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4.2.3. Muestreo e identificación de especies fitoplanctónicas nocivas .............................. 58
4.2.4. Determinación de la producción primaria ................................................................ 60
4.3. Comunidad Pelágica ............................................................................................................................. 62
4.3.1. Dinámica del zooplancton y larvas de sardina fueguina ........................................... 62
4.3.2. Variaciones espaciales y temporales en la densidad energética de larvas de peces 64
4.3.3. Análisis de agua para microquímica de otolitos de peces nototénidos .................... 65
4.3.4. Ecología espacial de aves y mamíferos marinos ....................................................... 66
4.4. Estudios integrales ................................................................................................................................ 73
4.4.1. Monitoreo de Microplásticos .................................................................................... 73
Figura 8. Situación geográfica de los fondeos. Se muestra la isobata de 200 m.
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Figura 9. Esquema del anclaje instrumentado “F1”.
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Figura 10. Esquema del anclaje instrumentado “F2”.
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Maniobras de recuperación
Al llegar al punto teórico de ubicación del anclaje (tabla 4) se interrogó, a barco parado, el
liberador acústico mediante una unidad de cubierta TT801. En el caso del anclaje F2, fue
imposible al principio, descubriéndose después que la causa era interferencia con la sonda
multihaz de 12 kHz, que seguía encendida (ambos equipos trabajan en la misma frecuencia).
Incluso con todas las sondas acústicas desconectadas, fue necesario en ambos casos sumergir
el hidrófono 5-10 m por debajo del casco para conseguir establecer comunicación con el
liberador. El buque no contaba con una embarcación auxiliar preparada para aguas abiertas,
que hubiera ayudado en la recuperación (no hay una gaza pre-existente en la parte superior
del anclaje porque podría interferir con las mediciones), por lo que fue necesario agarrar el
anclaje con un grampín desde la banda de estribor, llevando después el cabo a popa. Usando
las pastecas del pórtico, los elementos del anclaje fueron izados y puestos en cubierta. Si bien
la maniobra tenía algunos riesgos, el Jefe de Operaciones y personal de cubierta reaccionaron
con gran profesionalidad y los instrumentos y boyas fueron embarcados sin daños dignos de
mención.
El anclaje F2 fue recuperado el día 11 de noviembre, siendo fondeado al día siguiente a
mediodía.
Anclaje F1: se recuperó el 21 de noviembre y fue fondeado el mismo día a las 20 h (hora local).
Mantenimiento de los instrumentos tras la recuperación, previo al fondeo
El detalle de las tareas fue el siguiente:
-Elementos estructurales. Chequeo de corrosión u otros desperfectos en grilletes, cabos,
cadenas, boyas y otros elementos. El deterioro de los elementos (grilletes, cabos, cadena,
giratorios) fue leve y solo requirió de cambios menores.
-ADCP TRDI: Desensamblado del ADCP de boya EB-46 y carcasa de acero. Traslado del ADCP a
laboratorio seco para apertura, chequeo, descarga de datos y cambio de pack de baterías.
Reensamblado el ADCP en la carcasa de acero inoxidable junto a baliza Iridium, se hizo rotar la
unidad sobre una estructura giratoria para verificar el compás magnético. Esta operación se
realiza en la cubierta de madera del Austral (tablones de 7 cm de espesor que ofrecen un
relativo aislamiento) y ligeramente elevado sobre ella. Tras el cambio del pack de baterías
interno, la comprobación (rutina AX del software BBTalk, TRDI) arrojó un error del compás de
23 grados, lo cual es inaceptable. Por ello, fue necesaria una calibración completa (rutina AF;
“Hard and Soft Iron”). La unidad se hizo girar 360º en 3 inclinaciones diferentes, lográndose
llegar a un error final de 2º (por debajo del umbral de 5º sugerido por el fabricante). El ADCP
fue configurado de idéntica manera al primer fondeo: ensambles de 10 min con 35 pings por
ensamble, ancho de celda de 4 m y blanqueo de 2 m; corrección por declinación magnética
acorde a fecha y ubicación, que resultó ser de 7º Este.
-Balizas Iridium: Chequeo y descarga de datos mediante conexión bluetooth. Recambio de
baterías y test en cubierta. Reensamblado en soportes de Grilon.
-Trampas de sedimento Technicap PPS 3/3: Se extrajeron los 12 colectores del carrusel
giratorio y se almacenaron en heladera hasta el desembarco. Otras 12 botellas fueron
rellenadas con una solución de formaldehído al 5% en agua de mar filtrada y tamponada con
tetraborato sódico. El motor de la trampa se programó en el laboratorio seco para girar a
intervalos de 8 días.
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-Correntómetros Aquadopp: Tras liberarlo de la aleta Aquafin, fue trasladado a local seco para
apertura de la unidad, recambio pack de baterías, chequeo general y descarga de datos. A
continuación se realizó en cubierta, y en el punto menos expuesto a materiales
ferromagnéticos posible, una calibración del compás magnético, la comprobación del
inclinómetro, el ajuste del offset de presión y finalmente la programación de la unidad para el
fondeo. Se usó una densidad de pingueo, o “mearurement load” en la terminología Nortek, del
4%.
-Microcats SBE-37-ODO: En el interior (local seco y limpio) se procedió a abrir la unidad,
reemplazar baterías y descargar datos. Se realizaron lecturas en aire para verificar el buen
estado de la celda de conductividad. El circuito interno se lavó siguiendo las indicaciones para
el sensor más delicado (sensor óptico SBE-63), consistiendo en lavados sucesivos del circuito
de bombeo con tritón 1%, lavandina diluida y agua destilada a 30 °C.
-Liberadores acústicos OCEANO 2500. Apertura y cambio de baterías, chequeo de
estanqueidad. Chequeo del mecanismo de liberación en cubierta.
-Logger de clorofila Cyclops/PME. Reparación del recubrimiento de cobre (anti-fouling).
Apertura del instrumento, descarga de datos, reprogramación y cambio baterías. Fijación a
línea con adaptadores de Grilon.
La colonización biológica (incrustaciones, bio-films) fue leve sobre los instrumentos y se limpió
cuidadosamente, particularmente en las superficies de los transductores acústicos (Aquadopp,
Workhorse).
Los relojes internos de todos los instrumentos fondeados fueron sincronizados entre sí y con
los demás equipos utilizados durante la campaña, usando como referencia la hora (GMT) de la
red del BO ARA Austral. El intervalo de muestreo para todos los instrumentos fue fijado en 10
minutos y las trampas de sedimento muestrearán a intervalos de 8 días.
Maniobra de fondeo
Para ambos anclajes el procedimiento fue el mismo. Una vez todo el material listo, el barco se
ubicó en el punto teórico de fondeo (tabla 4) y con mínima propulsión de motores, el anclaje
se puso en el agua elemento a elemento desde popa, comenzando por la flotación superior y
ayudando la maniobra desde el pórtico de popa para elevar y acompañar los elementos del
anclaje. Finalmente el anclaje quedó bien estirado a remolque, momento en el cual el lastre se
sacó con ayuda de las pastecas del pórtico rebatible y fue liberado mediante un gancho
disparador.
Se utilizó como lastre tres muertos de hormigón reforzado con hierro. Un lastre de 300 kg se
dedicó al anclaje F2 y para el anclaje F1 se utilizaron dos lastres encadenados entre sí que
sumaban un peso de 1400 kg en el aire y aproximadamente 900 kg en inmersión. La porción
terminal del anclaje constaba de cadena 19 mm y cabo dentro de un tubo Aquasystem (cuya
finalidad es aumentar la rigidez del tramo terminal y así limitar el riesgo de que se forme una
gaza al golpear el anclaje el fondo marino).
Resultados/valoración
Se puede afirmar que el primer ciclo (agosto-noviembre 2018) de fondeo y recuperación de
anclajes en el AMP Namuncurá se ha concluido con éxito. Ningún instrumento o elemento del
anclaje sufrió avería, pérdida de estanqueidad o desperfecto alguno. Con la salvedad del
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Logger de clorofila sito en el anclaje F1, cuyas baterías se agotaron un poco antes de lo
previsto (registraron datos hasta 20 de octubre), la totalidad de los instrumentos funcionaron
sin contratiempos y registraron las series temporales de datos y muestras previstas, sin
interrupciones. Igualmente los liberadores acústicos funcionaron con normalidad y los
elementos estructurales del anclaje mostraron buen estado, siendo solo necesarios algunos
pocos reemplazos de grilletes y ánodos de sacrifico.
Los datos y muestras colectadas están actualmente siendo procesados. Se ofrecen únicamente
algunos detalles sobre el desempeño de los instrumentos.
ADCP Workhorse 300 kHz
El perfilador instalado en el anclaje F1 registró ensambles de datos cada 10 minutos. El ADCP
quedó sumergido a una profundidad de 90 m y perfiló los 80 m superiores con un ancho de
celda (resolución vertical) de 4 m y distancia de blanqueo de 1.76 m. La porción del perfil de
velocidades más cercana a la superficie (aproximadamente 10 m) no ofrece datos aceptables
debido a las reflexiones de los haces acústicos con la interfaz agua-aire. A pesar de las fuertes
corrientes registradas (hasta 1.5 m/s), el ADCP permaneció verticalmente estable gracias a la
boya (EB-46, Mooring Systems) elíptica de muy bajo coeficiente de arrastre en que estaba
ensamblado. La desviación de la vertical fue de 1.2º en promedio y 5º como máximo. Se
muestran en la figura 11 algunas previsualizaciones obtenidas con el software winADCP. A
pesar de un retorno acústico relativamente bajo, la atenuación con la distancia es coherente y
en general los datos muestran una calidad aceptable, salvo muy cerca de la superficie, como
indicado anteriormente.
Son destacables las oscilaciones mareales de gran intensidad y la ciclicidad diaria en la
intensidad del eco acústico, probablemente ligada a migraciones verticales del zooplancton.
