Top Banner
Grupo 1: Alexandra Salvado 40267, Ana Lamy 40279, Andreia Sousa 40261 e Telmo Paiva 40243 Bioquímica Experimental II, PL2, 2011/2012, Professor: Carlos Farinha
34

III-3. Fotossíntese

Aug 02, 2015

Download

Documents

Welcome message from author
This document is posted to help you gain knowledge. Please leave a comment to let me know what you think about it! Share it to your friends and learn new things together.
Transcript
Page 1: III-3. Fotossíntese

Grupo 1:

Alexandra Salvado 40267, Ana Lamy 40279, Andreia Sousa 40261 e Telmo Paiva 40243

Bioquímica Experimental II, PL2, 2011/2012, Professor: Carlos Farinha

Page 2: III-3. Fotossíntese

Objectivos

DQB-Licenciatura em Bioquímica 2

• Testar a libertação de dioxigénio pelos cloroplastos isolados usando

oxidantes de Hill;

• Medir o transporte electrónico fotossintético utilizando a autoxidação

de um aceitador terminal de electrões (viologénio de metilo);

• Ensaio espectrofotométrico da reacção de Hill;

• Determinação do conteúdo de clorofila dos cloroplastos.

Page 3: III-3. Fotossíntese

Resumo

DQB-Licenciatura em Bioquímica 3

Isolamento dos cloroplastos

Ensaios usando oxidantes de Hill e

viologénio de metilo no eléctrodo de

oxigénio

Ensaio espectrofotométrico da

reacção de Hill

Determinação do conteúdo de

clorofila dos cloroplastos

Page 4: III-3. Fotossíntese

Determinação do Conteúdo de

Clorofila dos Cloroplastos

DQB-Licenciatura em Bioquímica 4

Abs652 nm= 0,760

ε solução de acetona = 34,5 mg-1 mL cm-1

Abs = ε l c 0,760 = 34,5 × 1 × c ⇔

⇔ c = 0,022 mg mL-1

Em 0,2 mL de suspensão:

ci Vi = cf Vf

ci × 0,2 = 0,022 × 25 ⇔ ci = 2,75 mg mL-1

Em 25 mL de

acetona

Page 5: III-3. Fotossíntese

Massa de Clorofila por Ensaio

5

No ensaio, são colocados:

1 mL de meio de reação

0,1 ou 0,050 mL de suspensão de cloroplastos

0,850 mL de água

cclorofila = 2,75 mg mL-1

Logo, em 0,1 mL de suspensão:

E em 0,050 mL de suspensão:

Concentração de

clorofila na suspensão suspensão

clorofila

clorofila V

m=c

mg 0,275=m⇔0,1

m=2,75 clorofila

clorofila

mg 0,138=m⇔0,050

m=2,75 clorofila

clorofila

Page 6: III-3. Fotossíntese

Quantidade de oxigénio por quadrícula

DQB-Licenciatura em Bioquímica 6

[O2] (25ºC) = 0,253 µmol/mL

Logo, em 2 mL, a quantidade de oxigénio é:

µmol 0,506 =) n(O

2

) n(O=0,253

Vtotal

) n(O=][O

2

222

Dos 0 aos 100% de oxigénio encontram-

se 50 quadriculas:

50 quadrículas 0,506 µmol

1 quadrícula

50 q

uadrí

cula

s

x

quadrícula/ O de mol 012,1 2x

Adição de

Ditionito de

Sódio

Figura 1. Registo obtido pelo

eléctrodo de oxigénio

Page 7: III-3. Fotossíntese

Reagentes de Hill

7

Reação de Hill: 222e

2 O2

1 +A H A +OH-

Reagentes de Hill

Aceitadores artificiais de

electrões

DCPIP

Ferricianeto

Figura 2. Estrutura molecular

do DCPIP

Figura 3. Estrutura molecular

do ferricianeto

Page 8: III-3. Fotossíntese

Oxidantes de Hill

8

DCPIP

10 µL

DCPIP

20 µL

DCPIP 40 µL

DCPIP

40 µL

DCPIP

40 µL

DCPIP

+ 50 µL

DCMU

Sem

Luz

40 µL

DCPIP Figura 4. Registo obtido pelo eléctrodo de oxigénio para o DCPIP.

