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UNIVERSIDAD MAYOR DE SAN ANDRÉS
FACULTAD DE AGRONOMÍA
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
“INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD CHARLOTT EN AMBIENTES
CONTROLADOS”
Tesis de Grado Presentado como
requisito parcial para optar el Título de
Ingeniero Agrónomo.
PAOLA IVETTE VILLARROEL BEJARANO
Asesor:
Ing. M. Sc. Jorge Pascuali Cabrera ……………………………..
Tribunal Examinador:
Dr. Humberto Sainz M. ……………………………..
Ing. Roberto Miranda C. ……………………………..
Ing. Freddy Porco Chiri ……………………………..
Aprobada
Presidente Tribunal Examinador: ……………………………..
2012
DEDICATORIA
A mis padres: por su apoyo incondicional, sus grandes enseñanzas y sus maravillosos consejos. A mis docentes por transmitirme sus conocimientos y experiencias en cuanto a la vida profesional. Y a Dios por ayudarme en ese momento de mi vida en el que no sabía qué carrera universitaria quería seguir.
Paola Ivette Villarroel Bejarano
AGRADECIMIENTOS
Quiero agradecer al Ing. M. Sc. Jorge Pascuali Cabrera, por su valioso apoyo,
enseñanzas y el tiempo que se tomo conmigo, a la Ing. Carmen del Castillo por la
guía para la elaboración del perfil de tesis y a los ingenieros Ing. Roberto Miranda
C., Dr. Humberto Sainz M. y Ing. MSc. Yakov Arteaga García por su apoyo,
consejos, recomendaciones y guía para la elaboración de la tesis de grado.
Además también quiero agradecer a mis padres por su apoyo incondicional. Y a
mis tíos Fernando Bejarano y Jorge Bejarano por sus sugerencias y apoyo en la
2.1 INFORMACIÓN BOTÁNICA ___________________________________________ 5 2.2 TAXONOMÍA DE LA ROSA ____________________________________________ 6 2.3 PROPAGACIÓN _____________________________________________________ 6 2.4 FISIOLOGÍA DE LA PRODUCCIÓN _____________________________________ 7 2.5 CULTIVO EN INVERNADERO __________________________________________ 8 2.5.1 TEMPERATURA ______________________________________________________ 8 2.5.2 LUZ ______________________________________________________________ 9 2.5.3 SUELO ___________________________________________________________ 10 2.6 LABORES CULTURALES ____________________________________________ 11 2.6.1 PREPARACIÓN DEL TERRENO __________________________________________ 11 2.6.2 LABOR DE FONDO __________________________________________________ 11 2.6.3 APORTE DE MATERIA ORGÁNICA Y ABONADO DE FONDO ______________________ 11 2.6.4 MULLIDO _________________________________________________________ 12 2.6.5 PLANTACIÓN ______________________________________________________ 12 2.6.6 RIEGO ___________________________________________________________ 13 2.6.7 FERTILIZACIÓN _____________________________________________________ 13 2.6.7.1 El Uso de Fertilizantes Orgánicos y Minerales en Bolivia __________________ 15 2.6.7.2 Abonos Orgánicos ________________________________________________ 17 2.6.7.3 Influencia de la Materia Orgánica Sobre la Fertilidad de los Suelos de Cultivo _ 19 2.6.7.4 Producción de Biol y Biogás Mediante el Uso de Biodigestores _____________ 19 2.6.7.5 Tiempo y Proceso de Fermentación del Abono Líquido ___________________ 25 2.6.7.6 Elaboración del Biol _______________________________________________ 28 2.6.7.7 Análisis Físico Químico del Biol (Fertilizante Foliar Líquido) ________________ 31 2.6.8 VENTILACIÓN ______________________________________________________ 31 2.6.9 DESPUNTE ________________________________________________________ 32 2.6.10 DESBOTONADO ___________________________________________________ 33 2.6.11 PODA ___________________________________________________________ 33 2.6.12 LETARGO ________________________________________________________ 34 2.6.13 COSECHA _______________________________________________________ 35 2.6.14 POST - COSECHA __________________________________________________ 37 2.6.15 PLAGAS Y ENFERMEDADES ___________________________________________ 40 2.6.15.1 Plagas ________________________________________________________ 40
ii
2.6.15.2 Enfermedades __________________________________________________ 46 2.7 ECONOMÍA EN LA FLORICULTURA A NIVEL INTERNACIONAL ____________ 48 2.7.1 PRODUCCIÓN DE ORNAMENTALES A NIVEL INTERNACIONAL ____________________ 48 2.7.2 TIPOS DE FLORES EN EL MERCADO INTERNACIONAL _________________________ 49 2.7.3 PRINCIPALES PAÍSES PRODUCTORES DE ORNAMENTALES _____________________ 50 2.7.4 PAÍSES EXPORTADORES _____________________________________________ 52 2.7.5 PAÍSES IMPORTADORES ______________________________________________ 53 2.8 LA FLORICULTURA EN BOLIVIA ______________________________________ 54 2.8.1 PRINCIPALES DESTINOS DE LAS EXPORTACIONES BOLIVIANAS _________________ 55
3. MATERIALES Y MÉTODOS _____________________________________ 57
3.1 LOCALIZACIÓN ____________________________________________________ 57 3.2 CARACTERÍSTICAS DEL SUELO. _____________________________________ 57 3.3 CARACTERÍSTICAS DE LA ECOREGIÓN _______________________________ 57 3.4 MATERIALES______________________________________________________ 58 3.4.1 MATERIALES DE ESCRITORIO __________________________________________ 58 3.4.2 MATERIALES DE CAMPO ______________________________________________ 58 3.4.3 MATERIALES DE GAVINETE ____________________________________________ 58 3.5 METODOLOGÍA ____________________________________________________ 59 3.5.1 PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL _______________________________________ 59 3.5.1.1 Limpieza del terreno ______________________________________________ 59 3.5.1.2 Demarcación de las parcelas experimentales ___________________________ 59 3.5.1.3 Aplicación del Biol ________________________________________________ 59 3.5.1.4 Observación de resultados de la investigación. _________________________ 61 3.6 DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN ______________________________________ 61 3.7 MODELO LINEAL ADITIVO "DISEÑO BIFACTORIAL CON BLOQUES AL AZAR" 62 3.8 CROQUIS DEL EXPERIMENTO _______________________________________ 63 3.9 VARIABLES DE RESPUESTA_________________________________________ 63 3.9.1 INCIDENCIA DE PULGONES EN LAS PLANTAS DE ROSA (%). ____________________ 63 3.9.2 INCIDENCIA DE OÍDIO EN LAS PLANTAS DE ROSA (%). ________________________ 64 3.9.3 NÚMERO DE BOTONES POR PLANTA (UNIDADES). ___________________________ 64 3.9.4 LONGITUD DEL BOTÓN FLORAL (CM). ____________________________________ 64 3.9.5 DIÁMETRO DEL BOTÓN FLORAL (CM). ____________________________________ 65 3.9.6 DIÁMETRO DE LA FLOR (CM). __________________________________________ 65 3.9.7 LONGITUD DE LA FLOR (CM). __________________________________________ 66 3.9.8 CONSISTENCIA DEL TALLO (CM). ________________________________________ 67 3.9.9 ALTURA DEL TALLO DE CORTE (CM). _____________________________________ 67 3.10 ANÁLISIS ECONÓMICO ____________________________________________ 68
4. RESULTADOS Y DISCUSIONES _________________________________ 80
4.1 EVALUACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN LA INCIDENCIA DE PLAGAS Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA ROSA. ____________________________ 80 4.1.1 INCIDENCIA DE PLAGAS ______________________________________________ 80 4.1.2 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES ________________________________________ 82
iii
4.2 DETERMINACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN EL NÚMERO DE BOTONES FLORALES OBTENIDOS POR PLANTA DE ROSAL. __________________________ 85 4.3 DETERMINACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN CUANTO A LAS NORMAS DE CALIDAD DE LA ROSA PARA LA VENTA EN EL MERCADO. ___________________ 87 4.3.1 DIÁMETRO DE LA FLOR. ______________________________________________ 87 4.3.2 LONGITUD DE LA FLOR. ______________________________________________ 90 4.3.3 DIÁMETRO DEL TALLO. _______________________________________________ 92 4.3.4 ALTURA DE TALLO DE CORTE. _________________________________________ 94
