• • - EFECTO DE LA SUPLEMENTACION ALIMENTICIA A BASE DE ARROZ PADDY MOLIDO Y COMPLEMENTOS MINERALES EN GANANCIA DE PESO EN NOVILLOS DE LEVANTE Y ACABADO ALIRIO RUIZ DAZA UNIVERSIDAD DE CIENCIAS APLICADAS Y AMBIENTALES U.D.C.A FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS Santafé de Bogotá D.C, Abril de 1997
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EFECTO DE LA SUPLEMENTACION ALIMENTICIA A BASE DE ARROZ PADDY MOLIDO Y COMPLEMENTOS MINERALES EN GANANCIA DE
PESO EN NOVILLOS DE LEVANTE Y ACABADO
ALIRIO RUIZ DAZA
UNIVERSIDAD DE CIENCIAS APLICADAS Y AMBIENTALES U.D.C.A
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS Santafé de Bogotá D.C, Abril de 1997
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EFECTO DE LA SUPLEMENTACION ALIMENTICIA A BASE DE ARROZ PADDY MOUDO y COMPLEMENTOS MINERALES EN GANANCIA DE
PESO EN NOVILLOS DE LEY ANTE Y ACABADO
ALIRIO RUIZ DAZA Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar el título de
Zootecnista.
Director. Dr. JUVENAL GOMEZ SOLER. M.V.Z, M.s. Nutrición y Producción Animal
Codirector. Dr. MANUEL HUMBERTO TRlVIÑo SANTOS. M.V .
UNNERSIDAD DE CIENCIAS APLICADAS Y AMBIENTALES U.D.C.A
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS CARRERA DE ZOOTECNIA
Santafé de Bogotá D.C, Abril de 1997
..
NOTA DE ACEPTACION
DIRECTOR _-
~z¿T CODIRECTOR
JURADO
..
A mis padres Maria Leonor Daza de Ruiz y Alirio Ruiz Rueda (q.e.p.d), que dedicaron gran parte de sus vidas y esfuenos para prepararme intelectualmente y ser útil a la sociedad, especialmente en el campo agropecuario.
A mi hermano Luis Eduardo Ruiz Daza (q.e.p.d), que me enseñó a no desfallecer ante las dificultades que la vida nos impone.
A mis hermanas por el apoyo que me brindaron y porque sin ellas hubiera sido imposible culminar esta etapa de mi vida.
•
AGRADECIMIENTOS
El autor expresa sus agradecimientos a :
Dr. Juvenal Gomez Soler; M.V.Z. M.S. Nutrición y Producción Animal, Jefe
de programa de ganado de carne del Centro de Investigación Carimagua
Corpoica. Por su decidida colaboración y capacidad científica para el
desarrollo de presente trabajo.
Dr. Manuel Humberto Triviño Santos; M.V., profesor U.D.C.A, por su interés
en desarrollar nuevas alternativas de producción animal y su colaboración en
este trabajo.
Dra. Aurora Cuesta; profesor U.D.C.A, por su deseo e incansable trabajo el
campo de la nutrición animal.
Dr. René Gonzalez; Zootecnista, profesor U.D.C.A, por su decidida
colaboración en proyectos de investigación que ayuden a solucionar
interrogantes en la nutrición bovina.
Personal del Centro de Investigación Carimagua, especialmente al Dr Jorge
Lozano por su desinteresado apoyo en el desarrollo de este trabajo.
Personal del Laboratorio de Nutrición Animal del CRl-La libertad, Dr. Dieter
Hess y Eudoro Moreno, porque sin su decidida colaboración hubiera sido
muy dificil culminar con éxito este trabajo.
Todas las directivas de la Corporación Colombiana de Investigación
Agropecuaria (CORPOICA), especialmente al Dr. Jaime Triana Restrepo;
Director Regional 8 Villavencio, por la oportunidad que me brindó para
poder desarrollar este trabajo.
INTRODUCCION
1.0BJETNOS
TABLA DE CONTENIDO
1.1. OB]ETNO GENERAL
1.2. OBJETNOS E5PECIFICOS
2. REVI5ION DE UTERATURA
2.1. IMPORTANCIA DE LOS RUMIANTES Y SU CLASIFICACION
5I5TEMATICA
2.1.1 Alimentación de Rumiantes
2.2 EL RUMEN
2.2.1. PH del Rumen
2.2.2 Ambiente Ruminal
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37
2.2.3. Microorganismos del Rumen 40
2.2.3.1. Bacterias Rumina1es 44
2.2.3.1.1. Bacterias Celuloliticas 45
2.2.3.1.2. Bacterias Amiloliticas 46
2.23.1.3. Bacterias Fermentadoras de Azucares Solubles
2.2.3.1.4. Bacterias Proteoliticas 47
2.2.3.1.5. Protozoos Ruminales
2.23.1.6. Importancia de los Protozoos en los Rumiantes 48
2.3. P ARAME1ROS DE VALOR NUlRICIONAL 50
2.3.1. Digestibilidad
2.3.2. Degradabilidad 53
2.4. NITROGENO AMONIACAL 55
2.5. UREA - MELAZA 63
2.5.1. Toxicidad de la Urea 71
2.6. AZUFRE 73
2.6.1. Absorcion y Excreción de Azufre 76
~ 2.7. ARROZ PADDY 80
2.8. PASTO BRACIDARIA DECUMBENS 82
3. MATERIALES Y METODOS 88
3.1. UBICACION DEL PROYECTO
•
3.2. ANIMALES EXPERIMENTALES 89
3.2.1. Manejo de Animales
3.3. DISEÑO ESfADISTICO 91
3.4. TRATAMIENTOS 92
3.4.1. TRATAMIENTO 1
& 3.4.2. TRATAMIENf02 93
3.4.3. TRATAMIENTO 3 94
3.4.4. TRATAMIENTO 4 95
3.5. RELACION COSTO DE LAS DIETAS 96
3.6. PRUEBAS DE LABORATORIO 97
• 3.7. TECNICAS DE MUEsrREO 98
3.7.1. Determinación de Nitrogeno Amoniacal 99
3.7.2. Medición de pH 100
3.7.3. Determinación de Materia Seca 101
3.7.4. Determinación de Proteína por el Método de Kjeldahl
3.7.5. Determinación de Fibra en Detergente Neutro 103
1: 4. RESULTADOS Y DISCUSION 105
4.1. PESO CORPORAL
4.1.1. Comportamiento de Peso Corporal en Levante de Novillos
4.1.2. Comportamiento en Peso Corporal en Acabado de Novillos 113
4.2. ANAUSIS BROMATOLOGICO DE LA DIETA BASE Y EL
CONCENTRADO.
