Determinación de algunos parámetros hematológicos y de ...

Universidad de La Salle Universidad de La Salle

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Medicina Veterinaria Facultad de Ciencias Agropecuarias

2013

Determinación de algunos parámetros hematológicos y de Determinación de algunos parámetros hematológicos y de

química sanguínea en terneros cebuínos menores de 20 días del química sanguínea en terneros cebuínos menores de 20 días del

Magdalena medio Magdalena medio

Paula Andrea Quiroga Mayorga Universidad de La Salle, Bogotá

Noemi Orejarena Anzola Universidad de La Salle, Bogotá

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Citación recomendada Citación recomendada Quiroga Mayorga, P. A., & Orejarena Anzola, N. (2013). Determinación de algunos parámetros hematológicos y de química sanguínea en terneros cebuínos menores de 20 días del Magdalena medio. Retrieved from https://ciencia.lasalle.edu.co/medicina_veterinaria/25

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Universidad de la Salle

Facultad de Ciencias Agropecuarias

Programa de Medicina Veterinaria

Determinación de algunos parámetros hematológicos y de química sanguínea en terneros cebuínos menores de 20 días del Magdalena Medio

Trabajo de Grado

Paula Andrea Quiroga Mayorga

Noemi Orejarena Anzola

Bogotá, Colombia

2013

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UNIVERSIDAD DE LA SALLE

Facultad de Ciencias Agropecuarias

Programa de Medicina Veterinaria

Determinación de algunos parámetros hematológicos y de química sanguínea en terneros cebuínos menores de 20 días del Magdalena Medio

Trabajo de Grado

Paula Andrea Quiroga Mayorga

Código: 14081032

Noemi Orejarena Anzola

Código: 14062132

Director

Dra. Clara Stefany Romero Hurtado

Bogotá, Colombia

2013

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APROBACION

Director (a) ____________________ Dra. Clara Stefany Romero Jurado ____________________ Dr. Ricardo Piñeros Jurado ____________________ Dr. Rafael Neira

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COMPROMISO El presente trabajo no contiene ideas que sean contrarias a la doctrina católica en asuntos de dogma y moral. Ni la Universidad, ni el director, ni el jurado calificador son responsables de las ideas expuestas por los graduandos.

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AGRADECIMIENTOS En primer lugar queremos agradecer a Dios por habernos permitido vivir hasta este día, acompañarnos y guiarnos todos los días durante este proceso.

Segundo a nuestras familias por su apoyo incondicional en este camino para poder alcanzar el titulo de Medicas Veterinarias. Tercero a todas aquellas personas que apoyaron nuestro proyecto: A las Ganaderías el EL TESORO , 2P, AGROPECUARIA OREJARENA y su excelente de grupo de trabajo; a la Directora de este proyecto Dra. Clara Romero por su ayuda, a la Dra. Leslie Moreno por su enorme colaboración. Finalmente quisiéramos agradecer a los individuos que fueron objeto de éste estudio ya que sin ellos nada de esto hubiera sido posible.

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TABLA DE CONTENIDO

RESUMEN 10 ABSTRACT 11 INTRODUCCIÓN 12 1. MARCO TEÓRICO 13 1.1 COMPONENTES DE LA SANGRE 13 1.2 HEMOGRAMA 14 1.3 HEMATOCRITO 14 1.3.1 Anisocitosis 15 1.3.2 Hipocromía 15

1.3.3 Cuerpos de Howell-Jolly. 15 1.4 CONCENTRACIÓN DE HEMOGLOBINA 15 1.5 CÉLULAS ROJAS 16 1.5.1 Glóbulos Rojos o Eritrocitos 16 1.5.2 Volumen corpuscular medio (VCM) 17 1.5.3 Concentración media de Hemoglobina corpuscular (CMHC) 17 1.5.4 Hemoglobina corpuscular media (HCM) 18 1.6 PLAQUETAS 18 1.7 GLÓBULOS BLANCOS O LEUCOCITOS 18 1.7.1 Granulocitos 19 1.7.1.1 Neutrófilos 19 1.7.1.2 Eosinófilos 20 1.7.1.3 Basófilos 21 1.7.2 Agranulocitos 22 1.7.2.1 Linfocitos 22 1.7.2.2 Monocitos 23 1.8 PERFIL HEPÁTICO 24 1.8.1 Componentes proteicos de la sangre 24 1.8.1.1 Albumina 24 1.8.1.2 Globulinas 25 1.8.1.3 Fibrinógeno 25 1.8.2 Enzimas séricas 26 1.8.2.1 Aspartato amino transferasa 26 1.8.2.2 Gamma glutamil transpeptidasa 26 1.9 PERIL RENAL 26 1.9.1 Creatinina 26 1.9.2 Nitrógeno Ureico en Sangre (BUN) 27 2. MATERIALES Y MÉTODOS 28 2.1 Localización 28 2.2 Población y muestra 29 2.3 Variables 30 2.4 Análisis estadístico 30 2.5 Método y procedimiento. 31

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3. RESULTADOS 33 4. DISCUSIÓN 43 5. CONCLUSIONES 49 6. RECOMENDACIONES 50 LISTA DE REFERENCIAS 51 ANEXOS 56

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LISTA DE FIGURAS Figura 1. Neutrófilo segmentado; magnificación 1000x (Schalm,2010). 20 Figura 2. Eosinófilo bovino, magnificación 1000x (Schalm,2010). 21 Figura 3. Basófilo bovino, magnificación 1000x (Schalm,2010). 22 Figura 4. Linfocito, magnificación 1000x (Schalm,2010). 23 Figura 5. Monocito, magnificación 1000x (Schalm,2010). 24 Figura 6. Mapa geográfico de Colombia. 28

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LISTA DE TABLAS Tabla 1. Datos del individuo y constantes fisiológicas. 34 Tabla 2. Valores del perfil hematológico emitido por el laboratorio de La Universidad

de La Salle. 36 Tabla 3. Valores del perfil de química sanguínea emitido por el laboratorio de La

Universidad de La Salle. 38 Tabla 4. Valores hematológicos para terneros cebuinos del Magdalena Medio

menores de 20 de días. 40 Tabla 5. Valores de Química Sanguínea para terneros cebuinos del Magdalena Medio

Menores de 20 días. 40 Tabla 6. Resultados estadísticos para las variables muestreadas vs la raza. 41 Tabla 7. Resultados estadísticos para las variables muestreadas vs el sexo. 42 Tabla 8. Categorización de parámetros según su rango. 48

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RESUMEN

Dentro de la práctica de la Medicina Veterinaria los valores del cuadro hemático y valores tanto de perfil renal como hepático son de gran ayuda para el análisis, orientación del estado clínico y tratamiento. La presente investigación tuvo como objetivo determinar algunos valores fisiológicos de hematología y química sanguínea en terneros cebuínos menores de 20 días de edad, del Magdalena Medio Colombiano. Se realizó el muestreo de 60 animales (20 de raza Gyr, 20 de raza Brahmán y 20 de raza Guzera) para obtener sangre de vena yugular externa. Una vez recolectada, se realizó el análisis de las muestras, donde fue posible obtener valores promedio y rangos de las siguientes variables: para glóbulos rojos (7.0 x10^6/µL - 18 x10^6/µL) hematocrito (24%- 49 %), hemoglobina (7 g/dL- 16, g/dL), así como para índices eritrocíticos como: VCM (27 fL - 46 fL),HCM (8 pg - 14 pg), CHCM (28 g/dL - 32 g/dL) y plaquetas (160 x10^3/µL - 962 x10^3/µL). Para la línea leucocitaria los valores obtenidos corresponden a, leucocitos (8x10^3/µL - 27x10^3/µL), neutrófilos (16x10^3/µL - 81x10^3/µL), linfocitos (17% - 84% ), eosinófilos (1 – 6%), monocitos (1% - 7%), basófilos (1% - 2%) y bandas ( 1% - 2%). Igualmente, se obtuvieron los rangos de química sanguínea para enzimas hepáticas como AST (48.19 U/L - 58.51 U/L), GGT (130.55U/L - 254.15U/L), Creatin Kinasa ( 173.69U/L - 275.43UL), Fibrinógeno (350 mg/dL- 475.17 mg/dL), Albumina (2.75 g/dL - 2.92g/dL), Proteínas Totales ( 6.59g/dL - 6.95 g/dL) , y algunos parametros renales como Creatinina (0.9mg/L - 1.3mg/l) y por último el valor del BUN ( 6.50mg/L - 8.91mg/L). Se observó diferencia significativa entre leucocitos, albúmina y AST al comparar las 3 razas evaluadas. Estas tres variables tambien tuvieron el mismo grado de significancia al comparar las variables versus la poblacion total de los 60 animales. En cuanto al grado de significancia entre el sexo de los animales y las variables analizadas se concluye que los glóbulos rojos son más altos en los machos que en las hembras; el VCM y la HCM son mayores en las hembras y la creatinina es mayor en los machos. Aunque existen parámetros similares a los establecidos en bovinos Bos Indicus adultos en Colombia es necesario establecer índices y valores hematológicos específicos para terneros menores a 20 días con el fin de ayudar a determinar el estado del individuo y que sirva como un diagnóstico clínico más acertados.

Palabras clave: Terneros, cuadro hemático, perfil renal, perfil hepático,

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ABSTRACT

In the Veterinary Medicine practice, the parameter values of hematology and both renal and liver profile, are very helpful for diagnostic, which is fundamental to the analysis and orientation of the patient´s clinical status. This research, aims to determine the phisiological values of hematological and some blood chemistry values in Cebu calves, under 20 days of age, in Colombian middle Magdalena. Sampling was accomplished in 60 animals (20 Gyr, 20 Brahman and 20 Guzerat) to obtain external jugular vein blood. Once collected, the analysis of the blood was performed, after it was posible to obtain average values ranges for the following variables. Red blood cells (7.0 x10^6/,µL - 18 x10^6/,µL) hematocrit (24%- 49 %), hemoglobin (7 g/dL- 16, g/dL), as well as volumetric values (VCM (27 fL- 46 fL),HCM (8 pg-14, pg), CHCM (28 g/dL- 32 g/dL)) and platelets (160 x10^3/µL -962 x10^3/µL). For the White blood cells, the values obtain correspond to, Leucocytes (8 x10^3/µL-27x10^3/µL), neutrophils (16 x10^3/µL -81 x10^3/µL), lymphocytes (17 % - 84%), eosinophils (1 – 6 %), monocytes (1 %- 7 %), basophils (1%- 2%) and bands (1%- 2%). Also we obtained blood chemistry ranges for liver enzymes like Aspartate aminoTransferase (48.19 U/L-58.51 U/L), Gamma Glutamyl Transferase (130.55U/L-254.15U/L), Creatine Kinase (173.69U/L-275.43UL), Fibrinogen (350 mg/dL- 475.17 mg/dL), Albumin (2.75 g/dL- 2.92g/dL), total plasma proteins (6.59g/dL-6.95 g/dL), and some renal parameters such as Creatinine (0.9mg/L- 1.3mg/l) and Blood Urea Nitrogen (6.50mg/L- -8.91mg/L). There was a significant diference between the 3 breeds compared to leucocytes, albumin and AST. These diference continue existing when the variables compared to the total population (60 animals) was analysed. We concluded a significant diference between the sex of animals with the following variables analyzed; where red blood cells and creatinine had superior values in males and the VHC and HCM was higher in females. Although there are similar parameters between adult Bos Indicus cattle and calves in Colombia specific haematological indices and values are needed for calves less than 20 days in order to determine the animal`s conditions and help in the differentiation of clinical diagnosis.

Keywords: Calves, parameter values of hematology, liver profile, renal profile.

INTRODUCCIÓN

Dentro de la práctica de la clínica veterinaria existen diferentes herramientas de laboratorio que ayudan al acertado diagnóstico de diferentes patologías y evaluación de un tratamiento indicado (Muñoz & Riber, 2012). Como ejemplo principal se encuentran el cuadro hemático y algunos indicadores tanto de perfil hepático como de perfil renal, las cuales son de utilidad gracias a la gran cantidad de información que suministran y su accesible costo. El periodo neonatal es decisivo para la sobrevivencia de los terneros, durante este periodo el sistema inmunológico esta en desarrollo y así mismo deben adaptarse al medio ambiente, el cual presenta grandes diferencias con respecto al ambiente en el útero; sin duda todos estos cambios hacen que los terneros sean mas susceptibles a enfermedades (Benessi, 2002). Dentro de las enfermedades que se presentan con mayor frecuencia en los neonatos bovinos están diarreas bacterianas y virales, infecciones umbilicales, neumonía y septicemia. Todas las enfermedades anteriormente nombradas además de presentar signos clínicos específicos también muestran cambios hematológicos (Benessi, 2002). En diferentes situaciones como en deficiencias nutricionales y enfermedades, los parámetros hematológicos, valores de perfil renal y hepático constituyen un examen paraclínico que ayuda al diagnóstico. Estos perfiles están sometidos a variaciones normales frente a distintos factores como por ejemplo: estado fisiológico, edad y raza (Roldán, Luna, Gasparotti, 2006).

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MARCO TEÓRICO

1.1. COMPONENTES DE LA SANGRE

La Sangre corresponde a un tejido circulante especializado, compuesto por distintas células suspendidas en una sustancia intercelular líquida. A diferencia de otros tejidos, estas células no mantienen una relación espacial permanente entre sí, sino que se mueven continuamente de un lugar a otro (Adrien, 2009). Así mismo se encarga de proveer nutrientes como el oxígeno, la glucosa, transporte de diversas moléculas como aminoácidos, lípidos y hormonas (Kent, 1986). La sangre funciona como un medio de transporte que junto con las células presentes en ella son de vital importancia en el correcto funcionamiento de un sistema biológico, en este caso los animales. Se han reconocido tres clases de células sanguíneas: Leucocitos, Trombocitos y Eritrocitos. Estos últimos son el producto final de un proceso denominado eritropoyesis y resultan esenciales en el transporte de oxigeno a todos los tejidos del cuerpo. Esas tres clases de células se encuentran suspendidas en un líquido denominado plasma, el cual tiene una coloración amarilla en la mayoría de especies animales, siendo más oscuro en los equinos debido a mayor cantidad de pigmento (bilirrubina) circulante. A diferencia del suero, el plasma contiene la proteína conocido como fibrinógeno, la cual puede ser obtenida con la adición de un anticoagulante a la muestra de sangre (Swenson & Reece, 1999). En general, el volumen de sangre total para la mayoría de los mamíferos es aproximadamente el 7 a 8 % del peso del individuo. La sustancia intercelular o plasma, comprende del 46 al 65% del volumen total y los componentes celulares constituyen del 35 al 55% (Ramírez, 2006). Con el fin de determinar los valores hematológicos e índices eritrocíticos se utilizan pruebas de laboratorio. Sin embargo se requiere que la muestra obtenida esté en condiciones óptimas para su procesamiento. Es así como, se debe mantener el tamaño celular de los eritrocitos, para esto se recomienda el uso del acido etilendiaminotetraacetico (EDTA) o heparina, los cuales mantienen dicho tamaño, y son útiles a la hora de realizar estudios morfológicos sanguíneos (Swenson & Reece, 1999).

1.2 HEMOGRAMA

Dentro de las diferentes pruebas de laboratorio a las que tiene acceso la clínica veterinaria, se encuentra el hemograma, el cual debe ser interpretado de manera cuidadosa teniendo especial atención en las variables propias del animal como: edad, sexo, raza, acondicionamiento físico entre otros con el fin de evitar errores diagnósticos (Valera & Milan, 2006). El hemograma se define como la evaluación numérica y descriptiva de los elementos celulares de la sangre: glóbulos rojos, glóbulos blancos y plaquetas. Constituye una de las pruebas más solicitadas en el laboratorio clínico, ya que acompaña casi todos los protocolos de diagnóstico, y es, tal vez, con el avance tecnológico, la prueba de rutina que más ha evolucionado no solo en el número de parámetros sino en precisión, exactitud y rapidez (Escobar, 2008). El hemograma ofrece una estimación del número de glóbulos rojos y leucocitos circulantes. Generalmente incluye la morfología y recuento total de glóbulos rojos, la estimación de las plaquetas y el leucograma (Velásquez, 1993). Los instrumentos hematológicos automatizados proveen un conteo rápido de células e índices eritrocitarios potencialmente útiles, tal como el Volumen Corpuscular Medio (VCM), la Hemoglobina Corpuscular Media (HCM) y la Concentración de Hemoglobina Corpuscular Media (CHCM). Es importante que los equipos automatizados sean calibrados para la especie de interés, y hacer valoración de examen microscópico para conformar los reportes del analizador, además de detectar anormalidades morfológicas que no pueden ser subestimadas (Jones, 2007).

1.3 HEMATOCRITO (HTO)

Se define como la fracción de volumen que los eritrocitos ocupan dentro del total de la sangre. Se obtiene de centrifugar la sangre venosa o capilar no coagulada, para luego determinar las cantidades relativas de eritrocitos empacados y de plasma (Escobar, 2008). El hematocrito (Hto) proporciona la estimación más rápida y precisa de la capacidad de transporte de oxígeno de la sangre y, junto con la valoración visual de un frotis sanguíneo, es a menudo el primer análisis de glóbulos rojos que se realiza (Voight, 2000). El conocer el valor del hematocrito es de gran ayuda y efectivo para estimar el grado de anemia independientemente de las alteraciones de tamaño, forma y grosor de los eritrocitos en los diferentes tipos de anemia. El hematocrito refleja la concentración de los eritrocitos pero no la masa total de estos (Berrio, 2003). El mismo se expresa de acuerdo con la nomenclatura tradicional con porcentaje (%) (Voigt, 2003).

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1.3.1. Anisocitosis

Se define como la variación en el diámetro normal de los eritrocitos en los extendidos sanguíneos. En los bovinos es normal encontrar anisocitosis leve a moderada pero un gran aumento de éstos es un signo de una posible anemia regenerativa (Meyer & Harvey, 2000). Esto puede indicar la existencia de macrocitos y/o microcitos. Generalmente resulta muy difícil evaluar que células tienen un diámetro o un volumen normal, pero el tamaño medio del eritrocito puede determinarse calculando el Volumen Corpuscular Medio (VCM). Un valor elevado del Volumen Corpuscular Medio (VCM) indica macrocitos y uno bajo microcitos (Voigt, 2003). 1.3.2 Hipocromia

La hipocromía es la disminución en la densidad de tinción de las células, esto se debe a la falta de precursores de la hemoglobina, especialmente el hierro. Los eritrocitos hipocrómicos verdaderos deben ser diferenciados de los torocitos, los cuales poseen un centro incoloro y periferias de un color rojo denso y normalmente corresponden a artefactos en la preparación de la muestra. La hipocromía se mide como una disminución de la Concentración de la Hemoglobina Corpuscular Media (CHCM) (Meyer & Harvey, 2000). 1.3.3 Cuerpos de Howell-Jolly Son eritrocitos con zonas esféricas pequeñas de color azulado a negruzco de tamaño variable y normalmente únicas en el citoplasma, que corresponden a fracciones de DNA. Son reminiscencia del núcleo del eritrocito que, si aparecen ocasionalmente, carecen de importancia diagnóstica, pero que pueden estar presentes en casos de anemias hemolíticas severas, anemias megalobásticas, mielodisplasias, anemia regenerativa, esplenectomías o una supresión de la función esplénica (Reagan, 1991). Estos remanentes se forman en la médula ósea y son eliminados en el bazo. Se puede observar normalmente en bovinos cuando hay eritrocitos inmaduros durante una respuesta a una anemia (Meyer & Harvey, 2000; Escobar, 2008). 1.4 CONCENTRACIÓN DE HEMOGLOBINA

La hemoglobina es una proteína conjugada compleja que contiene hierro y se compone de un pigmento y una proteína simple. Su color rojo se debe al grupo heme, el cual contiene un átomo de hierro. La biosíntesis de dicha proteína comienza en el rubricito y sigue en todas las etapas siempre y cuando exista material nuclear en la célula. En cuanto a su peso molecular, este varia entre 66.000 y 69.000 Daltons siendo esto de importancia ya que durante la hemolisis de eritrocitos, por diferentes motivos, la hemoglobina dentro de ellos es liberada al plasma y es nefrotóxica si ésta no se une con la haptoglobina para formar un complejo, que evita que pase a través del filtro glomerular aislada (Swenson & Reece, 1999).