5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES _________________________ 96
TABLA 1. PRODUCCIÓN ANUAL DE ABONOS ORGÁNICOS A PARTIR DE ESTIÉRCOLES Y RESIDUOS AGROINDUSTRIALES EN BOLIVIA ______ 15
TABLA 2. PRODUCCIÓN Y COMPOSICIÓN DEL ESTIÉRCOL DE DIFERENTES ANIMALES ___________________________________________________ 17
TABLA 3. COMPOSICIÓN BIOQUÍMICA DEL BIOL ___________________________ 23
TABLA 4. PARÁMETROS ÚTILES PARA LA ELABORACIÓN DEL BIOL _________ 28
TABLA 5. COMPOSICIÓN QUÍMICA DEL BIOL ______________________________ 31
TABLA 6. CALIDAD DE ROSAS GRANDES POR LA MEDIDA DEL TALLO (SÁNCHEZ, 2005) _______________________________________________________ 38
TABLA 7. CLASIFICACIÓN DE MINI – ROSAS POR LA MEDIDA DEL TALLO (SÁNCHEZ, 2005) ________________________________________________________ 38
TABLA 8. REQUISITOS DE CALIDAD DE LA ROSA __________________________ 39
TABLA 9. PRINCIPALES PAÍSES EXPORTADORES DE FLORES EN EL MUNDO __ 48
TABLA 10. PRINCIPALES PAÍSES IMPORTADORES DE FLORES EN EL MUNDO __ 49
TABLA 11. PRINCIPALES PAÍSES IMPORTADORES DE FLORES DE CORTE EN EL MERCADO MUNDIAL __________________________________________ 54
TABLA 12. PRINCIPALES PAÍSES IMPORTADORES DE FLORES BOLIVIANAS EN EL AÑO 2010 EXPRESADOS EN DÓLARES Y KILOGRAMOS. ___________ 56
TABLA 13. ANÁLISIS QUÍMICO DE N, P, K EN LOS SUELOS DE ESTUDIO, REALIZADO POR EL LABORATORIO DEL IBTEN __________________ 57
TABLA 14. COSTOS DE PRODUCCIÓN DEL MÓDULO ROSAS EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD AGRONOMÍA DE LA UMSA _______________________________________________________ 68
TABLA 15. COSTOS DE PRODUCCIÓN DEL MÓDULO ROSAS EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD AGRONOMÍA DE LA UMSA _______________________________________________________ 69
TABLA 16. COSTOS DE PRODUCCIÓN DEL MÓDULO ROSAS EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD AGRONOMÍA DE LA UMSA (ÁREA DE ESTUDIO PARA LA TESIS) ______________________ 70
TABLA 17. COSTOS DE PRODUCCIÓN DEL MÓDULO ROSAS EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD AGRONOMÍA DE LA UMSA _______________________________________________________ 71
TABLA 18. FLUJO DE CAJA CARPA DE ROSAS PERTENECIENTE A LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ________________________________ 78
TABLA 19. FLUJO DE CAJA ROSAS CHARLOTT PERTENECIENTE A LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ________________________________ 79
v
TABLA 20. ANVA INCIDENCIA DE PULGONES EN EL ROSAL __________________ 81
TABLA 21. ANVA INCIDENCIA DE OÍDIO EN EL ROSAL _______________________ 84
TABLA 22. ANVA NÚMERO DE BOTONES FLORALES POR PLANTA ____________ 86
TABLA 23. ANVA DIÁMETRO DE LA FLOR __________________________________ 89
TABLA 24. ANVA LONGITUD DE LA FLOR __________________________________ 91
TABLA 25. ANVA DIÁMETRO DEL TALLO __________________________________ 93
TABLA 26. ANVA ALTURA DEL TALLO DE CORTE ___________________________ 95
vi
ÍNDICE DE FIGURAS FIGURA 1. CONSUMO DE FERTILIZANTES MINERALES EN BOLIVIA, ECUADOR,
PERÚ, VENEZUELA Y COLOMBIA _______________________________ 16
FIGURA 2. BACTERIAS DE LAS TRES FASES DE FERMENTACIÓN DEL BIOGÁS _ 27
FIGURA 3. SUPERFICIE MUNDIAL CULTIVADA POR LOS PRINCIPALES PAÍSES PRODUCTORES DE ORNAMENTALES, 2004. ______________________ 51
FIGURA 4. VALOR DE LA PRODUCCIÓN DE LOS PRINCIPALES PAÍSES PRODUCTORES DE FLORES DE CORTE, 2004 ____________________ 52
FIGURA 5. PRINCIPALES PRODUCTOS DE FLORES BOLIVIANAS EXPORTADAS EN EL AÑO 2010 EXPRESADAS EN DÓLARES ________________________ 56
FIGURA 6. COMPORTAMIENTO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ______________________ 72
FIGURA 7. COMPORTAMIENTO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTTE, DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ____________________________________________________________ 73
FIGURA 8. COMPORTAMIENTO ECONÓMICO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA _________ 75
FIGURA 9. COMPORTAMIENTO ECONÓMICO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTTE, DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA _______________________________________________________ 76
FIGURA 10.MEDIA DEL NÚMERO DE PLANTAS AFECTADAS POR PULGONES EN EL CULTIVO DE LA ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTT EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ______________________ 80
FIGURA 11.MEDIAS DEL NÚMERO DE PLANTAS AFECTADAS POR OÍDIO EN EL CULTIVO DE LA ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTT EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ________________________________ 83
FIGURA 12.MEDIAS DEL NÚMERO DE BOTONES FLORALES ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ___________ 85
FIGURA 13.MEDIAS DEL DIÁMETRO DE LA FLOR ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ____________________________ 88
FIGURA 14.MEDIAS DE LA LONGITUD DE LA FLOR ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ____________________________ 90
FIGURA 15.MEDIAS DEL DIÁMETRO DEL TALLO ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ____________________________ 92
FIGURA 16.MEDIAS DE LA ALTURA DE TALLO DE CORTE ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO _________________________ 94
vii
ÍNDICE DE FOTOS
FOTO 1. ROSA ROJA - VARIEDAD CHARLOTT. _____________________________ 6
FOTO 2. VÁLVULA DE SEGURIDAD DEL BIODIGESTOR. ____________________ 21
FOTO 5. COSECHA DE ROSAS DE LA VARIEDAD CHARLOTT. ________________ 35
FOTO 6. ROSA DE CORTE DE LA VARIEDAD CHARLOTT. ____________________ 36
FOTO. 7 CARACTERÍSTICAS DE LA ROSA DE CORTE DE LA VARIEDAD CHARLOTT. __________________________________________________ 40
FOTO 8. ARAÑA ROJA Y SÍNTOMAS EN LA PLANTA POR SU ATAQUE. ________ 41
FOTO 9. DEPREDADOR DE ARAÑUELA AMBLYSEIUS CALIFORNICUS. _________ 42
FOTO 10. PULGÓN Y SÍNTOMAS EN LA PLANTA POR SU ATAQUE. ____________ 43
FOTO 11. DEPREDADORES NATURALES DEL PULGÓN. _____________________ 44
FOTO 12. SÍNTOMAS DEL ATAQUE DEL TRIPS EN LAS ROSAS. _______________ 45
FOTO 13. SÍNTOMATOLOGÍA DE LA PRESENCIA DEL HONGO DEL OIDIO EN EL ROSAL. _____________________________________________________ 46
FOTO 14. EFECTO DEL OIDIO EN ROSAS _________________________________ 47
FOTO 15. APLICACIÓN FOLIAR DEL BIOL __________________________________ 60
FOTO 16. MEDICIÓN DE LA LONGITUD DEL BOTÓN FLORAL CON EL USO DEL VERNIER. ____________________________________________________ 64
FOTO 17. MEDICIÓN DEL DIÁMETRO DEL BOTÓN FLORAL CON EL USO DEL VERNIER. ____________________________________________________ 65
FOTO 18. MEDICIÓN DEL DIÁMETRO DE LA FLOR CON EL USO DEL VERNIER. __ 66
FOTO 19. MEDICIÓN DE LA LONGITUD DE LA FLOR CON EL USO DEL VERNIER. 66
FOTO 20. MEDICIÓN DE LA ALTURA DE TALLO DE CORTE EN UNA ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTT ________________________________________ 67
FOTO 21. DESCARTE DE ROSAS AFECTADAS POR LA HELADA EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD DE AGRONOMÍA DE LA UMSA _______________________________________________________ 74
Resumen La producción de rosas en La Paz se ve afectada por problemas fitosanitarios
ataque de insectos y enfermedades. Ante estos problemas se hace el uso
frecuente de los plaguicidas que dañan nuestro medio ambiente y a la vez dañan
la salud del productor. Por tal motivo en este trabajo de investigación se propone
el uso de Biol en el cultivo de la rosa, ya que se indica que este tiene un efecto de
repelente contra insectos y que ayuda a mejorar la productividad de las cosechas.