4.3. DEGRADABILIDAD APARENTE IN-SACCO DE MATERIA
SECA.
4.4. ASPECTOS DE LA BIOQUIMICA RUMINAL
4.4.1.Resultado de pH
4.4.2. Nitrogeno Amoniacal Ruminal
5.ANALISIS ECONOMICO
5.1. COSTO-BENEFIOO DE LOS TRATAMIENTOS
5.1.1. Costo Total de los Suplementos
5.1.1.1. Arroz Paddy Molido
5.1.1.2. Urea
5.1.1.3. Melaza
5.1.1.4. Azufre
5.1.1.5. Sal Mineralizada
5.2. COSTO-BENEFIOO DE LOS SUPLEMENTOS
6. CONCLUSIONES
7. RECOMENDACIONES
BmUOGRAFIA
ANEXOS
125
132
136
139
143
144
145
146
151
156
159
160
174
..
FIGURAS
FIGURA 1. Peso inicial y final en la fase de levante
FIGURA 2 Ganancia diaria de peso en levante
FIGURA 3. Peso inicial y final de los animales experimentales en
acabado
FIGURA 4. Ganancia diaria de peso en acabado
FIGURA 5. Ganancia de peso diaria promedia en levante y ceba
FIGURA 6. Fluctuaciones de proteína vs FDN del Braquiaria
decumbens, último trimestre de 1996
FIGURA 7. Degradabllidad del B. decumbens en animales
Pág
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111
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124
128
suplementados (T:A) y no suplementados (T:B) a las 48 horas 133
FIGURA 8. pH del fluido rumina1 en animales suplementados (T:A)
y no suplementados (T:B) post-consumo 137
FIGURA 9. Niveles de nitrógeno amoniacal del fluido ruminal en
animales suplementados (T:A) y no suplementados (T:B) 141
FIGURA 10. Costo de suplemento vs costo del concentrado según
consumo ofrecido 150
FIGURA 11. Ingreso por novillo suplementado y no suplementado 155
TABLAS
TABLA 1. Animales experimentales por tratamiento en levante y
acabado
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90
TABLA 2 Peso inicial,final y ganancia diária en la fase de levante 108
TABLA 3. Ganancia de peso adicional en la fase de levante 109
TABLA 4. Peso inicial y final Y ganancia diária en la fase de acabado 114
TABLA 5. Ganancia de peso adicional en la fase de ceba 116
TABLA 6. Análisis bromatológico del pasto Braquíaria decumbens 125
TABLA 7. Análisis bromatológico del concentrado 129
TABLA 8. Degradabilidad ruminal del Braquiaria decumbens y
del suplemento 132
TABLA 9. Valor de pH del fluido ruminal 136
•
TABLA 10. Niveles de nitrógeno amoniacal del fluido mminal 140
TABLA 11. Costo total de suplementos 148
TABLA 12. Costo de suplementación por día 149
TABLA 13. Precio de venta por producción diária
TABLA 14. Ingreso por suplemento
TABLA 15. Ingreso por novillo suplementado y no suplementado
152
153
154
•
• ANEXOS
Pág
ANEXO 1. Análisis de varianza para ganancias de peso totales
en levante y ceba 175
ANEXO lA. Prueba de Duncan's para ganancia de peso totales
entre tratamientos (IR) 176
ANEXO lB. Prueba de Duncan's para ganancia de pesos totales
entre tratamientos
ANEXO 2 Análisis de varianza para evaluar D.IN.SACCO.M.S.
del Braquiaria decumbens
ANEXO 2A. Prueba de Duncan's para D,IN,SACCO.M.S. del
Braquiaria decumbens
ANEXO 3. Análisis de varianza para pH
177
178
179
180
ANEXO 3A Prueba de Duncan' s para pH por tratamiento (TR) 181
ANEXO 3B. Prueba de Duncan's para pH por Hora (H) 182
ANEXO 4. Análisis de varianza para NH3 183
ANEXO 4A. Prueba de Duncan' s para NH3 por tratamientos (TR) 184
ANEXO 4B. Prueba de Duncan's para NH3 por Hora (H) 185
ANEXO 5. Costo de ingredientes del suplemento 186
RESUMEN
El trabajo experimental de levante y ceba de novillo cebú suplementado con
concentrados que tienen diferentes niveles de azufre (4, 8, 16%) se realizó en
el Hato El Tomo, perteneciente al Centro de Investigación Carimagua
Municipio de Puerto Gaitán, Departamento del Meta, vinculado al programa
de ganado de carne, situado 300 kms de la ciudad de Villavicencio por la via
que conduce a Puerto Carreño Departamento del Vichada.
Este experimento se realizó en un suelo Oxisol Haplustox tipico del Centro de
Investigación CORPOICA - CIA T Carimagua , localizado en el ecosistema de
sabana isohipertémlica bien drenada, a 4° 37' de latitud norte y 71"13'
longitud oeste, a 175 m.s.n.m., la temperatura media anual es de 26°C y la
precipitación anual es, en promedio de 2300 mm, distribuidos entre abril y
noviembre con una humedad relativa promedia del 80%. Las pruebas de
•
laboratorio se llevaron a cabo en el laboratorio de nutrición animal de
CORPOICA, La Libertad.
El experimento se efectuó en época seca (verano) e invierno durante los
meses de octubre a diciembre.
Para el trabajo de campo se utilizaron 86 novillos cebú comercial con edades
que oscilan de 1.5 a 3.5 años, en pastoreo de Brachiaria decumbens con carga ~="'"
animal por heCtáre~04)ara evaluar las ganancias de peso y económica
,_.-----// de 4 tipos de dietas durante 85 días. Se dividieron en cuatro (4) grupos de
animales de 22 y 20 individuos (11 animales de levante y 11 animales de ceba)
. La dieta para el tratamiento unt~:~))ue sal mineral comerci~~~~~de P y
4% de S (testigo) a razón de 70g/animal/día y pastoreo/~ontinuo )e B. ! ~
.----~
decumbens; para el tratamiento dos (T:2) se suministró 610 g de arroz paddy
molido, 280g de melaza, 40g de urea y 70g de sal min o S:r\% de
P para un total de 1000 g/ animal/ día más pastoreo continuo fe -ª. <::$" ~_ "nnn _I_¿! decumbens ; para el tratamiento tre~~ se suminis~rimal/ día
del anterior concentrado pero con el 8% de azufre en la sal mineral y el
tratamiento cuatro (T:4) la misma cantidad y composición de los tratamientos
dos y tres pero.~_c.<Jn el 16% de azufre en la sal mineralizada, todos con ~- ~~~ .....• ~.
