EVALUACIÓN DE SEIS TRATAMIENTOS PRE GERMINATIVOS Y CUATRO TIPOS DE SUSTRATOS PARA LA PROPAGACIÓN DE ARUPO (Chionanthus pubescens Kunt). JEANNETH ARACELY QUISHPE IBUJÉS. TESIS. PRESENTADA COMO REQUISITO PARCIAL PARA OBTENER EL TITULO DE INGENIERA FORESTAL. ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO. FACULTAD DE RECURSOS NATURALES. ESCUELA DE INGENIERA FORESTAL. RIOBAMBA – ECUADOR.- 2009
147
Embed
EVALUACIÓN DE SEIS TRATAMIENTOS PRE GERMINATIVOS Y CUATRO TIPOS DE SUSTRATOS PARA LA PROPAGACIÓN DE …dspace.espoch.edu.ec/bitstream/123456789/708/1/33T0062.pdf · Período de
This document is posted to help you gain knowledge. Please leave a comment to let me know what you think about it! Share it to your friends and learn new things together.
Transcript
EVALUACIÓN DE SEIS TRATAMIENTOS PRE GERMINATIVOS Y CUATRO
TIPOS DE SUSTRATOS PARA LA PROPAGACIÓN DE ARUPO (Chionanthus
pubescens Kunt).
JEANNETH ARACELY QUISHPE IBUJÉS.
TESIS.
PRESENTADA COMO REQUISITO PARCIAL PARA OBTENER EL TITULO DE
INGENIERA FORESTAL.
ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO.
FACULTAD DE RECURSOS NATURALES.
ESCUELA DE INGENIERA FORESTAL.
RIOBAMBA – ECUADOR.-
2009
HOJA DE CERTIFICACIÓN.
EL TRIBUNAL DE TESIS CERTIFICA QUE: El trabajo de Tesis titulada
“EVALUACIÓN DE SEIS TRATAMIENTOS PRE GERMINATIVOS Y CUATRO
TIPOS DE SUSTRATOS PARA LA PROPAGACIÓN DE ARUPO (Chionanthus
pubescens Kunt)” de responsabilidad de la señorita egresada Jeanneth Aracely
Quishpe Ibujés, ha sido prolijamente revisado, quedando autorizado su presentación.
TRIBUNAL DE TESIS.
Ing. Eduardo Cevallos.
DIRECTOR.
…………………………..
Ing. Sonia Rosero
MIEMBRO.
………………………….
Ing. María Samaniego
MIEMBRO.
…………………………….
ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO.
FACULTAD DE RECURSOS NATURALES.
ESCUELA DE INGENIERÍA FORESTAL.
Riobamba, junio 2009
DEDICATORIA.
A, mi padre Todopoderoso que es la inspiración de mi vida, mi fuerza, mi luz, para seguir
adelante, a pesar de los obstáculos presentes en el camino si tú estás a mi lado nada me
faltara.
A mis padres por su amor, apoyo, y compresión.
A mis queridos compañeros y amigos.
A Dylan Mateo, por ser la alegría de mi vida.
AGRADECIMIENTO.
A mis padres por su apoyo incondicional.
A mí querido esposo por ser un soporte importante en mi vida.
A mis queridos maestros, que con su infinito saber han sabido guiarme a lo largo de mis
estudios para concluir felizmente con esta meta. Convirtiéndose en verdaderos amigos a
quienes admiro y respeto profundamente.
Gracias por el placer de haberlos conocido no solo como educadores, si no como valiosos
seres humanos a los que siempre llevare en mi corazón. DIOS lo bendiga siempre.
i
TABLA DE CONTENIDO
CONTENIDO.
PAG.
Tabla de contenido. i
Lista de cuadros ii
Lista de gráficos iii
Lista de anexos iv
I. TÍTULO 1
II. INTRODUCCIÓN 1
III. REVISIÓN DE LITERATURA 4
IV. MATERIALES Y MÉTODOS 33
V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 43
VI. CONCLUSIONES. 93
VII. RECOMENDACIONES
VIII. SUMARIO
IX. SUMMARY
94
95
96
X. BIBLIOGRAFÍA 97
XI. ANEXOS 99
ii
LISTA DE CUADROS
CONTENIDO
PAGINA
1. Análisis de varianza para el porcentaje de germinación de Arupo de
las muestras de laboratorio a los 60, 90, 120 y 150 días.
43
2. Comparación de medias según Tukey al 5%, para el porcentaje de
germinación de Arupo de las muestras de laboratorio a los 60, 90,
120, y 150 días, bajo diferentes tratamientos pre germinativos.
44
3. Período de germinación de las semillas desde la primera hasta la
última en germinar, por tratamiento a nivel de laboratorio.
46
4. Análisis de Varianza para el porcentaje de emergencia de Arupo a
los 60 días después de la siembra.
48
5. Interacción AB (Tratamientos pre germinativos x sustratos) según
Tukey al 5%, a los 60 días después de la siembra.
49
6. Análisis de Varianza para el Porcentaje de Emergencia a los 90 días
después de la siembra.
50
7. Interacción AB (Tratamientos Pre germinativos x sustratos) según
Tukey al 5%, a los 90 días después de la siembra.
51
8. Análisis de varianza para el Porcentaje de Emergencia a los 120 días
después de la siembra.
53
9. Interacción AB (Tratamientos Pre germinativos x sustratos) según
Tukey al 5%, a los 120 días después de la siembra.
54
10. Análisis de varianza para el Porcentaje de Emergencia a los 150 días
después de la siembra.
55
11. Interacción AB (Tratamientos Pre germinativos x sustratos) según
Tukey al 5%, a los 150 días después de la siembra.
56
12. Resumen Análisis de Varianza para el porcentaje de emergencia a
los 60, 90, 120, y 150 días después de la siembra.
58
13. Comparación de medias para el porcentaje de emergencia según
Tukey al 5% para el factor A (tratamientos pre germinativos) a los
60, 90, 120 y 150 días después de la siembra.
59
14. Comparación de medias según Tukey al 5% para el porcentaje de
emergencia para el factor B (Sustratos) a los 60, 90, 120 y 150 días
después de la siembra.
60
15. Comparación de medias según Tukey al 5% para el porcentaje de
emergencia para la interacción A x B a los 60, 90, 120 y 150 días
después de la siembra.
