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1 “AÑO DE LA INVERSION PARA EL DESARROLLO RURAL Y LA SEGURIDAD ALIMENTARIA” UNIVERSIDAD NACIONAL JOSE FAUSTINO SANCHEZ CARRION FACULTAD DE INGENIERIA PESQUERA ESCUELA PROFESIONAL ACADEMICA DE INGENIERIA PESQUERA INFORME DE PRACTICAS PRE PROFESIONALES TEMA CULTIVO DE LANGOSTINO DE MAR (Litopenaeus Vannamei) LANGOSTINERA “BUVA CAMARON SAC- TUMBES PRESENTADO POR: ANGEL OMAR DIAZ TORRES ASESOR: ING: JUAN ZENÓN RESURRECCION HUERTAS TUMBES PERU 2013
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Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

Jan 03, 2016

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TUMBES - PERU
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Page 1: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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“AÑO DE LA INVERSION PARA EL DESARROLLO RURAL Y LA SEGURIDAD ALIMENTARIA”

UNIVERSIDAD NACIONAL JOSE FAUSTINO SANCHEZ CARRION FACULTAD DE INGENIERIA PESQUERA

ESCUELA PROFESIONAL ACADEMICA DE INGENIERIA PESQUERA INFORME DE PRACTICAS – PRE PROFESIONALES

TEMA

CULTIVO DE LANGOSTINO DE MAR

(Litopenaeus Vannamei)

LANGOSTINERA “BUVA CAMARON SAC” - TUMBES

PRESENTADO POR: ANGEL OMAR DIAZ TORRES

ASESOR:

ING: JUAN ZENÓN RESURRECCION HUERTAS

TUMBES – PERU

2013

Page 2: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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AGRADECIMIENTO

Padre… Jamás podré explicar, lo infinitamente agradecido que me encuentro

para contigo. Tu misericordia me transformó, y tu amor me restauró. Bendito sea

el día en el cual te hiciste real para mi vida!

Jesús… Por causa mía tu historia celestial se vio interrumpida. Nunca podré

explicar tanto amor que vio motivo en un pecador, por quien fuiste a morir en la

cruz. Una pausa en la eternidad hizo tu corazón, el cual cambio el destino de un

mortal al infinito. Jamás olvidare el sacrificio tuyo!

Espíritu Santo… Tu compañía durante estos años universitarios me fue

reconfortante, dulce y sincera. Siempre tienes las palabras que me hacen falta.

Jamás pensé llegar a conocer a alguien tan especial. De haberlo sabido tiempo

atrás, te hubiese entregado todo mi corazón. Jamás soñé que se pudiera vivir un

pedazo de cielo, aquí en la tierra. Gracias, nunca me dejes por favor!

Agradezco a mis Padres, Paulino y Maribel quienes se esforzaron por hacer de

mí una persona honorable. Sus oraciones, pudieron más que las falsas

expectativas de las personas. Gracias por proveerme de un dulce hogar.

Anthony, tu vida es un ejemplo digno de imitar.

Yan Marcos, fiel amigo bendigo el día en el cual te conocí.

Ana María, dulce amiga… Afectaste mi vida más de lo que te imaginas.

Agradezco a de manera especial a Don Felipe Burneo Temple y a Doña Ivy

Valdivieso Cerdeña por recibirme con los brazos abiertos en la empresa que

dirigen. Gracias por el buen trato.

Agradezco al Biólogo Pesquero Mario Arangurí, por compartirme sus

conocimientos durante el periodo de prácticas, fue grato aprender de usted

maestro. Gracias por la paciencia que me tuvo.

Agradezco al Ingº Juan Resurrección huertas por asesorarme durante el período

de prácticas de manera desinteresada.

ANGEL OMAR DIAZ TORRES

Page 3: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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RESUMEN

En el presente informe se narra en forma detallada, los conocimientos adquiridos

durante el desempeño de las prácticas pre-profesionales, desarrolladas en la

langostinera “BUVA CAMARON SAC”. Lo cual permitió reforzar los conocimientos

teóricos recibidos durante los años de formación académica.

La empresa se dedica al cultivo intensivo de langostino de mar (Litopenaeus

Vannamei).

Durante el lapso de los 90 días del desarrollo de las prácticas, se adquirió los

siguientes conocimientos:

- Se logró adquirir conocimientos en cuanto a los manejos de controles limnologicos

físicos y químicos.

- Se obtuvo dominio sobre los sistemas de alimentación del langostino, en sus

diferentes fases.

- Se logró adquirir conocimientos acerca de la metodología aplicada en la siembra de

postlarvas.

- Se Adquirió conocimientos sobre el manejo especializado y controlado de la crianza

de langostinos en sistemas de estanquerias.

- Se logró adquirir conocimiento sobre tratamiento de enfermedades.

- Se obtuvo conocimientos sobre las diferentes técnicas empleadas en la cosecha de

langostinos.

- Se alcanzo la debida instrucción en la formulación y solución de problemas que se

puedan presentar durante el cultivo.

Page 4: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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I. INTRODUCCION

En el mundo, la acuicultura ha crecido notablemente en los últimos 60 años,

pasando de menos de un millón de toneladas en la década de 1950, a 51.7

millones de toneladas en 2006 con un valor de 78,800 millones de USD. A pesar

de que la producción por pesca de captura dejó de crecer en la década de 1980, el

sector acuícola mundial ha mantenido una tasa de crecimiento medio anual de

8.7% (excluyendo a China, con un 6.5%) desde 1970 (FAO, 2009).

Según la FAO (2009), la acuicultura representa en la actualidad el 76% de la

producción mundial de peces de aleta de agua dulce y el 65% de la producción de

moluscos y peces diádromos. Su contribución al suministro mundial de crustáceos

ha crecido rápidamente en el último decenio y ha alcanzado el 42% de la

producción mundial en 2006 y, en ese mismo año, proporcionó el 70% de los

langostinos y gambas (penaeidos) producidos en todo el mundo.

El cultivo comercial tecnificado de langostino de mar (Litopenaeus vannamei) es

una actividad que el hom bre ha desarrollado en los últimos 25 años. Es la especie

de mayor importancia acuícola en las Américas. Esta especie pertenece a la

Familia Penaeidae, y se encuentra distribuida en las aguas costeras (litorales) del

Océano Pacífico, desde California hasta Perú.

La acuicultura de langostinos peneidos en el Perú se inició en la década del 70 en

el departamento de Tumbes, único con una porción de territorio con condiciones

climáticas apropiadas. Debido a lo atractivo de esta industria, rápidamente adquirió

un importante rol en la economía de esta región, y por muchos años en la principal

actividad de la acuicultura peruana.

Hacia fines de la década del 90 (años 96 y 97), se alcanza los mejores

rendimientos con producciones de 6,200 TM/año que representaron US $ 45

millones de exportación. Sin embargo, hacia el año 2000, se registran los menores

niveles de producción (560 TM) a consecuencia del virus de la mancha blanca,

evento que estuvo a punto de hacer colapsar esta industria no tradicional, en un

país netamente pesquero.

Pero debido a los proyectos gubernamentales, pero sobre todo al decidido impulso

de los empresarios peruanos, hoy en día esta industria está proyectada de manera

positiva a los años venideros.

Page 5: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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En el presente informe de Prácticas Pre – Profesionales, realizado en la

langostinera “BUVA CAMARON - SAC”, se detalla con objetividad todas las

actividades realizadas, con la finalidad de argumentar los conocimientos adquiridos

sobre el manejo especializado y controlado del langostino (Litopenaeus vannamei).

Y a su vez contrastar los conocimientos teóricos en el ejercicio de la práctica por

medio de la confrontación directa de estos, con los hechos y ocurrencias en el

mismo campo de acción, para lo cual ha sido de vital importancia la participación

en todas las actividades que a diario se realizan en la langostinera “BUVA

CAMARON - SAC”.

La langostinera, posee una infraestructura que sólo permite desarrollar el cultivo

del langostino desde la siembra de postlarvas hasta su comercialización, más no la

reproducción del mismo.

La práctica ha sido de mucho beneficio personal, puesto que los conocimientos

prácticos adquiridos han fortalecido mis conocimientos y mi aprendizaje teórico,

también me es necesario dar a conocer que las prácticas realizadas ampliaron mi

panorama, puesto que influencio en cierta medida mi perspectiva acerca del sector

pesquero.

Estoy seguro y convencido que el presente informe será de mucho beneficio, para

todos aquellos estudiantes que al igual que su servidor, deseen seguir ampliando

sus conocimientos.

Page 6: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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II. OBJETIVOS

2.1 Generales

- Adquirir conocimientos y participar, en el manejo especializado y controlado del

cultivo del langostino. Fortaleciendo los conocimientos teóricos en el ejercicio de

la práctica.

2.2 Específicos

- Adiestrase en el manejo de los controles limnológicos.

- Conocer las técnicas y métodos aplicados en la siembra de postlarvas.

- Adquirir conocimientos sobre el manejo especializado y controlado de la crianza

de langostinos en sistemas de estanquerías.

- Aprender y manipular los sistemas de alimentación del langostino en sus

diferentes fases: postlarvas, juveniles, adulto.

- Realizar el tratamiento y la profilaxis de las enfermedades.

- Adquirir conocimientos sobre las diferentes técnicas empleadas en la cosecha de

langostinos.

- Instruirse en la formulación y solución de problemas que se puedan presentar

durante el cultivo.

Page 7: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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III. MATERIALES Y METODOS

3.1 MATERIALES Y EQUIPOS

3.1.1 Material de Campo

Atarraya.

Baldes de plástico de 20 litros.

Bote de fibra de vidrio.

Comederos de 50 cm de diámetro.

3.1.2 Material de Laboratorio.

Probeta de 100 ml. de volúmen.

Peachimetro digital

Refractrómetro

Termómetro

Disco secchi.

3.1.3 Materiales de Almacén.

Machete

Driza (cabo)

Palas

Baldes de plásticos de 20 litros.

Motobomba

Madera

Mallas

Tinas

Cubo

Bandejas

Costale

Dinos

Comederos

Page 8: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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3.1.4 Materiales de Escritorio.

Libreta de apuntes.

Tablero

Lapicero.

Calculadora científica.

3.1.5 Insumos

Alimento balanceado – Nicovita.

Melaza.

Fertilizante.

Rotenona al 8%.

Hidroxido de Calcio

Nitrato de Sodio

3.1.6 Material biológico

Langostino de mar Litopenaeus vannamei.

3.3. BIOLOGIA Y BIOECOLOGIA DE LA ESPECIE

3.3.1. TAXONOMIA (Bibliografía C)

Clasificación Científica

Reino: Animalia

Filo: Arthropoda

Subfilo: Crustacea

Clase: Malacostraca

Orden: Decapoda

Suborden: Dendrobranchiata

Familia: Penaeidae

Género: Litopenaeus

Especie: L. vannamei

Nombre binomial

Litopenaeusvannamei (Boone, 1931)

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3.3.2 ANATOMIA Y MORFOLOGIA

3.3.2.1 ANATOMIA GENERAL (Bibliografía D)

El cuerpo de un langostino está dividido en dos partes, el caparazón,

que es el escudo sobre el cefalotórax y el abdomen. El caparazón es

conocido como la cabeza y el abdomen como la cola. El caparazón

contiene la cabeza y los órganos vitales, incluyendo el estómago.

La cresta en lo alto de la cabeza y el rostrum que en muchas especies

se extiende por delante de la cabeza son estructuras muy importantes

para distinguir especies. El abdomen está dividido en seis segmentos, el

último segmento termina en una estructura puntiaguda llamada telson.

(Anexo 1)

3.3.2.2 MORFOLOGIA EXTERNA (Bibliografía D)

Litopenaeus vannamei (Boone, 1031)

Una de las características de los crustáceos decápodos, y por lo tanto

de los langostinos, es que los 6 segmentos cefálicos y los 8 torácicos

están unidos en un solo bloque, protegido por un caparazón rígido, en el

que se encuentran 13 pares de apéndices: los 5 cefálicos (2 antena y 3

mandíbulas) y los 8 torácicos (3 maxilípedos y 5 pereiópodos).

En el cefalotórax encontramos los 2 ojos, pedunculados y móviles, el

rostro, bien desarrollado y con dientes en sus márgenes superior e

inferior, las 2 anténulas, con dos flagelos largos cada una, las 2

antenas, con su escafocerito bien desarrollado, las piezas bucales,

mandíbulas y maxilípedos (pediformes el 2º y 3º par) y los pereiópodos,

con el 1º y 2º par acabados en pinzas (más largo el 2º par y con una

pinza más robusta) y los otros 3 pares acabados en una uña. (Anexo 2)

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3.3.2.3 MORFOLOGIA INTERNA (Bibliografía D)

Los langostinos peneidos poseen un sistema circulatorio abierto con un

corazón muscular dorsal localizado en el cefalotórax. Se denomina

hemolinfa a la sangre y a las células de la sangre y hemocitos

respectivamente. (Anexo 3)

Los vasos sanguíneos (con válvulas) dejan el corazón y se ramifican

varias veces antes de que la hemolinfa llegue a los senos sanguíneos

ubicados por todo el cuerpo y donde el intercambio de gases se

produce. Después de pasar por las branquias la hemolinfa retorna al

corazón por medio de tres aberturas sin válvulas ubicadas en las

paredes del corazón.

Gran parte del cefalotórax está ocupado por el hepatopáncreas. Esta

glándula digestiva está formada por divertículos del intestino. Los

espacios entre los túbulos son senos de hemolinfa. La principal función

del hepatopáncreas es la absorción de nutrientes, almacenaje de lípidos

y producción de enzimas digestivas. Uno de los vasos sanguíneos que

dejan el corazón termina en el órgano linfoide, en donde la hemolinfa es

filtrada. Este órgano está localizado ventro-anteriormente al

hepatopáncreas.

Los hemocitos son producidos en el tejido hematopoyético. Este órgano

está disperso en el cefalotórax y mayormente presente alrededor del

estómago y en la base de los maxílipedos.

3.3.3 CICLO VITAL (Bibliografía 1) (Bibliografía 2)

El ciclo vital de un peneido típico como las especies que se hallan en

Ecuador, Brasil, costa atlántica de Estados Unidos y México; costa pacífica de

Perú,y Asia se muestra en el - Anexo 4.

La maduración y reproducción de estas especies se realiza en aguas

profundas, entre 15 y 60m; las hembras fecundadas ponen huevos en

cantidades variables de acuerdo con la especie (entre 10.000 y 1.000.000).

Al cabo de un tiempo, estos eclosionan en una serie de estadios

denominados postlarvas, cada uno de los cuales tiene características

morfológicas determinadas y diferentes requerimientos nutricionales.

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a. Desarrollo larvario

El siguiente cuadro muestra los distintos estadios larvales, forma de

alimentación y comportamiento. (Anexo 5)

Como se puede observar en el - Anexo 4, las postlarvas y/o juveniles

migran hacia la costa, a aguas menos profundas y de baja salininidad: por

ejemplo, zonas de manglar, esteros, lagunas, ricas en materia orgánica,

donde crecen hasta alcanzar estadios de adulto o pre-adulto migrando

luego a mar abierto para madurar y reproducirse.