Page 9: III-3. Fotossíntese

Oxidantes de Hill

9

Ensaios com DCPIP

Adição de 40µL de DCPIP

1 quadrícula 1012 nmol de O2

11 quadrículas

10 mm 1 minuto

7 mm

y

2O de nmol 1113y

xminutos 7,0=x

)(×Δ

)(=)(

2

clorofilamt

Onsefotossíntev

1-1-mgmin nmol 5782

275,07,0

1113)(

sefotossíntev

11 quad.

7 mm

Figura 5. Medição do declive

do DCPIP.

Page 10: III-3. Fotossíntese

DCPIP – resultados obtidos

10

Ensaios V(adicionado)

/µL n(O2) /mol

Tempo

/min

v(fotossíntese) /

nmol min-1mg-1

DCPIP

10 303,6 0,5 2208

20 657,8 0,5 4784

40 1113 0,7 5783

50 DCMU + 40

DCPIP 1063 0,5 7728

• A velocidade de fotossíntese aumenta com o volume adicionado de DCPIP

• Ao adicionar DCMU não devia ocorrer formação de O2

Quadro 1. Registo dos resultados para o DCPIP

Page 11: III-3. Fotossíntese

Oxidantes de Hill

11

Ferricianeto

10 µL

Ferricianeto

20 µL

Ferricianeto

40 µL

Ferricianeto

20 µL

Ferricianeto

40 µL

Ferricianeto +

50 µL DCMU

Figura 6. Registo obtido pelo eléctrodo de oxigénio para o ferricianeto.

Page 12: III-3. Fotossíntese

Oxidantes de Hill

12

Ensaios com Ferricianeto

Adição de 40µL de Ferricianeto

1 quadrícula 1012 nmol de O2

13 quadrículas

10 mm 1 minuto

16 mm

y

2O de nmol 1316y

x

minutos 6,1=x

)(×Δ

)(=)(

2

clorofilamt

Onsefotossíntev

1-1-mgmin nmol 2990

275,06,1

1316)(

sefotossíntev

16 mm

13 quad.

Figura 7. Medição do declive do

ferricianeto.

Page 13: III-3. Fotossíntese

Ferricianeto – resultados obtidos

13

Ensaios V(adicionado)

/µL n(O2) /nmol Tempo /min

v(fotossíntese) /

nmol min-1mg-1

Ferricianeto

20 404,8 0,6 2450

40 1316 1,6 2990

50 DCMU + 40

ferricianeto 506,0 0,2 9200

• A velocidade de fotossíntese aumenta com o volume adicionado de

ferricianeto;

• Ao adicionar DCMU não devia ocorrer formação de O2

Quadro 2. Registo dos resultados para o ferricianeto

Page 14: III-3. Fotossíntese

Comparação entre Ferricianeto e DCPIP

14

Ensaios V(adicionado)

/µL

n(O2)

/nmol

Tempo

/min

v(fotossíntese) /

nmol min-1mg-1

DCPIP

10 mM

10 303,6 0,5 2208

20 657,8 0,5 4784

40 1113 0,7 5783

50 DCMU + 40

DCPIP 1063 0,5 7728

Ferricianet

o

10 mM

20 404,8 0,6 2450

40 1316 1,6 2990

50 DCMU + 40

ferricianeto 506,0 0,2 9200

Quadro 3. Comparação dos resultados entre o ferricianeto e o DCPIP

Page 15: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 15

Ensaio espectrofotométrico

Reacção de Hill Quadro 4. Valores de absorvência registados

Page 16: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 16

Ensaio espectrofotométrico

Figura 8. Gráfico correspondente ao ensaio 1, da absorvência

de DCPIP em função do tempo.