Figura 11. Previsualización de 8 días de datos (resolución 10 min) del ADCP TRDI WHS s/n
23416, fondeado en modo “upward looking” a 90 m de profundidad. Arriba, retorno acústico,
abajo módulo de la velocidad en mm/s, donde los últimos metros contiguos a la superficie del
mar han sido filtrados.
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Aquadopp 3000 La inclinación respecto a la vertical, principal parámetro a tener en cuenta para la performance de estos equipos, se mantuvo por debajo de 10º casi todo el tiempo en los correntómetros Aquadopp de ambas estaciones, superándose solo en algunos registros el umbral máximo de 20º. Las series están completas y actualmente en procesamiento. Las corrientes medidas son notablemente más intensas en F1, superando a menudo 1 m/s, mientras que en F2 se mantienen por debajo de 40 cm/s. Microcat SBE37-ODO. Los rangos de temperatura, presión y oxígeno medidos fueron coherentes con lo esperado en la zona de estudio y están siendo cotejadas con medidas simultáneas con el CTD del barco en las estaciones fijas F1 y F2. Logger de clorofila Cyclops-PME. Este equipo, sito a 93 m de profundidad, registró series continuas desde el 20 de agosto hasta el 20 de octubre. Durante la realización de la estación de perfilado repetido (estación F1, contigua al anclaje del mismo nombre) y mientras se realizaba el mantenimiento del instrumental del anclaje, se ancló el Logger a la roseta, haciendo paradas de 10 minutos (con frecuencia de adquisición de 1 min) a varias profundidades, a fin de intercalibrarlo con el fluorómetro del Rinko ASTD-102 (el cual a su vez será calibrado mediante espectrofotometría, ver sección correspondiente).
Figura 12. Anclaje F1. Series temporales de fluorescencia de clorofila (no calibrado) a 93 m.
Trampas de sedimento En las figuras 13 y 14 se muestra fotografías que ilustran preliminarmente la “serie temporal” de muestras obtenidas en orden de recolección, cubriendo el periodo de mitad de agosto a la primera semana de noviembre. En el anclaje F2 el flujo de partículas colectado es más discreto y de aspecto muy biogénico. Por el contrario en la estación F1, (donde la intensidad de la corriente es muy superior), las muestras fueron mucho más cuantiosas, lo que hace sospechar aportes de material resuspendido desde el fondo (la trampa estaba ubicada a 25 m del fondo). La serie mostrada en las figuras integra 5 días las primeras 3 botellas y 9 días de ahí en adelante.
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Figura 13. Serie de muestras de la trampa “F1”
Figura 14. Serie de muestras de la trampa “F2”
4.1.4. Mediciones radiométricas in situ
Responsable embarcado: Guillermo Ibañez
Responsable no embarcado: Sandra Torrusio
En el marco de la presente campaña, la Comisión Nacional del Espacio (CONAE) participó para realizar mediciones radiométricas in situ para caracterizar las aguas costeras y oceánicas en el contexto de la Misión satelital en desarrollo “SABIA-Mar” que estimará color del mar. Además son datos necesarios y de utilidad para correlacionar con los productos satelitales de otras misiones actualmente en órbita. En este contexto, nuestro objetivo fue realizar la caracterización radiométrica de la superficie del agua y su relación con parámetros tales como la concentración de clorofila-a y la turbidez con el fin de validar datos satelitales actuales y utilizarla para la estimación y validación de algoritmos para el proyecto SABIA-Mar.
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Metodología
En cada estación programada que estuviera hecha en horario diurno se hicieron por protocolo para cada medida 4 series de mediciones de radiancia (W/m2/nm/sr) de agua, cielo y panel de referencia (28 por estación) con un Espectroradiómetro ASD Modelo Field Spec Pro 4 cuyo rango de medición es entre 350-2500 nm y un campo de visión (FOV) de 8º. El horario recomendado de medición para esta latitud y época del año es desde las 09:30 hasta las 18:30 h. El ángulo de elevación solar mínimo es 30º. También se tomaron datos complementarios como fotos, nubosidad, oleaje, velocidad y dirección de viento, entre otras variables de importancia. Como apoyo se pudo contar con las imágenes de clorofila y temperatura superficial de agua para tener un dato comparativo. En laboratorio se calculó la reflectancia del agua en cada estación. Resultados
En total se tomaron 20 medidas en el Banco Burdwood y 9 en el Canal de Beagle y estrecho Le Maire (tabla 5). En la figuras 15 y 16 se muestra un gráfico de radiancia de agua, cielo y blanco de referencia en el AMP N-BB y uno de radiancia en dos estaciones de muestreo en el Canal Beagle, respectivamente. Una vez procesados, los datos obtenidos estarán disponibles en la biblioteca de firmas espectrales de CONAE con acceso libre. Tabla 5. Mediciones radiométricas por estación.
Fecha Estación Punto Rad Hora local
11/11/2018 EF2 BBW1 10:05
11/11/2018 EF2 BBW2 13:00
11/11/2018 EF2 BBW3 15:50
11/11/2018 EF2 BBW4 17:10
12/11/2018 EF2 BBW5 12:15
13/11/2018 E16 BBW6 9:45
13/11/2018 E21 BBW7 16:25
14/11/2018 EF24 BBW8 11:00
14/11/2018 EF24 BBW9 12:40
14/11/2018 EF24 BBW10 15:15
14/11/2018 EF24 BBW11 18:00
15/11/2018 E28 BBW12 14:20
17/11/2018 EF5 USH1 14:45
17/11/2018 EF5 USH2 16:45
17/11/2018 EF5 USH3 18:15
18/11/2018 EF5 USH4 11:45
18/11/2018 EF5 USH5 14:10
18/11/2018 EF5 USH6 16:10
19/11/2018 E3 USH7 12:40
19/11/2018 E3 USH8 13:50
21/11/2018 EF1 BBW13 12:00
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Tabla 5 (continuación).
Fecha Estación Punto Rad Hora local
21/11/2018 EF1 BBW14 12:45
21/11/2018 EF1 BBW15 15:30
21/11/2018 EF1 BBW16 18:05
22/11/2018 EF34 BBW17 10:05
22/11/2018 EF34 BBW18 13:10
22/11/2018 EF34 BBW19 16:05
22/11/2018 EF34 BBW20 18:05
24/11/2018 E2 USH9 14:35
Figura 15. Ejemplo de radiancia obtenido a partir del espectroradiómetro. Curva color azul:
Agua. Curva color celeste: Cielo. Curva color rojo: Blanco de referencia.
Figura 16. Ejemplo de reflectancia obtenida en cada estación. Curva color rojo: Reflectancia
estación EF5 Color negro: Reflectancia para la estación E3
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Conclusiones
Se pudieron tomar medidas radiométricas en las condiciones climáticas óptimas y adversas
que servirán para compararlas con otras campañas hechas en condiciones similares. En base a
los resultados de laboratorio se podrá establecer si hay correlación o no entre los datos de
clorofila y sedimentos en ambos métodos de medición.
Recomendaciones
Establecer más estaciones fijas para optimizar el periodo de campaña.
4.2. Comunidad microbiana
4.2.1. Tramas tróficas microbianas y sus implicancias para los flujos biogeoquímicos
Responsables embarcados: Andrea Malits, Ximena Flores Melo, Maité Latorre, Ariadna C.
Nocera.
Investigador Responsable: Andrea Malits
Las tramas tróficas microbianas, constituidas por el picoplancton autótrofo, protistas,
procariotas heterótrofos y el virioplancton, son componentes clave en las transferencias de
carbono y la regeneración de micro- y macronutrientes en ecosistemas marinos (Azam 1998).
Las aguas asociadas al AMP N-BB representan un ambiente netamente oceánico y no
particularmente productivo en términos de la biomasa fitoplanctónica según imágenes del
satélite AQUA MODIS (2002 hasta la fecha) y observaciones de campañas oceanográficas
realizadas desde 2014 hasta la fecha, con excepción de la primavera de 2014 y del verano de
2015. En regiones o épocas de escasa producción primaria autóctona la red trófica microbiana
mantiene las tramas tróficas marinas en aguas subantárcticas en general (Manganelli et al.
2009) y sobre el AMP N-BB en particular, como se ha observado en abril y diciembre 2016. El
picoplancton autótrofo (fitoplancton menor a 2µm) contribuye significativamente a la
producción primaria, mientras que los procariotas heterótrofos actúan como eslabón
intermedio entre el carbono orgánico disuelto (COD) proveniente de varias fuentes y los
niveles tróficos superiores mediante el bucle microbiano, es decir, la depredación de
procariotas por protistas (Azam et al. 1983). Por otro lado, la lisis vírica al destruir la célula
infectada y liberar el contenido del citoplasma al medio, implica una transferencia del pool de
materia orgánica particulada al de materia orgánica disuelta, retrasando así el flujo de carbono
orgánico hacía los niveles tróficos superiores (Wilhelm & Suttle 1999) y repercutiendo en
tramas tróficas más regenerativas (Bonilla-Findji et al. 2008, Malits & Weinbauer 2009). El
conjunto de las actividades microbianas, además, produce materia orgánica refractaria, es
decir indisponible para la utilización microbiana y, por lo tanto, representa mecanismos de
secuestro de carbono en el mar definidos por el concepto de la bomba de carbono microbiana
(MCP, Jiao et al. 2010). Tanto la disponibilidad de nutrientes inorgánicos y materia orgánica
(“bottom up”) como los agentes de mortalidad (“top down”) son factores que determinan la
diversidad taxonómica y funcional de la comunidad procariota y, en última instancia, los flujos
biogeoquímicos en el AMP N-BB.
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El objetivo general es, por lo tanto, estudiar los mecanismos que afecten la producción y
diversidad de microorganismos y su interacción con los parámetros fisicoquímicos con el fin de
modelar el flujo del carbono orgánico entre los componentes de la red trófica planctónica y
elucidar los mecanismos que mantienen la diversidad y producción del AMP N-BB.
