterino: El sujeto permanece con la boca entreabierta y en esa posición se
percute con el martillo directamente el mentón o se coloca el índice de la mano izquierda
transversalmente debajo del labio inferior. La respuesta es la elevación de la mandíbula.
1.C. Reflejo bicipital. Mantenga el antebrazo del sujeto en semiflexión y semisupinación,
descansando sobre el suyo sostenido por el codo. El explorador apoya el pulgar de su mano
libre sobre el tendón del bíceps del sujeto, en la fosa antecubital y percute sobre la uña del
pulgar con un martillo. Se obtiene la flexión del antebrazo sobre el brazo.
1.D. Reflejo tricipital: Con una mano se toma el antebrazo del sujeto por el codo y se
sostiene sobre su antebrazo, colocado en ángulo recto con el brazo y se percute con la parte
más ancha del martillo el tendón del tríceps (cuidando de NO percutir el olécranon). La
respuesta es la extensión del antebrazo sobre el brazo (reflejo tricipital).
1.E. Reflejo rotuliano o patelar: Sujeto sentado en una silla con los pies péndulos y
tratando que se encuentre relajado. Se percute directamente sobre el tendón rotuliano. La
respuesta es la extensión de la pierna.
1.F. Reflejo aquíleo. Sujeto puesto de rodillas sobre la cama, camilla o una silla, pies fuera
del borde: se lleva ligeramente hacia delante la planta del pie y se percute sobre el tendón
de Aquiles o tendón calcáneo.La respuesta es la extensión del pie.
2. Reflejos Cutaneo-Mucosos o Superficiales: Se obtienen como respuesta a la
aplicación de un estímulo, ya sea sobre la piel, o sobre las membranas mucosas. Se utiliza
para ello una aguja común, o un alfiler (esto para la exploración a nivel cutáneo) y un
algodón cuando se exploren las mucosas.
2.A. Reflejo Corneano: El estímulo de la córnea y de la conjuntiva bulbar con un pañuelo
(punta de ángulo) o con un pequeño trozo de algodón, provocan la contracción del orbicular
de los párpados. Es necesario introducir el algodón lateralmente desde fuera del campo
visual del sujeto para suprimir el reflejo defensivo. La Vía aferente: V par (rama oftálmica).
La Vía eferente: VII par.
2. B. Reflejo Faríngeo o Nauseoso: Al excitar el velo del paladar o la pared posterior de la
faringe (con un hisopo), se produce la contracción de los constrictores de la faringe,
acompañada de náuseas. La Vía aferente: IX par y la Vía eferente: X par.
Reflejo Pupilar de acomodación: observe el diámetro pupilar en un sujeto al cual se le
invita a mirar fijamente la punta del dedo índice del operador (colocado a 10 cm de
distancia de los ojos), luego se le indica al observar un objeto colocado a gran distancia.
Compare el diámetro pupilar en ambas situaciones.
Reflejo Fotomotor: ilumine un ojo con una linterna, y observe el diámetro de la pupila del
ojo iluminado y compare con la pupila del otro ojo.
PREGUNTAS:
1. Realice un diagrama que explique un arco reflejo
2. ¿Cuántos tipos de arcos reflejos existen? Mencione ejemplos
3. ¿Qué factores pueden modificar un reflejo?
4. ¿Qué es un reflejo miotático o de estiramiento?
5. ¿Qué vías sigue el reflejo de Babinski y cuál es su importancia?
PRACTICA DE NEUROFISIOLOGIA
COORDINACION MOTORA
El cerebelo es el Organo encargado de mantener el equilibrio y la coordinación de los
movimientos.
Se denomina un movimiento coordinado cuando el desplazamiento de un segmento de un
miembro o de todo el cuerpo responde en forma exacta, rápida y adecuada al fin propuesto.
En la coordinación y el equilibrio son necesarias la conjunción armónica de cinco factores:
la sensibilidad propioceptiva, el componente vestibular, el cerebelo, el componente visual y
el área cortical respectiva.
OBJETIVO:
1. Analizar la taxia (coordinación).
2. Estudiar el equilibrio (estático y dinámico)
MATERIAL:
- Reloj
- Silla giratoria
PROCEDIMIENTO:
1. Prueba índice-naríz: Se ordena al sujeto (con los ojos cerrados) tocar la punta de su
naríz con la yema del dedo índice de una mano partiendo de cierta distancia. Primero
lentamente y luego rápidamente. (tipometría, hipermetría).
