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Universidad Nacional Jorge Basadre Grohmann FACULTAD DE CIENCIAS- ESBI PRÁCTICA DE LABORATORIO: RECUENTO DE COLIFORMES TOTALES, TERMOTOLERANTES: Técnica del número más probable (NMP) y aislamiento de E.coli INTEGRANTES: -Tania Arias Ch. -Germán Mamani
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103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Aug 05, 2015

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Page 1: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

“Universidad Nacional Jorge Basadre Grohmann”FACULTAD DE CIENCIAS- ESBI

PRÁCTICA DE LABORATORIO:

RECUENTO DE COLIFORMES TOTALES, TERMOTOLERANTES: Técnica del número más probable (NMP) y aislamiento de E.coli

INTEGRANTES:-Tania Arias Ch. -Germán Mamani

Page 2: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

COLIFORMES

Son bacilos Gram negativos no

esporulados, forma bacilar.

Aerobias o anaerobias facultativas.

Fermentan la lactosa con producción de Ácido y gas a 30-37ºC en 48 horas

Capacidad para crecer en presencia

de sales biliares.

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Se encuentra en:

Intestino del hombre, animales, y en

otros ambientes como:

Suelo, plantas, cáscaras de huevo,

etc.

COLIFORMES

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Los principales microorganismos indicadores en alimentos son:

Indicadores de condiciones de manejo o de eficiencia de proceso: Mesófilos aerobios (o cuenta total) , cuenta de

hongos y levaduras y cuenta de coliformes totales.

Indicadores de contaminación fecha o bacterias entéricas: Coliformes fecales, E. coli y enterococos.

COLIFORMES

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La selección de indicadores en un alimento depende fundamentalmente de:

Los riesgos implicados

Lo que se requiera saber para: liberar, controlar o mejorar el alimento,

manteniendo el enfoque preventivo.

COLIFORMES

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E. coli, es un microorganismo indicador pues:

Ser detectables y estar presentes. Su crecimiento y número debe ser

correlativamente negativa a la calidad. Contados y diferenciados de otros

microorganismos. Contables en poco tiempo. Su crecimiento no debe ser alterado por

otro componente de la flora.

COLIFORMES

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Se consideran excelentes indicadores de la eficiencia de los procesos de sanitización y desinfección, así como de calidad sanitaria en agua, vegetales y diversos productos procesados.

Su determinación se basa generalmente en la capacidad de fermentar lactosa

COLIFORMES

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Los coliformes fecales o Termotolerantes,

fermentan la lactosa entre 43,.5 – 45,5ºC, y la

facultad de producir Indol en agua peptonada

(Pascual,1922).

COLIFORMES

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Existen 3 fases o etapas:

Prueba presuntiva.

Prueba confirmatoria.

Prueba concluyente.

Análisis de Coliformes en Agua y Alimentos

Page 11: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Fuente: Youself, E. Ahmed; Carlstrom, Carolyn; “Microbiología de los alimentos – Manual de laboratorio”;2003; Ed. Acribia.

TABLA 1: Métodos de análisis de coliformes

Page 12: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Pruebas presuntivas, confirmativas y concluyentes en el análisis de coliformes de alimentos

Fuente: Youself, E. Ahmed; Carlstrom, Carolyn; “Microbiología de los alimentos – Manual de laboratorio”;2003; Ed. Acribia.

Page 13: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Procedimiento según la FDA:MUESTRA + Tampón fosfato Butterfield

Homogenizar la muestra con

solución diluyente

10 -1 10 -2 10 -3

INCUBAR

1. Prueba presuntiva de

coliformes

Page 14: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Consultar tabla NMP para 3 diluciones

2. Prueba confirmativa de coliformes totales

4. Prueba completa para

E.coli

3. Prueba confirmativa de

coliformes tolerantes

FUENTE: FDA

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MÉTODO NORTEAMERICANO MÉTODO BRITÁNICO MÉTODO CALDO LACTOSA 2% DE BILIS VERDE

BRILLANTE, Y CONFIRMACIÓN EN MEDIO SÓLIDO

RECUENTO DE COLIFORMES TOTALES

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MÉTODO NORTEAMERICANO

RECUENTO DE COLIFORMES TOTALES (ICMSF)

1ml 1ml10 -1

10 -210 -3

C/U con 9ml de

AP

C/U con 10ml de

LST

INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 – 48 h.

25 gr MUESTRA + 225ml AP

Verificar gas y turbidez

Prueba presuntiva:

Page 17: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Prueba presuntiva:

+ + + ++ +---

Prueba confirmativa:

Verificar gas y turbidez

Verificar gas y turbidez

10 ml Caldo Brilla

INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 –

48 h.