Objetivos específicos:
1. Determinar las concentraciones de nutrientes inorgánicos disueltos y de COD 2. Determinar la calidad de la materia orgánica disuelta mediante el análisis de sus propiedades ópticas y fluorescentes (CDOM, FDOM) 3. Determinar las variaciones espaciales de las abundancias de microorganismos (pico/nanoplancton autótrofo, nanoflagelados heterótrofos, procariotas heterótrofas y virus) y relacionarlas con los parámetros físico-químicos y la biomasa autótrofa. 4. Determinar las tasas de depredación de bacterias por nanoflagelados (bucle microbiano) y de la lisis vírica 5. Determinar la respiración procariota junto a los ensayos de depredación y lisis vírica y modelar el flujo de carbono 6. Explorar la diversidad taxonómica y funcional de las procariotas a partir de herramientas de secuenciación masiva y Citometría de flujo Metodología
Durante la campaña oceanográfica a bordo del BO Austral se realizaron 28 estaciones
oceanográficas en 15 puntos geográficos, de los cuales 5 eran estaciones fijas con un muestreo
cada 6-9 h (tabla 6). En cada estación se tomaron muestras de agua a 2-6 profundidades
mediante botellas Niskin montadas en una roseta con CTD con el fin de aproximarse a una
resolución vertical de datos biológicos y químicos que se detallen en la tabla 6. Las muestras
para estimar la mortalidad, diversidad y actividad procariota se tomaron a la profundidad del
máximo de clorofila (indicado por el sensor de fluorescencia del perfilador multiparamétrico
Rinko (JFE) ASTD-102 calibrado para aguas oceánicas y costeras con datos analíticos).
1. Nutrientes inorgánicos, carbono orgánico disuelto, CDOM/FDOM y clorofila
Para la determinación de la concentración de los nutrientes inorgánicos disueltos y de carbono
orgánico disuelto y para el análisis de CDOM/FDOM se filtraron 2 L de agua sobre filtros
Whatman GF/F previamente calcinados 4 h a 450°C. Dos submuestras de 250 mL se guardaron
a -20°C para los análisis de la concentración de nutrientes inorgánicos disueltos (amonio,
nitrito, nitrato, fosfatos y silicatos) en el Laboratorio de Química Ambiental y Ecotoxicología
(CENPAT, Puerto Madryn), una submuestra de 100mL se guardó acidificada (pH<2) a 4°C para
el análisis de COD en el Instituto Nacional de Agua (Ezeiza).
Las propiedades ópticas y fluorescentes (CDOM, FDOM) serán analizadas en el CADIC con el
espectrofluorometro HORIBA Aqualog midiendo espectros de absorbancias y matrices de
excitación (Ex) y de emisión (Em) según Coble (1996). Los filtros se guardaron a -20°C para los
análisis de clorofila-a que servirán para una intercalibración de mediciónes de clorofila-a
colectado sobre filtros calcinados y no calcinados. Los pigmentos fotosintéticos se extraerán en
acetona 90% durante 24 h y se determinarán con un espectrofotómetro según Strickland &
Parsons (1972).
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2. Abundancias de microorganismos
Submuestras para la determinación de la abundancia, biomasa y composición (grandes grupos
taxonómicos y funcionales) de pico-/nanoplancton autótrofo, nanoflagelados heterótrofos (5
mL, respectivamente), procariotas y virus (1 mL, respectivamente) fueron fijadas con
glutaraldehido, previamente filtrado por 0.2 µm, a una concentración final de 0.5% (excepto
para el pico/nanoplancton fototrófico, cual era 0.1%), incubadas 20-30 min a 4°C, a
continuación congeladas en nitrógeno líquido y almacenadas a –80°C para su posterior análisis
por citometría de flujo. Detalles prácticos se encuentran en Brussaard (2004) para virus, en
Gasol & del Giorgio (2000) para procariotas y en Marie et al. (2001) para pico-/nanoplancton
autótrofo. La abundancia de nanoflagelados heterótrofos será determinada con un protocolo
optimizado (Christaki et al. 2011).
3. La mortalidad procariota por lisis vírica.
La producción vírica lítica y lisogénica (VP) y la fracción de células infectadas (FIC) y de células
lisogénicas (FLC) se estimaron mediante una técnica de dilución que se basa en el principio de
reducir la abundancia de virus para impedir una nueva infección. Así, los virus nuevos
producidos provienen de células ya infectadas (Weinbauer et al. 2010). En las estaciones fijas
las muestras de agua obtenidas del máximo de clorofila (tabla 6) mediante botellas Niskin y
prefiltradas por una malla de 115 µm se fraccionaron mediante un sistema de flujo tangencial
equipado con cartuchos de 0.2 µm y de 30 kDalton para obtener un concentrado de
procariotas y agua libre de virus, respectivamente.
Los procariotas fueron incubados en agua libre de virus durante 9 h a la temperatura in situ y
se tomaron muestras para las abundancias vírica y procariota a tiempo 0 y cada 3 h que se
preservaron para su posterior análisis por citometría de flujo. Para estimar la infección
lisogénica (Paul & Weinbauer, 2010) se añadió mitomicina C (SigmaChemical Co, No. M-0503,
concentración final de 1 µg mL–1) para inducir el ciclo lítico en procariotas lisógenos. Las
muestras sin tratamiento servían como control. Los datos de producción vírica en combinación
con la biomasa y la tasa de crecimiento procariota permiten calcular la mortalidad procariota
debido a virus. Detalles se encuentran en Malits et al. (2014).
4. Tasa de mortalidad por nanoflagelados y crecimiento de procariotas.
Junto a los ensayos para determinar la infección vírica se determinó la depredación de
procariotas por nanoflagelados mediante la técnica de desaparición de trazadores
fluorescentes (FLB's) (Sherr et al. 1987). Los FLBs se prepararon a partir de cultivos de
Pseudomonas diminuta teñidas con 5-([4,6-dichlorotriazin-2-yl]amino) fluorescein (DTAF).
Para cada experimento de depredación se hicieron incubaciones de 1L de agua del mar
(prefiltrado por 25µm para incluir solo femto-, pico- y nanoplancton) por duplicado y un
control (prefiltrado por 0.8 µm) en botellas de policarbonato añadiendo FLBs a
aproximadamente 20-30% de la concentración procariota in situ a la temperatura in situ y en
oscuridad durante 48 h. Se tomaron muestras a t0, t12, t24, t48 para el recuento de bacterias y
trazadores con citometría de flujo (Bratvold et al. 2000, Gasol & Del Giorgio 2000) y para el
recuento con microscopía. Las tasas de depredación se calcularán según Salat & Marrasé
(1994). La mortalidad debido a protistas se determinará como porcentaje de la biomasa
procariota in situ. Estas incubaciones serán utilizadas para calcular la tasa de crecimiento
procariota.
5. Respiración procariota
Las tasas de respiración procariota se determinaron junto a los ensayos para determinar
balances metabólicos de la comunidad planctónica (ver sección 4.2.4) a partir de la evolución
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de la concentración de oxígeno en incubaciones in vitro de agua de mar prefiltrado por 3 µm
para incluir procariotas asociadas a partículas y libres a temperatura in situ controlada y en
oscuridad para evitar procesos fototróficos. Las concentraciones de oxígeno se medirán con
microsensores ópticos no invasivos (PreSens GmbH, Alemania), que permiten mediciones
continuas o repetidas (Marchand et al. 2009).
6. Diversidad taxonómica y funcional de procariotas
El análisis de la composición de la comunidad procariota se realizará extrayendo el ADN de
muestras de 5-10 L agua filtrada a través de filtros de policarbonato de 3 µm de poro y de
Sterivex-GV de 0.2 μm (Millipore) para colectar bacterias asociadas a partículas y libres,
respectivamente. El ADN se extraerá usando MoBio PowerWater DNA Isolation Kit (MioBio
Laboratories, Inc., CA, USA) siguiendo las instrucciones del proveedor. Se amplificarán
fragmentos hipervariables del gen para la subunidad pequeña del ARN ribosomal de
procariotas con plataforma Illumina. Las secuencias obtenidas serán analizadas según (Guibert
et al. 2012), en colaboración con la Dra. Mariana Lozada del CENPAT.
Resultados
Durante el muestreo de un total de 28 estaciones se obtuvieron 725 muestras para su
posterior análisis con citometría de flujo, 70 muestras para la determinación de clorofila, 73
muestras para el análisis de nutrientes inorgánicos, 43 muestras para análisis de CDOM/FDOM,
15 muestras para la extracción de ADN procariota, acompañado con 6 ensayos para
determinar la respiración procariota. Dichas muestras y datos servirán para determinar las
variaciones espaciales de las abundancias microbianas (virus, procariotas, pico- y
nanofitoplancton y nanoflagelados) y de las tasas de mortalidad de procariotas por lisis vírica y
depredación y para estudiar la diversidad y respiración procariota en relación de los factores
bottom up y top down. Estos datos revelarán, en última instancia, los mecanismos que regulan
la biomasa y diversidad de los microorganismos y sus repercusiones en los flujos de carbono
orgánico en el AMP N-BB.
Tabla 6. Estaciones y lances realizados para la toma de muestras que se detallen en la tabla.