La investigación se realizó en el Centro Experimental de Cota Cota dependiente
de la Facultad de Agronomía de la UMSA, ubicado a una altitud de 3445 m.s.n.m.,
situado a 16º32’04’’ Latitud S. y 68º 03’44’’ Longitud W. El diseño del ensayo
pertenece a un Diseño de Bloques al Azar Bifactorial, con cuatro bloques y ocho
tratamientos. Para lo cual se utilizaron plantas de rosa de un año de edad, a las
que se les aplico diferentes niveles de Biol (1 litro de Biol, diluido en 20 litros de
agua; 1 ½ de Biol diluido en 20 litros de agua; 2 litros de Biol diluidos en 20 litros
de agua; y el testigo al cual no se le aplico Biol) con dos diferentes formas de
aplicación, una de las aplicaciones se realizo de forma foliar con la mochila
fumigadora y la otra forma de aplicación se hizo como riego por superficie
utilizando bidones de plástico. Posteriormente se realizo el seguimiento del efecto
del Biol en las rosas midiendo las diferentes variables de respuesta (incidencia de
pulgones y oídio en el rosal, diámetro del botón floral, flor y tallo, longitud del
botón floral y flor, número de botones florales por planta y finalmente altura de
tallo de corte) tres veces a la semana durante seis meses. Al finalizar el trabajo se
observo que el Biol no es efectivo contra el ataque de pulgones, sin embargo si
ayuda bastante para fortalecer a la planta contra el ataque de oídio, ya que en el
tratamiento ocho (2 litros de Biol diluidos en 20 litros de agua y aplicado como
riego por superficie) no se encontró plantas infectadas con oídio. En cuanto a las
demás variables de respuesta se observa que el Biol tuvo poca influencia en estas
ya que las medias no difieren mucho entre sí. Esto exceptuando la variable de
respuesta del diámetro del tallo de corte donde se observa una cierta diferencia
entre las medias obtenidas para esta variable.
UMSA FACULTAD DE AGRONOMÍA – CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TESIS DE GRADO Página 1
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
1. INTRODUCCIÓN
Los rosales se han utilizado desde tiempos antiguos y han dado lugar a
numerosas variedades muy diferenciadas entre sí: los hay arbustivos,
semiarbustivos, trepadores, tapizantes y en arbolito; de floración primaveral,
estival, otoñal y permanente; de flores grandes, dobles, antiguas, pequeñas; de
color rosa, blanco, rojo, anaranjado, amarillo (Sánchez, 2005).
Actualmente, las variedades comerciales de rosa son híbridos de especies de rosa
desaparecidas. Prácticamente es la planta más utilizada en jardines particulares,
mansiones, patios pequeños y grandes jardines públicos, debido a su gran belleza
y a su gran diversidad de tipos, formas, colores y épocas de floración (Sánchez,
2005).
Una de las cualidades más apreciadas de la rosa es que, es capaz de producir flor
todo el año, aunque en pleno invierno requiere el auxilio del invernadero. La rosa
se cultiva al aire libre o en invernadero, con o sin calefacción (Guerrero, 1987).
La mayoría de las variedades son de follaje caduco, aunque unas pocas son
perennes. Tienen hojas compuestas y espinas en troncos y hojas. Según la
variedad pueden tener un crecimiento anual de pocos centímetros o de varios
metros (Sánchez, 2005).
Las rosas pertenecen a la familia Rosaceae, que a la vez se subdivide en cuatro
subfamilias las cuales son: Subfamilia Spiroideae, Subfamilia Rosoideae,
Subfamilia Maloideae y Subfamilia Prunoideae. Con motivo de la investigación se
hará más énfasis en la Subfamilia Rosoideae, ya que dentro de esta subfamilia se
encuentra el material en estudio.
La Subfamilia Rosoideae se caracteriza por tener plantas anuales o perennes, arbustos
rara vez árboles, inermes o armados. Hojas alternas, trifoliadas o pentafoliadas,
UMSA FACULTAD DE AGRONOMÍA – CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TESIS DE GRADO Página 2
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
imparipinadas o simples. Flores con carpelos libres en el interior de un receptáculo
carnoso (cinorrodón) perígenas, con uno a dos óvulos por carpelo (la posición del
ovario tiende a ser ínfero a la madurez del fruto), fruto cinorrodón (Rojas, 2002).
Varios géneros de importancia económica, con muy pocas representantes nativas.
Rosa es el género más importante, con muchas especies: R. gallica (rosa
ornamental); R. moschata (Rosa mosqueta), cada una con muchas variedades,
entre estas están: R. canina (rosa canina) enredadera de flores pequeñas; R.
multiflora (chapi rosa) que se usa como pie de injerto (Rojas, 2002).
1.1 ANTECEDENTES Según (Guerrero,1987) menciona que hace miles de años que la rosa es cultivada
y se hibrida muy fácilmente, por lo que se han transformado mucho y alejado
radicalmente en su aspecto físico de los tipos silvestres.
Hasta finales del siglo XVII, todos los tipos de rosas cultivadas solo florecían una
vez en primavera, y todavía no presentaban la característica refloreciente. Las
razas de rosa refloreciente nacen en Europa en 1842 y se obtienen a partir de
hibridaciones de las rosas de Bengala y de la rosa de té, ambas de procedencia
oriental.
A continuación se enumeran las razas de rosas que dieron lugar, por sucesivas
hibridaciones, a los tipos cultivados actualmente:
- Rosa de té (Rosa indica fragans o Rosa odorata)
- Rosa de Bengala (Rosa bengalensis)
- Rosa híbrida refloreciente (Rosa híbrida bifera)
- Rosa híbrida de té (Rosa indica fragans híbrida)
- Rosa prenetiana (Rosa penetriana)
- Rosa polyantha (Rosa multiflora)
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TESIS DE GRADO Página 3
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Los cultivares comerciales actuales de rosa son híbridos de las especies de rosa
desaparecidas hace varias generaciones. Dependiendo del sistema taxonómico
seguido, el híbrido de té de hoy día nos lleva a sus ancestros, la Rosa gigantea y
R. chinensis, que fueron híbridas en China antes de 1800 para producir la Té de
China o Rosa de China (Larson & Raymond, 1988).
1.2 JUSTIFICACIÓN El Biol es un abono liquido de bajo costo, ecológico compatible con el medio
ambiente y no contamina, ni daña los suelos por tanto; puede ser utilizado en los
cultivos por los agricultores para evitar el daño de la producción por efecto de los
cambios bruscos del clima, como ser las heladas que dañan gran parte de los
cultivos en el altiplano paceño. A si mismo este biofertilizante ayuda a mejorar la
producción y productividad de las cosechas.
1.3 PROBLEMA La producción de rosas en La Paz se ve afectada por problemas fitosanitarios
como es el caso del ataque de insectos como afidos o pulgones y enfermedades
como oídio. Para erradicar estos problemas se hace el uso frecuente de los
plaguicidas que dañan nuestro medio ambiente y a la vez dañan la salud del
productor. Por tal motivo el presente trabajo pretende encontrar la solución ante
estos dos problemas que aquejan tanto a los productores de rosas, ya que el Biol
es una sustancia orgánica que no daña al medio ambiente y tiene las siguientes
ventajas:
• Acelera el crecimiento y desarrollo de la plantas.
• Mejora la producción y productividad de las cosechas.
• Aumenta la resistencia a plagas y enfermedades (mejorando la actividad de los
microorganismos benéficos del suelo y ocasiona un mejor desarrollo de raíces,
en hojas y en los frutos.
UMSA FACULTAD DE AGRONOMÍA – CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TESIS DE GRADO Página 4
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
• Aumenta la tolerancia a condiciones climáticas adversas (heladas, granizadas
y otros)
• Es ecológico, compatible con el medio ambiente y no contamina el suelo.
• Es económico.
• Acelera la floración
• Favorece en rebrote después del trasplante.
• El N que contiene se encuentra en forma amoniacal que es fácilmente
asimilable por la planta.
1.4 OBJETIVOS 1.4.1 Objetivo General - Incorporar el Biol por niveles aplicando en rosas de la variedad Charlott en
ambientes controlados
1.4.2 Objetivos Específicos - Evaluar el efecto del Biol en la incidencia de plagas y enfermedades en el
cultivo de la rosa.
- Determinar el efecto del Biol en el número de botones florales obtenidos por
planta de rosal.
- Determinar el efecto del Biol en cuanto a las normas de calidad de la rosa para
la venta en el mercado.
1.5 HIPÓTESIS - La aplicación de Biol como abono orgánico en el rosal, no afecta el desarrollo
de la planta como tampoco en la parte fitosanitaria.
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TESIS DE GRADO Página 5
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Los rosales son de porte frondoso, de tipo arbustivo o sarmentoso, con ramas
semileñosas y espinosas, raramente inermes. Las hojas caducas son estipuladas,
compuestas, imparipinadas con tres, cinco o siete foliolos, más o menos ovalados,
con la nervadura del envés sobresaliente. Las flores son terminales solitarias o,
más raramente, reunidas en una terminación en forma de corimbo (Guerrero,
1987).
Los sépalos, pétalos y estambres están insertados en el borde de un receptáculo
floral cóncavo, en el que se encuentran los ovarios. Los sépalos son lanceolados;
los pétalos son carnosos, con uña corta; los estambres son numerosos, así como
también los pistilos. El ovario está contenido en el receptáculo; los estilos son más
cortos que las anteras y presentan un estigma alargado (Guerrero, 1987).