62
16. Período de emergencia de las plantas desde la primera hasta la
última en emerger a los 150 días.
64
17. Análisis de Varianza para la altura de las plántulas a los 30 días
después de la emergencia.
66
18. Análisis de Varianza para la altura de las plántulas a los 60 días
después de la emergencia.
66
19. Separación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo a los 60 días después de la emergencia, bajo
diferentes sustratos.
67
20. Análisis de Varianza para la altura de las plántulas a los 90 días
después de la emergencia.
68
21. Separación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo a los 90 días después de la emergencia, bajo
diferentes sustratos.
69
22. Análisis de Varianza para la altura de las plántulas a los 120 días
después de la emergencia.
70
23. Separación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo a los 120 días después de la emergencia, bajo
diferentes sustratos.
70
24. Análisis de Varianza para la altura de las plántulas a los 150 días
después de la emergencia.
71
25. Separación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo a los 150 días después de la emergencia, bajo
diferentes sustratos.
72
26. Resumen del análisis de Varianza para la altura (cm) de las plántulas
de Arupo a los 60, 90, 120 y 150 días después de la emergencia.
73
27. Comparación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo bajo diferentes tratamientos pre germinativos a
los 30, 60, 90, 120 y 150 días después de la emergencia.
74
28. Comparación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo bajo diferentes sustratos a los 30, 60, 90, 120 y
150 días después de la emergencia.
75
29. Análisis de Varianza para el diámetro de las plántulas de Arupo a
los 30 días después de la emergencia.
76
30. Análisis de Varianza para el diámetro de las plántulas de Arupo a
los 60 días después de la emergencia.
77
31. Separación de medias según Tukey al 5% para el diámetro de las
plántulas de Arupo sometidas a diferentes tratamientos pre a los 60
días después de la emergencia, germinativo.
78
32. Análisis de varianza para el diámetro de las plántulas de Arupo a los
90 días después de la emergencia.
79
33. Separación de medias según Tukey al 5% para el diámetro de las
plántulas de Arupo a los 90 días después de la emergencia, bajo
diferentes sustratos.
79
34. Análisis de varianza para el diámetro de las plántulas de Arupo a los
120 días después de la emergencia.
81
35. Separación de medias según Tukey al 5% para el diámetro de las
plántulas de Arupo a los 120 días después de la emergencia, bajo
diferentes sustratos.
81
36. Análisis de Varianza para el diámetro de las plántulas de Arupo a
los 150 días después de la emergencia.
82
37. Separación de medias según Tukey al 5% para el diámetro de las
plántulas de Arupo a los 150 días después de la emergencia, bajo
diferentes sustratos.
83
38. Resumen del análisis de varianza para el diámetro del tallo de las
plántulas de Arupo a los 30, 60, 90, 120 y 150 días después de la
emergencia.
84
39. Comparación de medias según Tukey al 5% para el diámetro (mm)
de las plántulas de Arupo bajo diferentes tratamientos pre
germinativos a los 30, 60, 90, 120 y 150 días después de la
emergencia.
85
40. Comparación de medias según Tukey al 5% para el diámetro de las
plántulas de Arupo bajo diferentes sustratos a los 30, 60, 90, 120 y
150 días después de la emergencia.
86
41. Presupuesto económico por tratamiento de acuerdo al método de
Perrin.
42. Rendimiento económico de los tratamientos.
88
89
43. Análisis de dominancia.
91
44. Tasa de Retorno de los tratamientos no dominados. 92
LISTA DE GRÁFICOS. CONTENIDO
PAGINA
1. Porcentaje de germinación de las semillas de Arupo sometidas a
diferentes tratamientos pre germinativos en muestras de laboratorio.
44
2. Porcentaje de germinación de las semillas de Arupo (%).
47
3. Período de germinación de Arupo (Anexo 1)
47
4. Comparación de medias según Tukey al 5% para el porcentaje de
emergencia en la Interacción AB (tratamiento pre germinativo x
sustrato) a los 60 días después de la siembra.
50
5. Comparación de medias según Tukey 5% para el porcentaje de
emergencia en la Interacción AB (tratamiento pre germinativo x
sustrato) a los 90 días después de la siembra.
52
6. Comparación de medias según Tukey 5% para el porcentaje de
emergencia en la Interacción AB (tratamiento pre germinativo x
sustrato) a los 120 días después de la siembra.
55
7. Comparación de medias según Tukey 5% para el porcentaje de
emergencia en la Interacción AB (tratamiento pre germinativo x
sustrato) a los 150 días después de la siembra.
57
8. Comparación de medias según Tukey para el porcentaje de
emergencia al 5% para el factor A (tratamientos pre germinativos) a
los 60, 90, 120, y 150 días después de la siembra
59
iii
9. Comparación de medias para el porcentaje de emergencia según
Tukey al 5% para el factor B (sustratos) a los 60, 90, 120 y 150 días
después de la siembra.
61
10. Porcentaje de emergencia del Arupo.
65
11. Período de Emergencia diaria de Arupo.
65
12. Altura de las plántulas de Arupo a los 60 días después de la
emergencia, bajo diferentes sustratos.
68
13. Altura de las plántulas de Arupo a los 90 días después de la
emergencia, bajo diferentes sustratos.
69
14. Altura de las plántulas de Arupo a los 120 días después de la
emergencia, bajo diferentes sustratos.
71
15. Altura de las plántulas de Arupo a los 150 días después de la
emergencia, bajo diferentes sustratos.
73
16. Comparación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo bajo diferentes tratamientos pre germinativos, a
los 30, 60, 90, 120 y 150 días después de la emergencia.
74
17. Comparación de medias según Tukey al 5% para la altura de las
plántulas de Arupo bajo diferentes sustratos a los 30, 60, 90, 120 y
150 días después de la emergencia.
76
18. Diámetro de las plántulas de Arupo a los 60 días después de la
emergencia, sometidas a diferentes tratamientos pre germinativos.
78
19. Diámetro de las plántulas de Arupo a los 90 días después de la
emergencia, bajo diferentes sustratos.
80
20. Diámetro de las plántulas de Arupo a los 120 días después de la
emergencia, bajo diferentes sustratos.
82
21. Diámetro de las plántulas de Arupo a los 150 días después de la
emergencia, bajo diferentes sustratos.