4.2.2. Estructura vertical y composición isotópica del plancton eucariota unicelular en
primavera
Responsable embarcado: Guido Bértola
Responsables no embarcados: Viviana Alder, Luciana Riccialdelli, Héctor Olguín Salinas
La estructura de la comunidad fitoplanctónica de ambientes templado-fríos exhibe marcadas variaciones estacionales. Durante la primavera, el incremento en la intensidad de luz y nutrientes en combinación con la intensa turbulencia favorecen el incremento de fitoplancton, principalmente diatomeas (Glibert 2016). Además de los cambios estacionales, el fitoplancton fluctúa diariamente en respuesta a procesos físicos (mezcla vertical, acción de las mareas, distribución de la luz y nutrientes), fisiológicos o bien debido a interacciones intra- o interespecíficas (pastoreo), condicionando de este modo los flujos de materia y energía de la trama trófica (Flynn & Fasham 2002). Estudios previos realizados en aguas del AMPN-BB durante la primavera 2014, han revelado valores de clorofila de hasta 10 µgL-1 con máximos próximos al fondo y atribuidos a la abundancia de una única especie, Rhizosolenia crassa (Bértola et al. 2018a, b). Este incremento en estratos profundos podría explicarse por
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fenómenos de migración vertical que se han descripto para especies del mismo género (Villareal et al. 1996). Por otra parte, las variaciones espaciales y temporales en las condiciones químicas (e.g. ingresos de carbono y nitrógeno), físicas (ej. temperatura) y biológicas (e.g. composición de la comunidad) que se suceden a nivel local y regional, influyen en la composición isotópica de los productores primarios (Fogel et al. 1992, Petterson 1999, Kurle & McWorter 2017, Oczkowski et al. 2018). Las variaciones registradas en la composición de isótopos estables de carbono y nitrógeno del fitoplancton repercutirán en toda la estructura trófica del AMPN-BB (Riccialdelli et al. 2018a, b). Mediante marcadores bioquímicos es posible generar nuevas perspectivas sobre las interacciones entre los organismos y su ambiente. Al mismo tiempo, la determinación de metales en cada uno de los niveles tróficos implicados permite detectar las principales vías de transferencia de estos contaminantes dentro de las redes tróficas (Borga et al. 2004, Arribére et al. 2010).
En este contexto, los resultados de los estudios realizados en el Banco Burdwood-AMP Namuncurá y adyacencias durante la primavera 2018 permitirán comparar las tendencias en la distribución espacial de las comunidades de fitoplancton y protozooplancton con la primavera del 2014 y analizar las fluctuaciones verticales diarias de las comunidades y/o de sus especies dominantes. Estos estudios, en conjunto con los análisis de composición isotópica y de metales, constituyen importantes herramientas a ser utilizadas para generar conocimiento sobre la ecología de las especies, el funcionamiento de las tramas tróficas del área y el grado de vulnerabilidad del ecosistema ante la presión antrópica.
El objetivo general es, por tanto, analizar la distribución espacial del plancton eucariota unicelular del AMPN-BB y adyacencias en primavera, enfatizando en su estructura vertical y sus variaciones diarias, y en su relación con los niveles de clorofila y la composición isotópica y de metales de la comunidad.
Objetivos específicos 1. Analizar la distribución espacial de la densidad, biomasa y estructura del plancton
eucariota unicelular, tanto en el eje horizontal como vertical. 2. Analizar la distribución espacial de la concentración de clorofila. 3. Analizar la distribución espacial de la composición de isótopos estables y de metales del
plancton eucariota unicelular en aguas subsuperficiales. 4. Ensayar cultivos de diatomeas presentes en el AMPN-BB. Metodología
Durante la campaña desarrollada entre los días 10 y 24 de noviembre se relevaron 15 estaciones oceanográficas abarcando el Banco Burdwood, el talud circundante y el Canal Beagle. A su vez, se definieron 5 estaciones fijas en las que se realizaron muestreos en la columna de agua, con el fin de analizar las fluctuaciones diarias en la distribución de las comunidades biológicas. Las muestras recolectadas se detallan en la tabla 7. A continuación se detallan aspectos metodológicos de los muestreos realizados.
Objetivos 1 y 4. Distribución espacial de la densidad, biomasa y estructura del plancton eucariota unicelular y ensayos de cultivos Muestras cualitativas: En todas las estaciones se tomaron muestras por arrastre vertical de red cónica doble de 25 µm de poro (figura 17A) desde 20 m a superficie que fueron preservadas con formol neutralizado con CaCO3 a una concentración final del 4%. Sobre estas muestras se realizarán análisis bajo microscopio, para determinar a las especies dominantes de diatomeas, dinoflagelados, ciliados, flagelados y foraminíferos, bajo microscopio. Total: 15 muestras
Parte del material recolectado en 7 estaciones mediante la red de fitoplancton (figura 17A) fue colocado en agua de mar filtrada con agregado de medio Guillard F/2 (Marine Water
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Enrichment Solution) a fin de preservar in vivo a las diatomeas y otros micropláncteres con el fin de realizar ensayos de cultivos. Muestras cuantitativas: En cada una de las 15 estaciones se hicieron muestreos verticales con botellas Niskin (figura 17B) a distintas profundidades. Además, en 5 de esas estaciones (estaciones fijas) se efectuaron muestreos con roseta cada 6 h (durante un intervalo de entre 9 y 24 h) con el fin de registrar las fluctuaciones diarias en la distribución vertical de las comunidades de fitoplancton y protozooplancton. Las muestras fueron preservadas con formol neutralizado con CaCO3 a una concentración final del 1% y serán utilizadas para la estimación de densidad y biomasa de los grupos que conforman el fitoplancton y protozooplancton mediante el método de Utermöhl. Total: 84 muestras
Las muestras de plancton unicelular eucariota (red y botellas) serán analizadas por el Lic. Guido Bértola, el Dr. Héctor Olguín y la Dra. V. Alder en el marco del proyecto UBACYT que se desarrolla en el Laboratorio de Ecología Marina Microbiana (Departamento de Ecología, Genética y Evolución, FCEN, UBA).
Figura 17. Equipos empleados en la toma de muestras. A) Red de fitoplancton de malla de 25 µm de poro; B) Roseta con 24 botellas Niskin
Objetivo 2. Distribución espacial de la concentración de clorofila
En cada una de las estaciones, profundidades y horas incluidas en la tabla 7, se filtraron 3 L de agua de mar por filtros GF/F (figura 18) que fueron recolectados con botella Niskin. Los filtros fueron preservados en freezer (-20°C) y empleados para estimar la concentración de clorofila total (a, b y c) por el método de Jeffrey & Humphrey (1975) y la de clorofila a sin feopigmentos por el método de Strickland & Parsons (1972). Total: 99 muestras.
La colecta de muestras y el filtrado respectivo fueron realizados por el Lic. Guido Bértola (IEGEBA, UBA-CONICET), el Lic. Alejandro Martínez (IBBEA, UBA-CONICET), la Lic. Ariadna Nocera (CESIMAR, CENPAT-CONICET) y la Lic. Ximena Flores Melo (CADIC, CONICET). Las mediciones fueron realizadas en CADIC por Ariadna Nocera, Maité Latorre y Guido Bértola.
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Figura 18. Tren de filtración de clorofila
Objetivo 3. Análisis de isótopos estables y metales sobre la comunidad de fitoplancton y protozooplancton
En cada una de las 15 estaciones se efectuaron dos arrastres verticales de red cónica doble de 25 µm de poro (figura 17A) desde 20 m a superficie. La muestra recolectada en ambos lances fue preservada en freezer a -20°C para el análisis de isótopos y metales presentes en los organismos que conforman la comunidad de fitoplancton y protozooplancton. Una vez descongeladas, las muestras serán prefiltradas con un filtro de 115 µm de malla, a fin de evitar organismos de tamaños mayores a 115 µm. Posteriormente se filtrará utilizando filtros tipo GF/F de 0.7 µm de poro, previamente muflados a 400°C por 4 h. Luego del filtrado, se secarán en estufa por 48 h. La muestra será raspada de la superficie del filtro y homogeneizada. De cada muestra se pesará una alícuota final de 3 mg en cápsulas de estaño y se analizará la composición de isótopos estables de carbono y nitrógeno mediante un espectrómetro de masa de relaciones isotópicas, ThermoScientific DELTA V Advantage, acoplado vía un interface ConFlo IV a un Analizador Elemental Flash 2000. Para el análisis de metales, una segunda alícuota de cada muestra será encapsulada en ampollas de cuarzo Suprasil AN®, las que serán selladas y se irradiarán en reactor nuclear. Total: 30 muestras Las muestras de isótopos y metales serán procesadas en el marco del proyecto dirigido por la
Dra. Luciana Riccialdelli del Laboratorio de Ecología, Fisiología y Evolución de Organismos
Acuáticos (CADIC-CONICET). La composición de isótopos estables de carbono y nitrógeno será
analizada en el Laboratorio de Isótopos Estables en Ciencias Ambientales (LIECA, IANIGLA-
CONICET) en Mendoza, por personal técnico. Las muestras para análisis de los metales se
irradiarán en el reactor nuclear de investigación RA-6 del Centro Atómico Bariloche-CNEA. El
procesamiento, encapsulado y análisis posterior de los datos será realizado por el grupo de
trabajo encargado de estos estudios (Dra. Luciana Riccialdelli/Lic. Nicolás Fioramonti/Lic.
Yamila Becker).
Resultados
La estimación de la concentración de clorofila total para cada punto muestreado en el estrato sub-superficial (10 m) se muestra en la figura 19. Los valores registrados en noviembre fueron llamativamente bajos, registrándose los máximos en aguas del Canal Beagle. Los valores de concentración de clorofila, al igual que los de la concentración de nutrientes, estarán disponibles para todos aquellos integrantes del proyecto AMPN-BB que los requieran.
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Figura 19. Concentración de clorofila total en subsuperficie (10 m)
Tabla 7. Estaciones y lances (L) realizados para análisis cualitativos (F cuali) y cuantitativos (F cuanti) de fitoplancton y protozoos, determinación de su composición isotópica (Isótopos) y de la concentración de clorofila total (Chl) y para iniciar cultivos de diatomeas (Cultivos). F1 y F2=Fondeos. En rojo se indican las estaciones fijas.
Las surgencias y el ascenso de nutrientes generados por las corrientes que rodean al Banco
Burdwood producen un incremento local de la productividad primaria respecto a las aguas
circundantes, en especial durante la primavera y el verano. Las microalgas pigmentadas del
fitoplancton suelen constituir la base de las redes tróficas marinas. Las floraciones, o
crecimiento explosivo del fitoplancton son un fenómeno natural que contribuye a sostener la
producción de bivalvos y de pequeños peces pelágicos. Sin embargo, no todas estas
floraciones son beneficiosas. Las Floraciones Algales Nocivas (FAN) son proliferaciones de
microalgas percibida como un daño por su impacto negativo en la salud pública, la acuicultura,
el medio ambiente y las actividades recreativas.