(/ pastoreo rotacion:l Je Braguiaria decumbens . Cada tratamiento estaba en
""- / --..... ---- ~
potrero diferente con bebederos y comederos independientes, se tomaron
pesos de registro cada 28 días; los suplementos fueron suministrados en las
primeras horas del día (8 AM).
El comportamiento de peso en levante en cuanto a ganancia diaria fueron de
559 g/novíllo/día para el tratamiento uno (testigo), 837 g/novillo/día para
el tratamiento dos (T:2), 735 g /novillo/ día para el tratamiento tres (T:3) y
865 g/novillo/día para el tratamiento cuatro (T:4); en ceba fueron los
siguientes: 508, 894, 835 Y 1044 g/novillo/ día para los tratamientos 1, 2, 3 Y 4
respectivamente.
Las ganancia de peso diaria promedio en levante y acabado fueron las
siguientes: T:1 531gj día, T:2 865g/ día, T:3 785g/ día y T: 4 954.5 g/ día.
La calidad del forraje fue evaluada en el laboratorio de nutrición animal del
ej. La Libertad, obteniéndose un promedio de proteína de 4.7 % Y 70.65 % de
FDN.
En los animales consumiendo solo ~. decumbens (T:1) se reporto los
siguientes datos de laboratorio: Nitrógeno amoníacal5.95, 7.05, 6.8 Y 6.37 mg
/10OmI de fluido ruminal a las O, 2, 4 Y 8 horas respectivamente;
.. D.lN.5ACCO.M.5. a las 48 horas 58.15%; pH 7.02, 6.9, 6.9 Y 6.8 a las O, 2,4 Y 8
horas respectivamente.
Para los animales consumiendo el concentrado con el 16% de azufre se
reportaron los siguientes datos: Nitrógeno amoniacal 7.0, 22.9, 19.6 Y 6.8 mg
/100ml de fluido ruminal post-suplementación a las O, 2, 4 Y 8 horas
respectivamente; D.IN.5ACCO.M.5. a las 48 horas 48.85% ; pH 6.98, 6.9, 6.8 Y
6.89 post- suplementación a las O, 2, 4 Y 8 horas respectivamente.
En el análisis estadístico hubo diferencias significativas entre la
degradabilidad a las 48 horas de -ª. decumbens , siendo mayor para los
animales no suplementados.
En el análisis económico se encontró una rentabilidad superior para animales
suplementados con los tratamientos 2, 3 Y 4 sobrefialiendo el tratamiento
cuatro que contiene el 16% de azufre (5) , en factor tiempo disminuyendo la
duración de levante y acabado en 20 meses respecto al no suplementado
(testigo). Concluimos de la investigación que la suplementación proteica y
mineral va siempre en beneficio de la productividad animal.
18
INTRODUCCION
La altillanura colombiana es una región muy amplia que cuenta con
aproximadamente con 3.5 millones de hectáreas las cuales están dedicadas a
la cría de ganado de carne bajo pastoreo de sabanas nativas y de pastos como
58l'AAuíanil becumbeM, 5B. bumíbícolil y 58. bícmoneutll introducidos, predominando
las sabanas nativas, la cual tiene limitaciones en su productividad y requiere
un manejo racional basado en quemas controladas y ajuste de carga animal.
Un alto porcentaje de sabanas nativas han sido reemplazadas por pastos
introducidos en una extensión mayor a 1.200.000 hectáreas dando
oportunidad a la ceba de bovinos la cual se ha venido desarrollando en el
piedemonte llanero, con resultados favorables para el ganadero al encontrar
una mayor liquidez en su hato. Sin embargo la calidad y cantidad de los
pastos utilizados son muy moderados principalmente en lo relacionado con
.. 19
su valor nutricional a causa de la calidad del suelo, suministrando proteína y
minerales que no satisfacen los requerimientos nutricionales de los bovinos
impidiendo obtener una producción eficiente, además en la región existen
épocas muy desfavorables para la producción, como es la época seca, donde
los animales generalmente pierden peso o en mejor de los casos estabilizan su
producción ocasionando una estacionalidad en la vida útil del animal.
Los suplementos minerales se convierten en herramienta importante para
ayudar a suplir los elementos no proporcionados por la pastura, CORTEZ
(1995).
El sistema de explotación predominante en la altillanura es extensivo
básicamente por el mayor recurso forrajero disponible que es la sabana
nativa, baja infraestructura, reflejandose en los indices productivos
mostrando edad de novillas al primer parto mayor a 48 meses, intervalos
entre partos de 720-810 días, porcentajes de natalidad de 45 %, pesos al
nacimiento de 23 kg,peso al destete de 110-130 kg Y tasas de mortalidad en
terneros, mayores del 12 %,), ETES (1982) citado por CORTEZ (1995).
•
20
La producción de carne y leche en la orinoquia es de baja eficiencia desde el
punto de vista económico, por el escaso trabajo en la generación de
alternativas de suplementación alimenticia para poder lograr una eficiencia
en la relación costo - beneficio.
La población humana aumenta día a dia, haciendo que el costo de vida se
eleve por el crecimiento en la demanda que no es satisfecha por la
producción agropecuaria. Para solucionar este problema se han venido
utilizando tecnologías de alto costo, inadecuadas para este ecosistema,
aumentándose los costos de producción, limitando el acceso a estos
productos y perdiendo competitividad. Ante esta situación es imperioso
desarrollar sistemas sostenibles de producción.
La generación de sistemas sosteníbles de producción con nuevas alternativas
de suplementación alimenticia bovina, utilizando subproductos
agroindustríales de la región, excedentes de cosecha (palma africana, arroz,
sorgo, yuca etc.), beneficiará al ganadero, incrementando la producción y
reduciendo los costos de la misma, mejorará la calidad de vida regional al
generar empleo y contribuir a la conservación y/o mejoramiento de las
condiciones del medio ambiente.
•
..
21
El propósito de este trabajo es el de aportar una nueva alternativa en la
suplementación de la ganaderia bovina en la orinoquia colombiana,
especialmente en el levante y ceba para hacer esta región más eficiente,
productiva y competitiva con otros tipos de explotación .