84
22. Comparación de medias según Tukey al 5% para el diámetro de las
plántulas de Arupo bajo diferentes tratamientos pre germinativos, a
los 30, 60, 90, 120 y 150 días después de la emergencia.
86
23. Comparación de medias según Tukey al 5% para el diámetro de las
plántulas de Arupo bajo diferentes sustratos, a los 30, 60, 90, 120 y
150 días después de la emergencia.
87
LISTA DE ANEXOS. CONTENIDO PÁGINA
1. Período diario de germinación de Arupo Chionanthus pubescens
Kunt.
99
2. Período de emergencia diaria de Arupo Chionanthus pubescens Kunt.
104
3. Datos registrados de la Evaluación del efecto de cinco tratamientos
pre germinativos en Arupo (Chionanthus pubescens Kunt) en cinco
tipos de sustratos.
107
4. Porcentaje de emergencia a los 60 días después de la siembra.
111
5. Porcentaje de emergencia a los 90 días después de la siembra.
112
6. Porcentaje de emergencia a los 120 días después de la siembra.
113
7. Porcentaje de emergencia a los 150 días después de la emergencia.
114
8. Altura de la planta a los 30 días después de la emergencia.
115
9. Altura de la planta a los 60 días después de la emergencia.
116
10. Altura de la planta a los 90 días después de la emergencia.
117
11. Altura de la planta a los 120 días después de la emergencia.
118
12. Altura de la planta a los 150 días después de la emergencia. 119
iv
13. Diámetro de la planta a los 30 días después de la emergencia.
120
14. Diámetro de las plántulas a los 60 días después de la emergencia.
121
15. Diámetro de las plántulas a los 90 días después de la emergencia.
122
16. Diámetro de las plántulas a los 120 días después de la emergencia.
123
17. Diámetro de las plántulas a los 150 días después de la emergencia.
124
18. Análisis de Varianza para el porcentaje de emergencia de las
plántulas de Arupo a los 60, 90, 120 y 150 días después de la
siembra.
125
19. Análisis de Varianza para la altura de las plántulas de Arupo a los
60, 90, 120 y 150 días después de la emergencia
127
20. Análisis de Varianza para el diámetro de las plántulas de Arupo a los
30, 60, 90, 120 y 150 días después de la siembra.
129
21. Análisis químico realizado a los diferentes sustratos a experimentar.
131
22. Calidad de las semillas. 132
I. EVALUACIÓN DE SEIS TRATAMIENTOS PRE GERMINATIVOS Y
CUATRO TIPOS DE SUSTRATOS PARA LA PROPAGACIÓN DE ARUPO
(Chionanthus pubescens Kunt).
II. INTRODUCCIÓN.
El deterioro y la pérdida que ha sufrido la cobertura forestal del planeta son evidentes, pues
los efectos de la destrucción son claramente palpados por la sociedad en general.
La creciente y acelerada demanda social del recurso forestal maderable obtenida de
bosques naturales y plantaciones forestales, ha provocado graves consecuencias
ambientales y sociales entre las que se puede mencionar principalmente la pérdida de la
diversidad biológica, erosión del suelo, contaminación de cuerpos de agua (quebradas,
ríos), cambios climáticos, socialmente los efectos de la deforestación se manifiestan en el
detrimento de la calidad de vida de los habitantes, especialmente en las grandes ciudades
por la acelerada urbanización.
El Ecuador, cada vez se vuelve más urbano, siendo Quito y Guayaquil las ciudades que
dominan esta urbanización, pues en conjunto contienen el 48% de la población urbana del
país y el 27% de la población total. (Suárez Torres, 1992). Situación preocupante, pues la
migración de las áreas rurales hacia las ciudades ha provocado una desenfrenada
urbanización muchas veces sin una adecuada planificación de las necesidades básicas de la
población humana y consecuentemente el deterioro de la vegetación boscosa presente en
las metrópolis.
Frente a esta situación deteriorante del medio ambiente en la urbes Ecuatorianas,
principalmente en la ciudad de Quito, ha surgido interés de varios sectores sociales por
crear una ciudad más verde y sana. Es así que el Municipio de Quito en coordinación con
el Departamento de Forestación y Reforestación, ha emprendido hace años atrás la difícil
tarea de devolver el verdor a la ciudad y crear un ambiente más sano y agradable.
Conscientes del papel que desempeña la vegetación y principalmente del árbol, sus
acciones se han enfocado a la producción y desarrollo de plantas en vivero, destinadas a
formar parte de la ornamentación de parques y avenidas. Dentro de la producción de
especies forestales ornamentales para la ciudad se destaca el Arupo, que es apreciada por
un gran número de personas por sus características fenológicas principalmente por su
floración y excelente tolerancia a la contaminación, lo ha hecho muy valorado por los
habitantes citadinos, gracias a esta cualidad ha sido salvado de la extinción pues en su
lugar de origen (Loja), ha estado a punto de desaparecer debido a la buena calidad de su
madera. Sin embargo la limitación para su producción se ve afectada por el tiempo que
tarda en germinar impidiendo propagarla abundantemente para satisfacer la demanda
existente.
A. JUSTIFICACIÓN.
Al existir preferencia y gran demanda por árboles ornamentales, en especial de Arupo,
cuya propagación se ha visto reducida debido al tiempo que tarda en germinar (80-110
días). El Departamento de Forestación y Reforestación del Municipio de Quito, consideró
necesario realizar una investigación que permita reducir al máximo el tiempo de
germinación de esta importante especie, que por sus características ornamentales, y su
buena tolerancia a la contaminación ambiental se ha convertido en el preferido para
proyectos de forestación urbana, en los cuales se pretende que cada familia “adopte un
árbol”, teniendo gran aceptación entre los habitantes de la ciudad, por sus excelentes
cualidades, haciendo necesario masificar su producción, mediante la utilización de
métodos accesibles al alcance de todos los viveristas del país.
B. OBJETIVOS.
1. 0bjetivo general.
Evaluar seis tratamientos pre germinativos, y cuatro tipos de sustratos en la propagación
de Arupo (Chionanthus pubescens Kunt), en el Vivero Forestal La Armenia, Parroquia
Conocoto, Provincia de Pichincha.
2. Objetivos específicos.
a. Identificar y seleccionar árboles semilleros de Arupo (Chionanthus pubescens Kunt).
b. Determinar el porcentaje de germinación a nivel de laboratorio.
c. Determinar el mejor sustrato y tratamiento pre germinativo para la propagación de
Arupo (Chionanthus pubescens Kunt).
d. Realizar un análisis de costos de los tratamientos.
III. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA.
A. GENERALIDADES.
1. Arupo Chionanthus pubescens Kunt.
Arupo, Chionanthus que en griego significa “flores de nieve”, por el color que tienen
algunas especies que van desde rosadas claras a casi moradas; y pubescens que significa
“peludo” por el vello que cubre las hojas, es el preferido por los habitantes de la ciudad,
por sus características ornamentales. (MENA V., P 2006). Otra característica importante
que se ha observado es la tolerancia ante las emanaciones de CO2, su resistencia a la
contaminación ambiental lo ha convertido en una especie potencial para formar parte de
avenidas, parques y jardines que rodean a la ciudad, sobre todo por crear un ambiente más
saludable para los habitantes.
2. Descripción botánica.
LOJAN, L 2003 describe botánicamente de la siguiente manera:
Reino: Plantae.
División: Madnoliophyta.
Clase: Magnoliopsida.
Orden: Scrophulariales.
Familia: Oleaceae
Nombre científico: Chionanthus pubescens Kunth.
Nombre vulgar: Arupo
3. Origen.
Es originario del sur de Ecuador y norte de Perú.
Árbol muy ramificado de unos 6-8 m de alto. En el Perú crece en las laderas xerofíticas
con vegetación caducifolia y algunos arbustos perennifolios de los valles interandinos.
Como planta ornamental también se cultiva en muchos jardines privados de Quito,
Ambato, Cuenca, Loja y probablemente en otros lugares a lo largo de los andes. (LOJAN,
L 2003). Chionanthus, consta de 120 especies tropicales y subtropicales. En el Perú viven
3 especies, de las cuales Chionanthus wurdackii Stähl es endémico de Amazonas.
4. Datos históricos.
El género Chionanthus tienen muchas especies que crecen alrededor del mundo, muchas
de ellas en peligro de extinción por el avance de la agricultura.
5. Hábitat.
Crece en forma natural en remanentes boscosa de los cantones Calvas, Paltas, Espíndola y
Gonzamaná de la Provincia de Loja, entre los 1600 y 2000 msnm, con precipitaciones de
1000 a 1300 mm anuales. (MACEY, 1979).
En su lugar de origen la especie tiene alto valor por su madera que es dura, de color
blanquecino. Se utiliza para construir los rodillos de los trapiches caseros, y para cabos de
herramientas. La calidad de la madera ha puesto a esta especie en peligro de extinción,
pero gracias a su valor ornamental se la conserva en parques de Quito, Ambato. (LOJAN,
L 2003)
6. Características botánicas.
Árbol que alcanza hasta 8 m de altura, caducifolio. Cuando florece se destaca por el
colorido que resalta entre la vegetación nativa. Se lo ha plantado con fines ornamentales,
en los jardines y parques urbanos de la Sierra hasta los 2800 msnm y en sitios con
precipitaciones de 700 mm anuales. (LOJAN, L 2003)
a. Hojas.
Las hojas son simples y opuestas, de color verde oscuro y brillante cuando están jóvenes.
Es un árbol caducifolio, la foliación precede a la floración. En su habitad natural florece en
los meses de julio-septiembre, una vez que ha iniciado el período seco, plantado en los
parques los árboles florecen en forma individual, por ello es posible observar árboles en
flor durante todo el año a lo largo de la Sierra. (LOJAN, L 2003)
En sitios con dos períodos de lluvia florece dos veces al año; de abril a mayo y de agosto a
noviembre. Lo característico del árbol es la floración llamativa que cubre totalmente la
copa.
b. Fenología.
En su hábitat natural florece en los meses de julio-septiembre, una vez que se ha iniciado el
período seco. Plantado en los parques los árboles florecen en forma individual, por ello es
posible observar árboles en flor durante todo el año a lo largo de la sierra. (LOJAN, L
2003)
En lugares con dos períodos de lluvia florece dos veces al año: de abril a mayo, y de agosto
a noviembre. Lo característico del árbol es la floración llamativa que cubre toda la copa.
(LOJAN, L 2003)
c. Frutos.
Luego de caer los pétalos, aparecen los frutos, el fruto es una drupa de 1cm de largo y 0,8
cm de diámetro, contiene una semilla. Presenta un color negro cuando madura y caen al
suelo donde pueden recolectarse. (LOJAN, L 2003).
7. Requerimientos ecológicos.
Se desarrolla entre los 1600 a 2800 msnm, con temperaturas medias de 16 º C, y
precipitaciones bien distribuidas. (LOJAN, L 2003)
a. Suelo.
Tolera todo tipo de suelos, menos en los que se inundan. (LOJAN, L 2003)
8. Propagación.
Se propaga sexualmente, no se tiene reportes sobre propagación vegetativa.
a. Propagación sexual.
Los árboles adultos producen frutos en abundancia. El número de semillas por Kg. Es
alrededor de 2500. (LOJAN, L 2003).
LOJAN, L 2003, manifiesta que `para obtener su germinación se debe recoger los frutos
maduros, hacerlos secar y dejarlos en reposo durante dos meses y sembrarlos así tardan un
mes en germinar. Posteriormente se pueden repicar en fundas de diferente tamaño de
acuerdo a las necesidades.
9. Cuidados culturales.
Después del repique se debe dar cuidado para evitar que el tallo crezca torcido, por el peso
de la copa, mediante el apuntalamiento. La bifurcación del tallo o el desarrollo de ramas
bajas y la altura de la copa se controla con la poda de formación después ya no requiere
atención.
Cuando el árbol es cortado a cualquier edad este rebrota fácilmente, pudiendo utilizarse
esta cualidad para manejar árboles defectuosos.
En ecosistemas urbanos la principal causa de mortalidad es el daño a la planta ya sea por la
quebradura del tallo, ramas o por intentos de extracción por lo que obliga a protegerla
mediante un cerramiento.
10. Usos.
En su lugar de origen, se lo utiliza para construir los rodillos de los trapiches caseros y para
cabos de herramientas, también se utiliza la madera para torneados.
Es muy cotizado como planta ornamental, existiendo gran demanda de este árbol, sobre
todos en las zonas urbanas.