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En la especie bovina se expresa un diferente tipo de hemoglobina denominada: hemoglobina fetal, la cual difiere en su composición de aminoácidos, curvas de disociación de oxígeno y propiedades electroforéticas comparada con la hemoglobina adulta (Swenson & Reece, 1999). La hemoglobina incrementa durante su desarrollo fetal alcanzando valores cercanos a los adultos al momento del nacimiento; luego del nacimiento se presenta una rápida disminución de estos valores durante las primeras semanas de vida que es seguida por el incremento de forma gradual hacia los valores adultos a los 4 meses de edad (Meyer & Harvey, 2000). La hemoglobina representa en promedio el 32% de la masa total del eritrocito (Escobar, 2008). 1.5 CÉLULAS ROJAS

1.5.1 Glóbulos Rojos o Eritrocitos Se originan embrionariamente a partir del saco vitelino, hígado y bazo, mientras que en la última etapa de la gestación la médula ósea realiza dicha función (eritropoyesis) como ocurre en el animal adulto (Swenson & Reece, 1999). Pertenece a la serie eritrocítica y su formación sucede a través de las siguientes etapas: Rubroblasto, Prorubroblasto, Rubrocito, Metarubrocito, Reticulocito y Eritrocito (Berrio, 2003). El estímulo principal de la eritropoyesis parece ser la eritropoyetina, producida en el riñón; se ha sugerido que el cobalto estimula la eritropoyesis produciendo en el organismo un estado local anóxico en el riñón, lo que favorecería la liberación de eritropoyetina (Berrio, 2003). Los eritrocitos en los bovinos viven aproximadamente 160 días y después se eliminan de la circulación, antes de desintegrarse por completo. Los glóbulos rojos viejos son fagocitados en el bazo, médula ósea e hígado por células fagocitarias. El hierro de la hemoglobina se recupera y se usa para la formación de nuevos eritrocitos (Adrien, 2009). Las células y los tejidos del organismo dependen de los eritrocitos para el aporte de oxígeno, la ausencia de un núcleo, la forma y el contenido de hemoglobina, contribuyen a hacer al eritrocito más eficaz en el transporte de este elemento (Tharll, 2004). La principal función del eritrocito es transportar la hemoglobina (Hb) de los pulmones a los tejidos corporales. Debido a que la hemoglobina libera oxígeno, la función esencial de esta célula es distribuir dicho oxígeno por todo el organismo (Voigt, 2003). La masa de glóbulos rojos circulantes y el tejido de la médula ósea constituyen el eritrón. Los cambios en este eritrón puede ser por (Escobar, 2008):

a) Atrofia o anemia b) Policitemia c) Deshidratación o hemoconcentración d) Hidremia o Hemodilución

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La eliminación de los eritrocitos viejos o deteriorados, se produce principalmente en el bazo, aunque también tienen participación los macrófagos, fijos y libres del aparato circulatorio, los tejidos y el hígado. El hierro y los componentes estructurales de la hemoglobina son retenidos y rescatados por la médula ósea (Voigt, 2003). El conteo total de eritrocitos o de glóbulos rojos, se lleva por lo general por un contador electrónico, aunque también puede ser evaluado mediante el hemocitómetro. La hemoglobina en cambio se mide mediante la espectrofotometría posterior a la lisis de los eritrocitos (Harvey, 2011). Una forma para evaluar los eritrocitos es por medio de los índices corpusculares; volumen corpuscular medio (VCM), hemoglobina corpuscular media (MCH) y concentración de hemoglobina corpuscular media (CHCM); éstos permiten definir el tamaño y el contenido de hemoglobina de los eritrocitos (Sandoval, Barrios, Morales, Camacaro, Domínguez y Márquez, 2010). 1.5.2 Volumen Corpuscular Medio (VCM) El Volumen corpuscular medio (VCM) permite clasificar las anemias en microcìticas, normocíticas o macrocíticas, en función del volumen promedio que presenten los hematíes circulantes, su valor normal oscila entre 40 y 60 fentolitros (Adrien, 2003) y se puede obtener mediante maquinas automatizadas o mediante la siguiente formula. Hto (%) VCM (fl) = x 10

Millones/ µl de eritrocitos

(Lassen & Swardson, 1995) 1.5.3 Concentración de Hemoglobina Corpuscular Media (CHCM) La hemoglobina (Hb) es la proteína encargada del transporte de oxígeno. Representa más o menos el 32 % de la masa total de eritrocito (Escobar, 2008). Se puede obtener mediante dos formas: la primera por la concentración corpuscular media de la hemoglobina (CHCM) a través de analizadores automáticos, o puede ser calculada manualmente con la siguiente fórmula: Hb (g/dL) CHCM (g/dl)= x 100 Hto(%) (Lassen & Swardson, 1995).

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1.5.4 Hemoglobina Corpuscular Media (HCM) La hemoglobina corpuscular media (HCM) se refiere al peso promedio de la Hb presente en los eritrocitos, es medida en picogramos e indica el valor de hemoglobina por eritrocito y se obtiene mediante la siguiente fórmula: Hb (g/dl) HCM (pg) = x 10

Millones/ µl de eritrocitos

(Lassen & Swardson, 1995). 1.6 PLAQUETAS

Las plaquetas o trombocitos son cuerpos pequeños, incoloros, redondos o con forma de bastón que se encuentran en la sangre periférica de los mamíferos (Swenson & Reece, 1999). Se derivan de los megacariocitos de la médula ósea. Forman parte del mecanismo de coagulación sanguínea y esto se debe a que transporta tromboplastina, de tal manera que son el primer mecanismo utilizado por el organismo ante una hemorragia. Viven en sangre periférica entre 8 y 12 días antes de ser eliminadas por el bazo (Berrio, 2003; Cordova, 1994). Cuando existe una mayor demanda de plaquetas, la médula ósea puede emitir una producción de plaquetas más grandes, a estas plaquetas se les conoce como macroplaquetas o plaquetas gigantes las que miden cerca de 5 µm (Reagan, 1991). 1.7 GLOBULOS BLANCOS

Para la evaluación de un leucograma se deben estudiar las células nucleadas denominadas leucocitos. Estas células se pueden dividir en tres grupos según su función. La primera es función fagocítica y antimicrobiana que está constituida por neutrófilos y monocitos. La segunda que son células con respuesta inmunitaria, realizada por los linfocitos y finalmente la función en reacciones alérgicas, de hipersensibilidad que son responsabilidad de los eosinófilos y basófilos (Fidalgo, 2003). Otra clasificación es por su morfología e incluye: granulocitos (neutrófilos, eosinófilos y basófilos) y agranulocitos (linfocitos y monocitos) (Ramírez, 2006). El valor normal de leucocitos en un bovino es entre 4000 a 12000 leucocitos/µL no obstante en terneros este valor puede estar moderadamente incrementado y se considera una leucocitosis fisiológica. Para la interpretación del leucograma se utiliza el número absoluto y no el porcentaje de los diferentes tipos celulares ya que por medio de éste, se pueden valorar mejor las pequeñas variaciones. El porcentaje es una herramienta de cálculo para el recuento diferencial (Fidalgo, 2003).

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1.7.1 Granulocitos 1.7.1.1 Neutrófilos La producción de neutrófilos tiene lugar en la médula ósea y progresa su transformación desde un mieloblasto, promielocito, mielocito, metamielocito, cayado, hasta granulocito maduro o segmentado. La vida de los neutrófilos en circulación es de 10.5 horas y sus principales funciones son la defensa del organismo mediante la fagocitosis, reacciones inflamatorias y necrosis tisular (Fidalgo, 2003). Las características más fácilmente reconocible del neutrófilo, es el núcleo segmentado con sus 3 a 5 lóbulos, el cual está presente en todas las especies, aunque el grado de segmentación puede variar desde una simple constricción (canino y equino) hasta lóbulos separados unidos por estrechos filamentos (bovinos). La cromatina nuclear está apelmazada, grumosa y tiñe de un color oscuro. El núcleo de un neutrófilo joven o recién liberado al torrente sanguíneo, en cualquier especie, tiene una forma de lazo, o banda más pronunciada, con bordes paralelos, y se tiñe con menos intensidad. El color del citoplasma del neutrófilo varia de azul oscuro a rosa, o, lo más habitual, transparente (Voigt,2003). Como se mencionó anteriormente, las principales funciones del neutrófilo están asociadas a la fagocitosis y la inflamación. Las toxinas liberadas por las bacterias invasoras, y las sustancias químicas liberadas por el tejido dañado, atraen a estas células a la región afectada. Las pequeñas partículas y organismos, son fagocitados, y destruidos por las enzimas proteolíticas de los gránulos del neutrófilo. En el caso de grandes partículas o superficies, que no pueden ser ingeridas, los gránulos enzimáticos son liberados al exterior de la célula, donde actúan sobre el organismo invasor y el tejido circundante. Esto incrementa la inflamación, y atrae a un mayor número de leucocitos a la zona, con el resultado de controlar la infección (Voigt, 2003). Cualquier incremento en el número de neutrófilos circulantes se denomina neutrofilia. Si ésta se asocia a un aumento de los leucocitos totales se llama leucocitosis neutrofílica. Algunas de las causas habituales de neutrofilia son: organismos infecciosos, especialmente bacterias piogénicas (formadoras de pus), inflamación, especialmente se incluye necrosis tisular, neoplasias, intoxicaciones y presencia de corticoesteroides o epinefrina, ya sean administrados o endógenos a causa de excitaciones o estrés. La neutrofilia fisiológica puede ocurrir en respuesta a la adrenalina por una disminución de la adherencia de los neutrófilos y un aumento del flujo sanguíneo a través de la microcirculacion. La neutrofilia transitoria (dura de 20 a 30 minutos) es común en animales jóvenes la cual es generada por emociones, miedo, excitación y ejercicio corto pero intenso (Fidalgo, 2003; Voigt, 2003). La neutropenia, es un descenso de los neutrófilos circulantes, suele deberse a un rápido movimiento de células hacia el reservorio tisular, o una disminución del número de células disponibles en los reservorios de proliferación y de depósito. Puede observarse una neutropenia temporal, en respuesta a la infección, cuando la mayoría de las células disponibles salen rápidamente de los vasos sanguíneos, no obstante el recuento total circulante se repone fácilmente. Este efecto es más pronunciado en los bovinos. Las principales causas de neutropenia son: inflamación severa, infecciones por Gram negativos (marginación), destrucción excesiva (inmunomediadas), mielosupresión (antineoplásicos,

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antibióticos, estrógenos, etc.), hipoplasia mieloide (mielofibrosis, estrógenos, etc.) (Voigt,2003;Tizard, 2009).

Los neutrófilos de los bovinos tienen tres tipos de gránulos citoplasmáticos. El tercer tipo de gránulos del neutrófilos es de mayor tamaño que los gránulos primarios y secundarios y ocupa el doble de espacio citoplásmico, (Figura 1.) (Schalm, 2010).

Figura 1. Neutrófilo segmentado; magnificación 1000x (Schalm,2010).

1.7.1.2 Eosinófilos Los eosinófilos se producen en la médula ósea, mediante el factor quimiotáctico de eosinófilos, el cual es controlado por los linfocitos T. Los promielocitos y mielocitos eosinófilos forman parte del fondo común mitótico proliferativo y son capaces de llevar a cabo mitosis celular, mientras los juveniles en bandas y segmentados son componentes del fondo común de reserva, en donde se lleva acabo solo el proceso de maduración. El tiempo requerido por el eosinófilo para transitar desde la etapa de mieloblasto a eosinófilo maduro en la médula ósea no se conoce con precisión; pero se estima que es de 5.5 días. Estos permanecen muy poco tiempo en sangre y finalmente llegan a los tejidos y se localizan en piel, vías respiratorias, digestivas y genitourinarias. Finalmente la forma de eliminación es mediante el sistema fagocítico-mononuclear o mediante migración epitelial (Fidalgo, 2003). El núcleo del eosinófilo varía desde alongado, hasta bilobulado o trilobulado y su aspecto es similar en todas las especies domésticas. El citoplasma se tiñe de azul claro y contiene gránulos eosinófilos que a menudo son refractantes. Estos gránulos en los rumiantes son pequeños, redondos y numerosos, y suelen teñir de un intenso color rojo o púrpura (Figura 2). (Voigt,2003). Los eosinófilos actúan como moduladores del proceso inflamatorio por su habilidad para inactivar mediadores liberados por los basófilos, produciendo el abatimiento de las reacciones asociadas con la degranulación de los basófilos. La histaminasa de los eosinófilos destruye a la histamina y a la sustancia de reacción lenta de la anafilaxia. El eosinófilo también puede lisar a la fibrina. Los eosinófilos actúan como fagocitos ingiriendo complejos inmunes y los gránulos de los basófilos, así como gammaglobulinas agregadas al Mycoplasma spp y a ciertas levaduras. Su mecanismo de fagocitosis y degranulación es similar al del neutrófilo; inicia su migración en respuesta a factores quimiotácticos como la

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histamina, el factor quimiotáctico del eosinófilo de la anafilaxia y el ácido hidroxieicosatetraenoico, derivado del ácido araquidónico (Muñoz, 1997). La eosinofilia periférica se asocia generalmente con alergias y parasitismos. También puede ocurrir en infecciones crónicas o en etapas de recuperación de infecciones agudas. Por otro lado la eosinopenia resulta difícil de detectar, debido a que, en los recuentos diferenciales en animales sanos pueden no aparecer eosinófilos. Se produce una eosinopenia absoluta en condiciones de estrés, o por causa de la administración de corticoesteroides o epinefrina (Voigt,2003).

Figura 2. Eosinófilo bovino, magnificación 1000x (Schalm,2010). 1.7.1.3 Basófilos Los basófilos pertenecen a la familia de los granulocitos, sus gránulos son gruesos pero escasos y pueden ser de dos clases; los gránulos azurófilos que contienen lisosomas, que a su vez contienen hidrolasas ácidas y los gránulos específicos o secundarios que contienen histamina, heparán sulfato, heparina y leucotrienos. Los basófilos además de poseer gránulos en su interior, tienen receptores de IgE, inmunoglobulina relacionada con las alergias. Es por eso que el basófilo participa en la respuesta inflamatoria. En los tejidos esta célula recibe el nombre de mastocito o célula cebada (Fidalgo, 2003). El basófilo posee un núcleo alargado, que suele aparecer en forma de espiral y puede estar parcialmente segmentado. El citoplasma se tiñe de un color grisáceo/azulado y está completamente lleno de gránulos basófilos de un color que va del púrpura oscuro hacia el negro (Figura 3.) (Voigt, 2003). Puede observarse un ligero incremento en el número de basófilos asociados a procesos causantes de eosinofilia, como alergias y parásitos en estadio de migración y en algunas alteraciones endocrinas. Frecuentemente puede darse una aparente basofilia con el sarcoma de células cebadas. Y como los basófilos suelen estar ausentes en la sangre periférica, la basopenia no es importante desde el punto de vista clínico (Voigt,2003).

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Figura 3. Basófilo bovino, magnificación 1000x (Schalm,2010). 1.7.2. Agranulocitos 1.7.2.1. Linfocitos La linfopoyesis es la producción y maduración de los nuevos linfocitos. Mucho de lo que se sabe sobre linfopoyesis viene de estudios en ratones modificados genéticamente. Los linfocitos se desarrollan a partir de médula ósea derivada de células madre pluripotenciales hematopoyéticas (HSC) que se diferencian aún más en linajes mieloides o linfoides. El progenitor linfoide común da lugar a tres tipos de linfocitos: células B, células T y células asesinas naturales (NK) (Schalm,2010). El linfocitos es el leucocito más frecuente en la circulación de los rumiantes; se caracteriza ya que después de haber migrado a los tejidos, vuelve a incorporarse a la circulación sanguínea a través de los canales linfáticos (Voigt,2003). La morfología de los linfocitos habitualmente varía más dentro de una misma muestra, que entre las distintas especies. El linfocito que más se observa es el linfocito maduro, que es más pequeño que el resto de leucocitos, y tiene un núcleo redondo o ligeramente deprimido, que contiene una cromatina coagulada en forma de grumos. Los linfocitos medianos y grandes existen en todas las especies, pero son más frecuentes en los rumiantes. En éstos, el citoplasma se ve incrementado desde moderada a abundantemente, y puede contener diversos gránulos coloreados (Figura 4) (Voigt,2003). El sistema inmune adquirido está conformado por 3 tipos claves de linfocitos los cuales son; los linfocitos B (importantes por los antígenos) linfocitos CD8-T (que incluyen los linfocitos T cito-tóxicos) y los linfocitos CD4-T o los mismos linfocitos T auxiliares que contienen células reguladoras que ayudan al sistema inmunitario a realizar sus actividades de una manera controlada (Fitzhugh, 1995). Los linfocitos del bovino expresan moléculas de superficie denominadas BoWC1, BoWC15, BoWC3, los cuales se han reconocido como los homólogos de CD21, BoWC10, y CD26. En terneros la proporción de linfocitos T puede aumentar hasta el 40%. Esto puede variar dependiendo las condiciones de estrés y manejo (Tizard, 2009).

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En animales muy jóvenes, atemorizados o excitados, o animales con actividad muscular, se producirá frecuentemente un aumento fisiológico de linfocitos circulantes. Otras causas de linfocitosis son la estimulación antigénica crónica especialmente si esta producida por un virus, parásito sanguíneo, post-inmunización y neoplasias linfoides (Voigt,2003).

Figura 4. Linfocito, magnificación 1000x (Schalm, 2010). 1.7.2.2 Monocitos Los monocitos también se forman en la médula ósea y pasan por su proceso de transformación de monoblastos y promonocito. Su vida media es de aproximadamente 12 horas y al momento de llegar a los tejidos se convierten en macrófagos (Fidalgo, 2003). El monocito es, generalmente, el leucocito de mayor tamaño, el núcleo puede asumir diversas formas: redondo, ovalado, alargado, arriñonado, o puede presentar múltiples hendiduras. La cromatina nuclear es reticular, o con forma de encaje, y su aspecto es más suave, y con menor aglutinación, que la del resto de leucocitos. El citoplasma es abundante, se tiñe de gris azulado, y tienes aspecto espumoso o deslustrado (Figura 5.) (Voigt, 2003). Precursores de monocitos pueden dar lugar a los macrófagos dependiendo de las condiciones de cultivo, citoquinas, y factores de crecimiento. M-CSF es una citoquina principal que se utiliza para generar los macrófagos a partir de precursores de monocitos o células mononucleares de la médula ósea (Schalm, 2010). La principal función es la fagocitosis. Ingieren y destruyen organismos que no pueden ser controlados por los neutrófilos, especialmente hongos, protozoos, organismos intracelulares y algunas bacterias. Los macrófagos eliminan tejidos de los residuos y partículas extrañas de zonas deterioradas, e ingieren células muertas o degeneradas, y fragmentos celulares (Voigt, 2003). Debido a que los monocitos no se movilizan con tanta rapidez como los demás leucocitos, un incremento en el recuento de monocitos (monocitosis) suele indicar una infección crónica, una respuesta inflamatoria, o una fase de recuperación después de un proceso agudo. Estados que presentan grandes cantidades de tejido necrótico y residuos celulares, por ejemplo, un piotórax o una retención de placenta, serán altamente quimiotácticos para los monocitos. También es frecuente la monocitosis en enfermedades que estimulan una

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respuesta inflamatoria de tipo granulomatosa, como la tuberculosis, la brucelosis, y la mayoría de enfermedades fúngicas internas (Voigt,2003).

Figura 5. Monocito, magnificación 1000x (Schalm, 2010).

1.8 PERFIL HEPÁTICO

1.8.1 Componentes Proteicos de la Sangre. Alrededor del 5 a 7% del volumen plasmático está formado por moléculas proteicas, denominadas proteínas plasmáticas. Estas proteínas plasmáticas son una mezcla de diferentes cuerpos proteícos, de estructura y funciones variables. Contribuyen a mantener la presión coloidosmótica de la sangre, además ayudan a mantener la presión sanguínea normal al colaborar con la viscosidad de la sangre; influyen en la estabilidad de la suspensión de los eritrocitos; cooperan regulando el equilibrio acido-básico de la sangre; actúan en la solubilidad de carbohidratos, lípidos y otras sustancias que se encuentran en solución en el plasma y transportan sustancias unidas a proteínas plasmáticas como nutrientes (calcio, fósforo, hierro, etc.), hormonas (tiroxina, esteroides), colesterol, bilirrubina, enzimas, compuestos terapéuticos y muchas otras (Swenson & Reece, 1999).