•
22
1. OBJETIVOS
1.1. OBJETIVO GENERAL
Generar y desarrollar económicamente cambios y/o estrategias aplicadas a
aumentar la ganancia de peso en la ceba de bovinos en la altillanura.
1.2 OBJETIVOS ESPECIFICOS
- Evaluar un suplemento alimenticio en novillos en pastoreo para disminuir el
tiempo de ceba y sacrificio.
- Evaluar el efecto de un suplemento y sales mineralizadas al 4, 8 Y 16 % de
azufre (5) en la ganancia de peso diaria en levante y ceba .
..
«
..
•
23 - Determinar el valor nutritivo del Q)raquíaria becumbeM y del suplemento
suministrado a los novillos bajo pastoreo continuo.
- Determinar la degradabilidad de la fibra del suplemento .
- Establecer una suplementación y el nivel de uso de azufre más adecuado
para la región.
- Evaluar el costo/ beneficio de la suplementación.
..
•
•
2 REVISION DE LITERATURA
21. IMPORTANCIA DE LOS RUMIANTES Y SU CLASIFICACION
SISTEMATICA
24
Los rumiantes incluyen todos aquellos animales clasificados en el orden
Artyodactila (mamíferos ungulados con dedos pares) y el suborden
ruminantia. La palabra rumiante procede de la palabra latina ruminare que
significa masticar de nuevo: así, los rumiantes son mamíferos que rumian,
MC DOWELL (1974) .
Las especies de rumiantes desempeñan una contribución muy importante
para el bienestar del hombre, proporcionándole proteina y energía, aunque
también le sirve para el trabajo y recreo de diversos tipos. Esto no solamente
sucede en la actualidad, sino que ha sido así en numerosas sociedades desde
•
..
..
25
tiempos más o menos remotos. Un ejemplo de la extrema dependencia de
algunas sociedades de épocas pretéritas con los rumiantes lo encontramos en
muchas tribus nómadas de indios americanos que dependían de los búfalos y
de otras especies de rumiantes más pequeños . El bisonte (llamado más
comúnmente búfalo) proporcionaba carne, vestido, abrigo, armas y utensilios
que eran imprescindibles, para la vida de algunas tribus Me. DOWELL
(1974).
Entre los animales herbívoros, los rumiantes representan el grupo más
importante en cuanto al número de mamíferos existente actualmente, bien en
estado doméstico o salvaje. Los rumiantes verdaderos (infraorden pécora) se
dividen en tres familias principales, Girffidae, con sólo dos géneros, y la
familia Bovoidea (rumiantes de cuerno huecos) que comprenden 49 géneros
vivientes, Me. DOWELL (1974).
Los rumiantes muestran una posición, sobresaliente sobre los monogástricos,
en su capacidad digestiva para la utilización de los alimentos fibrosos. Esta
cualidad se deriva del mayor tiempo disponible para la fermentación, por la
situación pregástrica de la actividad fermentativa y por la casi completa
separación de los comportamientos de fermentación y segregación lo cual
•
..
•
26 permite un control del ambiente fermentativo y el establecimiento de una
compleja población microbiana, LINDSAY (1984).
Los rumiantes son capaces de digerir por lo menos el 50% de la fibra de la
mayoría de los alimentos, otros herbívoros no lo pueden hacer tam bién como
estos, MA YNARD Y LOISLI (1981)
En cuanto al uso de residuos agrícolas MOORE y MEIDMEIER (1987) , en la
alimentación de rumiantes, reporta que los bovinos pueden ganar peso
cuando se incluye en su dieta rastrojo de maíz o de sorgo, además
OLIVARES (1973) demostró en bovinos en pastoreo que cuando se adicióna
cascarilla de café se obtuvieron mejores ganancias de peso. A pesar de estos
resultados, RAMIREZ et al (1986) encontraron que el nivel y el tipo de
forraje que se utilice en las dietas para bovinos influye en la degrababilidad
ruminal de la materia seca (MS) y fibra detergente neutro (FDN) de los
mismos .
La falta de alimento en épocas criticas (sequías prolongadas), determina que
las producciones de carne y/o leche, disminuyan a niveles que hacen
improductiva la industria bovina, esta falta de comida obliga a conocer
•
27 técnicas que permitan la utilización de materiales como residuos agrícolas
que existen en cantidad en muchas zonas ganaderas del país, LAREDO y
CUESTA (1985)
Las diferencias principales entre los monogástricos, y los rumiantes se
refieren a los procesos digestivos, en particular a la relación simbiótica
establecida entre el rumiante (animal hospedador) y la microflora existente
en el rumen e intestino grueso ORSKOV (1988).
2.1.1. ALIMENTACION DE RUMIANTES
La nutricIón para el crecimiento incluye de forma inherente a diversas
disciplinas e integra la fisiología de la nutrición con el funcionamiento celular.
BYERS y SCHELLING, citados por CHURCH (1988).
Los principales aspectos que intervienen en la nutrición para el crecimiento
incluyen las funciones del crecimiento que establecen las pautas para el
crecimiento en el transcurso del tiempo, las prioridades para un crecimiento
regulado, los limites o techos fisiológicos para el crecimiento, la eficacia
inherente para la síntesis y almacenamiento de proteína y grasa de
•
28
determinados tejidos y las tasas netas de crecimiento en relación con los
nutrientes destinados a las funciones de mantenimiento, BYERS y
SCHELLING, citados por CHURCH (1988).
Existen muchos factores en el animal que influyen en las necesidades
nutritivas. Algunos como la edad y el peso, mantienen una cierta relación ya
que los animales aumentan de peso según crecen de forma concurrente con la
edad. Como resultado, las necesidades de mantenimiento, (como un % de las
necesidades totales), disminuyen con el tiempo durante el crecimiento,
debido tanto al aumento de peso, edad y grado de cebamiento, como a un
descenso de la fracción de tejidos metabólicamente muy activos, BYERS y
SCHELLING, citados por CHURCH (1988).