2. Prueba Oreja-Indice: Con los ojos cerrados se toca la oreja con el índice de la mano del
lado opuesto.
3. Prueba de afrontación de índices: Se ordena al sujeto abrir y cerrar los brazos en forma
repetida, procurando tocarse las puntas de los dedos índices al cerrarlos. Alternar la
maniobra con ojos abiertos y ojos cerrados.
4. Maniobra de Romberg: El sujeto en bipedestación con los pies juntos, se le indica que
cierre los ojos. Cerciorarse que el paciente mantenga esta postura sin presentar oscilación u
Se caracteriza por la reducción de la capacidad pulmonar total, ya sea por alteraciones del
parénquima (fibrosis, ocupación, amputación…), del tórax (rigidez, deformidad) o de los
músculos respiratorios y/o de su inervación.
Se determina patrón restrictivo cuando la relación de Capacidad Vital versus el ideal es
menor del 75%.
OBJETIVOS:
1. Interpretar las curvas de espirometría
2. Conocer el sustento científico de la espirometria
MATERIALES
Espirómetro Benedict-Roth u otro modelo equivalente.
Reservorio de cal soldada o de otro compuesto químico que absorba el CO2.
Quimiógrafo anexo, con registro gráfico de los volúmenes pulmonares en función del
tiempo.
PROCEDIMIENTO
1.-Control: registrar los movimientos respiratorios en el cilindro del quimógrafo en función
del tiempo, pero sin conectar el reservorio del absorbente del CO2.
Previamente se debe registrar el efecto de la altura del tambor en función del tiempo, para
verificar la condición de equilibrio debido a la fuerza de la gravedad (peso) y del empuje
del agua (sello).
2.-Repetir pasó 1, intercalando el absorbedor del CO2 (cal sodada).
3.-Determinar la capacidad vital.
4.-Determinar el aire corriente y la frecuencia respiratoria.
5.-Determinar las reservas inspiratoria y espiratoria.
6.-Realizar un ejercicio estandarizado (bicicleta estacionaria) y medir ventilación pulmonar,
comparando luego con los valores obtenidos en reposo en el mismo sujeto.
VARIABLES DE FUNCIÓN RESPIRATORIA DEL HOMBRE EN REPOSO
N° Función Abreviación Valor numérico (L)
1 Capacidad pulmonar total TLC 6
2 Capacidad vital CV 4.7
3 Volumen residual VR 1.3
4 Aire corriente Vt 0.5
5 Volumen de reserva inspiratoria IRV 3.0
6 Volumen de reserva espiratoria ERV 1.2
7 Capacidad funcional residual FRC 2.5
8 Capacidad inspiratoria IC 3.5
9 Espacio muerto Vd 0.15
10 Frecuencia respiratoria Fr 12 x min
11 Volumen minuto respiratorio Ve 6 Lx min
12 Ventilación máxima Vmáx 120 Lx min
ESPIROMETRIA 2:
MATERIALES:
Espirómetro de Benedict
Curvas Espirométricas.
PROCEDIMIENTO:
1. Reconozca los principios de una prueba espirométrica.
2. Se registrará la edad, talla y sexo de la persona a someterse a la prueba. Se sienta
cómodamente y se coloca el clip en la nariz, luego la persona debe realizar una Inspiración
profunda y luego pondrá la boquilla entre los labios, asegurándose de no perder parte del
aire espirado, y soplará todo lo que pueda.
3. Cada grupo tendrá diversas Curvas de Espirometría, las cuales las desarrollará con su
profesor.
PRUEBA BRONCODILATADORA (PBD): La prueba broncodilatadora (PBD) tiene por
objeto poner de manifiesto la posible existencia de reversibilidad de la obstrucción
bronquial. Para ello, se practica en primer lugar una espirometría basal al paciente; luego se
le administra al paciente en cámara espaciadora 3 o 4 “puffs” de salbutamol y se espera
entre 15 a 20 minutos. Pasado ese tiempo, se le realiza una nueva espirometría.
