جامعتلطارف ا- Université Chadli BendjedidEl-Tarf Faculté des Sciences de la Nature et de la Vie – كليت علوم الطبيعت ولحياة اDépartement d’agronomie. Licence Contrôle de Qualité en Agroalimentaire Site web de la licence Contrôle de Qualité en Agroalimentaire : www.djamiatic.net/lmd Responsable de la licence : Mahieddine Boumendjel. E-mail : [email protected]Page 1/18 Brochure de TP – Conserves de tomate DCT Enseignants chargés du TP Boumendjel Mahieddine (Biochimiste) Feknous Nesrine (Microbiologiste) Module ou Unité d’Enseignement Contrôle de Qualité et Autocontrôle Laboratoire de réalisation du TP Microbiologie et Biochimie Objectif général du TP L’étudiant sera capable de contrôler la qualité physicochimique, métrologique et hygiénique des conserves de double concentré de tomate Objectifs spécifiques du TP L’étudiant sera capable de : 1. Vérifier la conformité de l’étiquetage d’une conserve 2. Proposer un plan d’échantillonnage représentatif des conserves de tomate 3. Contrôler le poids net des conserves 4. Vérifier la présence de points noirs dans la purée Mesurer le pH de la purée de tomate 5. Mesurer l’Indice de Réfraction afin de déterminer le Brix de la purée de tomate 6. Doser l’acidité titrable de la purée de tomate 7. Contrôler le serti d’une conserve métallique afin de mesurer le taux de croisure 8. Evaluer les paramètres organoleptiques (couleur, gout, odeur, texture…etc.) de la purée selon la norme proposée 9. Appliquer le test de stabilité aux conserves d’origine végétale à pH inférieur ou égal à 4,5 10. Prélever aseptiquement un échantillon en vue de l’analyse 11. Effectuer une coloration de Gram 12. Comptabiliser les différentes formes bactériennes, levures et moisissures sur un frotti 13. Dresser un PV global de contrôle de qualité Public cible du TP Etudiants régulièrement inscrits en licence Contrôle de Qualité en Agroalimentaire Toute personne en charge du contrôle de qualité en agroalimentaire Pré-requis du TP microbiologie générale microbiologie alimentaire techniques de conservation des denrées alimentaires, notamment l’appertisation technologies de transformation des aliments techniques d’emballage stockage des aliments Chimie de base Physique de base Biostatistiques
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Brochure de TP – Conserves de tomate DCT - … · Laboratoire de réalisation du TP Microbiologie et Biochimie Objectif général du TP L’étudiant sera capable de contrôler
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Brochure de TP – Conserves de tomate DCT
Enseignants chargés du TP Boumendjel Mahieddine (Biochimiste)
Feknous Nesrine (Microbiologiste)
Module ou Unité d’Enseignement Contrôle de Qualité et Autocontrôle
Laboratoire de réalisation du TP Microbiologie et Biochimie
Objectif général du TP L’étudiant sera capable de contrôler la qualité physicochimique, métrologique et hygiénique des
conserves de double concentré de tomate
Objectifs spécifiques du TP
L’étudiant sera capable de :
1. Vérifier la conformité de l’étiquetage d’une conserve
2. Proposer un plan d’échantillonnage représentatif des conserves de tomate
3. Contrôler le poids net des conserves
4. Vérifier la présence de points noirs dans la purée Mesurer le pH de la purée de tomate
5. Mesurer l’Indice de Réfraction afin de déterminer le Brix de la purée de tomate
6. Doser l’acidité titrable de la purée de tomate
7. Contrôler le serti d’une conserve métallique afin de mesurer le taux de croisure
8. Evaluer les paramètres organoleptiques (couleur, gout, odeur, texture…etc.) de la purée selon la
norme proposée
9. Appliquer le test de stabilité aux conserves d’origine végétale à pH inférieur ou égal à 4,5
10. Prélever aseptiquement un échantillon en vue de l’analyse
11. Effectuer une coloration de Gram
12. Comptabiliser les différentes formes bactériennes, levures et moisissures sur un frotti
13. Dresser un PV global de contrôle de qualité
Public cible du TP
Etudiants régulièrement inscrits en licence Contrôle de Qualité en Agroalimentaire
Toute personne en charge du contrôle de qualité en agroalimentaire