B. SEMILLAS FORESTALES.
“El conocimiento de la estructura interna y externa de las semillas forestales es de
primordial importancia ya que sirve de base para determinar que tratamiento y métodos
deben aplicarse para su mejor germinación, siembra y obtención de plantas de óptima
calidad.” (MARTÍNEZ, V 2005)
Las semillas son óvulos maduros de los cuales de presentarse las condiciones oportunas,
nacerán nuevas plantas. (MARTÍNEZ, V 2005).
Además de estas características intrínsecas y extrínsecas, se debe conocer otros datos
relacionados con su origen, autenticidad, fenología de los árboles padres, fructificación,
fecha de recolección, entre otros aspectos.
1. La semilla.
La semilla constituye la parte principal del fruto, y es la encargada de mantener y propagar
la especie. (EDIBOSCO, L 1992).
Las semillas son óvulos maduros de los cuales de presentarse las condiciones oportunas,
nacerán nuevas plantas. (MARTÍNEZ, V 2005).
Es la parte de la planta que la reproduce cuando germina, toda semilla está formada por el
tegumento y la almendra. (BODERO, V 1980).
2. Características de una buena semilla.
EDIBOSCO, L 1992, manifiesta que las principales condiciones que debe reunir una buena
semilla son las siguientes:
a. Debe estar completamente madura, lo que se reconoce por su coloración.
La madurez de la semilla es una condición interna y se logra cuando el embrión está
totalmente desarrollado, encontrándose las sustancias de los cotiledones aptas para ser
asimilados, siendo este el momento más propicio para sembrarlas, obteniéndose así una
mejor germinación y plantas de óptima calidad.
b. Tamaño adecuado y peso máximo.
El tamaño estará dentro de las dimensiones que corresponda a cada especie, teniendo en
cuenta que las semillas gruesas y pesadas darán siempre origen a una planta más vigorosa,
ya que al ser mayor su almendra contendrá mayor sustancias alimenticias. Por otro lado
por el peso se puede distinguir la semilla vana, impropia para la germinación.
c. Olor.
No deben desprender olores picantes, su color y brillo deben ser los normales en su
especie.
d. Edad.
Este aspecto es muy importante ya que está relacionada con su poder germinativo,
comprobándose por medio de pruebas de germinación que a mayor edad, la capacidad
germinativa disminuye considerablemente hasta llegar a ser nula, cuando el embrión
muere.
e. Procedencia.
No debe proceder de árboles padres de edad muy grande o muy joven, puesto que estos
árboles producen semillas estériles.
3. Partes de la semilla.
a. Embrión.
Es la pequeña planta en estado embrionario. Cuando las condiciones son favorables
(humedad, calor, oxígeno) se desarrolla dando lugar a una nueva planta. (MARTÍNEZ, V
2005).
El embrión o planta en miniatura de la semilla están formados por cotiledón, epicotilo y el
hipocotilo. (FULLER, J Y RITCHIE, D 1984).
1) Cotiledón.
El cotiledón adquiere la función de primeras hojas o de reservas alimenticias.
(MARTÍNEZ, V 2005).
Los cotiledones son hojas de las semillas. Las semillas de las monocotiledóneas tienen uno
solo, y las de las dicotiledóneas presentan dos. Los cotiledones se dirigen y absorben
alimentos del endospermo o lo almacenan. (FULLER, J Y RITCHIE, D 1984).
2) Epicotilo.
El epicotilo está situado por encima de los cotiledones. Se convierte en tallo.
(MARTÍNEZ, V 2005).
El epicotilo contiene células meristemáticas que crece para formar el tallo cuando brota la
semilla (germina). La punta del epicotilo en crecimiento se llama plúmula. (FULLER, J Y
RITCHIE, D 1984).
3) Hipocotilo.
Es el espacio entre la radícula y la plúmula, se divide a la vez en el eje hipocotilo, situado a
continuación de la radícula. (MARTÍNEZ, V 2005).
b. Endospermo o albumen.
En las mono cotiledóneas está constituido por almidón, conformando casi la totalidad de
las semillas. A veces esta reserva se encuentra incluida en los cotiledones como ocurre en
el caso de las dicotiledóneas.
c. Epispermo.
Es la cubierta exterior, está formada por la testa y en el caso de las angiospermas con una
cubierta suplementaria por debajo de esta llamada tegme. La testa a veces es delgada,
como ocurre en las semillas protegidas por los endocarpios leñosos, pero a veces cuando
falta esta protección la testa actúa de defensa contra el mundo exterior, además de evitar la
pérdida del agua de la semilla. Sobre esta superficie podemos ver el micropilo que es como
un pequeño poro, a través de la cual se produce la entrada del tubo polínico en el óvulo y
por ende se dirige la radícula en la germinación.
C. GERMINACIÓN.
Morfológicamente, la germinación es la transformación de un embrión en una plántula.
Fisiológicamente es la reanudación del metabolismo, el crecimiento que antes fueron
suspendidos y es la conexión de la trascripción de nuevas proporciones del programa
genético. Bioquímicamente, es la diferencia secuencial de los procesos de oxidación y
síntesis y la restauración de los eventos bioquímicos típicos del crecimiento y desarrollo.
Es decir, la germinación es el paso del eje embrionario a un estado de continuo, que fue
temporalmente suspendido. (PATIÑO, F 1983).
Al empezar la germinación, la radícula sale en primer lugar dirigiéndose hacia el micropilo
y perforando la testa. Se introduce en la tierra produciendo las raíces, el hipocotilo se
extiende y hace que la semilla emerja del suelo. Los cotiledones se abren. Por desarrollo de
la plúmula por encima de ellos aparece el epicotilo y por debajo el hipocotilo,
conformando el tallo. Esta germinación se denomina epigea ya que eleva los cotiledones
por encima de la tierra, pero algunas veces los cotiledones se quedan debajo de la tierra
(germinación hipogea), como en el caso de las ludías. (MARTÍNEZ, V 2005).
La semilla absorbe agua y se hincha, la respiración aumenta y se presenta la división
celular, después de lo cual el embrión crece y se rompe la cubierta de las semillas. El
hipocotilo es la primera parte del embrión que emerge de la testa, esto permite que la raíz
joven absorba agua y los minerales necesarios para el crecimiento. El epicotilo sale
después. Un embrión brotado constituye una planta. (FULLER, J Y RITCHIE, D 1984).