En el ganado vacuno la nutrición debe reflejar los objetivos del programa
para alcanzar las tasas y composición deseadas de crecimiento; la clave de la
nutrición del ganado vacuno durante la fase de levante, impone adaptar los
recursos energéticos de los piensos con el potencial de crecimiento de los
animales y proporcionar niveles óptimos de proteína, minerales, vitaminas y
aditivos para alcanzar las tasas deseadas de crecimiento de forma más eficaz;
la fase de acabado puede ser corta o puede abarcar casi todo el periodo de
•
.,
•
29
crecimiento posterior al destete, que es muy precoz en temeros de raza
lechera. En concecuencia, las necesidades de nutrientes varían con la etapa
fisiológica del animal y con la fracción relativa de nutrientes destinados a
mantenimiento, crecimiento de la proteína y depósito de grasa; el acabado
suele hacer referencia a la fase de crecimiento en la que la deposición de grasa
es rápida y predominante, BYERS y SCHELLING, citados por CHURCH
(1988).
22 EL RUMEN
Según SISSON Y GROSSMAN (1982) el rumen ocupa la mitad izquierda de
la cavidad abdominal y se extiende considerablemente hasta la derecha del
plano medío, ventral y caudalmente, su eje mayor va desde un punto opuesto
a la parte vertebral del séptimo y octavo espacio intercostales, hasta la
entrada de la pelvis .
Según LAGERIOF (1929), citado por PRESTON y WILLIS (1981), el rumen
alcanza el tamafio y posición característico del animal adulto, en relación a
otros compartimientos del estomago, aproximadamente a los 8 o 9 meses de
edad. Por otro lado, GROSSMAN (1949), citado por PRESTON y WILLIS
*
•
30
(1981), afirmó que el tamaño y peso final relativo, al tamaño del cuerpo
adulto no se logró hasta los 18 meses de edad, aunque de 4 a 6 meses los
cuatro comportamientos se aproximaban a las proporciones adultas.
El rumen y el retículo están conectados por un orificio grande y el
movimiento de la digesta entre estos dos proventrículos en general no es
restringido, por consiguiente, el rumen y el retículo en conjunto con el omaso
se conocen como el rumen, PRESTON y LENG (1989).
Para que el estómago funcione con mayor eficiencia se requiere primero
nitrógeno fermentable que se encuentra en la urea, el amoniaco y la gallinaza.
Estas son fuentes indicadas, es ilógico, fermentar la proteina para producir
amoniaco. Es mucho más lógico escoger una dieta básica que sea muy baja en
proteinas y suplementarIa con nitrógeno no proteico para aprovechar los
procesos de síntesis y en tal caso la urea, el amoniaco y la gallinaza son los
indicados porque no presentan ninguna competencia ni con el consumo
humano ni con el de los monogastrícos, PRESTON y LENG (1989).
En el rumen, los alimentos se exponen a la fermentación por los
microorganismos que se encuentran allí a unas cuantas horas del nacimiento
•
31
Y se desarrollan posteriormente en carácter y número según el tipo de
alimento seco suministrado. Los microorganismos mayormente catabolizan
los alimentos en sustancias simples principalmente ácidos grasos volátiles
(AG.v.) de cadena corta y amoniaco, los que: a) Son absorbidos directamente
del rumen, ó b) son sintetizados para formar los cuerpos de las bacterias y
protozoos, ó c) salen del rumen para ser absorbidos mediante las secciones
subsecuentes al tracto digestivo, PRESTON y WILLIS (1981).
2.21. pH del Rumen.
Existe un gran número de trabajos en la literatura referente al pH del
contenido del rumen, sin embargo, es probable que los datos sean de poco
valor. Esto es así porque se ha demostrado que el pH varía según el lugar del
rumen-retícu1o considerado, con la dieta, con el tiempo tras el reparto del
alimento, y resulta muy afectado por la saturación del líquido de la panza con
dioxido de carbono, por consiguiente cualquier dato significativo debe tener
en cuenta estos factores, CHURCH (1974).
CALDERON y CARDENAS (1992), reportaron para animales de pastoreo
con Q3. becumb~ lectura de pH 6.4, en un trabajo de investigación a nivel
.,
•
•
32
regional en el C. R.I., La libertad, los mismos autores a la suplementación con
urea- melaza reportaron 6.87 a las O horas y 6.82 a las 4 horas después de la
suplementación .
Se ha demostrado que el pH del rumen varía de una forma regular según la
naturaleza de la dieta y del tiempo que se mida tras la ingestión
PHILLIPSON (1942), citado por CHURCH (1974).
Las fluctuaciones en el pH del rumen reflejan los cambios en las cantidades
de ácidos orgánicos que se acumulan en la ingesta y la cantidad de saliva que
se produce. El pH del rumen alcanza su valor más bajo a las 2 - 6 horas de la
toma de alimentos según la naturaleza de la dieta y la rapidez con que se
consume un alimento, BRIGGS el !t. REID el al (1957), citados por
CHURCH (1974).
Por regIa general, los datos publicados por BATH y ROOK (1963), citados
por CHURCH (1974), indican el pH será inferior en animales alimentados con
cantidades crecientes de heno o heno y concentrados, aumentado la
frecuencia del reparto de alimento tenderá también a reducirse la diferencia
de los valores del pH encontrados .
..
..
33
BRIGGS et al (1957), citado por CHURCH (1974), observó que el pH
contenido rumina1 en caso de dieta de cereales, era significativamente menor
a cualquier nivel dado de AGV, que en caso de dietas de forraje grosero, en
otras palabras la adición de sustancias alimenticias con grandes cantidades de
almidón o carbohidratos solubles producirá valores más bajos de pH que las
raciones con preponderancia de celulosa u otros hidratos de carbono, de los
que se metabolizan lentamente.
El pH corrientemente oscila entre 6 y 7 Y va amortiguado por la entrada de
grandes cantidades de fosfato y bicarbonato, por la absorción del torrente
circulatorio de AGV y amoniaco producidos por la fermentación y por la
tendencia hacia un equilibrio iónico entre el contenido rumina1 y la corriente
sanguínea, DUKES y SWENSON (1979).
El pH del rumen no se desvía mucho de la neutralidad, usualmente esta entre
los límites de 6 a 7. Después de la ingestión de alimentos el pH disminuye, y
la velocidad y cuantía de la disminución están relacionadas con la
composición de la dieta. La disminución en el pH es especialmente notable
cuando la dieta contiene cantidades apreciables de azucares rápidamente
fermentables. Existe una fuerte relación inversa entre la concentración de
..
34
AGV, y ácido láctico, por una parte, y pH del contenido, BRlGGS el al
(1957), citado por CUHRCH (1982). Durante el ayuno, la concentración de
AGV disminuye continuamente y el pH del contenido se eleva por encima de
7 a una región próxima al de la sangre, DUKES y ASWENSON (1979).