PREGUNTAS:
1. ¿Cuántos tipos de espirómetros existen y cómo funcionan?
2. ¿Cómo se determina el volumen residual?
3. ¿Qué evalúa la espiración forzada?
4. ¿En qué casos se usa el VEF 25-75%?
5. ¿Qué es el salbutamol y cómo influye en la prueba de espirometría?
PRACTICA DE FISIOLOGIA ENDOCRINA
INDICE DE MASA CORPORAL, MASA MAGRA, CIRCUNFERENCIA ABDOMINAL
La evaluación nutricional de un individuo incluye una encuesta alimentaria, el examen físico
que incluya la Antropometría y algunos exámenes de laboratorio (hemoglobina, albúmina,
ferritina, etc).
La antropometría deriva del término antropo = hombre y de metria = medida, es decir la
medición del cuerpo humano, es la técnica más usada en la evaluación nutricional y incluye:
1. Peso y Talla
2. El Índice Masa Corporal
3. Evaluación de los pliegues.
4. Indice Cintura – Cadera
Peso: El peso como parámetro aislado no tiene mayor importancia, tiene que expresarse en
función de la edad de la persona y de su talla.
Talla: La talla también debe expresarse en función de la edad y del desarrollo de la
persona. Se acepta como normal una talla entre el 95% y el 105% del Standard.
Indice de peso para la talla: El índice de peso para la talla ha sido utilizado clásicamente
para evaluar el estado nutricional.
Indice de masa corporal: El índice de masa corporal (IMC) es considerado como el mejor
indicador de estado nutricional, por su buena correlación con la masa grasa en sus
percentiles más altos y por ser sensible a los cambios en composición corporal con la edad.
IMC = peso (kg) / talla2 (m2)
Clasificación del estado nutricional en función del índice de masa corporal (IMC)
Clasificación IMC Riesgo de comorbilidad
Delgadez o desnutrición < 18.5 Bajo (pero existe riesgo de otros calórica Problemas clínicos) Normal 18.5-24.9 Medio Sobrenutrición >25 Sobrepeso 25-29.9 Aumentado Obesidad grado I 30-39.9 Moderado Obesidad grado II 35_39.9 Severo Obesidad grado III > 40 Muy severo
Pliegues cutáneos: La medición de pliegues cutáneos es un indicador de masa grasa
subcutanea corporal y por lo tanto es especialmente útil para el diagnóstico de la obesidad.
Los pliegues pueden medirse en diferentes sitios, la OMS sugiere la medición de los
pliegues tricipital y subescapular.
Para medirlos se requiere de un calibrador ("caliper").En esencia consiste en un aparato
dotado de 2 valvas que mantienen una presión constante en sus extremos, y permiten ver la
separación entre ambas en una escala graduada en milímetros (con una precisión de 0.2
mm) con una escala efectiva de 3 a 33 mm.
El pliegue tricipital se mide en el punto medio entre acromion y olécranon, en cara
posterior del brazo, teniendo la precaución de no incluír el músculo en la medición. La
determinación del espesor del pliegue cutáneo se deberá hacer sobre el brazo izquierdo para
las personas diestras y en el contrario si el sujeto fuera zurdo, con ello se busca que el
desarrollo muscular más acentuado en el brazo mas hábil influya lo menos posible en las
determinaciones biométricas.
El pliegue subescapular se mide 1 cm por debajo del ángulo inferior de la escápula, en
diagonal siguiendo la línea natural de la piel en un ángulo de 45° con la columna vertebral..
Los pliegues subcutáneos deben ser medidos en tres ocasiones, escogiendo la media
(medio) de estos tres valores.
Indice Cintura – Cadera: Es un parámetro que permite evaluar el riesgo para desarrollar
enfermedades cardiovasculares o metabólicas.
El índice se obtiene midiendo el perímetro de la cintura a la altura de la última costilla
flotante, y el perímetro máximo de la cadera a nivel de los glúteos.
Interpretación:
ICC = 0,71-0,85 normal para mujeres.
ICC = 0,78-0,94 normal para hombres.
Interpretación según el ATP III:
ICC = 0,80 normal para mujeres.
ICC = 0,90 normal para hombres.
Interpretación según la OMS
ICC = 0,80 normal para mujeres.
ICC = 1,00 normal para hombres.