1. Condiciones que afectan a la germinación.
FULLER, J Y RITCHIE, D (1984), manifiestan lo siguiente:
a. Condiciones externas.
1) Humedad.
La semilla necesita humedad en abundancia para germinar, sin embargo el exceso puede
causar pudrición si excluye el oxígeno. El agua hace que las semillas se hinchen y es
necesario para la digestión, la tras locación y el crecimiento.
2) Oxígeno.
Para que las semillas germinen deben respirar y tener oxígeno para la respiración aeróbica.
La falta de este elemento favorece el crecimiento de bacterias anaeróbicas que pueden
causar pudrición.
3) Temperatura.
La mayoría de las semillas no germinan si la temperatura se aproxima al punto de
congelación 0 º C, o asciende a más de 46 º C. Las temperaturas favorables para la
germinación quedan entre 22 y 30 º C.
4) Provisión de alimentos.
Algunas semillas pequeñas (orquídeas), germinan solo si en el ambiente hay disponibilidad
de una fuente externa de nutrientes. En la naturaleza los hongos proporcionan esos
alimentos.
b. Factores externos.
Factores como la luz, acidez del suelo, dióxido de carbono influyen en la germinación.
c. Condiciones internas.
1) Auxinas.
La presencia de auxinas (reguladoras de crecimiento), influyen en la germinación.
2) Alimentos.
Debe existir una reserva alimenticia suficiente.
3) Haber completado su latencia.
La latencia es un período de reposo relativo que la mayor parte de las semillas requieren
para germinar. La latencia puede ser debida a: embriones no desarrollados, cubiertas
gruesas de las semillas que dificultan la absorción de agua y oxígeno, y que pone
resistencia al hinchamiento y crecimiento del embrión. La latencia es un medio que
permite a las semillas soportar períodos desfavorables antes de entrar en crecimiento
activo. (FULLER, J Y RITCHIE, D 1984).
En el caso de arupo se recomienda dejar reposar a la semilla por el lapso de 3 a 4 meses
luego de la recolección pues su germinación es más homogénea pasado este tiempo, a
diferencia de la semilla recién recolectado y sembrada casi inmediatamente con un tiempo
de secado por 3 semanas bajo sombra, la germinación es muy desigual, ya que desde que
inicia hasta que finaliza la germinación puede durar alrededor de 8 meses.
La propagación por semilla de especies del género Chionanthus, es muy lenta,
presentándose, al parecer, tanto letargo del embrión como una inhibición del endospermo.
Probablemente la mejor práctica es la estratificación húmeda por 30 días a temperatura
ordinaria seguida de uno o dos meses de estratificación a 4ºC. Con las semillas plantadas
en otoño, en ocasiones no ocurre germinación sino hasta la segunda primavera.
(GEOCITIES.COM.2008).
4) Viabilidad de las semillas.
La mayor parte de las semillas permanecen viables, es decir conservar su capacidad para
germinar por no más de 5 o 6 años. El almacenamiento en condiciones frescas y secas
favorece a la conservación de la viabilidad. (FULLER, J Y RITCHIE, D 1984).
En el caso de arupo se ha observado que mantiene su viabilidad hasta dos años después de
recolectadas con un porcentaje de germinación del 55%.
2. Fases de la germinación.
PATIÑO, F (1983), manifiesta que, la germinación de las semillas incluyen las siguientes
fases:
Absorción de agua, proceso físico, por el cual la semilla se hidrata y permite el inicio
de las actividades bioquímicas.
Iniciación de las actividades enzimáticas, con incremento de la velocidad de la
respiración.
Asimilación y translocación de las reservas alimenticias a los puntos de crecimiento.
3. Energía germinativa.
Se define como la rapidez de la germinación de una muestra de semilla pura en un periodo
fijo, el cual se denomina Período de energía, y esta se establece para el día que sucede el
mayor número de semillas germinadas. Se expresa en porcentaje, y se determina por la
relación del cociente entre la cantidad total de semillas germinadas para el día de máxima
germinación entre el total de semillas germinadas sin límite de tiempo. (PATIÑO, F 1983)
4. Características de los árboles semilleros.
FLORES, G et al. (1994) manifiesta que los árboles padres elegidos para obtener semilla
deberán reunir las siguientes características:
Ejemplares grandes sobresalientes, robustos de fuste recto.
Copa bien formada
Libres de enfermedades o plagas
Se debe escoger árboles maduros no muy viejos o muy jóvenes.
Los árboles escogidos deben ser marcados con pintura, y deben ser conservados para
obtener de ellos semilla cada año, es preferible recolectar las semillas de lugares con
similares características al lugar donde se van a producir las plantas.
5. Recolección de frutos.
La recolección de semillas de arupo se lo hace cuando éstas presentan una coloración negra
ya sea directamente de las ramas, o cuando las semillas han caído al suelo.
6. Sistemas de recolección.
De acuerdo con SPIER (1980) citado por SUÁREZ, F (1985). Los sistemas de recolección
se pueden clasificar de la siguiente forma.
Recolección de los frutos en pies apeados, siendo imprescindible para ello que las
cortas se realicen después que los frutos hayan madurado y antes que se diseminen.
Recolección de los frutos directamente de las ramas.
Recolección de los frutos agitando las plantas para que los mismos caigan al suelo.
Recolección de las acumulaciones de los frutos desprendidos de las plantas por
efecto de los agentes ambientales.
FLORES, G et al. (1994) manifiesta que el mejor método de recolección de los frutos se
realiza cuando estos han llegado a su madurez fisiológica, y luego deben ser guardados en
fundas de papel o tela para facilitar su secado, no es aconsejable guardar en fundas
plásticas ya que esto provoca transpiración y fermentación. Luego se la pone al sol para
facilitar su secado, y posteriormente se separan las semillas de las impurezas.
7. Tratamientos pre germinativos.
Las semillas de algunas especies no germinan porque tienen una cáscara muy dura, y no
permite que el agua penetre a ella, esta no se hincha y por lo tanto no genera la plántula.
(FLORES, G et al. 1994).
También se puede deber a las condiciones internas del embrión, de las sustancias de
reserva que hay en el interior de la semilla que imposibilita la germinación. (Departamento
de Agricultura. Semillas citado por SUÁREZ, 1985).
a. Tratamiento Químico.