Por ello, el estudio de las especies fitoplanctónicas nocivas es de relevancia a nivel mundial
debido a la presencia de estas especies con el consiguiente desarrollo de toxinas que son
asimiladas por moluscos bivalvos y quedan disponibles para ser consumidas por el ser humano
a través de la ingesta de estos moluscos. A través del estudio de estos microorganismos se
lograría obtener una línea de conocimiento básico de lo que ocurre en esta área, minimizando
un posible riesgo para la población, conociendo la magnitud y evolución de este fenómeno
mediante el análisis periódico de los microorganismos con el fin de detectar e identificar
toxinas y su influencia en la preservación de flora y fauna autóctona.
En este contexto, el objetivo general es la identificación de las especies nocivas y la confección de un mapa de sensibilidad ambiental vinculado a especies fitoplanctónicas nocivas/tóxicas en el Área Marina Protegida Namuncurá-Banco Burdwood y áreas circundantes.
Objetivos específicos
1. Determinación de especies nocivas, utilizando los métodos adecuados para la sistemática de diatomeas y dinoflagelados.
2. Realizar relevamientos de los parámetros físico-químicas y biológicos de los puntos de muestreo.
Metodología
Para cada estación de muestreo se procedió a tomar muestras de agua de las botellas Niskin dela roseta oceanográfica, a 3 profundidades, para la medición de fitoplancton cuantitativo, materia orgánica coloreada disuelta, nutrientes (fosfato, nitrato, nitrito, amonio, silicato, cloruro, sulfato, carbonato, alcalinidad, hierro total), clorofila a y parámetros físico- químicos in situ (temperatura, pH, conductividad, salinidad, oxígeno disuelto, y sólidos totales disueltos). Para el muestreo y posterior identificación de las especies nocivas, las muestras fueron
tomadas mediante una red de fitoplancton de 25 m de apertura de malla, con arrastre vertical u oblicuo y se colocaron en frascos de plástico de 500 ml de capacidad, previamente enjuagadas con el agua de muestreo y correctamente rotuladas. Finalizado cada muestreo, se realizó el filtrado para conservar clorofila y análisis de nutrientes y compuestos químicos a bordo del buque. Para el análisis cualitativo de fitoplancton, las muestras obtenidas mediante la red fueron fijadas con solución de formol al 4%.
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Resultados y conclusiones
Se llevaron a cabo un total de 14 estaciones de muestreo comprendiendo el Canal Beagle y el AMPN-BB. Una vez en el área, se realizaron un total de 9 estaciones de muestreo, tratando de cubrir las zonas Este, Oeste y el centro del AMPN-BB. Se realizaron, también, 5 estaciones de muestreo a lo largo del Canal Beagle y Bahía Ushuaia (figura 20). Se realizaron estaciones fijas de muestreo durante un lapso entre 24-30 horas para observar efecto de mareas y estaciones simples donde se muestreo a tres profundidades: superficial (5 m), a la máxima concentración de clorofila y el fondo.
Figura 20. Mapa detallado de las estaciones de muestreo en el Canal Beagle y AMPN-BB. Las
estaciones remarcadas fueron las realizadas. Las estaciones E05, E34, F1, E24, E16 y F1 fueron
estaciones fijas de 24-30 horas de muestreo. El resto, estaciones simples a 3 profundidades.
En referencia a los resultados obtenidos (variables físico-químicas y nutrientes) se puede
observar que la mayoría de las variables medidas están en los valores normales para agua
oceánica. Los valores de OD son normales en relación a la temperatura encontrada,
comportándose, como todo gas disuelto en agua, de manera inversamente proporcional a los
resultados encontrados de temperatura. No se encontraron diferencias en las
concentraciones de nutrientes entre el área Norte y Sur y Este y Oeste del BB; si existen
diferencias en los nutrientes estudiados en las estaciones fijas dependiendo de la condiciones
de marea. Estos datos aún faltan ser estudiados con detenimiento. El estudio del material
recolectado fijado con lugol (estudios cualitativos) y formol (estudios cuantitativos), se
realizará en el contenedor laboratorio perteneciente a la Dirección de Protección Ambiental
(DPAM) en el transcurso de los próximos 3 a 4 meses.
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4.2.4. Determinación de la producción primaria
Responsables embarcados: Maité Latorre, Clara Iachetti
Responsable no embarcado: Irene R. Schloss
Los recursos marinos dependen de la presencia de una red trófica planctónica funcional,
basada en la disponibilidad de nutrientes y condiciones físicas adecuadas para su desarrollo. El
fitoplancton, mediante la fotosíntesis, incorpora el carbono inorgánico atmosférico que será
consumido por los siguientes niveles tróficos y exportado hacia los fondos marinos, jugando un
rol clave en los procesos de retroalimentación negativa del calentamiento climático (Hays et al.
2005).
Por otro lado, se ha observado un aumento en la temperatura superficial del agua en el mar y se espera que esta tendencia continúe durante el próximo siglo (Collins et al. 2013). Es sabido que la temperatura tiene efectos diversos sobre el metabolismo del plancton (Li et al. 1984), pero que estos no son uniformes. Si bien se han observado algunos casos en que las comunidades fitoplanctónicas pueden adaptarse al incremento de temperatura predicha, se desconoce la extensión de este fenómeno, por lo que no puede considerarse que globalmente el fitoplancton logrará adaptarse (Irwin et al. 2015).
En el marco del objetivo general de la campaña, este trabajo pretende determinar la producción primaria en términos de oxígeno, en el AMP Namuncurá, aportando información valiosa para la comprensión de la productividad que sostiene el ecosistema de dicha región.
Objetivos específicos
1. Determinación de la producción primaria mediante el balance entre la producción y el consumo (por respiración) de oxígeno de la comunidad fitoplanctónica.
2. Determinar las respuestas del aumento de temperatura sobre la producción primaria de la comunidad fitoplanctónica.
Metodología
Operaciones en cubierta
Se tomaron muestras de agua de superficie y/o máximo de clorofila en siete estaciones
utilizando botellas Niskin. Dichas estaciones correspondieron a 4 fijas preestablecidas en el
plan de campaña, sumado a tres estaciones adicionales distribuidas en el AMP Namuncurá y el
Canal Beagle (figura 21).
Figura 21: Sitio de muestreo. Estaciones (en rojo) donde se realizaron experiencias de
incubación.
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Actividades en laboratorio
Incubaciones a temperatura ambiente
Las muestras de agua fueron inicialmente filtradas por una malla de 200 µm para eliminar
predadores. Posteriormente cada fue dividida en tres submuestras utilizando botellas de 100
ml conteniendo un sensor de oxígeno en su interior (optode) y se las incubó por 24 h
simulando las condiciones de luz: oscuridad ambiental. Las incubaciones se realizaron bajo
condiciones de temperatura controladas en un baño termostático en la cámara fría del barco,
simulando la temperatura del agua registrada, mediante CTD, en la estación. La concentración
de oxígeno fue medida utilizando el sensor de oxígeno PSt3 (PreSens) siendo en continuo en
una de las botellas, semicontinuo en la segunda y de manera discreta en la tercer botella.
Incubación a temperatura ambiente + 3ºC
En la estación E03, situada en el Canal Beagle, se realizó una incubación simulando las
condiciones de calentamiento global aumentando la temperatura del baño a 3ºC superior a la
ambiental. La metodología del experimento fue la misma que la detallada en el punto anterior
con la salvedad de que se midió la tasa producción: respiración de toda la comunidad.
Muestras de agua para descripción de la comunidad fitoplanctónica
Para la determinación de la comunidad fitoplanctónica se tomaron 100 ml de muestra al
principio y fin de la experiencia y se conservaron en botellas color caramelo con Lugol 5%
concentración final.
Resultados parciales y discusión
Como resultado de las experiencias se cuenta con más de 2000 datos de concentración de
oxígeno medidos por muestra y por estación. Debido a variaciones en la temperatura de la
cámara donde se llevaron a cabo las experiencias y la alta sensibilidad de los sensores a la
misma, en tierra se realizará el procesamiento y la corrección de datos correspondiente. Los
resultados de producción obtenidos formarán parte de la tesis de Doctorado de la Mg. Maité
Latorre, bajo la dirección de la Dra. Irene Schloss y la Dra. Mónica Gil. El análisis de la
comunidad complementará estos resultados y será llevado a cabo en el marco del Doctorado
del Lic. Guido Bértola, bajo la dirección de la Dra. Viviana Alder.
Resultados preliminares tomados a bordo mostraron un bajo incremento en la producción de
oxígeno, pero una gran disminución de este en los ensayos de respiración. Estos resultados
podrían estar asociados a los bajos niveles de concentraciones de clorofila observados durante
la campaña. El posterior análisis del total de datos, sumado a la información de la composición
de la comunidad y concentración de nutrientes, servirán para comprender los procesos
subyacentes de la comunidad planctónica durante la primavera tardía en el AMP Namuncurá.
Consideraciones finales
Las condiciones climáticas durante el desarrollo de la campaña llevaron a reducir el número de
estaciones fijas previstas para la realización de las incubaciones. Sin embargo, se pudo
conseguir la cobertura espacial del área bajo estudio realizando incubaciones con muestras
colectadas en estaciones que se sumaron al diseño de muestreo original. Se presentaron
algunas dificultades para regular la temperatura en la experiencia inicial, pero se pudo superar
el inconveniente gracias a la buena predisposición de la tripulación y de la Jefa Científica al
permitirnos trasladarnos a la cámara fría del barco.
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4.3. Comunidad Pelágica
4.3.1. Dinámica del zooplancton y larvas de sardina fueguina
Responsable embarcado: Alejandro I. Martínez
Responsable no embarcado: Fabiana Capitanio
El objetivo general de esta propuesta fue caracterizar la dinámica del zooplancton y de las larvas de sardina fueguina (Sprattus fuegensis).