El grupo de bacterias celuloJiticas es muy sensible al pH del rumen. Un pH
ruminal menor 6.2 inhibirá gravemente su crecimiento. En condiciones de
pastoreo el pH ruminal generalmente oscila entre 6.3 y 7, ya que el consumo
de alimentos fibrosos proporciona una producción considerable de elementos
amortiguadores en la saliva como resultado del período de tiempo tan largo,
que los animales destinan a la ingestión y rumia, en relación con la cantidad
de AGV, producidos, ORSKOV (1988).
Al introducir concentrados en la dieta, el patrón de fermentación ruminal
cambia notablemente ya que los valores de pH descienden a un nivel muy
bajo (aproximadamente 5) lo mismo que la concentración de amoniaco
ruminal, mientras que se incrementa rápidamente la concentración de AGV,
DINDA (1960) Y EADIE (1967), citados por PRESTON y WILLIS (1982).
•
•
35
El pH del rumen limita la tasa de desarrollo microbiano, PRESTON y
WILLlS (1982).
HENDRICK y MARTIN (1963) demostraron en estudios in-vitro que la
sintesis microbiana de la proteína se limitaba al rango de ph de 6 a 8 llegando
a un promedio de pH 7.
El hecho de que el pH del rumen con dietas a base de concentrados sea casi
siempre menor que 6.5 EADIE Y ELlAS et al (1967), citados por PRESTON
y WILLlS (1982), sugiere que estas no proporcionan las mejores condiciones
para una eficiente utilización de NNP.
En condiciones muy ácidas del rumen pH menor de 6.2, la población
microbiana se altera (tipo y cantidad), causando una disminución
significativa en la contribución de nutrientes de la actividad microbiana. La
observación más común en la acidosis rumínal es una reducción acetato-
propionato y una acumulación de ácido láctico. En vacas lecheras en lactancia
esta alteración de la relación de AGV da como resultado una notable
disminución de grasa junto con una menor eficiencia de la fibra, DONALD
(1987).
•
•
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36
El pH del rumen se establece por la biple relación entre la capacidad de
acidificación o alcalinidad de los productos de la fermentación y la presencia
de sustancias tampones, la capacidad de buferización alcalina del rumen no
es tan grande como la buferización ácida, BIOMFIELD et al (1963) .
Después de la ingestión de alimentos, el pH disminuye, la velocidad y la tasa
de disminución están relacionados con la composición de la dieta. El aumento
de la alcalinidad que resulta de la ingestión de cantidades de urea favorece el
incremento de la absorción de amonio conbibuyendo a la toxicidad, mientras
el aumento de la toxicidad, generalmente asociado con la ingestión del grano
traen como consecuencias disrumias, acidosis y reducción de la grasa de la
leche, PEÑA (1982).
Con relación a la extensión y la tasa de degradación de la proteína de la dieta
en el rumen, ERFLE et !L(1982), encontraron que uno de los factores que
afecta estas variables es el pH puesto que influye en el metabolismo de los
compuestos nitrogenados (CN), tal como lo reportaron SHIVER et al
(1986), quienes demostraron que un pH menor a 5.8 se disminuyó la
concentración de N-NH3 y la digestión de los compuestos nitrogenados.
•
•
31
222 Ambiente Ruminal.
El ambiente ruminal parece ser controlado por:
- Tipo y cantidad de alimento consumido .
- La mezcla periódica a través de las concentraciones ruminales.
- Salivación y rumia.
- Difusión o secreción hacia el rumen.
- Paso de material hacia el aparato digestivo posterior .
La temperatura normal del rumen se considera que es de 39 a 40 grados
centígrados, CHURCH (1974). BRODY et al (1955) encontraron oscilaciones
de 38 a 40 grados centígrados en vacas alimentadas normalmente, según la
situación del rumen, encontrando las temperaturas crecientes cuando las
medidas se toman desde la parte dorsal a la ventral. Las vacas en ayuno
registraron incremento en la temperatura del rumen, la fermentación activa
de alimentos tales como el heno de alfalfa, puede producir temperaturas de
hasta 410 e, FHILLCHRlSTY CLARCK (1957), citados por CHURCH (1974),
llegando a superar la temperatura del rumen a la rectal.
•
..
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38
Las temperaturas del rumen tienden a variar más que las rectales, lo que se
debe parcialmente a la ingestión de agua, que se encuentra siempre a
temperaturas más bajas, que la del rumen. Se ha observado que la ingestión
del agua a temperatura moderada (2S°C) produce un descenso de la
temperatura del rumen de S a 10 grados centígrados, requiriéndose por lo
menos dos horas para que se estabilicen los valores normales, NOSINGER et
al (1961), CUNNIGHAM et al (1964), citados por CHURCH (1974).
El ambiente sólo se perturba bajo condiciones anormales drásticas.
Constantemente se adiciona saliva al rumen para mantener el contenido en
un estado liquido facilitando el acceso de microorganismos al material
vegetal. El volumen de saliva que secreta un rumiante depende de la dieta. El
tipo de microorganismo también afecta el flujo de saliva, el cual se puede
reducir por la presencia de protozoarios, estos asimilan rápidamente
almidones y azucares y no requiere de una salivación copiosa para mantener
el pH ruminal PRESTON y LENG(1989). Se ha estudiado la importancia de
la saliva en la complementación de varios factores (nutrientes, enzimas), que
ayudan a la ingestión y el mantenimiento de un ambiente ruminal adecuado,
todos estos ajustes de dietas combinados en la composición de la ración, más
la forma física de ésta (picado, hojuelas, peletizado) altera el pH ruminal y
•
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39
más significativamente la actividad microbiana, hasta el punto que ciertas
condiciones de alimentación han provocado ciertos efectos perjudiciales en el
comportamiento productivo del rumiante, PEÑA (1982).