Uno de los tratamientos para romper la impermeabilidad de la cubierta de las semillas es
someterlas durante cierto tiempo a la acción de los ácidos, en los tratamientos que se ha
empleado ácido sulfúrico, se ha conseguido elevar la germinación de algunas especies del
10% al 90%. (SPIER, 1980, citado por SUÁREZ, F 1985).
b. Tratamiento Físico.
1) Inmersión en agua.
Este tratamiento es usado para facilitar la germinación de semillas con cubierta
impermeable, consiste en la inmersión de semillas durante períodos y tiempos variables en
agua próxima a hervir y dejar que esta se vaya enfriando. (FLORES, G et al. 1994).
2) Con agua caliente.
Se colocan las semillas en un recipiente en una proporción de 4 a 5 veces su volumen de
agua caliente a temperatura entre 77 y 100 º C. De inmediato se retira la fuente de calor y
las semillas se dejan remojar durante 12 a 24 horas en el agua que se va enfriando
gradualmente. Las semillas se deben sembrar inmediatamente después del tratamiento.
(PATIÑO, et al 1983)
3) Remojo en agua fría horas antes de la siembra.
Este tratamiento se usa en semillas que han estado almacenadas por algún tiempo.
c. Tratamiento mecánico.
Consiste en la eliminación de la testa en forma total o parcial, entre estos tratamientos
tenemos, el rompimiento de la testa, o lijadura de la misma. Los tratamientos mencionados
deben realizarse con sumo cuidado para no dañar el embrión y tejidos internos. (BODERO,
V 1980).
D. SIEMBRA.
1. El Almácigo.
Almacigar es la acción de colocar las semillas en un sustrato adecuado y darles
condiciones para que germinen y produzcan plantas. (DFC, 1995).
2. Preparación del sustrato.
Un buen sustrato permite que las semillas germinen, desarrollen las raíces y emerjan las
plántulas, y que estas crezcan sin problemas hasta repicarlas. (DFC, 1995).
Es aconsejable que el sustrato para germinación de semillas sea suelto, no orgánico,
aireado, libre de hongos, insectos y bacterias, pH de 6 a 7. Si el suelo del vivero no tiene
estas características, hay que enmendarlas agregando arena o suelo suelto. (DFC, 1995).
El sustrato es el medio en el cual se desarrolla la planta, este servirá como vehículo para
aportar agua, nutrientes y oxígeno, y a la vez servirá de soporte a la planta, y de medio
oscuro para el desarrollo radicular, función vital del crecimiento vegetal. Un buen sustrato
debe ser liviano, retener buena humedad, no encharcarse, ser inerte química y
biológicamente, no degradarse físicamente, estar disponible, y ser de bajo costo.
(SEMARNAPGOB.COM 1998)
3. Tipos de abonos.
Son elementos de origen vegetal o animal que sirven para mejorar la calidad del suelo,
(sustrato) y fertilizar los cultivos.
a. Bocashi.
Es abono fermentado, proceso en el cual participan los microorganismos del suelo,
transformando en abono materiales originados en el desarrollo de la producción agrícola y
agroindustrial.
El proceso dura 7 días, se utiliza materiales de desecho de bajo costo, contiene buena
composición de nutrientes, devuelve la fertilidad al suelo. (AGRORGANICA.COM 2004)
b. Compost.
Abono orgánico que resulta de la descomposición de residuos de origen animal y vegetal.
La descomposición de estos residuos ocurre bajo condiciones de humedad y temperatura
controladas. Mejora las propiedades físicas del suelo. La materia orgánica favorece la
estabilidad de la estructura de los agregados del suelo agrícola, reduce la densidad
aparente, aumenta la porosidad y permeabilidad, y aumenta su capacidad de retención de
agua en el suelo. Se obtienen suelos más esponjosos y con mayor retención de agua.
Mejora las propiedades químicas. Aumenta el contenido en macro nutrientes N, P,K, y
micro nutrientes, la capacidad de intercambio catiónico (C.I.C.) y es fuente y almacén de
nutrientes para los cultivos. Mejora la actividad biológica del suelo. Actúa como soporte y
alimento de los microorganismos ya que viven a expensas del humus y contribuyen a su
mineralización. La población microbiana es un indicador de la fertilidad del suelo.
(TUSPLANTAS.COM 2000)
c. Humus de lombriz.
Se obtiene de la lombriz roja californiana Eisenia foetida, la cual puede definirse como un
organismo vivo que actúa sobre las sustancias orgánicas del terreno donde se aplica y
continúa transformándolas en sustancias nutritivas asimilables.
El humus posee un alto contenido de N, P, K, Ca, Mg, y oligoelementos, sus elementos
básicos están presentes en forma más utilizable y asimilable. Una tonelada de humus
equivale a 10 toneladas de estiércoles, contiene una gran cantidad de microorganismos,
cascarilla 25 % + abono orgánico 25 %), presenta los valores más altos en los cinco
período que se realizó la evaluación, a diferencia de B1 (Tierra negra 75 % + arena 25 %),
cuyos valores son los más bajos, y de acuerdo con el análisis del suelo efectuados presenta
un contenido bajo en nutrientes, lo que evidentemente afecto el crecimiento diametral de
las plantas.
D. ANÁLISIS ECONÓMICO.
Cuadro 41. Presupuesto económico por tratamiento de acuerdo al método de Perrin.
Análisis de costos que varían.
Tratamientos Sustratos jabas Semilla Mano Obra Total costo
A1B1 0,178 0,64 0,24 2,04 3,10
A1B2 0,156 0,64 0,24 2,04 3,07
A1B3 0,967 0,64 0,24 2,04 3,89
A1B4 0,943 0,64 0,24 2,04 3,86
A2B1 0,178 0,64 0,28 2,04 3,14
A2B2 0,156 0,64 0,28 2,04 3,11
A2B3 0,967 0,64 0,28 2,04 3,93
A2B4 0,943 0,64 0,28 2,04 3,90
A3B1 0,178 0,64 0,36 2,04 3,22
A3B2 0,156 0,64 0,36 2,04 3,19
A3B3 0,967 0,64 0,36 2,04 4,01
A3B4 0,943 0,64 0,36 2,04 3,98
A4B1 0,178 0,64 0,43 2,04 3,29
A4B2 0,156 0,64 0,43 2,04 3,26
A4B3 0,967 0,64 0,43 2,04 4,08
A4B4 0,943 0,64 0,43 2,04 4,05
A5B1 0,178 0,64 0,50 2,04 3,36
A5B2 0,156 0,64 0,50 2,04 3,33
A5B3 0,967 0,64 0,50 2,04 4,15
A5B4 0,943 0,64 0,50 2,04 4,12
A6B1 0,178 0,64 0,57 2,04 3,43
A6B2 0,156 0,64 0,57 2,04 3,40
A6B3 0,967 0,64 0,57 2,04 4,22
A6B4 0,943 0,64 0,57 2,04 4,19
Cuadro 42. Rendimiento económico de los tratamientos.