El siguiente cuadro muestra los distintos estadios larvales y sus principales

características.

ESTADIO ALIMENTACION

PRINCIPAL

COMPORTAMIENTO

Huevo - Flota, tendencia a

depositarse en el fondo

Nauplius Sus propias reservas Locomoción por antenas,

planctónicas

Protozoea Filoplancton Planctónicas, natación por

apéndices cefálicos

Mysis Zooplancton Planctónicas, natación por

apéndices del tórax

Postlarvas Zooplancton y

posteriormente

alimentación omnívora

Los primeros estadios son

planctónicos, luego de

hábitos bentónicos,

natación por pleópodos

ESTADIO

PRINCIPALES CARACTERISTICAS

Huevo -

Nauplius Presenta un cuerpo periforme con tres apéndices.

Primeras antenas, segundas antenas y mandíbulas con

función natatoria. Presenta fototactismo positivo y,

dependiendo de la especie que se trate, comprende de 5

a 6 sub-estadíos, Miden desde 0,32mm de longitud en

nauplio I y hasta 0,58mm en nauplio VI

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b. MUDA (Bibliografía 1)

El hecho importante que relaciona la muda con el crecimiento es que

cuando el animal pierde su viejo esqueleto, inmediatamente comienza a

absorber agua aumentando su volumen con lo cual la nueva cutícula se

expande; luego el volumen ocupado por el agua es reemplazado por

tejidos y en esa forma el langostino crece.

El período de muda es crítico, porque el langostino se encuentra

desprotegido, es fácil presa de predadores, siendo ésta la etapa en la cual

se observa una mayor mortalidad.

Drach en 1939, determinó los estadios de muda de Crustáceos Decápodos

Braquiuros, sobre la base de cambios tegumentarios, extendiendo este

trabajo a todos los decápodos en 1944, dividiendo el ciclo en 4 estadios:

ESTADIOS CAMBIOS TEGUMENTARIOS

Post-muda Período de turgencia debido a la absorción de agua;

los animales no se alimentan.

Intermuda Período de actividad secretora de la epidermis,

crecimiento de los tejidos, el animal se alimenta.

Protozoea Presenta 3 subestadíos que se caracterizan por cambios

morfológicos y sus respectivas mudas. El cuerpo se divide

en dos partes principalmente: un caparazón con forma

hexagonal irregular y la porción posterior dividida en un

tórax con seis segmentos y un abdomen no segmentado.

Mysis El cuerpo se alarga y adquiere una apariencia similar a la

post-larva. Uno de los rasgos particulares del estadío de

mysis es la forma de nadar. Esta se produce en su mayor

parte con la cabeza, hacia abajo y avanzando hacia atrás,

con el abdomen hacia adelante.

Postlarvas El paso de misys a post-larva va acompañado de cambios

poco notorios. Lo más importante es la desaparición de

los exopoditos de los pereiópodos y el desarrollo de setas

en los pleópodos, que su vez se convierten en los

apéndides natatorias.

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Premuda Se inicia la reabsorción del antiguo exoesqueleto y

comienza a formarse una nueva cutícula, el animal no

se alimenta.

Exuviación o

ecdisis

Pérdida del viejo esqueleto.

En general los animales más pequeños tienen un ciclo de muda más breve

por acortamiento del período de intermuda. Este fenómeno ha sido

mencionado también para otras especies de langostinos peneidos y

relacionado no sólo con factores internos, sino también con factores

ambientales como la temperatura y el fotoperiodo.

c. MADURACION SEXUAL (Bibliografía 1)

Es el proceso por medio del cual machos y hembras de una especie

desarrollan sus órganos genitales. (Anexo 6). A continuación se

presentan los 6 estadios dados en los peneidos

Estadio I: Gónadas invisibles a través del exoesqueleto. Aspecto

filiforme, muy pequeñas comparadas con los demás órganos y

confinadas al abdomen, muy fláccidas y de color blanco translúcido.

Estadio II: Gónadas invisibles a través del exoesqueleto. Con aspecto

filiforme pero con un esbozo de desarrollo del lóbulo anterior,

transparentes y con muy poco cromatóforos.

Estadio III: Gónadas invisibles a través del exoesqueleto. Hay un

alargamiento importante, reconociéndose un lóbulo anterior con

lobulaciones digitiformes que cubren el hepatopáncreas y la región

abdominal más engrosada y bien diferenciada del intestino. Son

transparentes y con muchos cromatóforos.

Estadio IV: Ovarios visibles a través del exoesqueleto. Se diferencian

tres regiones: una anterior con dos lóbulos, media con varias

lobulaciones y posterior que se continúa hasta el telson. El color es

verde pálido.

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Estadio V: Ovarios visibles a través del tegumento. Color verde oliva

con cromatóforos. La región anterior compuesta por dos lóbulos

doblados en forma de gancho que llegan al extremo de la región

cefálica, la región media con 6 lobulaciones laterales digitiformes y una

región posterior abdominal que se extiende hasta el telson.

Estadio VI: Las mismas características externas del estadío V, pero la

consistencia es muy fláccida y cremosa, deshaciéndose al tratar de

removerlo. Color verde rojizo. Son los ovarios desovados.

3.3.4. DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA

Esta especie se encuentra distribuida desde el golfo de California,

atravesando las aguas costeras del Océano Pacífico, hasta Tumbes, Perú

3.3.5 PARAMETROS FISICOS – QUIMICOS (Bibliografía 1)

El langostino para reproducirse y desarrollarse adecuadamente necesita

aguas cuyos parámetros físicos y químicos fluctúen dentro los rangos

siguientes.

a) PARAMETROS FISICOS

-Temperatura: 25 – 35ºC.

-Transparencia: 30 – 45 cm

-Color: Verde Claro

b) PARAMETROS QUIMICOS

-Alcalinidad: >80,0 ppm

-Amonio: <0,10ppm

-pH: 7,0 – 8,0

-Oxígeno disuelto: >4,0 ppm

-Salinidad: 28 – 35 ‰

3.4 METODOS

La metodología empleada en las prácticas realizadas, fue de participación directa

en todas las labores que día a día se realiza en la langostinera “Buva Camarón –

SAC”. Técnicamente las actividades realizadas seguían un patrón normal

establecido en todo proceso de cultivo y/o crianza de recursos hidrobiológicos. A

excepción de la reproducción de postlarvas.

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1. Preparación de los estanques

2. Siembra del estanque

3. Manejo del alimento

4. Monitoreo Biométrico

5. Manejo de la calidad del agua

6. Monitoreo de la calidad de Agua – Control Limnológico

7. Limpieza y mantenimiento

8. Cosecha

3.4.1 ÁREA DE ESTUDIO (Bibliografía A)

La Langostinera "BUVA CAMARON SAC" se encuentra en ubicado en el

departamento de: Tumbes, Provincia: Tumbes, Distrito: Puerto Pizarro cerca de

los manglares del mismo.

• Latitud: 03° 29' 07.55" S

• Longitud: 80° 21' 57.25" W

La langostinera "BUVA CAMARON SAC" se encuentra a la altura del kilometro

1278 de la panamericana norte, carretera que comunica a la langostinera con la

localidad de Puerto Pizarro. Un kilometro antes de llegar a esta, se desvía hacia la

derecha por una carretera de tierra (como se indica en la figura con una línea de

color amarillo), luego se llega a un estero el cual se cruza a través de una canoa,

para luego llegar al campo por medio de un tractor.

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3.4.2 ACTIVIDADES REALIZADAS EN LA LANGOSTINERA “BUVA CAMARON SAC”

Durante el tiempo de las prácticas realizadas, se contó con la fortuna de poder

contemplar el ciclo completo de las operaciones de una granja langostinera.

Por lo cual, a continuación pretendo describirlo de manera sistemática, para poder

tener un panorama real y global del cultivo.

3.4.2.1 INFRAESTRUCTURA

El campo de la empresa “BUVA CAMARON - SAC” se encuentra

completamente cercado con alambres de púas.

El campo cuenta con un campamento en el cual se ubica: La cocina, el

comedor, las habitaciones (tanto para el personal obrero como para el

ingeniero) y un servicio higiénico respectivo.

La langostinera, también cuenta con un almacén para el alimento

balanceado y dos estaciones de bombeo.

Estaciones de bombeo. (Anexo 7)

Estación Numero de Bombas Diámetro (cm)

1 2 20 30

2 2 28 20

Entrando en detalle, el campo también cuenta con canales de

abastecimiento de agua para cada estanque respectivamente. Los

canales de alimentación para los estanques 1,2,3,4,5 son de concreto

armado. Los canales de alimentación para los estanques 6,7 son de

geomenbrana de PVC.

Los estanques son de tierra, realizados a tajo abierto, su distribución es

en paralelo. Cada estanque cuenta con una entrada y salida (monje) de

agua, ambos de concreto armado. Los estanques cuentan con diques

de 4 metros de ancho, los cuales permiten el paso de un tractor,

además de facilitar el desplazamiento de la gente, las labores de

evaluación y alimentación.

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Estanques (Anexo 8)

Estanque Ha Tipo de suelo

1 12,10 Grava

2 5,45 Grava

3 6,50 Grava

4 3,20 Grava

5 2,75 Grava

6 5,23 Arena

7 3,50 Arena

El campo no cuenta con un servicio de energía eléctrica. Es por ello que

los trabajos se realizan, solo mientras se tenga luz diurna, es decir; de

6:00 a.m. a 18.30 pm.

En lo que respecta al agua el campo no cuenta con un servicio

exclusivo. Pero si cuenta con instalaciones de agua dulce proveniente

de un poso subterraneo a 150 metros de profundidad aproximadamente,

ubicado cerca a la estación de bombeo.

3.4.3 PREPARACION DE ESTANQUES. (Bibliografía 3),

a) Drenado total

En primera instancia, el estanque debe ser drenado totalmente una vez

finalizada la cosecha. Una vez finalizado el drenaje, la compuerta de

entrada de agua es sellada. Así también la compuerta de salida de agua

(monje) procede a ser sellada herméticamente, esta acción se realiza

para evitar la entrada de agua durante las mareas altas.

b) Secado (Anexo 10)

Es necesario dejar reposar o restaurar el medio ambiente en la granja

langostinera, mediante la interrupción de la producción; durante la

estación seca (verano) se puede conseguir un secado total y en la

estación lluviosa un secado parcial dado las condiciones propias del

clima. Dentro del vacío sanitario los estanques son sometidos a un

período prudente de secado por la acción del sol y viento hasta que el

fondo desarrolle cuarteaduras. Esto contribuye al desarrollo de

langostinos sanos ya que favorece un equilibrio químico, físico y biológico

en el estanque.

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Esta estrategia conocida como vacío sanitario, tiene como objetivos:

El poder romper los ciclos de reinfección, eliminando así las fuentes

de una enfermedad en los estanques y reservorios.

Permite también realizar mejoras y reparaciones importantes en la

infraestructura de las granjas, así como acondicionar los fondos de

los estanques para crear un ambiente saludable para los langostinos

del siguiente ciclo.

Permite oxidar sustancias reducidas (sulfuros inorgánicos presentes

en el suelo del estanque).

Permite acelerar la descomposición de la materia orgánica a través

de las bacterias, para su respectiva mineralización.

Ayuda a desinfectar el fondo.

Notas:

* La descomposición de la materia orgánica durante el secado, es

mucho más rápida en la arena, no así el caso para la arcilla, grava.

*Durante el secado, sólo es necesario que haya cuarteaduras. Más

no es recomendable esperar que toda la humedad del suelo sea

eliminada por acción del sol. Puesto que mientras haya humedad,

habrá bacterias nitrificantes que descompondrán la materia

orgánica.

Pero si se llega a esperar hasta un secado total, en el cual no haya

humedad en el suelo, se eliminaría las bacterias nitrozomas y

nitrobacter lo cual tendría un efecto negativo cuando iniciamos el

cultivo nuevamente. Puesto que se tendría que esperar que haya

una nueva proliferación de los mismos, y mientras ocurre ello habrá

mayor cantidad de materia orgánica sin iniciar el proceso de

mineralización.

*La descomposición de la materia orgánica, se inicia desde la parte

inferior del suelo hacia la superior.

*Durante la etapa de secado, muchas veces por falta de

mantenimiento del estanque, los canales son rellenados por la

erosión del dique. Lo cual produce un estancamiento del agua no

evacuada. Si el nuevo ciclo de producción, no brinda el tiempo

necesario para esperar a la evaporización del agua estancada, se

procede a evacuarla con la ayuda de una motobomba.

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* En el caso de haya charcos de agua en el estanque, se procede a

agregar un biocida (barbasco o rotenona) para los peces existentes:

- La proporción es 6 puñados para 17 litros.

- El método consiste en cambiar el color del agua del charco, con

la solución preparada.

El efecto, de los biocidas es inmediato, pero si se diera el caso de

que al día siguiente se comenzara el llenado del estanque para la

siembra de postlarvas, se recomienda dejar que el biocida actué

durante 1 día, esto se hace con motivo de prevención.

c) Extracción de materiales extraños de los estanques.

En tanto se realiza el secado del suelo, se debe eliminar todo

material extraño dentro de los estanques (alambres, troncos,

metales, piedras, vidrio, palos, plásticos, sacos, etc.) debe recogerse

y ser manejado es sitios previamente establecidos para su reciclaje.

Estos materiales extraños, pueden afectar el buen desarrollo de las

actividades de producción, así como la integridad física de los

trabajadores. Por ejemplo: Durante los muestreos biométricos se

puede alterar la efectividad de las capturas con atarraya; pueden

ocasionar accidentes a los operarios o, se pueden convertir en

refugios de organismos que inciden en los resultados de producción.

d) Limpieza de estructuras y materiales empleados en el cultivo.

Se debe realizar la limpieza y desinfección de compuertas de entrada

y salida de agua, canales, tablas, marcos, mangas, drizas y boyas.

e) Evaluación de la condición del fondo de los estanques

Un análisis de suelo debe incluir información básica sobre:

Composición de materia orgánica (%)

pH

Nitrógeno

Fósforo

Sulfatos

Hierro

Carbonato de calcio

Carbonato magnesio

Carbonato de potasio.

Page 20: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

20

Los principales parámetros que determinan el estado o condición del

fondo de los estanques son:

-El porcentaje de materia orgánica

-El pH del fondo.

Si el suelo del estanque presenta condiciones ácidas (pH < 7), se

deberá aplicar preferiblemente cal agrícola para corregir la acidez

(subir el pH).

f) Manejo de sedimentos

El langostino pasa la mayor parte de su tiempo en el fondo del

estanque, por lo que es esencial para su salud que los suelos sean

mantenidos en buenas condiciones de manera permanente. Un gran

problema que se presenta en el cultivo es la acumulación de

sedimento suelto, ya sea de fuentes externas al lugar o del sitio

mismo.

Lo que se hace con el sedimento que se acumula en el fondo

después de varios ciclos de cultivo es usarlo para restaurar las

secciones transversales de los muros, mejorando así los taludes, la

altura y la corona.