OBJETIVO Familiarizarse con los test de antropometría e interpretarlos
MATERIALES
Un tallímetro y balanza
Un centímetro
Un cáliper
PROCEDIMIENTO
2. Se les tomarán medidas de peso, talla, índice de masa corporal (IMC), relación
cintura/cadera a cada alumno del grupo.
3. Con los datos de IMC se clasificaran a los alumnos en eutróficos, con sobrepeso u
obesos.
4. Se proceder a seleccionar a un alumno de cada tipo para realizar el estudio de los
pliegues.
PREGUNTAS:
1. ¿Cómo define el peso normal de un sujeto?
2. ¿Qué evalúa la relación cintura/cadera?
3. ¿Para qué nos sirve el IMC?
4. ¿Qué es la masa magra? ¿Cuál es el porcentaje de la masa corporal total que corresponde
a los músculos y cuál a la grasa?
5. ¿Por qué es útil la medida de los pliegues?
PRACTICA DE FISIOLOGIA ENDOCRINA
METABOLISMO DE LA GLUCOSA
La glucosa plasmática varía en relación a la ingesta de carbohidratos. Sin embargo, siempre
sus valores se encontrarán en rangos considerados “normales”, gracias a la secreción basal
y estimulada de la insulina.
Cuando falla la respuesta a la insulina o su secreción, las glicemias se elevarán por fuera de
los límites ya establecidos.
Fisiológicamente frente al ejercicio extenuante, se consume glucosa y eso hace que las
hormonas contrarreguladoras se eleven en sangre a fin de liberar glucosa del hígado.
En el test de ejercicio, se estimula la liberación de GH mediante la actividad física. Se
emplea en la práctica clínica como tamizaje de déficit de hormona de crecimiento..
CRITERIOS DIAGNOSTICOS DE LOS TRASTORNOS DEL METABOLISMO DE
LOS CARBOHIDRATOS BASAL
GLICEMIA BASAL GLICEMIA 2 HORAS DIAGNOSTICO
POST CARGA DE GLUCOSA
<110 MG% <140 MG% NORMAL
110-126 MG% 140 – 199 MG% INTOLERANCIA A
LA GLUCOSA
>126 MG% >200 MG% DIABETES MELLITUS
OBJETIVOS:
Interpretar y realizar los exámenes de glicemia
MATERIALES
Un glucómetro capilar, lancetas, cintas reactivas
Glucosa anhidra 75 gramos (3 paquetes)
Agua, limones
PROCEDIMIENTO
Los alumnos seleccionados previamente de acuerdo a su IMC (dos eutróficos, dos con
sobrepeso y dos obesos), tendrán un ayuno de por lo menos 2 horas previas a la práctica. Se
les dividirá en 2 grupos (de tres alumnos cada uno)
GRUPO A: TEST DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA MODIFICADO
1. Se les tomará la glicemia capilar con el glucómetro, luego se les dará a beber la glucosa
anhidra diluida en 300 cc de agua con jugo de limón. Quedarán en reposo.
2. A los 60 y 90 minutos después se les medirá la glicemia capilar.
alumno 1 alumno 2 alumno 3
glucosa basal
60 minutos post ingesta
90 minutos post ingesta
GRUPO B: TEST DE EJERCICIO MODIFICADO
1. Se tomará la glicemia capilar basal, luego serán sometido a ejercicio aeróbico continuo
durante 30 minutos.
2. Se medirá la glicemia cada 15 minutos hasta finalizar el ejercicio.
alumno 1 alumno 2 alumno 3
glicemia basal
glicemia a los 15 min
glicemia a los 30 min
PREGUNTAS
1. Grafique la curva de glicemia en las personas sin alteraciones del metabolismo de
carbohidratos, en los intolerantes a la glucosa y en los diabéticos.
2.¿ En qué consiste la Hemoglobina glicosilada y cuál es su importancia?
3. ¿Qué entiende por hormonas contrarreguladoras y cuáles son? En que orden actúan
frente a la disminución de la glicemia?
4. ¿Cuál es la base fisiológica para el test de ejercicio?
5. ¿En qué consiste el índice HOMA y cuál es su utilidad?