Pré-requis du TP microbiologie générale
microbiologie alimentaire
techniques de conservation des denrées alimentaires, notamment l’appertisation
technologies de transformation des aliments
techniques d’emballage stockage des aliments
Chimie de base
Physique de base
Biostatistiques
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Besoins du TP Appareillage 1. Balance (0,1g)
2. pH-mètre
3. Réfractomètre
4. Agitateur
5. Microscope binoculaire
6. Pied à coulisse
7. Etuve
8. Consistomètre de Bostwick
9. Plaque lumineuse rétro-éclairée
Petit outillage 1. Pince coupante et pince crocodile
2. Spatules
3. Barreau magnétique
4. Pissette
5. Portoir pour tubes à essai
Verrerie 1. bécher 100ml ; 250ml ; 500ml
2. Erlenmeyer 100ml ; 250ml
3. Fiole jaugée 200ml
4. Burette 25ml
5. Pipette graduée 10ml
6. Pipette jaugée 25ml
7. Pipette pasteur
8. Boite de Petri en verre
9. Cristallisoir
10. Entonnoir
11. Lames pour microscopie
Equipements de sécurité spécifique au TP 1. Poire de sécurité
2. Gants en latex
3. Lunettes
4. Visières
5. Masques
6. Hotte aspirante de chimie
7. Etiquettes de sécurité des produits utilisés
8. Prises de terre
Réactifs et consommables 1. Tissus de lin carré de 10cm²
2. Cotton
3. Papier Joseph ou papier wattman
4. Papier filtre
5. Papier absorbant
6. Eau distillée
7. Solution de soude NaOH à 0,1N
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8. Solution hydro-alcoolique (1/1) de phénolphtaleïne à 0.05%
9. CuSO4
10. Solution N/10 d’AgNO3
11. HNO3 pur à 36°
12. Solution saturée de KMnO4 (70g/L de solution)
13. Solution saturée de FeNH4(SO4)²-12H2O
14. Solution N/10 de NH4CNS (sulfocyanure d’ammonium)
15. Solution tampon pH 4.01 et pH 7
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Table des matières
Brochure de TP – Conserves de tomate DCT ............................................................................ 1
Table des matières ...................................................................................................................... 4
Liste des figures ......................................................................................................................... 5
1 Lecture extérieure de l’emballage et étiquetage d’une boite de conserve alimentaire ....... 6
2 Mise en place d’un plan d’échantillonnage représentatif des conserves de tomate ........... 6
3 Contrôle du poids net ......................................................................................................... 6
3.1 Appareillages et équipements de mesure ..................................................................... 6
Le contrôle de la qualité organoleptique se fait selon les descripteurs énoncés sur le texte réglementaire de
référence.
Concernant le Double Concentré de Tomate nous réaliserons les contrôles suivants :
Couleur Rouge caractéristique de tomates mûres
Texture et consistance Sensiblement homogène, pas de séparation
Impuretés Présence tolérée d'impuretés naturelles végétales, visibles seulement après examen
microscopique attentif. L’examen microscopique, selon la méthode de Howard, ne
doit pas révéler la présence de moisissures dans plus de 60% des champs
Saveur et arôme Absence de saveur et d'odeurs étrangères ou anomales, notamment de goût de
brulé ou de caramel
13 Contrôle de la stabilité des conserves d’origine végétale à pH inférieur ou égal à 4,5
13.1 Définition des conserves alimentaires :
Sont considérées comme conserves les denrées alimentaires d'origine animale ou végétale, périssable dont la
conservation est assurée par l'emploi combiné des deux techniques suivantes :
conditionnement dans un récipient étanche aux liquides, au gaz et aux microorganismes à toute
température inférieure à 55°C.
traitement par la chaleur ou par tout autre mode autorisé. Ce traitement doit avoir pour but de détruire
ou d'inhiber totalement, d'une part les enzymes et d'autre part les microorganismes et leur toxine, dont la
présence ou la prolifération pourraient altérer la denrée considérée, ou la rendre impropre à la
consommation humaine.