Esta operación se hace con una buena compactación, para evitar

que este material contamine el estanque por erosión o

deslizamientos.

g) Arado del fondo de los estanques(Anexo 11)

El arado del fondo de los estanques es recomendable, cada uno o

dos años, según las condiciones propias que presenta cada

estanque.

Con el arado, se logra dar mejores condiciones al suelo para

garantizar un ambiente apropiado para el engorde del langostino

(aireación, mineralización, desinfección y oxidación).

Para lograr un resultado eficiente de la operación de arado del suelo,

este debe tener una adecuada humedad yaqué en suelos

extremadamente húmedos o excesivamente secos, no se logra un

rendimiento adecuado del equipo, ni del proceso de arado como tal.

Page 21: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

21

Para un adecuado arado del suelo, se deben utilizar equipos

agrícolas adecuados como la rastra o la semi-roma, ya que son más

eficientes para esta operación.

También es necesario agregar que durante la faena de arado de un

estanque, se debe aprovechar para incorporar cal u otros insumos

destinados al mejoramiento de las características del suelo. Esta

condición del suelo favorece la incorporación y acción de los insumos

que son aplicados durante la preparación; así también, ofrecerá un

fondo que facilitará algunas de las actividades fisiológicas del

langostino, tal como la muda.

h) Llenado del estanque

Esta operación consiste en colmar el estanque de agua, hasta el

nivel previamente establecido. Ejemplo:

- 0,50 cm; 0,70cm; 0,80cm; 0,90cm.

El proceso de llenado debe ser lento y con supervisión estricta para

garantizar:

Un filtrado puntual en las mangas (Mallas filtradoras, ubicadas

en la entrada de agua al estanque.) (Anexo 12)

Un filtrado puntual en los bolsos (Mallas filtradoras, ubicadas al

final de los ductos de las bombas)

Para ello se debe contar con un buen plan para contemplar el

momento y tiempo puntual de uso de cada filtro, revisión diaria y

proceso de mantenimiento y almacenaje de los residuos hallados.

h.1 Instalación de materiales.

Antes de iniciar el llenado del estanque, es necesario instalar:

a) Mallas filtradoras

Las mallas filtradoras cumplen la función de reducir la entrada de

organismos no deseables al cultivo, puesto que afectan los

rendimientos de la producción, debido a que los organismos que

ingresan pueden ser fuentes de:

Depredación

Competición

Contaminación con patógenos

Page 22: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

22

b) Marcos filtradores

También es necesario instalar marcos filtradores en la

compuerta de salida del agua (monje), para evitar la fuga

accidental de las postlarvas. Puesto que al sembrar las

postlarvas, estas tienen un tamaño minúsculo. Estos marcos

filtradores, tienen que permanecer instalados los primeros 30

días.

h.2 Análisis Biológico

La fertilización del agua de los estanques, se realiza para buscar un

equilibrio iónico y bioquímico que favorezca el crecimiento de la

productividad natural (fitoplancton, fitobentos, zooplancton y

zoobentos).

Esto debido a que las los postlarvas durante los primeros días de su

cultivo, se alimentan de filoplancton (diatomeas).

Para ello, durante el llenado se debe hacer un análisis del agua:

a) Análisis de laboratorio.

Consiste en realizar un examen a las condiciones físico-química

del agua del estanque.

b) Análisis directo.

Consiste en observar el color del agua. Tomando en cuenta lo

siguiente:

b.1 Cuando el color del agua presenta una condición

transparente. Esta significa que no existe, productividad

natural (fitoplancton, fitobentos, zooplancton y zoobentos).

Por lo tanto; es necesario fertilizar.

b.2 Cuando el color del agua del estanque, presenta una

coloración verde claro. Significa que existe, productividad

natural (fitoplancton, fitobentos, zooplancton y zoobentos).

Por lo tanto; no es necesario fertilizar.

c) Análisis con Disco Secchi.

Consiste en realizar mediciones con la ayuda de un Disco Secchi,

para luego tomar una decisión mediante la siguiente tabla.

Page 23: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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Profundidad (cm) Concentración de fitoplancton

Decisión

< 25 cm

Demasiada concentración de fitoplancton

No fertilizar, es peligroso.

25-30 cm Alta concentración de fitoplancton

No fertilizar.

30-45 cm La concentración de fitoplancton es buena.

No fertilizar.

45-60 cm El fitoplancton está escaso Eventualmente

> 60 cm El agua está demasiado clara. La productividad es

inadecuada.

Obligatorio

c.1 Aplicación de fertilizante

La proporción para fertilizar un estanque es la siguiente:

a. Se inicia con 25kg x Ha. (Para iniciar la productividad natural)

b. Se mantiene con 10-15 kgxHa. (Para mantener la proliferación

de la productividad natural.) Esta segunda operación se

realiza, hasta que las postlarvaspuedan mantener la

productividad natural del medio por sí mísmas, a través de

sus heces, carapachos, alimento balanceado no consumido,

etc.

Para fertilizar el agua se realiza lo siguiente:

Se mezcla en un recipiente el fertilizante con agua (del

estanque), hasta diluir el soluto.

Luego se procede a aplicar la solución al estanque, con la

ayuda de una canoa. Para ello se toma como guía las líneas

de los comederos.

Notas:

*Cuando el estanque es llenado con agua proveniente del

estero, no es necesario fertilizar. Puesto que existe

productividad natural; Debido a que otras langostineras

evacuan aguas cargadas de productividad natural hacia el

estero.

*Cuando el estanque es llenado con agua proveniente

directamente del mar, esta presenta una escaza productividad

natural. Por lo cual, si es necesario fertilizar. (Anexo 13)

Page 24: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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h.3 Análisis Microbiológico

También es necesario realizar un análisis microbiológico del agua del

estanque, para determinar si es necesario aplicar melaza, probióticos

u otros insumos dirigidos a promover o corregir el crecimiento de

microorganismos relacionados con el desempeño de las postlarvas

del langostino. De esta manera, promover un equilibrio microbiano en

el estanque.

3.4.4 SIEMBRA DEL ESTANQUE

El proceso de siembra de los estanques, es definitivo para el éxito del cultivo,

por ello se debe considerar:

a. Fuente de la Postlarva

El éxito de una granja, está condicionada entre otros factores:

La disponibilidad de una fuente confiable de postlarvas.

Asegurar la obtención de larvas saludables y vigorosas.

La compra de postlarvas de dudosa salud y calidad, constituye un alto riesgo

tanto económico como ambiental, dado que la introducción a las granjas de

animales enfermos o portadores de agentes patógenos, facilita la

transmisión y diseminación de enfermedades infecciosas. Por ello es

necesario adquirir postlarvas, solamente de laboratorios que tengan

vigilancia sanitaria. Es interesante conocer que los laboratorios producen

postlarvasresistentes a enfermedades virales. Es por ello que no es

recomendable el uso de postlarvas silvestres. Puesto que estos pueden

trasmitir patógenos virales. (Bibliografía E)

Las postlarvasde buena calidad, deben estar libres de organismos

infecciosos tales como: (WSSV), (IMNV), (YHV), (TSV), (IHHNV), (PvNV)

(BP), (NHP) y presentar un buen estado de salud general. Además, deben

presentar un buen desarrollo branquial y tener un desarrollo morfológico

acorde con su edad (estadio vs. longitud en mm), así también presentar

fortaleza durante pruebas de estrés.

Page 25: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

25

La empresa “BUVA CAMARON - SAC”, adquiere postlarvas del país vecino

Ecuador, debido a que los laboratorios de la zona, producen postlarvas de

mala calidad generando así un bajo porcentaje de sobrevivencia. La

langostinera trabaja con el laboratorio COSTAPAC LARVAS S.A. la cual

está ubicado en la provincia de Manabi, el pedido se realiza de acuerdo a la

salinidad que uno requiere, la empresa realiza pedidos con una salinidad de

35‰. Es importante añadir que el laboratorio, sólo aclimata las larvas a las

salinidades que el cliente requiere, más no así para el caso de la

temperatura. Es por ello que las postlarvas requieren un proceso de

aclimatación antes de ser dispuestos en los estanques.

Las larvas se compran "cubicadas", es decir, se tiene una medida exacta

para las ventas, que en el caso de langostinos, es siempre por cuarto de

libra.

El precio promedio de millar de postlarvas:

PL-5 es de USD$ 1.00

PL-6 es de USD$ 1.50

PL-45 es de USD$ 3.00

Cuando las postlarvas son importadas, tienen que contar con una

certificación sanitaria de su país de origen, que incluye los principales

agentes patógenos tales como:

Virus del Síndrome de la Mancha Blanca (WSSV),

Virusde la Mionecrosis Infecciosa (IMNV)

Virus del Síndrome de la Cabeza Amarilla (YHV)

Virus del Síndrome de Taura (TSV)

Virus de la Necrosis Infecciosa Hipodérmica y Hematopoyética(IHHNV)

Nodavirus del Penaeusvannamei(PvNV)

Baculoviruspenaei(BP)

Alfa Proteobacteriacausante de la Hepatopancreatitis Necrotizante

(NHP)

Vibrio penaeicida.

Antes de que las postlarvas puedan ingresar al país (Perú). Se envía una

muestra de las postlarvas hacia el laboratorio de IMARPE. La cual realiza

los exámenes respectivos para descartar la presencia de los agentes

patógenos (mencionados anteriormente), para así poder otorgar una

certificación sanitaria. Permitiendo de esta manera el ingreso de las

postlarvas al país.

Page 26: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

26

b. Calidad de la Postlarvas. (Anexo 14)

Es necesario conocer la historia clínica de cada lote de postlarvas a

comprar. Para asegurar la calidad de las postlarvas, se debe:

Realizarse una evaluación microscópica y molecular.

Una revisión macroscópica para determinar tamaño, presencia de

deformidades.

Una revisión macroscópica para determinar la homogeneidad de tallas.

Una revisión macroscópica para determinar actividad, contenido y

movimiento intestinal.

Una revisión macroscópica para determinar la presencia de epibiontes.

Una revisión macroscópica para determinar la opacidad muscular,

desarrollo branquial, cambios de color y melanización de apéndices.

De igual manera, se debe hacer una prueba de estrés.

Procurar observar las postlarvas en la oscuridad, con el fin de detectar

posible bioluminiscencia.

3.4.4.1 OPERACIÓN DE SIEMBRA

Para lograr la cantidad de producción, se necesitan realizar los

cálculos de requerimiento de larvas y alimento básicamente; estos

cálculos, se realizan en función a la densidad de siembra por m2.

Durante el tiempo de las prácticas realizadas, se sembraron los

siguientes estanques:

Estanque (Numero)

Ha Densidad de Siembra (m2)

Post-Larvas

1 - - -

2 - - -

3 6,50 18,46 1 200 000

4 3,20 18,43 590 000

5 - - -

6 5,23 18,04 960 000

7 3,50 18,57 650 000

Ahora bien, debemos tener en cuenta que el llenado del estanque, se

tiene que realizar de 7 a 10 días antes de la siembra. Esto se realiza

con el fin estabilizar las condiciones del medio.

Page 27: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

27

También es necesario confirmar con anticipación mediante

monitoreos periódicos de parámetros físico-químicos y biológicos,

que las condiciones del agua de los estanques son aceptables para

recibirlas postlarvas

Dentro del proceso, es fundamental conocer los periodos de siembra

porque están condicionados por las estaciones del año.

Periodos de Siembra. Al sembrar los estanques, es fundamental

tener en cuenta las estaciones del año. (Anexo 15)

Verano – (21 de diciembre - 20 de marzo)

Otoño – (20 de marzo - 21 de junio)

Invierno – (21 de junio - 22 de setiembre)

Primavera – (22 de setiembre - 21 de diciembre)

Puesto que cuando se da los “cambios de estaciones” hay

variaciones drásticas de temperaturas (subidas y bajadas).

Cuando se dan estos “cambios de estaciones”, los langostinos se

estresan debido a subidas y bajadas de temperaturas, lo cual

estimula que estos muden. Al mudar, estos se hacen más

susceptibles a las bacterias, gases tóxicos, canibalismo, etc.

Generando así una mayor tasa de mortandad, puesto que estos

cambios de temperaturas afectan más a los langostinos que tienen

un gramaje alto (10gr, 11gr, 12gr, 13gr, etc). Más no así para las

postlarvas o juveniles.

Ejemplo: Teniendo en cuenta que a los 112 días se cosecha, el

langostino de 14gr.

-Siembro un estanque el 1 de diciembre. Por lo cual las postlarvas

tendrán un peso aproximado de 1,1gr el 21 de diciembre. Fecha en la

cual hay un “cambio de estación” (primavera a verano).

Pero como mencionamos anteriormente, debido al encontrarse en la

etapa juvenil, este no se verá afectado por estos cambios drásticos

de temperatura.

…Continuando con el ejemplo…

-Aproximadamente el 23 de marzo, el langostino ya estaría en 14gr.

Dispuesto para ser cosechado. Pero sucede que unos días antes (20

de marzo) hubo un “cambio de estación” de verano a otoño.

Page 28: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

28

Y precisamente como se encontraba en etapa adulta, si es afectado

por estos cambios de temperatura. Generando así una cierta tasa de

mortandad. Entonces como consecuencia al cosechar obtendremos

una biomasa menor de langostinos.

Solución: Este problema se corregiría, sembrando el 15 de

noviembre, y no un 1ero de diciembre. (Es decir, 15 días antes.) Si

fuere ello así, podríamos cosechar semanas antes, evitando así el

“cambio de estación”. Obteniendo de esta manera una mayor

biomasa de langostinos.

a. Preparación de Postlarvas para su transporte.

Las postlarvas, se prepara de la siguiente manera para su

transporte:(Anexo 16)

a. Bolsas de plástico (Doble) – Aprox 14 Litros de agua.

b. Se introduce Carbón activado*

c. Se introduce 4000 – 5000 Postlarvas.

d. Se infla la bolsa con oxígeno.

e. La bolsa, es amarrada con tiras de ule (ligas).

f. Se coloca la bolsa en una caja (40cm de altura x 30cm de

ancho).

*Carbón activado = Una partícula de carbón activo es

principalmente aire. Tiene miles de pequeños agujeros y

grietas a través de las cuales el agua puede circular. Cuando el

agua contiene una molécula orgánica, un contaminante, en

esos pasillos, se produce una fuerza de corto alcance entre la

molécula y el carbón activo y las moléculas se adherirán. Este

método se llama adsorción física. (Anexo 17)

b. Aclimatación de la Postlarvas.

El proceso de aclimatación se define como la gradual adaptación

de las postlarvas a las condiciones del nuevo estanque dónde

pasarán la siguiente etapa de su vida.

Las postlarvas de langostino constituyen uno de los insumos más

costosos en la producción de langostino de cultivo.

Page 29: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

29

La manipulación y manejo de las postlarvas incluyendo su

cosecha, empaque en el laboratorio, transporte, recepción en

granja, aclimatación y siembra en los estanques, son sumamente

críticos para su supervivencia.