PRACTICA DE HEMATOLOGÍA
HEMATOCRITO, VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN,
La sangre es una suspensión de glóbulos rojos, leucocitos, plaquetas en una solución
compleja (plasma) de gases, sales, proteínas, lípidos. Para obtener un índice del estado
sanguíneo en lo que respecta a los elementos formes de la sangre se recurre a la
determinación del Hematocrito. Conociendo el hematocrito se puede determinar el nivel de
Hemoglobina.
El volumen de sangre circulante suma aproximadamente el 7% del peso corporal,
Alrededor del 55% de la sangre es plasma, con un contenido de proteínas de 7g/dl.
La principal proteína de los eritrocitos es la hemoglobina compuesta por el hemo que
contiene hierro, unido a la globina
La afinidad de la Hemoglobina por el oxígeno varía en relación al pH, la temperatura, la
concentración del 2-3 difosfoglicerato.
OBJETIVO:
Determinar el hematocrito y la velocidad de sedimentación
MATERIALES:
Agujas hipodérmicas
Jeringas esterilizadas descartables
Heparina
Algodón, alcohol,
Torniquete
Centrífuga
Tubos capilares
PROCEDIMIENTO:
Hematocrito: Es la relación porcentual entre la cantidad de elementos formes y el plasma.
Se usa sangre con anticoagulante extraída de la vena.
1. Tomar con una pipeta Pasteur una cantidad de sangre
2. Introducir la pipeta hasta el fondo del Tubo de Wintrobe
3. Una vez que está en el fondo, oprimir el bulbo para que la sangre pase al tubo, al mismo
tiempo que se saca lentamente la pipeta Pasteur, depositar la sangre hasta que llegue a la
marca de 100.
4. Centrifugar el tubo por 30 minutos a 3 mil revoluciones por minuto, al final del cual hay
una separación completa entre el plasma y los glóbulos rojos.
5. Leer en la escala ascendente el nivel al cual ha llegado la columna de los glóbulos rojos.
Esta cifra es el Hematocrito expresada en porcentaje.
Velocidad de sedimentación globular: Es la velocidad con que sedimenta la sangre y
depende principalmente de la densidad del medio que está relacionada con la concentración
del fibrinógeno.
1. Colectar 5 cc de sangre venosa en un tubo de ensayo con 1 cc de citrato de sodio como
anticoagulante.
2. Agitar la sangre y luego llenar los tubos pipetas graduadas de 300 mm de largo x 2.5 mm
de diámetro hasta la marca cero o un tubo de hematocrito hasta la señal de 10 cm..
3. El tubo se mantendrá en posición perfectamente vertical durante la sedimentación de los
eritrocitos.
4. Después de transcurrido una hora, leer la distancia a la cual han caído los glóbulos rojos
TIEMPO DE SANGRIA – GRUPO Y RH
La Hemostasia se lleva a cabo a través de la vasoconstricción, la agregación plaquetaria y
la coagulación sanguínea
La coagulación de la sangre es un proceso complejo que consiste en la activación
secuencial de diversos factores presentes en ella. La cascada de reacciones en la que un
factor activado va activar al siguiente y así sucesivamente.
Muchos factores son sintetizados en el hígado como Vitamina K, y factores de coagulación
Los grupos sanguíneos son importantes para la compatibilidad de las transfusiones
sanguíneas.
En el ser humano existen cuatro grupos sanguíneo principales: O, A, B, AB.
Además de los grupos sanguíneos existen grupos o factor rhesus Rh positivo y negativo
OBJETIVOS:
1. Observar el fenómeno de coagulación
2. Determinar el grupo sanguíneo que tiene cada alumno
MATERIALES:
Agujas hipodérmicas
Jeringas esterilizadas descartables
Heparina
Algodón, alcohol,
Torniquete
Sueros para determinar grupos sanguíneos
Cronómetro
Centrífuga
Tubos capilares
PROCEDIMIENTO:
Tiempo de sangría: tiempo que demora en detenerse la sangría producida por una pequeña
incisión cutánea. Representa un índice global de la hemostasia, con especial consideración
de la función plaquetaria.