1.8.1.1 Albúmina La albúmina constituye una fracción importante de las proteínas de la sangre. Es una proteína plasmática homogénea que contiene una pequeña cantidad de carbohidratos. La concentración de albúmina varía entre las especies, pero suele estar entre 2.5 y 4.5 g/dl en plasma o suero. Está relacionada con la presión coliodosmótica y la capacidad amortiguadora de la sangre, así como con el transporte de sustancias. Se sintetiza en el hepatocito a partir de aminoácidos y en el recién nacido las concentraciones de albúmina en la sangre son más bajas y tienden a incrementarse con la edad (Álvarez, 2008). Las concentraciones de albúmina plasmática o sérica pueden medirse de forma directa empleando pruebas de unión de tinciones (generalmente verde de bromocresol en animales) o mediante cálculo tras la electroforesis proteica. Desafortunadamente la albúmina no se une a las tinciones de forma igual en todas las especies; consecuentemente, pueden determinarse concentraciones erróneamente reducidas o elevadas de albúmina en una especie en la que la prueba no haya sido calibrada (Meyer & Harley, 1998).

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La hiperalbuminemia suele ocurrir básicamente por hemoconcentración por lo que se asocia a la relación albúmina : globulinas que sea normal. La hipoalbuminemia se relaciona con la sobrehidratación, dietas deficientes en proteínas, síndrome de mala digestión, síndrome de mala absorción, disminución en la producción por enfermedades hepáticas o pérdida a través del riñón (Núñez, 2007). 1.8.1.2 Globulinas Las globulinas constituyen una fracción muy compleja de las proteínas sanguíneas; incluyen las alfa, beta y gamma globulinas, según su migración electroforética. Las alfa globulinas, de acuerdo con la característica de combinarse con otros compuestos, pueden denominarse mucoproteínas y glicoproteínas (Álvarez, 2008). Las beta son las principales lipoproteínas y se encargan de transportar lípidos y otras sustancias como metales en sangre. Las gamma globulinas son fracciones muy importantes, se denominan inmunoglobulinas y actúan como anticuerpos. Se conocen tres tipos fundamentales de IgG, IgA e IgM (Álvarez, 2008). Las proteínas plasmática de rumiantes neonatos precalostro son predominantemente albúmina, globulinas, con inmunoglobulina muy limitado. En el primer día de vida, se producen cambios dinámicos en el plasma de los rumiantes. Una vez que las inmunoglobulinas del calostro son ingeridas y se absorben rápidamente a través de la pared del intestino. El total de agua aumenta el cuerpo, disminuyendo la concentración de albúmina plasmática, mientras que las inmunoglobulinas del calostro y enzimas (gamma glutamil trans-transferasa y fosfatasa alcalina) aumentan hasta un máximo de 48 horas. La concentración de proteína total en suero en terneros precalostro aumenta desde aproximadamente 4 g / dL a 7g/dl. Existe una relación directa empírica entre la cantidad de proteína total en plasma posterior al calostro y la frecuencia de enfermedades en recién nacidos (Schalm, 2010). La hiperglobulinemia puede aparecer por una deshidratación o un aumento de la síntesis de globulinas. Otras causas se asocian con respuestas inflamatorias a lesiones tisulares y/o antígenos extraños (Meyer & Harley, 1998). Por otro lado las hipoglobulinemias se observa en animales recién nacidos que no han tomado calostro, y en animales adultos se atribuye a inmunodeficiencias (Núñez, 2007). 1.8.1.3 Fibrinógeno El fibrinógeno es una proteína sanguínea de fase aguda producida por el hígado la cual es liberada en el torrente sanguíneo como respuesta a un proceso inflamatorio. Además forma parte de la cascada de coagulación (factor 1) y es precursor de la fibrina para la reparación de tejidos dañados y favorece el proceso de migración de las células inflamatorias, fibroblastos y células endoteliales (Lechuga, 2011).

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El fibrinógeno plasmático aumenta de forma más consistente en rumiantes y equinos con enfermedades inflamatorias. La concentración de fibrinógeno puede ser baja, normal o elevada en animales con una coagulación extravascular diseminada. La concentración de fibrinógeno es baja en animales mordidos por las serpientes de cascabel ya que la enzima crotalasa que está en el veneno; degrada el fibrinógeno (Meyer & Harley, 1998). 1.8.2 Enzimas Séricas

1.8.2.1 Aspartato Amino Transferasa

La Aspartato Amino Transferasa (AST) es una enzima unilocular (citoplasmática), tiene un gran valor en el diagnóstico de enfermedades hepatocelulares. En los bovinos la AST se encuentra en las células del músculo estriado por ende la enzima no es especifica del hígado. (Medway, Prier y Wilkinson, 1990).

1.8.2.2 Gamma glutamil transpeptidasa

La Gamma Glutamil Transpeptidasa (GGT) es una enzima de membrana cuyo significado en bovinos está relacionado con aumentos extremos en hepatitis y otros trastornos relacionados con colestasis, como en la intoxicación por Phytomices chartarum. (Medway et al, 1990).

1.9 PERFIL RENAL

1.9.1 Componentes no Proteicos de la Sangre 1.9.1.1 Creatinina Gran parte de la creatina es sintetizada en el hígado y es transportada hacia el músculo esquelético en la que una parte se fosforila para finalmente formar la fosfocreatina. La creatinina es el producto final del metabolismo de la creatina que se forma espontáneamente por deshidratación irreversible y no enzimática de la fosfocreatina (Meyer & Harley, 1998). La creatinina es el marcador más importante de la función renal, es producida regularmente por los músculos y excretada por medio de los riñones en la orina. La insuficiencia renal ocasionará una elevación en los niveles de creatinina en suero, ya que no es excretada en cantidades normales y se acumula en la sangre (Cando, 2009). Un aumento del nivel de creatinina en la circulación suele deberse a alteraciones que provocan una reducción de la Tasa de Filtración Glomerular (TGF) (Meyer & Harley, 1998).

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Al estudiar la excreción de creatinina, tiene valor el hecho de que los niveles séricos de creatinina casi no son afectados por la creatinina exógena de los alimentos, por la edad, el sexo, el ejercicio o la dieta. Por lo tanto los niveles elevados solamente se presentan cuando se altera la función renal (Cando, 2009). La creatinina circula en la sangre y es tomada por el músculo donde se convierte en la enzima creatina quinasa (CK), denominada también fosfocreatina quinasa (CPK), la cual se utiliza como un indicador de daño muscular y no se correlaciona directamente con la función renal (Andrews, Greenhaff, Curtis, Perry, y Cowley, 1998).

1.9.1.2 Nitrógeno Ureico Sanguíneo El examen de nitrógeno ureico en la sangre (BUN) es una prueba que se utiliza primordialmente para evaluar el funcionamiento renal (riñón). La urea se forma en el hígado como producto final del metabolismo (o degradación) de las proteínas. Durante la digestión, la proteína se descompone en aminoácidos, los cuales contienen nitrógeno y al ser metabolizados se separa el NH4+ (ión amonio) del resto de la molécula que se utiliza para producir energía u otras sustancias que necesite la célula. El amonio se combina con otras moléculas pequeñas para producir urea, la que luego se secreta en la sangre y se excreta en la orina por medio de los riñones. (Marcano, 2013). La mayoría de las enfermedades renales afectan la excreción de urea y creatinina; de tal manera que los niveles de BUN en la sangre aumentan; asimismo, los pacientes con deshidratación o hemorragia digestiva pueden tener niveles de BUN anormales, producto del metabolismo de la sangre digerida. Un gran número de medicamentos afectan también el BUN, ya que compiten con éste para ser eliminados a través de los riñones (Marcano, 2013).

2 MATERIALES Y MÉTODOS

2.1 Localización Las ganaderías seleccionadas para el muestreo de esta investigación están localizadas en el Magdalena Medio. Esta región tiene una altitud promedio de 180 msnm y una temperatura de 35ºC a 40ºC, se encuentra ubicada en el centro geográfico de Colombia, sobre la margen izquierda y derecha del Rio Magdalena comprendido por los departamentos de Cundinamarca y Caldas. Los municipios que hicieron parte de este trabajo corresponden a Puerto Salgar (Cundinamarca) y La Dorada (Caldas).

Figura 6. Mapa Geográfico de Colombia.

Tomado de: Instituto Geográfico Agustín Codazzi (2012). Teniendo en cuenta otro estudios realizados en Colombia los cuales muestran características similares en cuanto a la especie, edad, condiciones y cuyos resultados se tuvieron en cuenta para realizar comparaciones, es el trabajo de Escobar,2008 en donde el

Zona  de  muestreo  

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muestreo se realizo en los municipios de San Juan de Urabá y Arboletes, en el Urabá Antioqueño. San Juan de Urabá está situado en el extremo norte del departamento de Antioquia. Presenta una altura de 3 m.s.n.m, una temperatura promedio entre 28 a 35 grados centígrados; por otro lado el municipio de Arboletes se encuentra ubicado al noroccidente de Antioquia, está a 4 m.s.n.m y con una temperatura promedio de 29 grados centígrados. 2.2 Población y muestra

Se utilizó una muestra de 60 bovinos neonatos (menores de 20 días de vida) ubicados en La Dorada, Caldas y Puerto Salgar, Cundinamarca. Son ejemplares Cebú de los cuales 20 fueron Gyr, 20 Brahman y 20 Guzera, a los cuales se les extrajeron dos tubos de sangre por cada individuo.

La razón por la cual se decidió trabajar con animales menores de 20 días de edad, es porque estos animales están en una etapa entre el nacimiento y las primeras tres semanas de vida denominada fase lactante, en la cual poseen sólo capacidad de digerir leche y depende de la absorción intestinal de glucosa para mantener un valor de glucemia, que es semejante al de un no rumiante (alrededor de 1 gr/l). Como se mencionó anteriormente el ternero nace con la capacidad de digerir leche por métodos enzimáticos y no fermentativos. Por esta razón los divertículos estomacales no son funcionales durante esta etapa. La leche pasa directamente desde el esófago al abomaso gracias al cierre de la gotera esofágica (Relling, 2002). Adicionalmente durante este periodo el sistema inmunológico esta en desarrollo y así mismo deben adaptarse al medio ambiente, el cual presenta grandes diferencias con respecto al ambiente en el útero; sin duda todos estos cambios hace que los terneros sean mas susceptibles a enfermedades (Benessi, 2002). En estudios realizados anteriormente tanto a nivel nacional como internacional no se tiene un número de animales establecido para realizar este tipo de investigaciones; así el número de animales varia entre 300 animales (Benessi et al, 2003), 21 animales en un estudio realizado en Caldas (Villa, Ceballos, Cerin y Serna, 1999) y 32 animales en otras investigaciones (Mohri, Sharifi, Eidi, 2007). Teniendo en cuenta la variabilidad numérica, la presente investigación tomó 60 animales, lo que permitió emitir resultados confiables en cuanto a promedios de los valores hematológicos, renales y hepáticos para neonatos cebuinos de esta región, que podrán ser de utilidad para los médicos veterinarios, laboratorios veterinarios y agremiaciones ganaderas de la región, así como para la academia e investigación nacional de esta raza en particular. Se realizó un examen de evaluación clínica en donde a cada animal se le tomaron los siguientes datos: la identificación, la raza, el genero y las siguientes constantes fisiológicas; la frecuencia cardiaca, la frecuencia respiratoria y la temperatura. El análisis de una muestra se puede realizar de arteria, vena o capilar pero la más adecuada es de sangre venosa. La oclusión con un torniquete puede provocar que los líquidos y los componentes de bajo peso molecular atraviesen los capilares hacia el líquido intersticial. Se ha demostrado que cuando se utiliza el torniquete durante menos de 1 minuto, los cambios de la concentración sanguínea son mínimos, pero empiezan a ser importantes si el torniquete se mantiene durante mas de 3 minutos (tras 3 minutos, se ha observado un incremento del 15 % de los compuestos asociados a proteínas). En consecuencia es necesario utilizar un procedimiento uniforme para la toma de muestras durante la investigación (Viru, 2001).

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La hemoconcentración es un aumento en la concentración de moléculas y analitos mas grandes de la sangre como resultado de un cambio en el balance hídrico. Esto puede ser consecuencia de dejar el torniquete en el paciente por un tiempo prolongado al momento de tomar una muestra sanguínea. Se recomienda que el torniquete no permanezca mas de 1 minuto previo a la venopunción (Rodak, 2002). Walsh (1953) evaluaron la aplicación de un torniquete en un brazo de una persona durante 1 minuto y observaron que el hematocrito aumentó en casi 0.4, mientras que si se mantiene aplicado 3 minutos este se incrementó 3.9. Berry (1950) mostró un incremento en el hematocrito, hemoglobina (en menor proporción) y proteínas plasmáticas tras mantener por más de 3 minutos el torniquete (Mollison,1987). 2.3 Variables Clasificadas de la siguiente manera:

• Parámetros hematológicos: (conteo eritrocitario, hemoglobina, hematocrito, VCM, HCM, CHCM, plaquetas, conteo total de leucocitos, valores relativos y absolutos de neutrófilos, linfocitos, eosinófilos, monocitos, basófilos, y bandas), de los individuos.

• Perfil hepático: Aspartato Amino Transferasa (AST; U/L), Gamma glutamil transferasa (GGT; U/L), Fibrinógeno (Fb; mg/dl), Creatin Kinasa (CK; U/L), Albúmina (Alb; g/dl) y Proteinas Plasmaticas Totales (PPT; g/dl).

• Algunos parametros del pérfil renal: Nitrógeno Ureico en Sangre (BUN; mg/dl) y

Creatinina (mg/dl). 2.4 Análisis estadístico Se recolectaron las muestras, se ordenó y analizó la información y por medio de la estadística descriptiva se empleó la descripción de los resultados de las muestras sanguíneas de los individuos. Se obtuvieron variables cuantitativas de los parámetros hematológicos: conteo eritrocitario, hemoglobina, hematocrito, velocidad de sedimentación globular, VCM, HCM, CHCM, plaquetas, conteo total de leucocitos, valores relativos y absolutos de neutrófilos, bandas, linfocitos, eosinófilos, monocitos, basófilos y normoblastos y en cuanto a la química sanguínea se evaluó nitrógeno ureico en sangre, creatinina, albúmina, creatin quinasa, aspartato amino transferasa, gamma glutamil transpeptidasa, fibrinógeno, globulinas y componentes proteicos de la sangre. Con los valores de cada una de las descritas anteriormente se hicieron tablas de referencia teniendo en cuentas los promedios. Así mismo se realizó estadística paramétrica a fin de encontrar diferencias estadísticamente significativas entre los resultados aquí obtenidos y los reportados para esta misma raza en otras latitudes y en otras edades. A su vez, se confrontaron los resultados del presente trabajo con la comparación entre los animales Gyr, Brahman y Guzera, para establecer si existen o no diferencias entre ellos.

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Para lo anterior se realizaron las pruebas de Shapiro Wilks para normalidad del error experimental, la prueba de Leven para homogeneidad de varianza y el correspondiente análisis de varianza de una vía ANAVA. Todas las pruebas se corrieron con un nivel de confianza del 95% y fueron ejecutadas en el programa computacional “Statistical Analysis System” (SAS) (Sistema de Análisis Estadístico), versión 9.1 bajo la metodología descrita por Martínez (2010). Finalmente se realizo un análisis estadístico (Anova) tomando toda la población como un total (los 60 animales) y comparándola con las variables para mirar si existió alguna diferencia en comparación con el análisis de cada raza. 2.5 Método y procedimiento Para la realización de este trabajo se estudiaron 60 ejemplares cebú de los cuales 20 fueron Gyr, 20 Brahman y 20 Guzera, con una edad máxima de 20 días. Se realizó una evaluación clínica en donde se obtuvo la identificación del individuo, la raza, el sexo y se tomaron las siguientes constantes fisiológicas: frecuencia cardiaca, frecuencia respiratorio y temperatura. La frecuencia cardiaca se obtuvo usando un fonendoscopio, la frecuencia respiratoria se obtuvo por observación visual y confirmando la salida del aire de las fosas nasales con las manos y la temperatura rectal se obtuvo con un termómetro digital. La toma de muestras se realizó en horas de la mañana entre las 6:00 y las 9:00 am en el momento en que las madres estaban siendo ordeñadas y antes de amamantar al ternero, es decir el ternero estaba en ayunas. Según el Doctor Antonio Buño, jefe del servicio de Análisis Clínicos del Hospital La Paz de Madrid, el ayuno para tomar la muestras de sangre tiene dos explicaciones. La primera de ella es fisiológica: algunos parámetros de la analítica (como el colesterol o la glucosa, las transaminasas, la calcitonina entre otras) cambian después de ingerir alimentos y la segunda es que cuando el animal no esta en ayunas, por la sangre circulan ciertas sustancias que hacen que la muestra esté más turbia y eso puede interferir en los equipos, que están pensados para analizar sangre 'limpia' (Valerio, 2013). La metodología a utilizar fue la sugerida por Mohri et al (2007), así: de cada animal seleccionado se tomaron 2 ml de sangre con anticoagulante EDTA y posterior a este volumen se tomaron 4 ml de sangre sin anticoagulante, de tal manera que, se utilizó sangre con anticoagulante para determinar los valores correspondientes al hemograma y sangre sin anticoagulante para determinar los valores de nitrógeno ureico en la sangre (BUN), Creatinina, Albúmina, Creatin quinasa (CK), Aspartato amino transferasa (AST), Gamma glutamil transpeptidasa (GGT), Fibrinógeno, Globulinas y componentes proteicos de la sangre. Para la recolección se sujetó temporalmente el animal en pie apoyado con una mano en base de la cola y con la otra en el borde ventral de las ramas de los mandibulares, lo cual facilitó la toma de muestras y al mismo tiempo se mantuvo el animal en la posición normal de apoyo. Una vez el animal sujeto; se aplicó alcohol al 70 % en la zona donde se extrajo la muestra de sangre en la vena yugular. Posteriormente se sacó el volumen necesario utilizando un catéter No. 20. (Mohri et al, 2007). Una vez recolectada la muestra se llevó en una nevera con gel refrigerante al laboratorio de la Universidad de La Salle para ser procesada y analizada.

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Las determinaciones hematológicas se realizaron en los laboratorios de la Universidad de La Salle con el uso del equipo “Diatron Abacus Hematology Analyzer Biosystem” con serial 901431, el cual automáticamente realizó la medición de las líneas roja y blanca, medición de hemoglobina y los índices eritrocitarios (VCM-HCM-CHCM); por medio del equipo “Vitros DT60 II Chemistry System Ortho Clinical Diagnostics” Laboratorio Johnson con serial 3141600019483 fueron analizados los siguientes parámetros: nitrógeno ureico en la sangre (BUN), Creatinina, Albúmina, Creatin quinasa (CK), Aspartato amino transferasa (AST), Gamma glutamil transpeptidasa (GGT), Fibrinógeno, Globulinas y componentes proteicos de la sangre. De igual manera, se realizó la corrección manual de las variables que lo requieran. Por último se compilaron los datos, se analizaron, se tabularon y se construyeron los parámetros de referencia en hematología, y en algunos parámetros de química sanguínea en neonatos de la raza Cebú del Magdalena Medio colombiano.

2. RESULTADOS

Tabla 1. Datos del individuo y constantes fisiológicas. No. Sexo Raza Animal Frec.