Durante el proceso de aclimatación, todos los esfuerzos del

personal técnico deben enfocarse en reducir al máximo el estrés y

la mortalidad de las postlarvas mientras estas se adaptan

gradualmente a las nuevas condiciones de calidad de agua de los

estanques.

Una aclimatación exitosa contribuye a asegurar el éxito económico

del ciclo de cultivo.

1. Para iniciar la aclimatación de las postlarvas, se procede a

preparar un cerco con unas varas de madera y nilón, esto con

el fin de que las bolsas con las postlarvas no sean arrastradas

por efecto de las olas del estanque.

2. El proceso de aclimatación típicamente se enfoca en las

posibles diferencias en la calidad del agua entre el transporte y

el estanque en dónde se sembrarán los animales en su destino

final. Los parámetros más importantes a tomar en cuenta en

este proceso son la temperatura, salinidad, pH y oxígeno del

agua.

3. Una vez, transportado las postlarvas desde los laboratorios

hacia la granja. Se procede a realizar una prueba directa.

Prueba directa:

Consiste en abrir una bolsa de postlarva e introducirlo en un

recipiente con agua, extraída del Estanque. Una vez realizado

ello, se espera la reacción de las postlarvas a las variaciones

de temperatura, durante un tiempo aproximado de 1 hora. Si

después de ese lapso de tiempo no se observa mortandad en

el recipientede las postlarvas, esto nos indica que se

adaptaron con éxito.

Una vez finalizada la prueba directa. Con resultados positivos

se procede a colocar las bolsas de las postlarvas en el

estanque. (Anexo 18)

Page 30: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

30

E inmediatamente se procede a quitar la primera bolsa, a

todas. Después de haber quitado todas las bolsas, se esperara

un lapso de tiempo de 30 minutos. (Este tiempo, es necesario

para aclimatar a las postlarvas). Transcurrido los 30 minutos,

procedemos a desatar todas las bolsas, para liberar a las

potslarvas. (Anexo 19).

-Cada bolsa, contiene un aproximado de 4000 – 5000

postlarvas.

3.4.5 ALIMENTACION

La nutrición del langostino está basada en alimentos artificiales suministrados

por el granjero y, por una importante variedad de organismos (algas, pequeños

invertebrados bentónicos, etc.) y detritos orgánicos, que son parte de la

productividad natural y del ambiente marino.

Uno de los costos de producción más elevados en la acuacultura es el alimento

balanceado, el cual llega a representar el 60% o más de los costos totales; por

tal motivo, el conocimiento de los requerimientos nutrimentales del organismo

cultivado y alimentarlo de la mejor manera para que aproveche eficientemente

el alimento suministrado, puede marcar la diferencia entre el éxito o el fracaso

económico del cultivo.

3.4.5.1 ASPECTOS IMPORTANTES DEL ALIMENTO

a. Aspectos Nutricionales del Alimento(Bibliografía 4)

En la alimentación, durante el crecimiento del langostino el

componente de mayor importancia son las proteínas.

Aproximadamente de los 40 nutrientes esenciales presentes en el

alimento, todos los aminoácidos, 10 de las vitaminas y la mayoría

de los minerales son solubles en el agua y esto constituye un

problema. Para el pez que consume el alimento casi de una vez,

tal como salmón ytrucha, el problema no es tan serio, pero para

peces que comen lentamente y especialmente para langostinos,

puede ser un problema la lixiviación de los nutrientes del alimento.

Page 31: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

31

Es peor aún en el langostino por la manera en que come. Los

langostinos son masticadores externos, lo que significa que

mastican el alimento fuera de su boca. Ellos rompen los pellets e

ingieren pequeñas partículas, pero no comen cada pizca: algunas

partículas se disuelven o se quedan en el fondo o flotando.

Los productores de alimento tratan coneste problema de varias

maneras:

*Primero, muelen los ingredientes a un tamaño muy pequeño para

dispersar nutrientes en los pellets. Si el langostino solo come una

pequeña esquina del pellet, esa esquina debe contener todos los

nutrientes esenciales en el alimento.

Pequeños tamaños de partícula en el pellet también previene que

el langostino agarre y escoja partículas para consumir.

Si el langostino prefiere las partículas de la harina de pescado

sobre las partículas de la mezcla de minerales en el pellet, la

molienda previene que coman todas las partículas de harina de

pescado y dejen las partículas de mineral y por ende deje de

consumir su requerimiento dietario de minerales.

*Segundo, los productores de alimento también usan aglutinantes

para incrementar la estabilidad en el agua.

Los aglutinantes usualmente no son ingredientes nutritivos, lo que

significa que ocupan espacio en la formulación del alimento y solo

contribuyen a la producción de sólidos fecales.

*Tercero, los fabricantes de alimento usan formas estables al agua

de algunos nutrientes, tales como productos encapsulados. Estos

productos pueden resistir la lixiviación, ser ingeridos, pero no

digeridos por el langostino.

El punto de este esfuerzo es incrementar la proporción de los

nutrientes en el pellet delalimento para langostinos que son

consumidos por el langostino y usados para crecimiento, para

hacerque el langostino sea parecido a la trucha en lo referente a

consumo y factores de conversión.

Page 32: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

32

b. Requerimiento Proteico del Langostino. (Bibliografía 5)

A continuación se muestra un cuadro con los requerimientos de

los aminoácidos esenciales de las larvas en los estadios Zoea,

Misis y Postlarva.

c. Tipo, tamaño, y precio del alimento balanceado para

langostino de mar.

El langostino tiene requerimientos nutricionales específicos en

cada etapa de su cultivo y por ello es necesario que el alimento

proporcione el balance óptimo de nutrientes así como un

adecuado tamaño de partículas.

En la empresa langostinera “Buva Camarón - SAC” El alimento

utilizado para la dieta alimenticia es elaborado por ALICORP_

Nicovita ® (Anexo 20) La inclinación a esta marca por parte de

la empresa, se debe a la obtención (por experiencia) de

mejores resultados en relación a otras marcas. (Purina,

Expalsa, Alimentsa).

En la siguiente tabla, se observa los productos que ofrece

ALICORP_ Nicovita ® al mercado: Nicovita langostino de mar:

(Bibliografía F )

AMINOACIDO

Requerimiento estimado (% de proteína)

Zoea Misis Postlarva

I II I II I II

Histidina 2.65 2.28 3.04 3.05 2.79 2.34

Argininina 5.60 4.83 6.26 6.28 2.34 4.81

Treonina 2.72 2.34 3.03 3.04 4.82 2.34

Metionina 2.33 2.01 3.28 3.29 2.34 3.06

Triptófano 0.88 0.76 1.37 1.37 3.07 1.27

Valina 3.66 3.15 3.07 3.08 1.27 3.11

Fenilalanina 3.52 3.03 3.17 3.18 3.11 3.07

Isoleucina 2.63 4.27 2.32 2.32 3.08 2.66

Leucina 5.56 4.79 4.78 4.79 2.67 4.79

Lisina 5.42 4.70 4.69 4.70 4.80 4.70

Page 33: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

33

d. El buen aprovechamiento del alimento depende de varios

aspectos.

Líneas parentales utilizadas: buena calidad de semilla.

Calidad del agua: la apetencia del langostino es

directamente proporcional a la calidad del agua.

Palatibilidad del alimento: aceptación del alimento por parte

del langostino.

Hidroestabilidad: el alimento no se desbarata al contacto

con el agua.

Tamaño del alimento: peletizado o extruido, alimento

flotante o de hundimiento lento.

Técnica de alimentación: tipo y forma de alimentar.

3.4.5.2 MANEJO DEL ALIMENTACION

a. Tasa de alimentación

Es la cantidad de alimento a suministrar a los langostinos en

el estanque.

Para ello debemos entender que un individuo cualquiera,

jamás podría consumir un 100% de su peso corporal. Esto

sería biológicamente imposible.

De la misma manera un langostino, necesita consumir sólo un

% de su peso corporal, más no el 100%.

PRODUCTO Proteína

(% Min)

Peso(gr) Calibre

(mm)

Etapa de Uso Precio (S/. x kg)

PRE-CRIA POLVO

40% PL 10 a 1 <0,25 Laboratorio, Raceway

PRE-CRIA GRANULAD

O

40% PL 10 a 1 0,30 – 0,80 Alimentación,

Raceway, Pre-cría

KR ½ 35% PL 10 a 1 0,50 – 1,00 Pre-cría, siembra

directa

KR1 35% 1 - 3 1,00 – 2,00 Pre-cría, siembra

directa, engorde inicial

1,98

KR2 35% 3 - 6 2,00 Engorde Inicial 2,14

ACA 23% 6 - Cosecha 2,50

Engorde

ACA 28% 6 - Cosecha 2,50 2,59

ACA 35% 6 - Cosecha 2,50

Page 34: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

34

A continuación, presento una tabla referencial de

alimentación.

Peso del Langostino (gr.) % del Peso Corporal

1 5.57

2 5.28

3 5

4 4.83

5 4.6

6 4.5

7 4.37

8 4.25

9 4.12

10 4

11 3.7

12 3.4

13 3.9

14 2.8

15 2.5

16 2.34

17 2.18

18 2.02

19 1.86

20 1.7

21 1.6

Es necesario recordar, que esta tabla presentada es de

referencia. Puesto que cada Ingeniero o biólogo pesquero,

desarrolla su propia tasa de alimentación a través de la

experiencia.

Nota: En el capítulo “Ración Alimenticia”, se realizara

ejemplos del uso de la tabla presentada.

ALICORP_ Nicovita ®. Distribuye una tabla de alimentación

en sus productos de Alimento balanceado. A continuación

presento dicha tabla:

Peso del Langostino (gr.) % del Peso Corporal

6 – 10 4 – 2.5

10 – 15 5.5 – 1.7

15 – 20 1.7 – 1.6

Más de 20 1.6

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35

b. Frecuencia y tiempo de alimentación

La frecuencia de alimentación, se refiere al número de veces

por día que se debe suministrar alimento a los langostinos.

En la langostinera “Buva Camarón - SAC”, el alimento

calculado para un día se divide en 2 raciones.

RACIONES PORCENTAJE TIEMPO

1º Ración 40% 8:00 am

2º Ración 60% 14:00 pm

b.1 Factores a tener en cuenta para la frecuencia de

alimentación:

1. Según la biología del langostino, el tiempo de

evacuación del sistema digestivo dura

aproximadamente 3 horas.

En una primera ración el langostino consume lo

suficiente hasta que su estómago esté lleno; después

de 30 minutos a una hora, éstos podrán volver a

comer por segunda vez, pero una menor cantidad,

debido a que su apetito ha sido saciado la primera vez

y su estómago aún conserva alimento en plena

digestión.

Por ello es importante calcular una ración que sea

consumida totalmente antes de las tres horas y así

evitar la sobrealimentación.

2. La frecuencia de alimentación del langostino marino

está directamente relacionada con la temperatura,

conforme sube la temperatura, sube el metabolismo

del langostino y éste necesita alimentarse con mayor

frecuencia debido al ritmo circadiano de actividad

enzimática digestiva.

3. Por otro lado, la productividad natural tiene su mayor

impacto en el primer mes de cultivo cuando el

langostino pequeño tiene una alta preferencia por el

plancton, bentos y detritus del fondo del estanque sin

poner mayor atención al alimento balanceado hasta

más o menos la segunda semana de cultivo.

Page 36: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

36

4. El tamaño del langostino

Cuando son post-larvas o juveniles hay que

alimentarlo por las orillas, alimentándole pocas

veces.

Durante el engorde suele concentrarse en las

partes profundas, por ello se alimenta más veces.

5. La disponibilidad de mano de obra para alimentar.

Beneficios, según la frecuencia alimenticia:

1. Al alimentar más veces se evita la subalimentación y el

enanismo de los langostinos más pequeños.

2. Al alimentar más veces crecen con más uniformidad.

Perjuicios, según la frecuencia alimenticia.

1. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado

desperdicio de alimento.

2. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado

valor alto de la tasa o factor de conversión

alimenticia.

3. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado

problemas de calidad del agua.

4. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado

lixiviación hacia el agua de nutrientes solubles.

(Vitaminas hidrosolubles.)

c. Métodos de alimentación

Todo productor reconoce que el manejo del alimento implica

cualquier método que mejore el crecimiento y la

supervivencia, con un bajo factor de conversión alimenticia.

En la empresa langostinera “Buva Camarón - SAC” Los

métodos utilizados son los siguientes:

Page 37: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

37

1. Método de Boleo (Anexo 21)

Con la alimentación al boleo el alimento es ampliamente

distribuido sobre el estanque y todos los langostinos

cultivados pueden alimentarse adecuadamente, evitando el

estrés que se genera cuando compiten por entrar al

comedero, acentuándose más cada vez que aumenta la

biomasa.

Para realizarlo, es de suma importancia conocer cuál es la

biomasa existente, por lo que hay que realizar muestreos

poblacionales quincenales y de crecimiento semanal para

conocer el peso promedio del langostino y con estos datos,

guiarse por una tabla de alimentación ajustada a la

realidad y trayectoria de producción de la camaronera

(incluye datos de supervivencia estimada, el número de

días que dura una campaña de cultivo, productividad de

cada estanque, estación del año, etc.).

En el suministro al boleo, la única manera de ajustar es

mediante la observación de los resultados del muestreo de

crecimiento en peso semanal cuando el que maneja la

producción observa la falta de ganancia de peso.

Este método de alimentación se aplica durante las 2

primeras semanas después de la siembra.

En el “anexo 26” se presenta la trayectoria que debería

seguirse en el estanque para distribuir el alimento al boleo.

Consideraciones para el método de boleo:

La profundidad del estanque

Los canales interiores del monje.

Ubicación de zonas someras (30-50 cm. de

profundidad)

2. Método con comederos (Anexo 22,23,24)

Los comederos son bandejas circulares fabricadas de aros

de jebe, los cuales que pesan debido a que en su interior

se rellenan con arena húmeda, lo cual provoca que se

hunda. Estos están recubiertos por un paño sintético

(malla).

Page 38: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

38

Con este método el alimento es distribuido de manera

equitativa, según la cantidad de comederos que se

encuentren en el estanque.

Este método de alimentación se aplica después de las 2

semanas de siembra. La cantidad de alimento a disponer

en cada comedero es hallado con a través de las tablas de

alimentación.

Cuando se usan comederos, el control del alimento está

basado en la observación de remanentes.

Consideraciones:

El número de comederos: El número de comederos

colocados por 1 ha es de 10 unidades.

Área de influencia por cada comedero:

Aproximadamente 500 – 700m2

Capacidad de carga: Desde 1kg – 1,5kg.

Medidas: 0,5m de diámetro.

Ejemplo: Si se tiene que suministrar 10 Kg./Ha/día.

Suponiendo que se utilizan 10 comederos por hectárea.

Si la cantidad de ración por comedero sobrepasa de lo

establecido (1,5kg). Necesariamente se tiene que

incrementar el número de comederos.

d. Formas de alimentación

Las formas de alimentación dependen directamente del

manejo, la edad y los hábitos de la especie.