1. Previa limpieza del lóbulo de la oreja, se efectuará una punción con una lanzeta.
2. Iniciar el cronometraje y absorber la sangre con papel filtro cada 30 segundos.
3. El tiempo que demora para deternerse el flujo sanguíneo es el tiempo de sangría.
Grupo sanguíneo:
1. Con una lanceta estéril, previa limpieza de la piel con alcohol, se punza el dedo de un
alumno voluntario y se recoge tres gotas de sangre en un portaobjeto.
2. Agregar anticuerpos de grupos sanguíneos Anti-A, Anti-B y Anti-Rh.
3. Mezclar bien la suspensión con el suero y al cabo de dos minutos observar cual de los
portaobjetos ha tenido reacción de aglutinación.
PREGUNTAS:
1. ¿Qué elementos pueden hacer variar el hematócrito?
2. ¿Cómo define la Velocidad de Sedimentación Globular y cuál es su importancia?
3. ¿Qué evalúa el tiempo de sangría?
4. ¿Cuántos tipo de clasificación de Grupos sanguíneos hay?
6. ¿En qué consiste el sistema fribrinolítico?
PRACTICA DE NEFROLOGIA
SOLUCIONES, OSOMOLARIDAD, CALCULOS Y RELACIONES
La concentración de solutos en soluciones de uso clínico se expresa de diferentes maneras,
como son molaridad, molalidad, equivalencia y osmolaridad,
Como consecuencia del uso permanente en nuestra práctica médica de diversas soluciones
estándares, nos obliga a poder comprender las conversiones para un mejor manejo de las
mismas.
Solución: es la mezcla homogénea de dos o más sustancias independientemente del estado
físico que presenten. Consta de dos partes el Soluto y el Solvente.
Molaridad Un mol es un número de gramos de una sustancia o compuesto igual al peso
fórmula, y contiene un número de Avogadro (Nº Av) de moléculas, iones. Por ejemplo, 180
gramos de glucosa (Peso Molecular, o PM = 180) representan 1 mol (o peso molar) de la
misma, y al mismo tiempo un Nº Av de moléculas de glucosa. 180 miligramos de glucosa
representarían 1 milimol, o sea 1/1000 del número de Avogadro de moléculas (6,02 x 1020).
En el caso del NaCl (Peso Fórmula, o PF = 58,45), 58,45 g representan 1 mol (un peso
molar) del compuesto, y al mismo tiempo 1 Nº Av de "unidades" de NACI, que llamaremos
"unidades formulares" del compuesto. Esta denominación es porque cuando se disuelve 1
mol de NaCl en agua, la solución de los iones se representa así,
H2O
NaCl Na+ + Cl-
1 mol 1 mol 1 mol
Solución Molar: es cuando en un litro de solución hay una mol de un soluto.
Solución Molal: es la que contiene una Mol de soluto en un kilogramo de solvente.
La fórmula es: Solución Molal = moles/kg solvente
Equivalente: relaciona el peso iónico de una sustancia cargada eléctricamente (electrolito)
entre el número de cargas que lleva.Para definir la equivalencia como método de expresión
de concentración debemos considerar primero el peso equivalente.
Peso Equivalente de un ión: es la masa atómica dividida por la valencia. Para un ión
monovalente como el sodio, una mol tendría 1 Equivalente; mientras que un ión divalente
como el calcio tendríamos que una mol de calcio contiene 2 equivalentes.
peso equivalente = pe = Peso Fórmula (Peso atómico) / # de cargas
Osmolaridad.
Expresa la actividad osmótica que ejercen las partículas activas por Kilogramo de agua, y
depende de su concentración. El verdadero término debe ser de Osmolalidad. Su
importancia es básica para definir la tonicidad de soluciones.
peso osmolar = po = PF / # partículas
El peso osmolar es un parámetro que se usa para establecer los osmoles contenidos en la
cantidad de sustancia que se colocará en solución.
La osmolaridad (Osm), como expresión de concentración, se define así:
Osm = osm / litro
miliosmolaridad = mOsM = miliosmoles / litro
Osmolaridad = Osm = molaridad (M) x # partículas
Tonicidad: Se refiere a la osmolalidad efectiva de una solución.
Solución Isotónica: es la que tiene la misma osmolalidad que la del plasma (285 mOsm/L)
Solución Hipertónica: es cuando la solución tiene mayor osmolalidad que la del plasma.
Solución Hipotónica: es cuando la solución tiene menor osmolalidad que la del plasmas.