Los microorganismos del rumen presentes en la fase líquida adheridos a
particulas o la pared del rumen, se dividen en tres poblaciones :
a) Microorganismos presentes en la fase líquida. Esta población no es muy
específica, estando contaminada con bacterias desprendidas de las partículas
alimenticias o por las que originalmente se encontraban adheridas a la pared
ruminal Es muy posible que en éstas condiciones, la población resultante no
sea representativa de toda población ruminal. Sin embargo, desde el punto de
vista de los microorganismos que fluyen del rumen, son estos los que llegan a
la porción post-ruminal del tubo digestivo, CHENG y COSTERTON (1980).
b) Microorganismos adheridos a la fase de alimentos. La mayor parte de la
fermentación de los forrajes se lleva a cabo por los microorganismos que se
adhieren a las partículas alimenticias es un fenómeno muy específico que se
realiza por la naturaleza de la pared bacteriana, que parece estar rodeada por
una corona de naturaleza polisacárida y posiblemente por la presencia de
ti
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40
enzimas celulolíticas y amilolíticas necesarias para digerir el sustrato al cual
se adhieren, CHENG y COSTERTON (1980).
c) Bacterias adherida al epitelio ruminal. El descubrimiento más interellante
del estudio de la microflora ruminal ha sido el de la identificación de un tipo
de flora específico en el epitelio ruminal. La presencia de esta población
parece ser independiente del sustrato que se fermente en el rumen CHENG y
COSTERTON (1980).
Esta población bacteriana puede participar en el control del reciclado de urea
al rumen por vía sanguínea, e la capacidad ureolítica de estas es máxima
cuando la concentración de amoniaco es baja y disminuye a medida que la
concentración de amoniaco aumenta, ORSKOV (1988).
223. Microorganismos del Rumen
El rumen presenta un ambiente muy favorable para el crecimiento
microbiano. Los valores de pH, entre 5.5 y 7, Y la temperatura 39 a 40 grados
centígrados son casi óptimos para muchos de los sistemas enzimáticos. El
alimento llega a él de una forma mas o menos continua y las contracciones
•
41
de las paredes del estómago favorecen la puesta en contacto de los
microorganismos en todo momento con alimento recién ingerido o rumiado.
Las condiciones de humedad son favorables para muchos microorganismos y
los productos finales de fermentación, los cuales se eliminan por absorción o
por paso a otras porciones del tubo digestivo. Como resultado de todo este
ambiente favorable crece una abundante población de organismos en el
retlculo-rumen, CHURCH (1974).
Algunos cálculos indican que el protoplasma microbiano puede llegar a
constituir el 10% del contenido ruminal WAGNER (1962), citado por
CHURCH (1974).
El desarrollo de una flora bacteriana en los rumiantes jóvenes, similar a la
encontrada en los rumiantes adultos empieza a una edad muy temprana. La
naturaleza y velocidad del desarrollo de la microflora parecen afectarse
mucho por el tipo de dietas administradas, y en cierta medida por el grado
del aislamiento del animal joven de los rumiantes adultos, EADRE y GILL
(1971) .
•
42
Los principales agentes que degradan los alimentos en el rumen son las
bacterias anaeróbicas, protozoos y levaduras. Las bacterias anaeróbicas son
los principales agentes que actúan en la fermentación de los carbohidratos de
la pared celular de las plantas, pero las levaduras, micoficetos anaeróbicos,
descubiertos simultáneamente por ORPIN y BAUCHOP, citados por
CHURCH (1982) pueden en ocasiones ser importantes. Las levaduras se
localizan en bebidas en el material fibroso. Con toda probabilidad son
celuloliticas, ya en 1972 fue confirmado este hecho, BAUCHOP (1979).
Los microorganismos contribuyen al estado nutricional del animal huésped
ayudando a sintetizar proteína de buena calidad a partir de fuentes de
nitrógeno no proteico, varias vitaminas del complejo B destruyen compuestos
tóxicos que podrian ser dañinos para el rumiante, DONALD (1987). Las
condiciones para que se pueda considerar a un microorganismos como típico
del rumen son:
- El organismo debe ser capaz de sobrevivir anaeróbicamente.
- Debe ser capaz de producir un tipo de producto final que se encuentre en el
rumen.
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•
ir
43
- Debe haber por lo menos un millón/ g de gérmenes de este tipo en el
liquido runtinal (este no puede aplicarse a los protozoos), CHURCH (1982).
La actividad de la flora ruminal sobre los substratos del alimento genera
como subproductos varios metabolitos que constituyen la principal fuente de
energía para los rumiantes adultos; estos metabolitos son conocidos como
ácidos grasos volátiles; la producción de ácidos grasos volátiles proporciona
al rumiante la mayor parte de energía metabolizable, PEÑA (1982).
La nutrición de rumiantes contempla dos entes: la microbiota que habita en
el rumen, y el animal en sí. A nivel del tejido el animal rumiante tiene
requerimientos nutricionales similares a los de cualquier mamífero. La
microbiota del rumen transforma proteína vegetal verdadera y nitrógeno no
proteico en aminoácidos, y carbohidratos solubles y refractarios a fuentes de
energía para el animal. Los nutrientes menores, más importantes requeridos
por la microbiota, son el amoníaco y los carbohidratos fermentables. La
manipulación de estos nutrientes determinan el tipo de fermentación que se
realiza en el rumen, y este a su vez afectará el balance de nutrientes
absorbidos que llegan al tejido animal, OWEN (1990).
•
44
223.1. Bacterias Ruminales.
La mayor parte de las bacterias del rumen son cocos o bacilos cortos cuyo
tamaño oscila de 0.4 a 1 micra de diámetro y de 1 a 3 micras de longitud, sin
embargo, se pueden encontrar formas como espiroquetas, rosetas ovales y
tetracocos. La forma y tamaño de las células puede variar considerablemente
en cultivos simples o de grupos de cepas, incluso si se observa, en
condiciones estrictamente uniformes, como sucede en los trabajos sobre
cultivos puros, CHURCH (1974); BRYANT (1977).
Las bacterias deben estar adheridas para digerir la fibra, aunque algunos
organismos secretan enzimas extracelulares. Existe información de que los
organismos celulolíticos producen una bolsa de enzimas que está asociada
muchas veces con una cápsula. Estas enzimas atacan al carbohidrato más
complejo degradándolo a celubiosa, glucosa y AGV, PRESTON y LENG
(1989).
HUNGATE (1966); citado por CHURCH (1974), clasificó las bacterias
basándose en parte en los substratos utilizados y en parte a los productos
finales producidos .
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45
Es bien conocido el hecho de que la biomasa microbiana presente en el rumen
esta constituida por una multitud de microorganismos de diferentes especies,
HUNGA TE (1%6). Las bacterias halladas en el contenido ruminal no siempre
corresponden a la flora habitual; pueden proceder de la dieta o del medio
ambiente que rodea al animal. Las condiciones que prevalecen en el rumen
dadas las características de anaerobiosis y constante dilusión de su contenido,
permiten únicamente el crecimiento de microorganismos para los cuales los
sustratos y el ph en el rumeI\, son óptimos, muy en particular los
microorganismos que tienen un alto ritmo de división celular ORSKOV
(1988).