Cependant cette définition est assez sommaire, car toutes les conserves ne sont pas placées sur le même plan, il
existe plusieurs catégories de conserves alimentaires selon:
le type de récipient étanche utilisé (en verre ou en métal…etc)
le pH du produit utilisé (inférieur ou supérieur à 4,5)
l'origine animale ou végétale de la denrée
l'addition ou non de conservateurs alimentaires (conserves ou semi-conserves)
13.2 Catégories de conserves selon le pH alimentaires :
Cette différenciation se fait à la base de la flore microbienne pouvant se développer à pH supérieur à 4,5 et
principalement un germe toxique, le Clostridium botulinum, agent responsable du botulisme et dont la croissance
libère une neurotoxine dans le milieu de culture, la Botuline, mortelle pour l'homme.
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13.3 Conserves à pH inférieur ou égal à 4.5 :
Celles-ci ne permettent pas le développement de microorganismes sporulés. On leur applique généralement un
traitement thermique limité (98-100°C environ) suffisant pour détruire la flore acidophile (levures, moisissures,
bactéries acidophiles…)
En ce qui nous concerne, nous nous intéresserons aux denrées végétales conservées dans des boites métalliques
sans additifs alimentaires ou autres conservateur, et dont le pH est inférieur à 4,5.
13.4 Les dénominations des conserves de purée de tomate :
Conformément à l'arrêté interministériel du 24 août 1997 relatif aux conserves de purée de tomate (arrêté
interministériel du 24 août 1997 relatif aux conserves de purée de tomate, J.O.R.A. n°77. page 26), on entend par
purée de tomate le produit obtenu par tamisage des fruits frais de tomates Lycopersicum esculentum, concentré
par élimination de l'eau qu'il referme.
13.5 Le contrôle de stabilité :
Appliqué conformément aux dispositions de l'arrêté du 23 juillet 1994 relatif aux spécifications
microbiologiques de certaines denrées alimentaires. Il s'agit d'un contrôle simplifié permettant l'analyse du plus
grand nombre d'échantillon. le contrôle de stabilité a fait l'objet d'une normalisation par l'AFNOR :
La norme NF V 08-402 concernant le contrôle de stabilité des conserves de pH inférieur à 4.5
Le contrôle consiste à soumettre un échantillon de la conserve à un étuvage puis à vérifier que cette
incubation n'a pas apporté de transformations notables par rapport à un témoin non étuvé.
Pour cela on recherche :
La variation de la flore par coloration de Gram
la variation de pH
les variations d'aspect externe de l'emballage
la variation du taux de croisure du serti
et éventuellement la variation de pression interne.
13.6 L'étuvage :
On choisit pour l'étuvage des conserves dont l'emballage est normal, ne présentant aucun défaut apparent ni
bombement ni fuites ni flochage. Les emballages sont soigneusement nettoyés.
Selon le type de conserves (origine et pH), plusieurs barème de stabilité sont préconisés, ainsi pour les conserves
acides dont le pH est inférieur à 4.5 à base de denrées végétales, la législation impose (Arrêté interministériel du
24 janvier 1998) : étuvage de deux (02) unités d'échantillonnage durant vingt et un (21) jours à une température
de trente (30) degrés Celsius, plus ou moins deux (02) degrés Celsius ; ou étuvage de deux unités pendant sept
jours à 55°C.
Mise à la température ambiante (20 à 25 degrés Celsius) de l'unité d'échantillonnage témoin.
En effet les microorganismes susceptibles de se développer dans la conserve ne sont pas thermophiles.
13.7 Examen après étuvage :
Lorsque le délai d'incubation est écoulé, les conserves sont stabilisées à température ambiante. On examine
ensuite :
l'aspect de l'emballage, on notera la présence éventuelle de bombement, de fuites ou de flochages.
le pH : sur le produit directement s'il est homogène, sur un broyat dans le cas où le produit est
hétérogène.
La variation de la flore microbienne sur vingt champs sous microscope et calcul du facteur R.