OBJETIVO
Conocer y calcular las concentraciones de las diferentes soluciones
MATERIALES:
1. Sales de rehidratación oral
2. 01 ampolla de ClNa 20%
3. 01 ampolla de ClK 20%
4. 01 fco de ClNa 9‰
5. 01 frasco de Glucosa 5% AD
PROCEDIMIENTO: Realice cada uno de los siguientes ejercicios:
1. Calcular la Osmolaridad de las siguientes soluciones:
a. 1 litro de Cloruro de sodio 0.9%
b. 1 ampolla de 20cc de Cloruro de sodio al 14.9%
c. 1 ampolla de 20 ml de Cloruro de sodio al 20%
d. 1 ampolla de 10 cc de Cloruro de potasio 14.9%
e. 1 ampolla de 20 cc de Cloruro de potasio 20%
f. 1 litro de dextrosa al 5%
g. 1 litro de dextrosa al 10%
h. 1 ampolla de dextrosa 20 cc al 33%
i. 1 ampolla de 20 cc de gluconato de calcio al 10%
j. 1 ampolla de 10 cc de cloruro de calcio al 10%
h. 1 ampolla de 20 cc de bicarbonato de sodio al 10%
2. Cuantos mEq hay en las siguientes soluciones:
a. 1 ampolla de 20 cc de ClNa al 20%
b. cuantos mEq de K hay en una ampolla de 1g de ClK
c. Cuantos mEq de bicarbonato existen en una ampolla de 20cc de bicarbonato 8.4%
d. Cuantos mEq de calcio hay en una ampolla de 10cc de cloruro de calcio al 10%
3. Calcule la osmolaridad plasmática de un paciente con el siguiente perfil:
1. El metabolismo de carbohidratos y grasas produce grandes cantidades de CO2 que
normalmente se elimina por ……. mientras que el metabolismo de las proteínas produce
…….. que son tamponados por el …… y son eliminados por …..
2. El tiempo que demoran en activarse los mecanismos de compensación o corrección del
medio sanguíneo es:
a) Buffers …….
b) Mecanismo respiratorio ……….
c) Mecanismo Renal ………….
3. ¿A qué se denomina ácido fuerte y cuándo ácido débil? Mencione 3 ejemplos de cada
caso
4. ¿Qué es el anión gap?
5. ¿Cuál es la importancia del anión gap?
PRACTICA DE FISIOLOGIA DIGESTIVA
pH Y ACIDEZ GASTRICA
La pepsina secreta en las glándulas gástricas es la enzima encargada de iniciar la digestión
de las proteínas. Esta enzima tiene actividad máxima a un pH de 2 a 3 y tiende a inactivarse
cuando el pH es mayor de 5. En consecuencia para que esta enzima actúe sobre las
proteínas, los jugos gástricos han de ser ácidos y es el ácido clorhídrico, que es
secretado por las células parietales, el que le confiere dicha característica.
Los antiácidos son compuestos básicos que neutralizan el ácido en la luz gástrica y su uso
está indicado en gastritis y como adyuvante en enfermedad úlcera péptica.
OBJETIVO:
Reconocer la importancia de la acidez gástrica
MATERIALES:
Placas Petri
Ácido clorhídrico al 0,1N
Tiras Reactivas para medición de pH
Un frasco de antiácido líquido
Un tarro de leche.
PROCEDIMIENTO:
1. Colocar 2cc de ácido clorhídrico al 0,1N en las placas petri evaluándose el pH de la
solución con las tiras reactivas.
2. Agregar en una de ellas el antiácido y en la otra la leche diluida, en volúmenes de 1 cc.
3. Medir el pH en cada una de las soluciones.
PREGUNTAS:
1. ¿Qué elementos forman parte del jugo gástrico?
2. ¿Cuál es la función de cada célula de una glándula gástrica?
3. Haga un esquema de los mecanismos de la producción de ácido gástrico.
4. Mencione las fases de la secreción ácida gástrica.
5. ¿Cuáles son las sustancias que inhiben y cuales las que estimulan la secreción ácida
gástrica?