Declive

Page 17: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 17

Ensaio espectrofotométrico

Figura 9. Gráfico correspondente ao ensaio 2, da absorvência de

DCPIP em função do tempo.

Declive

Page 18: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 18

Ensaio espectrofotométrico

Figura 10. Gráfico correspondente ao ensaio 3, da absorvência de

DCPIP em função do tempo.

Média das absorvências:

Declive

𝑥 =0,0186 + 0,0228 + 0,0364

3

⇔ 𝑥 ≈ 0,0259

Page 19: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 19

Ensaio espectrofotométrico

Cálculo da variação da concentração em função do tempo:

Lei de Lambert-Beer

Volume total dos reagentes que se adicionou na cuvette:

𝐴𝑏𝑠 = 𝑐𝜀𝑙 ⇔𝐴𝑏𝑠

𝑡=

𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃

𝑡𝜀𝑙 ⇔

𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃

𝑡=𝐴𝑏𝑠

𝑡×1

𝜀𝑙⇔

⇔[𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃]

𝑡= 0,0259 ×

1

16000×1⇔

[𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃]

𝑡≈ 1,62 × 10−6 M s-1

V = 1,5 + 0,020 + 1,4 + 0,050 = 2,97 mL

Page 20: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 20

Ensaio espectrofotométrico

Número de moles de DCPIP reduzido por segundo:

Pela estequiometria da reacção de Hill:

𝑐 =𝑛

𝑉⇔

𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃

𝑡=𝑛𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃

𝑡×1

𝑉 ⇔

𝑛𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃𝑡

=𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃

𝑡× 𝑉 ⇔

⇔𝑛𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃

𝑡= 1,62 × 10−6 × 2,97 × 10−3 ⇔

𝑛𝐷𝐶𝑃𝐼𝑃

𝑡≈ 4,81 nmol s-1

⇔n=4,81×10-91×12⇔n≈2,40×10-9 mol ⇔ 2,40×10-9 mol s-1

DCPIP O2

1 mol — ½ ⇔

4,81 × 10-9 mol — 𝑛

𝑛 =4,81×10−9

1

2⇔ 𝑛 ≈ 2,40 × 10−9 mol

⇔ 2,40 × 10−9 mol s-1

Page 21: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 21

Ensaio espectrofotométrico

Cálculo da massa de clorofila:

𝐶𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎 =𝑚𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎

𝑉⇔ 𝑚𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎 = 𝐶𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎 × 𝑉 ⇔

⇔ 𝑚𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎 = 2,75 × 2,0 × 10−2 ⇔ 𝑚𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎 ≈ 0,055 mg

V = 20 µL = 2,0 × 10-2 mL

[Clorofila] = 2,75 mg mL-1

Velocidade fotossintética:

𝑣 ≈1,44×10−7

0,055≈ 2,62 µmol min-1 mg-1

Page 22: III-3. Fotossíntese

DQB-Licenciatura em Bioquímica 22

Comparação entre valores

Eléctrodo de oxigénio: v = > 5,78 µmol min-1 mg-1

Espectrofotometria: v = 2,62 µmol min-1 mg-1

VDCPIP/ μL v / µµol min-1 mg-1

10 2,21

20 4,78

40 5,78

Quadro 6. Volumes de DCPIP e respectivas velocidades – eléctrodo de oxigénio

Mesma ordem de grandeza

Valores em concordância

Page 23: III-3. Fotossíntese

Viologénio de metilo (VM2+

)

DQB-Licenciatura em Bioquímica 23

• Aceitador terminal de electrões;

• Aceita electrões do PS I, ficando reduzido e obtém-se formação de O2 com a

estequiometria normal da reacção de Hill.