El tipo silvestre de rosa generalmente es de color blanco, rosado o rojo y sólo
tiene cinco pétalos. En los tipos cultivados los estambres transformados aumentan
el número de pétalos, que pueden llegar a ser más de sesenta (Guerrero, 1987).
Aproximadamente 200 especies botánicas de rosas son nativas del Hemisferio
Norte. Debido a la ocurrencia de las poblaciones híbridas encontradas en estado
silvestre, la cantidad real de las verdaderas especies no se conoce. Las rosas
tienen una inflorescencia determinada que puede asumir las formas corimbiforme,
paniculada o solitaria. Cuando las flores nacen de una en una, como en muchos
cultivares híbridos de té todavía hay botones florales no desarrollados en las axilas
de las hojas inmediatamente debajo de la flor terminal (Larson & Raymond, 1988).
Estos botones pueden desarrollarse en brotes florales cortos bajo condiciones
ambientales favorables. Los colores de la flor varían del rojo, blanco, rosa,
amarillo, naranja a lavanda con muchos matices, sombras y tintes entre ellos. Las
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
POR ESTACA: Las estacas se seleccionan a partir de vástagos florales. Pueden
utilizarse estacas con 1,2 ó 3 yemas.
La base se sumerge en un compuesto a base de hormonas enraizantes antes de
proceder a la colocación en un banco de propagación con sustrato de vermiculita
con una separación de 2.5 4 cm entre plantas y 7,5 cm entre hileras.
Debe mantenerse una humedad adecuada y una temperatura en el medio de 18 -
21°C. En estas condiciones el enraizamiento tiene lugar a las 5 – 6 semanas,
dependiendo de la época del año y de la naturaleza del vástago. Posteriormente
se procede al trasplante a macetas de 7,5 cm o directamente al invernadero.
El problema de este sistema es que las plantas con raíz propia son bastante
pequeñas y necesitan un tiempo considerable para que la planta crezca lo
suficiente para que se comiencen a recolectar las flores.
POR INJERTO DE VARETA: El injerto de vareta o injerto inglés, rara vez se
utiliza para la producción comercial de flor de corte, ya que también requiere
demasiado tiempo. POR INJERTO DE YEMA: Para el injerto de yema el patrón más común es Rosa
manetti y ocasionalmente Rosa odorata. El injerto normalmente se realiza a mitad
de junio, cuando ya hay suficiente enraizamiento y la corteza se puede pelar
fácilmente. 2.4 FISIOLOGÍA DE LA PRODUCCIÓN
La actividad vegetativa del rosal empieza, después de pasar por un periodo de
reposo, con la formación de las yemas, el desarrollo de las ramas y tallos, la
formación y crecimiento de los botones florales y finalmente la floración; mientras
esta dura, la actividad vegetativa se detiene y cuando termina la floración vuelve a
reemprenderse, vuelve a florecer y así sucesivamente, mientras las condiciones
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ambientales sean favorables, de lo contrario, la planta pierde sus hojas y entra en
estado de reposo o letargo. Un rosal con vegetación rápida puede dar una
floración cada dos meses; en invernadero es posible obtener hasta seis
floraciones en un año (Guerrero, 1987).
2.5 CULTIVO EN INVERNADERO
Con este cultivo se consigue producir flor en épocas y lugares en los que de otra
forma no sería posible. Los invernaderos deben tener grandes dimensiones (50 x
20 y más), la luz debe ser adecuada, la altura tiene que ser considerable y la
ventilación en los meses calurosos debe ser buena. Es recomendable la
calefacción durante el invierno, y la instalación de mantas térmicas para la
conservación de calor durante la noche (Sánchez, 2005). La floración se halla estrechamente relacionada con la iluminación, resulta más
prolífica durante los meses estivales, cuando los precios son relativamente bajos.
Para conseguir los mejores resultados durante el invierno y comienzos de
primavera, cuando los precios son más altos, resulta esencial elegir un lugar con
buenas condiciones de luz (Harrison, 1985 et al.).
2.5.1 Temperatura Los rosales son muy rústicos y resisten la sequía; también soportan temperaturas
inferiores a los 0°C, pero los botones florales y las flores mueren. La temperatura
mínima es de 5 ó 6 °C; para formar el botón floral requieren de 12 a 14 °C. En el
invernadero, las temperaturas óptimas para el cultivo de la flor son una mínima
durante el día de 16 a 18 °C, y por la noche de 10 a 12 °C, debiéndose aumentar
en unos tres grados después del corte de la flor (Guerrero, 1987).
Los rosales prefieren exposición soleada, con mucha luz. En zonas poco
luminosas, con lluvias insistentes, las flores pierden la vivacidad de sus colores.
Necesita cierta humedad atmosférica (65 a 70%), aunque si esta es excesiva
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proliferan las enfermedades producidas por hongos. En el invernadero, deben
mantenerse los niveles de humedad indicados, salvo cuando se quiera incidir
sobre el brote de las yemas, en el que se elevara a 80 a 90% (Guerrero, 1987).
La aireación de los invernaderos debe ser graduable, bien de manera natural -
mediante aberturas -, bien de manera artificial – a través de ventiladores o
extractores -, ya que de esta manera se evitan altos contenidos de humedad
(Guerrero, 1987).
Durante la temporada de crecimiento, una temperatura demasiado elevada,
determina la apertura de los capullos dando lugar a flores de tamaño pequeño y
colores más diluidos, exhibiendo unos vástagos tiernos y débiles. La baja
temperatura es causa de un lento desarrollo, así como de la formación de tallos
cortos, aunque el color de la flor se encuentra intensificado (Harrison, 1985 et al.).
La temperatura óptima de la noche es aproximadamente de unos 17 °C, pudiendo
elevar o disminuir para acelerar o retardar el desarrollo como un medio de regular
la época de producción. Se puede permitir que la temperatura durante el día se
eleve de 4 a 6° C por encima de la cifra utilizada durante la noche, pero será
preferible que no llegue a exceder de los 24 °C (Harrison, 1985 et al.).
2.5.2 Luz
Aparentemente no tiene acción alguna la duración del día sobre la iniciación de las
yemas, la cual se presenta a lo largo de todo el año. Sin embargo la producción
floral se encuentra estrechamente relacionada con el nivel de glúcidos existentes
en la planta y puesto que los mismos dependen de la Fotosíntesis, la cantidad
total de iluminación recibida tiene un efecto bien marcado sobre la producción
(Harrison, 1985 et al.).
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2.5.3 Suelo Se consiguen a veces resultados satisfactorios sobre una amplia serie de suelos,
siempre que estos presenten un perfecto drenaje y una excelente estructura física.
Estas dos cuestiones son las más importantes durante toda la vida de la planta, ya
que en el periodo de producción, el suelo no puede ser objeto de mejoras
mediante labores de cultivo, por lo que si su estructura es ya de por si pobre, la
práctica de riego durante un largo periodo de tiempo, será motivo de una
compactación de la superficie y de una falta de aireación (Harrison, 1985 et al).
Resulta mucho mejor un suelo ligeramente ácido, con un pH de 6,0 a 6,5. Se
evitarán aquellos que tengan reacción alcalina, debido al riesgo de presentarse
una clorosis inducida por la cal y por la misma causa se evitará la utilización de
aguas que contengan carbonatos de calcio (Harrison, 1985 et al.).
Es conveniente controlar los parámetros de pH y conductividad eléctrica de la
solución del suelo. El pH puede regularse con la adición de ácido. Si el pH del
suelo tiende a aumentar, la aplicación de sulfato de hierro da buenos resultados
(Sánchez, 2005).
Puesto que los rosales permanecen en el mismo terreno muchos años, (seis o
más) éste debe ser profundo para permitir que las raíces se extiendan. El suelo
debe ser permeable y aireado, y si es necesario se construirán drenajes para
evitar posibles excesos de agua y poder efectuar lavados del suelo, si en él
aumenta la concentración de sales. El rosal prefiere suelos arcillosos, neutros y
moderadamente calcáreos (máxima cantidad de caliza activa, el 10%), con un pH
de 6 a 7. La concentración de sales del terreno no debe ser superior a 2%
(Guerrero, 1987).
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2.5.4 Agua
Los suelos y las aguas que se suministran no deben contener cantidades
indebidas de sales solubles y deberán hallarse libres de metales tóxicos (por
ejemplo, las que proceden de las aguas residuales de las industrias o otros
orígenes), para los cuales, resultan los rosales sumamente susceptibles (Harrison,
1985 et al.).
2.6 LABORES CULTURALES
2.6.1 Preparación del Terreno
Para la preparación del terreno se quitara toda aquella planta que haga
competencia a nuestro cultivo principal. Por otra parte se procederá a quitar toda
la maleza que exista en el terreno donde se va a hacer la plantación de rosales, ya
que muchas veces estas son portadoras de plagas y enfermedades.