ORSKOV (1988) clasifica las bacterias así:
223.1.1 Bacterias Celulolíticas.
Este grupo de bacterias confieren al rumiante la capacidad de sobrevivir a
base de forrajes fibrosos de baja calidad por lo que son microorganismos muy
importantes en el proceso digestivo de los rumiantes. Probablemente sea
cierto decir que este grupo de microorganismos en particular a jugado un
.,
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46
papel decisivo en la evolución de los rumiantes como eficientes consumidores
de alimentos no apropiados para la mayoría de animales no rumiantes.
223.1.2 Bacterias Amilolíücas.
Este tipo de bacterias fermentan el almidón y generalmente son menos
sensibles a cambio de pH ruminal que las bacterias celulolíticas. La velocidad
a la que el almidón es degradado y fermentado en el rumen depende tanto
del tipo de almidón como del método y grado de procesamiento a que ha
sido sometido .
223.1.3 Bacterias Fermentadoras de Azucares Solubles.
Muchas de las bacterias que fermentan el almidón actúan también sobre los
azucares sencillos. No obstante, en el caso de los azucares, al contrario del
almidón y la celulosa, no existen partículas a las cuales los microorganismos
se puedan adherir. La corta existencia y rápida desaparición de este sustrato
soluble en el rumen, condujo a HUNGATE (1966) a sugerir que las bacterias
especialízadas en la fermentación de los glucócidos solubles, se encontrarian
..
•
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47
en condiciones adversas durante los periodos en que el animal no recibe
alimento.
223.1.4 Bacterias Proteoliticas.
De acuerdo con HUNGATE (1966) son escasas, si es que existen, las bacterias
ruminales exclusivamente proteolíticas y las cepas aisladas, parecen utilizar
otras bacterias como fuente de nutrientes. Las proteínas solubles,
aminoácidos, péptidos, etc, son rápidamente degradadas a amoniaco. Las
proteínas solubles se adhieren rápidamente a las paredes de las bacterias y
por lo tanto son rápidamente degradadas. Las proteínas menos solubles y las
particulas de alimentos que contienen una proporción muy alta de proteína
se adhieren a las bacterias y son degradadas a diferente ritmo.
223.1.5 Protozoos Ruminales
Durante mucho tiempo los protozoos fueron considerados necesarios para el
animal huésped, sin embargo; en años recientes se ha demostrado que los
rumiantes pueden sobrevivir y crecer sin la población ciliada; ORPIN (1984);
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48
ya que en ausencia de estos, las bacterias mantienen la digestión de la
celulosa, AKIN Y BARTON (1978).
Desde el punto de vista del metabolismo nitrogenado es importante seiialar
que generalmente, la fuente de nitrógeno para los protozoos procede de las
bacterias atrapadas y digeridas por los mismos. Puesto que ésta es su
principal fuente de nitrógeno, puede suponerse que la producción de
proteína microbiana sea menor cuando los protozoos están presentes, que en
los animales defaunados, como consecuencia de un incremento en el tiempo
requerido, para la tasa de renovación de la proteína microbiana presente en el
rumen ORSKOV (1988).
2.23.1.6 Importancia de los Protozoarios en los Rumiantes
El hecho de que la ausencia de protozoos ciliados en el rumen no tienen
efectos perjudiciales serios en rumiantes han sido bien conocidos. JOUANY
et al (1988) sugirió que como el rumiante no puede sobrevivir a la
elimínación total de bacterias, más características digestivas son retenidas
después de la destrucción de protozoos.
•
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49
El patrón de fermentación del rumen es más estable que cuando el protozoo
ejerce algún control sobre la formación de un ácido, WILLIAMS y
COLEMAN (1988).
Esto ha sido confirmado por NEWBOLD, WILLIAMS y CHAMBERLAIN
(1987), quienes reportaron que el ácido láctico fue activamente tomado por
los ciliados Entodiniomorphid, notando que la digestión del almidón y
azúcar soluble previene la formación bacteria! de ácido láctico, GILCHIRIST,
ROBERTS, HANNAH Y SCHWARTZ (1978). MACKIE, sin embargo,
posiblemente la acción más importante del protozoo en el rumen es el
hundimiento de la bacteria. El protozoo es retenido selectivamente en el
rumen. De esta manera el protozoo reduce el flujo de proteína microbial del
, rumen. En efecto el transporte de protozoos (defaunación) causo un
incremento en el flujo de amoniaco no penetrado en el duodeno, VEIRA e
IV AN (1983); JOUANY, DEMEYER y GRAIN (1988); HSU et al (1991) .
50
2.3. PARAMETROS DE VALOR NUTRICIONAL
2.3.1. Digestibilidad
Según MERCHEN, citado por CHURCH (1988), la digestibilidad puede
definirse en términos generales como la suma de procesos por los que las
macromoléculas de los alimentos son degradados hasta compuestos más
sencillos que son absorbidos en el conducto gastrointestinal. Virtualmente en
todas las especies de mamíferos, la digestión se realiza tanto por mediación
de un metabolismo fermentativo de los componentes de la dieta, afectado por
microbios ubicados en determinadas partes del conducto gastrointestinal;
como por la composición hidrolítical enzimática de nutrientes complejos
apoyada por secreciones vertidas al estómago y al intestino delgado.
La depresión de la digestibilidad es una función de la competencia entre las
tasas de digestión y de paso de la digesta.Cuanto más lentamente sean
digeridas las fracciones presentes en las membranas de las células vegetales
mayor será la influencia que experimenten. Cuanto más digestible sea la
membrana celular, mayor será el potencial para que descienda la
digestibilidad mediante influencia del nivel de consumo, forma física, paso o
..
51
adición de concentrados. La reducción de la digesbbilidad es directamente
proporcional al contenido de productos digestibles de la membrana celular y
la velocidad de paso e inversamente proporcional a la rapidez de la digestión,
FAHEY Y BERGER, citados por CHURCH (1988).
Dentro de los factores que afectan la digestibilidad se tienen:
- La composición del alimento - composición de la ración.
- Preparación y cocción de los alimentos - factores dependientes del animal -
nivel de ingestión, ORSKOV (1990) .
Los mecanismos de digestión de los carbohidratos estructurales pueden ser
divididos en tres componentes: (A) un periodo inicial inerte con digestión
microbiana escasa o nula, (6) tasa de digestión de la porción de fibra