• No entanto, o O2 é consumido por outras duas reacções:

Autoxidação do viologénio de metilo:

𝟐𝑶𝟐 + 𝟐𝑽𝑴+ → 𝟐𝑽𝑴𝟐+ + 𝟐𝑶𝟐.−

Dismutação do radical superóxido:

𝟐𝑶𝟐.− + 𝟐𝑯+ → 𝑯𝟐𝑶𝟐 +𝑶𝟐

𝑯𝟐𝑶+ 𝟐𝑽𝑴𝟐+ → 𝟐𝑽𝑴𝟐+ + 𝟏 𝟐 𝑶𝟐 + 𝟐𝑯+

Page 24: III-3. Fotossíntese

Viologénio de metilo (VM2+

)

DQB-Licenciatura em Bioquímica 24

• Através da soma das 3 reacções anteriores obtém-se a estequiometria de

consumo de O2

Foi o que se registou no eléctrodo de oxigénio

𝑯𝟐𝑶+ 𝟏 𝟐 𝑶𝟐 → 𝑯𝟐𝑶𝟐

0,5 mol de O2 são consumidos por par de electrões transferidos

VM

Page 25: III-3. Fotossíntese

Viologénio de metilo (VM2+

)

DQB-Licenciatura em Bioquímica 25

• Cálculo das velocidades fotossintéticas

Foram feitos ensaios com diferentes quantidades de viologénio

de metilo até se registar uma estabilização no consumo de O2

De seguida, adicionou-se azeto de sódio

Inibe o catalase, evitando a

síntese de O2 através da

degradação do H2O2

Azeto de sódio

Page 26: III-3. Fotossíntese

Viologénio de metilo (VM2+

)

DQB-Licenciatura em Bioquímica 26

• 1º Ensaio

[O2]

/ m

ol

Vpapel / min

25 μL

VM

50 μL

NaN3

7 quadrículas

10 mm

100𝜇𝐿 𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑝𝑙𝑎𝑠𝑡𝑜𝑠 = 0,1 𝑚𝐿

𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎 = 2,75 𝑚𝑔 𝑚𝐿

𝑚 𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎 = 2,75 × 0,1 = 0,275 𝑚𝑔 𝑑𝑒 𝑐𝑙𝑜𝑟𝑜𝑓𝑖𝑙𝑎

7 𝑞𝑢𝑎𝑑𝑟í𝑐𝑢𝑙𝑎𝑠 = 7 × 1,012 × 10−8 = 70,84 𝑛𝑚𝑜𝑙 𝑂2 𝑐𝑜𝑛𝑠𝑢𝑚𝑖𝑑𝑜

Figura 11. Ensaio 1 do Viologénio de Metilo.

Page 27: III-3. Fotossíntese

Viologénio de metilo (VM2+

)

DQB-Licenciatura em Bioquímica 27

10 𝑚𝑚 − 1 𝑚𝑖𝑛𝑢𝑡𝑜 10𝑚𝑚 − 𝑥

𝑥 = 1 𝑚𝑖𝑛𝑢𝑡𝑜

Num minuto consome-se 70,84 nmol de O2

𝑣 𝑓𝑜𝑡𝑜𝑠𝑠𝑖𝑛𝑡é𝑡𝑖𝑐𝑎 𝑉𝑀 =70,84

0,275= 258 𝑛𝑚𝑜𝑙 𝑂2𝑚𝑖𝑛−1𝑚𝑔−1

𝑣 𝑓𝑜𝑡𝑜𝑠𝑠𝑖𝑛𝑡é𝑡𝑖𝑐𝑎 𝑁𝑎𝑁3 = 293 𝑛𝑚𝑜𝑙 𝑂2𝑚𝑖𝑛−1𝑚𝑔−1

Page 28: III-3. Fotossíntese

Viologénio de metilo (VM2+

)

DQB-Licenciatura em Bioquímica 28

Aumento do volume

de viologénio de

metilo (aceitador de

electrões)

Aumento do

consumo de

oxigénio

Maior

velocidade

fotossintética

Era o esperado

Quadro 7. Valores de velocidade fotossintética para o viologénio de metilo e do azeto de sódio