En la empresa langostinera “Buva Camarón - SAC” Las

formas de alimentación son las siguientes:

RACIONES TIEMPO PORCENTAJE CANTIDAD BRUTA

RACION POR COMEDERO

1º Ración 8:00 am 40% 4kg 400gr

2º Ración 14:00 pm 60% 6kg 600gr

Page 39: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

39

1. Etapa de PostLarva:(Anexo 25)

- Alimentación en “L”

El cual se realiza en dos orillas continuas del

estanque. Lo más recomendable es alimentar en la

orilla de salida (monje) y en uno de los dos lados.

Esta forma de alimentación se debe, a que los

langostinos durante la etapa de postlarvas no resisten

la presión generado en aguas con profundidades de

75cm.

Por lo tanto, estos tienden a permanecer en las orillas,

hasta tener el tamaño adecuado con el cual sea capaz

de soportar presiones más altas.

2. Etapa de Engorde: (Anexo 26)

-Alimentación en “Zic – Zac”

- Alimentación en “U”

- Alimentación en “X”

3.4.5.2 MUESTREO DE CRECIMIENTO

a. Obtención de la muestra

Se obtiene por el método aleatorio, que consiste en ingresar al

estanque a una distancia aproximada de 10 m del ingreso de

agua, donde los ejemplares se extraen con una atarraya, luego

son depositados en baldes plásticos con agua para el pesado

correspondiente. (Anexo 27, 28)

Es recomendable extraer 10 muestras/ha para observar la

distribución de la población en el estanque.

b. Pesado de los ejemplares

De los ejemplares obtenidos en cada sub-muestra sólo se

pesan 10 individuos (langostinos), sin embargo la muestra total

a pesa puede constar de 150 a 200 individuos, con lo cual se

obtiene una distribución de frecuencias casi normal. Hay 2 tipos

de pesaje:

Page 40: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

40

1. Pesado Volumétrico:

Consiste en introducir un ejemplar lo más seco posible en una

probeta, luego se procede a observar el nivel de agua que sube

debido al peso del langostino. Por cada ml que se incrementa

este representa a 1gr.

Este tipo de pesado se realiza a ejemplares menores de 50 g

2. Pesado a Granel.

Consiste en colocar un ejemplar lo más seco posible en una

balanza analítica, luego el peso resultante es anotado.

Este tipo de pesado se realiza a ejemplares mayores de 50 g

Este procedimiento es repetido según el número de ejemplares

a pesar. Para luego obtener el promedio total.

A continuación, presento un ejemplo de un muestreo para la

determinación del peso promedio de los langostinos en un

estanque, realizado durante el período de las prácticas.

Peso (gr) Frecuencia N° Ejemplares Peso Total

6 lllllll - -

7 llllllll 7 49

8 lllllllllllllllllllllll 23 184

9 lllllllllllllllllllllllllllllllllllllllllllll 45 405

10 lllllllllllllllllllllllllllllllll 33 330

11 lllllllllllllllllllllllllllll 29 319

12 lllll - -

13 lll - -

137 1287

Peso promedio= 1287gr /137

Peso promedio= 9,37 gr

c. Incremento de peso

Es la diferencia del peso promedio obtenido en el muestreo

actual menos el peso promedio obtenido en el último muestreo:

P = Pa – Pu

Page 41: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

41

Donde:

P= incremento en peso (g)

Pa= peso promedio actual (g)

Pu= peso promedio del último muestreo (g)

Ejemplo: Supongamos que durante la semana 11 la

población de langostino de un estanque determinado

tiene un peso promedio de 9,50 gr.

Y durante la semana 12 el langostino llega a obtener

un peso promedio de 10,54gr. ¿Cuál es el incremento?

P = Pa – Pu

AP= 10,54gr – 9,50gr

AP= 1,04gr

3.4.5.3.1 DIVERSOS CALCULOS

a. Cálculo de la Supervivencia.

Para hallar la supervivencia de los langostinos en un

estanque, hay diversos métodos:

1. Por el método del área

S = r/s . 100 %

Donde:

S= supervivencia (%)

r= densidad referencia (ind/m2)

s= densidad de siembra (ind/m2)

Ejercicio

Se tiene: r= 20m2, s= 25m2.Calcular el porcentaje

de sobrevivencia.

S = r/s . 100 %

S =15m2/25m2.100%

S =60%

Page 42: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

42

La supervivencia es de 60%

La mortalidad es de 40%

El valor que se obtiene es referencial debido a que

la extracción con la atarraya no es muy eficiente por

el escape de los individuos cuando la canoa se

acerca al punto de muestreo y por el escape de

estos a través de la malla del arte.

2. Por el método de estimación

Se puede calcular en la siguiente fórmula:

S = 100 % - M .t

Dónde:

S= supervivencia (%)

M= tasa de mortalidad diaria (%/día)

t= tiempo de cultivo (días)

Para ello es necesario hallar primero la tasa de

mortalidad diaria:

M = (100 % - S)/T

Dónde:

M= tasa de mortalidad diaria (%/día)

S= supervivencia (%)

T= tiempo de cultivo (días)

M = (100 % - S)/T

M = (100 % - 60%)/112dias

M= 0,3571%

Entonces la tasa de mortalidad diaria es 0,3571%.

Una vez obtenido la tasa de mortalidad diaria,

procedemos a hallar el porcentaje de supervivencia,

para 35 días de cultivo.

Page 43: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

43

S = 100 % - M .t

S = 100 % - 0,3571%. 35 días

S =87,5%

Entonces, el porcentaje de sobrevivencia es de

87,5%.

3. Por el consumo de alimento

En la siguiente relación:

S = 100 % .Qa/(%B/100 %) .P .Ns

Donde:

S= Supervivencia actual (%)

Qa= Cantidad de alimento consumido en el día (kg)

% B= Ración de alimento (% de la biomasa a

alimentar en el día)

P= Peso promedio del langostino (kg)

Ns= Número de individuos sembrados

Este es el método más preciso dado que toma en

cuenta el verdadero consumo del alimento por la

población existente en el estanque de cultivo. Para

ello es necesario que el control del consumo de

alimento por el método de comederos sea lo más

preciso posible. Ejercicio: Con los siguientes datos,

calcular el porcentaje de sobrevivencia actual.

Qa= 450kg

% B= 1,7%

P= 0,01075kg

Ns= 1 750 000

S = 100 % .Qa/(%B/100 %) .P .Ns

S=45000/752.5

S=59, 8%

S=100%.450kg/(3,7%/100%)0,01075kg.1750000

Page 44: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

44

Entonces el porcentaje de supervivencia actual es

59,8%.

b. Cálculo de la Población

Se calcula por medio de una regla de tres, tomando

como referencia lo siguiente:

El número individuos sembrados.

El porcentaje de supervivencia actual.

Ejemplo:

1750 000 Langostinos 100%

X 59,8%.

X=1046500Langostinos

Entonces, la población de langostinos es de

1046500 individuos.

c. Cálculo de la Biomasa

La biomasa se calcula en la siguiente fórmula:

B = P .Nt

B= biomasa

P= peso promedio (kg)

Nt= número de individuos actuales

Ejemplo: Calcular la biomasa, teniendo los siguientes

datos:

P= 9805,705kg.

Nt= 1046500 individuos

B = P .Nt

B = 0,00937kg .1046500 individuos.

B = 9805,705kg.

Entonces, la biomasa de langostinos es de

9805,705kg.

Page 45: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

45

d. Cálculo de la Densidad

De acuerdo a los individuos capturados se obtiene la

densidad de la población referencial, aplicando la

siguiente fórmula:

r = N/(Aat . m)

Dónde:

r= densidad referencial (ind/m2)

N= número de individuos extraídos

Aat= área efectiva de la atarraya (m2)

m= número lanzamientos de la atarraya.

Ejemplo: Teniendo los siguientes datos, realizar el

cálculo para la densidad referencial.

N= 340

Aat= 4m2

m= 8 lanzamientos

r = N/(Aat . m)

r = 340/(4m2.8)

r = 10,62 m2

La densidad referencial es de 10,62 langostinos por m2

3.4.5.3.2 CONVERSION ALIMENTICIA (Bibliografía 6)

La T.C.A se define como la cantidad de alimento suministrado

(en kilogramo) para obtener 1kg de carne de langostino.

1kg de Alimento balanceado = 1kg de carne.

Existen 2 tipos de T.C.A:

1. Tasa de conversión alimenticia real

Este término es usado cuando el alimento artificial es

solamente el único que está siendo suministrado a los

organismos; y que solamente puede ser medido cuando no

hay ningún otro alimento disponible para el animal.

Page 46: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

46

2. Tasa de conversión alimenticia aparente

Este término es usado cuando existe aporte de alimento

natural incluso en estanques de sistemas intensivos,

debido a la presencia de productividad natural en el agua

estimulada por la fertilización o desechos de alimento, lo

que hace que varíe o no se pueda medir la tasa de

conversión alimenticia real.

La T.C.A es una medida del peso del alimento abastecido

en kg por la biomasa existente.

Ejemplo:

Teniendo los siguientes datos, calcular la T.C.A

Entonces:

La tasa de conversión alimenticia obtenida es de 1:1,12 la

cual nos indica que durante el tiempo del cultivo. El

langostino uso 1,12kg de Alimento para producir 1kg de

carne.

a. T.C.A Ideal

La T.C.A. debería ser entre 0.6 - 1.0 en langostino de

hasta 10 gramos.

La T.C.A. debería ser entre 1.0 - 1.3 en langostino por

encima de los 10 gramos.

Peso (gr) Edad (días

)

Población inicial

Población Final

Sobrevivencia (%)

Peso Total (kg)

Alimento Balanceado Acumulado

(kg)

14 117 1 200 000 984 928 82,08 13788,99 15390

T. C. A Peso del alimento suministrado (kg)

Bimoasa (kg)

T. C. A = Peso del alimento suministrado (kg)

Bimoasa (kg)

T. C. A = 15390kg

13788,99 kg

T. C. A = 1,12

Page 47: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

47

b. Factores que hace variar la T.C.A

La densidad de siembra

Calidad del alimento

Tamaño del langostino cosechado.

Mortalidad repentina del langostino durante la fase

de cultivo, sin poder recuperar biomasa

posteriormente.

Subalimentación del langostino, quizás debido a

densidades mayores de lo programado y/o

competencia de alimento por otros organismos

(caracoles, peces, jaibas); que generalmente se

presenta cuando se alimenta una sola vez al día

con escaso número de comederos viéndose

reflejado en el crecimiento lento del langostino

Aporte de alimento suplementario junto con el

balanceado y/o gran producción de alimento

primario en el estanque;

Robo del langostino o pérdida del alimento antes de

suministrarlo al estanque.

c. Lectura de la T.C.A

Asumiendo que se alimenta con el método de

comederos.

-Si hallamos que la T.C.A. semanal es alta, esto nos

indicaría crecimiento lento o subalimentación.

-Si hallamos que la T.C.A. semanal es baja indica que el

langostino está haciendo buen uso del alimento.

3.4.5.3.3 RACION ALIMENTICIA

1- La ración para las postlarvas (durante las 2 primeras

semanas) es de:

1kg de alimento balanceado, al día por cada 300 000 postlarvas

2- La ración para los juveniles (después de las 2 primeras

semanas) es hallado a través de las tablas de alimentación.

Page 48: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

48

Ahora bien, la manera de calcular y ajustar las raciones diarias

de alimento es principalmente con el uso de tablas de

alimentación. Estas tablas están basadas en cálculos para

alimentar un porcentaje del peso corporal promedio estimado

para los animales en el estanque o piscina.

Este porcentaje se va reduciendo a medida que los animales

aumentan de talla.

Este método es relativamente fácil de implementar y requiere de

poco esfuerzo, pero el potencial para cometer errores de

estimados es grande y frecuentemente resulta en

subalimentación o sobrealimentación, y en tasas de conversión

alimenticia altas, por ello el uso de las tablas dependen de la

pericia del ingeniero o biólogo.

A continuación presento, diversas tablas de alimentación:

Diversas tablas de alimentación:

Peso del

Langostino

(gr.)

% del Peso Corporal

Fuente

1

Fuente

2

Fuente

3

Fuente

4

Fuente

5

Fuente

6

Fuente

7

Fuente

8

Fuente

9

1 5.57 25.00 - 12.70 11.00 14.00 - 16.00 16.00

2 5.28 15.00 - 10.00 8.00 8.20 11.70 5.50 11.70

3 5.00 10.00 - 8.00 6.50 6.20 8.60 4.70 8.60

4 4.83 7.70 - 7.00 5.50 5.20 7.00 4.20 7.20

5 4.60 6.60 - 6.00 4.50 4.50 6.20 3.90 6.20

6 4.50 6.00 6.00 5.30 4.00 3.90 4.80 3.60 4.80

7 4.37 - 5.00 4.80 3.20 3.60 4.40 3.30 4.40

8 4.25 - 4.40 4.30 3.00 3.30 4.00 3.00 4.00

9 4.12 - 3.80 4.00 2.90 3.00 3.90 2.90 3.90

10 4.00 - 3.40 3.90 2.80 2.80 3.60 2.80 3.60

11 3.70 - 3.20 3.60 2.70 2.60 3.50 2.60 3.50

12 3.40 - 3.00 3.40 2.60 2.50 3.20 2.60 3.30

13 3.90 - 2.80 3.20 2.50 2.30 3.10 2.50 3.10

14 2.80 - 2.60 3.00 2.50 2.20 3.00 2.40 3.00

15 2.50 - 2.40 2.90 2.40 2.10 2.90 2.30 2.90

16 2.34 - 2.20 2.80 2.40 2.00 2.70 2.30 2.70

17 2.18 - 2.00 2.70 2.20 2.00 2.70 2.20 2.50

18 2.02 - 2.00 2.60 2.10 1.90 2.70 2.10 2.40

19 1.86 - 2.00 2.50 2.00 1.80 2.60 2.00 -

20 1.70 - 2.00 2.50 2.00 1.80 2.60 2.00 -

21 1.60 - 2.00 2.50 1.90 1.80 2.60 1.90 -

Page 49: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

49

FUENTES:

1. Angel Diaz Torres.

2. Soya, s.a. (colombia), 40% proteina, > 7 pl/m2.

3. Soya, s.a. (colombia), 35% proteina, > 7 pl/m2.

4. Molinos champion, s.a. (ecuador).

5. Diamasa, s.a. (ecuador) piscina 10 ha, 10 Pl/m2

6. Nicovita, s.a. (perú), 30 pl/m2 (clifford 1992).

7. Purina, s.a. de c.v. (méxico), 8-18 pl/m2.

8. Villalón (1991), 12.5-18.5 pl/m2 (ecuador).

9. Zendejas (1994), juveniles (mexico), densidad no

especificada.

Ejemplo: Teniendo los siguientes datos, calcular la ración

alimenticia.

Peso= 2,70gr.

Edad= 35 días.

Población inicial= 1 750 000 individuos

Estanque= 12,1 ha

Densidad de Siembra=14,46 m2

Para poder hallar la ración alimenticia en las tablas, estas nos

exigen conocer la cantidad de biomasa existente en el estanque.