+ + - - - -

2 0 0

caldo LST

Page 18: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Fuente: ICMS. Segunda Edición. Editorial Acribia.

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MÉTODO BRITÁNICO

RECUENTO DE COLIFORMES TOTALES (ICMSF)

1ml 1ml10 -

1 10 -2

10 -3

C/U con 9ml de

AP

C/U con 10 mL

Caldo Mac Conkey

(Púrpura de Bromocresol) INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 – 48 h.

25 gr MUESTRA +

225ml AP

Verificar gas y turbidez

Prueba presuntiva:

Page 20: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Prueba confirmativa:

Verificar gas y turbidez

Caldo Mac Conkey

(Púrpura de Bromocresol)

+ + + ++ +---

3 12

Page 21: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

MÉTODO CALDO LACTOSA 2% DE BILIS VERDE BRILLANTE, Y CONFIRMACIÓN EN MEDIO SÓLIDO

RECUENTO DE COLIFORMES TOTALES (ICMSF)

1ml 1ml10 -

1 10 -2

10 -3

C/U con 9ml de

AP

C/U con 10ml de

Brilla

INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 – 48 h.

25 gr MUESTRA

+ 225ml AP

Verificar gas y turbidez

Prueba presuntiva:

Page 22: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Prueba presuntiva:

+ - - -+ +---

Prueba confirmativa:

Verificar gas y turbidez

Verificar gas y turbidez

caldo brilla

INCUBAR:Con VRBA (Agar bilis lactosa rojo neutro cristal violeta): 24 horas/ 35 – 37ºC

Con Agar ENDO: 48 horas/ 35 – 37ºC

Siembra en superficie de tubos positivos

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MÉTODO NORTEAMERICANO MÉTODO BRITÁNICO MÉTODO CALDO LACTOSA 2% DE BILIS VERDE

BRILLANTE, Y CONFIRMACIÓN EN MEDIO SÓLIDO

RECUENTO DE COLIFORMES

TERMOTOLERANTES

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MÉTODO NORTEAMERICANO

RECUENTO DE COLIFORMES TERMOTOLERANTES (ICMSF)

1ml 1ml10 -

1 10 -2

10 -3

C/U con 9ml de

AP

C/U con 10ml de

LST

INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 – 48 h.

25 gr MUESTRA

+ 225ml AP

Verificar gas y turbidez

Prueba presuntiva:

Page 25: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

Prueba presuntiva:

+ + + ++ +---

Prueba confirmativa:

Verificar gas y turbidez

Verificar gas y turbidez

10 ml Caldo Brilla

INCUBAR: 44,5 +- 0,2 °C por 24 – 48 h.

+ + - - - -

2 0 0

caldo LST

Tomar asadas

Page 26: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

MÉTODO BRITÁNICO

RECUENTO DE COLIFORMES TERMOTOLERANTES (ICMSF)

1ml 1ml10 -

1 10 -2

10 -3

C/U con 9ml de

AP

C/U con 10 mL

Caldo Mac Conkey

(Púrpura de Bromocresol) INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 – 48 h.

25 gr MUESTRA

+ 225ml AP

Verificar gas y turbidez

Prueba presuntiva:

+ + + ++ +---

Page 27: 103266924 Recuento de Coliformes Totales y Termotolerantes E COLI[1]

+ + + ++ +---

Verificar gas y turbidez

Verificar gas y turbidez

10 ml Caldo Brilla

INCUBAR: 44°C +- 0,1 °C por 24 – 48 h.

+ + + + + +

23 1

caldo LST

Tomar asadas de los tubos

positivos

Tomar asadas de los tubos positivos

Prueba Indol44 ºC

Producción de gas e Indol positivo+ + + + + +

Coliformes termotolerantes

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PRUEBAS IMViC PARA

IDENTIFICACION DE COLIFORMES

Fuente: ICMS. Segunda Edición. Editorial Acribia.

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Pruebas de identificación de organismos coliformes: IMViC

Gas en caldo lactosado

biliado a 44-45.5° C

Prueba de indol

Prueba rojo de metilo

Prueba de Vogues

Proskauer

Crecimiento en citrato

E. ColiTipo ITipo II

+-

+-

++

--

--

IntermediosTipo ITipo II

--

-+

++

-b-b

++

Enterobacter aerogenes

Tipo ITipo II

--

-+

--

++

++

Enterobacter cloacae

- - - + +

IrregularesTipo ITipo IITipo IV

-++

+--

++-

--+

--+

Fuente: ICMS

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NMP PARA AGUA POTABLE25 gr

MUESTRA +

225ml AP

INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 – 48 h.