2.6.2 Labor de Fondo La profundidad de labor de fondo depende del tipo de portainjerto y de la duración
que vaya a dársele al cultivo. Normalmente, suele efectuarse a una profundidad de
60 a 80 cm (Guerrero, 1987).
2.6.3 Aporte de Materia Orgánica y Abonado de Fondo
Después de la desinfección del suelo y antes de la plantación, se aplicará la
materia orgánica, que debe estar bien descompuesta; la dosis puede variar entre
20 y 25 Kg/m2. Se recomienda añadir turba de 5 a 10 Kg/m2, seguidamente se
ajustarán los contenidos de ácido fosfórico y óxido potásico, según los resultados
de los análisis químicos del suelo (Guerrero, 1987).
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2.6.4 Mullido Los mullidos conservan también el agua y esto puede resultar beneficioso, aun en
los casos de terreno de un drenaje deficiente, debido a que en tales
circunstancias, las raíces de la planta se encuentran en su casi totalidad
confinadas a las capas superiores, por lo que secan rápidamente cuando el tiempo
es caluroso (Harrison, 1985 et al.).
Por otra parte, debido a su naturaleza esponjosa los mullidos absorben
rápidamente la humedad durante el humedecimiento y la evaporación de estos
durante el tiempo caluroso contribuye a mantener la humedad atmosférica.
Finalmente, cuando se utiliza estiércol, se proporciona a las plantas una fuente
sustancial de nutrientes en forma gradualmente asimilable (Harrison, 1985 et al.).
2.6.5 Plantación La época de plantación va de noviembre a marzo. Se realizará lo antes posible
para evitar el desecamiento de las plantas, que se recortan 20 cm; se darán riegos
abundantes (100 litros de agua/m2), manteniendo el punto de injerto a 5 cm por
encima del suelo (Sánchez, 2005).
Se suele plantar en líneas paralelas de dos o de cuatro filas. Cuando se planta en
dos líneas, se deja 60 cm entre líneas y dentro de una línea las plantas se colocan
distanciadas 20 cm. Cuando se planta en cuatro filas, entre cuatro líneas se deja
40 cm y entre plantas de una misma línea se dejan 20 cm; cada cuatro filas se
deja un pasillo más ancho de unos 80 cm. Esta disposición nos proporciona una
densidad de seis a ocho plantas por metro cuadrado (Guerrero, 1987).
Antes de plantar, debe rebajarse la planta, esto es, se reduce la parte aérea de las
ramas más robustas. Se suele menguar tres ramas, que se dejan con tres o cuatro
nudos. También conviene cortar las raíces, porque de esta manera se favorece el
enraizamiento (Guerrero, 1987).
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La plantación se realiza con el terreno seco, ya que si se encuentra húmedo las
raíces pueden quedar afectadas. Una vez colocados los rosales, se procede a
regarlos ligeramente (Guerrero, 1987).
2.6.6 Riego Se aplicará al comienzo de cada temporada una suficiente cantidad de agua,
antes de iniciar el desarrollo de las plantas para conseguir que el terreno posea la
cantidad justa de su capacidad de saturación del suelo (Harrison, 1985 et al.).
Se incrementa el riego a medida que el tiempo se va haciendo más caluroso, pero
la práctica de humedecer intensamente por encima al cultivo en verano, hace que
sea innecesario aplicar frecuentemente grandes cantidades de agua. Al final de la
temporada, se reduce gradualmente el riego y por regla general se interrumpe en
el momento en que el cultivo entra en el periodo de letargo invernal (Harrison,
1985).
El rosal no necesita demasiada agua. Los aportes estarán en función del tipo de
suelo, de la época del año de la zona y de las técnicas de cultivo empleadas. En
principio, es suficiente aportar treinta litros por metro cuadrado una vez a la
semana en invierno y dos en verano. El sistema de riego más adecuado es el
localizado mediante microaspersores. (Guerrero, 1987).
2.6.7 Fertilización La permanente sustracción de nutrientes del suelo por parte de la planta, debe
reponerse a fin de mantener la fertilidad. Los abonos deben tener N/P/K, que
pueden ser de acción lenta o rápida, mineral u orgánica. El estiércol, tiene la
ventaja de ser rico en todos los elementos necesarios, pero su inconveniente
reside en el grado de impurezas que aporta (semillas de malezas) Su acción es
más lenta, por eso debe aplicarse con anticipación. Debe ser incorporado bien
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descompuesto para que no fermente, ya que al alcanzar temperaturas muy
elevadas puede matar a la planta (Lake, 2010).
Es necesario que al iniciare la floración y durante la misma, los rosales
encuentren en el suelo los elementos que requieren en condiciones de ser
asimilables. Luego de formados los primeros pimpollos se deberá comenzar con
la aplicación de abonos líquidos, de acción rápida, el que se proporcionará en
forma semanal, mientras dure la floración o refloración (Lake, 2010).
Se hade tener en cuenta que el rosal es un arbusto vigoroso y frondoso al que se
le exige una producción constante, por lo que debe cuidarse el aporte de
nutrientes. Las necesidades son diferentes para cada variedad; por otro lado
también dependen de la edad del cultivo y del tipo de portainjertos (Guerrero,
1987).
Al iniciar el cultivo y según sean los contenidos de nutrientes en el suelo, datos
que nos proporcionará su análisis químico, se efectuarán los aportes de materia
orgánica y abonos minerales. Se considera que un suelo está equilibrado en
nutrientes cuando presenta de 1,3 a 1,5 % de nitrógeno total, un 0,3 a 0,5 % de
ácido fosfórico y un 0,5 y 0,7 de potasio intercambiable. (Guerrero, 1987).
Después a lo largo de todo el cultivo, se suministrará el abonado de
mantenimiento. Los rosales en los cultivos actuales – continuados, con altos
rendimientos que varían de catorce a veinte cinco flores por pie y por año -,
extraen del suelo cada año 100 g/m2 de nitrógeno, 25 g/m2 de ácido fosfórico, 100
g/m2 de óxido potásico y 20 g/m2 de óxido de magnesio (Guerrero, 1987).
Muchas veces, los rosales presentan carencias de hierro, sobre todo cuando los
suelos son húmedos y fríos. Esto se soluciona aplicando hierro en forma de
quelatos. También es sensible a las carencias de magnesio, que pueden
repararse aportando óxido de magnesio (Guerrero, 1987).
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2.6.7.1 El Uso de Fertilizantes Orgánicos y Minerales en Bolivia El empleo de abonos orgánicos (estiércoles y residuos vegetales) es una práctica
corriente en el Altiplano y los Valles. Según datos disponibles, existe una
producción anual alrededor de 15 millones de toneladas de estiércol de diferentes
fuentes y 250.000 toneladas de residuos agroindustriales (Tabla 1) (FAO &
SNAG).
Tabla 1. Producción anual de abonos orgánicos a partir de estiércoles y residuos agroindustriales en Bolivia
Producción anual de abonos orgánicos a partir de estiércoles y residuos agro industriales en Bolivia
Periodo 1985
Estiércoles: Número de cabezas Producción en toneladas de materia seca
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Total producción potencial anual 14.251.100
Residuos agroindustriales Producción el toneladas de materia seca
Bagazo de Caña de Azúcar 227.000
Chala de Arroz 27.000
Total producción anual de residuos agroindustriales 254.000
La tasa de crecimiento de la producción pecuaria, arroz y de la caña de azúcar entre los años 1985 a 1994, es casi cero; consecuentemente los datos de la producción de abonos orgánicos se mantienen en el presente cuadro
Fuente: Villarroel – AGRUCO – Cochabamba (1985)
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
2.6.7.2 Abonos Orgánicos Existen dos grandes tipos de abonos orgánicos: los abonos verdes y los abonos
orgánicos fermentados. Dentro de los abonos verdes están las leguminosas que
ayudan a producir los nutrientes necesarios a otras plantas más grandes. En los
abonos orgánicos fermentados existen dos categorías: los sólidos y los líquidos.
Dentro de los sólidos se encuentra el compost, bokashi, humus de lombriz y el
estiércol. En los líquidos están los biofertilizantes (Sánchez, 2003).
Como es sabido, el estiércol es el conjunto de deyecciones de distintos animales
agropecuarios, convenientemente fermentado en el establo o en el estiercolero, en
cuyo seno a menudo se encuentra parte del lecho o cama de los establos de la
ganadería (principalmente paja) (Lorente, 1997).
Según (Lorente, 1997) el estiércol como toda materia orgánica, aporta al suelo
estructura, capacidad de retención de agua y nutrientes y las unidades fertilizantes
liberadas cuando este se mineraliza. Además contribuye a que los
microorganismos del suelo mantengan una población aceptable (un suelo sin vida
microbiana es un suelo muerto). En la Tabla 2 se muestra la producción y
composición del estiércol de distintos animales del ganado.