6. Mencione los efectos de los diferentes tipos de alimentos (carbohidratos, lípidos,
proteínas) sobre la secreción ácida y el vaciamiento gástrico
7. ¿Cuáles son los mecanismos de protección de la mucosa gástrica? explique sus funciones
8. ¿Si la persona ingiere abundantes alimentos que sucede con la acidez, aumenta o
disminuye; y qué sucede si se ingiere pocos alimentos?
PRACTICA DE FISIOLOGIA DIGESTIVA
DIGESTION DE CARBOHIDRATOS (PARTE I)
La digestión de carbohidratos se inicia en la boca, gracias a procesos casi simultáneos la
masticación, salivación y deglución.
Cuando el alimento ingresa a la cavidad oral se inician mecanismos reflejos de salivación y
masticación hay información aferente a través del olfato y gusto y en los centros nerviosos
vienen órdenes por vías eferentes a los músculos masticatorios y a las glándulas salivales
para el procesamiento del alimento ingerido, los dientes fraccionan el alimento y se produce
la mezcla de estas partículas con la saliva gracias a la ayuda de la lengua.
La digestión de los hidratos de carbono se inicia por la amilasa salival o también llamada
ptialina, enzima que fragmenta el almidón en dextrinas, maltotriosa y maltosa, a nivel de
enlaces 1-4.
La digestión consiste en la conversión de grandes moléculas de nutrientes en pequeñas
moléculas que puedan ser absorbidas después. Esto se realiza mediante la hidrólisis que es
la introducción de una molécula de agua para fraccionar enlaces, en este caso de tipo 1-4.
Al deglutirse el alimento sigue actuando la amilasa salival hasta que el pH gástrico ácido la
inactiva.
Sentido Olfato
Aferencias centrales Evocación e identificación del alimento
Hipotálamo
Sentido Gusto
Centro Salivar Protuberancia Bulbo
Sublingual Submaxilar Parótida
Actividad simpática y parasimpática
Posteriormente también actúa la amilasa pancreática, secretada por el páncreas y las
enzimas secretadas por la mucosa intestinal como la maltasa o dextrinasa que actúa sobre
la maltosa, maltotriosa y dextrinas convirtiéndolas en glucosa; la lactasa que actúa sobre
la lactosa convirtiéndola en glucosa más galactosa; la sucrasa o sacarasa que actúa sobre la
sacarosa o sucrosa convirtiéndola en glucosa más fructuosa.
OBJETIVO:
Interpretar los mecanismos de la digestión de los carbohidratos
MATERIALES:
Galletas de soda
Placas petri
Lugol
PROCEDIMIENTO:
Cada alumno ingiere y mastica una galleta de soda hasta triturarla y luego coloca el bolo
triturado en la placa petri y coloca 2 o 3 gotas de lugol y se observa el cambio de color de
la mezcla y define el sabor percibido hasta ese momento.
Posteriormente se introduce otra galleta y la mastica sin deglutirla por 15 minutos para
luego deglutir el bolo triturado, ahora define el nuevo sabor percibido.
DIGESTION DE CARBOHIDRATOS (PARTE II)
MATERIALES:
Dos placas petri Acido clorhídrico 0,1 N Cápsula de lactasa Un tarro de leche Tiras reactivas para la medición de glucosa (glucocintas)
PROCEDIMIENTO:
1. Colocar 5 cc de leche diluida en dos placas petri 2. Medir con tira reactiva los niveles de glucosa en los petri 3. Agregar en uno de los petri parte del contenido de una cápsula de lactasa y
agitar 4. Agregar en el segundo petri la cápsula previamente disuelta en ácido 0.1N 5. Medir los niveles de glucosa con las tiras reactivas
PREGUNTAS:
1. ¿Qué carbohidrato contiene la galleta de soda y que otra sal está presente?
2. ¿Qué es el lugol para que sirve?
3. ¿Cómo es el sabor inicial salado o dulce por qué?
4. ¿Cómo es el sabor luego de 15 minutos de mezcla con la saliva salado o dulce, por
qué?
5. ¿Qué es un enlace 1-4 y 1-6 que enzima actúa en cada tipo de enlace?
6. Hacer un mapa conceptual con las enzimas digestivas que actúan sobre los
carbohidratos a lo largo del tracto bucogastrointestinal y páncreas: colocando lugar
de acción, enzima, tipo de enlace, sustrato y producto final.