Para poder hallar la biomasa necesitamos calcular lo siguiente:

-Densidad actual.

-Supervivencia actual.

-Población

-Biomasa.

a. Calculo de Densidad

r = N/(Aat . m)

r =480/(4m2.10)

r = 12m2

Page 50: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

50

b. Cálculo de Supervivencia actual.

Por el método del área

S = r/s . 100 %

S = 12m2/14,46 m2. 100 %

S = 82,9%

La supervivencia es de 82,9%

La mortalidad es de 17,1%

c. Cálculo de la población

1750 000 Langostinos 100%

X 82,9%.

X=1046500Langostinos

Entonces, la población de langostinos es de 1450 750

individuos.

d. Cálculo de la Biomasa

B = P .Nt

B = 0,00270kg .1450 750 individuos.

B = 3917,025kg.

Entonces, la biomasa de langostinos es de 3917,025kg.

Una vez obtenido la biomasa existente. Procedemos a

ubicarnos en la tabla y buscar el porcentaje de peso corporal

correspondiente al peso del langostino.

Recordando que tenemos un peso de 2,70gr.

Entonces de la tabla obtenemos que:

Para alimentar 1 individuo de langostino en un peso de 3gr,

necesitamos 5% de su peso corporal.

Peso del Langostino (gr.) % del Peso Corporal

1 5.57

2 5.28

3 5.00

Page 51: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

51

De lo calculado anteriormente, conocemos que la “biomasa

actual” es de 3917,025kg, tomando este dato, procedemos a

calcular la ración diaria.

-Para 1 sólo individuo de langostino.

3gr 100%

X 5%

X=0,015gr.

-Para toda la biomasa de langostinos.

3917,025kg 100%

X 5%

X=195,85kg.

La ración alimenticia para el estanque de 12ha, con

1046500 langostinos, de 2,75 gramos de peso; Es

195,85kg.

Factores a tener en para determinar la ración alimentaria:

1. El tamaño del langostino

Este porcentaje en la tabla de conversión se va

reduciendo a medida que los animales aumentan de

talla.

2. Temperatura

La frecuencia de alimentación del langostino marino

está directamente relacionada con la temperatura,

conforme sube la temperatura, sube el metabolismo

del langostino y éste necesita alimentarse con mayor

frecuencia debido al ritmo circadiano de actividad

enzimática digestiva.

3. El pH.

Después de periodos de lluvias intensas causando

turbidez súbita o una caída en el pH, puede reducir el

apetito del langostino.

Page 52: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

52

4. Acumulación de materia orgánica

-Si se reduce significativamente el área limpia del

fondo (debido al deterioro de la calidad del fondo) de

los estanques, entonces el número de langostinos en

los comederos puede incrementarse y el alimento

puede ser consumido más rápido.

-Si los comederos están sobre áreas sucias del fondo

del estanque, el número de langostinos que visitan

éstos será reducido.

-Si pasan muchas horas sin que el alimento sea

consumido, empezara el proceso de descomposición

y deterioro del fondo del estanque comprometiendo

la salud del langostino

5. El O2

-La muerte súbita de floraciones de plancton, lo cual

da como resultado consumo bajo de O2 hará que se

vea reduce el apetito del langostino.

-Después de periodos prolongados de exposición a

radiación solar baja los niveles bajos de O2, lo cual

puede reduce el apetito del langostino.

6. Disponibilidad de alimento natural.

Cuando la disponibilidad de alimento natural es alta,

la demanda por alimento balanceado es baja.

7. Los periodos largos sin recambio de agua, puede

reducir el apetito del langostino.

8. Actividad diurna o nocturna.

- Existe un mayor consumo de alimento por parte del

langostino de 1 a 8 gramos durante el día.

- Existe un mayor consumo de alimento por parte del

langostino mayor de 8 gramos durante la noche.

Page 53: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

53

9. Si está en muda o enterrado: (Anexo 29)

Haciéndolo que el consumo disminuya al inicio de

este proceso y luego se incremente drásticamente

una vez que la población de langostino ha terminado

de mudar.

3.4.6. MANEJO DE CALIDAD DE AGUA

3.4.6.1MONITOREO DE LA CALIDAD DEL AGUA

El manejo de la calidad del agua es la base para una buena

producción y para protección de la calidad ambiental.

El deterioro de la calidad del agua en los estanques, puede afectar

severamente la salud de los langostinos al punto de poner en riesgo

la población entera. De ahí la necesidad de implementar un sistema

de monitoreo diario de los parámetros físicos y químicos de agua,

que permita anticipar y corregir el desarrollo de condiciones adversas

de calidad de agua, con el fin de restablecer las condiciones óptimas

en el sistema de cultivo.

Es técnicamente imposible pretender manejar la producción en una

granja, sin contar con equipos apropiados para el monitoreo de los

parámetros. Éstos incluyen por lo menos:

Oxímetro

pHmetro

Termómetros

Disco Secchi

Refractómetro

Microscopio

El monitoreo de la calidad del agua involucra:

a) Medición de los parámetros físico-químicos,

b) Elaborar y mantener cuidadosamente registros con los valores

obtenidos

c) Análisis e interpretación frecuente de los datos obtenidos

d) Aplicación de las conclusiones en función de una mejora en las

prácticas de cultivo.

Page 54: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

54

1. Oxígeno disuelto

Es recomendable medir los niveles de oxígeno en el agua de los

estanques por la mañana hacia la salida del sol 6a.m. y por la

tarde a las 16:00 hrs.

Es importante hacer lecturas de OD en horas de la noche, en caso

en que las concentraciones de la tarde estén por debajo de 3

mg/L; de esta manera, se pueden implementar correctivos

necesarios para evitar episodios de hipoxia.

Para mantener consistencia en el monitoreo del oxígeno, es

recomendable medir en cada estanque siempre en el mismo

orden y a la misma hora y a la misma profundidad todos los días.

CONCENTRACIÓN DE OD

EFECTO

<1 - 2 mg/L

Mortal si la exposición dura más que unas horas

2 - 4 mg/L

Crecimiento será lento si labaja de oxígeno disuelto se prolonga

4 - 12 mg/L

Mejor condición para crecimiento adecuado

> 12 mg/L

Sobresaturación: riesgo de la“enfermedad de la burbuja de gas”;

puede ser indicativo de alta concentración demicro algas

2. pH

Es importante mantener un pH estable a un rango seguro porque

esto afecta el metabolismo y otros procesos fisiológicos de los

organismos de cultivo.

Puede crear estrés, aumentar la susceptibilidad a enfermedades,

disminuir los niveles de producción y causar un pobre crecimiento,

signos de un pH sub-óptimo produce mucosidad en las branquias,

comportamiento de natación inusual, aletas raídas, daños a los ojos

así como también pobre crecimiento del fitoplancton y del

zooplancton.

Page 55: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

55

NIVELES DE PH

EFECTO

14 Letal

13 Letal

12 Letal

11 Letal

10 Poco crecimiento

9 Poco crecimiento

8 Nivel óptimo

7 Nivel óptimo

6 Poco crecimiento

5 No hay reproducción

4 Letal

3 Letal

2 Letal

1 Letal

3. Temperatura

La temperatura obviamente no puede ser controlada en un estanque.

Los animales acuáticos modifican la temperatura de sus cuerpos al

medioambiente y son sensibles a las variaciones de temperatura

rápidas.

Para cada especie hay un rango de condiciones de temperatura.

La temperatura de agua se mide directamente en el agua del

estanque usando un termómetro común.

Además de anotar el valor obtenido, también se debe anotar la

horade la medición. También es necesario asegurarse de usar

siempre el mismo termómetro para obtener mediciones consistentes.

TEMPERATURA EFECTO

<9°C Letal – Crecimiento Lento

25°C - 35°C Nivel óptimo

>36°C

Letal – Pérdida de peso, por alto

metabolismo.

4. Transparencia

La medición con disco Secchi consiste en la profundidad en

centímetros a la cual el disco deja de ser visible, cuando es

sumergido en el agua del estanque.

Usualmente existe una relación inversa entre la visibilidad del disco y

la abundancia de fitoplancton. A medida que el plancton aumenta la

visibilidad disminuye.

Page 56: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

56

Al tomar decisiones de manejo con base en las lecturas de disco

Secchi, hay que asegurarse que la turbidez sea realmente producida

por fitoplancton y no por materiales suspendidos en la columna de

agua tales como arcillas, sedimentos o detritos orgánicos.

Usualmente la hora más adecuada para realizar esta medición es

entre las 9:00 y las 11:00 de la mañana.

PROFUNDIDAD (CM)

CONCENTRACIÓN DE FITOPLANCTON

< 25 cm

Si es turbio por fitoplancton, habrá problemas de concentración baja de oxígeno disuelto por la noche o antes de la salida del sol. Cuando la turbidez resulta por partículas suspendidas, la productividadserá baja

25-30 cm

Turbidez es alta y conviene bajar la concentración de fitoplancton

30-45 cm

Si la turbidez es por fitoplancton, el estanque está en buenas condiciones

45-60 cm El fitoplancton está escaso

> 60 cm

El agua está demasiado clara. La productividad es inadecuada y pueden crecer

plantas acuáticas en el fondo de los estanques

5. Salinidad

La salinidad representa la concentración total de iones inorgánicos

disueltos, o sales, en el agua.

Esto juega un rol significativo para el crecimiento de organismos de

cultivo a través de la osmoregulación de minerales de cuerpo en el

agua circundante.

Para una mejor supervivencia y crecimiento, un rango óptimo de

salinidad debe ser mantenido en el agua del estanque.

Si la salinidad es demasiado alta, los langostinos comenzarán a

perder agua al medioambiente.

Los langostinos jóvenes parecen tolerar una mayor fluctuación de

salinidad que los adultos.

Los cambios drásticos de salinidad pueden también alterar la

fauna del fitoplancton y sus densidades de población, y llevar a

inestabilidad del ecosistema.

Page 57: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

57

Aspectos importantes del monitoreo de la calidad del agua:

Es necesario que la granja que cuente con un plan para el

monitoreo de los parámetros físicos, químicos y biológicos de los

estanques.

Es necesaria una rutina de calibración de los aparatos utilizados

para medir parámetros, con el propósito de garantizar certeza y

confiabilidad en los datos obtenidos.

Es necesario establecer puntos específicos para la medición de

los parámetros en cada estanque, con el fin de mantener

condiciones similares en el tiempo y que no se afecten los datos

obtenidos en los muestreos.

A continuación presento tablas de parámetros físicos–químicos.

Obtenido de mediciones realizadas durante las prácticas

realizadas.

ESTANQUE pH Temperatura

(°C)

Salinidad

(‰)

1 8,6 30,8 31

2 8,1 30,3 28

3 8,3 28,4 28

4 8,3 28,6 28

5 8,1 30 29

6 8,3 28 26

7 8,4 27 27

Hora: 9:30 am

Fecha: 15-03-2013

Page 58: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

58

ESTANQUE pH Temperatura

(°C)

Salinidad

(‰)

1 8,8 31,7 32

2 8,4 32,5 33

3 8,6 31,6 27

4 8,5 31,8 27

5 8,4 32 30

6 8,6 32 25

7 9 33,6 25

Hora: 16:00 pm

Fecha: 15-03-2013

ESTANQUE pH Temperatura

(°C)

Salinidad

(‰)

1 8,4 28,9 33

2 7,7 28,6 28

3 8,5 28,4 28

4 8,5 28,3 28

5 8 29,1 30

6 8,5 26,2 26

7 8,4 27,4 27

Hora: 7:30 am

Fecha: 16-03-2013

STANQUE pH Temperatura

(°C)

Salinidad

(‰)

1 8,8 32 31

2 8,3 32,1 26

3 8,6 32,3 27

4 8,6 32,2 26

5 8,4 31,8 29

6 8,8 32 24

7 8,9 32,9 25

Hora: 15:30 pm

Fecha: 16-03-2013

Page 59: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

59

3.4.6.2 AIREACION

La decisión para su uso, está marcada por la concentración de

oxígeno disuelto en el estanque, misma que es dependiente de la

densidad de población (biomasa), la concentración de fitoplancton y

la profundidad del estanque.

El sistema de cultivo de la langostinera “BUVA CAMARON - SAC” es

Semi-Intensivo, por lo que es necesario el uso de aireadores, para

poder asegurar la sobrevivencia de los langostinos.

El horario de encendido y apagado de aireadores está sujeto a los

niveles de oxígeno en el estanque.

Ejemplo:

Supongamos que la medición de los niveles de oxígeno durante la

noche es de 2 mg/L.

-Esto nos indica que durante la madrugada habrá problemas en el

estanque por falta de oxígeno.

Por lo cual es necesario encender los aireadores durante la

madrugada, para así mantener los tenores estables de oxígeno.

Número de aireadores por Hectárea:

1Ha =1hp

Para 1hectárea (Ha) se necesita, 1aireador con 1hp de 2 paletas.

(Anexo 30)

3.4.6.3 RECAMBIO DE AGUA DE LOS ESTANQUES

El recambio de agua es el principal método de dilución de los

compuestos potencialmente tóxicos en el agua del estanque y

permite la dilución de la floración de plancton. Aunque en algunos

sistemas se emplean tasas de recambio bajas o cero recambio.

La reducción en el volumen del recambio de agua en un estanque,

ayudará a reducir costos en combustible, mantenimiento de los

equipos de bombeo y cantidad de nutrientes en los efluentes.

Page 60: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

60

El recambio de agua sólo se debe hacer cuando se verifique que va

a ser beneficioso para la producción, pues podría suceder que las

condiciones del aguade la toma sean inferiores a las de la granja. Es

necesario el recambio de agua cuando las variables físico-químicas

de las aguas de los estanques se encuentren por debajo de los

niveles mínimos aceptables.

Factores para realizar un recambio de agua:

a) El color del agua: El recambio de agua es requerido si el agua se

hace más transparente (> 80 cm) o más turbio (< 30 cm)

b) Variación de pH: El recambio de agua es requerido si el pH del

agua varía más de 1.5 en un día.

c) La presencia de burbujas en la superficie: El recambio de agua

es requerido si, aparece espuma estable sobre la superficie del

estanque.

e) Los sólidos suspendidos en el agua:

El recambio de agua es requerido si la cantidad de sólidos

suspendidos se incrementa (por observación)

f) Densa floración algal:

El recambio de agua es requerido si la densidad de la floración algal

es alta. La densa floración algal es indicador de un pH por encima de

9, por lo tanto la floración puede ser monitoreada efectivamente

midiendo el pH y la transparencia.

g) Oxígeno disuelto: El recambio de agua es requerido si la

cantidad de oxígeno disuelto es baja.

h) Amonio o sulfuro de hidrógeno. El recambio de agua es

requerido si la cantidad de Amonio o sulfuro de hidrógeno presentan

tenores altos.

1. Generalidades:

Aun teniendo agua de ingreso de buena calidad no debe ser

cambiada más del 30%. Puede ser cambiada hasta el 10%

drenando la cantidad apropiada del estanque y luego

rellenándolo. Si se necesita recambiar más del 10%, el

recambio adicional debe ser conducido sobre una base de flujo

continuo. Esto ayuda a reducir el estrés extendiendo el periodo

de recambio por un largo periodo y evitando las fluctuaciones

excesivas en calidad.