10 ml

1 ml 0,1 ml

Serie de diluciones con 9ml de diluyente

10 -2

10 -3

10 -4

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NMP PARA AGUA DE MAR25 gr

MUESTRA +

225ml AP

Pre incubación: 35 -37 ºC por 3 horasIncubación a Baño María: 44,5°C x 21 a 23 horas

10 ml

1 ml 0,1 ml

Serie de diluciones con 9ml de diluyente

10 -2

10 -3

10 -4

CALDO: AL

FUENTE: MINISTERIO DE SALUD

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Pruebas de identificación de organismos coliformes: IMViC

Indol (+)Rojo de

metilo (+)

Voges Proskauer

(-)

Citrato (-)

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INVESTIGACIÓN DE E. coli

FUENTE: NORMA ISO

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Uso de las Petrifilm:

Estas placas contienen un medio selectivo para E.coli coloreándose las colonias de azul violeta si esta esta presente, sin necesidad de realizas pruebas de identificación.

VENTAJAS: Evita errores humanos Ayudan a los procesadores de alimentos a muestrear

fácilmente, una detección rápida del microorganismo

MÉTODOS ALTERNATIVOS:

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PETRIFILM

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E.coli en MUG en presencia de luz UV

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EN NUESTRO

LABORATORIO…

UTILIZAREMOS EL MÉTODO CALDO LACTOSA 2% DE BILIS VERDE BRILLANTE, Y CONFIRMACIÓN EN MEDIO SÓLIDO

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MATERIALES

MUESTR

A

•Refresco presuntamente contaminado

DILUYENTE

•Agua peptonada

MEDIO

•Caldo lactosa 2% bilis verde brillante (brilla)

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PROCEDIMIENTO (ICMSF)

1ml 1ml10 -1

10 -2 10

-3 C/U con 9ml de

AP

C/U con 10ml de

Brilla

INCUBAR: 35 -37 ºC por 24 – 48 h.

VACIAR LA MUESTRA AL

BEAKER

25 ml

AP

Agregar 1ml a cada tubo

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1ra Lectura

VERIFICAR SI HUBIERA GAS Y TURBIDEZ

caldo brilla

+ + - -+ ----

INCUBAR:Con Agar ENDO: 48 horas a 35 – 37ºC

Sembrar en superficie tubos

positivos

Inocular con un asa los tubos positivos

INCUBAR:24 horas a 44ºC a baño maría

Realizar las pruebas de identificación: IMViC

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Luego de analizar la muestra de refresco, se obtuvo una cepa sospechosa para E. coli, y luego de las pruebas bioquímicas IMViC:

RESULTADOS

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Resultados

Prueba del INDOL

El indol es uno de los productos de degradación metabólica del aminoácido triptófano. Las bacterias que poseen la enzima triptofanasa son capaces de hidrolizar y desaminar el triptófano con producción de indol.Al añadir dos gotas del reactivo. Esperar 10 minutos para observar el color del halo formado.

Halo rojo: reacción +

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ResultadosPrueba del ROJO

DE METILO

Esta prueba se fundamenta en el tipo y la proporción de productos de fermentación que se originan de la fermentación de la glucosaLa fermentación n ácido-mixta

Reactivo prueba de RM: solución indicadora Rojo de Metilo

Halo rojo: reacción (+)

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ResultadosPrueba de VOGUES

PROSKAUER

Voges-Proskauer buscavía de fermentación del butanodiolGlucosa acetil-metil-carbinol butanodiolReactivo prueba de VP: Solución de naftol e K(OH)

Color marrón: reacción (–)

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ResultadosPrueba del

CITRATO SODICO

Determinación sobre la capacidad de un organismo de utilizar citrato como única fuente de carbono y energía. Únicamente las bacterias capaces de metabolizar el citrato podrán multiplicarse en este medio y, al hacerlo, liberarán iones amonio lo cual basificará el medio. Sin crecimiento y color verde: reacción –

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- Tener todo listo antes de iniciar la práctica - No demorar al momento de realizar las

diluciones - Homogenizar bien las diluciones - Marcar las pipetas que se usan para cada

dilución

Sugerencias:

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I.C.M.S.F. 2000. Los Microorganismos de los Alimentos. Vol. I: Su significado y métodos de enumeración. 2a edición. Editorial Acribia, S.A. - Zaragoza (España).

Food and Drug Administration. 2001. Bacteriological Analytical Manual. 8th Edition. USA.

Youself, E. Ahmed; Carlstrom, Carolyn; “Microbiología de los alimentos Manual de laboratorio”;2003; Ed. Acribia.

Bibliografía:

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GRACIAS !!