Cardiaca (latidos/ min)

Frec Respiratoria (resp/min)

Temperatura

(grados centígrados)

1478 M Guzera 1g-270-3 100 40 39.4

1479 H Guzera 2g-282-3 97 36 40.4

1480 H Guzera 3g-274-3 99 37 40.2

1481 H Guzera 4g-281-3 102 39 39.4

1482 H Guzera 5g-263-3 97 39 40.0

1483 H Guzera 6g-283-3 95 38 40.3

1484 M Guzera 7g-268-3 99 40 39.4

1485 M Guzera 8g-277-3 100 42 40.7

1486 M Guzera 9g-278-3 100 42 40.5

1487 M Guzera 10g-269-13 100 41 40.5

1488 M Guzera 11g-176-3 98 39 39.4

1489 M Gyr 1a-959-13 94 38 40.2

1490 M Gyr 2a-957-13 98 39 39.4

1491 H Gyr 3a-966-13 92 37 39.7

1492 H Gyr 4a-960-13 97 37 39.9

1493 M Gyr 5a-965-13 100 39 39.7

1494 H Gyr 6a-968-13 104 40 40.3

1495 H Gyr 7a-971-12 102 40 39.9

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1496 M Gyr 8a-954-13 99 39 39.4

1497 M Gyr 9a-943-13 97 38 40.6

1498 M Gyr 10a-973-13 98 38 39.4

1499 H Guzera 1c-718-3 105 39 40.5

1500 H Guzera 2c-728-3 104 39 39.6

1501 M Guzera 3c-695-3 104 39 40.5

1502 H Guzera 4c-732-3 106 40 40.6

1503 H Guzera 5c-734-3 99 40 40.4

1504 H Guzera 6c-740-3 97 38 39.4

1505 H Guzera 7c-716-3 97 37 39.7

1506 M Guzera 8c-693-3 98 38 39.4

1507 H Guzera 9c-724-3 99 38 39.4

1508 H Gyr 10a-722-3 100 39 39.4

1509 M Gyr 11a-691-3 105 39 39.9

1510 M Gyr 12a-683-3 103 39 39.5

1511 M Gyr 13a-689-3 102 38 39.4

1512 M Gyr 14a-685-3 99 37 39.2

1513 H Gyr 15a-726-3 99 38 39.7

1514 H Gyr 16a-797-3 97 37 39.8

1515 H Gyr 17a-730-3 96 35 39.4

1516 M Gyr 18a-687-3 98 36 39.7

1517 M Gyr 19a-737-3 99 37 39.4

1560 M Brahman 1-092-3 100 38 40.1

1561 M Brahman 2-094-3 102 38 39.9

1562 H Brahman 3-745-3 100 39 39.4

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1563 H Brahman 4-101-3 100 37 40.2

1564 H Brahman 5-747-3 100 39 40.2

1565 H Brahman 6-093-3 96 35 40.4

1566 M Brahman 7-106-3 97 36 40.3

1567 M Brahman 8-104-3 98 38 39.4

1568 M Brahman 9-112-3 99 38 40.1

1569 M Brahman 10-114-3 98 38 40.0

1570 M Brahman 11-110-3 98 38 39.9

1571 M Brahman 12-108-13 98 40 39.8

1572 H Brahman 13-097-13 100 39 39.4

1573 M Brahman 14-102-13 103 42 40.4

1574 M Brahman 15-098-13 102 40 40.5

1575 M Brahman 16-100-13 101 40 40.6

1576 H Brahman 17-091-13 97 39 40.3

1577 H Brahman 16-109-13 98 38 39.4

1578 M Brahman 15-114-13 97 39 39.7

1579 H Brahman 17-099-13 96 37 39.3

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Tabla 2. Valores del perfil hematológico emitido por el laboratorio de La Universidad de La Salle.

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Tabla 3. Valores del perfil de química sanguínea emitido por el laboratorio de La Universidad de La Salle.

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Tabla 4. Valores hematológicos para terneros cebuinos del Magdalena Medio menores a 20 días.

Hematologia Valor promedio Limite inferior Limite superior Glóbulos rojos (x10^6/µL)

11.0 7 18

Hb (g/dl) 11.0 7 16 Hto (%) 37 24 49 VCM (fL) 34.3 27 46 HCM (pg) 10.1 8 14 CHCM (g/dl) 29.8 28 32 Plaquetas (x10^3/µL)

674.7 160 962

Leucocitos (x10^3/µL)

13.5 8 27

Neutrófilos % 49.3 16 81 Linfocitos % 43.7 17 84 Monocitos % 2.5 1 7 Eosinófilos % 1.9 1 6 Basófilos % 1.3 1 2 Bandas % 1.3 1 2

Tabla 5. Valores de química sanguínea para terneros cebuinos menores a 20 días ubicados en el Magdalena Medio.

Química sanguínea Valor Promedio

Límite inferior

Límite superior

AST (U/L) 53.4 15 93

GGT (U/L) 192.4 35 1174

Creatin Kinasa (U/L) 224.6 54 1225

BUN (mg/dl) 7.7 1 24

Creatinina (mg/dl) 1.1 0.6 1.6

Fibrinógeno (mg/dl) 412.7 100 900

Albumina (g/dl) 2.8 2.3 3.9

Proteínas totales(g/dl) 6.8 5.1 8.4

Tabla 6. Resultados estadísticos para las variables muestreadas vs la raza

Variable ANAVA* Test de Leven* Shapiro-Wilk*

Pr > F Pr > F Pr < W GR (x10^6/µL) 0.1593 0.9235 0.3451 Hb (g/dl) 0.0103 0.2517 0.0907 Hto (%) 0.0139 0.2991 0.2822 VCM (fL) 0.2696 0.3574 0.4651 HCM (pg) 0.2862 0.3779 0.2309 CHCM (g/dl) 0.5675 0.0626 0.2451 Plaquetas (x10^3/µL) 0.2459 0.0439 0.0115 LEU (x10^3/µL) 0.0052 0.1091 0.0034 NEU Abs(x10^3/µL) 0.1372 0.1117 0.1850 LIN Abs(x10^3/µL) 0.1133 0.0840 0.0810 MON Abs(x10^3/µL) 0.5905 0.3545 <0.0001 EOS Abs(x10^3/µL) 0.3117 0.0036 0.0003 BAS Abs(x10^3/µL) 0.4454 0.0009 0.1692 BAN Abs AST (U/L) <.0001 0.2476 0.0670 GGT (U/L) 0.0527 0.0084 <0.0001 Creatin Kinasa 0.0524 0.0983 <0.0001 BUN 0.2002 0.6689 <0.0001 Creatinina 0.0638 0.0085 <0.0001 Albumina 0.0086 0.9283 0.0370 Fibrinógeno (mg/dl) 0.1113 0.0909 0.0458 Proteínas totales(g/dl) 0.3936 0.9408 0.8240

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Tabla 7. Resultados estadísticos para las variables muestreadas vs el sexo.

Variable T Test Mann- Whitney*

(Hembras) Shapiro-

Wilk*

(Machos) Shapiro-

Wilk* Pr > F Pr > F Pr < W Pr < W

GR (x10^6/µL) 0.2282 0.0105 0.8424 0.0000

Hb (g/dl) 0.1435 0.1065 0.4813 0.3710 Hto (%) 0.1947 0.1268 0.5816 0.3905 VCM (fL) 0.1398 0.0489 0.2381 0.1103 HCM (pg) 0.2073 0.0413 0.0440 0.0054 CHCM (g/dl) 0.8525 0.7283 0.5637 0.3249 Plaquetas (x10^3/µL) 0.3531 0.1498 0.0258 0.0034 LEU (x10^3/µL) 0.1404 0.1498 0.0302 0.0088 NEU Abs(x10^3/µL) 0.8567 0.8964 0.0737 0.7430 LIN Abs(x10^3/µL) 0.9093 0.9723 0.1002 0.3526 MON Abs(x10^3/µL) 0.9403 0.5422 0.0019 0.0044 EOS Abs(x10^3/µL) 0.4921 0.5815 0.0324 0.0060 BAS Abs(x10^3/µL) 0.1516 0.1432 0.9999 BAN Abs 0.4226 0.3173 AST (U/L) 0.5446 0.5551 0.1070 0.4508 GGT (U/L) 0.1333 0.5117 0.0000 0.0000 Creatin Kinasa 0.9753 0.5380 0.0000 0.0000 BUN 0.1811 0.3236 0.0017 0.6882 Creatinina 0.0741 0.0403 0.2333 0.9276 Albumina 0.3836 0.2523 0.0107 0.7040 Fibrinógeno (mg/dl) 1.000 0.7995 0.7364 0.1413 Proteínas totales(g/dl) 0.4593 0.5144 0.9995 0.9879

3. DISCUSIÓN

Según la evaluación clínica realizada a los animales antes de tomar las muestras de sangre; mostró que los valores tanto de temperatura, frecuencia cardiaca y frecuencia respiratoria se encontraron en el rango normal (según las tablas de referencia de Sarmiento, 2009) mostrando una mayor prevalencia en los limites superiores; no obstante en algunos datos son superiores al rango pero una posible explicación para esto es la edad de los animales, ya que los animales jóvenes tienden a tener una temperatura mas elevada por su mayor metabolismo (Sarmiento, 2009). Otro factor que influye sobre estos resultados es la temperatura del medio ambiente la cual en La Dorada y Puerto Salgar oscila entre los 35 y 40 grados centígrados. Las variables que mostraron un nivel de significancia cuando se hizo la estadística entre las variables versus la raza fueron los leucocitos, albúmina y la AST. Posteriormente se decidió hacer una prueba estadística (Anova) tomando las tres razas como una sola población y comparando con las variables. Los resultados confirmaron la diferencia significativa en cuanto a las variables de leucocitos, albúmina y AST.

Los valores hematológicos obtenidos en este estudio son consistentes con estudios realizados en estas razas tanto a nivel nacional como internacional, aunque existan variaciones numéricas de estos datos. Es así como la raza, la edad y el sexo son factores determinantes a la hora de analizar resultados a nivel de laboratorio en Medicina Veterinaria (Muñoz, 2012). Los resultados obtenidos para el recuento eritrocitario en el presente estudio muestran que el promedio es de 11.0 ± 2.3 millones/µl, en donde el intervalo de confianza para el promedio se encuentra entre 10.4 y 11.6 millones/µl. La distribución normal de datos fue entre 7 y 18 mill/µl, mostrando una variación del 20.6%. Adrien (2009) estima que el valor normal de eritrocitos en un bovino oscila entre 5 y 8 millones/µl. Esta diferencia puede deberse al medio ambiente, al tipo de nutrición y la diferencia de altitud de los bovinos estudiados. Nemi (1993) plantea que el valor normal de eritrocitos esta entre 5 a 10 millones/µl. Este estudio reporta un valor para el hematocrito donde los rangos están de 24 a 49% con un valor medio de 37 % ± 6.2. Los anteriores valores coinciden con el rango de datos empleado por instituciones universitarias como la Universidad Estatal de Oregon y el laboratorio de la Universidad de la Salle. La Universidad de La Salle trabaja con equipos de la empresa Johnson & Johnson los cuales tiene establecidos los valores de referencia de los diferentes parámetros hematológicos con base en estudios realizando con esta compañía. Los equipos utilizados para realizar estas evaluaciones están programados para tener los valores de referencia establecidos dependiendo cada especie. Los valores reportados de Hemoglobina por la literatura indican un promedio de 11 g/dl (Nemi, 1993) y un rango de 8 a 15 g/dl; lo que concuerda con lo registrado en el presente trabajo (7 a 16 g/dl) y un promedio de 11 g/dl ± 1.8. Los valores de hemoglobina corpuscular media (HCM) obtenidos revelan un valor promedio de 10.1 pg con un rango de distribución de datos entre 8 y 14 pg, comparado con lo

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reportado por la Universidad Estatal de Oregon y por Nemi ,1993 donde los valores oscilan entre 11 y 17 pg. Los valores de la hemoglobina y del volumen corpuscular medio muestran valores compatibles con eritrogramas realizados en neonatos de razas lechera bovinas (Benesi, 1992). La concentración de hemoglobina corpuscular media (CHCM) obtenida muestra un valor promedio de 29.8 g/dl ± 1.0 con un rango de 28 y 32 g/dl. Diferente a lo registrado por Nemi (1993) quien señala un promedio de 32.7g/dl y un rango entre 30 a 36 g/dl. No obstante Voigt (2003) reporta valores de 26 a 34 g/dl con un promedio de 30 g/dl. En cuanto al volumen corpuscular medio (VCM) el rango para esta investigación es de 27 a 46 fl con un promedio de 34.3 ± 3.7 fl. El valor mas común del VCH fue 33 fl a diferencia por ejemplo del valor utilizado en el laboratorio de la Clínica Veterinaria de la Universidad de la Salle cuyo rango numérico corresponde a 37 a 51 fl. Se han reportado variaciones, tanto en el recuento eritrocítico como en los índices eritrocitarios entre distintas especies, raza de rumiantes y dentro de un mismo individuo, según el estado de salud o enfermedad, la raza, la edad, el sexo, el peso del animal, el ejercicio, el estatus nutritivo, la preñez, el clima, la altitud, el estado fisiológico, el tipo de producción, el sistema de manejo, la hora del día, el estrés producido por la manipulación para la toma de la muestra, el incluso, la técnica de laboratorio utilizada (Ramirez, 1998). Dentro de la línea blanca el promedio obtenido para leucocitos fue de 13.5mil/ µl ± 4.2, con un rango de distribución normal de datos entre 8 y 27 mil/µl. En cuanto al intervalo de confianza (95%) para la media, el rango está entre 12.3 y 14.7 mil/µl y la moda siendo 12 mil/µl. Estos datos no concuerdan con los reportados por Nemi, 1993 quien reporta un rango entre 4 y 12 mil leucocitos/µl. Este aumento puede considerarse como una neutrofilia fisiológica o inducida por noradrenalina la cual se produce por reacciones de miedo, estrés, excitación o tras una actividad física muy intensa (Meyer & Harvey, 2000). El conteo plaquetario del siguiente estudio resultó como promedio 672.7 mil/µl ± 180.0 en un rango que oscila de entre 160 y 962 mil/µl. Comparado con lo reportado por la Clínica Veterinaria de la Universidad de la Salle (200 a 730 mil/µl). La disminución de las plaquetas puede aparecer por la administración de medicamentos como las sulfonamidas así mismo están asociadas a infecciones. La trombocitopenia a menudo se divide en 3 causas, primero la producción insuficiente de plaquetas en la médula ósea, segundo el incremento en la descomposición de las plaquetas en el torrente sanguíneo y finalmente el incremento en la descomposición de las plaquetas en el bazo o en el hígado (Escobar, 2008). La trombocitosis se asocia a distintas patologías dentro de las que se encuentran principalmente las infecciones (Escobar, 2008).

Para los valores de eosinófilos, en el presente estudio se reportó como resultado un promedio de 1.9% con un rango normal entre 1 y 6 %. Estos resultados concuerdan con los registrados tanto por la Clínica Veterinaria de la Universidad de la Salle (0 a 20%) como los reportados por el Instituto Colombiano de Medicina Tropical- Universidad CES (2 a un 12 %). Para el recuento de neutrófilos se obtuvo un promedio de 51.3% ± 16.0. La literatura reporta como rango normal 16 y 46%. El aumento en el números de neutrófilos sanguíneos puede aparecer de manera fisiológica y por cortos periodos de tiempo en respuesta al estrés. De

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manera no fisiológica suelen aparecer secundaria a infecciones e inflamaciones agudas y de manera menos frecuente a niveles elevando de corticoides (Escobar,2008). El recuento de linfocitos tuvo un promedio de 45.6% ± 16.2, con un rango de distribución entre 17 y 84%. Los valores encontrados en la literatura (Nemi, 2003) reportan entre 45 y 75% como normales concordando con los resultados obtenidos en este estudio. Los resultado para basófilos fueron de 1.3 % ± 0.5, con un rango que oscila entre 1 y un 2%. Los valores reportados por la literatura (Nemi, 2003) consideran valores normales de basófilos aquellos que se encuentren en un rango de 0 y un 2% y un promedio de 0.5%. El recuento de monocitos obtenidos en este estudio resultó en un promedio de 2.5% ± 1.9, con un rango de distribución normal de datos entre 1 y un 7%. Concordando parcialmente con los datos obtenidos de la literatura ( Nemi, 2003) donde reportan un promedio de 4% y un rango de 2 a 7% Finalmente el recuento de bandas dió como resultado en este estudio un promedio de 1.3% con un rango de distribución de datos entre 1 y 2%. Los valores encontrados en la literatura (Nemi, 2003) consideran normal un promedio de 0.5% con un rango entre 0 y un 2%. No existe un efecto significativo entre el grupo racial y las siguientes variables: glóbulos rojos, hemoglobina, hematocrito, volumen corpuscular medio, hemoglobina corpuscular media, concentración de hemoglobina corpuscular media, plaquetas, neutrófilos, linfocitos, monocitos, eosinófilos y basófilos. Por otro lado se observó un efecto significativo entre el grupo racial y los leucocitos.

En cuanto a los valores de química sanguínea; el promedio de la AST fue de 53.4 ± 19.4 U/L. La concentración mínima de 15 y la máxima 93 U/L y la concentración más común fue de 58 U/L. Hay un efecto altamente significativo (P<0.01) del grupo racial sobre la variable AST. Lo que significa que la raza Brahman tiene el valor mayor seguido del Gyr y finalmente el menor valor en el Guzera. La actividad sanguínea de AST se encontró elevada en el 9,5% de los individuos estudiados. Los valores alterados para la actividad de esta enzima son compatibles con la presencia de lesiones en la musculatura estriada esquelética o cardíaca y hepática, siendo un indicador de daño celular altamente sensible pero poco específico (Duncan et al., 1994), cabe señalar que los análisis enzimáticos se caracterizan por presentar una gran variación en los resultados, lo que significa que pocos valores alterados dentro de un mismo grupo de animales puede no representar la situación real de la población (Ward et al., 1995).

Existe una gran variabilidad en los datos obtenidos, esto puede ser explicado por los siguientes autores: 15 a 50 U/L (Boon et al, 1981); 38 a 50 U/L (Kolb, 1987); 55U/L (Coppo y Pérez, 1983); 45U/L (Coppo et al, 1996); 56 U/L (Medway et al, 1980); 80 U/L (Durr y Kraft, 1980); 78 a 132 U/L (Kaneco,1989). Comparando esta enzima en otra especie; en los caballos del estudio de Selvaraj et al. (2008), se explicaron niveles bajos de esta enzima como consecuencia de una baja actividad física. En el trabajo sobre Pruebas de integridad y funcionalidad hepática en el Caballo Criollo Colombiano de Velásquez et al. (2007), se observó una diferencia significativa en el sexo, en donde se encontró una mayor concentración en los valores de AST en machos sobre hembras, que se explicaron por el mayor porcentaje de masa muscular y actividad física. No obstante en el presente estudio no se observó dicha diferencia en los valores entre

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hembras y machos.

La concentración media de GGT fue de 192.4 ± 226.4 U/L. La concentración mínima de 35 y la máxima 1174 U/L. El valor más común fue de 45 U/L. No hay efecto (P>0.05) del grupo racial sobre la variable GGT. En terneros la actividad sérica de GGT antes de ingerir calostro, es comparable con la de un adulto clínicamente sano de la misma especie (Thompson y Pauli, 1981; Perino y col, 1993) con un valor menor a 39 U/L (Schmid y Forstner, 1985). Thompson y Pauli (1981), Boediker (1991), Perino y col. (1993), informaron que 24 horas después de ingerir calostro este valor aumenta 60, 160 y 26 veces, respectivamente, sobre el valor de un recién nacido antes de amamantarse. La alta actividad sérica de GGT en los terneros después de consumir calostro, disminuye rápidamente durante la primera semana posterior al nacimiento, seguido esto por una disminución gradual y continúa entre las cinco a doce semanas siguientes; tiempo en el cual la GGT alcanza el valor de un adulto normal. Debido a esta actividad, en terneros jóvenes se invalida su uso diagnóstico como indicador de algún problema hepatobiliar durante las primeras 12 semanas de vida (Thompson y Pauli (1981), Bouda y col, (1980), Center y col, (1991), Ferino y col, (1993).

La concentración de la creatin kinasa fue de 224.6 ± 191.7 U/L, con un mínimo de 54 y un máximo de 1225 U/L. La concentración media se encuentra entre 173.69 y 275.43 U/L. La concentración más común fue de 118 U/L y no hay efecto del grupo racial (P<0.05) sobre la concentración de creatin kinasa. Con base en el articulo científico de Coppo, 2006 (111 ± 28 y 170 ± 33) la creatin quinasa tiene un valor elevado debido a la función del crecimiento del ternero, probablemente por el aumento de su masa muscular, principal tejido de origen de esta enzima (Kaneco,1989). La concentración media del BUN fue de 7.7 ± 4.5 mg/L. La concentración mínima observada fue de 1 mg/L y la máxima de 24 mg/L. La concentración más común fue 5 mg/L. No hay efecto del grupo racial (P>0.05) sobre la concentración de BUN. La Universidad de la Salle por ejemplo utiliza un rango entre 6 a 22 mg/dl. La disminución de la concentración de BUN puede ser causada por la ingesta pobre de proteínas, que en caso de los terneros depende de la alimentación administrada a la madre (Rinehart, 2008).

La concentración media de la creatinina fue de 1.1 ± 0.2 mg/L. La concentración mínima fue de 0.6 mg/L y la máxima de 1.6 mg/L. La concentración más común fue de 1.0 mg/L. No hay efecto del grupo racial (P>0.05) sobre la concentración de creatinina. Con respecto a los marcadores de funcionalidad renal, observamos que la creatinina se mantuvo dentro de los rangos de normalidad (creatinina <2 mg /dl) según lo sugerido por Smith (2002). La creatinina es un indicador del la función renal y del catabolismo muscular y sus valores pueden aumentar levemente con el ejercicio. Los valores también pueden tener cambios debido al esfuerzo muscular para obtener alimento, como postulan Hoff y Cote (1988).