Tabla 2. Producción y composición del estiércol de diferentes animales
Según (Harrison, 1985 et al.) las características que deben cumplir los rosales y
las rosas para flor cortada son:
PLANTA: debe ser vigorosa, con ramas rectas y rígidas, sin muchas espinas;
adaptabilidad al corte de la flor y capacidad de reprender la vegetación después
del corte; buena capacidad para formar yemas basales; abundante floración y
buena capacidad para reflorecer (Foto 7).
1 En algunos casos la apertura de flor está sujeta a petición del cliente. 2 Se refiere a la longitud medida desde la base de los pétalos, hasta el borde superior de los mismos
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UMSA FACULTAD DE AGRONOMÍA – CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TESIS DE GRADO Página 48
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
2.7 ECONOMÍA EN LA FLORICULTURA A NIVEL INTERNACIONAL 2.7.1 Producción de Ornamentales a Nivel Internacional
La producción de ornamentales en el mundo se ha incrementado notablemente en
volumen y valor de producción; así como en la especialización y comercialización.
Para lograr tener éxito en la producción de ornamentales es necesario: producir
con calidad, tener productos homogéneos y estandarizados, cumplir con
volúmenes de producción y tener canales de distribución y comercialización
(FUNPROVER, 2008).
Los países líderes en la producción de flores se caracterizan por tener tecnología
para producir, buena organización de productores, realizan un manejo adecuado
en cosecha y pos cosecha, altos estándares de calidad y buenos canales de
comercialización. A nivel mundial, Holanda es el principal productor y comercializador
de flores, seguido de Colombia, La Unión Europea, Ecuador y Kenia (Tabla 9). Otros
países como Israel, Italia y Tailandia están tomando importancia (FUNPROVER, 2008).
Tabla 9. Principales países exportadores de flores en el Mundo
(en Millones de dólares) País/ Año 2000 2001 2002 2003 2004
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TESIS DE GRADO Página 64
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
de cada unidad experimental, cada unidad experimental contaba con 15 plantas
de estudio y cuatro repeticiones por tratamiento.
3.9.2 Incidencia de Oídio en las Plantas de Rosa (%).
Al igual que para el caso de la incidencia de pulgones en las rosas, se procedió a
observar si las plantas del rosal presentaban el hongo en tallos, hojas, flores y
botones florales. Luego de esto se siguió con la observación de cuantas plantas
fueron atacadas por el oído sobre el total de cada unidad experimental, cada
unidad experimental contaba con 15 plantas de estudio y cuatro repeticiones por
tratamiento.
3.9.3 Número de Botones Por Planta (Unidades).
Para esto se mantuvo un registro del número de botones florales que se produjo
en la planta durante el tiempo que duro la investigación de campo.
3.9.4 Longitud del Botón Floral (cm).
Se midió con ayuda del calibrador desde la base de la del botón floral hasta el
borde superior del mismo (Foto 16).
Foto 16. Medición de la longitud del botón floral con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA
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TESIS DE GRADO Página 65
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
3.9.5 Diámetro del Botón Floral (cm).
Tanto el diámetro del botón floral como la longitud de este se tomó cuando el
mismo tenía el diámetro del tamaño de una semilla de arveja aproximadamente
con ayuda de un calibrador (Foto 17).
Foto 17. Medición del diámetro del botón floral con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA
3.9.6 Diámetro de la Flor (cm).
El diámetro de la flor se registró desde el momento en el que la flor estaba lista
para su cosecha hasta el momento de apertura máxima de la flor. Esto se realizó
con la ayuda de un calibrador con el cual se midió la cabeza floral (Foto 18).
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TESIS DE GRADO Página 66
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Foto 18. Medición del diámetro de la flor con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA
3.9.7 Longitud de la Flor (cm).
La longitud de la flor se registró desde el momento en el que la flor estaba lista
para su cosecha hasta el momento de apertura máxima de la flor. Esto se realizó
con la ayuda de un calibrador con el cual se midió desde la base de la flor hasta
el borde de los pétalos de la corola (Foto 19). Foto 19. Medición de la longitud de la flor con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA
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TESIS DE GRADO Página 67
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
3.9.8 Consistencia del Tallo (cm).
Se evaluó con la siguiente categoría: Consistente que corresponde a los tallos con
diámetros de 0.80 a 1 cm, Medianamente Consistente aquellos tallos que tienen
un diámetro de tallo que corresponden al rango de 0.70 a 0.60 cm y no consistente
son aquellos diámetros menores a 0.60 cm. Para esto se utilizó el vernier o
calibrador con el que se midió el diámetro del tallo en el momento de cosecha de
la flor.
3.9.9 Altura del Tallo de Corte (cm).
Para la altura de tallo de corte se utilizó una cinta métrica, midiendo el tallo desde
la base de la flor hasta el final del tallo de la flor ya cosechada (Foto 20).
Foto 20. Medición de la altura de tallo de corte en una rosa de la variedad Charlott
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TESIS DE GRADO Página 68
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
3.10 ANÁLISIS ECONÓMICO
Tabla 14. Costos de producción del módulo rosas en la Estación
Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA
Superficie (m2) 424,88 m2
Costo de la rosa = 3 Bs/ unidad
N° de trabajadores Bs/ciclo Bs/m2
Trabajadores preparación del sustrato
8 141,63 0,33
Turba 24,00 Tierra negra 18,00 Estiércol de oveja 18,00 Biol - Abono orgánico líquido
84,80 0,92
Plantas de rosal 78,13 Alquiler 360,47 0,85 Agua 229,43 1,35 Electricidad 150 0,35 Sueldo trabajadores 1 trabajador 1 2039,42 4,80 1 técnico 1 3840 9,04 Carpa con callapos 63,63 Sistema de riego 0,70 Plaguicidas 8554,63 6,71 Capuchón para rosa y cinta de agua
989,44 0,59
Herramientas 10,00 Pasajes 288 0,97 Costo total (Bs/m2) 238,36
Ingresos (Bs/m2) 62
Costo total Bs/ año 95105,34Ingresos Bs/año 110640,24B/C 1,16
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TESIS DE GRADO Página 69
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Tabla 15. Costos de producción del módulo rosas en la Estación Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA
ITEM Unidad Cantidad Costo Unitario
Costo total Bs
Cinta de riego metro 424,58 2,2 934,076 Acoples pieza 6 2 12 Politubo metro 40 12 480 Filtro pieza 1 199 199 Regulador de presión pieza 1 240 240 válvula de aire pieza 1 200 200 Tees pieza 6 3 18 Llaves de paso pieza 4 12 48 Codos pieza 4 2 8 Accesorios pieza 1 240 240 TOTAL 2379,08
En la Tabla 14 se observa que el beneficio/costo es de 1.16 % para la carpa de
rosas de 424,88 m2, es decir con un pequeño ingresos para el productor. Esto se
debe a que gran parte del gasto es debido a la adquisición de plantas de rosal, la
construcción de la infraestructura y la instalación del sistema de riego. Ya para
cuando empiece a haber producción este beneficio / costo se irá incrementando
poco a poco con la venta de las rosas. Porque ya no se harán gastos referidos a la
infraestructura y adquisición de plantas de rosal.
En cuanto a la Tabla 15 se tiene el costo del sistema de riego para la carpa de
424,88 m2, que comparado con la compra de plantas de rosal es mucho menor.
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TESIS DE GRADO Página 70
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Tabla 16. Costos de producción del módulo rosas en la Estación
Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA (área de estudio para la tesis)
Superficie (m2) 66.07 m2
Costo de la rosa = 3 Bs/ unidad N° de trabajadores Bs/ciclo Bs/m2
Trabajadores preparación del sustrato
1 22,02 0,33
Turba 24,00 Tierra negra 18,00 Biol - Abono orgánico líquido 84,80 0,92 Alquiler 56,05 0,85Agua 624,38 23,63Electricidad 139,95 2,12Plantas de rosal 78,13Carpa con callapos 63,63Sistema de riego 0,68Capuchón para rosa y cinta de agua
204,53 0,74
Fungicida orgánico para oidio 159,00 1,15 Herramientas 10,00Pasajes 288 6,23 Costo total (Bs/m2) 230,39
Ingresos (Bs/m2) 62
Costo total Bs/ año 13908,47Ingresos Bs/año 15007,20B/C 1,08
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TESIS DE GRADO Página 71
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Tabla 17. Costos de producción del módulo rosas en la Estación
Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA
ITEM Unidad Cantidad Costo Unitario Costo total BsCinta de riego metro 18,08 2,2 39,776 Acoples pieza 6 2 12 Politubo metro 10 12 120 Filtro pieza 1 199 199 Regulador de presión pieza 1 240 240 válvula de aire pieza 1 200 200 Tees pieza 2 3 6 Llaves de paso pieza 1 12 12 Codos pieza 4 2 8 Accesorios pieza 1 240 240 TOTAL 1076,78
En la Tabla 16 se observa que el beneficio/costo en el primer año es de 1.08 %
para el área de estudio de 66,07 m2, es decir con pocos ingresos para el
productor. Esto se debe como el caso anterior a que gran parte del gasto es
debido a la adquisición de plantas de rosal, la construcción de la carpa y la
instalación del sistema de riego. Por otra parte se observa que el beneficio / costo
es un poco más que en el caso anterior, por lo que nos conviene invertir en un
área de producción grande, para obtener mayores ingresos.