13.8 Interprétation du contrôle de stabilité :
La conserve analysée est considérée comme stable si elle satisfait à tous les critères suivants :
absence de modification d'aspect de l'emballage et du produit après étuvage.
variation de pH par rapport au témoin non étuvé, inférieure ou égale à 0.5 unité de pH.
Variation du facteur R<100.
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13.9 Norme et texte réglementaire Le contrôle de la stabilité des conserves de DCT se fait selon la méthode officielle du
Ministère du Commerce algérien :N° 08.97.64, dont voici un extrait :
2. PRINCIPE
Contrôle de la stabilité au moyen des épreuves suivantes :
2.1 Incubation d'individus à 32°C.
2.2 Incubation d'individus à 55°C.
2.3 Examen de l'aspect extérieur (en cours d'incubation et après incubation).
2.4 Examen des caractéristiques suivantes sur des individus incubés et sur un témoin non incubé :
Pression interne s'il y a lieu,
Examen du produit : aspect, odeur, texture, pH, examen microscopique.
Interprétation des résultats
3. APPAREILLAGE
Appareillage nécessaire à la réalisation des opérations suivantes :
3.1 INCUBATION
3.1.1 Étuve, bien ventilée, réglable à 32° C + 2° C.
3.1.2 Étuve, bien ventilée, réglable à 55° C + 2° C.
3.2 PRESSION INTERNE
Manomètre perforateur, muni d'une jupe de caoutchouc assurant l'étanchéité au cours des mesures, gradué de -
1à+1 bar. et permettant d'apprécier des différences de pression de 100 mbar.
3.3 MESURAGE DU pH:
pH-mètre gradué en 0,l unité pH (ou plus précis), et muni d'électrodes de verre simples ou à pénétration (selon
le produit à examiner).
3.4 EXAMEN MICROSCOPIQUE
Matériel pour examens microscopiques (5.3.5), et notamment: microscope avec différents objectifs (à sec et à
immersion), lames, etc.
4. CHOIX DES INDIVIDUS
Pour réaliser l'ensemble des examens mentionnés, il est nécessaire de disposer d'au moins 5 individus « normaux
» (voir chapitre 1 « Définitions ») y compris un individu servant de témoin, ce minimum étant fixé
indépendamment de tout plan d'échantillonnage.
5. MODE OPÉRATOIRE
5.1 EXAMEN PRÉALABLE
Relever les différentes caractéristiques des individus retenus :
Nature du produit, type et format de l'emballage, indications réglementaires et autres inscriptions figurant sur
l'emballage, l'étiquette ou l'illustration.
Repérer chaque individu par un marquage indélébile.
Enlever éventuellement l'étiquette en s'assurant à nouveau par un examen attentif que ces individus sont
«normaux».
Nettoyer (et) ou dégraisser si nécessaire.
Le témoin doit être conservé à la température du laboratoire à la condition que celle-ci ne dépasse pas 25° C.
INCUBATION
NOTE :Dans les deux cas (5.2.1 et 5.2.2), les individus doivent être disposés, sur un papier filtre ou un
papier kraft, dans la position la plus favorable pour détecter une fuite éventuelle.
5.2.1 Incubation à 32° C
Placer, dans l'étuve (3.1.1) réglée à 32° C, deux des individus choisis (chapitre 4) et les y laisser 21 jours.
Pratiquer des examens journaliers de leur aspect extérieur et retirer de l'étuve les individus présentant un
bombage ou une fuite, mais laisser ceux présentant un flochage.
5.2.2 Incubation à 55° C
Placer, dans l'étuve (3.1.2), réglée à 5° C, deux des individus choisis (chapitre 4) et les y laisser 7 jours.
Effectuer, comme en 5.2.1, des examens journaliers et retirer de l'étuve les individus présentant un bombage ou
une fuite, mais laisser ceux présentant un flochage.
5.3 EXAMENS APRÈS INCUBATION
NOTE 1 :Avant de procéder aux examens, laisser les individus pendant 24 heures à la température du
laboratoire afin d'obtenir l'équilibre des températures.