Objetivos específicos
1. Estudiar la composición, abundancia y distribución espacial del zooplancton en el AMPN-BB y zonas aledañas.
2. Evaluar el rol del zooplancton, y sus fracciones de tamaño, en la dieta de las larvas de S. fuegensis en el AMPN-BB y zonas aledañas.
3. Estudiar la migración vertical diaria de los distintos grupos del zooplancton. 4. Analizar las relaciones tróficas a través del uso de biomarcadores (ácidos grasos).
Metodología
Entre el 11 y el 24 de noviembre se realizaron 11 estaciones en total, abarcando el Banco Burdwood y sus alrededores, y el Canal Beagle (figura 22 y tabla 8). En las 11 estaciones se realizaron muestreos con una red MiniBongo. Esta red cuenta con dos aberturas de 20 cm de ancho de boca y en cada una se colocó un paño con distinto ancho de poro (una de 67 μm y otra de 200 μm), permitiendo obtener muestras de zooplancton de diferentes tamaños. En la boca de cada abertura se colocó un flujómetro para calcular el volumen de agua filtrada durante el arrastre. Además se tomó el tiempo de subida de todas las redes para calcular de forma más precisa el caudal de agua filtrado. En las estaciones fijas (F1, F2, 5, 24 y 34) se realizaron muestreos semidiurnos, en lo posible cada 12 h. En dichas estaciones se realizaron 2 lances verticales: uno desde la cercanía del fondo hasta la superficie en aquellas estaciones donde la profundidad era menor a 100 m o a una profundidad máxima de 100 m, y otro lance a 20 m de profundidad o a la profundidad del pico de DCM (Deep Chlorophyl Maximum) si existía. Una vez que la red llegaba a la profundidad de muestreo se recuperaba inmediatamente hasta la superficie. Este arrastre se realizó a una velocidad máxima de 0,3 m/s. Las muestras obtenidas con ambos colectores de la red MiniBongo fueron fijadas en formol (formaldehido 5%). Además se realizó 1 lance vertical adicional en todas las estaciones fijas durante el día. La muestra de la red de 67 μm se descartaba mientras que la muestra de la red de 200 μm se procesaba de la siguiente manera. Primero se filtraba por un pre-filtro de 500 μm. El sobrenadante se pasaba por un filtro de 200 μm. El sobrenadante de este se pasaba por un filtro de 25 μm y se descartaba el líquido sobrante. El material retenido en cada filtro se rotuló y se conservó en crioviales, que se conservaron a -20°C. En las estaciones 28 y 30 también se realizaron lances verticales, con la diferencia que cuando la red llegaba al fondo se la dejaba 2 minutos antes de recuperarla. Ambos colectores de la red se fijaron en formol.
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Figura 22. Área de estudio en contexto regional. Estaciones de muestreo realizadas durante la
campaña a bordo del BO ARA Austral. En rojo se indican las posiciones de las estaciones fijas
(24 h de muestreo en el mismo punto), en negro, estaciones simples en el AMPN y en azul,
aquellas simples correspondientes al Canal Beagle.
Tabla 8. Estaciones, lances y muestras obtenidas con la red MiniBongo
4.3.2. Variaciones espaciales y temporales en la densidad energética de larvas de
peces
Responsables embarcados: Guido Bértola
Responsables no embarcado: Daniel O. Bruno, Claudia C. Boy
Los estudios orientados a cuantificar la densidad energética de los peces y su variación temporal son importantes desde perspectivas básicas y aplicadas (Johnson et al. 2017). El almacenamiento de energía es una estrategia importante para los peces dado que la disponibilidad de alimentos no siempre es regular (Armstrong & Schindler 2013), sumado a que existen cambios estacionales y ontogenéticos en los requerimientos de energía relacionados con la supervivencia, la migración y la reproducción. Por ejemplo, los niveles de reserva de energía pueden ser determinísticos para resistir periodos de inanición (de por sí muy breves durante la etapa larval, Houde 2002) o sobrevivir a los inviernos principalmente en ambientes templados (Post & Evans 1989, Post & Parkinson 2001). La densidad de energía es un indicador importante del estado nutricional, el estado fisiológico y la aptitud de los peces. El conocimiento de la densidad de energía también es útil para estudios de depredación debido a su relación con la calidad de presa y porque la energía es la moneda común utilizada para convertir biomasa de presas consumida en biomasa de crecimiento del consumidor en modelos bioenergéticos (Jobling 1994, Hanson et al. 1997, Johnson et al. 2017).
La zona del Banco Burdwood y la plataforma continental Argentina al oeste de las Islas Malvinas ha sido mencionada como un área importante de concentración de larvas de peces de las especies Sprattus fuegensis, Micromesistius australis, Eleginops maclovinus, (e.g. Ehrlich et al. 1999, García-Alonso et al. 2018) y también de algunos integrantes de las Familias Nototheniidae y Myctophidae (Ehrlich et al. 1999), mientras que la zona comprendida entre la desembocadura del Canal Beagle e Isla de los Estados ha sido propuesta como potencial área de cría de la merluza de cola (Macruronus magellanicus) (Machinandearena & Ehrlich 1999). En el contexto de que el Banco Burdwood parece proporcionar características favorables para funcionar como área de cría de peces y que los estudios de densidad energética proporcionan información de suma importancia en relación al estado nutricional de estadios tempranos de peces, se propone como objetivo general de investigación comprender el funcionamiento de una zona de confluencia de 3 océanos (Atlántico, Pacífico y Austral) como área de cría de larvas de peces a partir de estudios de densidad de energía de dichas larvas y de los grupos planctónicos potenciales a funcionar como presas para poder determinar los flujos de energía en la columna de agua de la zona hasta los estadios de vida tempranos de los peces.
La colecta de muestras de fitoplancton durante esta campaña de investigación se complementará con muestras colectadas de zooplancton e ictioplancton durante el mismo periodo y en la misma zona a bordo del BIP Angelescu y permitirá poder realizar un estudio integrado comprendiendo las variaciones temporales y espaciales en la diversidad de peces en estadio larval en relación a los flujos de energía en la columna de agua. Muchas de las especies de peces que habitan el Banco Burdwood están asociadas al fondo y por ende la integración de los resultados de ambos estudios podrá dar una visión más acabada sobre la interacción del flujo de energía entre el ambiente pelágico y bentónico. Metodología
Se realizaron 15 lances verticales con una red doble bongo de 25 cm de diámetro y mallero de 25 µm (tabla 9). La profundidad a la que llegó el arte de pesca fue de 20 m en todas las estaciones de muestreo. Las muestras colectadas se congelaron a bordo a -20°C y actualmente se encuentran almacenadas a la misma temperatura en instalaciones de CADIC. Para la determinación de su contenido energético, las muestras se descongelarán, se filtrarán utilizando filtros tipo Whatman GF/F de 0,7 μm de poro previamente muflados a 500°C y se
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secarán en estufa a 60°C hasta peso seco. Previamente el peso húmedo también será registrado. Una vez alcanzado el peso seco, las muestras se molerán en mortero para conformar un pellet y el contenido de energía de al menos dos repeticiones de muestra se medirá siguiendo el procedimiento establecido por Boy et al. (2009) y Fernández et al. (2009) utilizando un calorímetro de micro-bomba marca Parr 1425. Los valores obtenidos se corregirán por contenido de cenizas y ácido y se expresarán como densidad de energía, peso seco sin cenizas (DE, kJ / g AFDW). Tabla 9. Detalle de la fecha, hora, posición de cada lance correspondiente a la toma de fitoplancton con red doble bongo de 25 µm en cada estación de muestreo a una profundidad de arrastre estándar de 20 m.
Fecha Estación Lance Hora Latitud Longitud Prof. Estación
4.3.3. Análisis de agua para microquímica de otolitos de peces nototénidos
Responsable embarcado: Clara Iachetti
Responsable no embarcado: Facundo Llompart
El estudio de la microquímica de los otolitos es una innovación que se ha desarrollado en los últimos años en nuestro país y es utilizado para proveer información sobre asociaciones geográficas, áreas de nacimiento y cría, historias de dispersión y migración, así como pueden reflejar cambios en los ecosistemas acuáticos. Estas inferencias pueden realizarse porque algunos elementos presentes en el otolito (proporción Ca) están directamente relacionados con el ambiente físico-químico. Por ejemplo, existe una asociación positiva entre la concentración de Sr en los otolitos y la salinidad del agua. La concentración de Sr es negativa a <10°C y por encima de este valor es positiva para algunas especies, aunque varía inter-específicamente. Además, la concentración de Zn en el otolito estaría más asociada a la dieta que a la calidad del agua, por lo que este elemento podría ser utilizado como potencial marcador de hábitat.
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Por otro lado, la relación Mg:Ca se ha utilizado en conjunto con las relaciones Sr:Ca y Ba:Ca para la identificación de stocks pesqueros. En ese contexto y con muestras de esta campaña, se analizarán las relaciones entre elementos
traza (Sr, Mg, Zn)/Ca en los otolitos de peces nototénidos y su asociación con la composición
de los mismos elementos en el agua de mar para hacer inferencias a nivel ecosistémico
(discriminación de ensambles) y poblacional (lugar de nacimiento, cría, dispersión, etc.). Esta
información es útil para entender cómo las comunidades están segregadas y cuál es el grado
de interconexión entre poblaciones vecinas. Esta herramienta representa un enfoque
novedoso para responder aspectos ecológicos relevantes en nototénidos
Metodología
Se obtuvieron 7 muestras de agua marina que abarcaron un gradiente latitudinal y de profundidad que se presenta en la tabla 10. El agua colectada en cada estación fue filtrada mediante una bomba de acción manual con una membrana de 0.45 µm e inmediatamente acidificada con ácido nítrico al 10%. La misma fue luego preservada en heladera en envases plásticos de 125 ml. Las muestras de agua serán enviadas para su análisis químico al Centro de Estudios Transdisciplinarios del Agua, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad de Buenos Aires. Al mismo tiempo se enviarán muestras de otolitos de peces nototénidos obtenidos en la campaña realizada al AMPN-BB durante el mes de noviembre a bordo del BIP Angelescu. Se espera obtener comparaciones de valores de referencia de elementos traza en agua de mar y en otolitos para la segunda mitad del año 2019.