Page 61: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

61

Si algún estanque en la granja presenta problemas de

enfermedades, éste debe ser manejado con cero recambios

agregando agua sólo para reponer niveles perdidos por

evaporación.

La reducción del recambio de agua ayuda a bajar el riesgo de

entrada de depredadores, la diseminación de enfermedades

desde otras granjas o del langostino silvestre y la pérdida de

productividad natural en el interior del ecosistema de la granja.

Durante el verano, se debe reponer el agua perdida por

evaporación, para evitar que suba demasiado la salinidad y que

descienda drásticamente el nivel de operación de los

estanques.

Se debe hacer reposición del agua perdida por filtración.

Graba – filtra 5cm diarios.

Arena – filtra 10cm diarios.

Los riesgos asociados con el recambio de agua pueden ser

reducidos manteniendo el agua en el reservorio por al menos

12 horas.

Existen diversas estrategias de cero recambios de agua y de

recambios bajos o limitados, que pueden ser usadas para controlar la

calidad de agua en los estanques.

Estas estrategias son:

Cero recambio– sistema cerrado y estático.

Bajo recambio – sistema cerrado y recirculación

Bajo recambio – sistema de circulación abierta.

Bajo recambio – recirculación parcial.

1. Cero recambio– sistema cerrado y estático:

Este se refiere a un sistema de cultivo en estanques

completamente cerrado donde el estanque se llena con agua

una vez y no se lleva a cabo ningún recambio durante el ciclo de

producción.

Page 62: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

62

En estos estanques no se recambia nada de agua, y al terminar

el ciclo de producción los estanques se drenan a piscinas de

tratamiento donde se prepara y acondiciona el agua, y luego se

reusa durante el siguiente ciclo de producción.

2. Bajo recambio – sistema cerrado y recirculación:

Este se refiere a un método empleado comúnmente en Asia,

donde los estanques se llenan una vez con agua tratada, donde el

agua de recambio proviene de un reservorio central cuya agua ha

sido tratada para eliminar portadores y viriones. El agua de

descarga de los estanques es reciclada y tratada en una serie de

piscinas de tratamiento, y regresada al reservorio central. Algunas

granjas usan sistemas de filtración integrados, con baterías de

piscinas que contienen bivalvos filtradores, peces y macroalgas

para limpiar el agua de recirculación. Los recambios diarios en

estos sistemas son bajos, y la misma agua puede ser usada por 3-

4ciclos de producción antes de ser renovada de fuera. Estos

sistemas requieren de una aireación considerable.

3. Bajo recambio – sistema de circulación abierta.

Este se maneja con un recambio diario relativamente constante

pero muy reducido (1%-5%), donde el agua que entra es filtrada

pero no es tratada químicamente.

Esta estrategia es de alto riesgo porque conlleva un riesgo

permanente de introducción de WSSV a los estanques.

En la empresa “BUVA CAMARON - SAC”, se realiza este tipo de

estrategia de recambio de agua.

4. Bajo recambio – recirculación parcial.

Es aquel donde los estanques se llenan inicialmente con agua

filtrada y tratada, y donde se recircula la mayor parte del agua de

recambio, como se mencionó antes para el sistema de bajo

recambio, cerrado y con recirculación.

3.4.7 MANEJO DE ENFERMEDADES DE LANGOSTINOS

Uno de los aspectos de mayor relevancia en el cultivo de langostino es el

relacionado al cuidado de su salud.

Page 63: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

63

La falta de evaluaciones frecuentes de la salud de los langostinos puede

facilitar la diseminación de enfermedades entre estanques de la misma granja y

de una granja a otra de la misma zona.

La pérdida casi total de una población de langostinos a causa de una infección,

pudiera incluso pasar desapercibida si no se realizan evaluaciones semanales

meticulosas del estado de salud de los langostinos.

Las enfermedades son introducidas a través:

Langostinos importados

Insectos

Organismos marinos

Aves

Aguas

Vehículos

Humanos

Entre otros agentes.

Muchas enfermedades se presentan después de períodos de estrés. Un dogma

general de la acuicultura es que el ataque de enfermedades epidémicas se

debe a prácticas de manejo deficientes, las cuales debilitan la resistencia de

animales cultivados. La prevención consiste en evitar las condiciones de estrés

en el cultivo, la introducción de enfermedades emergentes y la implementación

de BPM.

Las condiciones de estrés en el estanque pueden presentarse:

Por problemas crónicos de la calidad del agua.

Frecuente niveles bajos de OD.

Altas concentraciones de amonio no ionizado

Altas densidades de langostino.

Temperaturas extremas durante el manejo

Una dieta deficiente.

El monitoreo de la salud de los langostinos permite una temprana detección de

enfermedades. A la par del monitoreo también se debe diseñar e implementar

procedimientos que ayuden a controlar la propagación de la enfermedad

cuando esta se presente. (Anexo 31)

Page 64: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

64

La clasificación de las principales enfermedades son las siguientes:

a. Enfermedades Virales

Virus de la necrosis hipodérmica y hematopoiética infecciosa

(Infectioushypodermic and hematopietic necrosis virus, IHHNV)

Virus del Síndrome de la Mancha Blanca (White spot

syndromevirus,WSSV)

Virus del Síndrome de Taura (Taurasyndrome virus, TSV)

Virus del síndrome de la cabeza amarilla (Yellow head syndrome virus,

YHV)

Virus de la mionecrosis infecciosa (Infectiousmyonecrosis virus, IMNV)

Mionecrosis infecciosa viral (IMNV)

Penaeusvannameinodavirus (PvNV)

b. Enfermedades Bacterianas

Vibriosis sistémica

Erosión bacteriana del caparazón

Síndrome de Zoea II

Enfermedad de luminiscencia

Necrosis del hepatopáncreas bacteriana (NHP-B)

c. Enfermedades por Parásitos

Gregarinas

Microsporidios

Haplosporidios

Epicomensales

Metazoarios

d. Enfermedades por hongos

Micosis

Fusariosis

3.4.7.1 MANEJO DURANTE LA COSECHA

Antes de iniciar la cosecha, se debe elaborar un plan donde quede

definido en cada paso:

Quiénes realizaran la actividad de la cosecha.

Cuándo se realizara la actividad de la cosecha

Cómo se realizara la actividad de la cosecha

Page 65: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

65

Para proceder con la cosecha, los langostinos deben reunir ciertas

características, tales como:

Tamaño apropiado

Buen estado sanitario.

Características organolépticas apropiadas.

Textura adecuada. (Aproximadamente el 95% de la población total

tiene que presentar una textura “dura”)

La dureza del langostino, está influenciada por los periodos lunares.

Usualmente se realiza la operación de cosechado 3 antes o después,

de la luna llena y luna nueva. Debido a que durante estos periodos

lunares, el langostino alcanza la textura más adecuada.

Es recomendable, que antes de 15 días de la fecha de cosecha, se

realicen muestreos para determinar las características mencionadas. Es

decir; es necesario realizar un seguimiento al langostino antes de la

cosecha.

Cuando los langostinos cumplen con las condiciones adecuadas, es

necesario retirar la ración alimentación entre 24 y 48 horas antes de la

cosecha, para evitar que la repleción por alimento en descomposición

dentro del langostino luego de la cosecha, cause problemas en el

hepatopáncreas durante el procesamiento

Una vez determinado el día de cosecha, se procede a realizar limpieza

de los monjes, y los ductos de salida de agua.

Luego, se procede a instalar una bolsa de red (en los monjes) llamada

"manga" hecho con paño anchovetero de 10 m de longitud con su

marco respectivo el cual es denominado “cubo” (Anexo 32).

Después de haber sido instalados y dispuestos los equipos y

herramientas necesarias. Se procede a bajar el nivel del agua del

estanque con 1 ó 2 días de anticipación dependiendo del tamaño del

mismo.

Si la cantidad de agua que hay en el estanque pudiese ser evacuada

durante 1 sólo día. Se procede a bajar las ¾ partes del nivel del agua

durante el día, luego se espera hasta la noche. Para realizar la

operación de cosechado en el cual se bajara el nivel del agua restante,

evacuando de esta manera el agua junto con los langostinos.

Page 66: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

66

Durante la noche debido a que los langostinos tienen un fototropismo

positivo, sólo es necesario colocar un foco en la estructura del monje

para atraerlos hacia esa zona. Y de esta manera por efecto de la

pendiente del estanque y la fuerza de la evacuación del agua, estos son

arrastrados. (Anexo 33). Es allí entonces, que la “manga” es utilizada

como bolsa receptora para los langostinos.

Cuando el cubo es llenado debido a la cantidad excesiva de

langostinos, se procede a trasladarlos con la ayuda de baldes

agujereados (para escurrir el agua) hacia los dinos (Anexo 34).

Los dinos son recipientes de aproximadamente de 1000 litros, en el cual

se prepara una cremolada previamente con agua y hielo, para

introducir a los langostinos, de manera que éstos mueran por choque

térmico. Luego estos son colocados en cajas de 25 kg con hielo y son

enviados en camiones frigoríficos a la planta de proceso.

Es necesario recordar que con este proceso se dará inicio a la cadena

de frío, la cual no debe ser interrumpida bajo ninguna circunstancia

hasta que el producto sea consumido.

*Una vez finalizado la operación de cosecha, el ciclo del cultivo vuelve a

iniciar con la etapa de “preparación de estanques”. Completando así un

círculo cerrado de producción.

Page 67: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

67

IV. RESULTADOS

A continuación, presento un reporte de producción de la langostinera “BUVA CAMARON SAC”

Estanque Area

(Ha)

Peso

Promedio

(gr)

Incremento

Acumulado

Edad

(Días)

Población

Inicial

Población

Final

Peso

Planta

(kg)

Densidad

Inicial

(m2)

Densidad

Final (m2)

A.B.

Acumulado

(kg)

%

Sobrevivencia

T.C.A Rendimiento

(kg/Ha)

1 12.10 14.50 1.21 126 1 700 000 1110882 16107 14.05 9.18 19923 65.35 1.24 1331.22

2 5.45 14.50 1.21 116 865000 773696 11218 15.87 14.20 13388 89.44 1.19 2058.45

3 6.50 14.00 1.17 117 1200000 984928 13788 18.46 15.15 15390 82.08 1.12 2121.23

4 3.20 14.00 1.17 115 590000 391495 5480 18.44 12.33 7298 66.36 1.33 1712.50

5 2.75 14.50 1.21 118 435 000 337369 4891 15.82 12.27 7034 77.56 1.44 1778.54

6 5.23 13.50 1.13 114 960000 582578 7864 18.46 11.14 10857 60.69 1.38 1503.63

7 3.50 14.00 1.17 116 650000 399911 5598 18.57 11.43 6949 61.52 1.24 1599.42

Total 38.73 6 400 000 4 580 859 64946 80839

Promedio 14.18 1.16 17,09 12,24 71,85 1.27 1729.28

Page 68: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

68

V. DISCUCIONES

Por medio de la observación y comprobación directa se evaluó lo siguiente:

En la bibliografía se recomienda fertilizar el agua una vez el estanque esta

colmado. Pero cuando un estanque es colmado, para iniciar el sembrado de

postlarvas, Un factor muy importante es conocer el origen del agua. Si este

proviene directamente del mar o de un estero. Puesto que cuando el agua

proviene del estero, no es necesario fertilizar, debido a la existencia de

productividad natural; esto se da porque otras langostineras evacuan aguas ya

cargadas de productividad natural hacia el estero. Pero no así para el agua

proveniente del mar, la cual es escasa en productividad natural.

En la bibliografía se recomienda realizar un secado total, después del drenado.

Pero durante la operación del secado, es necesario que sólo haya

cuarteaduras en el suelo. Más no es recomendable esperar a que toda la

humedad del suelo sea eliminada por acción del sol. Puesto que mientras haya

humedad, habrá bacterias nitrificantes que descompondrán la materia

orgánica. Pero si llegamos a esperar hasta un secado total, en el cual no haya

humedad en el suelo, eliminaremos las bacterias nitrozomas y nitrobacter y

esto tendría un efecto negativo cuando iniciamos el cultivo nuevamente. Puesto

que se tendría que esperar que haya una nueva proliferación de los mismos, y

mientras ocurre ello habrá mayor cantidad de materia orgánica sin mineralizar.

En la bibliografía, se recomienda seguir una tabla de alimentación para

suministrar el Alimento balanceado. Pero es necesario entender, que esto

significaría mecanizarse. Debido a que a veces, aun agregando la cantidad que

indica la tabla de alimentación los langostinos no suelen crecer. Por ello es

necesario recordar, que estas tablas son sólo de referencia. Puesto que cada

Ingeniero o biólogo pesquero, debe desarrollar su propia tasa de alimentación

a través de la experiencia.

Debido a que hay muchos factores a tener en cuenta al momento de

suministrar el alimento balanceado: El tamaño del langostino, Temperatura, pH,

Acumulación de materia orgánica, O2, Disponibilidad de Alimento natural,

Periodos largos sin recambio de agua, Actividad diurna o nocturna, Ciclo de

muda,etc.

Page 69: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

69

En la bibliografía, se recomienda Alimentar a la postlarvas después de 15 -30

días, debido a que durante esta etapa consumen alimento que están

constituidos por organismos que forman el eslabón básico de la cadena

alimenticia. Y después de ello ya se inician con alimento balanceado. Pero esta

regla se basa sólo cuando el estanque tiene productividad natural abundante.

Pero si en un estanque no hay mucha productividad natural, la postlarva

consumen alimento balanceado tipo KR1 (Nicovita) tan sólo al décimo día. Esto

es debido precisamente a que existe escases de alimento natural, lo cual los

obliga a consumir el alimento balanceado.

VI. CONCLUSIONES

Durante el periodo de prácticas, se logró contrastar, los manejos de controles

limnologicos físicos y químicos.

Se logró adquirir conocimientos acerca de la metodología aplicada en la siembra

de postlarvas.

Se Adquirió conocimientos sobre el manejo especializado y controlado de la

crianza de langostinos en sistemas de estanquerías.

Se obtuvo dominio sobre los sistemas de alimentación del langostino, en sus

diferentes fases.

Se logró adquirir conocimiento sobre tratamiento de enfermedades.

Se obtuvo conocimientos sobre las diferentes técnicas empleadas en la cosecha

de langostinos.

La alcanzo la debida instrucción en la formulación y solución de problemas que se

puedan presentar durante el cultivo.

Page 70: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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VII. RECOMENDACIONES

Es de vital importancia la adquisición de un Oxímetro. Para poder prevenir

anticipadamente los tenores bajos de oxígeno, y así poder evitar un porcentaje

elevado de mortandad. Lo cual repercute directamente en la rentabilidad de la

empresa.

Se debe incorporar un plan de arado de fondo de los estanques de manera

inmediata, para lograr mejores condiciones del suelo por medio de la

mineralización y oxidación. Para poder garantizar un ambiente apropiado para

el engorde del langostino. Logrando así un porcentaje elevado de

supervivencia. Beneficiando de esta manera a la empresa con una rentabilidad

mayor.