La concentración media de la proteína total fue de 6.8 ± 0.7 g/L, con un valor medio que se encuentra entre 6.59 y 6.95 g/L. La concentración mínima observada fue de 5.1 g/L y la máxima 8.4 g/L. La concentración más común fue 6 mg/L. No hay efecto del grupo racial (P>0.05) sobre la concentración de proteína total.

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En otros estudios reportan que en terneras la concentración de proteínas totales fue de 3.9 a 6.7 g/dl y 6.2 ± 0.6 g/dl (Corbellini,1979; Durr, 1980; Kolb,1987; Kaneko; 1989; Jain, 1993) lo cual concuerda con el trabajo actual. Los terneros y novillos pueden tener un menor valor de proteínas totales debido a un concepto donde se emplea que es mayor el requerimiento y gasto proteico para el crecimiento de estos animales (Margolles, 1988; Gonzalez,1977). La concentración media de la albúmina fue de 2.8 ± 0.3 g/L. Los valores mínimo y máximo fueron 2.3 y 3.9 g/L, respectivamente y la concentración más común fue 2.8 g/L. Hay un efecto altamente significativo de grupo racial (P<0.01) sobre la concentración de albúmina. La concentración de albúmina es semejante entre las razas Gyr y Guzera, mientras que es significativamente mayor en la raza Brahman comparada con las otras. La concentración de albúmina puede ser menor debido a deficiencia en la ingestión de proteínas como resultado de la pobre condición nutricional, parasitismo gastrointestinal (Blowey, 1973) eventos que son comunes en los ecosistemas tropicales. En el presente trabajo por tratarse de animales clínicamente sanos, se debe considerar la baja ingestión de proteína como la más posible causa de niveles inferiores en las razas Gyr y Guzera. Según Coppo, 2006, el rango del valor de albúmina es entre 3.29 ±0.28 y 3.39 ± 0.29. Otros valores de referencia de otros autores son 2.9 g/dl y 3.0 a 3.6 g/dl. (Corbellini, 1979; Durr, 1980; Kolb, 1987; Kaneko; 1989; Jain, 1993). La concentración media del fibrinógeno fue de 412.7 ± 231.0 mg/dL. Los valores mínimo y máximo observados fueron 100 y 900 mg/dL, respectivamente. La concentración más común de fibrinógeno fue 400 mg/dL. No hay efecto del grupo racial (P>0.05) sobre la concentración de fibrinógeno. El fibrinógeno en neonatos tiene un valor de 160 ± 130 mg/dl (Jain, 1986). Cuando los terneros tienen una edad entre 3 a 16 semanas este valor aumenta a un nivel de adulto que es entre 300-700 mg/dl (Jain, 1986). Las siguientes variables mostraron distribución normal (AST, proteína total, albúmina y fibrinógeno) mientras que GGT, creatin kinasa, creatinina y BUN no; hubo homogeneidad poblacional en todas las variables entre las 3 razas evaluadas y los parámetros hematológicos y de química sanguínea.

En cuanto al grado de significancia entre el sexo de los animales y las variables analizadas se concluye que los glóbulos rojos son más altos en los machos que en las hembras; el VCM y la HCM son mayores en las hembras y la creatinina es mayor en los machos. Campos 2009 evaluó añujes (un género de roedores histricomorfos de la familia Dasyproctidae) y obtuvo que los valores de creatinina encontrados en el presente estudio fueron de 2.41 +/- 1.06 mg/dl, este valor promedio es superior al reportado por ISIS en Dasyprocta leporina que es de 0.99 mg/dl. La explicación para esto fue que teniendo en cuenta el método de captura utilizado con los animales muestreados, ya que se produjo un ejercicio intenso sumado a la temperatura ambiental algo elevada y estrés en los añujes desde la captura hasta la sedación para la toma de muestra, pudiendo incrementarse de esta manera los niveles de creatinina. Esto se puede extrapolar a nuestro trabajo en donde al momento de realizar la toma de muestras los machos mostraron una mayor agresividad y dificultad al manejo causándoles gran estrés.

Haciendo una comparación con estudios realizados en bovinos de otras edades se puede decir que según Roldan (2006) el cual hizo una comparación entre vacas en estado de gestación y vacas lactantes los perfiles hematológicos se encuentran dentro de los rangos

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normales; no obstante la serie eritrocitaria fue inferior en el periodo de gestación con respecto a la lactación. Por otro lado en la formula leucocitaria se observó un aumento en le numero de eosinófilos durante el estado de lactación, el cual no llega a ser significativo y podría deberse a un fenómeno alérgico de sensibilidad a su propia leche.

Según un estudio realizado por Santos (2008) se observa los valores hematológicos de hembras gestantes de las diferentes fincas lecheras la media de Eritrocitos fue de 6.363.154 ± 1.017.650/µl; el VCA de 32,21 ± 3,97%, la Hb de 10,81±1,71gr/% y las plaquetas de 412.327 ± 72.232 por µl: los leucocitos intervinieron en 12.444 ± 3.806 por µl..

En su estudio Blanco (2002) realiza la interpretación de resultados de su estudio teniendo un cuenta parámetros referentes al grupo control que comprende animales entre 4 y 6 años de edad. Esta tabla se muestra a continuación:

Tabla 8. Categorización de los parámetros según su rango.

bajo normal alto Hematocrito (%) < 25 25-20 >30 Eritrocito (*10^6) < 4.34 4.34-6 >6 Hemoglobina (g/l) <7.55 7.55-14.50 >14.50 Leucocitos (*103^/µl) <3.55 3.55-12 >12 Neutrófilos (%) <6 6-45 >45 Linfocitos (%) <25 25-75 >75 Monocitos (%) <8 >12

En cuanto a valores de química sanguínea un estudio realizado en novillas entre los 10 y 12 meses de edad mostro que el valor de referencia para las proteínas totales fue de 7-8.8 g/100ml y el valor de albumina fue de 3 g/100ml (Mejias, 2009).

Con base en estos estudios realizados en bovinos de mayor edad se puede encontrar una diferencia en cuanto al valor de los eritrocitos y leucocitos el cual es mayor en los neonatos cebuinos menores de 20 días; mientras que los valores de hematocrito, plaquetas y hemoglobina son similares y el valor de las proteínas totales y albumina es menor.

  49  

5. CONCLUSIONES

• Aunque existen parámetros similares a los establecidos en Bovinos Bos indicus adultos en Colombia son necesarios índices y valores hematológicos específicos para terneros menores a 20 días con el fin de realizar un diagnóstico clínico más acertado.

• Se encontró una diferencia significativa entre las razas comparadas (Gyr, Brahman y Guzera) (p<0.05) versus las variables de leucocitos, albúmina y AST.

• La diferencia entre las variables (leucocitos, albúmina y AST) persistió al

compararlas con el total de la población (los 60 terneros).

• En cuanto al grado de significancia entre el sexo de los animales y las variables analizadas se concluye que los glóbulos rojos son más altos en los machos que en las hembras; el VCM y la HCM son mayores en las hembras y la creatinina es mayor en los machos.

• Debido a la escasa investigación en cuanto a los parámetros hematológicos, valores

de perfil renal y hepático de animales menores a 20 días en bovinos bos indicus en Colombia es dificil comparar los resultados obtenidos en el presente trabajo con reportes de la misma región del país.

• Los Médicos Veterinarios de la Región del Magdalena Medio tanto como los laboratorios de esta misma zona, así como los de otras regiones de Colombia deben evitar las extrapolaciones con animales de edades, razas y regiones geográficas diferentes y distantes a las condiciones actuales en que se encuentra el individuo a evaluar en particular.

6. RECOMENDACIONES Se debe continuar con la determinación de los parámetros hematológicos y valores de química sanguínea en diferentes etapas en bovinos de las razas cebuinas y en diferentes zonas del territorio Colombiano. Es conveniente realizar un estudio para entender la razón de algunas variaciones, que no se pueden explicar ya que no concuerdan con los hallazgos de otros estudios, o no han sido explicadas por la literatura. Como la diferencia en el valor de los eritrocitos.

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  57  

ANEXOS

Anexo 1. Estadística descriptiva hematología

Estad ístico VARIABLE

Edad WBC RBC PLAQ HTO HB VCM HCM CMHC NEU LINF EOSIN MONO BASOF BAND

n 51 51 51 51 50 51 50 51 50 51 51 19 43 10 4

Media 77.8 13.5 11.0 674.7 37.0 11.0 34.3 10.1 29.8 49.3 43.7 1.9 2.5 1.3 1.3

Varianza 248.6 17.9 5.1 32395.8 38.4 3.4 13.4 1.5 1.0 257.5 263.3 2.8 3.6 0.2 0.3

Desviación Estándar 15.8 4.2 2.3 180.0 6.2 1.8 3.7 1.2 1.0 16.0 16.2 1.7 1.9 0.5 0.5

Mínimo 56 8 7 160 24 7 27 8 28 16 17 1 1 1 1

Máximo 117 27 18 962 49 16 46 14 32 81 84 6 7 2 2

Coeficiente de Variación

20.3 31.4 20.6 26.7 16.7 16.6 10.7 12.0 3.4 31.3 35.6 87.8 74.7 37.2 40.0

Error estándar 2.2 0.6 0.3 25.2 0.9 0.3 0.5 0.2 0.1 2.2 2.3 0.4 0.3 0.2 0.3

Rango 61 19 11.2 802.2 25.5 8.2 19 6.8 4.4 65 67 5 6 1 1

Intervalo de confianza 95% para la media

Límite inferior

73.3 12.3 10.4 624.1 35.3 10.5 33.2 9.8 29.5 46.8 41.0 1.1 2.0 1.0 0.5

Limite superior

82.2 14.7 11.6 725.3 38.8 11.5 35.3 10.4 30.1 55.8 50.1 2.7 3.1 1.6 2.0

Asimetr ía -0.143 1.135 0.920 0.463 -0.300 -0.293 0.964 2.047 0.158 -0.892 -0.834 2.488 0.345 -1.224 4.000

Kurtosis 0.776 1.195 0.421 -0.869 -0.149 -0.098 0.540 0.722 0.299 -0.058 0.147 1.886 1.200 1.035 2.000

Moda 81 12 11 563 36 9 33 10 30 70 30 1 1 1 1

Anexo 2. Estadistica paramétrica de hematologia por raza

a) Brahman

1) Variable: Globulos rojos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 11.4056 2.1120 0.4978 7.1000 16.1000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

11.4056 10.3553 12.4558 2.1120 1.5848 3.1662

DF Valor t Pr > |t|

17 22.91 <.0001

2) Variable: plaquetas

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

  58  

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

x18 639.0 122.8 28.9526 411.6 840.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

639.0 577.9 700.1 122.8 92.1742 184.1

DF Valor t Pr > |t|

17 22.07 <.0001

3) Variable: hematocrito

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 39.8389 5.1254 1.2081 31.3000 49.4000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

39.8389 37.2901 42.3877 5.1254 3.8460 7.6837

DF Valor t Pr > |t|

17 32.98 <.0001

4) Variable: hemoglobina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 11.7611 1.3570 0.3198 9.3000 13.9000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

11.7611 11.0863 12.4359 1.3570 1.0182 2.0343

DF Valor t Pr > |t|

17 36.77 <.0001

5) Variable: volumen corpuscular medio

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 35.3889 3.7751 0.8898 30.0000 46.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

35.3889 33.5116 37.2662 3.7751 2.8328 5.6595

  59  

DF Valor t Pr > |t|

17 39.77 <.0001

6) Variable: hemoglobina corpuscular media

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 10.4444 1.2908 0.3042 8.4000 14.4000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

10.4444 9.8025 11.0863 1.2908 0.9686 1.9351

DF Valor t Pr > |t|

17 34.33 <.0001

7) Variable: concentración de hemoglobina corpuscular media

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 29.8333 1.2195 0.2874 27.6000 32.0000

Media 95% CL Media Dev std 95% CL Dev std

29.8333 29.2269 30.4398 1.2195 0.9151 1.8281

DF Valor t Pr > |t|

17 103.79 <.0001

8) Variable: neutrofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 53.9444 18.1220 4.2714 16.0000 77.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

53.9444 44.9326 62.9563 18.1220 13.5986 27.1676

DF Valor t Pr > |t|

17 12.63 <.0001

9) Variable: linfocitos

  60  

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 43.0000 19.1004 4.5020 18.0000 84.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

43.0000 33.5016 52.4984 19.1004 14.3327 28.6342

DF Valor t Pr > |t|

17 9.55 <.0001

10) Variable: eosinofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

11 2.2727 2.0538 0.6193 1.0000 6.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

2.2727 0.8930 3.6525 2.0538 1.4350 3.6043

DF Valor t Pr > |t|

10 3.67 0.0043

11) Variable: monocitos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

13 2.0769 1.4412 0.3997 1.0000 5.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

2.0769 1.2060 2.9478 1.4412 1.0334 2.3790

DF Valor t Pr > |t|

12 5.20 0.0002

12) Variable: basofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

3 1.0000 0 0 1.0000 1.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

1.0000 1.0000 1.0000 0 . .

  61  

DF Valor t Pr > |t|

2 Infin <.0001

13) Variable: bandas

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

0 . . . . .

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

. . . . . .

DF Valor t Pr > |t|

0 . .

a) Guzerat

1) Variable: Globulos blancos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 11.4933 2.3789 0.6142 8.9000 15.9000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

11.4933 10.1759 12.8107 2.3789 1.7417 3.7518

DF Valor t Pr > |t|

14 18.71 <.0001

2) Variable: globulos rojos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 10.0600 2.2484 0.5805 6.8000 14.4000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

10.0600 8.8149 11.3051 2.2484 1.6461 3.5460

DF Valor t Pr > |t|

14 17.33 <.0001

  62  

3) Variable: plaquetas

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 648.9 237.3 61.2758 159.6 940.8

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

648.9 517.4 780.3 237.3 173.7 374.3

DF Valor t Pr > |t|

14 10.59 <.0001

4) Variable: hematocrito

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 33.6533 7.0099 1.8099 23.9000 49.1000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

33.6533 29.7714 37.5353 7.0099 5.1321 11.0553

DF Valor t Pr > |t|

14 18.59 <.0001

5) Variable: hemoglobina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 9.9067 2.1920 0.5660 7.3000 15.5000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

9.9067 8.6928 11.1206 2.1920 1.6048 3.4570

DF Valor t Pr > |t|

14 17.50 <.0001

6) Variable: volumen corpuscular medio

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 33.4667 2.8251 0.7294 29.0000 38.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

33.4667 31.9022 35.0311 2.8251 2.0683 4.4554

  63  

DF Valor t Pr > |t|

14 45.88 <.0001

7) Variable: hemoglobina corpuscular media

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 9.7933 0.8681 0.2241 8.4000 11.1000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

9.7933 9.3126 10.2740 0.8681 0.6355 1.3690

DF Valor t Pr > |t|

14 43.69 <.0001

8) Variable: concentración de hemoglobina corpscular media

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 29.5467 1.0535 0.2720 28.0000 31.6000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

29.5467 28.9633 30.1301 1.0535 0.7713 1.6614

DF Valor t Pr > |t|

14 108.63 <.0001

9) Variable: neutrofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 55.3333 16.5126 4.2635 27.0000 81.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

55.3333 46.1889 64.4777 16.5126 12.0893 26.0420

DF Valor t Pr > |t|

14 12.98 <.0001

10) Variable: linfocitos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 41.0667 15.4849 3.9982 17.0000 67.0000

  64  

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

41.0667 32.4914 49.6419 15.4849 11.3369 24.4212

DF Valor t Pr > |t|

14 10.27 <.0001

11) Variable: eosinofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

7 1.1429 0.3780 0.1429 1.0000 2.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

1.1429 0.7933 1.4924 0.3780 0.2436 0.8323

DF Valor t Pr > |t|

6 8.00 0.0002

12) Variable: monocitos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

14 2.7143 2.1636 0.5783 1.0000 7.0000

Media 95% CL Media Dev std 95% CL Dev std

2.7143 1.4650 3.9635 2.1636 1.5685 3.4857

DF Valor t Pr > |t|

13 4.69 0.0004

13) Variable: basofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

4 1.5000 0.5774 0.2887 1.0000 2.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

1.5000 0.5813 2.4187 0.5774 0.3271 2.1527

DF Valor t Pr > |t|

3 5.20 0.0138

  65  

14) Variable: bandas

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

1 2.0000 . . 2.0000 2.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

2.0000 . . . . .

DF Valor t Pr > |t|

0 . .

a) Gyr

1) Variable: Globulos blancos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 12.6833 3.8190 0.9002 7.6000 21.3000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

12.6833 10.7842 14.5825 3.8190 2.8658 5.7253

DF Valor t Pr > |t|

17 14.09 <.0001

2) Variable: globulos rojos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 11.3833 2.3076 0.5439 7.4000 18.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

11.3833 10.2358 12.5309 2.3076 1.7316 3.4594

DF Valor t Pr > |t|

17 20.93 <.0001

3) Variable: plaquetas

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 732.0 168.5 39.7220 294.0 961.8

  66  

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

732.0 648.2 815.8 168.5 126.5 252.6

DF Valor t Pr > |t|

17 18.43 <.0001

4) Variable: hematocrito

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

17 36.9882 5.2158 1.2650 26.8000 44.7000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

36.9882 34.3065 39.6700 5.2158 3.8846 7.9381

DF Valor t Pr > |t|

16 29.24 <.0001

5) Variable: hemoglobina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 11.2222 1.5460 0.3644 8.1000 13.7000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

11.2222 10.4534 11.9910 1.5460 1.1601 2.3177

DF Valor t Pr > |t|

17 30.80 <.0001

6) Variable: volumen corpuscular medio

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

17 33.8235 4.0810 0.9898 27.0000 41.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

33.8235 31.7253 35.9218 4.0810 3.0394 6.2110

DF Valor t Pr > |t|

16 34.17 <.0001

  67  

7) Variable: hemoglobina corpuscular media

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 10.0000 1.3447 0.3170 7.6000 12.3000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

10.0000 9.3313 10.6687 1.3447 1.0091 2.0159

DF Valor t Pr > |t|

17 31.55 <.0001

8) Variable: Concentracion de hemoglobina corpuscular media

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

17 29.9176 0.7038 0.1707 28.8000 32.0000

Media 95% CL Media Dev std 95% CL Dev std

29.9176 29.5558 30.2795 0.7038 0.5241 1.0711

DF Valor t Pr > |t|

16 175.28 <.0001

9) Variable: neutrofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 45.2778 12.0137 2.8317 26.0000 67.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

45.2778 39.3035 51.2521 12.0137 9.0150 18.0103

DF Valor t Pr > |t|

17 15.99 <.0001

10) Variable: linfocitos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 51.8889 12.0386 2.8375 32.0000 68.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

  68  

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

51.8889 45.9022 57.8755 12.0386 9.0336 18.0476

DF Valor t Pr > |t|

17 18.29 <.0001

11) Variable: eosinofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

1 3.0000 . . 3.0000 3.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

3.0000 . . . . .

DF Valor t Pr > |t|

0 . .

12) Variable: monocitos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

16 2.7500 2.0166 0.5041 1.0000 7.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

2.7500 1.6754 3.8246 2.0166 1.4897 3.1211

DF Valor t Pr > |t|

15 5.45 <.0001

13) Variable: basofilos

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

3 1.3333 0.5774 0.3333 1.0000 2.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

1.3333 -0.1009 2.7676 0.5774 0.3006 3.6285

DF Valor t Pr > |t|

2 4.00 0.0572

  69  

14) Variable: bandas

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

3 1.0000 0 0 1.0000 1.0000

Media 95% CL Media Dev std 95% CL Dev std

1.0000 1.0000 1.0000 0 . .