En cuanto a la Tabla 17 se tiene el costo del sistema de riego para de 66,07 m2,
que pertenece al área de estudio es mucho menor comparado con el gasto que se
hace en la compra de las plantas de rosal.
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TESIS DE GRADO Página 72
"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Figura 6. Comportamiento de la producción de rosa durante los meses de
abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota
Abril Mayo Junio Julio Agosto
U. Cosechadas Totales 92 1501 1208 98 24 U. Cosechadas 92 1445 1071 98 98
U. Descarte 0 56 137 0 0
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Figura 7. Comportamiento de la producción de rosa de la variedad
Charlotte, durante los meses de abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota
Abril Mayo Junio Julio Agosto U. Cosechadas Totales 15 220 147 21 6
U. Cosechadas 15 215 124 21 6 U. Descarte 0 5 23 0 0
De acuerdo a la Figura 6 y Figura 7 se observa que en los meses de mayo y junio
se obtuvieron los mejores rendimientos esto debido la poda de descanso realizada
durante los meses de finales de enero y principios de febrero. Juntamente con los
cuidados que se le dieron al cultivo como son riego, control de plagas y
enfermedades, fertilización, desbotonado y otros. Sin embargo también se observa
que en el mes de junio se tuvo más casos de descarte de la producción esto
debido principalmente a las condiciones climáticas como es el caso de la baja de
temperaturas que provocaron la quemadura por frio de botones que no llegaron a
desarrollarse y flores que al sufrir la quemadura por el frio ya no tienen valor
económico y se van directamente al descarte (Foto 21).
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Foto 21. Descarte de rosas afectadas por la helada en la Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA
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Figura 8. Comportamiento económico de la producción de rosa durante los
meses de abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota
Rend y Des. Abril Mayo Junio Julio Agosto U. vendidas 92 1445 1071 98 24
U. sin vender 0 56 137 0 0
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Figura 9. Comportamiento económico de la producción de rosa de la
variedad Charlotte, durante los meses de abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota
Economía de la producción Abril Mayo Junio Julio Agosto
U. vendidas 15 215 124 21 6 U. sin vender 0 5 23 0 0
De acuerdo a las Figuras 8 y 9 se puede observar que se obtuvo mejores
ganancias durante los meses de mayo y junio. Esto debido a que en mayo una
gran parte de la población lleva rosas para las imágenes de la virgen por ser su
mes de festejo en la religión católica. Por otra parte el 27 de mayo no puede pasar
desapercibido ya que es el día de mayor venta durante el mes de mayo.
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Con respecto al mes de junio, no hay muchos lugares donde se puedan adquirir
rosas y si los hay son sumamente caras debido justamente a que no se encuentra
fácilmente rosas para la compra y venta. Es por eso que este es el mes en
segundo lugar después de mayo en el que se obtuvo mayor venta de rosas hasta
antes de que bajaran las temperaturas ya que eso afecto a las ventas, porque se
tuvo que descartar varias rosas por efectos de la helada.
En cuanto a los meses de abril y julio, no hubo mucha venta porque en el mes de
abril los rosales recién empezaban a despertar de la poda de descanso y para el
mes de julio no hubo venta porque los rosales aún seguían luchando contra el frio.
En caso contrario se habría tenido una buena venta especialmente para el 23 de
julio.
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Tabla 18. Flujo de caja carpa de rosas perteneciente a la Estación Experimental de Cota Cota
Inversión Gastos
año Sist. de riego Plantas Carpa Trab. Alquiler Agua Electricidad plaguicida Biol Turba Estiercol
De acuerdo a la caja de flujo para un área de cultivo de 424,88 m2 correspondiente a la carpa de rosas perteneciente a la Estación Experimental de Cota Cota, se observa que a partir del primer año de producción se tiene ganancia.
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Tabla 19. Flujo de caja rosas Charlott perteneciente a la Estación Experimental de Cota Cota
De acuerdo a la caja de flujo para el área de estudio 66.07 m2 que corresponde a las rosas Charlott, se observa que a partir del sexto año se tiene ganancia. Por lo que la inversión es recuperada a largo plazo comparada con área de cultivo de 424,88 m2. Por lo que es mejor invertir en un área de producción mayor
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4. RESULTADOS Y DISCUSIONES 4.1 EVALUACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN LA INCIDENCIA DE PLAGAS
Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA ROSA. 4.1.1 Incidencia de Plagas El bioabono aeróbico llamado también abono líquido, producto rico en nutrientes
esenciales para los cultivos, al mismo tiempo por el contenido de insecticida
natural sirve como repelente para controlar plagas que ocasionan perjuicios
(CIPCA, 2002). La plaga que se presentó en los rosales de estudio fue el pulgón verde
(Macrosiphum rosae. Como se observa en la Figura 10 la acción de repelente
contra insectos indicada por CIPCA, 2002 no es lo suficientemente efectivo para
luchar contra los pulgones. Ya que se observa que la diferencia entre la media del
número de plantas afectadas por pulgones es mínima.
Figura 10. Media del número de plantas afectadas por pulgones en el cultivo
de la rosa de la variedad Charlott en la Estación Experimental de Cota Cota
Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1
litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie; T 5: 1 ½ litros de Biol en 20
litros de agua con aplicación foliar; T 6: 1 ½ litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de
riego por superficie; T 7: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 8: 2 litros de
Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie.
ANVA. INCIDENCIA DE OÍDIO De acuerdo a nuestra tabla del ANVA, se observa que se tiene un valor
altamente significativo para el Factor A (Niveles de Biol), por lo cual la dosis
aplicada en el rosal influye en la incidencia de oídio en los rosales. Por otra
parte se obtuvo un resultado significativo para el Factor B (Formas de
aplicación del Biol) por lo que la forma de aplicación del Biol también influye
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
en la incidencia de oídio en las rosas. Es decir ambos factores intervienen
para hacer una planta resistente o susceptible al oídio.
Tabla 21. ANVA Incidencia de oídio en el rosal
F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 2.84375 0.94791667 2.12 0.1286 NS A 3 286.84375 95.6145833 213.47 <.0001 ** B 1 1.53125 1.53125 3.42 0.0786 * AB 3 1.84375 0.61458333 1.37 0.2787 NS Error 21 9.40625 0.44791667 total 31 302.46875
CV= 15.63249
PRUEBA DE DUNCAN De acuerdo a la prueba de Duncan se observa que los tratamientos con
mayor incidencia de oídio pertenecen a los tratamientos uno (testigo) y tres
(1 litro de Biol en 20 litros de agua, con aplicación foliar). Y el tratamiento
con menor incidencia de oidio según indica la prueba de Duncan es el
tratamiento siete (2 litros de Biol en 20 litros de agua, aplicado de forma
foliar). Por otro lado si se exceptúa el tratamiento siete y se observa la
comparación de las medias entre los diferentes tratamientos, se puede ver
que aquellos tratamientos que recibieron los nutrientes que el Biol aporta a
la planta por medio del riego por superficie tuvieron mejores resultados que
aquellas plantas que fueron regadas de forma foliar con Biol. Esto debido a
que las plantas absorben mejor los nutrientes cuando estos son absorbidos
por la raíz.
Media A Tratamientos A 8.6250 1 T1 B 5.1250 2 T3 C 2.8750 3 T5 D 0.5000 4 T7
Media B Tratamientos
A 4.5000 1 T2 B 4.0625 2 T4
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1
litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie; T 5: 1 ½ litros de Biol en 20
litros de agua con aplicación foliar; T 6: 1 ½ litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de
riego por superficie; T 7: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 8: 2 litros de
Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie.
4.2 DETERMINACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN EL NÚMERO DE BOTONES FLORALES OBTENIDOS POR PLANTA DE ROSAL.
El Biol inducen la floración, tienen acción fructificante, estimulan el crecimiento de
tallos, hojas, etc. (Aparcana, 2008).
En la Figura 12 se observa que no existe mucha diferencia entre el número de
botones florales obtenidos por mata ya que al comparar las medias entre los
distintos tratamientos estas no varían demasiado. Por tanto el Biol no influye en el
número de botones florales que se obtengan por planta de rosal.
Figura 12. Medias del número de botones florales entre tratamientos al
finalizar el trabajo de campo
Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8N° botones f. 2.63 3.5 4.13 3.69 3.63 3 4 3.9 Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1
litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie; T 5: 1 ½ litros de Biol en 20
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
litros de agua con aplicación foliar; T 6: 1 ½ litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de
riego por superficie; T 7: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 8: 2 litros de
Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie.