INGRESOS
T Costos que
varían
rendimiento Beneficio
de campo
(USD)
Beneficio
bruto de
campo
Ingreso
ajustad
al 0,1
Ingreso
neto
A1B1 3,10 38,00 0,25 9,50 8,55 6,43
A1B2 3,07 44,00 0,25 11,00 9,90 7,93
A1B3 3,89 44,00 0,25 11,00 9,90 7,11
A1B4 3,86 32,00 0,25 8,00 7,20 4,14
A2B1 3,14 44,00 0,25 11,00 9,90 7,86
A2B2 3,11 52,00 0,25 13,00 11,70 9,89
A2B3 3,93 49,00 0,25 12,25 11,03 8,32
A2B4 3,90 51,00 0,25 12,75 11,48 8,85
A3B1 3,22 39,00 0,25 9,75 8,77 6,53
A3B2 3,19 49,00 0,25 12,25 11,02 9,06
A3B3 4,01 43,00 0,25 10,75 9,67 6,74
A3B4 3,98 52,00 0,25 13,00 11,70 9,02
A4B1 3,29 42,00 0,25 10,50 9,45 7,21
A4B2 3,26 40,00 0,25 10,00 9,00 6,74
A4B3 4,08 46,00 0,25 11,50 10,35 7,42
A4B4 4,05 53,00 0,25 13,25 11,92 9,20
A5B1 3,36 22,00 0,25 5,50 4,95 2,14
A5B2 3,33 54,00 0,25 13,50 12,15 10,17
A5B3 4,15 51,00 0,25 12,75 11,48 8,60
A5B4 4,12 51,00 0,25 12,75 11,47 8,63
A6B1 3,43 60,00 0,25 15,00 13,50 11,57
A6B2 3,40 56,00 0,25 14,00 12,60 10,60
A6B3 4,22 64,00 0,25 16,00 14,40 11,78
A6B4 4,19 58,00 0,25 14,50 13,05 10,31
El cuadro 42, para el rendimiento económico de los tratamientos, nos indica que el
tratamiento A6B3 ( Inmersión en agua caliente a 50 º C por 80 ´ en un sustrato compuesto
por Tierra negra 50 % + Arena 25 % + Abono orgánico 25 %), nos presenta el mayor
beneficio neto que es de S 11.78 y un total de costos de $ 4.22, a diferencia de A5B1
(Inmersión en agua a 50 º C por 40 ´ en sustrato compuesto por Tierra negra 75 % + Arena
25 %), con un Beneficio neto de $2.14 y un total de costos de $ 3.36. Los ingresos
obtenidos en los tratamientos descritos están relacionados con el rendimiento obtenido en
el ensayo.
Cuadro 43. Análisis de dominancia.
ANÁLISIS DE DOMINANCIA
Tratamiento
Ingresos
Netos Costos que varían Dominancia
A6B3 11.78 4,22 ND
A6B4 10.31 4,19 D
A6B2 10,60 4,15 D
A6B1 11,57 4,12 ND
A5B4 8,63 4,08 D
A5B3 8,60 4,05 D
A5B2 10,17 4,01 D
A5B1 2,14 3,98 D
A4B4 9,20 3,93 D
A4B3 7,42 3,90 D
A4B2 6,74 3,89 D
A4B1 7,21 3,86 D
A3B4 9,02 3,43 D
A3B3 6,74 3,40 D
A3B2 9,06 3,36 D
A3B1 6,53 3,33 D
A2B4 8,85 3,29 D
A2B3 8,32 3,26 D
A2B2 9,89 3,22 D
A2B1 7,86 3,19 D
A1B4 4,14 3,14 D
A1B3 7,11 3,11 D
A1B2 7,93 3,10 D
A1B1 6,43 3,07 D
El análisis de dominancia nos indica que, A6B3 y A6B1 son no dominados debido a que
están evaluados de acuerdo al mayor costo establecido y en relación con el ingreso
obtenido para cada tratamiento.
Cuadro 44. Tasa de retorno marginal de los Tratamientos no dominados.
TASA DE RETORNO MARGINAL
Tratamiento
Ingresos
Netos
Incremento
Margen de
Beneficio
Costos que
Varían
Incremento
Margen de
Costos TMR
A6B3 11,78 0.21 4,22 0.1 210 %
A6B1 11,57 __ 4,12 __
Margen de costo = Diferencia entre costos que varían. Beneficio que varía = Beneficio Neto. Margen de Beneficio = Diferencia entre beneficio que varía Tasa marginal de retorno = Margen de beneficio/margen de costo*100.
EL cuadro 44, nos indica que A6B3 (Inmersión de las semillas en agua caliente a 50 º C
por 80 ´ en un sustrato compuesto por Tierra negra 50 % + Arena 25 % + Abono orgánico
25 %), que en el ensayo presentó los mejores resultados en todas las variables evaluadas,
económicamente es rentable ya que presenta una tasa de retorno marginal de 210 %, con
referencia al segundo tratamiento no dominado.
VI. CONCLUSIONES.
El mejor tratamiento pre germinativo fue la inmersión de las semillas de Arupo
Chionanthus pubescens Kunt. en agua caliente a 50 º C por 80´ ya que permitió reducir
el tiempo de germinación de 110 días a 32 días, y obtener buenos resultados de
emergencia y un desarrollo homogeneo de las plantas.
El tipo de sustrato, influyo en las variables en estudio ya que a lo largo del ensayo se
evidencio que las plantas que se desarrollaron en los sustratos B3 (Tierra negra 50 % +
T= Tratamiento (A= tratamiento pre germinativo, B= sustrato) R= repeticiones. D= Diámetro de la planta % E = Porcentaje de Emergencia. A= Altura de la planta.
Anexo 4.
Porcentaje de emergencia a los 60 días después de la siembra.