DF Valor t Pr > |t|

2 Infin <.0001

Anexo 3. Análisis de varianza, prueba de homogeneidad de varianzas de Levene y test de Shapiro Wilks para parámetros hematologicos (se considera como efecto principal la raza (Brahman, Guzerat o Gyr)).

a)Variable dependiente: globulos blancos

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 176.5221046 88.2610523 5.89 0.0052

Error 48 719.5637778 14.9909120

Total corregido 50 896.0858824

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE WBC Media

0.196992 28.74269 3.871810 13.47059

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 176.5221046 88.2610523 5.89 0.0052

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 176.5221046 88.2610523 5.89 0.0052

Test de Levene para homogeneidad de la varianza WBC ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 27.2004 13.6002 2.32 0.1091

Error 48 281.3 5.8603

  70  

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.925785 Pr < W 0.0034

Kolmogorov-Smirnov D 0.182806 Pr > D <0.0100

Cramer-von Mises W-Sq 0.300002 Pr > W-Sq <0.0050

Anderson-Darling A-Sq 1.584643 Pr > A-Sq <0.0050

b)Variable dependiente: globulos rojos

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 18.8593595 9.4296797 1.91 0.1593

Error 48 237.1304444 4.9402176

Total corregido 50 255.9898039

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE RBC Media

0.073672 20.20240 2.222660 11.00196

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 18.85935948 9.42967974 1.91 0.1593

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 18.85935948 9.42967974 1.91 0.1593

Test de Levene para homogeneidad de la varianza RBC ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 0.3240 0.1620 0.08 0.9235

Error 48 97.5810 2.0329

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.974769 Pr < W 0.3451

  71  

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Kolmogorov-Smirnov D 0.098323 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.055955 Pr > W-Sq >0.2500

Anderson-Darling A-Sq 0.359599 Pr > A-Sq >0.2500

c) Variable dependiente: plaquetas

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 91977.765 45988.883 1.44 0.2459

Error 48 1527813.735 31829.453

Total corregido 50 1619791.500

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE PLAQ Media

0.056784 26.44205 178.4081 674.7137

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 91977.76528 45988.88264 1.44 0.2459

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 91977.76528 45988.88264 1.44 0.2459

Test de Levene para homogeneidad de la varianza PLAQ ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 76216.9 38108.4 3.34 0.0439

Error 48 547886 11414.3

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.939332 Pr < W 0.0115

Kolmogorov-Smirnov D 0.105118 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.129273 Pr > W-Sq 0.0448

  72  

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Anderson-Darling A-Sq 0.885679 Pr > A-Sq 0.0225

d) Variable dependiente: hematocrito

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 313.062442 156.531221 4.69 0.0139

Error 47 1569.797758 33.399952

Total corregido 49 1882.860200

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE HTO Media

0.166270 15.61374 5.779269 37.01400

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 313.0624418 156.5312209 4.69 0.0139

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 313.0624418 156.5312209 4.69 0.0139

Test de Levene para homogeneidad de la varianza HTO ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 29.1002 14.5501 1.24 0.2991

Error 47 552.1 11.7472

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.972141 Pr < W 0.2822

Kolmogorov-Smirnov D 0.085645 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.080308 Pr > W-Sq 0.2082

Anderson-Darling A-Sq 0.480538 Pr > A-Sq 0.2300

e) Variable dependiente: hemoglobina

  73  

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 29.2136405 14.6068203 5.04 0.0103

Error 48 139.2032222 2.9000671

Total corregido 50 168.4168627

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE HB Media

0.173460 15.44565 1.702958 11.02549

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 29.21364052 14.60682026 5.04 0.0103

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 29.21364052 14.60682026 5.04 0.0103

Test de Levene para homogeneidad de la varianza HB ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 2.8853 1.4427 1.42 0.2517

Error 48 48.7706 1.0161

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.960853 Pr < W 0.0907

Kolmogorov-Smirnov D 0.075867 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.04159 Pr > W-Sq >0.2500

Anderson-Darling A-Sq 0.378173 Pr > A-Sq >0.2500

f) Variable dependiente: volumen corpuscular medio

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 35.5983007 17.7991503 1.35 0.2696

Error 47 620.4816993 13.2017383

Total corregido 49 656.0800000

  74  

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE VCM Media

0.054259 10.59924 3.633420 34.28000

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 35.59830065 17.79915033 1.35 0.2696

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 35.59830065 17.79915033 1.35 0.2696

Test de Levene para homogeneidad de la varianza VCM ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 9.9577 4.9788 1.05 0.3574

Error 47 222.5 4.7338

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.977846 Pr < W 0.4651

Kolmogorov-Smirnov D 0.071824 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.030216 Pr > W-Sq >0.2500

Anderson-Darling A-Sq 0.248507 Pr > A-Sq >0.2500

g) Variable dependiente: hemoglobina corpuscular media

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 3.72543791 1.86271895 1.28 0.2862

Error 48 69.61377778 1.45028704

Total corregido 50 73.33921569

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE HCM Media

0.050797 11.92818 1.204279 10.09608

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

  75  

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 3.72543791 1.86271895 1.28 0.2862

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 3.72543791 1.86271895 1.28 0.2862

Test de Levene para homogeneidad de la varianza HCM ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 1.1114 0.5557 0.99 0.3779

Error 48 26.8597 0.5596

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.970452 Pr < W 0.2309

Kolmogorov-Smirnov D 0.080712 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.038329 Pr > W-Sq >0.2500

Anderson-Darling A-Sq 0.305822 Pr > A-Sq >0.2500

h) Variable dependiente: Concentracion de hemoglobina corpuscular media

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 1.18916078 0.59458039 0.57 0.5675

Error 47 48.74203922 1.03706466

Total corregido 49 49.93120000

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE CMHC Media

0.023816 3.420082 1.018364 29.77600

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 1.18916078 0.59458039 0.57 0.5675

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

  76  

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 1.18916078 0.59458039 0.57 0.5675

Test de Levene para homogeneidad de la varianza CMHC ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 2.2839 1.1419 2.94 0.0626

Error 47 18.2466 0.3882

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.970613 Pr < W 0.2451

Kolmogorov-Smirnov D 0.10855 Pr > D 0.1449

Cramer-von Mises W-Sq 0.074683 Pr > W-Sq 0.2416

Anderson-Darling A-Sq 0.497188 Pr > A-Sq 0.2114

i) Variable dependiente: neutrofilos

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 1022.69935 511.34967 2.07 0.1372

Error 48 11853.88889 246.95602

Total corregido 50 12876.58824

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE NEU Media

0.079423 30.63672 15.71483 51.29412

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 1022.699346 511.349673 2.07 0.1372

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 1022.699346 511.349673 2.07 0.1372

Test de Levene para homogeneidad de la varianza NEU ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

  77  

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 284.6 142.3 2.29 0.1117

Error 48 2976.3 62.0062

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.968146 Pr < W 0.1850

Kolmogorov-Smirnov D 0.09696 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.080606 Pr > W-Sq 0.2065

Anderson-Darling A-Sq 0.513509 Pr > A-Sq 0.1934

j) Variable dependiente: linfocitos

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 1141.79869 570.89935 2.28 0.1133

Error 48 12022.71111 250.47315

Total corregido 50 13164.50980

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE LINF Media

0.086733 34.73079 15.82634 45.56863

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 1141.798693 570.899346 2.28 0.1133

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 1141.798693 570.899346 2.28 0.1133

Test de Levene para homogeneidad de la varianza LINF ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 322.8 161.4 2.61 0.0840

Error 48 2969.0 61.8549

  78  

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.959698 Pr < W 0.0810

Kolmogorov-Smirnov D 0.115097 Pr > D 0.0898

Cramer-von Mises W-Sq 0.10856 Pr > W-Sq 0.0872

Anderson-Darling A-Sq 0.687686 Pr > A-Sq 0.0722

k) Variable dependiente: eosinofilos

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 6.75051265 3.37525632 1.25 0.3117

Error 16 43.03896104 2.68993506

Total corregido 18 49.78947368

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE EOSIN Media

0.135581 86.56095 1.640102 1.894737

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 6.75051265 3.37525632 1.25 0.3117

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 6.75051265 3.37525632 1.25 0.3117

Test de Levene para homogeneidad de la varianza EOSIN ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 1 8.6808 8.6808 11.61 0.0036

Error 16 11.9625 0.7477

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.753035 Pr < W 0.0003

Kolmogorov-Smirnov D 0.289474 Pr > D <0.0100

  79  

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Cramer-von Mises W-Sq 0.300904 Pr > W-Sq <0.0050

Anderson-Darling A-Sq 1.771628 Pr > A-Sq <0.0050

l) Variable dependiente: monocitos

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 3.9174546 1.9587273 0.53 0.5905

Error 40 146.7802198 3.6695055

Total corregido 42 150.6976744

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE MONO Media

0.025995 75.56936 1.915595 2.534884

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 3.91745464 1.95872732 0.53 0.5905

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 3.91745464 1.95872732 0.53 0.5905

Test de Levene para homogeneidad de la varianza MONO ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 2.4152 1.2076 1.06 0.3545

Error 40 45.3770 1.1344

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.827222 Pr < W <0.0001

Kolmogorov-Smirnov D 0.253453 Pr > D <0.0100

Cramer-von Mises W-Sq 0.472551 Pr > W-Sq <0.0050

Anderson-Darling A-Sq 2.70186 Pr > A-Sq <0.0050

  80  

m) Variable dependiente: basofilos

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 0.43333333 0.21666667 0.91 0.4454

Error 7 1.66666667 0.23809524

Total corregido 9 2.10000000

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE BASOF Media

0.206349 37.53462 0.487950 1.300000

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 0.43333333 0.21666667 0.91 0.4454

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 0.43333333 0.21666667 0.91 0.4454

Test de Levene para homogeneidad de la varianza BASOF ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 0.4815 0.2407 22.75 0.0009

Error 7 0.0741 0.0106

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.889907 Pr < W 0.1692

Kolmogorov-Smirnov D 0.2 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.07697 Pr > W-Sq 0.2099

Anderson-Darling A-Sq 0.479911 Pr > A-Sq 0.1877

Anexo 4. Estadistica descriptiva química sanguínea

Edad AST GGT Creatin kinasa BUN Creatinina

Proteína Total Albumina Fibrinógeno

No. observaciones 53 57 54 57 57 57 54 57 55

Media 75.8 53.4 192.4 224.6 7.7 1.1 6.8 2.8 412.7

  81  

Varianza 247.1 378.2 51265.6 36755.5 20.6 4.1 0.5 0.1 53353.5

Desviación estándar 15.7 19.4 226.4 191.7 4.5 0.2 0.7 0.3 231.0

Mínimo 54 15 35 54 1 0.6 5.1 2.31.1. 100

Máximo 115 93 1174 1225 24 1.6 8.4 3.9 900

Coef. Variación (%) 20.7 36.5 117.7 85.4 58.9 132.0 10.0 11.7 56.0

Error estándar 2.2 2.6 30.8 25.4 0.6 0.3 0.1 0.0 31.1

Rango 61 78 1139 1171 23 0.9 3.3 1.6 800

Intervalo de confianza 95% para la media

Límite inferior 71.46 48.19 130.55 173.69 6.50 0.9 6.59 2.75 350.28

Límite superior 80.13 58.51 254.15 275.43 8.91 1.3 6.95 2.92 475.17

Kurtosis -0.206 -0.919 6.548 14.101 3.563 15.093 0.034 0.565 -0.663

Asimetría 0.751 0.236 2.383 3.458 1.506 4.043 -0.007 0.423 0.513

Moda 79 58 45 118 5 1 6 2.8 400

Anexo 5. Estadistica paramétrica de química sanguinea por raza

a) Brahman 1. AST

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

20 69.6000 12.8980 2.8841 49.0000 93.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

69.6000 63.5636 75.6364 12.8980 9.8088 18.8384

DF Valor t Pr > |t|

19 24.13 <.0001

2. GGT

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 92.4211 84.3987 19.3624 35.0000 350.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

92.4211 51.7422 133.1 84.3987 63.7727 124.8

DF Valor t Pr > |t|

18 4.77 0.0002

  82  

3. Creatin kinasa

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

20 293.6 257.6 57.5900 121.0 1225.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

293.6 173.1 414.1 257.6 195.9 376.2

DF Valor t Pr > |t|

19 5.10 <.0001

4. BUN

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

20 8.5000 4.5015 1.0066 5.0000 24.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

8.5000 6.3933 10.6067 4.5015 3.4233 6.5747

DF Valor t Pr > |t|

19 8.44 <.0001

5. Creatinina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

20 1.0550 0.1820 0.0407 0.7000 1.4000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

1.0550 0.9698 1.1402 0.1820 0.1384 0.2659

DF Valor t Pr > |t|

19 25.92 <.0001

6. Proteína Total

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

  83  

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

20 6.8400 0.6785 0.1517 5.4000 8.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

6.8400 6.5224 7.1576 0.6785 0.5160 0.9911

DF Valor t Pr > |t|

19 45.08 <.0001

7. Albumina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

20 3.0150 0.2907 0.0650 2.3000 3.4000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

3.0150 2.8790 3.1510 0.2907 0.2211 0.4246

DF Valor t Pr > |t|

19 46.38 <.0001

8. Fibrinógeno

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

20 335.0 187.2 41.8487 100.0 900.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

335.0 247.4 422.6 187.2 142.3 273.4

DF Valor t Pr > |t|

19 8.01 <.0001

b) Guzerat

1. AST

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 51.0000 17.5399 4.1342 26.0000 86.0000

  84  

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

51.0000 42.2776 59.7224 17.5399 13.1617 26.2948

DF Valor t Pr > |t|

17 12.34 <.0001

2. GGT

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

17 236.5 231.0 56.0213 39.0000 813.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

236.5 117.8 355.3 231.0 172.0 351.5

DF Valor t Pr > |t|

3. Creatin kinasa

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 230.7 176.0 41.4799 105.0 717.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

230.7 143.2 318.2 176.0 132.1 263.8

DF Valor t Pr > |t|

17 5.56 <.0001

4. BUN

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 6.1111 3.7399 0.8815 1.0000 12.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

6.1111 4.2513 7.9709 3.7399 2.8064 5.6067

DF Valor t Pr > |t|

  85  

DF Valor t Pr > |t|

17 6.93 <.0001

5. Creatinina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 2.4500 3.4797 0.8202 0.6000 10.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

2.4500 0.7196 4.1804 3.4797 2.6111 5.2166

DF Valor t Pr > |t|

17 2.99 0.0083

6. Proteína Total

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

15 6.5667 0.6852 0.1769 5.1000 7.6000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

6.5667 6.1872 6.9461 0.6852 0.5017 1.0807

DF Valor t Pr > |t|

14 37.12 <.0001

7. Albumina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 2.7611 0.3500 0.0825 2.3000 3.9000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

2.7611 2.5870 2.9352 0.3500 0.2627 0.5247

DF Valor t Pr > |t|

17 33.47 <.0001

  86  

8. Fibrinógeno

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

16 418.8 248.2 62.0610 100.0 900.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

418.8 286.5 551.0 248.2 183.4 384.2

DF Valor t Pr > |t|

15 6.75 <.0001

b) Gyr

1. AST

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 38.4737 13.3432 3.0611 15.0000 70.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

38.4737 32.0425 44.9049 13.3432 10.0823 19.7322

DF Valor t Pr > |t|

18 12.57 <.0001

2. GGT

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

18 256.1 291.0 68.5786 45.0000 1174.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

256.1 111.4 400.8 291.0 218.3 436.2

DF Valor t Pr > |t|

17 3.73 0.0016

3. Creatin kinasa

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 146.1 57.0340 13.0845 54.0000 271.0

  87  

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

146.1 118.6 173.6 57.0340 43.0956 84.3433

DF Valor t Pr > |t|

18 11.17 <.0001

4. BUN

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 8.3684 5.0795 1.1653 2.0000 23.0000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

8.3684 5.9202 10.8167 5.0795 3.8381 7.5117

DF Valor t Pr > |t|

18 7.18 <.0001

5. Creatinina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 1.1684 0.2029 0.0465 0.7000 1.6000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

1.1684 1.0706 1.2662 0.2029 0.1533 0.3001

DF Valor t Pr > |t|

18 25.10 <.0001

6. Proteína Total

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 6.8579 0.6628 0.1520 6.0000 8.4000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

6.8579 6.5385 7.1773 0.6628 0.5008 0.9801

  88  

DF Valor t Pr > |t|

18 45.10 <.0001

7. Albumina

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 2.7211 0.2859 0.0656 2.3000 3.2000

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

2.7211 2.5832 2.8589 0.2859 0.2161 0.4228

DF Valor t Pr > |t|

18 41.48 <.0001

8. Fibrinógeno

N Media Dev std Err std Mínimo Máximo

19 489.5 242.4 55.6171 200.0 900.0

Media Intervalo de confianza 95% para la media Dev std 95% CL Dev std

489.5 372.6 606.3 242.4 183.2 358.5

DF Valor t Pr > |t|

18 8.80 <.0001

Anexo 6. Análisis de varianza, prueba de homogeneidad de varianzas de Levene y test de Shapiro Wilks para química sanguinea (se considera como efecto principal la raza (Brahman, Guzerat o Gyr)).

a) AST

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 9585.44561 4792.72281 22.32 <.0001

Error 54 11595.53684 214.73216

Total corregido 56 21180.98246

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE AST Media

  89  

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE AST Media

0.452550 27.46673 14.65374 53.35088

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 9585.445614 4792.722807 22.32 <.0001

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 9585.445614 4792.722807 22.32 <.0001

Test de Levene para homogeneidad de la varianza AST ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 197.3 98.6550 1.43 0.2476

Error 54 3718.5 68.8618

Alpha 0.05

Error Degrees of Freedom 54

Error de cuadrado medio 214.7322

Valor crítico de t 2.00488

Diferencia menos significativa 9.5406

Media armónica de tamaño de celdas 18.96488

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 69.600 20 BRAHMAN

B 51.000 18 GUZERAT

C 38.474 19 GYR

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

  90  

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.961509 Pr < W 0.0670

Kolmogorov-Smirnov D 0.126434 Pr > D 0.0227

Cramer-von Mises W-Sq 0.126829 Pr > W-Sq 0.0478

Anderson-Darling A-Sq 0.702735 Pr > A-Sq 0.0663

b) GGT

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 296089.670 148044.835 3.12 0.0527

Error 51 2420984.645 47470.287

Total corregido 53 2717074.315

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE GGT Media

0.108974 113.2699 217.8768 192.3519

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 296089.6702 148044.8351 3.12 0.0527

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 296089.6702 148044.8351 3.12 0.0527

Test de Levene para homogeneidad de la varianza GGT ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 221099 110549 5.25 0.0084

Error 51 1073559 21050.2

Alpha 0.05

Error Degrees of Freedom 51

Error de cuadrado medio 47470.29

Valor crítico de t 2.00758

Diferencia menos significativa 145.95

  91  

Media armónica de tamaño de celdas 17.96292

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 256.11 18 GYR

A

B A 236.53 17 GUZERAT

B

B 92.42 19 BRAHMAN

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.786045 Pr < W <0.0001

Kolmogorov-Smirnov D 0.200383 Pr > D <0.0100

Cramer-von Mises W-Sq 0.552731 Pr > W-Sq <0.0050

Anderson-Darling A-Sq 3.178206 Pr > A-Sq <0.0050

c) Creatin Kinasa

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 212949.446 106474.723 3.12 0.0524

Error 54 1845360.589 34173.344

Total corregido 56 2058310.035

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE CRK Media

0.103458 82.32062 184.8603 224.5614

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 212949.4456 106474.7228 3.12 0.0524

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 212949.4456 106474.7228 3.12 0.0524

  92  

Test de Levene para homogeneidad de la varianza CRK ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 101334 50666.8 2.42 0.0983

Error 54 1129389 20914.6

Alpha 0.05

Error Degrees of Freedom 54

Error de cuadrado medio 34173.34

Valor crítico de t 2.00488

Diferencia menos significativa 120.36

Media armónica de tamaño de celdas 18.96488

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 293.60 20 BRAHMAN

A

B A 230.67 18 GUZERAT

B

B 146.11 19 GYR

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.635954 Pr < W <0.0001

Kolmogorov-Smirnov D 0.251427 Pr > D <0.0100

Cramer-von Mises W-Sq 1.136014 Pr > W-Sq <0.0050

Anderson-Darling A-Sq 6.247324 Pr > A-Sq <0.0050

d) BUN

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 66.730994 33.365497 1.66 0.2002

  93  

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Error 54 1087.198830 20.133312

Total corregido 56 1153.929825

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE BUN Media

0.057829 58.25966 4.487016 7.701754

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 66.73099415 33.36549708 1.66 0.2002

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 66.73099415 33.36549708 1.66 0.2002

Test de Levene para homogeneidad de la varianza BUN ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 6.5270 3.2635 0.41 0.6689