NOTE 2 :Les examens doivent être effectués dans des conditions identiques à la fois sur les individus
incubés et sur le témoin non incubé.
5.3.1 Aspect extérieur
Noter l'aspect extérieur des individus (voir chapitre 1 « Définitions»).
N'effectuer les examens suivants que sur les individus apparemment normaux selon les définitions du chapitre 1.
5.3.2 Mesurages au manomètre (pression ou dépression interne)
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NOTE :Ce mesurage ne s'applique qu'aux boites métalliques et aux bocaux capsulés.
Effectuer les mesurages en opérant rigoureusement dans les mêmes conditions (même endroit de
perforation, même effort appliqué sur l'appareil,…) avec les individus incubés et le témoin.
5.3.3 Examen du produit
Ouvrir les emballages et noter les modifications, qui auraient pu survenir par rapport au témoin, concernant
l'odeur, l'aspect et la texture du produit (ne pas goûter les conserves incubées).
5.3.4 Mesurage du pH
Effectuer les mesurages au moyen du pH-mètre (3.3) soit sur le produit en l'état, si le produit est homogène soit,
s'il est hétérogène, sur les différentes phases ou après homogénéisation (avec ou sans dilution).
Il est recommandé d'effectuer plusieurs mesures pour chaque individu.
5.3.5 Examen microscopique
Effectuer l'étalement d'une goutte de produit sur une lame de verre (cas des produits liquides), ou faire une
application directe sur une lame de verre (cas des produits solides), en réalisant dans les deux cas des étalements
fins.
Sécher, fixer. Dégraisser au xylol si nécessaire. Effectuer une coloration et observer vingt champs au microscope
(3.4).
Noter la morphologie de la flore microbienne et le nombre moyen de germes par champ microscopique.
Calculer le facteurR = n/n0
Où
n : est le nombre moyen de germes pour un individu incubé.
n0 : est le nombre moyen de germes pour l’individu témoin.
NOTE :Pour un produit hétérogène, il est nécessaire, pour un même individu, d’examiner au microscope
des prélèvements effectués sur les différentes phases.
6. INTERPRETATIONDES RESULTATS
6.1 En fonction des examens énumérés dans la présente méthode, un individu est considéré comme stable
lorsqu’il présente l’ensemble des trois caractéristiques suivantes, après incubation à 32° C ou à 55° C selon le
cas.
Absence de déformation de l’emballage (5.3.1)
- Différence de pH< 0,5 unité pH, par rapport au témoin (5.3.4).
- Absence de variation de la flore microbienne, du point de vue qualitatif.
facteur R < à 100 (5.3.5.) par rapport au témoin
NOTE :Cette valeur de facteur R a été fixée en tenant compte exclusivement des variables liées à la
technique d’examen et non pour exprimer une tolérance à l’égard d’une multiplication éventuelle des
germes présents. En cas de multiplication microbienne cette valeur de 100 serait largement dépassée.
6.2 Pour pouvoir extrapoler ces résultats à l’ensemble du lot dont proviendraient les individus, il serait nécessaire
que les prélèvements (chapitre 4) soient effectuer dans un plan d’échantillonnage.
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Figure 9. Microscope ; bec Bunsen, Etuve
14 Rédaction du PV Le Procès-Verbal d’analyses est dressé en fonction des paramètres réglementés pour une denrée donnée. Il
regroupe les résultats exprimés par la moyenne ± écart type (n=3). Il fait référence aux normes et textes de loi
utilisés comme support juridique. Un exemple est présenté lors du TP.
15 Conditions optimales de réalisation du TP Afin que la réalisation du TP ne soit pas perturbée par les conditions extrinsèques, nous recommandons ce qui suit :
Climatisation et conditionnement à une température moyenne entre 20 à 25°C
Hygiène irréprochable des paillasses et des équipements
Utilisation des équipements de sécurité, notamment : poires, gants, lunettes, visières, masque, hotte…etc.
Présence d’un technicien ou ingénieur de laboratoire pour assister l’enseignant durant le TP
Présence d’étiquettes de sécurité sur tous les flacons des produits utilisés
Présence de prises de terre afin d’éviter les électrocutions