Tabla 10. Sitios de colecta de agua para el análisis químico del agua de mar.
4.3.4. Ecología espacial de aves y mamíferos marinos
Responsables embarcados: Mónica Torres, Constanza Ordoñez, Natalia A. Dellabianca
Responsables no embarcados: Andrea Raya Rey, Mariano Diez
Los predadores tope, al igual que el resto de los organismos, se distribuyen por la combinación de varios factores (demográficos, evolutivos, ecológicos, ambientales y antrópicos) (Forcada 2002). Así, la selección de hábitats por parte de las especies se encuentra generalmente definida por características físicas, químicas y biológicas del ambiente marino, generando un uso diferencial de las áreas dentro del rango de sus distribuciones (Ballance 2002, Learmonth et al. 2006).
El conocimiento detallado de las áreas preferidas por las especies a diferentes escalas es clave para la conservación de las mismas, dado que eventuales cambios en esas áreas tendrían mayor influencia sobre sus distribuciones y abundancias (Harwood 2001). Este conocimiento
Estacion Latitud SurLongitud
OesteProfundidad
E05 t=15 -55,11714 -65,87693 330
E24 t=0 -54,32080 -60,17142 92
E24 t=6 -54,32080 -60,17142 92
EF2 t=0 -54,47390 -58,58650 140
E30 -54,15297 -61,70318 197
E18b -54,96731 -58,30164 2630
E12 -54,39617 -62,23145 150
Informe de Campaña ¨AMP N-BB: BBC¨ – BOA NOV 2018
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nos permite, además, predecir cuál será la reacción de las especies y sus poblaciones frente a un escenario de cambio climático (Macleod 2009). El objetivo particular de la propuesta es evaluar los patrones de distribución espacio-temporal de las aves y mamíferos marinos en el sector del AMPN-BB y zonas adyacentes en función de variables oceanográficas, ambientales, antrópicas y biológicas, a fin de incrementar el conocimiento de la ecología de estas especies y su relación con el ecosistema. Metodología
Relevamiento de aves y mamíferos marinos
Para el relevamiento de aves se utilizó el método de banda transecta (Tasker 1984; Raya Rey &
Schiavini 2000) y el de distancia en transectas de línea para los mamíferos marinos (Buckland
et al. 2001). Se registraron, desde los alerones del puente, todas las aves marinas que pasaban
a 300 m o menos, por una de las bandas y todos los mamíferos marinos que pasaban por
ambas bandas. Las observaciones se realizaron a ojo desnudo y mediante binoculares de 7 x 50
con compás y retícula incorporados. En el relevamiento de mamíferos marinos, ambos
elementos son utilizados para tomar el ángulo de declinación entre el horizonte y el individuo
o grupo de individuos y el ángulo entre el grupo o el individuo avistado y el rumbo del barco.
Estos datos adicionales son necesarios para inferir, a posteriori, la distancia del avistaje a la
derrota del barco.
Los registros fueron volcados en una tableta con sistema de geoposicionamiento global (GPS)
incorporado. De esa manera los datos sobre posición (latitud y longitud), fecha y hora del día
quedaron registrados automáticamente para cada avistaje.
Para cada observación se determinó la especie (o el menor nivel taxonómico posible), el
tamaño y la composición del grupo y la actividad principal de los animales al momento de ser
avistados. Asimismo, se registraron datos adicionales como el estado del mar (en escala
Beaufort), la velocidad y dirección del viento, la temperatura atmosférica, la cobertura de
nubes y la velocidad del barco a fin de evaluar la contribución de estas covariables asociadas a
la observación en la detección de las especies.
Las observaciones se realizaron durante las horas de luz (7:00 a 20:30 h) mientras el barco se
encontraba navegando. Los mamíferos marinos fueron contabilizados de manera continua a lo
largo de toda la derrota, mientras que las aves se contabilizaron únicamente dentro de los
límites del AMPN-BB.
Agrupaciones de aves en estaciones de muestreo
Se registraron las aves presentes durante las estaciones diurnas a lo largo de toda la derrota
del barco (o durante las horas de luz si las estaciones empezaban o terminaban de noche)
identificando las especies (o el menor nivel taxonómico posible) y el número de individuos
presentes. Datos de posición, fecha y hora del día y otras variables climáticas se registraron
únicamente al momento de inicio de cada estación.
Muestreo hidroacústico
Se grabaron los registros acústicos a lo largo de toda la derrota con la ecosonda EK 80 propia
del buque a fin de estudiar la distribución y abundancia de los organismos en la columna de
agua.
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Resultados
Los datos presentados en este informe son los resultados preliminares del trabajo. El
relevamiento se realizó a lo largo de 16 días (384 h) de esfuerzo de muestreo durante la
campaña al AMPN-BB entre el 9 y el 25 de noviembre de 2018.
Mamíferos marinos
Se registraron un total de 33 avistajes y 187 individuos pertenecientes a 13 taxa (10 de ellas
identificadas a nivel de especie) (tabla 11). En la figura 23 se muestra la ubicación geográfica
de los avistajes.
Los odontocetos incluyeron 4 especies de delfines y el cachalote Physeter macrocephalus.
Dentro de los delfines el género Lagenorhynchus estuvo representado por 3 especies: el delfín
oscuro L. obscurus, el delfín austral L. australis y el delfín cruzado L. cruciger. La cuarta especie
estuvo representada por el delfín piloto Globicephala melas.
El delfín piloto fue la especie más abundante, registrándose un total de 56 ejemplares en 3
avistajes, todos ellos en aguas profundas entre Isla de los Estados y el AMPN-BB. Contribuye a
la mayor abundancia el avistaje de un grupo integrado por 40 individuos. Estos datos coinciden
con lo observado en diciembre 2009 (Raya Rey et al. 2009) y marzo-abril 2016 (Torres 2016).
Asociado al grupo de delfines piloto también se observaron 2 individuos de delfín cruzado. El
delfín oscuro fue el segundo en abundancia, con 55 individuos, todos ellos en aguas del Canal
Beagle.
El delfín austral fue el único cetáceo avistado en las 3 áreas: Península Mitre, este de Isla de los
Estados y AMPN-BB contabilizando un total de 14 individuos. Esta especie ya había sido
registrada en esas zonas en campañas anteriores. Cabe mencionar que la especie ha sido
registrada en el AMPN-BB tanto en primavera-verano (noviembre-febrero) como en invierno,
pero no fue avistada en otoño, sugiriendo que pueden existir movimientos estacionales dentro
y fuera de dicha área. Es necesario continuar con muestreos sistemáticos a la zona en
diferentes épocas para responder a este y otros interrogantes. Como se mencionó
previamente, la otra especie de odontoceto identificado fue el cachalote al oeste del AMPN-BB
en aguas donde las profundidades superaban los 1000 m (1800 a 4300 m).
Se identificaron 3 especies de misticetos. La más abundante fue la ballena fin Balaenoptera
physalus con 13 individuos identificados en el AMPN-BB, cabe destacar que en la misma área
se observaron numerosos soplidos de ballenas que debido a la distancia no pudieron ser
determinadas. Esta especie ya había sido registrada en la zona en diciembre 2016 (Dellabianca
& Torres 2016) en grupos de 1 a 3 individuos. En el AMPN-BB también se identificó la presencia
de un grupo de 6 ballenas sei B. borealis, siendo el primer registro de esta especie para el área,
al menos en lo que respecta a nuestros relevamientos.
Durante la presente campaña y a diferencia de las anteriores, los grupos de ballenas fueron
avistados durante varios días en el AMPN-BB y en asociación con grandes bandadas de aves
marinas (figura 24). Los resultados de los registros hidroacústicos permitirán confirmar si
estaban alimentándose en la zona.
La otra especie de ballena avistada fue la ballena jorobada Megaptera novaeangliae, que
estuvo representada por el registro de un individuo solitario en la boca oriental del Canal
Beagle.
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En relación a los pinnípedos, sólo se observaron otáridos, el lobo marino de un pelo Otaria
flavescens y el lobo marino de dos pelos Arctocephalus australis con un total de 8 y 9
individuos, respectivamente. Todos los registros corresponden a zonas cercanas a la costa
tanto de Tierra del Fuego como de Isla de los Estados. En el AMPN-BB solo se registró un
individuo pero no pudo ser determinado a nivel de especie.
Aves marinas
Relevamiento de aves
Se registraron un total de 2062 individuos pertenecientes a 15 taxa diferentes mientras el
buque se encontraba navegando en aguas dentro del AMPN-BB (figura 25). Los priones
Pachyptila sp fueron el taxón más abundante con un 83% del total de los individuos
observados. Los mismos fueron registrados de manera casi continua a lo largo del recorrido y
también agrupados en bandadas muy numerosas de hasta 1000 individuos. Seguidos en
abundancia se encontraron los albatros de ceja negra Thalassarche melanophrys (6%). El grupo
más diverso fue el de los petreles con 7 taxa diferenciados, siendo el petrel damero Daption
capense el más representado. En menor proporción se encontraron los petreles gigantes del
genero Macronectes, el fulmar austral Fulmarus glacialoides y los petreles de las tormentas
Oceanites sp. El petrel barba blanca Procellaria aequinoctialis fue observado solo en una
ocasión en el área. Dentro de los albatros, el de ceja negra fue el más abundante seguido en
igual número por los grandes albatros del género Diomedea y el albatros cabeza gris
Thalassarche chrysostoma. Dentro de las pardelas, se encontró únicamente la pardela oscura
Puffinus griseus coincidiendo con lo registrado en la campaña de otoño 2016 (Torres 2016). Las
aves costeras estuvieron representadas por un único ejemplar de skua Stercorarius sp.