Error 54 435.0 8.0555

Alpha 0.05

Error Degrees of Freedom 54

Error de cuadrado medio 20.13331

Valor crítico de t 2.00488

Diferencia menos significativa 2.9214

Media armónica de tamaño de celdas 18.96488

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 8.500 20 BRAHMAN

A

A 8.368 19 GYR

A

  94  

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 6.111 18 GUZERAT

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.872406 Pr < W <0.0001

Kolmogorov-Smirnov D 0.143144 Pr > D <0.0100

Cramer-von Mises W-Sq 0.272784 Pr > W-Sq <0.0050

Anderson-Darling A-Sq 1.805516 Pr > A-Sq <0.0050

e) Creatinina

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 22.2311140 11.1155570 2.90 0.0638

Error 54 207.2155526 3.8373250

Total corregido 56 229.4466667

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE Creatin Media

0.096890 127.7549 1.958909 1.533333

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 22.23111404 11.11555702 2.90 0.0638

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 22.23111404 11.11555702 2.90 0.0638

Test de Levene para homogeneidad de la varianza Creatin ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 69.0653 34.5326 20.19 <.0001

Error 54 92.3490 1.7102

Alpha 0.05

  95  

Error Degrees of Freedom 54

Error de cuadrado medio 3.837325

Valor crítico de t 2.00488

Diferencia menos significativa 1.2754

Media armónica de tamaño de celdas 18.96488

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 2.4500 18 GUZERAT

B 1.1684 19 GYR

B

B 1.0550 20 BRAHMAN

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.543302 Pr < W <0.0001

Kolmogorov-Smirnov D 0.358656 Pr > D <0.0100

Cramer-von Mises W-Sq 1.58584 Pr > W-Sq <0.0050

Anderson-Darling A-Sq 8.65688 Pr > A-Sq <0.0050

F) Proteína total

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 0.86494347 0.43247173 0.95 0.3936

Error 51 23.22764912 0.45544410

Total corregido 53 24.09259259

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE Pr_total Media

0.035901 9.967933 0.674866 6.770370

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

  96  

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 0.86494347 0.43247173 0.95 0.3936

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 0.86494347 0.43247173 0.95 0.3936

Test de Levene para homogeneidad de la varianza Pr_total ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 0.0200 0.0100 0.06 0.9408

Error 51 8.3620 0.1640

Alpha 0.05

Error Degrees of Freedom 51

Error de cuadrado medio 0.455444

Valor crítico de t 2.00758

Diferencia menos significativa 0.4552

Media armónica de tamaño de celdas 17.72021

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 6.8579 19 GYR

A

A 6.8400 20 BRAHMAN

A

A 6.5667 15 GUZERAT

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.987043 Pr < W 0.8240

Kolmogorov-Smirnov D 0.061771 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.027856 Pr > W-Sq >0.2500

  97  

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Anderson-Darling A-Sq 0.222624 Pr > A-Sq >0.2500

g) Albumina

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 0.99277485 0.49638743 5.19 0.0086

Error 54 5.15985673 0.09555290

Total corregido 56 6.15263158

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE Albumina Media

0.161358 10.89649 0.309116 2.836842

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 0.99277485 0.49638743 5.19 0.0086

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 0.99277485 0.49638743 5.19 0.0086

Test de Levene para homogeneidad de la varianza Albumina ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 0.00614 0.00307 0.07 0.9283

Error 54 2.2257 0.0412

Alpha 0.05

Error Degrees of Freedom 54

Error de cuadrado medio 0.095553

Valor crítico de t 2.00488

Diferencia menos significativa 0.2013

Media armónica de tamaño de celdas 18.96488

  98  

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 3.0150 20 BRAHMAN

B 2.7611 18 GUZERAT

B

B 2.7211 19 GYR

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.955993 Pr < W 0.0370

Kolmogorov-Smirnov D 0.109028 Pr > D 0.0899

Cramer-von Mises W-Sq 0.07868 Pr > W-Sq 0.2184

Anderson-Darling A-Sq 0.512455 Pr > A-Sq 0.1955

h) Fibrinógeno

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Modelo 2 233321.172 116660.586 2.29 0.1113

Error 52 2647769.737 50918.649

Total corregido 54 2881090.909

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE Fibrinog Media

0.080984 54.67330 225.6516 412.7273

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 233321.1722 116660.5861 2.29 0.1113

Fuente DF Tipo III SS Cuadrado de la media F-Valor Pr > F

Raza 2 233321.1722 116660.5861 2.29 0.1113

Test de Levene para homogeneidad de la varianza Fibrinog ANOVA de desviaciones absolutas de las medias de grupo

  99  

Fuente DF Suma de cuadrados Cuadrado de la media

F-Valor Pr > F

Raza 2 71537.0 35768.5 2.51 0.0909

Error 52 740545 14241.2

Alpha 0.05

Error Degrees of Freedom 52

Error de cuadrado medio 50918.65

Valor crítico de t 2.00665

Diferencia menos significativa 150.24

Media armónica de tamaño de celdas 18.16733

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

t Agrupamiento Media N Raza

A 489.47 19 GYR

A

B A 418.75 16 GUZERAT

B

B 335.00 20 BRAHMAN

Tests para normalidad

Test Estadístico P-valor

Shapiro-Wilk W 0.9567 Pr < W 0.0458

Kolmogorov-Smirnov D 0.094819 Pr > D >0.1500

Cramer-von Mises W-Sq 0.08487 Pr > W-Sq 0.1815

Anderson-Darling A-Sq 0.622236 Pr > A-Sq 0.0999

Anexo 6. T test, Mann Whitney, Shapiro Wilks para química sanguínea y hematología (se considera como efecto principal el sexo (hembra o macho).

. log using "C:\Users\ELDA ANZOLA\Desktop\Analisis noemi.log" -------------------------------------------------------------------------------

name: <unnamed> log: C:\Users\ELDA ANZOLA\Desktop\Analisis noemi.log

log type: text opened on: 25 Oct 2013, 16:02:03

  100  

. tab Sexo

Sexo | Freq. Percent Cum. ------------+-----------------------------------

H | 25 46.30 46.30 M | 29 53.70 100.00

------------+----------------------------------- Total | 54 100.00

. tab Gb

Gb | Freq. Percent Cum.

------------+----------------------------------- 10.1 | 1 1.85 1.85 10.2 | 1 1.85 3.70 10.4 | 1 1.85 5.56 10.5 | 1 1.85 7.41 10.6 | 1 1.85 9.26 10.8 | 1 1.85 11.11 11.1 | 1 1.85 12.96 11.3 | 1 1.85 14.81 11.5 | 1 1.85 16.67 11.7 | 2 3.70 20.37 11.9 | 3 5.56 25.93 12.1 | 1 1.85 27.78 12.3 | 1 1.85 29.63 12.4 | 1 1.85 31.48 12.6 | 1 1.85 33.33 13.3 | 1 1.85 35.19 13.4 | 2 3.70 38.89 13.9 | 1 1.85 40.74 14.8 | 1 1.85 42.59 15.3 | 1 1.85 44.44 15.4 | 3 5.56 50.00 15.6 | 1 1.85 51.85 15.8 | 1 1.85 53.70 15.9 | 1 1.85 55.56 16.0 | 1 1.85 57.41 16.1 | 2 3.70 61.11 16.2 | 1 1.85 62.96 17.0 | 1 1.85 64.81 17.4 | 1 1.85 66.67 19.9 | 1 1.85 68.52 21.3 | 1 1.85 70.37 21.7 | 1 1.85 72.22 22.6 | 1 1.85 74.07 23.3 | 1 1.85 75.93 26.6 | 1 1.85 77.78 7.6 | 1 1.85 79.63 8.8 | 1 1.85 81.48 8.9 | 2 3.70 85.19 9.1 | 1 1.85 87.04 9.3 | 1 1.85 88.89 9.4 | 1 1.85 90.74 9.5 | 2 3.70 94.44 9.7 | 1 1.85 96.30 9.9 | 2 3.70 100.00

------------+----------------------------------- Total | 54 100.00

. sum Gb

Variable | Obs Mean Std. Dev. Min Max

-------------+-------------------------------------------------------- Gb | 0

. sum Gb

Variable | Obs Mean Std. Dev. Min Max -------------+--------------------------------------------------------

Gb | 54 13.46852 4.170282 7.6 26.6

  101  

. tab Raza

Raza | Freq. Percent Cum. ------------+----------------------------------- Brahman | 20 37.04 37.04 Guzera | 16 29.63 66.67

Gyr | 18 33.33 100.00 ------------+-----------------------------------

Total | 54 100.00

. tab Sexo

Sexo | Freq. Percent Cum. ------------+-----------------------------------

H | 25 46.30 46.30 M | 29 53.70 100.00

------------+----------------------------------- Total | 54 100.00

. sum Gb Gr Plaq Hto Hb VCM HCM CHcm Neu Linf Eosi Mon Bas Ban AST GGT CK BUN C

> reatinina PT Albumina Fibrinogeno

Variable | Obs Mean Std. Dev. Min Max -------------+--------------------------------------------------------

Gb | 54 13.46852 4.170282 7.6 26.6 Gr | 54 12.88519 14.46383 6.8 116.1

Plaq | 54 660.1315 203.1771 64.9 961.8 Hto | 54 37.21111 6.165475 23.9 49.4 Hb | 54 11.06481 1.861847 7.3 15.5

-------------+-------------------------------------------------------- VCM | 54 34.03148 3.906058 22.7 46 HCM | 54 10.09074 1.210842 7.6 14.4

CHcm | 54 29.83519 1.128224 27.6 33.4 Neu | 54 51.01852 15.69941 16 81 Linf | 54 45.62963 15.92589 17 84

-------------+-------------------------------------------------------- Eosi | 19 1.947368 1.682382 1 6 Mon | 48 2.645833 1.896128 1 7 Bas | 11 1.363636 .504525 1 2

Ban | 4 1.25 .5 1 2 AST | 54 54.27778 19.54908 15 93

-------------+-------------------------------------------------------- GGT | 51 194.3529 231.987 35 1174 CK | 54 230.2593 195.2708 54 1225 BUN | 54 7.907407 4.52777 1 24

Creatinina | 54 1.055556 .2125023 .6 1.6 PT | 53 6.786792 .672549 5.1 8.4

-------------+-------------------------------------------------------- Albumina | 54 2.842593 .3300096 2.3 3.9

Fibrinogeno | 53 400 225.3203 100 900

. by Sexo, sort : swilk Gb

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo =

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 0 . . . .

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo = H

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z -------------+-------------------------------------------------- Gb | 25 0.90982 2.506 1.878 0.03021

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo = M

  102  

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 29 0.89808 3.159 2.373 0.00882

. swilk Gb Gr

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 54 0.89951 5.022 3.457 0.00027 Gr | 54 0.22431 38.768 7.836 0.00000

. swilk Gb Sexo

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 54 0.89951 5.022 3.457 0.00027

Sexo | 0 . . . .

. by Sexo, sort : swilk Gb

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo =

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 0 . . . .

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo = H

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z -------------+-------------------------------------------------- Gb | 25 0.90982 2.506 1.878 0.03021

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo = M

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z -------------+-------------------------------------------------- Gb | 29 0.89808 3.159 2.373 0.00882

. swilk Sexo

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Sexo | 0 . . . .

. by Sexo, sort : swilk Gb

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo =

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z -------------+--------------------------------------------------

Gb | 0 . . . .

  103  

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = H

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 25 0.90982 2.506 1.878 0.03021

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo = M

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z -------------+-------------------------------------------------- Gb | 29 0.89808 3.159 2.373 0.00882

. swilk Gb

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 54 0.89951 5.022 3.457 0.00027

. robvar Gb, by Sexo option by() required

r(198);

. robvar Gb, by ( Sexo)

| Summary of Gb Sexo | Mean Std. Dev. Freq.

------------+------------------------------------ H | 12.564 3.5535053 25

M | 14.248276 4.5536187 29 ------------+------------------------------------

Total | 13.468519 4.1702823 54

W0 = 1.5057581 df(1, 52) Pr > F = 0.22531423

W50 = 1.1357047 df(1, 52) Pr > F = 0.29148507

W10 = 1.4705597 df(1, 52) Pr > F = 0.23073801

. robvar Gb, by ( Raza )

| Summary of Gb Raza | Mean Std. Dev. Freq.

------------+------------------------------------ Brahman | 15.865 4.5462854 20 Guzera | 11.35625 2.3627579 16

Gyr | 12.683333 3.8190313 18 ------------+------------------------------------

Total | 13.468519 4.1702823 54

W0 = 1.8061273 df(2, 51) Pr > F = 0.17463922

W50 = 1.4289667 df(2, 51) Pr > F = 0.24898461

W10 = 1.6176409 df(2, 51) Pr > F = 0.20837759

. by Sexo, sort : anova Gb

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo =

no observations

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = H

Number of obs = 25 R-squared = 0.0000

  104  

Root MSE = 3.55351 Adj R-squared = 0.0000

Source | Partial SS df MS F Prob > F -----------+----------------------------------------------------

Model | 0 0 | |

Residual | 303.0576 24 12.6274 -----------+----------------------------------------------------

Total | 303.0576 24 12.6274

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = M

Number of obs = 29 R-squared = 0.0000

Root MSE = 4.55362 Adj R-squared = 0.0000

Source | Partial SS df MS F Prob > F -----------+----------------------------------------------------

Model | 0 0 | |

Residual | 580.592414 28 20.7354433 -----------+----------------------------------------------------

Total | 580.592414 28 20.7354433

. by Sexo, sort : anova Gb

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo =

no observations

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = H

Number of obs = 25 R-squared = 0.0000

Root MSE = 3.55351 Adj R-squared = 0.0000

Source | Partial SS df MS F Prob > F -----------+----------------------------------------------------

Model | 0 0 | |

Residual | 303.0576 24 12.6274 -----------+----------------------------------------------------

Total | 303.0576 24 12.6274

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = M

Number of obs = 29 R-squared = 0.0000

Root MSE = 4.55362 Adj R-squared = 0.0000

Source | Partial SS df MS F Prob > F -----------+----------------------------------------------------

Model | 0 0 | |

Residual | 580.592414 28 20.7354433 -----------+----------------------------------------------------

Total | 580.592414 28 20.7354433

. ttest Gb, by(Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 12.564 .7107011 3.553505 11.09719 14.03081 M | 29 14.24828 .8455858 4.553619 12.51617 15.98038

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 13.46852 .5675035 4.170282 12.33025 14.60679

---------+--------------------------------------------------------------------

  105  

diff | -1.684276 1.125036 -3.941825 .5732737 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -1.4971 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.0702 Pr(|T| > |t|) = 0.1404 Pr(T > t) = 0.9298

. ttest Gb, by (sexo) variable sexo not found

in option by() r(111);

. ttest Gb, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 12.564 .7107011 3.553505 11.09719 14.03081

M | 29 14.24828 .8455858 4.553619 12.51617 15.98038 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 54 13.46852 .5675035 4.170282 12.33025 14.60679 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | -1.684276 1.125036 -3.941825 .5732737 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -1.4971 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.0702 Pr(|T| > |t|) = 0.1404 Pr(T > t) = 0.9298

. ttest Gr, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 10.312 .3718566 1.859283 9.544526 11.07947 M | 29 15.10345 3.629472 19.5453 7.668812 22.53808

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 12.88519 1.968278 14.46383 8.937319 16.83305

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -4.791448 3.929393 -12.67635 3.093455

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = -1.2194

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.1141 Pr(|T| > |t|) = 0.2282 Pr(T > t) = 0.8859

. ttest Plaq, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 632.2 38.82234 194.1117 552.0746 712.3254

M | 29 684.2103 39.19238 211.0574 603.9284 764.4923 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 54 660.1315 27.6489 203.1771 604.6748 715.5882 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | -52.01034 55.5142 -163.4077 59.38704 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -0.9369 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.1766 Pr(|T| > |t|) = 0.3531 Pr(T > t) = 0.8234

. ttest Hto, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

  106  

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 36.032 1.299689 6.498443 33.34957 38.71443

M | 29 38.22759 1.073906 5.783159 36.02779 40.42738 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 54 37.21111 .8390149 6.165475 35.52826 38.89396 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | -2.195586 1.671246 -5.549187 1.158015 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -1.3137 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.0973 Pr(|T| > |t|) = 0.1947 Pr(T > t) = 0.9027

. ttest Hb , by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 10.664 .3874223 1.937111 9.8644 11.4636 M | 29 11.41034 .3257936 1.754452 10.74299 12.0777

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 11.06481 .2533653 1.861847 10.55663 11.573

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -.7463448 .5024397 -1.754564 .2618743

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = -1.4854

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.0717 Pr(|T| > |t|) = 0.1435 Pr(T > t) = 0.9283

. ttest VCM, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 34.88 .6790189 3.395095 33.47857 36.28143 M | 29 33.3 .7835124 4.219343 31.69505 34.90495

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 34.03148 .5315472 3.906058 32.96533 35.09763

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | 1.58 1.053685 -.534373 3.694373 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = 1.4995 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.9301 Pr(|T| > |t|) = 0.1398 Pr(T > t) = 0.0699

. ttest HCM, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 10.316 .2195966 1.097983 9.862775 10.76923 M | 29 9.896552 .2390706 1.287435 9.406838 10.38627

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 10.09074 .1647748 1.210842 9.760244 10.42124

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | .4194483 .3285098 -.239755 1.078652

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = 1.2768

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.8963 Pr(|T| > |t|) = 0.2073 Pr(T > t) = 0.1037

  107  

. ttest CHcm, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 29.804 .2099587 1.049794 29.37067 30.23733 M | 29 29.86207 .2246187 1.209608 29.40196 30.32218

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 29.83519 .1535319 1.128224 29.52724 30.14313

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -.058069 .3107519 -.6816382 .5655003

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = -0.1869

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.4262 Pr(|T| > |t|) = 0.8525 Pr(T > t) = 0.5738

. ttest Neu, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 51.44 3.550624 17.75312 44.11187 58.76813

M | 29 50.65517 2.600339 14.00325 45.32862 55.98173 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 54 51.01852 2.136419 15.69941 46.73341 55.30363 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | .7848276 4.324241 -7.892396 9.462051 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = 0.1815 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.5717 Pr(|T| > |t|) = 0.8567 Pr(T > t) = 0.4283

. ttest Linf, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 45.36 3.471733 17.35867 38.19469 52.52531 M | 29 45.86207 2.764894 14.88941 40.19844 51.5257

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 45.62963 2.167238 15.92589 41.2827 49.97656

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -.502069 4.387459 -9.306149 8.302011

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = -0.1144

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.4547 Pr(|T| > |t|) = 0.9093 Pr(T > t) = 0.5453

. ttest Eosi, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 8 1.625 .4199277 1.187735 .6320287 2.617971

M | 11 2.181818 .6002754 1.990888 .8443212 3.519315 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 19 1.947368 .3859649 1.682382 1.136486 2.758251 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | -.5568182 .7929822 -2.229864 1.116228 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -0.7022 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 17

  108  

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.2460 Pr(|T| > |t|) = 0.4921 Pr(T > t) = 0.7540

. ttest Mon, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 24 2.625 .4205436 2.060234 1.755039 3.494961

M | 24 2.666667 .3594816 1.761093 1.923022 3.410311 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 48 2.645833 .2736825 1.896128 2.095255 3.196412 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | -.0416667 .5532485 -1.155298 1.071965 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -0.0753 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 46

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.4701 Pr(|T| > |t|) = 0.9403 Pr(T > t) = 0.5299

. ttest Bas, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 3 1 0 0 1 1 M | 8 1.5 .1889822 .5345225 1.053128 1.946872

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 11 1.363636 .15212 .504525 1.024692 1.702581

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -.5 .3191424 -1.22195 .2219502

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = -1.5667

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 9

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.0758 Pr(|T| > |t|) = 0.1516 Pr(T > t) = 0.9242

. ttest Ban, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 2 1.5 .5 .7071068 -4.853102 7.853102

M | 2 1 0 0 1 1 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 4 1.25 .25 .5 .4543884 2.045612 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | .5 .5 -1.651326 2.651326 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = 1.0000 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 2

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.7887 Pr(|T| > |t|) = 0.4226 Pr(T > t) = 0.2113

. ttest AST, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 52.52 3.407893 17.03946 45.48645 59.55355 M | 29 55.7931 4.023141 21.66528 47.55207 64.03413

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 54.27778 2.660293 19.54908 48.94191 59.61365

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -3.273103 5.367141 -14.04306 7.496853

------------------------------------------------------------------------------

  109  

diff = mean(H) - mean(M) t = -0.6098 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.2723 Pr(|T| > |t|) = 0.5446 Pr(T > t) = 0.7277