Ensaio

Vfotossintética VM

/ nmol O2 min-1 mg-1

Vfotossintética NaN3

/ mol O2 min-1 mg-1

25 μL VM + 50 μL NaN3 258 293

50 μL VM + 50 μL NaN3 373 274

100 μL VM + 50 μL NaN3 291 323

Page 29: III-3. Fotossíntese

Viologénio de metilo (VM2+

)

DQB-Licenciatura em Bioquímica 29

Azeto de sódio Inibe o catalase

Impede a

formação de

oxigénio

Pela

degradação

do H2O2

Só há consumo de

oxigénio

Aumento do consumo

de oxigénio com a

presença de azeto

Observou-se

para os ensaios

1 e 3

Não se

observou para

o ensaio 2

Mais VM

Menos NaN3

Page 30: III-3. Fotossíntese

Actividade do PS I

DQB-Licenciatura em Bioquímica 30

VM

DCMU

Asc - DCPIP

[O2]

/ m

ol

Vpapel / min

Figura 12. Ensaio da actividade do PS I.

Page 31: III-3. Fotossíntese

Actividade do PS I

DQB-Licenciatura em Bioquímica 31

𝑣 𝑓𝑜𝑡𝑜𝑠𝑠𝑖𝑛𝑡é𝑡𝑖𝑐𝑎 𝑃𝑆 𝐼𝐼 + 𝑃𝑆 𝐼 =59,5

0,1375= 430 𝑛𝑚𝑜𝑙 𝑂2𝑚𝑖𝑛−1𝑚𝑔−1

𝑣 𝑓𝑜𝑡𝑜𝑠𝑠𝑖𝑛𝑡é𝑡𝑖𝑐𝑎 𝑃𝑆 𝐼 =157

0,1375= 1140 𝑛𝑚𝑜𝑙 𝑂2𝑚𝑖𝑛−1𝑚𝑔−1

Antes

DCMU

Quantidade de

O2 consumida é

inferior

Depois

DCMU

Sem

DCMU Não inibição do

PS II

Síntese

O2

Equilíbrio

entre síntese

e consumo de

O2

Page 32: III-3. Fotossíntese

Actividade do PS I

DQB-Licenciatura em Bioquímica 32

Síntese de O2

Quando se inibiu o PSII

(com DMCU) apenas se

regista o consumo de O2

e, assim, o declive é mais

acentuado

Figura 12. Transporte electrónico e geração de NADPH e ATP nos cloroplastos. PQ: plastoquinona; PC: plastociana; fd: ferredoxina; DCMU: 3-(3,4-diclorofenilo)-1,1-dimetilureia.

Page 33: III-3. Fotossíntese

Conclusão

DQB-Licenciatura em Bioquímica 33

• A velocidade fotossintética aumenta com o aumento da concentração do

reagente de Hill;

• Era de esperar que com o aumento do volume de VM houvesse uma maior

velocidade fotossintética, devido ao aumento do consumo de oxigénio, no

entanto isso não se verificou;

• Com o azeto de sódio é esperado que aumentasse o consumo de oxigénio, no

entanto este facto só se observou para os ensaios 1 e 3;

• A velocidade de consumo é mais acentuada quando apenas se fornece o

substrato ao PS I;

• O método do eléctrodo de oxigénio é mais rigoroso que o método

espectrofotométrico.

Page 34: III-3. Fotossíntese

Referências

DQB-Licenciatura em Bioquímica 34

• Lodish, et al. (2008). Molecular Cell Biology, Sixth Edition. New York: W. H. Freeman

and Company.

• Nelson, D., Cox, M. (2008). Lehninger, Principles of Biochemistry, Fifth Edition. New

York: W. H. Freeman and Company.

• Allen, J., & Holmes, N. (1999). Electron transport and redox titration, in Photosynthesis

energy transduction: a practical approach. Oxford: IRL Press.

• Plummer, D. (1987). An Introduction to Practical Biochemistry . London: McGraw-Hill.