Agrupaciones de aves en estaciones de muestreo
Se relevaron aves marinas en 11 de las 15 estaciones realizadas y se contabilizó un total de 799
individuos de 15 taxa diferentes (tabla 12). Las especies presentes fueron similares a las
encontradas en otras estaciones en esas zonas durante estudios anteriores del proyecto
A cada botella se le agregó 20 ml de formol previamente filtrado con malla de 20 µm. El agua
recolectada será filtrada en el laboratorio con malla de 0,45 µm y el filtro será analizado bajo
microscopio. Los microplásticos serán contabilizados y clasificados.
Tabla 13. Muestras de agua recolectadas con botellas Niskin para análisis de microplásticos.
Estación
Profundidad
Muestreada
(m)
E05 10
170
330
E16 10
40
1017
E24 10
90
EF1 10
50
130
EF2 10
40
125
E21 10
50
120
E28 5
40
111
E30 10
50
200
E18b 10
50
2450
E03 10
75
E04 10
65
A lo largo de 2018 se tomaron muestras de agua para análisis de microplásticos en tres
diferentes campañas: BO Puerto Deseado, BIP Angelescu y las recolectadas a bordo del BO
Austral en esta campaña. El presente muestreo completa un total de 41 estaciones en el
AMPN-BB y zonas aledañas, que permitirá generar un detallado análisis del estado de la
contaminación por microplásticos en el área de estudio.
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4.5. Registros fílmicos
Como parte de un convenio entre la Administración de Parques Nacionales de Argentina y la
National Geographic Society Pristine Seas, se realizaron registros fílmicos submarinos del AMP
Namuncurá y de zonas adyacentes mediante el uso de una dropcam perteneciente a la NGPS.
Asimismo y para realizar un spot publicitario para apoyar la creación de Burdwood II, se
realizaron filmaciones de las diferentes actividades científicas realizadas a bordo durante la
campaña mediante cámaras fotográficas y drones. Dado que los responsables embarcados
eran angloparlantes, sus respectivos informes están escritos en inglés.
4.5.1. Dropcam
Responsable embarcado: Christopher Thompson
Responsable no embarcado: Brad Henning
On this expedition our goal was to deploy the deep ocean dropcam on the Burdwood Bank, at as many sites as possible, collecting images of the sea floor and the animals present there. Activities
We deployed the Dropcam at 6 locations, 3 on Burdwood Bank and 3 closer to the mainland, off Peninsula Mitre. The cameras were deployed from the CTD bay on the starboard side of the BO ARA Austral, with the help of her crew. The cameras sink to the bottom of the ocean and film the seafloor for the programmed period of time before releasing their anchor and rising to the surface. Upon resurfacing the camera was located with the aid of a VHF transmitter and receiver before recovery via grapple from the bow of the research vessel. The crew was very helpful in both the deployment and recovery procedures. Results
Although we had some bad weather and a tight schedule we succeeded in our goal of collecting footage of the sea floor at the Burdwood Bank and some of the animals present there. At sites F2 and F1 we noted a sandy substrate, some large yellow sponges, some crabs and fish (with Patagonicus ramsayi the most abundant species). The community at the slightly deeper site on the western slope of the bank was markedly different, with a much more diverse community of sessile benthic organisms, as well as rays, hagfish, rattails, flatfish and crustaceans.
4.5.2. Registros audiovisuales
Responsable embarcado: John Thomas Kirby
Responsable no embarcado: Brad Henning I joined Science Cruise to Burdwood Bank – Namuncura to document and film science deployments aboard the BO ARA Austral. I Filmed and edited a video to advocate for the expansion of Burdwood Bank – Namuncura Marine Protected Area. Daily activities included filming deployments, editing video, assisting with Dropcam deployments, and aerial cinematography with a drone.
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ANEXO I. Tripulación científica de la campaña
Equipo de científicos a bordo de la campaña. De izquierda a derecha: fila superior: Jack Kirby, Guillermo Ibañez, Jacobo Martín, Gonzalo Bravo, Clara Iachetti, Chris Thompson. Fila del medio: Andrea Malits, Ariadna Nocera, Natalia Dellabianca, Jessica Chiarandini, Alex Martinez, Guido Bértola. Fila inferior: Mónica Torres, Magalí Bobinac, Ximena Flores Melo, Maité Latorre, Constanza Ordoñez
Apellido y Nombre Filiación Funcion principal a bordo
Bertola, Guido IEGEBA-CONICET Fitoplancton
Bobinac, Magali Prefectura Naval Argentina Algas tóxicas
Thompson, Christopher University of Western Australia, NGS Dropcam
Torres, Mónica CADIC-CONICET Avistajes
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ANEXO II. Detalles de las actividades de muestreo
Resumen de las operaciones de muestreos con diferentes Equipos de muestreo por estación y lance realizadas durante la campaña “AMP Namuncurá – Banco Burdwood: Comprendiendo la bomba biológica de carbono”. Cada una de las tomas de muestras se considera un “lance”. Fecha y Hora en GMT; Prof. es la profundidad de muestreo. Ángulo del cable en grados. Detalle de equipos utilizados: RINKO= CTD auto contenido Rinko con fluorómetro incorporado. SBE= CTD Seabird SBE-9. ADCP= Perfilador de Corriente. ROSETA=roseta de 24 botellas de 12 L. Aclaración: si bien la roseta fue utilizada en cada lance de CTD y/o ADCP, en la tabla su mención hace referencia a que en ese lance se realizó la toma de agua a distintas profundidades.
Fecha Estación Lance Hora
(GMT)
Latitud Sur Longitud Oeste
Prof. (m) Cable filado
(m) Án
gulo
Equipo Observaciones Grados Minutos Grados Minutos
En nombre de la coordinación de la campaña, queremos agradecer a la gestión del Área Marina Protegida Namuncurá – Banco Burdwood, al CONICET, a la UNIHDO y a la Armada Argentina por el apoyo financiero y logístico para poder llevar a cabo esta campaña. Hacemos extensivo el agradecimiento al personal del Centro Austral de Investigaciones Científicas (CADIC) que de alguna u otra manera colaboró en la planificación, ejecución y logística de la misma, en especial a Gustavo Ferreyra, Luciana Riccialdelli, Mariano Diez, Olga Florentín, Mariano Sánchez, Marcela Riggio, Natalia Farfan y Silvia Pincol. Agradecimientos y valoraciones particulares de los participantes
Guido Bertola En primer lugar queremos expresar nuestra gratitud al Lic. Alejandro Martínez por la invalorable ayuda en cada uno de los muestreos realizados para concretar este proyecto. Agradecemos también a la tripulación de la Armada Argentina del Buque Oceanográfico Austral por las tareas realizadas a bordo y por su entera predisposición para la concreción de esta campaña. Un profundo agradecimiento a la Dra. Natalia Dellabianca por su fuerte compromiso y dedicación como Jefa Científica y a la Dra. Clara Iachetti, por su trabajo incansable a bordo.
Andrea Malits Agradezco a la Jefa Científica Natalia Dellabianca, a la Coordinadora Científica Irene R. Schloss y al Coordinador GT Banco Burdwood Gustavo A. Lovrich su buena disposición en la preparación de la campaña y durante la misma, a la tripulación del BO Austral por su constante apoyo y a los compañeros científicos que ayudaron en las tareas de muestreo.
Maite Latorre-Clara Iachetti Las prestaciones del Buque fueron muy buenas, en términos de espacio, estabilidad y equipamiento para el desarrollo de las actividades previstas. La convivencia en el barco y el trabajo en equipo fueron muy amenos y se logró un intercambio valioso entre distintos grupos de investigación para abordar los objetivos de dicha campaña. Por último, es oportuno agradecer a la Jefa Científica Natalia Dellabianca por su arduo trabajo para que todos pudiéramos cumplir nuestros objetivos, fomentando el trabajo en equipo y asegurando las condiciones óptimas para que la convivencia entre científicos y la tripulación sea exitosa.
Jacobo Martin Quiero agradecer a todos los participantes, tripulación, oficiales y personal científico por su apoyo. En particular a Gonzalo Bravo por su ayuda determinante en las tareas a bordo y preparativos en tierra y al Capitán Leopoldo Acuña, Jefe de Operaciones y Teniente Lucas Salcedo, Jefe de Gabinetes, así como todos los oficiales y personal de CTD/cubierta, por su importante apoyo en las maniobras y puesta a punto del instrumental. Gracias al Dr. Gustavo Lovrich, coordinador de las investigaciones en el AMP N/BB por hacer todo esto posible.
Daniel Bruno-Claudia Boy Queremos agradecer enormemente a Alex Martínez, Guido Bértola y Natalia Dellabianca por la colecta de las muestras a bordo.
Natalia Dellabianca Quiero agradecer muy especialmente al Comandante Capitán de Fragata Juan Ignacio Schillaci, al Segundo Comandante CF Sergio Ciminari, al Jefe de Operaciones Capitán de Corbeta Leopoldo Acuña y a toda la tripulación del ARA Austral por la gran predisposición que tuvieron
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para que pudiéramos realizar la mayor cantidad de actividades posibles y principalmente por preocuparse en generar un excelente clima de convivencia a bordo. En particular me gustaría destacar el compromiso que tuvieron Leopoldo, los tenientes Lucas Acosta Salcedo y Bruno Canela y todo el personal de cubierta para que se concretaran los objetivos planteados en la campaña, trabajando junto a la tripulación científica como un verdadero equipo. Un profundo agradecimiento a Irene Schloss y Gustavo Lovrich, coordinadores científicos de la campaña y del grupo de trabajo del AMP N-BB, respectivamente, por todas las horas invertidas en planificar y coordinar esta campaña, por el fuerte compromiso para que la misma se realice de la mejor manera posible y por la confianza depositada. Gracias, muchas gracias a Clara Iachetti, por su gran ayuda en la logística previa a la campaña, por su dedicación durante la ejecución de la misma y por el apoyo invaluable en la co-coordinación a bordo. Finalmente, quiero expresar toda mi gratitud al grupo de científicos a bordo por su enorme entrega, por trabajar como equipo, por ayudarse y cuidarse entre todos, y por hacer tangible que la unión hace la fuerza.