. ttest GGT, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 22 250.5455 63.17819 296.332 119.1592 381.9317 M | 29 151.7241 29.87383 160.8755 90.53038 212.9179

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 51 194.3529 32.48467 231.987 129.1056 259.6003

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | 98.82132 64.73454 -31.26761 228.9102

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = 1.5266

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 49

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.9334 Pr(|T| > |t|) = 0.1333 Pr(T > t) = 0.0666

. ttest CK, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 229.36 31.10326 155.5163 165.166 293.554

M | 29 231.0345 42.11819 226.8134 144.7593 317.3097 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 54 230.2593 26.57299 195.2708 176.9606 283.5579 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | -1.674483 53.80187 -109.6358 106.2869 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -0.0311 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.4876 Pr(|T| > |t|) = 0.9753 Pr(T > t) = 0.5124

. ttest BUN, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 8.8 1.087811 5.439056 6.554868 11.04513 M | 29 7.137931 .6465599 3.481832 5.813513 8.462349

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 7.907407 .6161514 4.52777 6.671564 9.143251

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | 1.662069 1.226046 -.7981721 4.12231

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = 1.3556

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.9095 Pr(|T| > |t|) = 0.1811 Pr(T > t) = 0.0905

. ttest Creatinina, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 1 .0387298 .1936492 .9200656 1.079934

M | 29 1.103448 .0407693 .2195495 1.019936 1.18696 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 54 1.055556 .0289179 .2125023 .9975536 1.113558

  110  

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -.1034483 .0567655 -.2173565 .01046 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -1.8224 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.0371 Pr(|T| > |t|) = 0.0741 Pr(T > t) = 0.9629

. ttest PT, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 6.86 .1497776 .7488881 6.550874 7.169126 M | 28 6.721429 .1138965 .6026836 6.487732 6.955125

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 53 6.786792 .0923817 .672549 6.601415 6.97217

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | .1385714 .1858555 -.234549 .5116919

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = 0.7456

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 51

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.7703 Pr(|T| > |t|) = 0.4593 Pr(T > t) = 0.2297

. ttest Albumina, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 2.8 .0668331 .3341656 2.662063 2.937937

M | 29 2.87931 .0608599 .3277404 2.754645 3.003976 ---------+--------------------------------------------------------------------

combined | 54 2.842593 .0449086 .3300096 2.752517 2.932668 ---------+--------------------------------------------------------------------

diff | -.0793103 .0902589 -.2604281 .1018075 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = -0.8787 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.1918 Pr(|T| > |t|) = 0.3836 Pr(T > t) = 0.8082

. ttest Fibrinogeno, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 400 40.82483 204.1241 315.7417 484.2583 M | 28 400 46.57588 246.4564 304.4342 495.5658

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 53 400 30.95012 225.3203 337.894 462.106

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | 0 62.60453 -125.6838 125.6838

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = 0.0000

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 51

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.5000 Pr(|T| > |t|) = 1.0000 Pr(T > t) = 0.5000

. ranksum Gb, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

  111  

H | 25 604.5 687.5 M | 29 880.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -1.77 ----------

adjusted variance 3321.14

Ho: Gb(Sexo==H) = Gb(Sexo==M) z = -1.440

Prob > |z| = 0.1498

. ranksum Gr, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 540 687.5 M | 29 945 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -2.66 ----------

adjusted variance 3320.26

Ho: Gr(Sexo==H) = Gr(Sexo==M) z = -2.560

Prob > |z| = 0.0105

. ranksum Plaq, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 604.5 687.5 M | 29 880.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -2.28 ----------

adjusted variance 3320.64

Ho: Plaq(Sexo==H) = Plaq(Sexo==M) z = -1.440

Prob > |z| = 0.1498

. ranksum Hto, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 599.5 687.5 M | 29 885.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -1.01 ----------

adjusted variance 3321.90

Ho: Hto(Sexo==H) = Hto(Sexo==M) z = -1.527

Prob > |z| = 0.1268

  112  

. ranksum Hb , by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected

-------------+--------------------------------- H | 25 594.5 687.5 M | 29 890.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -3.04 ----------

adjusted variance 3319.88

Ho: Hb(Sexo==H) = Hb(Sexo==M) z = -1.614

Prob > |z| = 0.1065

. ranksum VCM, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 800.5 687.5 M | 29 684.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -29.89 ----------

adjusted variance 3293.02

Ho: VCM(Sexo==H) = VCM(Sexo==M) z = 1.969

Prob > |z| = 0.0489

. ranksum HCM, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 805 687.5 M | 29 680 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -8.23 ----------

adjusted variance 3314.68

Ho: HCM(Sexo==H) = HCM(Sexo==M) z = 2.041

Prob > |z| = 0.0413

. ranksum CHcm, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 667.5 687.5 M | 29 817.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

  113  

adjustment for ties -8.11 ----------

adjusted variance 3314.81

Ho: CHcm(Sexo==H) = CHcm(Sexo==M) z = -0.347

Prob > |z| = 0.7283

. ranksum Neu, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 680 687.5 M | 29 805 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -4.43 ----------

adjusted variance 3318.48

Ho: Neu(Sexo==H) = Neu(Sexo==M) z = -0.130

Prob > |z| = 0.8964

. ranksum Linf, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 689.5 687.5 M | 29 795.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -3.42 ----------

adjusted variance 3319.50

Ho: Linf(Sexo==H) = Linf(Sexo==M) z = 0.035

Prob > |z| = 0.9723

. ranksum Eosi, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 8 74.5 80 M | 11 115.5 110

-------------+--------------------------------- combined | 19 190 190

unadjusted variance 146.67 adjustment for ties -47.09

---------- adjusted variance 99.58

Ho: Eosi(Sexo==H) = Eosi(Sexo==M)

z = -0.551 Prob > |z| = 0.5815

. ranksum Mon, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected

  114  

-------------+--------------------------------- H | 24 559.5 588 M | 24 616.5 588

-------------+--------------------------------- combined | 48 1176 1176

unadjusted variance 2352.00 adjustment for ties -165.57

---------- adjusted variance 2186.43

Ho: Mon(Sexo==H) = Mon(Sexo==M)

z = -0.610 Prob > |z| = 0.5422

. ranksum Bas, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected

-------------+--------------------------------- H | 3 12 18 M | 8 54 48

-------------+--------------------------------- combined | 11 66 66

unadjusted variance 24.00 adjustment for ties -7.20

---------- adjusted variance 16.80

Ho: Bas(Sexo==H) = Bas(Sexo==M)

z = -1.464 Prob > |z| = 0.1432

. ranksum Ban, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected

-------------+--------------------------------- H | 2 6 5 M | 2 4 5

-------------+--------------------------------- combined | 4 10 10

unadjusted variance 1.67 adjustment for ties -0.67

---------- adjusted variance 1.00

Ho: Ban(Sexo==H) = Ban(Sexo==M)

z = 1.000 Prob > |z| = 0.3173

. ranksum AST, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected

-------------+--------------------------------- H | 25 653.5 687.5 M | 29 831.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -3.04 ----------

adjusted variance 3319.88

Ho: AST(Sexo==H) = AST(Sexo==M) z = -0.590

  115  

Prob > |z| = 0.5551

. ranksum GGT, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 22 606.5 572 M | 29 719.5 754

-------------+--------------------------------- combined | 51 1326 1326

unadjusted variance 2764.67

adjustment for ties -0.88 ----------

adjusted variance 2763.79

Ho: GGT(Sexo==H) = GGT(Sexo==M) z = 0.656

Prob > |z| = 0.5117

. ranksum CK, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 723 687.5 M | 29 762 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -0.38 ----------

adjusted variance 3322.54

Ho: CK(Sexo==H) = CK(Sexo==M) z = 0.616

Prob > |z| = 0.5380

. ranksum BUN, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 744 687.5 M | 29 741 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -47.12 ----------

adjusted variance 3275.80

Ho: BUN(Sexo==H) = BUN(Sexo==M) z = 0.987

Prob > |z| = 0.3236

. ranksum Creatinina, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 570.5 687.5 M | 29 914.5 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

  116  

unadjusted variance 3322.92 adjustment for ties -66.62

---------- adjusted variance 3256.29

Ho: Creati~a(Sexo==H) = Creati~a(Sexo==M)

z = -2.050 Prob > |z| = 0.0403

. ranksum PT, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected

-------------+--------------------------------- H | 25 711.5 675 M | 28 719.5 756

-------------+--------------------------------- combined | 53 1431 1431

unadjusted variance 3150.00

adjustment for ties -16.13 ----------

adjusted variance 3133.87

Ho: PT(Sexo==H) = PT(Sexo==M) z = 0.652

Prob > |z| = 0.5144

. ranksum Albumina, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 622 687.5 M | 29 863 797.5

-------------+--------------------------------- combined | 54 1485 1485

unadjusted variance 3322.92

adjustment for ties -49.02 ----------

adjusted variance 3273.90

Ho: Albumina(Sexo==H) = Albumina(Sexo==M) z = -1.145

Prob > |z| = 0.2523

. ranksum Fibrinogeno, by (Sexo)

Two-sample Wilcoxon rank-sum (Mann-Whitney) test

Sexo | obs rank sum expected -------------+---------------------------------

H | 25 689 675 M | 28 742 756

-------------+--------------------------------- combined | 53 1431 1431

unadjusted variance 3150.00 adjustment for ties -111.12

---------- adjusted variance 3038.88

Ho: Fibrin~o(Sexo==H) = Fibrin~o(Sexo==M)

z = 0.254 Prob > |z| = 0.7995

. ttest Gr, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------

  117  

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 10.312 .3718566 1.859283 9.544526 11.07947 M | 29 15.10345 3.629472 19.5453 7.668812 22.53808

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 12.88519 1.968278 14.46383 8.937319 16.83305

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | -4.791448 3.929393 -12.67635 3.093455

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = -1.2194

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.1141 Pr(|T| > |t|) = 0.2282 Pr(T > t) = 0.8859

. ttest VCM, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances

------------------------------------------------------------------------------ Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval]

---------+-------------------------------------------------------------------- H | 25 34.88 .6790189 3.395095 33.47857 36.28143 M | 29 33.3 .7835124 4.219343 31.69505 34.90495

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 34.03148 .5315472 3.906058 32.96533 35.09763

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | 1.58 1.053685 -.534373 3.694373 ------------------------------------------------------------------------------

diff = mean(H) - mean(M) t = 1.4995 Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0

Pr(T < t) = 0.9301 Pr(|T| > |t|) = 0.1398 Pr(T > t) = 0.0699

. ttest HCM, by (Sexo)

Two-sample t test with equal variances ------------------------------------------------------------------------------

Group | Obs Mean Std. Err. Std. Dev. [95% Conf. Interval] ---------+--------------------------------------------------------------------

H | 25 10.316 .2195966 1.097983 9.862775 10.76923 M | 29 9.896552 .2390706 1.287435 9.406838 10.38627

---------+-------------------------------------------------------------------- combined | 54 10.09074 .1647748 1.210842 9.760244 10.42124

---------+-------------------------------------------------------------------- diff | .4194483 .3285098 -.239755 1.078652

------------------------------------------------------------------------------ diff = mean(H) - mean(M) t = 1.2768

Ho: diff = 0 degrees of freedom = 52

Ha: diff < 0 Ha: diff != 0 Ha: diff > 0 Pr(T < t) = 0.8963 Pr(|T| > |t|) = 0.2073 Pr(T > t) = 0.1037

. by Sexo, sort : swilk Gb Gr Plaq

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo =

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z -------------+--------------------------------------------------

Gb | 0 . . . . Gr | 0 . . . .

Plaq | 0 . . . .

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = H

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+--------------------------------------------------

  118  

Gb | 25 0.90982 2.506 1.878 0.03021 Gr | 25 0.97798 0.612 -1.004 0.84241

Plaq | 25 0.90679 2.590 1.945 0.02587

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = M

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 29 0.89808 3.159 2.373 0.00882 Gr | 29 0.27160 22.575 6.431 0.00000

Plaq | 29 0.88020 3.713 2.707 0.00340

. by Sexo, sort : swilk Gb Gr Plaq

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo =

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 0 . . . . Gr | 0 . . . .

Plaq | 0 . . . .

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = H

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 25 0.90982 2.506 1.878 0.03021 Gr | 25 0.97798 0.612 -1.004 0.84241

Plaq | 25 0.90679 2.590 1.945 0.02587

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = M

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 29 0.89808 3.159 2.373 0.00882 Gr | 29 0.27160 22.575 6.431 0.00000

Plaq | 29 0.88020 3.713 2.707 0.00340

. note: a continuacion se corre s wilk para evaluar normalidad de las variables segun sexo

. by Sexo, sort : swilk Gb Gr Plaq Hto Hb VCM HCM CHcm Neu Linf Eosi Mon Bas Ban AST GGT CK > BUN Creatinina PT Albumina Fibrinogeno

--------------------------------------------------------------------------------------------

-> Sexo =

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z -------------+--------------------------------------------------

Gb | 0 . . . . Gr | 0 . . . .

Plaq | 0 . . . . Hto | 0 . . . . Hb | 0 . . . .

VCM | 0 . . . . HCM | 0 . . . .

CHcm | 0 . . . . Neu | 0 . . . . Linf | 0 . . . . Eosi | 0 . . . .

  119  

Mon | 0 . . . . Bas | 0 . . . . Ban | 0 . . . . AST | 0 . . . . GGT | 0 . . . . CK | 0 . . . .

BUN | 0 . . . . Creatinina | 0 . . . .

PT | 0 . . . . Albumina | 0 . . . .

Fibrinogeno | 0 . . . .

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = H

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 25 0.90982 2.506 1.878 0.03021 Gr | 25 0.97798 0.612 -1.004 0.84241

Plaq | 25 0.90679 2.590 1.945 0.02587 Hto | 25 0.96746 0.904 -0.206 0.58167 Hb | 25 0.96318 1.023 0.047 0.48130

VCM | 25 0.94901 1.417 0.712 0.23810 HCM | 25 0.91711 2.303 1.705 0.04406

CHcm | 25 0.96673 0.924 -0.160 0.56375 Neu | 25 0.92691 2.031 1.448 0.07378 Linf | 25 0.93269 1.870 1.280 0.10029 Eosi | 8 0.80510 2.715 1.846 0.03245 Mon | 24 0.84678 4.133 2.893 0.00191

Bas | 3 . . . . Ban | 2 . . . .

AST | 25 0.93392 1.836 1.242 0.10709 GGT | 22 0.73611 6.685 3.852 0.00006 CK | 25 0.75463 6.818 3.924 0.00004

BUN | 25 0.84986 4.172 2.920 0.00175 Creatinina | 25 0.94862 1.428 0.728 0.23338

PT | 25 0.99292 0.197 -3.324 0.99956 Albumina | 25 0.88916 3.080 2.300 0.01074

Fibrinogeno | 25 0.97359 0.734 -0.632 0.73641

-------------------------------------------------------------------------------------------- -> Sexo = M

Shapiro-Wilk W test for normal data

Variable | Obs W V z Prob>z

-------------+-------------------------------------------------- Gb | 29 0.89808 3.159 2.373 0.00882 Gr | 29 0.27160 22.575 6.431 0.00000

Plaq | 29 0.88020 3.713 2.707 0.00340 Hto | 29 0.96309 1.144 0.278 0.39059 Hb | 29 0.96216 1.173 0.329 0.37105

VCM | 29 0.94159 1.810 1.224 0.11039 HCM | 29 0.88906 3.438 2.548 0.00541

CHcm | 29 0.95980 1.246 0.454 0.32496 Neu | 29 0.97649 0.729 -0.653 0.74304 Linf | 29 0.96125 1.201 0.378 0.35269 Eosi | 11 0.78546 3.474 2.509 0.00606 Mon | 24 0.86607 3.613 2.619 0.00441 Bas | 8 0.99716 0.040 -3.817 0.99993

Ban | 2 . . . . AST | 29 0.96575 1.062 0.123 0.45087 GGT | 29 0.68591 9.735 4.696 0.00000 CK | 29 0.51512 15.028 5.592 0.00000 BUN | 29 0.97457 0.788 -0.491 0.68825

Creatinina | 29 0.98409 0.493 -1.459 0.92767 PT | 28 0.98893 0.334 -2.256 0.98796

Albumina | 29 0.97512 0.771 -0.536 0.70405 Fibrinogeno | 28 0.94420 1.685 1.074 0.14133

Anexo 7. Anova comparando los 60 animales como una sola población, versus las variables.

  120  

ANEXO. LEUCOCITOS

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 197.346606 2 98.6733032 6.95 0.0021

Within groups 724.389875 51 14.203723 ------------------------------------------------------------------------

Total 921.736481 53 17.3912544

Bartlett's test for equal variances: chi2(2) = 6.2646 Prob>chi2 = 0.044 AST

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups 9066.98472 2 4533.49236 20.67 0.0000 Within groups 11187.8486 51 219.369581

------------------------------------------------------------------------ Total 20254.8333 53 382.166667

VCM Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups 38.0864677 1 38.0864677 2.24 0.1404 Within groups 883.650014 52 16.9932695

------------------------------------------------------------------------ Total 921.736481 53 17.3912544

HTO

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 423.568148 2 211.784074 1.01 0.3704

Within groups 10664.16 51 209.101176 ------------------------------------------------------------------------

Total 11087.7281 53 209.202418

GR Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups 20.42 2 10.21 2.18 0.1238 Within groups 239.16 51 4.68941176

------------------------------------------------------------------------ Total 259.58 53 4.89773585

HB

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 38.665037 2 19.3325185 6.80 0.0024

Within groups 145.058111 51 2.84427669 ------------------------------------------------------------------------

Total 183.723148 53 3.46647449

HCM Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups 59.507037 2 29.7535185 2.03 0.1424 Within groups 749.129444 51 14.6888126

------------------------------------------------------------------------ Total 808.636481 53 15.2572921

CHCM

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 3.90599537 2 1.95299769 1.57 0.2185

Within groups 63.5571528 51 1.24621868 ------------------------------------------------------------------------

Total 67.4631481 53 1.27288959

PLAQUETAS

  121  

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 139402.367 2 69701.1836 1.74 0.1866

Within groups 2048487.03 51 40166.4123 ------------------------------------------------------------------------

Total 2187889.4 53 41280.932

NEUTROFILOS Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups 893.57037 2 446.785185 1.87 0.1642 Within groups 12169.4111 51 238.615904

------------------------------------------------------------------------ Total 13062.9815 53 246.471349

LINFOCITOS

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 1059.61481 2 529.807407 2.18 0.1232

Within groups 12382.9778 51 242.803486 ------------------------------------------------------------------------

Total 13442.5926 53 253.633823

MONOCITOS Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups .410539216 2 .205269608 0.05 0.9467 Within groups 168.568627 45 3.7459695

------------------------------------------------------------------------ Total 168.979167 47 3.59530142

GGT

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 320433.047 2 160216.523 3.24 0.0477

Within groups 2370464.6 48 49384.6792 ------------------------------------------------------------------------

Total 2690897.65 50 53817.9529

CREATIN KINASA Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups 198715.133 2 99357.5664 2.78 0.0714 Within groups 1822211.24 51 35729.6321

------------------------------------------------------------------------ Total 2020926.37 53 38130.6862

BUN

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups 62.9259259 2 31.462963 1.57 0.2184

Within groups 1023.61111 51 20.0708061 ------------------------------------------------------------------------

Total 1086.53704 53 20.5006988

CREATININA Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups .423555556 2 .211777778 5.48 0.0070 Within groups 1.96977778 51 .038623094

------------------------------------------------------------------------ Total 2.39333333 53 .045157233

ALBUMINA Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F

  122  

------------------------------------------------------------------------ Between groups .944384259 2 .47219213 4.99 0.0105

Within groups 4.82765278 51 .094659858 ------------------------------------------------------------------------

Total 5.77203704 53 .108906359

FIBRINOGENO Analysis of Variance

Source SS df MS F Prob > F ------------------------------------------------------------------------

Between groups 148948.529 2 74474.2647 1.49 0.2341 Within groups 2491051.47 50 49821.0294

------------------------------------------------------------------------ Total 2640000 52 50769.2308

PT

Analysis of Variance Source SS df MS F Prob > F

------------------------------------------------------------------------ Between groups .893967952 2 .446983976 0.99 0.3796

Within groups 22.6267868 50 .452535735 ------------------------------------------------------------------------

Total 23.5207547 52 .452322206