Es recomendable realizar un análisis de costos y presupuestos entre el uso

petróleo o el uso de un servicio de energía eléctrica, esto en relación a los años

con la que está proyectada la empresa a operar en el sector. Para de esta

manera evaluar cuál es el más beneficioso en relación a costos.

Es de vital importancia realizar de forma inmediata el mantenimiento los niveles

de las pendientes de los estanques, puesto que esto genera un mal drenado

del agua durante la cosecha. Ocasionando grandes masas de agua, los cuales:

Retienen una cantidad significativa de langostinos.

Evitan un secado de manera regular

Genera una cosecha ineficiente e incompleta

Provoca una mezcla con de langostino con el sedimento,

perjudicando la calidad, etc.

Es necesario el mantenimiento de los monjes, para evitar roturas en las

mismas y por consiguiente posibles pérdidas.

Adquirir un grupo electrógeno sustituto, para suplantar al principal, cuando esté

presente problemas. Con el fin de contar con un fluido eléctrico continuo para

los aireadores. Y así evitar la mortandad por escases de oxígeno, lo cual

afecta la rentabilidad del cultivo.

Page 71: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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VIII. BIBLIOGRAFIA

1. Jorge Fenucci. 1988. Manual para la cria de camarones peneidos.1988. Cap

2. Brazil. Edición FAO

2. Maria Cruz RivearRodriguez. 1998. Efecto de la salinidad sobre el

crecimiento y sobrevivencia en postalarvas y juveniles de langostino

PenaeusVannamei.Pag. 5-10. Colombia. Tesis.

3. Jorge l. Fenucci, Cornelio Lara, Vielka Morales, Abelardo De Gracia y Oscar

García Suárez. 2010. Manual de buenas prácticas de manejo para el cultivo

del camarón blanco penaeus vannamei. Pag. 25-101. Panamá. Impresora

Nornos.

4. Boletín nicovita. 1999. Evolucion del alimento para camarones. Volumen 4.

Perú. Edición Tumpis.

5. Gerardo Cruz Reyes. 1997. Cuantificagion de aminoacidos de los estadios

larvarios del camaron penaeusvarnamáy estimacion de los requerimientos

de aminoacidos esenciales.

6. Boletín nicovita. 1997. Tasa o factor de conversión alimenticia en el cultivo

de camarón. Volumen 2. Perú. Edición Tumpis.

BIBLIOGRAFIA VIRTUAL

A. http://maps.google.es

B. http://www.ictioterm.es

C. http://es.wikipedia.org

D. http://www.acuariacolombia.org

E. http://www.fao.org

F. http://www.nicovita.com.pe

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IX. ANEXOS

ANEXO 1 – ANATOMIA GENERAL ANEXO 2 - MORFOLOGIA EXTERNA

ANEXO 3 – MORFOLOGIA INTERNA ANEXO 4 – MORFOLOGIAA

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ANEXO 5 – DESARROLLO LARVARIO ANEXO 6 – MADURACION SEXUAL

ANEXO 7 – ESTACIONES DE BOMBEO ANEXO 8 – ESTANQUES

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ANEXO 9 – DISEÑO DE UN ESTANQUE

ANEXO 10 – SECADO DE FONDO ANEXO 11 – ARADO DE FONDO DE ESTANQUE

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ANEXO 12 - MALLAS FILTRADORAS

ANEXO 13 - FERTILIZANTE

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ANEXO 14–EVALUACIÓN DE LA CALIDAD DE LAS POSTLARVAS Y

PRUEBAS DE ESTRÉS

Evaluación microscópica y molecular de postlarvas

• El responsable del Centro de Producción Larval debe informar a la granja cuáles son

las características de la calidad del agua en que serán enviadas las postlarvas

(salinidad, temperatura, pH, etc.), para así preparar las unidades de aclimatación

• Algunos días antes de la compra, el técnico de la granja debe ir al Centro de

Producción Larval y supervisar el muestreo de las postlarvas para su posterior

evaluación en el laboratorio de diagnóstico

• Para aceptar o rechazar el envío de postlarvas, se debe evaluar el grado de actividad

de la larva, fototropismo, hilo fecal, presencia/ausencia de bioluminiscencia,

uniformidad de tallas y contenido intestinal, principalmente.

• Posteriormente se debe continuar con una evaluación bajo el microscopio para

determinar presencia o ausencia de vacuolas de grasa en el hepatopáncreas,

contenido intestinal, deformidades, mecanización de apéndices o branquias, presencia

de organismos epicomensales (epibiontes), síndrome de las bolitas blancas y BP

(Baculo viruspenaei), desarrollo branquial

• La detección molecular (mediante la Reacción en Cadena de la Polimerasa-PCR) de

agentes patógenos de importancia, es una medida mandatoria para terminar de

evaluar de manera completa, la calidad de un lote de postlarvas

• Antes de la compra de las postlarvas, el técnico de la granja responsable de la

adquisición de las mismas, debe conocer los resultados de los exámenes anteriores

quedar a total satisfacción con los mismos

• No todos los lotes de postlarvas son iguales, por lo que es necesario realizar los

análisis arriba mencionados a cada grupo de animales que se piensa adquirir para la

granja; los resultados de calidad de un lote, no aplicarán necesariamente a otro pues

se trata de poblaciones de postlarvas diferentes.

Evaluación macroscópica y microscópica de la calidad de las postlarvas.

Se debe tomar una muestra al azar de 20 postlarvas y evaluar las siguientes

características:

• Actividad. Al menos el 95% de las PL deben estar activas. Las postlarvas saludables,

nadan activamente en contra de la corriente generada por la aeración en el tanque de

aclimatación o manualmente.

• Presencia de deformidades. No se deben aceptar postlarvas con el rostrum deforme

o doblado, daños de apéndices causados por bacterias, problemas de muday pérdida

de apéndices etc. La presencia de cuerpos torcidos es evidencia del uso de diversos

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medicamentos. El rostro y los apéndices deben ser de forma normal, sin erosiones ni

deformidades. No se deben aceptar postlarvas que presenten más de un 5% de

deformidades.

• Tamaño homogéneo. Las postlarvas más desarrolladas tienen una mayor resistencia

a enfermedades, desarrollo branquial completo y capacidad para tolerar cambios

relativamente bruscos de salinidad y temperatura. Las edades de siembra

recomendadas para L. vannamei es por lo general alrededor de PL-9 a PL-11

(postlarvas de nueve a once días). No es recomendable aceptar postlarvas mayores a

PL-11 ya que esto requerirá de bajar considerablemente las densidades de empaque

(# postlarvas por litro en cada bolsa) incrementando los costos de envío. De no

hacerlo, socorre el riesgo de sufrir altas mortalidades durante el envío.

• Contenido intestinal. La postlarvas con buena salud porro general se alimentan de

manera continua y agresiva deberían presentar el intestino lleno. Las postlarvas bajo

estrés usualmente dejan de comer.

• Movimiento intestinal (peristalsis): los movimientos rítmicos del cordón intestinal

indican un buen funcionamiento del sistema digestivo de los animales. De igual modo,

un color oscuro de la hepatopáncreas es un indicio de que las postlarvas se han

estado alimentando adecuadamente.

• Presencia de espibiones: las postlarvas saludables al ser observadas al microscopio

no presentan organismos adheridos al exoesqueleto. Las postlarvas que presentan

una cantidad abundante de epibiontes son un indicio de la existencia de pobres

condiciones de calidad de agua. Bajo estas condiciones las postlarvas usualmente no

mudan con regularidad y presentan un pobre estado de salud general. Se aconseja no

aceptar envíos de postlarvas que presenten más de un 5% de espibiones.

• Opacidad muscular. La presencia de langostinos con opacidad en su musculatura es

también indicio de estrés causado por condiciones ambientales pobres. Los envíos de

postlarva con más del 10% de los animales presentando esta condición se consideran

inaceptables.

• Desarrollo branquial: Un buen desarrollo branquial se observa cuando las lamelas o

filamentos branquiales de las postlarvas se ramifican como en forma de árbol de

navidad. Generalmente las postlarvas alcanzan este desarrollo entre los días 9 y 10 de

desarrollo de las postlarvas (PL-9 o PL-10); un buen desarrollo branquial permite a las

postlarvas el tolerar con mayor facilidad cambios rápidos de salinidad y otros

parámetros durante la aclimatación

• Cambios en el color y melanización. El color rojizo de las postlarvas puede ser

ocasionado por nutrición deficiente, manejo inapropiado, infecciones y estrés. La

mecanización (manchas de color oscuro) indica infecciones bacterianas. En animales

Page 78: Informe de Practicas Pre-profesionales - Cultivo de Langostino de Mar (Litopenaeus Vannamei) - Angel Diaz Torres

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no saludables las células pigmentarias (cromatóforos) se expanden generando bandas

continuas de pigmento.

La inspección del estado de los cromatóforos debe hacerse a la brevedad

inmediatamente después de que las muestras han sido sacadas del agua, ya que los

cromatóforos tienden a expandirse aún en postlarvas saludables a causa del estrés

generado por la manipulación excesiva.

Pruebas de estrés.

La calidad de las postlarvas se puede evaluar mediante una prueba de estrés, la cual

mide la tolerancia de los animales ante un parámetro extremo conocido. Para realizar

estas pruebas unas 100-200 postlarvas son sometidas a un choque térmico, osmótico

y/o químico para luego determinar el número de postlarvas que sobreviven a la

prueba. Una prueba ampliamente usada es la de someter a los animales a una

reducción de temperatura de 10-12°C por 1-2 horas, o a salinidades de 0-5 partes por

mil durante 30 minutos. A continuación se detallan los procedimientos para la

realización de una de estas pruebas.

La prueba de estrés a baja salinidad consiste en lo siguiente:

• Preparar agua (500 mL) a salinidad de 5 partes por mil (ppt.)

• Tomar al azar 100 postlarvas del tanque de cultivo y se depositan en el recipiente

con agua a 5 partes por milde salinidad

• Esperar 30 minutos

• Llevar luego las postlarvas a la salinidad en que se encontraban originalmente

• Dejar transcurrir otros 30 minutos

• Contar las postlarvas vivas y muertas; el resultado se expresa en porcentaje

Para la evaluación de la prueba de estrés, se deben tomaren consideración los

siguientes valores de porcentaje de supervivencia:

• 90 a 100%: excelente

• 85%: aceptable

• 80%: regular

• < 80%: no aceptable

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ANEXO 15 – MESES DONDE HAY FLUCTUACIONES DE T(ºC) ANEXO 16 –PREPARACION DE POSTLARVA

ANEXO 17 – CARBON ACTIVADO ANEXO 18 –ACLIMATACION DE POSTLARVAS

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ANEXO 19 – SEMBRADO DE POSTLARVA ANEXO 20 – ALIMENTO BALANCEADO - NICOVITA

ANEXO 21 – ALIMENTACION POR BOLEO ANEXO 22– ALIMENTACION POR COMEDERO

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ANEXO 23– ALIMENTACION POR COMEDERO ANEXO 24– ALIMENTACION POR COMEDERO

ANEXO 25– ALIMENTACION EN ETAPA POSTLARVA ANEXO 26–ALIMENTACION EN ETAPA DE ENGORDE

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ANEXO 27–OBTENCION DE MUESTRA

ANEXO 28–MUESTREO DE CRECIMIENTO

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ANEXO 29–CONSUMO DE ALIMENTO BALANCEADO DURANTE LA MUDA

MUDA: Un hecho comprobado es que dentro de un estanque de cultivo, siempre tendremos

langostinos en diferente estadio del ciclo de muda. Por lo tanto un porcentaje

importante de estos langostinos estarán en los estadios de:

-Premuda

-Muda

-Postmuda

En el cual no consumen alimento. Las tablas de ajuste de las raciones no consideran a

la muda dentro de sus cálculos y una parte del alimento que se está agregando al

estanque no está siendo consumido ni aprovechado por los langostinos. El costo de

esta sobrealimentación puede ser altísimo.

Ejemplo:

Consideremos que en un sistema de estanques el30% de la población se encuentra

en estadios de premuda tardía, muda y postmuda temprana (incapacitados para

comer); tenemos entonces que el 30% del alimento diario se está agregando sin razón

alguna; esa cantidad de alimento multiplicada por los días de alimentación y el número

de estanques representará una cantidad asombrosa de dinero que prácticamente se

estará aplicando sin necesidad alguna.

Es por ello, que es conocer el ciclo de muda y utilizarlo para optimizar el manejo de la

alimentación en elcultivo de langostino. -Se conoce reportes de reducción en el TCA

Técnica de cálculo de % de muda:

Han sido desarrolladas técnicas que permiten el cálculo de la cantidad de alimento a

ser agregado en el estanque con base en los estadios de muda de la población de

langostinos en cultivo, como a continuación se describen:

a. Muestreo de 100 animales cada dos días, en cinco puntos del estanque (cuatro a

los extremos y uno al centro)

b. Determinar los langostinos que se encuentran en postmuda precoz y premuda

tardía utilizando como referencia los patrones fenotípicos de la porción distal de los

urópodos bajo el microscopio.

c. Determinar la biomasa real a alimentar (en kg).

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Ejemplo:

-Biomasa total 4504 kg

-Porcentaje de muda= 15% (estadios B0, B1, D3, D4)

-Biomasa real a alimentar= 3828 kg.

Entonces el porcentaje de animales que no están en condiciones de comer (ayuno

fisiológico) es de 15%

d. Consultar las tablas de referencia para alimentación.

Para alimentar langostinos de 3gr, se requieren 5% de su peso corporal.

e. Alimentar según la biomasa real a nutrir.

Ejemplo:

-Biomasa total 4504 kg

-Porcentaje de muda= 15% (estadios B0, B1, D3, D4)

-Biomasa real a alimentar= 3828 kg.

-Para alimentar langostinos de 3gr, se requieren 4,5% de su peso corporal.

3828kg ------- 100% X -------------- 5% X=191,4 kg de alimento

Entonces, para alimentar 3828kg de biomasa de langostinos, se requiere =191,4 kg de

alimento.

(Sin tomar en cuenta la determinación de la muda se hubieran requerido 225,2kg).

f. Alimentar de acuerdo con los horarios establecidos con base en los ritmos

circadianos de actividad enzimática digestiva, son: 10 a.m., 6 p.m. y 2 a.m.

g. Determinación del TCA cada semana.

h. Como el comportamiento de los animales durante la muda es cíclico, se pueden

seguir dos ciclos completos de muda, (alrededor de 10 días en función del peso) y

después continuar dando la misma proporción de alimento por día hasta el cambio de

peso.

Es importante recordar que los patrones luz oscuridad son determinantes para

desencadenar la muda y son constantes y estables durante las diferentes estaciones

del año.

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ANEXO 30–AIREADORES DE 1 HP ANEXO 31 – ENFERMEDADES

ANEXO 32–OPERACIÓN DE COSECHA ANEXO 33–OPERACIÓN DE COSECHA

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ANEXO 34 – OPERACIÓN DE COSECHA