ANVA NÚMERO DE BOTONES FLORALES POR PLANTA
Para el ANVA de la variable de respuesta que corresponde al número de
botones florales por planta se obtuvieron resultados significativos para el
Factor A (Niveles de Biol) y no significativos para el Factor B (Formas de
aplicación del Biol). Por tanto la cantidad de Biol que se utilice influye en
cierta medida en el número de botones florales que se obtiene en las
plantas de los rosales. Pero la forma de aplicación es indistinta.
Tabla 22. ANVA Número de botones florales por planta
De acuerdo a la prueba de Duncan se observa que para el diámetro del
tallo se obtuvieron resultados significativos en el Factor A (Niveles de Biol).
Por tanto la cantidad de Biol aplicada en las rosas influye para la obtención
de tallos consistentes, teniendo mejores resultados en aquellos tratamientos
donde la cantidad de Biol aplicada fue mayor.
Media A TratamientosA 0.74125 4 T7 A 0.68500 3 T5 B 0.57375 1 T1 B 0.54625 2 T3
Media A Tratamientos
A 0.65688 2 T4 A 0.61625 1 T2
Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1
litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie; T 5: 1 ½ litros de Biol en 20
litros de agua con aplicación foliar; T 6: 1 ½ litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de
riego por superficie; T 7: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 8: 2 litros de
Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie.
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
4.3.4 Altura de Tallo de Corte.
En la Figura 16 se observa las medias de los tratamientos donde el tratamiento
que obtuvo mejores resultados fue el tratamiento cinco (1 ½ de Biol en 20 litros de
agua, con aplicación foliar) alcanzando 50 cm de altura de tallo de corte. Sin
embargo si se observa la diferencia de medias entre tratamientos no existe mucha
variación entre estas. Por lo que el Biol no influyo significativamente el tallo de
corte alcanzado.
Figura 16. Medias de la altura de tallo de corte entre tratamientos al finalizar
el trabajo de campo
Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8
A. del tallo 47 46.63 48.5 49.06 50 46.75 45.88 46.25 Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1
litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie; T 5: 1 ½ litros de Biol en 20
litros de agua con aplicación foliar; T 6: 1 ½ litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de
riego por superficie; T 7: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 8: 2 litros de
Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie.
ANVA ALTURA DE TALLO DE CORTE De acuerdo al ANVA para la variable de tallo de corte se obtuvieron
resultados no significativos para ambos factores, ya que la altura de tallo de
corte no tiene mucha variación entre los tratamientos, por consiguiente el
Biol no tuvo influyo en la altura de tallo de corte alcanzado.
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"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"
ANEXO 2. GRÁFICO TEMPERATURA MÁXIMA Y TEMPERATURA MÍNIMA
ANEXO 3. GRÁFICO HUMEDAD RELATIVA MÁXIMA Y HUMEDAD RELATIVA MÍNIMA
Cálculo del SAS Clase Niveles Valores bloque 4 1 2 3 4 A 4 1 2 3 4 B 2 1 2 Número de observaciones leídas 32 Número de observaciones usadas 32
Procedimiento ANOVA
Variable dependiente: DF Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 8.81630625 0.88163062 1.30 0.2906 Error 21 14.20219063 0.67629479 Total corregido 31 23.01849687
R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE DF Media
0.383010 15.57429 0.822371 5.280313
Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F Bloque 3 1.76383437 0.58794479 0.87 0.4725 A 3 2.18830938 0.72943646 1.08 0.3796 B 1 3.19412813 3.19412813 4.72 0.0413 A*B 3 1.67003437 0.55667812 0.82 0.4957
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para DF
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.676295 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .8551 .8977 .9249 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 5.5775 8 3 A A 5.4913 8 1 A A 5.1025 8 2 A A 4.9500 8 4
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para DF
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate.
Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.676295 Número de medias 2 Rango crítico .6047 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 5.5963 16 1 B 4.9644 16 2 Procedimiento ANOVA Variable dependiente: LF Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 3.26448125 0.32644812 1.28 0.3025 Error 21 5.35644063 0.25506860 Total corregido 31 8.62092187 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE LF Media 0.378670 8.256977 0.505043 6.116563 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 2.15828437 0.71942812 2.82 0.0637 A 3 0.94938437 0.31646146 1.24 0.3200 B 1 0.00525312 0.00525312 0.02 0.8873 A*B 3 0.15155938 0.05051979 0.20 0.8965
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para LF
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.255069 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .5251 .5513 .5680 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 6.2975 8 3 A A 6.2138 8 2 A A 6.1150 8 4 A A 5.8400 8 1 Procedimiento ANOVA Prueba del rango múltiple de Duncan para LF NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.255069 Número de medias 2 Rango crítico .3713 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 6.1294 16 1 A A 6.1038 16 2
Procedimiento ANOVA Variable dependiente: DT Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 0.44940625 0.04494062 2.11 0.0722 Error 21 0.44791563 0.02132932 Total corregido 31 0.89732187 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE DT Media 0.500831 22.94285 0.146046 0.636563 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 0.03245937 0.01081979 0.51 0.6815 A 3 0.20325938 0.06775313 3.18 0.0453 B 1 0.01320312 0.01320312 0.62 0.4402 A*B 3 0.20048437 0.06682812 3.13 0.0472
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para DT
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.021329 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .1519 .1594 .1643 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 0.74125 8 4 A B A 0.68500 8 3 B B 0.57375 8 1 B B 0.54625 8 2
Procedimiento ANOVA Prueba del rango múltiple de Duncan para DT NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.021329 Número de medias 2 Rango crítico .1074
Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 0.65688 16 2 A A 0.61625 16 1 Procedimiento ANOVA Variable dependiente: NF Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 18.31250000 1.83125000 3.37 0.0091 Error 21 11.40625000 0.54315476 Total corregido 31 29.71875000 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE NF Media 0.616193 20.50756 0.736990 3.593750 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 3.84375000 1.28125000 2.36 0.1006 A 3 11.09375000 3.69791667 6.81 0.0022 B 1 0.28125000 0.28125000 0.52 0.4797 A*B 3 3.09375000 1.03125000 1.90 0.1608
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para NF
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate.
Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.543155 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .7663 .8045 .8289 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 4.1250 8 2 A A 4.0000 8 4 A A 3.6250 8 3 B 2.6250 8 1
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para NF
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.543155 Número de medias 2 Rango crítico .5419 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 3.6875 16 2 A A 3.5000 16 1
Procedimiento ANOVA Variable dependiente: HTC Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 605.562500 60.556250 0.76 0.6614 Error 21 1666.656250 79.364583 Total corregido 31 2272.218750 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE HTC Media 0.266507 18.62036 8.908680 47.84375 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 232.0937500 77.3645833 0.97 0.4233 A 3 77.3437500 25.7812500 0.32 0.8074 B 1 47.5312500 47.5312500 0.60 0.4476 A*B 3 248.5937500 82.8645833 1.04 0.3936
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para HTC
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 79.36458 Número de medias 2 3 4 Rango crítico 9.26 9.73 10.02 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 50.000 8 3 A A 48.500 8 2 A A 47.000 8 1 A A 45.875 8 4
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para HTC
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 79.36458 Número de medias 2 Rango crítico 6.550 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 49.063 16 2 A A 46.625 16 1
Procedimiento ANOVA Variable dependiente: PUL Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 17.81250000 1.78125000 8.03 <.0001 Error 21 4.65625000 0.22172619 Total corregido 31 22.46875000 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE PUL Media 0.792768 20.64123 0.470878 2.281250 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 1.59375000 0.53125000 2.40 0.0969 A 3 11.34375000 3.78125000 17.05 <.0001 B 1 2.53125000 2.53125000 11.42 0.0028 A*B 3 2.34375000 0.78125000 3.52 0.0327
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para PUL
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.221726 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .4896 .5140 .5296 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 2.8750 8 1 A A 2.7500 8 2 B 2.1250 8 3 C 1.3750 8 4
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para PUL
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate.
Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.221726 Número de medias 2 Rango crítico .3462 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 2.5625 16 2 B 2.0000 16 1
Procedimiento ANOVA
Variable dependiente: OID Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 293.0625000 29.3062500 65.43 <.0001 Error 21 9.4062500 0.4479167 Total corregido 31 302.4687500 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE OID Media 0.968902 15.63249 0.669266 4.281250 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 2.8437500 0.9479167 2.12 0.1286 A 3 286.8437500 95.6145833 213.47 <.0001 B 1 1.5312500 1.5312500 3.42 0.0786 A*B 3 1.8437500 0.6145833 1.37 0.2787
Procedimiento ANOVA
Prueba del rango múltiple de Duncan para OID
NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.447917 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .6959 .7306 .7527 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 8.6250 8 1 B 5.1250 8 2 C 2.8750 8 3 D 0.5000 8 4
Procedimiento ANOVA Prueba del rango múltiple de Duncan para OID NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.447917 Número de medias 2 Rango crítico .4921 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 4.5000 16 1 A A 4.0625 16 2